CN112010942A - 一种使用超临界流体色谱制备放线菌素d和x2方法 - Google Patents

一种使用超临界流体色谱制备放线菌素d和x2方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及化合物制备领域,具体涉及一种使用超临界流体色谱制备放线菌素D和X2方法,包括如下步骤:将含放线菌素D和/或X2的粗提物进行超临界流体色谱法分离,得到放线菌素D和/或X2;所述超临界流体色谱法分离的流动相由流动相A和B组成,流动相A为超临界CO2,流动相B为甲醇、乙醇或含体积百分含量为0.1%三氟乙酸的乙醇;等度洗脱时,所述流动相A与流动相B的体积比例为80:20或75:25;梯度洗脱时,0~40min流动相由超临界CO2:乙醇的体积比由98:2变为60:40。本发明提供一种基于超临界色谱分离技术的放线菌素D和/或X2的制备方法,对放线菌素D和X2实现了高效绿色的分离。

Description

一种使用超临界流体色谱制备放线菌素D和X2方法
技术领域
本发明涉及化合物制备领域,具体涉及一种使用超临界流体色谱制备放线菌素D和X2方法。
背景技术
放线菌素是一类众所周知的色原肽抗生素,其结构主要是由一个相同吩噁嗪发色团,通过肽键连上两个五肽内酯环组成。自从瓦克斯曼和他的同事伍德拉夫于1940年首次报道发现了这类结构。截至目前,已经有超过 42个天然来源的放线菌素被分离并鉴定出来。研究发现,此类结构是通过其吩噁嗪母核与DNA中鸟嘌呤碱基特异性结合,抑制以DNA为模板的RNA 多聚酶,从而抑制RNA的合成和相应蛋白质的合成来发挥作用。其中,放线菌素D作为其庞大家族中最经典的一员,也是被研究最早最成熟一例。在1964年就已经由默克公司申请,被美国FDA批准以商品名Cosmegen销售至今。放线菌素D作为临床上的一线抗肿瘤药物,主要用于治疗一些恶性实体瘤,包括肾母细胞瘤(Wilms′tumor)、横纹肌肉瘤(rhabdomyosarcoma)、神经母细胞瘤、绒毛膜上皮细胞癌、睾丸癌、恶性葡萄胎等。入选《世界卫生组织基本药物标准清单》和中国《国家基本医疗保险目录》在列药物,在中国乃至世界范围内都有着巨大的需求。
近年来对放线菌素类物质深入研究发现,放线菌素X2也具有广谱的抗肿瘤活性,甚至活性更强。谢卫东等人发现,放线菌素X2对乳腺癌细胞 MCF-7、MDA-MB-231和BT-474的细胞毒活性明显强于放线菌素D,对 MDA-MB-231细胞的选择性IC50能够达到0.83nM纳摩尔级别[Lu D-D,Ren J-W,Du Q-Q,Song Y-J,Xie W-D.p-Terphenyls and actinomycinsfrom a Streptomyces sp.associated with the larva of mud dauber wasp. NaturalProduct Research 2019(4695):1-5]。另外,施珊珊等人发现放线菌素X2不仅对肝癌细胞HepG2有活性,而且对柯萨奇病毒(CVB3)、甲型流感病毒(H1N1)具有抗病毒活性。其抗病毒活性机制研究表明,放线菌素X2是在病毒吸附前就发挥作用,可能是通过抑制了NF-κB活化,下调了CVB3诱导的ECV304细胞ICAM-1、VCAM-1的mRNA和蛋白表达[施珊珊.放线菌素X2的抗肿瘤和抗病毒研究[D].广州:暨南大学,2009.]。从这点上出发,放线菌素X2未来更有望成为抗肿瘤和抗病毒的候选药物。
目前对放线菌素D和X2的制备方式主要有化学合成法、微生物发酵法、生物合成法。由于目前生物合成法仅仅停留在实验室阶段,而化学合成法产品工艺复杂,合成步骤长,产率不高,原料价格成本高、毒性大、安全性差,所用的有机试剂环境污染严重,废弃物难处理[Lifferth A,Bahner I,Lackner H,Martina S,Naturforsch Z.Synthesis andStructure of Proline Ring Modified Actinomycins of the X-Type.ChemistryScience 1999,54:681-691.Tanaka T,Nakajima K,Okawa K.Studies on 2-aziridinecarboxylic acid.IV.Total synthesis of actinomycin D(C1) via ring-opening reaction of aziridine.Bulletin of the Chemical Society of Japan 1980,53(5):1352-1355]。