CN110804585A - 一种脐带间充质干细胞的分离方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种脐带间充质干细胞的分离方法。具体方法是:在脐带组织块贴壁法培养过程中,把新鲜的华通氏胶脐带组织块剪成1mm3左右大小后,用胶原酶和透明质酸酶初步解离软化,然后均匀铺于有纤连蛋白、层粘连蛋白和胶原等包被预处理培养器皿中;通过本发明的方法,组织块贴壁严实,漂浮起的组织块少,脐带中的间充质干细胞可以快速从组织块实质中爬出,大大缩短细胞爬出的时间,同时爬出细胞的组织块较多,收获细胞量大,细胞纯度和活性较好。
Description
技术领域
本发明涉及一种组织块贴壁分离细胞的方法,更涉及脐带间充质干细胞的分离方法,属于细胞生物学领域。
背景技术
脐带间充质干细胞大量存在于脐带沃顿胶 (Wharton 胶,或者又称华尔通胶 )和血 管周围组织中,具有自我更新、增殖和多向分化潜能。目前间充质干细胞已然成为再生医学研究的热门,具有有非常广泛的应用前景。
新生儿脐带中含有丰富的脐带间充质干细胞,同时其周围含有丰富的胶原、透明质酸、硫酸软骨素等基质成分。目前的脐带间充质干细胞分离培养方法有2种,分别是传统酶消化法和组织贴壁法。贴壁法纯度高,操作较酶消化法简单,但细胞爬出时间长,整体细胞培养周期长,培养效率不高;而酶消化法虽然时间短,但操作复杂、酶消化得到的细胞纯度低,并且难以避免的造成细胞的损伤和细胞表型丢失、老化。
组织块贴壁法中,组织中的脐带间充质干细胞由于处在组织块实质内,需要克服各种细胞胞外基质成分和组织成份的黏连,很难马上侵润出周围组织细胞。细胞培养中,细胞的粘附是通过细胞表面的受体与细胞外的基质成份结合实现的,所以用纤连蛋白、层粘连蛋白和胶原等预处理培养器皿,有利细胞的附着和增殖。
发明内容
针对以上这些缺点和细胞爬出的原理,本发明的目的是提供一种脐带间充质干细胞分离方法。该方法采用组织贴壁法和酶消化的组合方式,使用的酶为胶原酶和透明质酸酶的组合,这样做的目的是通过酶消化法使组织块中基质成分解离软化,有利于组织中脐带间充质干细胞爬出;在瓶底提前包被纤连蛋白、层粘连蛋白以及明胶,有利于脐带间充质干细胞的快速粘附和快速增殖。通过实施本方法,脐带组织间充质干细胞爬出时间大大缩短,1-2天脐带组织贴壁严实,只有少量小的组织块出现漂浮,3-5天就有大量细胞从大部分的组织块周边爬出,6-8天细胞长满80%以上,细胞收获量大,同时细胞纯度和活性较好。
具体实施方式
下面结合具体实施例介对本发明进一步详细说明,而不是对本发明的限制。
实验方法
1、脐带采集和分离准备:合法途径获得脐带一根,脐带来源获得产妇知情同意捐赠所得,胎儿为足月生产且产妇无传染性疾病。无菌采集脐带组织15cm,24小时内完成制备。脐带在超净工作台中,用75%酒精浸泡2-3分钟,放入PBS中剪成2-3cm长度,再次用PBS清洗表面和血管内的血渍,然后撕开脐带,剔除脐带中的两根动脉和一根静脉,取其中的透明华通氏胶成份和血管周成份。最后用组织剪刀剪成0.5-1m3大小的组织块,离心1500rpm,5min,弃去上清,得到待使用的组织块8ml,备用。
2、通过实施例1/2/3,比较以下3个实施方案的优劣:
实施方案1:
酶消化法和贴壁法组合分离脐带间充质干细胞,也是本发明的方法,具体步骤如下:
(1) 培养瓶包被:在脐带采集前一天做包被好1个75cm2NUNC培养瓶的,具体包被方法如下:分别将纤连蛋白25ug、层粘连蛋白25ug、明胶50ug溶于5ml干细胞培养基后,然后加入到底面积为75cm2的培养瓶中,最终配置纤连蛋白、层粘连蛋白和明胶浓度分别为5ug/ml、5ug/ml 、10ug/ml。然后摇匀,盖紧盖子放在4℃冰箱中过夜。
(2) 混合酶消化:把10ml移液管前端掰断,取待使用的组织2ml于15ml离心管中,加入相应体积的0.2%的透明质酸酶和0.4%的II型胶原酶混合消化液2ml,充分摇匀放到37℃的二氧化碳培养箱中,消化30分钟。然后取出用2倍体积的PBS洗涤离心1500rpm,5min,最后一遍用1倍体积的干细胞培养基洗涤一遍,离心1500rpm,5min,就得到要组织贴壁的组织块。
