CN110885899B - 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法 - Google Patents

用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法 Download PDF

Info

Publication number
CN110885899B
CN110885899B CN201811051480.9A CN201811051480A CN110885899B CN 110885899 B CN110885899 B CN 110885899B CN 201811051480 A CN201811051480 A CN 201811051480A CN 110885899 B CN110885899 B CN 110885899B
Authority
CN
China
Prior art keywords
avian
virus
microchip
freeze
taqman
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201811051480.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN110885899A (zh
Inventor
刘玉良
韩焘
王传彬
杨林
王新杰
高姗姗
孙晓明
胡祥钰
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Beijing Yisen Biotechnology Co ltd
China Animal Disease Control And Prevention Center (agricultural Slaughter Technology Center)
Original Assignee
Beijing Yisen Biotechnology Co ltd
China Animal Disease Control And Prevention Center (agricultural Slaughter Technology Center)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Beijing Yisen Biotechnology Co ltd, China Animal Disease Control And Prevention Center (agricultural Slaughter Technology Center) filed Critical Beijing Yisen Biotechnology Co ltd
Priority to CN201811051480.9A priority Critical patent/CN110885899B/zh
Publication of CN110885899A publication Critical patent/CN110885899A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN110885899B publication Critical patent/CN110885899B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6851Quantitative amplification
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/16Primer sets for multiplex assays
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/166Oligonucleotides used as internal standards, controls or normalisation probes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法,所述试剂盒包括一个冻干微芯片、一瓶矿物油、一管稀释液及一管无核酸酶水,所述冻干微芯片包被有引物、探针、Taq酶、反转录酶、海藻糖、Tris‑Cl、dNTP、Mg2+。冻干条件为:预冻阶段,隔板温度下降到‑55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至‑25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h,得到冻干微芯片,使用时加入稀释液和样本核酸即可。本发明同时检测16种禽病病原,所述检测试剂盒检测方法准确性、特异性和敏感性高,检测时间短。

Description

用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法
技术领域
本发明涉及病毒的分子生物学检测技术领域,特别是涉及一种用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法。
背景技术
我国是农业畜牧业大国,禽类养殖以规模化集约化养殖为主,高密度的养殖方式也使得禽类的传染性疾病难以预防,且问题日益显著。而且多种病原同时感染,导致检测及预防疾病发生也十分困难。
禽类常见的传染性疾病病原有禽流感病毒(Avian influenza virus,AIV)、新城疫病毒(Newcastle disease virus,NDV)、禽传染性支气管炎(Avian infectiousbronchitis virus,AIBV)、禽传染性喉气管炎病毒(Avian infectiouslaryngotracheitis virus,ILTV)、禽传染性法氏囊病毒(Avian infectious bursavirus,IBDV)、鸡传染性贫血病毒(Chicken infectious anemia virus,CIAV)、禽网状内皮组织增殖病病毒(Avian reticuloen-dothelial proliferation virus,REV)、禽白血病病毒(Avian leukemia virus,ALV)、禽偏肺病毒(Avian metapneumovirus,hMPV)、禽脑脊髓炎病毒(Avian encephalomyelitis virus,AEV)、呼肠孤病毒(Avian reovirus,REO)、禽马立克氏病病毒(Avian marek's disease virus,MDV)、鸡滑液囊支原体(Mycoplasmasynoviae,MS)、鸡毒支原体(Mycoplasma gallisepticum,MG)、禽腺病毒(Aviadenovirus,AADV)、沙门氏菌(Salmonella,Sal)。近年来,虽然各国科学家已对禽病及各类病原进行了多方面的研究。目前对禽病病原的检测所采用的方法我国在近几年时间内相继建立了病原的分离纯化培养鉴定、间接酶联免疫吸附试验(ELISA)等血清学检测技术以及分子检测技术(RT-PCR)。病毒分离操作烦琐,耗时长,漏检率高;ELISA方法相对简便,快速,但对于微量或杂质较多的样品,其特异性和灵敏度较低,可能造成漏诊或误诊。PCR作为一种新型的分子生物学技术,自诞生以来,由于其特异性、敏感性高,能在短时间内通过基因扩增得到大量的目的片段,克服了传统的禽流感检测技术包括病毒分离鉴定试验周期长的缺点,为禽流感早期快速检测提供了敏感、快速、实用的检测方法,使之成为目前禽病病原检测的重要手段之一。但普通PCR仍存在操作繁琐、检测时间长且易污染等弊端。所以目前市场急需快速、准确、灵敏度高,且便携,能现场操作的同时检测和鉴别上述16种禽病的集成试剂产品。可以为我国禽病的防制提供先进、有效的早期快速检测技术和监测手段的同时,也为禽病防制争取到极为宝贵的快速反应时间。
发明内容
基于本领域的上述需求,本发明的目的在于提供一种用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片及试剂盒,使其能够快速、有效地对禽病病原进行检测,准确性、特异性和敏感性高,重复性好。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片,其特征在于,用于鉴别16种禽病病原的荧光PCR反应体系通过冻干被固定在所述微芯片上;
所述荧光PCR反应液包括:下述引物和探针:
AIV-F:5’-ACCGAGGTCGAAACGTACGT-3’;
AIV-R:5’-CGCGATCTCGGCTTTGA-3’;
AIV-Taqman-:5’-ATCCCATCAGGCCC-3’;
NDV-F:5’-AGCCACTGTCGGCATGATC-3’;
NDV-R:5’-AGCATCGCAGCGGAAAGT-3’;
NDV-Taqman-:5’-ATGATAAACCCAAGCGC-3’;
AIBV-F:5’-TCCAATCAGGGTACAAGAGATCCT-3’;
AIBV-R:5’-GTCCCCCATCTGTGAATCGT-3’;
AIBV-Taqman-:5’-ATAAGTTTGACCAATGTCCA-3’;
ILTV-F:5’-TTCCGAGCCACCACCAA-3’;
ILTV-R:5’-TCAGCGTCCCTCGGAAAAT-3’;
ILTV-Taqman-:5’-TTTATGGGATCCTCACCAGG-3’;
IBDV-F:5’-CGTTCATACGGAGCCTTCTGA-3’;
IBDV-R:5’-CTAGGGTGTCGTCCGGAATG-3’;
IBDV-Taqman-:5’-CAACCGGACCGGCG-3’;
CIAV-F:5’-TCACAAGCCGCGGAGAA-3’;
CIAV-R:5’-GCGGAGGGCACGTTATTATCTAG-3’;
CIAV-Taqman-:5’-TGGCCTAATTGCTGGCT-3’;
REV-F:5’-GGAGGATGTGGATTCGTTTACC-3’;
REV-R:5’-CACCCCACGCCAAACGT-3’;
REV-Taqman-:5’-CAAGTTATGTGAGTTTGAATGG-3’;
ALV-F:5’-AGCAACAGGACAAAATGTTCCA-3’;
ALV-R:5’-TCCATTCCGTCGTGCAATT-3’;
ALV-Taqman-:5’-ACGACGGGTTGCGGTG-3’;
hMPV-F:5’-ACCAACTGCCTGCAAGGTTAA-3’;
hMPV-R:5’-AGCACTGTAGGAGGTGTGTTGGTT-3’;
hMPV-Taqman-:5’-TGTGGTTCCCTCTATTC-3’;
AEV-F:5’-GCAGTAGTTGGCGGAGGATTT-3’;
AEV-R:5’-AAACTTCCCATTGTAGCCGTACTAA-3’;
AEV-Taqman-:5’-CAACGGTAGACCAGAGTT-3’;
REO-F:5’-TGCAGGATCGTGTTAAATCATTG-3’;
REO-R:5’-AGCGGAGGCGAAAAAGATAGAC-3’;
REO-Taqman-:5’-AGTCTACCGCGAGTCAT-3’;
MDV-F:5’-GCAAGTCCATCCGTTGGAA-3’;
MDV-R:5’-CGTACTGCTTGAAGTGTTTGCATAA-3’;
MDV-Taqman-:5’-TTCCACAGAACAATTCTACA-3’;
MS-F:5’-AACGATGCTAACCGTGCACTT-3’;
MS-R:5’-AGCGGAGCTTCTGCTTCAATTA-3’;
MS-Taqman-:5’-TCAAACATGCAACGTCAAG-3’;
MG-F:5’-TGCGGTTGATTCAATATTCTTAGG-3’;
MG-R:5’-GGTGGTGCAACTAGATCTGAATACAT-3’;
MG-Taqman-:5’-TTAACCCCTGAGATTGATGA-3’;
AADV-F:5’-GTCCTCGCCACCAACAACAC-3’;
AADV-R:5’-ACTGGCGCATTGGAAGGTAA-3’;
AADV-Taqman-:5’-ACCTACAATCTCATCGCC-3’;
Sal-F:5’-CGCCATTGCTCCACGAAT-3’;
Sal-R:5’-GTGGGCGCCAAGAGAAAAA-3’;
Sal-Taqman-:5’-CTCCACAAGGTTAATGAC-3’;
所述荧光PCR反应体系还包括:Taq酶、反转录酶、海藻糖、Tris-Cl、dNTP、Mg2+
优先地,所述禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记有荧光报告基团;3`端标记有荧光淬灭基团。