工业上放线菌素D和X2的制备主要采用微生物发酵法,其具有培养周期短、生产条件温和、代谢过程可调控、生产成本低、产量高的优点。尽管已经很多高产菌株被发现和应用,但是微生物发酵法后处理过程中,从发酵物到分离出放线菌D和X2纯品都需要用到高效液相色谱(HPLC),这一步生产成本高、有机试剂污染环境,不利于规模化制备。例如从链霉菌Streptomyces sp.MS449发酵物中分离放线菌素D和X2,粗提物首先通过HP-20大孔吸附树脂富集,再通过HPLC纯化分别得到放线菌素D和X2(CN102391967A)。从链霉菌Streptomyces sp.S011发酵物中分离放线菌素D,粗提物通过葡聚糖凝胶柱色谱富集后,最终也是采用HPLC制备目标成分放线菌素D (CN109385380A)。
超临界流体色谱近些年在突破了检测器灵敏度和设备稳定性的技术瓶颈后,由于其流动相超临界CO2流体的高扩散性和低粘度优点,因此成为继HPLC之后强大的分离手段,结合夹带剂和添加剂对保留行为的改变,拥有反相色谱的易用性和正相色谱分离能力,特别是目前的结构类似物分离和规模化制备过程中具有无可比拟的优势。如N.K.Jagota等人用超临界色谱分析了紫杉醇及其类似物,成功从紫杉醇杂质和降解产物中分离出了目标物紫杉醇[Jagota NK,Nair JB,Frazer R,Klee M,Wang MZ. Supercritical fluidchromatography of paclitaxel.Journal of Chromatography A 1996,721(2):315-322]。张大兵等人采用超临界色谱得到了高纯度的紫杉醇(CN107176935A)。
发明内容
鉴于放线菌素D在临床抗癌药物重要性和放线菌素X2作为候选药物巨大的潜力,提供一种基于超临界色谱分离技术的放线菌素D和/或X2的制备方法,对放线菌素D和X2实现了高效绿色的分离,旨在提供一种用于放线菌素D和X2工业上规模化制备的新方法。
一种放线菌素D和/或X2的制备方法,包括如下步骤:
将含放线菌素D和/或X2的粗提物进行超临界流体色谱法分离,得到放线菌素D和/或X2
所述超临界流体色谱法分离的流动相由流动相A和B组成,流动相A 为超临界CO2,流动相B为甲醇、乙醇或含体积百分含量为0.1%三氟乙酸的乙醇;等度洗脱时,所述流动相A与流动相B的体积比例为80:20或75:25;梯度洗脱时,0~40min流动相由超临界CO2:乙醇的体积比由98:2变为 60:40;
所述放线菌素D和X2的结构式如下所示:下式中R为O时,为放线菌素X2;R为H2时,为放线菌素D;
Figure BDA0002656569340000051
进一步地,所述超临界色谱分离法分离的色谱柱为苯基键合硅胶柱;流速为2mL/min,柱温为40℃,背压为1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。
进一步地,所述苯基键合硅胶柱为Hedera Phenyl色谱柱,规格为5μm, 4.6mm×250mm。
进一步地,含放线菌素D和X2的粗提物的制备包括如下步骤:
制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物;
将所得的发酵产物进行放线菌素D和/或X2的提取和分离,得到第一粗提物;
将所得的第一粗提物经过富集和除杂。
进一步地,在所述富集和除杂步骤中,所得的第一粗提物经正相硅胶柱富集并除杂,洗脱条件为,依次以体积比9:1和体积比1:1的环己烷-乙酸乙酯洗脱,收集以体积比为1:1的环己烷-乙酸乙酯洗脱的流份。
进一步地,在所述提取和分离步骤中,提取溶剂为乙酸乙酯,提取方式采用浸提法。
进一步地,制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物步骤中,链霉菌作为发酵菌种,在发酵培养基中进行发酵,得到含有放线菌素D和/或X2的发酵产物。