(3)组织块贴壁培养:取包4℃包被过夜的培养瓶,吸掉包被液,然后用10ml新的干细胞培养液,混匀以上待贴壁的组织块,全部转移至包被的培养瓶中,充分分散组织块,然后放进37℃、5%的二氧化碳培养箱中培养,每天观察,第2天组织贴壁严实,3天时有细胞爬出,第6天细胞长满80%以上,酶消化贴壁细胞进行后续的传代培养。
实施案例2:
单纯组织贴壁法分离脐带间充质干细胞,具体步骤如下:
1) 组织块贴壁培养:取以上待使用的组织块,用10ml前端掰断的移液管,吸取2ml组织块于一个没有包被的75cm2NUNC培养瓶中,用10ml干细胞培养基充分分散组织块,然后放入37℃、5%的二氧化碳培养箱中培养。
2)结果观察:每天观察培养瓶组织块及细胞爬出情况,发现在第1天时,基本上没有贴壁组织块,第5天时才只有50%-70%的组织块贴壁严实,还有大量的组织漂浮,并在第5天时10ml全量换液,换液过程中导致少许贴壁的组织漂浮。在第9天时候有少量组织块周边有细胞爬出、并于第10天进行5ml半量换液。第13天时只有6块组织有细胞爬出,并长满80%左右,然后酶消化贴壁细胞进行后续的传代培养。
实施案例3
单纯酶解法分离脐带间充质干细胞,具体步骤如下:
(1)混合酶消化:把10ml移液管前端掰断,取待使用的组织2ml于15ml离心管中,加入相应体积的0.2%的透明质酸酶和0.4%的II型胶原酶混合消化液2ml,充分摇匀放到37℃的二氧化碳培养箱中,消化直到组织块出现绒绒状,然后用80目的筛网过滤,滤液然后用5倍体积的干细胞培养基洗涤、离心1500rpm,5min,最后一遍用5ml的干细胞培养基洗涤一遍,离心机离心、1500rpm,5min。
(2)细胞培养:底部细胞用10ml新的干细胞培养液重悬,移液管吹打混匀,然后全部转移至一个没有包被的75cm2NUNC培养瓶中,然后放进37℃、5%的二氧化碳培养箱中培养,每天观察,第2天时有细胞贴壁细胞,并10ml全量换液,第6天时长满80%以上,酶消化贴壁细胞进行后续的传代培养。
本实施例的有益效果是:
本发明的实施案例1中:1-2天脐带组织贴壁严实,只有少量小的组织块出现漂浮,3-5天就有细胞爬出,6-8天细胞长满80%以上。具体如下:
Claims (5)
1.一种脐带间充质干细胞的分离方法,其特征在于,脐带组织块先用相关酶进行预消化,然后将消化后的组织块平铺于提前包被过的细胞培养瓶中,最后进行组织贴壁培养。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,培养瓶包被的方法和浓度为:纤连蛋白、层粘连蛋白和明胶浓度分别为5ug/ml、5ug/ml 、10ug/ml。
3. 根据权利要求1所述的方法,其特征在于:包被时间为 4℃过夜。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:相关酶采用0.2%的透明质酸酶和0.4%的II型胶原酶;脐带组织块为0.5-1mm3大小新鲜组织;消化方法为37℃温度条件下消化30min。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,组织块贴壁培养步骤为:消化后的组织块用干细胞培养基进行终止消化,取2次洗涤离心后的组织块3ml于一个75cm2培养瓶中,添加10ml干细胞培养基混匀组织,于37℃、5%的二氧化碳培养箱中静置培养。每天观察组织块周边细胞爬出情况,当整个培养瓶长满80%以上时,进行后续传代培养。
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---|---|
CN (1) | CN110804585A (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111235102A (zh) * | 2020-03-26 | 2020-06-05 | 苏州梅赛生物技术有限公司 | 一种脐带间充质干细胞原代培养方法 |
CN113652397A (zh) * | 2020-05-12 | 2021-11-16 | 辽宁医学诊疗科技研发中心有限公司 | 一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法 |