所述荧光PCR反应体系包含:上游引物0.4μM;下游引物0.4μM;Taqman探针0.4μM;DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP 0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,模板5ng/μL,其余为灭菌去离子水;
优选地,所述模板选自16种禽病病原的cDNA、待测样品cDNA和灭菌去离子水,分别用于做为阳性对照、样本检测体系和阴性对照;
更优选地,所述微芯片冻干前每个加样孔中的荧光PCR反应体系的上游引物、下游引物和Taqman探针分别包括16种禽病病原中的2种禽病病原的引物组和Taqman探针,且所述阳性对照的荧光PCR反应体系的模板分别为16种禽病病原中的2种禽病病原的cDNA混合物;16种禽病病原中,下述每组中的2种禽病病原的引物对和Taqman探针以及用于阳性对照的模板的cDNA混合物需放入微芯片上的同一个加样孔中:禽流感病毒和新城疫病毒;禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒;禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒;禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒;禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒;呼肠孤病毒和禽马立克氏病;鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体;禽腺病毒和沙门氏菌;
优先地,所述禽流感病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性法氏囊病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、呼肠孤病毒、鸡滑液囊支原体和禽腺病毒的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为FAM荧光报告基团;
所述新城疫病毒、禽传染性喉气管炎病毒、鸡传染性贫血病毒、禽白血病病毒、禽脑脊髓炎病毒、禽马立克氏病病毒、鸡毒支原体和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为ROX荧光报告基团;
所述禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌的Taqman探针3`端标记的荧光淬灭基团为MGB淬灭基团。
所述微芯片上设置有若干个加样孔;所述荧光PCR反应体系通过冻干被固定在所述加样孔内;
优选地,所述微芯片上的加样孔为24个;所述微芯片的结构与PCR仪的加样板结构相适配。
所述冻干包括如下步骤:将装有所述荧光PCR反应体系的微芯片置于-80℃冷冻1h后再进行设备冻干;
优选地,所述设备冻干包括:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
用于鉴别16种禽病病原的试剂盒,包括所述的冻干微芯片。
所述的试剂盒,还包括:稀释液,10×稀释液使用无核酸酶水稀释成2×稀释液用于滴入冻干微芯片的加样孔中,再将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行荧光PCR扩增。
所述的试剂盒,还包括:矿物油,封闭所述冻干微芯片上的加样孔;
用于鉴别16种禽病病原的方法,其特征在于,采用所述的冻干微芯片,和/或,所述的试剂盒对待测样品进行荧光PCR扩增。
在冻干微芯片的加样孔中加入待测样品及稀释液后,将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行所述荧光PCR扩增;
优选地,所述稀释液为10×buffer;
进一步优选地,所述荧光PCR扩增的反应程序为:50℃10min;95℃1min;以95℃5s,60℃15s为1个循环,进行40个循环,每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测。
本发明提供一种16种禽病病原荧光冻干微芯片PCR检测试剂盒,包括PCR冻干微芯片,所述PCR冻干微芯片包括具有如下核苷酸序列的引物和Taqman探针:
AIV-F:5’-ACCGAGGTCGAAACGTACGT-3’;
AIV-R:5’-CGCGATCTCGGCTTTGA-3’;
AIV-Taqman-:5’-ATCCCATCAGGCCC-3’;
NDV-F:5’-AGCCACTGTCGGCATGATC-3’;
NDV-R:5’-AGCATCGCAGCGGAAAGT-3’;
NDV-Taqman-:5’-ATGATAAACCCAAGCGC-3’;
AIBV-F:5’-TCCAATCAGGGTACAAGAGATCCT-3’;
AIBV-R:5’-GTCCCCCATCTGTGAATCGT-3’;
AIBV-Taqman-:5’-ATAAGTTTGACCAATGTCCA-3’;
ILTV-F:5’-TTCCGAGCCACCACCAA-3’;
ILTV-R:5’-TCAGCGTCCCTCGGAAAAT-3’;
ILTV-Taqman-:5’-TTTATGGGATCCTCACCAGG-3’;
IBDV-F:5’-CGTTCATACGGAGCCTTCTGA-3’;
IBDV-R:5’-CTAGGGTGTCGTCCGGAATG-3’;
IBDV-Taqman-:5’-CAACCGGACCGGCG-3’;
CIAV-F:5’-TCACAAGCCGCGGAGAA-3’;
CIAV-R:5’-GCGGAGGGCACGTTATTATCTAG-3’;
CIAV-Taqman-:5’-TGGCCTAATTGCTGGCT-3’;
REV-F:5’-GGAGGATGTGGATTCGTTTACC-3’;
REV-R:5’-CACCCCACGCCAAACGT-3’;
REV-Taqman-:5’-CAAGTTATGTGAGTTTGAATGG-3’;
ALV-F:5’-AGCAACAGGACAAAATGTTCCA-3’;
ALV-R:5’-TCCATTCCGTCGTGCAATT-3’;
ALV-Taqman-:5’-ACGACGGGTTGCGGTG-3’;
hMPV-F:5’-ACCAACTGCCTGCAAGGTTAA-3’;
hMPV-R:5’-AGCACTGTAGGAGGTGTGTTGGTT-3’;
hMPV-Taqman-:5’-TGTGGTTCCCTCTATTC-3’;
AEV-F:5’-GCAGTAGTTGGCGGAGGATTT-3’;
AEV-R:5’-AAACTTCCCATTGTAGCCGTACTAA-3’;
AEV-Taqman-:5’-CAACGGTAGACCAGAGTT-3’;
REO-F:5’-TGCAGGATCGTGTTAAATCATTG-3’;
REO-R:5’-AGCGGAGGCGAAAAAGATAGAC-3’;
REO-Taqman-:5’-AGTCTACCGCGAGTCAT-3’;
MDV-F:5’-GCAAGTCCATCCGTTGGAA-3’;
MDV-R:5’-CGTACTGCTTGAAGTGTTTGCATAA-3’;
MDV-Taqman-:5’-TTCCACAGAACAATTCTACA-3’;
MS-F:5’-AACGATGCTAACCGTGCACTT-3’;
MS-R:5’-AGCGGAGCTTCTGCTTCAATTA-3’;
MS-Taqman-:5’-TCAAACATGCAACGTCAAG-3’;
MG-F:5’-TGCGGTTGATTCAATATTCTTAGG-3’;
MG-R:5’-GGTGGTGCAACTAGATCTGAATACAT-3’;
MG-Taqman-:5’-TTAACCCCTGAGATTGATGA-3’;
AADV-F:5’-GTCCTCGCCACCAACAACAC-3’;
AADV-R:5’-ACTGGCGCATTGGAAGGTAA-3’;
AADV-Taqman-:5’-ACCTACAATCTCATCGCC-3’;
Sal-F:5’-CGCCATTGCTCCACGAAT-3’;
Sal-R:5’-GTGGGCGCCAAGAGAAAAA-3’;
Sal-Taqman-:5’-CTCCACAAGGTTAATGAC-3’;
作为进一步地改进,所述Taqman探针的核苷酸序列的3'端标记MGB荧光淬灭基团。
所述禽流感病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性法氏囊病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、呼肠孤病毒、鸡滑液囊支原体和禽腺病毒的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为FAM荧光报告基团;
所述新城疫病毒、禽传染性喉气管炎病毒、鸡传染性贫血病毒、禽白血病病毒、禽脑脊髓炎病毒、禽马立克氏病病毒、鸡毒支原体和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为ROX荧光报告基团。
所述冻干微芯片试剂还包括DNA聚合酶、反转录酶、dNTP、Mg2+、海藻糖、Tris-Cl。
所述荧光定量PCR的AriaYSB冻干微芯片的整个冻干微芯片上样孔为24个,将上述荧光PCR反应体系分为8组,分别包含禽流感病毒和新城疫病毒2种引物探针,禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒2种引物探针,禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒2种引物探针,禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒2种引物探针,包含禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒2种引物探针,呼肠孤病毒和禽马立克氏病病毒2种引物探针,鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体2种引物探针,禽腺病毒和沙门氏菌2种引物探针。
所述冻干微芯片分为阳性对照孔,样本孔和阴性对照孔。其中,阳性对照孔还包括样品DNA/cDNA。
所述阳性对照分别为禽流感病毒和新城疫病毒基因组cDNA混合物;禽传染性支气管炎基因组cDNA和禽传染性喉气管炎病毒基因组DNA混合物;禽传染性法氏囊病毒基因组cDNA和鸡传染性贫血病毒基因组DNA混合物;禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒基因组cDNA混合物;禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒基因组cDNA混合物;呼肠孤病毒基因组cDNA和禽马立克氏病病毒基因组DNA混合物;鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体基因组DNA混合物;禽腺病毒和沙门氏菌基因组DNA混合物。
所述每个微芯片孔总体积为2μL。
所述荧光定量PCR的冻干微芯片先于-80℃冷冻1h。设备冻干条件为:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
所述常规试剂包括矿物油、稀释液、无核酸酶水在内的商品化分子试剂;
所述商品化稀释液为10×buffer,使用无核酸酶水稀释为2×buffer和1×buffer。
所述冻干微芯片荧光定量PCR的2μL反应体系包括:荧光定量PCR冻干阳性对照孔和阴性对照孔,1×buffer稀释液2μL;荧光定量PCR冻干样本孔,2×buffer稀释液1μL,检测样品DNA/RNA 1μL。
所述16种禽病病原冻干微芯片荧光RT-PCR检测试剂盒,其特征在于,采用所述的引物、和/或、所述的试剂盒对待测样品进行检测。
所述检测指冻干微芯片荧光定量PCR检测;本发明冻干前采用的荧光PCR反应体系包括如下成分:阳性对照孔包含上游引物各0.4μM;下游引物各0.4μM;Taqman探针各0.4μM;DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP 0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,阳性对照5ng/μL;余量为灭菌去离子水,每孔体积为2μL;样本孔和阴性对照孔包含上游引物各0.4μM;下游引物各0.4μM;Taqman探针各0.4μM;DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM;余量为灭菌去离子水,每孔体积为2μL;