进一步地,制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物的步骤为:将链霉菌DQS-5接种到液体培养基中,培养获得种子培养液;将种子培养液加入发酵培养基中,28℃~32℃,静置发酵30-50天;所述获得种子培养液的培养条件为:温度28~32℃,转速180~250r/min,振荡培养3~10天。
进一步地,所述链霉菌为链霉菌DQS-5,保藏编号为CCTCC M 2020299。
进一步地,所述液体培养基为2216E液体培养基,配方为:蛋白胨2-10 g/L、酵母膏0.5-1.5g/L、磷酸高铁0.01-0.05g/L和海盐20-30g/L;
所述发酵培养基为大米培养基,所述大米培养基中含有0.6-1.3g/mL 大米、0.02-0.04g/mL海盐。
进一步地,获得种子培养液的步骤为:将单菌落接种至装有2216E液体培养基中,28℃,180rpm振荡培养5天,即得种子培养液。
1、本发明首次利用超临界色谱技术实现了对含放线菌素D和/或X2的粗提物中放线菌素D和X2高效绿色的分离,制备效率高、安全绿色、易于规模化工业应用,且流动相采用的二氧化碳具有性质稳定、无毒、不易燃爆和价格低廉的优点。
2、本发明首先对采自中国广东省深圳市南澳岛的海水样品中分离到的一株链霉菌Streptomyces sp.DQS-5进行菌种鉴定,并进行了保藏。然后利用2216E液体培养基配制种子液,采用大米固体培养基进行大批量发酵。发酵物的有机溶剂粗提物先用正相硅胶柱进行富集和除杂,最后采用超临界色谱对富含放线菌D和X2的组分进行精制,得到高纯度放线菌素D和X2,并用核磁共振对其进行表征。最终建立一种基于超临界流体色谱技术的放线菌素D和X2的制备方法,为工业上放线菌素D和X2规模化制备提供可行有效的新方案。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案,下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图是本发明的一些实施方式,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1链霉菌DQS-5在2216平板上37℃下的正反面照片;
图2为实施例3方法1中超临界流体色谱分离结果;
图3为实施例3方法2中超临界流体色谱分离结果;
图4为实施例3方法3中超临界流体色谱分离结果;
图5为实施例3方法4中超临界流体色谱分离结果;
图6为实施例3方法5中超临界流体色谱分离结果;
图7实施例4中放线菌素X2和放线菌素D的化学结构式;
图8对比例中Hedera Diol色谱柱上的分离结果;
图9对比例中Hedera NH2色谱柱上的分离结果;
图10对比例中Nucifera C18P色谱柱上的分离结果;
图11对比例中Nucifera PyE色谱柱上的分离结果;
图12对比例中Nucifera PyE-h色谱柱上的分离结果;
图13对比例中Nucifera CN色谱柱上的分离结果。
具体实施方式
提供下述实施例是为了更好地进一步理解本发明,并不局限于所述最佳实施方式,不对本发明的内容和保护范围构成限制,任何人在本发明的启示下或是将本发明与其他现有技术的特征进行组合而得出的任何与本发明相同或相近似的产品,均落在本发明的保护范围之内。
实施例中未注明具体实验步骤或条件者,按照本领域内的文献所描述的常规实验步骤的操作或条件即可进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规试剂产品。
2216E平板培养基配方:蛋白胨(上海生工)5g/L,酵母膏(上海生工)1g/L,磷酸高铁(上海生工)0.01g/L,海盐(广东盐业集团)30g/L,琼脂(上海生工)20g/L,121℃高压灭菌锅(ZEALWAY GR850P)灭菌30 分钟。2216E液体培养基配方为去除琼脂的成分,包括蛋白胨5g/L,酵母膏1g/L,磷酸高铁0.01g/L,海盐30g/L,121℃高压灭菌30分钟。大米培养基配方为50g大米,1.5g海盐,50mL去离子水溶解后加入500mL 锥形瓶,经121℃高压灭菌30分钟。
实施例1放线菌DQS-5的获得及鉴定