CN114990060A (zh) * | 2022-07-20 | 2022-09-02 | 苏州科贝生物技术有限公司 | 一种促脐带组织块贴壁的方法 |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103266081A (zh) * | 2012-01-21 | 2013-08-28 | 中国人民解放军军事医学科学院附属医院 | 从脐带中分离培养间充质干细胞的高效方法 |
CN105238751A (zh) * | 2015-11-30 | 2016-01-13 | 深圳市合一康生物科技股份有限公司 | 一种脐带组织间充质干细胞的分离培养方法 |
CN105420183A (zh) * | 2015-12-11 | 2016-03-23 | 郭镭 | 一种从脐带华通氏胶组织中分离培养脐带间充质干细胞的方法 |
CN107041894A (zh) * | 2016-12-26 | 2017-08-15 | 湖南新起源医疗技术有限公司 | 一种用于抗衰老的干细胞嫩肤液制备方法 |
CN109628393A (zh) * | 2019-01-22 | 2019-04-16 | 汇麟生物科技(北京)有限公司 | 一种用于分离脐带间充质干细胞的方法及其消化液 |
CN110157665A (zh) * | 2019-05-24 | 2019-08-23 | 吉林省农业科学院 | 一种人脐带间充质干细胞分离和培养方法 |
-
2019
- 2019-11-19 CN CN201911131187.8A patent/CN110804585A/zh active Pending
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103266081A (zh) * | 2012-01-21 | 2013-08-28 | 中国人民解放军军事医学科学院附属医院 | 从脐带中分离培养间充质干细胞的高效方法 |
CN105238751A (zh) * | 2015-11-30 | 2016-01-13 | 深圳市合一康生物科技股份有限公司 | 一种脐带组织间充质干细胞的分离培养方法 |
CN105420183A (zh) * | 2015-12-11 | 2016-03-23 | 郭镭 | 一种从脐带华通氏胶组织中分离培养脐带间充质干细胞的方法 |
CN107041894A (zh) * | 2016-12-26 | 2017-08-15 | 湖南新起源医疗技术有限公司 | 一种用于抗衰老的干细胞嫩肤液制备方法 |
CN109628393A (zh) * | 2019-01-22 | 2019-04-16 | 汇麟生物科技(北京)有限公司 | 一种用于分离脐带间充质干细胞的方法及其消化液 |
CN110157665A (zh) * | 2019-05-24 | 2019-08-23 | 吉林省农业科学院 | 一种人脐带间充质干细胞分离和培养方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
林田等: "人脐带间充质干细胞培养体系的优化", 《广西医科大学学报》 * |
王菲等: "原代人脐带间充质干细胞培养方法的研究", 《中国组织工程研究》 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111235102A (zh) * | 2020-03-26 | 2020-06-05 | 苏州梅赛生物技术有限公司 | 一种脐带间充质干细胞原代培养方法 |
CN113652397A (zh) * | 2020-05-12 | 2021-11-16 | 辽宁医学诊疗科技研发中心有限公司 | 一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法 |
CN114990060A (zh) * | 2022-07-20 | 2022-09-02 | 苏州科贝生物技术有限公司 | 一种促脐带组织块贴壁的方法 |
CN114990060B (zh) * | 2022-07-20 | 2023-11-24 | 苏州科贝生物技术有限公司 | 一种促脐带组织块贴壁的方法 |
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