所述冻干微芯片荧光RT-PCR反应条件为:50℃10min,为第一步循环;95℃1min,为第二步循环;95℃5s,60℃15s,为第三步,40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测。
由于采用上述技术方案,本发明至少具有以下优点:
(1)本发明根据国内已发现的禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒、沙门氏菌病原保守基因设计引物,合成特异性引物及Taqman-MGB探针,采用荧光定量PCR方法可同时快速灵敏地检测16种禽病病原,且准确性、特异性和敏感性高,重复性好。
(2)本发明一方面采用了高拷贝的靶基因,一方面采用Taqman-MGB探针荧光定量PCR检测法,使得利用Taqman-MGB探针法荧光定量PCR检测的灵敏度约是普通PCR的100倍。
(3)由于采用定量检测技术-Taqman-MGB荧光定量PCR(Real-time PCR),该方法(Real-time PCR)具有单管封闭操作防污染、自动化程度高、特异性强、可实时监控等优点,有效地解决了传统方法只能终点检测的局限。
(4)冻干微芯片技术相对于目前使用的荧光PCR检测技术,反应体系更小,仅2μL,常规的反应体系为20-25μL,所以微芯片技术可以节省RT-PCR扩增试剂以及样品的用量。
(5)冻干微芯片较小的反应体系可以保证在PCR扩增过程中体系受热更加均匀,升降温速率更快。升温速率(10-12℃/S)相比目前采用的荧光PCR检测系统升降温速率(3-5℃/S)快。荧光PCR整个过程(包括加样)可在40分钟内完成,计算机自动报告结果,无需电泳及其他后续的工作,即方便了操作又减少了污染。
(6)冻干微芯片可进行常温保存和运输,避免试剂反复冻融,检测结果更稳定。
(7)将阳性对照和阴性对照与反应试剂一起冻干于微芯片中,检测样本时只需加入稀释液和待检样本即可,无需添加阴性对照和阳性对照。程序为固定设置程序,无需设置,调用软件已有程序即可检测,进一步缩短了检测时间。
本发明采用的实时荧光定量PCR技术(Real-time PCR),是指在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
本发明采用的微芯片是由硅胶或者铝盘形成的带有由保护膜覆盖的微反应器(微反应器的体积和质量取决于微芯片的类型)的反应区域。微芯片的反应区有一层矿物油覆盖。试剂穿过一层矿物油通过手动或者自动的带枪头的移液器注入至微反应器上,可避免检测样本的交叉污染和反应体系蒸发。
本发明将PCR反应试剂及阳性对照和阴性对照冻干在微芯片上,上样时仅需添加样本孔。结合Taqman探针荧光定量PCR技术,核酸的分析是微芯片在热循环期间同时读取在每个反应器上由PCR产物产生的荧光信号。本发明采用的微芯片技术不同于目前常用的塑料PCR管作为载体盛载PCR反应体系进行PCR扩增,而是采用金属载体微芯片,反应体系及样本直接加到金属载体上进行PCR扩增。金属载体热传导效率和升降温速率更快,可大幅度缩短反应程序时间。具有反应体系小、自动化程度高、反应时间短、特异性强、敏感性高、重复性强、反应试剂不需低温保存、可进行定量检测及微芯片操作污染可能性小等特点。本发明产品可在反应条件一致的情况下快速鉴定并可区分16种禽病病原,操作简单,从样本处理到结果分析可在1个小时内完成。
综上,由于采用了以上技术方案,本发明通过设计特异性引物和探针并优化微芯片冻干条件,发展了能够快速、有效地检测16种禽病病原的微芯片荧光定量PCR的反应体系,同时制备了基于该方法的检测试剂盒。本发明通过大量实验验证,本发明的引物探针/试剂盒/检测方法比常规方法准确性更高、特异性优良,同时最低检出限可达10TCID50/mL,说明敏感性非常高,同时所述检测试剂盒批间变异系数在0.36%~2.56%之间,说明重复性良好。
附图说明
图1是16种禽病病原冻干微芯片对禽流感病毒的特异性检测。图中,1:禽流感病毒阳性对照;2:禽流感病毒样本核酸;3:禽流感病毒阴性对照。
图2是16种禽病病原冻干微芯片对禽流感病毒的特异性检测。图中,1:禽流感病毒阳性对照;2:新城疫病毒样本核酸;3:禽流感病毒阴性对照。
图3是16种禽病病原冻干微芯片对禽流感病毒的特异性检测。图中,1:禽流感病毒阳性对照;2:禽传染性支气管炎;3:禽传染性喉气管炎病毒;4:禽传染性法氏囊病毒;5:鸡传染性贫血病毒;6:禽网状内皮组织增殖病病毒;7:禽白血病病毒;8:禽偏肺病毒;9:禽脑脊髓炎病毒;10:呼肠孤病毒;11:禽马立克氏病病毒;12:鸡滑液囊支原体;13:鸡毒支原体;14:禽腺病毒;15:沙门氏菌;16:禽流感病毒阴性对照。
图4是16种禽病病原冻干微芯片对新城疫病毒的特异性检测。图中,1:新城疫病毒阳性对照;2:新城疫病毒样本核酸;3:新城疫病毒阴性对照。
图5是16种禽病病原冻干微芯片对新城疫病毒的特异性检测。图中,1:新城疫病毒阳性对照;2:禽流感病毒样本核酸;3:新城疫病毒阴性对照。
图6是16种禽病病原冻干微芯片对禽流感病毒的特异性检测。图中,1:新城疫病毒阳性对照;2:禽传染性支气管炎;3:禽传染性喉气管炎病毒;4:禽传染性法氏囊病毒;5:鸡传染性贫血病毒;6:禽网状内皮组织增殖病病毒;7:禽白血病病毒;8:禽偏肺病毒;9:禽脑脊髓炎病毒;10:呼肠孤病毒;11:禽马立克氏病病毒;12:鸡滑液囊支原体;13:鸡毒支原体;14:禽腺病毒;15:沙门氏菌;16:新城疫病毒阴性对照。
图7是冻干微芯片荧光RT-PCR试剂检测禽流感病毒敏感性结果。图中,A:1×106TCID50/mL;B:1×105TCID50/mL;C:1×104TCID50/mL;D:1×103TCID50/mL;E:1×102TCID50/mL;F:1×101TCID50/mL;G:1×100TCID50/mL;H:无核酸酶水。
图8是常规荧光RT-PCR试剂检测禽流感病毒敏感性结果。图中,A:1×106TCID50/mL;B:1×105TCID50/mL;C:1×104TCID50/mL;D:1×103TCID50/mL;E:1×102TCID50/mL;F:1×101TCID50/mL;G:1×100TCID50/mL;H:无核酸酶水。
图9是冻干微芯片荧光RT-PCR试剂检测禽流感病毒标准曲线结果。
图10是常规荧光RT-PCR试剂检测禽流感病毒标准曲线结果。
具体实施方式
为了能够更清楚了解本发明的技术手段,以下结合附图与具体实施方式对本发明作进一步的详细说明。除非特别指明,以下实施例中所用的试剂均为分析纯级试剂,且可从正规渠道商购获得。
生物材料的来源或记载出处
本发明实验例使用的禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎病毒、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、禽白血病病毒灭活毒株,鸡滑液囊灭活支原体及沙门氏菌灭活细菌菌株由国家动物疫控保存,鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、禽腺病毒灭活毒株及鸡毒灭活支原体由北京亿森宝生物科技有限公司保存,本发明所使用的全部病毒株、菌株、支原体、衣原体可商购获得。
第1组实施例:本发明的冻干微芯片
本组实施例提供一种用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片,其特征在于,用于鉴别16种禽病病原的荧光PCR反应体系通过冻干被固定在所述微芯片上;
所述荧光PCR反应液包括:下述引物和探针:
AIV-F:5’-ACCGAGGTCGAAACGTACGT-3’;
AIV-R:5’-CGCGATCTCGGCTTTGA-3’;
AIV-Taqman-:5’-ATCCCATCAGGCCC-3’;
NDV-F:5’-AGCCACTGTCGGCATGATC-3’;
NDV-R:5’-AGCATCGCAGCGGAAAGT-3’;
NDV-Taqman-:5’-ATGATAAACCCAAGCGC-3’;
AIBV-F:5’-TCCAATCAGGGTACAAGAGATCCT-3’;
AIBV-R:5’-GTCCCCCATCTGTGAATCGT-3’;
AIBV-Taqman-:5’-ATAAGTTTGACCAATGTCCA-3’;
ILTV-F:5’-TTCCGAGCCACCACCAA-3’;
ILTV-R:5’-TCAGCGTCCCTCGGAAAAT-3’;
ILTV-Taqman-:5’-TTTATGGGATCCTCACCAGG-3’;
IBDV-F:5’-CGTTCATACGGAGCCTTCTGA-3’;
IBDV-R:5’-CTAGGGTGTCGTCCGGAATG-3’;
IBDV-Taqman-:5’-CAACCGGACCGGCG-3’;
CIAV-F:5’-TCACAAGCCGCGGAGAA-3’;
CIAV-R:5’-GCGGAGGGCACGTTATTATCTAG-3’;
CIAV-Taqman-:5’-TGGCCTAATTGCTGGCT-3’;
REV-F:5’-GGAGGATGTGGATTCGTTTACC-3’;
REV-R:5’-CACCCCACGCCAAACGT-3’;
REV-Taqman-:5’-CAAGTTATGTGAGTTTGAATGG-3’;
ALV-F:5’-AGCAACAGGACAAAATGTTCCA-3’;
ALV-R:5’-TCCATTCCGTCGTGCAATT-3’;
ALV-Taqman-:5’-ACGACGGGTTGCGGTG-3’;
hMPV-F:5’-ACCAACTGCCTGCAAGGTTAA-3’;
hMPV-R:5’-AGCACTGTAGGAGGTGTGTTGGTT-3’;
hMPV-Taqman-:5’-TGTGGTTCCCTCTATTC-3’;
AEV-F:5’-GCAGTAGTTGGCGGAGGATTT-3’;
AEV-R:5’-AAACTTCCCATTGTAGCCGTACTAA-3’;
AEV-Taqman-:5’-CAACGGTAGACCAGAGTT-3’;
REO-F:5’-TGCAGGATCGTGTTAAATCATTG-3’;
REO-R:5’-AGCGGAGGCGAAAAAGATAGAC-3’;
REO-Taqman-:5’-AGTCTACCGCGAGTCAT-3’;
MDV-F:5’-GCAAGTCCATCCGTTGGAA-3’;
MDV-R:5’-CGTACTGCTTGAAGTGTTTGCATAA-3’;
MDV-Taqman-:5’-TTCCACAGAACAATTCTACA-3’;
MS-F:5’-AACGATGCTAACCGTGCACTT-3’;
MS-R:5’-AGCGGAGCTTCTGCTTCAATTA-3’;
MS-Taqman-:5’-TCAAACATGCAACGTCAAG-3’;
MG-F:5’-TGCGGTTGATTCAATATTCTTAGG-3’;
MG-R:5’-GGTGGTGCAACTAGATCTGAATACAT-3’;
MG-Taqman-:5’-TTAACCCCTGAGATTGATGA-3’;
AADV-F:5’-GTCCTCGCCACCAACAACAC-3’;
AADV-R:5’-ACTGGCGCATTGGAAGGTAA-3’;
AADV-Taqman-:5’-ACCTACAATCTCATCGCC-3’;
Sal-F:5’-CGCCATTGCTCCACGAAT-3’;
Sal-R:5’-GTGGGCGCCAAGAGAAAAA-3’;
Sal-Taqman-:5’-CTCCACAAGGTTAATGAC-3’;
在具体的实施例中,所述荧光PCR反应体系还包括:Taq酶、反转录酶、海藻糖、Tris-Cl、dNTP、Mg2+
优先地,所述16种禽病病原的Taqman探针的5`端标记有荧光报告基团;3`端标记有荧光淬灭基团。
在更具体的实施例中,所述荧光PCR反应体系分为8组,分别为:禽流感病毒和新城疫病毒,禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒,禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒,禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒,禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒,呼肠孤病毒和禽马立克氏病病毒,鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体,禽腺病毒和沙门氏菌。每组荧光PCR反应体系包括:阳性对照荧光PCR反应体系、样本反应体系和阴性对照反应体系。上述阳性对照荧光PCR反应体系包含上游引物(2种)0.4μM;下游引物(2种)0.4μM;Taqman探针0.4μM(2种);DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP 0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,阳性对照5ng/μL,其余为灭菌去离子水,总体积为2μL;样本反应体系和阴性对照反应体系包含上游引物(2种)0.4μM;下游引物(2种)0.4μM;Taqman探针0.4μM(2种);DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP 0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,其余为灭菌去离子水,总体积为2μL;