从中国广东省深圳市南澳岛的海水样品中分离到的一株放线菌株 DQS-5在2216E平板培养基上菌落呈现颗粒状,表面白色至淡黄色,背面随时间生长产生黄色色素,颜色由黄变黑(如图1)。提取菌种基因组,进行16s rDNA片段PCR扩增,扩增产物测序结果如SEQ IDNO:1所示。分析结果显示共有1438个碱基,通过NCBI网站上Genebank中BLAST程序比对,与Streptomyces属同源性达100%,最终鉴定菌株DQS-5为链霉属,命名为链霉菌DQS-5或Streptomyces sp.DQS-5,并将该菌株于2020年7月10日提交到中国典型培养物保藏中心进行了保藏,地址:中国,武汉,保藏编号为CCTCC NO:M 2020299,存活。
实施例2链霉菌DQS-5发酵
将低温保藏的放线菌DQS-5接种至2216E平板培养基上划线复苏,培养温度为28℃,时间为2天。将复苏后的菌种挑取单菌落,接种至装有 75mL 2216E液体培养基的250mL锥形瓶中,28℃,180rpm摇床培养5 天,即得种子培养液;然后将种子培养液在超净台(SW-CJ-2FD,苏净安泰)内加入到含有大米培养基的40个500mL锥形瓶中,以每瓶5mL的接种量接种,28℃,静置发酵40天。即得到含有放线菌素D和X2的链霉菌Streptomyces sp.DQS-5的发酵培养物。
实施例3放线菌素D和X2的提取和分离
为了获取放线菌素D和X2,还需要进一步提取分离,具体包括以下步骤:
1、提取
取实施例2得到的40个锥形瓶发酵40天后发酵培养物,切碎阴干,然后装入容积为2000mL锥形瓶中,加入1500mL的乙酸乙酯(分析纯,西陇科学股份有限公司)浸没,超声30分钟,过滤取滤液。按照以上方法重复3次,合并滤液,用旋转蒸发仪(HB10-basic艾卡仪器设备有限公司)40℃减压去除溶剂,即得到含有放线菌素D和X2的粗提物浸膏(10 g)。
2、正相硅胶柱富集并除杂
将上述粗提物浸膏用100ml甲醇溶解,加入规格为100目~200目的硅胶(青岛海洋化工有限公司)15g进行混合拌样,待甲醇挥干后得到拌样硅胶。另外称取100g规格为200目~300目的硅胶(青岛海洋化工有限公司),用1000ml环己烷(分析纯,西陇科学股份有限公司)作为初始溶剂装柱,静置过夜待硅胶沉降密实后,干法上样,以环己烷与乙酸乙酯的体积比为9:1和1:1进行洗脱。其中流份I为环己烷与乙酸乙酯体积比为9:1洗脱2L所得。流份II为环己烷-乙酸乙酯体积比1:1 洗脱2L所得。流份II薄层色谱斑点日光下呈现红色,254nm下有明显暗斑,蒸干溶剂后为橘红色粉末。
3、超临界色谱分离,分别用如下几种方法进行试验。
方法1
将流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10(江苏汉邦科技有限公司),以乙醇为夹带剂,使用苯基键合硅胶柱(Hedera Phenyl,5 μm,4.6mm×250mm,江苏汉邦科技有限公司)作为超临界色谱分离的色谱柱,使用超临界CO2:乙醇的体积比为80:20流动相进行等度洗脱,流速2mL/min,柱温为40℃,背压1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。结果两个色谱峰按顺序洗脱出来,峰1的保留时间为 30.0~32.0min,峰2的保留时间为35~38min。如图2所示,峰1和峰2实现了有效分离,分离度3.66。其中峰1为放线菌素X2,峰2为放线菌素D。
方法2
将流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10(江苏汉邦科技有限公司),以乙醇为夹带剂,使用苯基键合硅胶作为固定相的色谱柱 (Hedera Phenyl,5μm,4.6mm×250mm),使用超临界CO2:乙醇的体积比为75:25流动相进行等度洗脱,流速2mL/min,柱温为40℃,背压1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。结果两个色谱峰按顺序洗脱出来,峰1的保留时间为15.0~16.8min,峰2的保留时间为17.8~19.2min。如图3所示,峰1和峰2实现了有效分离,分离度3.28。其中峰1为放线菌素X2,峰2为放线菌素D。
方法3
将流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10(江苏汉邦科技有限公司),以甲醇为夹带剂,使用苯基键合硅胶作为固定相的色谱柱 (Hedera Phenyl,5μm,4.6mm×250mm),使用超临界CO2:甲醇的体积比为75:25流动相进行等度洗脱,流速2mL/min,柱温为40℃,背压1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。结果两个色谱峰按顺序洗脱出来,峰1的保留时间为11.8~13.1min,峰2的保留时间为13.9~15.1min。如图4所示,峰1和峰2实现了有效分离,分离度3.49。其中峰1为放线菌素X2,峰2为放线菌素D。