所述阳性对照为分别为禽流感病毒和新城疫病毒基因组cDNA混合物;禽传染性支气管炎基因组cDNA和禽传染性喉气管炎病毒基因组DNA混合物;禽传染性法氏囊病毒基因组cDNA和鸡传染性贫血病毒基因组DNA混合物;禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒基因组cDNA混合物;禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒基因组cDNA混合物;呼肠孤病毒基因组cDNA和禽马立克氏病病毒基因组DNA混合物;鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体基因组DNA混合物;禽腺病毒和沙门氏菌基因组DNA混合物。
上述这些成分的终浓度,既是冻干前荧光PCR反应体系的终浓度,也是冻干后,上样时,阳性对照和阴性对照孔每孔加入1×buffer 2μL;样本孔需将2×buffer和核酸提取物按1:1混合后,样本孔每孔加入2μL。
优先地,所述禽流感病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性法氏囊病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、呼肠孤病毒、鸡滑液囊支原体和禽腺病毒的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为FAM荧光报告基团;
所述新城疫病毒、禽传染性喉气管炎病毒、鸡传染性贫血病毒、禽白血病病毒、禽脑脊髓炎病毒、禽马立克氏病病毒、鸡毒支原体和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为ROX荧光报告基团;
所述禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌的Taqman探针3`端标记的荧光淬灭基团为MGB淬灭基团。
在一些实施例中,所述微芯片上设置有若干个加样孔;所述微芯片的结构与PCR仪的加样板结构相适配。所述微芯片的结构类似于一块PCR板,但本发明的微芯片是无盖的,需使用矿物油进行加样孔的封闭,在加样时候不容易串孔,不容易污染。因此不会出现PCR体系流动溢出或者串孔污染现象。
在另一些实施例中,所述冻干包括如下步骤:将装有所述荧光PCR反应体系的微芯片置于-80℃冷冻1h后再进行设备冻干;
将装有所述荧光PCR反应体系的微芯片先置于-80℃冷冻1h的目的是预冷冻,使第一步预冻阶段时,体系能保持固体状态,并且这一步还可以缩短干燥时间。
设备冻干指的是在专门的冻干设备中通过设定设备的工作条件来进行冻干;优选地,所述冻干设备指真空冷冻干燥机。
优选地,所述设备冻干包括:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
所述隔板温度指冷冻干燥机内的托盘隔板的温度,需要在所述托盘隔板上放置装有所述荧光PCR反应体系的微芯片;预冻阶段这一步的作用在于使荧光PCR反应体系能保持固体状态。“对设备抽真空,保持冷冻干燥1h”这一步的主要目的是真空冷冻干燥机,需要把内部空气抽干,使固体中的水分升华,从而达到冻干效果。接下来的2步“将隔板温度升至-25℃保持1h”和“将隔板温度升至37℃并保持2h”均为了保持干燥升华过程;最后“将隔板降至25℃并保持1h”的作用是将冻干成品在25℃并保持稳定,至此,基本完成了整个冻干过程。
上述“设备冻干”过程是本发明针对装有所述荧光PCR反应体系的微芯片独创的一套冻干工艺。由于冻干试剂共晶点不同,需要进行分别测定,而且干燥过程中的升温时间、干燥时间中的干燥时间需要进行优化。冻干试剂里面的组分对共晶点的影响都需要调整试剂组分浓度来摸索。特别是反应体系里的酶,在常温长时间放置,酶的活性是会降低的,需要加入保护剂和稳定剂组分,例如海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,而且其浓度对PCR反应是否有抑制需要通过实验验证和调整,才能保证冻干微芯片用来进行荧光PCR检测时获得本发明记载的优良的高灵敏度、高重复性、高准确性、高特异性等优异效果。另外,还需要同时兼顾冻干工艺冻干后使用稀释液的复溶效果,这也需要经过调整冻干工艺的才能使冻干微芯片的达到最终的本发明的检测方法获得的高灵敏度、高重复性、高准确性、高特异性等优异效果。
本领域技术人员可根据本发明的公开,人工合成所述引物,将它们用来定性或定量检测16种禽病病原,能获得如本发明所述的预期效果,因此任何基于商业目的合成的引物,并将其放入标有“检测16种禽病病原”用途的商品包装盒内的行为,或采用上述序列的引物用于商业检测16种禽病病原的行为,均落入本发明请求保护的范围。
第2组实施例:本发明的试剂盒
本组实施例提供一种用于鉴别16种禽病病原的试剂盒,包括第1组实施例任一项所述的冻干微芯片。
所述稀释液具体为PCR 10×buffer,具体成分不含Mg2+,含500mM KCl,100mMTris-HCl,0.1%明胶,该稀释液可商购获得。使用无核酸酶水稀释后,用于滴入冻干微芯片的加样孔中,再将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行荧光PCR扩增。
在更进一步的实施例中,所述试剂盒还包括:矿物油,用于对所述微芯片上的加样孔进行封闭,由于体系非常微量,不封油很容易风干,封油相当于盖住PCR管的管盖,使样本不容易污染。
在具体的实施例中,所述探针的核苷酸序列的3'端标记MGB淬灭基团,5'端标记FAM或ROX荧光报告基团。上述“MGB”、“FAM”和“ROX”基团均为本领域常见的荧光基团,本领域技术人员还可以选用其它本领域常见的荧光淬灭基团和荧光报告基团来替换本文的“MGB”、“FAM”和“ROX”,例如,常见的荧光淬灭基团还包括:BHQ-1、BHQ-2、Dabcyl 2;常见的荧光报告基团还可以选自:TET、HEX、5-TAMRA、Texas Red-X、Cy3(TYETM 563)、Cy5(TYETM665)、JOE。
在进一步的实施例中,所述试剂盒还包括用于进行荧光定量PCR检测的AriaYSB微芯片及常规试剂。
所述冻干微芯片试剂还包括DNA聚合酶、反转录酶、dNTP、Mg2+、海藻糖、Tris-Cl。
在优选的实施例中,所述常规试剂包括DNA聚合酶、反转录酶、dNTP、Mg2+、海藻糖、Tris-Cl;和/或,包括所述矿物油、稀释液、双蒸水在内的商品化分子试剂;
在进一步优选的实施例中,所述商品化稀释液为10×buffer(不含Mg2+),使用无核酸酶水稀释为2×buffer和1×buffer。本领域商品化的DNA聚合酶、反转录酶、dNTP、10×buffer还有多种,本领域技术人员可以选用其它品牌和其它类型的分子试剂。
第3组实施例:本发明的检测方法
本组实施例提供一种用于鉴别高致病性16种禽病病原的冻干微芯片荧光RT-PCR检测方法。本组所有实施例都具有如下特征:所述方法包括:采用第1组实施例任一所述的冻干微芯片,和/或,第2组实施例任一所述的试剂盒对待测样品进行荧光PCR扩增。
在一些实施例中,在冻干微芯片的加样孔中加入待测样品及稀释液后,将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行所述荧光PCR扩增;
优选地,所述稀释液1×buffer阳性对照和阴性对照孔加入量为2μL。稀释液2×buffer与核酸提取物按1:1混合,加入量为2μL;
进一步优选地,所述荧光PCR扩增的反应程序为:50℃10min;95℃1min;以95℃5s,60℃15s为1个循环,进行40个循环,每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测。
在一些实施例中,所述检测指荧光定量PCR检测;所述16种禽病病原的冻干微芯片包括:上游引物0.4μM;下游引物0.4μM;Taqman探针0.4μM;DNA聚合酶0.5U/μL;反转录酶0.5U/μL;dNTP 0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM;若为阳性对照孔有5ng/μL相应病原DNA或cDNA;余量为灭菌去离子水,总体积为2μL。
所述荧光定量PCR的冻干微芯片的整个冻干微芯片上样孔为24个,将上述荧光PCR反应体系分为8组,分别包含禽流感病毒和新城疫病毒2种引物探针,禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒2种引物探针,包含禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒2种引物探针,包含禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒2种引物探针,包含禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒2种引物探针,包含呼肠孤病毒和禽马立克氏病病毒2种引物探针,包含鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体2种引物探针包含禽腺病毒和沙门氏菌2种引物探针。
所述冻干微芯片分为阳性对照孔,样本孔和阴性对照孔。其中,阳性对照孔还包括样品DNA/cDNA。
所述每个微芯片孔总体积为2μL。
在一些实施例中,所述冻干条件为荧光定量PCR的冻干微芯片先于-80℃冷冻1h。设备冻干条件为:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
在进一步的实施例中,所述荧光定量PCR的反应程序包括:50℃10min,为第一步循环;95℃1min,为第二步循环;95℃5s,60℃15s,为第三步40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测。
实验例1 16种禽病病原冻干微芯片荧光RT-PCR检测试剂盒特异性验证
1、设计引物和Taqman-MGB探针
根据国内已发现的禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒、沙门氏菌病原保守基因设计多对引物和探针。经过比对筛选,最终各确定一组最佳引物和一条Taqman-MGB探针。
AIV-F:5’-ACCGAGGTCGAAACGTACGT-3’;
AIV-R:5’-CGCGATCTCGGCTTTGA-3’;
AIV-Taqman-:5’-ATCCCATCAGGCCC-3’;
NDV-F:5’-AGCCACTGTCGGCATGATC-3’;
NDV-R:5’-AGCATCGCAGCGGAAAGT-3’;
NDV-Taqman-:5’-ATGATAAACCCAAGCGC-3’;
AIBV-F:5’-TCCAATCAGGGTACAAGAGATCCT-3’;
AIBV-R:5’-GTCCCCCATCTGTGAATCGT-3’;
AIBV-Taqman-:5’-ATAAGTTTGACCAATGTCCA-3’;
ILTV-F:5’-TTCCGAGCCACCACCAA-3’;
ILTV-R:5’-TCAGCGTCCCTCGGAAAAT-3’;
ILTV-Taqman-:5’-TTTATGGGATCCTCACCAGG-3’;
IBDV-F:5’-CGTTCATACGGAGCCTTCTGA-3’;
IBDV-R:5’-CTAGGGTGTCGTCCGGAATG-3’;
IBDV-Taqman-:5’-CAACCGGACCGGCG-3’;
CIAV-F:5’-TCACAAGCCGCGGAGAA-3’;
CIAV-R:5’-GCGGAGGGCACGTTATTATCTAG-3’;
CIAV-Taqman-:5’-TGGCCTAATTGCTGGCT-3’;
REV-F:5’-GGAGGATGTGGATTCGTTTACC-3’;
REV-R:5’-CACCCCACGCCAAACGT-3’;
REV-Taqman-:5’-CAAGTTATGTGAGTTTGAATGG-3’;
ALV-F:5’-AGCAACAGGACAAAATGTTCCA-3’;
ALV-R:5’-TCCATTCCGTCGTGCAATT-3’;
ALV-Taqman-:5’-ACGACGGGTTGCGGTG-3’;
hMPV-F:5’-ACCAACTGCCTGCAAGGTTAA-3’;
hMPV-R:5’-AGCACTGTAGGAGGTGTGTTGGTT-3’;
hMPV-Taqman-:5’-TGTGGTTCCCTCTATTC-3’;
AEV-F:5’-GCAGTAGTTGGCGGAGGATTT-3’;
AEV-R:5’-AAACTTCCCATTGTAGCCGTACTAA-3’;
AEV-Taqman-:5’-CAACGGTAGACCAGAGTT-3’;
REO-F:5’-TGCAGGATCGTGTTAAATCATTG-3’;
REO-R:5’-AGCGGAGGCGAAAAAGATAGAC-3’;
REO-Taqman-:5’-AGTCTACCGCGAGTCAT-3’;
MDV-F:5’-GCAAGTCCATCCGTTGGAA-3’;
MDV-R:5’-CGTACTGCTTGAAGTGTTTGCATAA-3’;
MDV-Taqman-:5’-TTCCACAGAACAATTCTACA-3’;
MS-F:5’-AACGATGCTAACCGTGCACTT-3’;
MS-R:5’-AGCGGAGCTTCTGCTTCAATTA-3’;
MS-Taqman-:5’-TCAAACATGCAACGTCAAG-3’;
MG-F:5’-TGCGGTTGATTCAATATTCTTAGG-3’;
MG-R:5’-GGTGGTGCAACTAGATCTGAATACAT-3’;
MG-Taqman-:5’-TTAACCCCTGAGATTGATGA-3’;
AADV-F:5’-GTCCTCGCCACCAACAACAC-3’;
AADV-R:5’-ACTGGCGCATTGGAAGGTAA-3’;
AADV-Taqman-:5’-ACCTACAATCTCATCGCC-3’;
Sal-F:5’-CGCCATTGCTCCACGAAT-3’;
Sal-R:5’-GTGGGCGCCAAGAGAAAAA-3’;
Sal-Taqman-:5’-CTCCACAAGGTTAATGAC-3’;
其中禽流感病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性法氏囊病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、呼肠孤病毒、鸡滑液囊支原体和禽腺病毒的Taqman探针的核苷酸序列的5'端标记FAM荧光报告基团;新城疫病毒、禽传染性喉气管炎病毒、鸡传染性贫血病毒、禽白血病病毒、禽脑脊髓炎病毒、禽马立克氏病病毒、鸡毒支原体和沙门氏菌Taqman探针的核苷酸序列的5'端标记ROX荧光报告基团。3'端标记MGB淬灭荧光基团。淬灭荧光基团选择MGB的原因在于,TaqMan-MGB探针与传统的TaqMan-TAMRA探针比较具有以下优势:(1)提高TM值-平均15bases可提高18℃,这样可以使探针的长度缩短,尤其对AT含量高的序列设计有很大的帮助,并且提高配对与非配对模板间的TM值差异。(2)提高信噪比-由于在探针的3'端的淬灭基团为不发光的荧光基团,并且与报告基团在空间的位置更接近,实验结果更精确,分辨率更高。
2、样本核酸提取
利用总DNA/RNA提取试剂盒(北京亿森宝生物科技有限公司,货号EAR005)提取禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌核酸。放置于-20℃备用。
3、冻干微芯片制备
按照如下反应体系分别进行8组冻干微芯片RT-PCR体系配制,即禽流感病毒和新城疫病毒,禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒,禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒,禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒,禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒,呼肠孤病毒和禽马立克氏病病毒,鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体,禽腺病毒和沙门氏菌冻干微芯片RT-PCR体系:
Figure BDA0001794669050000101
Figure BDA0001794669050000111
荧光定量PCR的AriaYSB微芯片(北京亿森宝生物科技有限公司)的整个冻干微芯片上样孔为24个,将上述荧光定量PCR阳性对照孔、样本孔和阴性对照孔冻干微芯片RT-PCR体系(包含2种引物探针)各2μL分别加入阳性对照孔、样本孔和阴性对照孔。
将包被有PCR试剂的微芯片先于-80℃冷冻1h。设备冻干条件为:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
4、冻干微芯片特异性验证
取冻干微芯片,将冻干微芯片稀释液,即使用Taq Buffer(10×),with KCl,(Thermo Scientific,货号B650060),加入无核酸酶水稀释为2×buffer和1×buffer。阳性对照和阴性对照孔每孔加入1×buffer 2μL。样本孔每孔加入2×buffer 1μL。在微芯片表面加入600μL矿物油,待其覆盖所有上样孔后。分别将禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病、鸡传染性贫血病、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒、沙门氏菌核酸提取物取1μL加入16种禽病病原冻干微芯片的样本孔内。
冻干微芯片荧光RT-PCR反应条件如下:50℃10min,为第一步循环;95℃1min,为第二步循环;95℃5s,60℃15s,为第三步40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行FAM和ROX通道荧光信号检测。
冻干微芯片包被的是16种禽病病原荧光RT-PCR试剂特异性实验结果。对禽流感病毒的特异性检测如图1至图3,图1结果显示FAM通道检测禽流感病毒阳性对照和禽流感病毒RNA有扩增,Ct值分别为24.16,25.32有扩增曲线,阴性对照无扩增。图2结果显示FAM通道检测禽流感病毒阳性对照有扩增,Ct值为23.78,新城疫病毒RNA和阴性对照无扩增。图3结果显示FAM通道检测禽流感病毒阳性对照有扩增,Ct值为23.64,禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒、沙门氏菌和阴性对照无扩增。对新城疫病毒的特异性检测如图4至图6,图4结果显示ROX通道检测新城疫病毒阳性对照和禽传染性支气管炎RNA有扩增,Ct值分别为19.67,23.21有扩增曲线,阴性对照无扩增。图5结果显示ROX通道检测新城疫病毒阳性对照有扩增,Ct值为20.42,禽流感病毒RNA和阴性对照无扩增。图6结果显示ROX通道检测新城疫病毒阳性对照有扩增,Ct值为20.93,禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒、沙门氏菌和阴性对照无扩增。
本发明对其它14种禽病病原(禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌)的特异性检测的扩增曲线与图1至图6扩增曲线的形态基本一致,为节约篇幅,本发明不再一一罗列。对禽传染性支气管炎的特异性检测结果显示FAM通道检测禽传染性支气管炎阳性对照和禽传染性支气管炎RNA有扩增,Ct值分别为20.27,25.53有扩增曲线。其他病原和阴性对照无扩增。对禽传染性喉气管炎病毒的特异性检测结果显示ROX通道检测禽传染性喉气管炎病毒阳性对照和禽传染性喉气管炎病毒DNA有扩增,Ct值分别为22.41,26.12有扩增曲线。其他病原和阴性对照无扩增。对禽传染性法氏囊病毒的特异性检测结果显示FAM通道检测禽传染性法氏囊病毒阳性对照和禽传染性法氏囊病毒RNA有扩增,Ct值分别为19.85,23.10有扩增曲线。其他病原和阴性对照无扩增。对鸡传染性贫血病毒的特异性检测结果显示ROX通道检测鸡传染性贫血病毒阳性对照和鸡传染性贫血病毒DNA有扩增,Ct值分别为23.41,27.62有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽网状内皮组织增殖病病毒的特异性检测结果显示FAM通道检测禽网状内皮组织增殖病病毒阳性对照和禽网状内皮组织增殖病病毒RNA有扩增,Ct值分别为19.47,25.07有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽白血病病毒的特异性检测结果显示ROX通道检测禽白血病病毒阳性对照和禽白血病病毒RNA有扩增,Ct值分别为20.05,23.12有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽偏肺病毒的特异性检测结果显示FAM通道检测禽偏肺病毒阳性对照和禽偏肺病毒RNA有扩增,Ct值分别为26.32,23.26有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽脑脊髓炎病毒的特异性检测结果显示ROX通道检测禽脑脊髓炎病毒阳性对照和禽脑脊髓炎病毒RNA有扩增,Ct值分别为25.34,24.07有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对呼肠孤病毒的特异性检测结果显示FAM通道检测呼肠孤病毒阳性对照和呼肠孤病毒RNA有扩增,Ct值分别为23.42,28.44有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽马立克氏病病毒的特异性检测结果显示ROX通道检测禽马立克氏病病毒阳性对照和禽马立克氏病病毒DNA有扩增,Ct值分别为20.90,25.59有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对鸡滑液囊支原体的特异性检测结果显示FAM通道检测鸡滑液囊支原体阳性对照和鸡滑液囊支原体DNA有扩增,Ct值分别为24.32,26.84有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对鸡毒支原体的特异性检测结果显示ROX通道检测鸡毒支原体阳性对照和鸡毒支原体DNA有扩增,Ct值分别为24.55,26.89有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。对禽腺病毒的特异性检测结果显示FAM通道检测禽腺病毒阳性对照和禽腺病毒DNA有扩增,Ct值分别为22.06,27.16有扩增曲线其他病原和阴性对照无扩增。对沙门氏菌的特异性检测结果显示ROX通道检测沙门氏菌阳性对照和沙门氏菌DNA有扩增,Ct值分别为20.67,26.28有扩增曲线,其他病原和阴性对照无扩增。所得结果与预期完全吻合。
实验例2、16种禽病病原冻干微芯片荧光RT-PCR检测试剂盒与常规荧光RT-PCR试 剂敏感性验证和比较
将浓度为1×107TCID50/mL的禽流感病毒液进行10倍梯度稀释。提取1×106TCID50/mL~1×100TCID50/mL各梯度浓度禽流感病毒的基因组RNA作为模板,无核酸酶水作为阴性对照,进行冻干微芯片荧光RT-PCR试剂和常规荧光RT-PCR试剂检测禽流感病毒通用敏感性检测。
按照如下反应体系进行冻干微芯片RT-PCR体系:
Figure BDA0001794669050000121
荧光定量PCR的AriaYSB微芯片(北京亿森宝生物科技有限公司)的整个冻干微芯片上样孔为24个,将上述荧光定量PCR阳性对照孔、样本孔和阴性对照孔冻干微芯片RT-PCR体系(包含2种引物探针)各2μL分别加入阳性对照孔、样本孔和阴性对照孔。
将包被有PCR试剂的微芯片先于-80℃冷冻1h。设备冻干条件为:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
荧光定量PCR的AriaYSB微芯片(北京亿森宝生物科技有限公司)的整个冻干微芯片上样孔为24个,将上述冻干微芯片阳性对照孔和阴性对照孔(包含禽流感病毒和新城疫病毒2种引物探针)加入2μL 1×buffer。在微芯片表面加入600μL矿物油,待其覆盖所有上样孔。并样本孔中分别加入1×106TCID50/mL~1×100TCID50/mL各梯度浓度禽流感病毒的基因组RNA。