方法4:
将流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10(江苏汉邦科技有限公司),以乙醇为夹带剂,以0.1%三氟乙酸为添加剂,使用苯基键合硅胶作为固定相的色谱柱(Hedera Phenyl,5μm,4.6mm×250mm),使用超临界CO2:含0.1%(体积百分含量)三氟乙酸的乙醇的体积比为 80:20流动相进行等度洗脱,流速2mL/min,柱温为40℃,背压1750psi, 检测波长为254nm,进样体积10μL。结果两个色谱峰按顺序洗脱出来,峰1的保留时间为31.8~33.8min,峰2的保留时间为37.9~40.4min。如图5所示,峰1和峰2实现了有效分离,分离度4.21。其中峰1为放线菌素X2,峰2为放线菌素D。
方法5
将流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10(江苏汉邦科技有限公司),以乙醇为夹带剂,使用苯基键合硅胶作为固定相的色谱柱 (Hedera Phenyl,5μm,4.6mm×250mm),使用洗脱方式为线性梯度洗脱:0~40min,流动相超临界CO2:乙醇的体积比由98:2改变为 60:40,流速2mL/min,柱温为40℃,背压1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。结果两个色谱峰按顺序洗脱出来,峰1的保留时间为 31.0~31.9min,峰2的保留时间为32.4~35.3min。如图6所示,峰1 和峰2实现了有效分离,分离度3.28。其中峰1为放线菌素X2,峰2 为放线菌素D。
实施例4放线菌素D和X2的结构鉴定
对实施例3所得的化合物进行结构分析测试,得到以下理化性质的数据:
峰1:橘红色粉末,易溶于甲醇、丙酮、二氯甲烷等有机溶剂中。分子式为C62H86N12O17,ESI-MS:m/z 1269.6[M+H]+1H-NMR(600MHz,CDCl3) 和13C-NMR(150MHz,CDCl3)数据见下表1所示。
峰2:橘红色粉末,易溶于甲醇、丙酮、二氯甲烷等有机溶剂中。分子式为C62H86N12O16,ESI-MS:m/z 1255.6[M+H]+1H-NMR(600MHz,CDCl3) 和13C-NMR(150MHz,CDCl3)数据见下表1所示。
表1峰1和峰2的核磁数据
Figure BDA0002656569340000131
Figure BDA0002656569340000141
Figure BDA0002656569340000151
注:Sara:N-methyl Gly;Mevb:N-methyl Val;Opro c:4-oxo-Pro
根据以上数据,再结合文献(Matsui T,Tanaka J,Namihira T,Shinzato N.Antibiotics production by an actinomycete isolated from the termite gut.Journal of Basic Microbiology 2012,52:731-735),最终鉴定峰1为放线菌素X2,峰2为放线菌素D。其结构如图7所示。
对比例
目标峰未能分开(Rs<1.5)超临界色谱条件如下:
将实施例3步骤2得到的流份II中的橘红色粉末用乙醇溶解,用0.45 μm的微孔滤膜过滤,选用分析型超临界流体色谱仪Hanbon SFC LAB-10 (江苏汉邦科技有限公司),以乙醇为夹带剂,筛选固定相色谱柱的种类包括两个系列Hedera(Phenyl,Diol,NH2)和Nucifera(C18P,PyE, PyE-h,CN)(4.6mm×250mm,5μm),使用线性梯度方式洗脱为:0~40min,流动相超临界CO2:乙醇体积比由98:2改变为60:40,流速2 mL/min,柱温为40℃,背压1750psi,检测波长为254nm,进样体积 10μL。结果中不能将目标峰分开的色谱柱是HederaDiol(普通二醇基键合硅胶填料),Hedera NH2(普通氨基键合硅胶填料)和Nucifera C18P(高碳载量C18键合硅胶填料),Nucifera PyE(二乙基吡啶键合硅胶且封尾),NuciferaPyE-h(二乙基吡啶键合硅胶填料),Nucifera CN(普通腈基键合硅胶填料)。如图8-13所示。
显然,上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例,而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说,在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。
SEQUENCE LISTING
<110> 深圳大学
<120> 一种使用超临界流体色谱制备放线菌素D和X2方法
<130> ZHA202000553
<160> 1
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 1438
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 1
cgctggcggc gtgcttaaca catgcaagtc gaacgatgaa atcacttcgg tggtggatta 60
gtggcgaacg ggtgagtaac acgtgggcaa tctgcccttc actctgggac aagccctgga 120
aacggggtct aataccggat aacactctgt cccgcatggg acggggttga aagctccggc 180
ggtgaaggat gagcccgcgg cctatcagct tgttggtggg gtaatggcct accaaggcga 240
cgacgggtag ccggcctgag agggcgaccg gccacactgg gactgagaca cggcccagac 300
tcctacggga ggcagcagtg gggaatattg cacaatgggc gaaagcctga tgcagcgacg 360
ccgcgtgagg gatgacggcc ttcgggttgt aaacctcttt cagcagggaa gaagcgaaag 420
tgacggtacc tgcagaagaa gcgccggcta actacgtgcc agcagccgcg gtaatacgta 480
gggcgcaagc gttgtccgga attattgggc gtaaagagct cgtaggcggc ttgtcacgtc 540
ggatgtgaaa gcccggggct taaccccggg tctgcattcg atacgggcta gctagagtgt 600
ggtaggggag atcggaattc ctggtgtagc ggtgaaatgc gcagatatca ggaggaacac 660
cggtggcgaa ggcggatctc tgggccatta ctgacgctga ggagcgaaag cgtggggagc 720
gaacaggatt agataccctg gtagtccacg ccgtaaacgt tgggaactag gtgttggcga 780
cattccacgt cgtcggtgcc gcagctaacg cattaagttc cccgcctggg gagtacggcc 840
gcaaggctaa aactcaaagg aattgacggg ggcccgcaca agcagcggag catgtggctt 900
aattcgacgc aacgcgaaga accttaccaa ggcttgacat ataccggaaa gcatcagaga 960
tggtgccccc cttgtggtcg gtatacaggt ggtgcatggc tgtcgtcagc tcgtgtcgtg 1020
agatgttggg ttaagtcccg caacgagcgc aacccttgtt ctgtgttgcc agcatgccct 1080
tcggggtgat ggggactcac aggagactgc cggggtcaac tcggaggaag gtggggacga 1140
cgtcaagtca tcatgcccct tatgtcttgg gctgcacacg tgctacaatg gccggtacaa 1200
tgagctgcga tgccgcgagg cggagcgaat ctcaaaaagc cggtctcagt tcggattggg 1260
gtctgcaact cgaccccatg aagtcggagt tgctagtaat cgcagatcag cattgctgcg 1320
gtgaatacgt tcccgggcct tgtacacacc gcccgtcacg tcacgaaagt cggtaacacc 1380
cgaagccggt ggcccaaccc cttgtgggag ggagctgtcg aaggtgggac tggcgatg 1438

Claims (10)

1.一种放线菌素D和/或X2的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
将含放线菌素D和/或X2的粗提物进行超临界流体色谱法分离,得到放线菌素D和/或X2
所述超临界流体色谱法分离的流动相由流动相A和B组成,流动相A为超临界CO2,流动相B为甲醇、乙醇或含体积百分含量为0.1%三氟乙酸的乙醇;等度洗脱时,所述流动相A与流动相B的体积比例为80:20或75:25;梯度洗脱时,0~40min流动相由超临界CO2:乙醇的体积比由98:2变为60:40;
所述放线菌素D和X2的结构式如下所示:下式中R为O时,为放线菌素X2;R为H2时,为放线菌素D;
Figure FDA0002656569330000011
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界色谱分离法分离的色谱柱为苯基键合硅胶柱;流速为2mL/min,柱温为40℃,背压为1750psi,检测波长为254nm,进样体积10μL。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述苯基键合硅胶柱为Hedera Phenyl色谱柱,规格为5μm,4.6mm×250mm。
4.根据权利要求1-3任一所述的方法,其特征在于,含放线菌素D和X2的粗提物的制备包括如下步骤:
制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物;
将所得的发酵产物进行放线菌素D和/或X2的提取和分离,得到第一粗提物;
将所得的第一粗提物经过富集和除杂。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于,在所述富集和除杂步骤中,所得的第一粗提物经正相硅胶柱富集并除杂,洗脱条件为,依次以体积比9:1和体积比1:1的环己烷-乙酸乙酯洗脱,收集以体积比1:1的环己烷-乙酸乙酯洗脱的流份。
6.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于,在所述提取和分离步骤中,提取溶剂为乙酸乙酯,提取方式采用浸提法。
7.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于,制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物步骤中,链霉菌作为发酵菌种,在发酵培养基中进行发酵,得到含有放线菌素D和/或X2的发酵产物。
8.根据权利要求8所述的方法,其特征在于,
制备含有放线菌素D和/或X2的发酵产物的步骤为:将链霉菌接种到液体培养基中,培养获得种子培养液;将种子培养液加入发酵培养基中,28℃~32℃,静置发酵30-50天;所述获得种子培养液的培养条件为:温度28~32℃,转速180~250r/min,振荡培养3~10天。
9.根据权利要求7或8所述的方法,其特征在于,
所述链霉菌为链霉菌DQS-5,保藏编号为CCTCC M 2020299。
10.根据权利要求7-9任一所述的方法,其特征在于,所述液体培养基为2216E液体培养基,配方为:蛋白胨2-10g/L、酵母膏0.5-1.5g/L、磷酸高铁0.01-0.05g/L和海盐20-30g/L;
所述发酵培养基为大米培养基,所述大米培养基中含有0.6-1.3g/mL大米、0.02-0.04g/mL海盐。
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