冻干微芯片荧光RT-PCR反应条件如下:50℃10min,为第一步循环;95℃1min,为第二步循环;95℃5s,60℃15s,为第三步40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行FAM通道荧光信号检测。
常规荧光RT-PCR试剂体系配制:
Figure BDA0001794669050000131
常规荧光RT-PCR如下:50℃30min,为第一步循环;95℃5min,为第二步循环;95℃15s,60℃45s,为第三步40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行FAM通道荧光信号检测。
图7结果显示,冻干微芯片荧光RT-PCR,最低检测样本浓度为1×101TCID50/mL,Ct值为35.99,因此反应循环数40可大大满足最低检测要求。从不同浓度起始模板的扩增曲线可以看出,曲线基线平整,指数区明显,斜率较大,这些均说明在该条件下模板的扩增是较为理想的。图8结果显示,常规荧光RT-PCR最低检测样本浓度为1×102TCID50/mL,Ct值为33.76。结果表明,冻干微芯片荧光RT-PCR检测的敏感性比常规荧光RT-PCR检测的敏感性高(约高10倍左右)。由于Ct值与起始模板的对数存在线性关系,可利用Ct值和模板其实浓度制作标准曲线,列出线性关系方程。图9和图10结果显示,冻干微芯片荧光RT-PCR扩增效率为110.67%,常规荧光RT-PCR扩增效率为98.12%,冻干微芯片荧光RT-PCR扩增效率更高。两者的标准曲线公式及相关系数都较为接近。冻干微芯片荧光RT-PCR的相关系数为0.998,常规荧光RT-PCR相关系数为0.992,所以冻干微芯片荧光RT-PCR的相关性更好一些。冻干微芯片荧光RT-PCR反应体系为2μL,常规荧光RT-PCR体系为25μL,冻干微芯片荧光RT-PCR反应体系缩小了20多倍。冻干微芯片荧光RT-PCR反应运行时间不到40分钟,常规荧光RT-PCR反应时间为120分钟,运行时间缩短2/3。
实验例3:16种禽病病原冻干微芯片荧光RT-PCR检测试剂盒的制备及检测
1、试剂盒的制备:
冻干微芯片荧光RT-PCR体系按实施例1进行制备。
试剂1:稀释液Taq Buffer(10×)(Thermo Scientific,货号B650060),5μl
试剂2:矿物油(Sangon Biotech,货号A630217)1mL
试剂3:无核酸酶50μl。
2、试剂盒的重复性分析
选取3个已知阳性的样品,分别进行批间重复检测。批间重复实验:将3个已知阳性样品分批次检测,每个样品单独检测。
试剂1使用前需使用试剂3将其稀释成2×buffer和1×buffer,阳性对照和阴性对照孔每孔加入1×buffer 2μL;在微芯片表面加入600μL试剂2,待其覆盖所有上样孔。样本孔需将2×buffer和样品核酸按1:1混合后,样本孔每孔加入2μL。
冻干微芯片荧光RT-PCR反应条件如下:50℃10min,为第一步循环;95℃1min,为第二步循环;95℃5s,60℃15s,为第三步40个循环,所述第三步每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测,并记录实验结果。
从表1中的检测结果可以看出,批间变异系数在0.36%~2.56%之间,说明本试剂盒重复性良好。
表1试剂盒重复性分析
Figure BDA0001794669050000141
由于采用了以上技术方案,本发明通过设计特异性引物和探针并优化微芯片冻干条件,发展了能够快速、有效地检测16种禽病病原的微芯片荧光定量PCR检测的反应体系,同时制备了基于该方法的检测试剂盒,所述检测方法准确性、特异性和敏感性高,所述检测试剂盒重复性好。
以上所述,仅是本发明的较佳实施例而已,并非对本发明作任何形式上的限制,本领域技术人员利用上述揭示的技术内容做出些许简单修改、等同变化或修饰,均落在本发明的保护范围内。
SEQUENCE LISTING
<110> 中国动物疫病预防控制中心
北京亿森宝生物科技有限公司
<120> 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法
<130> P180498/YSB
<160> 48
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIV-F
<400> 1
accgaggtcg aaacgtacgt 20
<210> 2
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIV-R
<400> 2
cgcgatctcg gctttga 17
<210> 3
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIV-Taqman
<400> 3
atcccatcag gccc 14
<210> 4
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> NDV-F
<400> 4
agccactgtc ggcatgatc 19
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> NDV-R
<400> 5
agcatcgcag cggaaagt 18
<210> 6
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> NDV-Taqman
<400> 6
atgataaacc caagcgc 17
<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIBV-F
<400> 7
tccaatcagg gtacaagaga tcct 24
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIBV-R
<400> 8
gtcccccatc tgtgaatcgt 20
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AIBV-Taqman
<400> 9
ataagtttga ccaatgtcca 20
<210> 10
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ILTV-F
<400> 10
ttccgagcca ccaccaa 17
<210> 11
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ILTV-R
<400> 11
tcagcgtccc tcggaaaat 19
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ILTV-Taqman
<400> 12
tttatgggat cctcaccagg 20
<210> 13
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> IBDV-F
<400> 13
cgttcatacg gagccttctg a 21
<210> 14
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> IBDV-R
<400> 14
ctagggtgtc gtccggaatg 20
<210> 15
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> IBDV-Taqman
<400> 15
caaccggacc ggcg 14
<210> 16
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CIAV-F
<400> 16
tcacaagccg cggagaa 17
<210> 17
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CIAV-R
<400> 17
gcggagggca cgttattatc tag 23
<210> 18
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> CIAV-Taqman
<400> 18
tggcctaatt gctggct 17
<210> 19
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REV-F
<400> 19
ggaggatgtg gattcgttta cc 22
<210> 20
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REV-R
<400> 20
caccccacgc caaacgt 17
<210> 21
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REV-Taqman
<400> 21
caagttatgt gagtttgaat gg 22
<210> 22
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ALV-F
<400> 22
agcaacagga caaaatgttc ca 22
<210> 23
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ALV-R
<400> 23
tccattccgt cgtgcaatt 19
<210> 24
<211> 16
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> ALV-Taqman
<400> 24
acgacgggtt gcggtg 16
<210> 25
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> hMPV-F
<400> 25
accaactgcc tgcaaggtta a 21
<210> 26
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> hMPV-R
<400> 26
agcactgtag gaggtgtgtt ggtt 24
<210> 27
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> hMPV-Taqman
<400> 27
tgtggttccc tctattc 17
<210> 28
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AEV-F
<400> 28
gcagtagttg gcggaggatt t 21
<210> 29
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AEV-R
<400> 29
aaacttccca ttgtagccgt actaa 25
<210> 30
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AEV-Taqman
<400> 30
caacggtaga ccagagtt 18
<210> 31
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REO-F
<400> 31
tgcaggatcg tgttaaatca ttg 23
<210> 32
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REO-R
<400> 32
agcggaggcg aaaaagatag ac 22
<210> 33
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> REO-Taqman
<400> 33
agtctaccgc gagtcat 17
<210> 34
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MDV-F
<400> 34
gcaagtccat ccgttggaa 19
<210> 35
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MDV-R
<400> 35
cgtactgctt gaagtgtttg cataa 25
<210> 36
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MDV-Taqman
<400> 36
ttccacagaa caattctaca 20
<210> 37
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MS-F
<400> 37
aacgatgcta accgtgcact t 21
<210> 38
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MS-R
<400> 38
agcggagctt ctgcttcaat ta 22
<210> 39
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MS-Taqman
<400> 39
tcaaacatgc aacgtcaag 19
<210> 40
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MG-F
<400> 40
tgcggttgat tcaatattct tagg 24
<210> 41
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MG-R
<400> 41
ggtggtgcaa ctagatctga atacat 26
<210> 42
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> MG-Taqman
<400> 42
ttaacccctg agattgatga 20
<210> 43
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AADV-F
<400> 43
gtcctcgcca ccaacaacac 20
<210> 44
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AADV-R
<400> 44
actggcgcat tggaaggtaa 20
<210> 45
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> AADV-Taqman
<400> 45
acctacaatc tcatcgcc 18
<210> 46
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Sal-F
<400> 46
cgccattgct ccacgaat 18
<210> 47
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Sal-R
<400> 47
gtgggcgcca agagaaaaa 19
<210> 48
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Sal-Taqman
<400> 48
ctccacaagg ttaatgac 18

Claims (18)

1.用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片,其特征在于,用于鉴别16种禽病病原的荧光PCR反应体系通过冻干被固定在所述微芯片上;
所述荧光PCR反应体系包括:下述引物和探针:
AIV-F: 5’- ACCGAGGTCGAAACGTACGT-3’;
AIV-R: 5’- CGCGATCTCGGCTTTGA-3’;
AIV-Taqman-: 5’- ATCCCATCAGGCCC-3’;
NDV-F: 5’- AGCCACTGTCGGCATGATC-3’;
NDV-R: 5’- AGCATCGCAGCGGAAAGT-3’;
NDV-Taqman-: 5’- ATGATAAACCCAAGCGC-3’;
AIBV-F: 5’- TCCAATCAGGGTACAAGAGATCCT-3’;
AIBV-R: 5’- GTCCCCCATCTGTGAATCGT-3’;
AIBV-Taqman-: 5’- ATAAGTTTGACCAATGTCCA-3’;
ILTV-F: 5’- TTCCGAGCCACCACCAA-3’;
ILTV-R: 5’- TCAGCGTCCCTCGGAAAAT-3’;
ILTV-Taqman-: 5’- TTTATGGGATCCTCACCAGG-3’;
IBDV-F: 5’- CGTTCATACGGAGCCTTCTGA-3’;
IBDV-R: 5’- CTAGGGTGTCGTCCGGAATG-3’;
IBDV-Taqman-: 5’- CAACCGGACCGGCG-3’;
CIAV-F: 5’- TCACAAGCCGCGGAGAA-3’;
CIAV-R: 5’- GCGGAGGGCACGTTATTATCTAG-3’;
CIAV-Taqman-: 5’- TGGCCTAATTGCTGGCT-3’;
REV-F: 5’- GGAGGATGTGGATTCGTTTACC-3’;
REV-R: 5’- CACCCCACGCCAAACGT-3’;
REV-Taqman-: 5’- CAAGTTATGTGAGTTTGAATGG-3’;
ALV-F:5’- AGCAACAGGACAAAATGTTCCA-3’;
ALV-R:5’- TCCATTCCGTCGTGCAATT-3’;
ALV-Taqman-:5’- ACGACGGGTTGCGGTG-3’;
hMPV-F: 5’- ACCAACTGCCTGCAAGGTTAA-3’;
hMPV-R: 5’- AGCACTGTAGGAGGTGTGTTGGTT-3’;
hMPV-Taqman-: 5’-TGTGGTTCCCTCTATTC-3’;
AEV-F: 5’- GCAGTAGTTGGCGGAGGATTT-3’;
AEV-R: 5’- AAACTTCCCATTGTAGCCGTACTAA-3’;
AEV-Taqman-: 5’- CAACGGTAGACCAGAGTT-3’;
REO-F: 5’- TGCAGGATCGTGTTAAATCATTG-3’;
REO-R: 5’- AGCGGAGGCGAAAAAGATAGAC-3’;
REO-Taqman-: 5’- AGTCTACCGCGAGTCAT-3’;
MDV-F: 5’- GCAAGTCCATCCGTTGGAA-3’;
MDV-R: 5’- CGTACTGCTTGAAGTGTTTGCATAA-3’;
MDV-Taqman-: 5’- TTCCACAGAACAATTCTACA-3’;
MS-F: 5’- AACGATGCTAACCGTGCACTT-3’;
MS-R: 5’- AGCGGAGCTTCTGCTTCAATTA-3’;
MS-Taqman-: 5’- TCAAACATGCAACGTCAAG-3’;
MG-F: 5’- TGCGGTTGATTCAATATTCTTAGG-3’;
MG-R: 5’- GGTGGTGCAACTAGATCTGAATACAT-3’;
MG-Taqman-: 5’- TTAACCCCTGAGATTGATGA-3’;
AADV-F: 5’- GTCCTCGCCACCAACAACAC-3’;
AADV-R: 5’- ACTGGCGCATTGGAAGGTAA-3’;
AADV-Taqman-: 5’- ACCTACAATCTCATCGCC-3’;
Sal-F: 5’- CGCCATTGCTCCACGAAT-3’;
Sal-R: 5’- GTGGGCGCCAAGAGAAAAA-3’;
Sal-Taqman-: 5’- CTCCACAAGGTTAATGAC-3’;
所述用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片的最低检测样本浓度为1×101TCID50/mL;
所述16种禽病病原包括:禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌。
2.根据权利要求1所述的冻干微芯片,其特征在于,所述荧光PCR反应体系还包括:DNA聚合酶、反转录酶、海藻糖、Tris-Cl、dNTP、Mg2+
3.根据权利要求1所述的冻干微芯片,其特征在于,所述禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记有荧光报告基团;3`端标记有荧光淬灭基团。
4.根据权利要求2所述的冻干微芯片,其特征在于,所述荧光PCR反应体系包含:上游引物0.4μM;下游引物0.4μM;Taqman探针0.4μM;DNA聚合酶 0.5U/μL;反转录酶 0.5U/μL;dNTP0.3mM;Mg2+3mM;海藻糖5μM;Tris-Cl 5mM,模板 5ng/μL,其余为灭菌去离子水。
5.根据权利要求4所述的冻干微芯片,其特征在于,所述模板选自16种禽病病原的cDNA、待测样品cDNA和灭菌去离子水,分别用于作为阳性对照、样本检测体系和阴性对照。
6.根据权利要求5所述的冻干微芯片,其特征在于,所述微芯片冻干前每个加样孔中的荧光PCR反应体系的上游引物、下游引物和Taqman探针分别包括16种禽病病原中的2种禽病病原的引物组和Taqman探针,且所述阳性对照的荧光PCR反应体系的模板分别为16种禽病病原中的2种禽病病原的cDNA混合物;16种禽病病原中,所述2种禽病病原选自:禽流感病毒和新城疫病毒;禽传染性支气管炎和禽传染性喉气管炎病毒;禽传染性法氏囊病毒和鸡传染性贫血病毒;禽网状内皮组织增殖病病毒和禽白血病病毒;禽偏肺病毒和禽脑脊髓炎病毒;呼肠孤病毒和禽马立克氏病;鸡滑液囊支原体和鸡毒支原体;禽腺病毒和沙门氏菌。
7.根据权利要求6所述的冻干微芯片,其特征在于,所述禽流感病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性法氏囊病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽偏肺病毒、呼肠孤病毒、鸡滑液囊支原体和禽腺病毒的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为FAM荧光报告基团;
所述新城疫病毒、禽传染性喉气管炎病毒、鸡传染性贫血病毒、禽白血病病毒、禽脑脊髓炎病毒、禽马立克氏病病毒、鸡毒支原体和沙门氏菌的Taqman探针的5`端标记的荧光报告基团为ROX荧光报告基团;
所述禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌的Taqman探针3`端标记的荧光淬灭基团为MGB淬灭基团。
8.根据权利要求1-7任一所述的冻干微芯片,其特征在于,所述微芯片上设置有若干个加样孔;所述荧光PCR反应体系通过冻干被固定在所述加样孔内。
9.根据权利要求8所述的冻干微芯片,其特征在于,所述微芯片上的加样孔为24个;所述微芯片的结构与PCR仪的加样板结构相适配。
10.根据权利要求1-7、9任一所述的冻干微芯片,其特征在于,所述冻干包括如下步骤:将装有所述荧光PCR反应体系的微芯片置于-80℃冷冻1h后再进行设备冻干。
11.根据权利要求10所述的冻干微芯片,其特征在于,所述设备冻干包括:预冻阶段,隔板温度下降到-55℃,预冻时保持时间为1h,然后设备进行抽真空,保持冷冻干燥1h;解析干燥阶段,再将隔板温度升至-25℃保持1h,然后将隔板温度升至37℃并保持2h,最后将隔板降至25℃并保持1h。
12.用于鉴别16种禽病病原的试剂盒,包括权利要求1-11任一所述的冻干微芯片;所述16种禽病病原包括:禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌。
13.根据权利要求12所述的试剂盒,还包括:稀释液,10×稀释液使用无核酸酶水稀释成2×稀释液用于滴入冻干微芯片的加样孔中,再将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行荧光PCR扩增。
14.根据权利要求12或13所述的试剂盒,还包括:矿物油,封闭所述冻干微芯片上的加样孔。
15.用于非诊断目的地鉴别16种禽病病原的方法,其特征在于,采用权利要求1-11任一所述的冻干微芯片,和/或,权利要求12-14任一所述的试剂盒对待测样品进行荧光PCR扩增;所述16种禽病病原包括:禽流感病毒、新城疫病毒、禽传染性支气管炎、禽传染性喉气管炎病毒、禽传染性法氏囊病毒、鸡传染性贫血病毒、禽网状内皮组织增殖病病毒、禽白血病病毒、禽偏肺病毒、禽脑脊髓炎病毒、呼肠孤病毒、禽马立克氏病病毒、鸡滑液囊支原体、鸡毒支原体、禽腺病毒和沙门氏菌。
16.根据权利要求15所述的方法,其特征在于,在冻干微芯片的加样孔中加入待测样品及稀释液后,将冻干微芯片置于荧光PCR仪上进行所述荧光PCR扩增。
17.根据权利要求16所述的方法,其特征在于,所述稀释液为10×buffer。
18.根据权利要求16所述的方法,其特征在于,所述荧光PCR扩增的反应程序为:50℃10min;95℃ 1min;以95℃ 5s,60℃ 15s为1个循环,进行40个循环,每个循环的延伸结束时进行荧光信号检测。
CN201811051480.9A 2018-09-10 2018-09-10 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法 Active CN110885899B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811051480.9A CN110885899B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811051480.9A CN110885899B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN110885899A CN110885899A (zh) 2020-03-17
CN110885899B true CN110885899B (zh) 2023-04-14

Family

ID=69745177

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201811051480.9A Active CN110885899B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN110885899B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111690775A (zh) * 2020-06-24 2020-09-22 哈尔滨元亨生物药业有限公司 一种非洲猪瘟病毒荧光pcr快速检测试剂盒
CN112748058B (zh) * 2020-12-28 2024-05-03 上海宸安生物科技有限公司 一种用于单细胞分析的多指标混合型流式抗体冻干微芯试剂盒
CN115896354B (zh) * 2022-12-20 2023-08-25 上海雄图生物科技有限公司 一种同时检测25种禽类疫病病原体的复合扩增引物组及试剂盒

Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1415762A (zh) * 2002-12-12 2003-05-07 山东澳兰生物工程研究所 家禽和/或家畜疫病诊断性基因芯片及其用途
CN1616679A (zh) * 2002-12-12 2005-05-18 山东澳兰生物工程研究院 鸡常见传染病诊断性基因芯片及其用途
CN102899424A (zh) * 2012-10-23 2013-01-30 广西壮族自治区兽医研究所 同时鉴别9种鸡呼吸道病病原体的GeXP快速检测试剂盒
CN103805719A (zh) * 2014-02-20 2014-05-21 广西壮族自治区兽医研究所 鸡新城疫病毒、h9亚型禽流感病毒和禽肺炎病毒三重rt-pcr试剂盒及其应用
CN103820575A (zh) * 2014-02-20 2014-05-28 广西壮族自治区兽医研究所 鸡新城疫病毒和禽肺炎病毒二重rt-pcr试剂盒及其应用
CN104160011A (zh) * 2012-03-08 2014-11-19 索尼公司 用于核酸扩增反应的微芯片的制造方法
CN104805217A (zh) * 2015-03-24 2015-07-29 山西隆克尔生物制药有限公司 一种用于区别检测禽类重要经济病毒的mRT-PCR试剂盒及其应用
CN105420817A (zh) * 2015-12-15 2016-03-23 山东宝来利来生物工程股份有限公司 一种用于检测猪疫病病原微生物的基因芯片及其检测方法
CN105624330A (zh) * 2014-11-28 2016-06-01 北京亿森宝生物科技有限公司 同时检测12种猪常见病毒及细菌Taqman-MGB荧光定量PCR试剂盒及方法
CN106191319A (zh) * 2016-07-27 2016-12-07 广东省实验动物监测所 一种快速区分6种禽呼吸道病原的多重荧光免疫分析方法
CN106282416A (zh) * 2016-10-08 2017-01-04 广东省实验动物监测所 一种快速区分5种禽免疫抑制病原的多重荧光免疫分析引物、试剂盒及方法
CN106282417A (zh) * 2016-10-08 2017-01-04 广东省实验动物监测所 一种快速区分cav、mdv、rev、ibdv的多重荧光免疫分析引物、试剂盒及方法
CN107629951A (zh) * 2017-09-29 2018-01-26 深圳国际旅行卫生保健中心 微流控基因检测芯片
CN107805597A (zh) * 2017-09-29 2018-03-16 深圳国际旅行卫生保健中心 基于微流控芯片的基因检测系统及检测方法
CN108411039A (zh) * 2018-05-14 2018-08-17 南京岚煜生物科技有限公司 基于微流控芯片检测呼吸道合胞病毒a、b型的试剂盒及其使用方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2536565A1 (en) * 2003-09-10 2005-05-12 Althea Technologies, Inc. Expression profiling using microarrays

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1616679A (zh) * 2002-12-12 2005-05-18 山东澳兰生物工程研究院 鸡常见传染病诊断性基因芯片及其用途
CN1415762A (zh) * 2002-12-12 2003-05-07 山东澳兰生物工程研究所 家禽和/或家畜疫病诊断性基因芯片及其用途
CN104160011A (zh) * 2012-03-08 2014-11-19 索尼公司 用于核酸扩增反应的微芯片的制造方法
CN102899424A (zh) * 2012-10-23 2013-01-30 广西壮族自治区兽医研究所 同时鉴别9种鸡呼吸道病病原体的GeXP快速检测试剂盒
CN103805719A (zh) * 2014-02-20 2014-05-21 广西壮族自治区兽医研究所 鸡新城疫病毒、h9亚型禽流感病毒和禽肺炎病毒三重rt-pcr试剂盒及其应用
CN103820575A (zh) * 2014-02-20 2014-05-28 广西壮族自治区兽医研究所 鸡新城疫病毒和禽肺炎病毒二重rt-pcr试剂盒及其应用
CN105624330A (zh) * 2014-11-28 2016-06-01 北京亿森宝生物科技有限公司 同时检测12种猪常见病毒及细菌Taqman-MGB荧光定量PCR试剂盒及方法
CN104805217A (zh) * 2015-03-24 2015-07-29 山西隆克尔生物制药有限公司 一种用于区别检测禽类重要经济病毒的mRT-PCR试剂盒及其应用
CN105420817A (zh) * 2015-12-15 2016-03-23 山东宝来利来生物工程股份有限公司 一种用于检测猪疫病病原微生物的基因芯片及其检测方法
CN106191319A (zh) * 2016-07-27 2016-12-07 广东省实验动物监测所 一种快速区分6种禽呼吸道病原的多重荧光免疫分析方法
CN106282416A (zh) * 2016-10-08 2017-01-04 广东省实验动物监测所 一种快速区分5种禽免疫抑制病原的多重荧光免疫分析引物、试剂盒及方法
CN106282417A (zh) * 2016-10-08 2017-01-04 广东省实验动物监测所 一种快速区分cav、mdv、rev、ibdv的多重荧光免疫分析引物、试剂盒及方法
CN107629951A (zh) * 2017-09-29 2018-01-26 深圳国际旅行卫生保健中心 微流控基因检测芯片
CN107805597A (zh) * 2017-09-29 2018-03-16 深圳国际旅行卫生保健中心 基于微流控芯片的基因检测系统及检测方法
CN108411039A (zh) * 2018-05-14 2018-08-17 南京岚煜生物科技有限公司 基于微流控芯片检测呼吸道合胞病毒a、b型的试剂盒及其使用方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
John Y. Takekawa et al..Rapid Diagnosis of Avian Influenza Virus in Wild Birds: Use of a Portable rRT-PCR and Freeze-dried Reagents in the Field.《Journal of Visualized Experiments》.2011, *
杨林等.动物疫病基因芯片诊断技术的研究进展.《黑龙江畜牧兽医》.2006, *

Also Published As

Publication number Publication date
CN110885899A (zh) 2020-03-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN110885899B (zh) 用于鉴别16种禽病病原冻干微芯片、试剂盒及方法
CN107988428A (zh) 虾虹彩病毒(siv)的raa恒温荧光检测方法及试剂
JPH10332701A (ja) 核酸融解温度測定法
CN111321247B (zh) 用于鉴别非洲猪瘟病毒、猪瘟野毒株与猪瘟兔化弱毒疫苗株的冻干微孔板、试剂盒及方法
CN110885904B (zh) 用于鉴别16种猪病病原冻干微芯片、试剂盒及方法
CN110564895A (zh) 猫疱疹病毒fhv-1的raa恒温荧光检测引物探针组、试剂盒及方法
CN107828913A (zh) 对虾白斑综合症(wssv)的raa恒温荧光检测方法及试剂盒
CN111850134A (zh) 一种虹鳟鱼特异性正反向引物及探针、检测试剂盒及其应用
CN110885900B (zh) 用于鉴别猪蓝耳病毒经典株与NADC30-Like株的冻干微芯片、试剂盒及方法
CN113718063A (zh) 同时检测asfv、pcv2和prv病毒的多重芯片数字pcr引物、试剂盒及检测方法
CN107828914A (zh) 传染性皮下及造血组织坏死病毒(ihhnv)的raa恒温荧光检测方法及试剂
CN118166129B (zh) 鉴别鸡毒支原体野毒株和疫苗核酸的raa-crispr引物组合、反应体系、方法与应用
CN111926114A (zh) 一种检测副流感病毒多重real-time PCR试剂盒、方法和应用
CN110885902B (zh) 用于检测猪蓝耳病毒并鉴别从中猪蓝耳病毒高致病经典变异株的冻干微芯片、试剂盒及方法
CN112111601A (zh) 一种新型冠状病毒双重快速rt-pcr检测试剂盒
Yu et al. A modified loop-mediated isothermal amplification method for detecting avian infectious laryngotracheitis virus
CN116716415A (zh) 一种用于昆虫细胞dna残留含量定量检测的引物探针及其方法和应用
CN115927746A (zh) 用于诺如病毒和轮状病毒双重rt-rap检测的引物探针组、试剂盒及其应用
CN114395643A (zh) 非洲猪瘟病毒的双通道数字pcr检测试剂盒及方法
CN110885903B (zh) 用于鉴别h9和h6亚型低致病性禽流感病毒的冻干微芯片、试剂盒及方法
KR20140110138A (ko) 교차오염 억제용 udg를 함유한 중합효소연쇄반응액의 동결건조물
Callison et al. Rapid differentiation of avian infectious bronchitis virus isolates by sample to residual ratio quantitation using real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction
CN110885901B (zh) 用于鉴别h5和h7高致病变异型禽流感病毒的冻干微芯片、试剂盒及方法
CN116083652B (zh) 一种用于检测猴痘病毒的引物、荧光冻干微芯片、试剂盒及方法
CN112063759A (zh) 一种同时检测香蕉多种病毒的rt-lamp引物、试剂盒及检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant