CN113652397A - 一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及医疗领域,针对现有间充质干细胞培养方法的不足,提供了一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法。本发明脐带间充质干细胞培养方法的构建包括:1、包被基质胶。2、脐带组织分离。3、换液。4、处理原代细胞,细胞传代。5、细胞冻存。

Description

一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法
技术领域
本发明涉及医疗领域,特别提供一种脐带间充质干细胞的培养方法。
背景技术
近年来随着生命科学与医学的快速发展,国内外创新性生物治疗技术进展迅速,细胞治疗已发展成为药物治疗和手术治疗后的第三次医疗革命,在恶性肿瘤、炎症、自身免疫性疾病、抗衰老、再生医学等多个领域显示出巨大的应用潜力。细胞治疗包括免疫细胞治疗和干细胞治疗,干细胞治疗包括胚胎干细胞(ESC)、组织特异性前体干细胞(TSPSC)、间充质干细胞(MSC)、脐带干细胞(UCSC)、骨髓干细胞(BMSC)和诱导多潜能干细胞(iPSC)等。目前,干细胞在重大慢性疾病、严重创伤修复的再生医学领域,已经成为弥补传统治疗不可或缺的有效手段。
间充质干细胞(MSC)因在特定环境下可分化为软骨、骨、支付和肌肉等间质而得名。广泛存在于脐带、胎盘、脂肪、肺、心脏及骨髓等组织中。其特点包括贴壁生长,表达细胞表面标志CD105、CD73、CD90,低表达CD45、CD34、CD14、CD79、CD19及HLA-DR。既往传统的细胞生物学制备方法,制备出的干细胞因细胞表型不合格被器用,浪费了大量的人力物力,本发明一定程度上解决了该问题。
本发明公开用于临床研究所用的、安全可靠的脐带间充质干细胞制备及储存方法。
发明内容
为了提供一种高效新型的脐带间充质干细胞培养方法,本发明采用如下的技术方案:
一、基质胶包被T75培养瓶:
1)包被比例:
原代制备包被比例:1:50,每个T75培养瓶加100ul stemcell基质胶(#07130);4.9 mlPBS;P1、P2传代包被比例:1:75,每个T75培养瓶加5.92 ml PBS,80 ul基质胶(#07130);PBS为不含镁和钙离子溶液。
2)包被时间:
轻柔混匀后15-25℃包被时间大于2小时,使用前倒掉基质胶,用PBS或生理盐水轻柔冲次一次;
二、脐带的选择和处理:
1)新鲜健康脐带,取1cm长,用75%酒精冲洗一次,0.9%氯化钠注射液浸洗两次去除肉眼可见的污物及残留血液;沿脐静脉剪开脐带,用止血钳及剪刀剔去1根脐静脉、2根脐动脉,用0.9%氯化钠注射液浸洗两次,用剪刀剪碎成1mm3大小组织块,应用5ml浓度为2mg/L索莱宝胶原酶消化组织后应用BD公司流式细胞仪检测,细胞表型CD105表达大于95%认定为合格脐带,进行下一步制备;
2)经检测合格的脐带,取5cm长短,同上述处理方法处理为碎成1mm3大小组织块,用stem cell干细胞完全培养液悬浮组织块,平均分配到T75培养瓶中;(T75培养瓶终体积12ml);
6)将培养瓶放入37℃、5%二氧化碳培养箱中培养;
三、培养第5天进行半量换液,取出5ml培养液,加入5ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
四、培养第10天进行全量换液,加入12ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
五、14天处理原代细胞。PO细胞传代P1:
1)包被基质胶:每个T75培养瓶加5 ml PBS,67 ulstemcell基质胶(#07130);
2)收集原代培养液及组织块,用生理盐水清洗2次T75培养瓶后,加入3ml stemcell酶解液(#05427),37℃孵育2-3分钟,加入3ml 酶抑制液(#05428),加入10ml完全培养液冲洗细胞,收集至50ml离心管,离心285g,10分钟;
3)加入20mlstem cell干细胞完全培养液,轻柔混匀后计数细胞,调整细胞浓度为:T75cm2 1-1.5*105/瓶,终体积10-12ml;
六、干细胞的冻存:
干细胞消化清洗步骤同上,计数细胞,台盼蓝染色计数活率,离心清洗后应用BD公司的流式细胞仪(FACSVia)测量表型,表型合格细胞用stemcell CS10冻存液(#07959)悬浮细胞,调整细胞浓度为5-10×106/ml,标记冻存管。使用Thermo程序降温仪7451对细胞进行程序降温后储存于Thermo液氮高效液氮储存罐(20782183)的摄氏-196度的气相中。
附图说明
图1 为脐带横截面示意图;
图2 为脐带筛选步骤流式细胞检测CD105;
图3 为流式细胞检测阴性对照;
图4 为流式细胞检测CD105;
图5 为流式细胞检测CD90;
图6 为流式细胞检测CD73;
图7 为流式细胞检测CD45;
图8 为流式细胞检测CD34;
图9 为流式细胞检测CD11;
图10 为流式细胞检测HLA-DR。
图11 为分离脐带血干细胞流程图
具体实施方式
实施例1
1、包被基质胶:原代制备包被比例:1:50。取4个T75培养瓶每个加100ul stemcell基质胶(#07130)和4.9 ml PBS。轻柔混匀后25℃包被时间3小时。
2、脐带的处理:在GMP实验室,上海力申科学仪器有限公司生物安全柜(HFsafe1200LC)中进行操作,新鲜健康脐带,总长度25cm,取1cm长,用75%酒精冲洗一次,0.9%氯化钠注射液冲洗两次去除残留血液;沿脐静脉剪开脐带,用止血钳及剪刀剔去1根脐静脉、2根脐动脉,用0.9%氯化钠注射液冲洗两次,用剪刀剪碎成1mm3大小组织块,应用5ml浓度为2mg/L索莱宝胶原酶消化组织后应用BD公司流式细胞仪检测,CD105表达98%认定为合格脐带,进行下一步制备;
2)上述脐带取5cm长短,同上处理为碎成1mm3大小组织块,用stem cell干细胞完全培养液悬浮组织块,平均分配到4个T75培养瓶中;(T75培养瓶终体积12ml);
6)将培养瓶放入37℃、5%二氧化碳培养箱中;
三、培养5天进行半量换液,取出5ml培养液,加入5ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
四、培养10天进行全量换液,加入12ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
五、14天处理原代细胞。细胞传代:
1)包被基质胶:每个T75培养瓶加5 ml PBS,67 ulstemcell基质胶(#07130);
2)收集原代培养液及组织块,用生理盐水清洗2次T75培养瓶后,加入3ml stemcell酶解液(#05427),37℃孵育2分钟,加入3ml 酶抑制液(#05428),加入10ml完全培养液冲洗细胞,收集至50ml离心管,离心285g,10分钟;
3)加入20mlstem cell干细胞完全培养液,轻柔混匀后计数细胞,调整细胞浓度为:T75cm2 1.5*105/瓶,终体积12ml;
六、干细胞的冻存:
干细胞消化清洗步骤同上,计数细胞共4.47×107/L,台盼蓝染色计数活率99.8%,离心清洗后应用BD公司的流式细胞仪(FACSVia)测量表型:CD105 98.5%;CD90 99.9%;CD7398.3%;CD45 3.7%;CD34 2.4%;CD11 4.1%;HLA-DR 4.2%。
用stemcell CS10冻存液(#07959)6毫升悬浮细胞,调整细胞浓度为1.1×107/ml,标记冻存管。使用Thermo程序降温仪7451对细胞进行程序降温后储存于Thermo液氮高效液氮储存罐(20782183)的摄氏-196度的气相中。

Claims (6)

1.一种无动物源性脐带间充质干细胞的培养方法,其特征在于所述工艺包括以下培养步骤:
一、包被基质胶:
1)包被比例:
原代制备包被比例:1:50,每个T75培养瓶加100ulstemcell基质胶(#07130);4.9 mlPBS;
P1、P2传代包被比例:1:75;
2)包被时间:
轻柔混匀后15-25℃包被时间大于2小时,使用前倒掉基质胶,用PBS或生理盐水轻柔冲次一次;
二、脐带的选择和处理:
1)新鲜健康脐带,取1cm长,用75%酒精冲洗一次,0.9%氯化钠注射液冲洗两次去除残留血液;沿脐静脉剪开脐带,用止血钳及剪刀剔去1根脐静脉、2根脐动脉,用0.9%氯化钠注射液浸洗两次,用剪刀剪碎成1mm3大小组织块,应用5ml浓度为2mg/L索莱宝胶原酶消化组织后应用BD公司流式细胞仪检测,CD105表达大于95%认定为合格脐带,进行下一步制备;
2)经检测合格的脐带,取5cm长短,同上处理为碎成1mm3大小组织块,用stem cell干细胞完全培养液悬浮组织块,平均分配到T75培养瓶中;(T75培养瓶终体积12ml) ;
6)将培养瓶放入37℃、5%二氧化碳培养箱中;
三、培养5天进行半量换液,取出5ml培养液,加入5ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
四、培养10天进行全量换液,加入12ml预温的培养液,避免碰到贴壁组织块;
五、14天处理原代细胞;
细胞传代:
1)包被基质胶:每个T75培养瓶加5 ml PBS,67 ulstemcell基质胶(#07130);
2)收集原代培养液及组织块,用生理盐水浸洗2次T75培养瓶后,加入3ml stemcell酶解液(#05427),37℃ 孵育2-3分钟,加入3ml 酶抑制液(#05428),加入10ml完全培养液浸洗细胞,收集至50ml离心管,离心285g,10分钟;
3)加入20mlstem cell干细胞完全培养液,轻柔混匀后计数细胞,调整细胞浓度为:T75cm2 1-1.5*105/瓶,终体积10-12ml;
六、干细胞的冻存:
干细胞消化清洗步骤同上,计数细胞,台盼蓝染色计数活率,离心清洗后应用BD公司的流式细胞仪(FACSVia)测量表型,表型合格细胞用stemcell CS10冻存液(#07959)悬浮细胞,调整细胞浓度为5-10×106/ml,标记冻存管;
使用Thermo程序降温仪7451对细胞进行程序降温后储存于Thermo液氮高效液氮储存罐(20782183)的摄氏-196度的气相中。
2.如权利要求1所述的脐带间充质干细胞培养方法,其特点在于正式培养前对脐带进行选择,提高制备合格率,减少制备成本。
3.步骤二中冻存的脐带间充质干细胞建立供者健康信息资料数据库、干细胞资料库,配条形码。
4.如权利要求1所述的脐带间充质干细胞培养方法,其特征在于无动物源性,收集的细胞包括P2及P3。
5.如权利要求1所述的脐带间充质干细胞培养方法,其特征在于应用程序降温仪,提高细胞复苏率。
6.如权利要求1所述的脐带间充质干细胞培养方法,其特征在于所有操作均处于GMP实验中中进行。
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Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040023324A1 (en) * 2000-08-25 2004-02-05 Seiji Sakano Stem cell culture medium and culture method by using the same
KR20080007726A (ko) * 2006-07-18 2008-01-23 포천중문의과대학교 산학협력단 제대혈 유래 중간엽 줄기세포의 체외 배양방법
WO2013022447A1 (en) * 2011-08-10 2013-02-14 Advanced Technologies And Regenerative Medicine, Llc Treatment of peripheral vascular disease using umbilical cord tissue-derived cells
CN103396990A (zh) * 2013-08-22 2013-11-20 顺昊细胞生物技术(天津)有限公司 一种制备间充质干细胞的方法
CN103555665A (zh) * 2013-08-12 2014-02-05 北京东方华辉生物医药科技有限公司 一种用于培养间充质干细胞的无血清培养基
CN103589683A (zh) * 2013-08-12 2014-02-19 北京东方华辉生物医药科技有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法和培养方法
CN103695369A (zh) * 2013-12-31 2014-04-02 章毅 脐带间充质干细胞体外培养和扩增方法
CN105524877A (zh) * 2014-09-29 2016-04-27 四川新生命干细胞科技股份有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法
CN105602893A (zh) * 2015-12-28 2016-05-25 上海吉泉生物技术有限公司 一种无血清培养脐带间充质干细胞方法及应用
CN106222135A (zh) * 2016-07-28 2016-12-14 浙江省人民医院 一种快速获得和纯化人脐带间充质干细胞的方法
CN110257327A (zh) * 2019-06-27 2019-09-20 重庆市细胞生物工程技术有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离培养方法
CN110551684A (zh) * 2019-09-16 2019-12-10 福建省海西细胞生物工程有限公司 一种人脐带间充质干细胞制备方法
CN110804585A (zh) * 2019-11-19 2020-02-18 武汉济源高科技有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法
CN110872574A (zh) * 2019-11-06 2020-03-10 山西大学 一种高效可靠的hESC-MSC制备方法
CN116211891A (zh) * 2021-12-02 2023-06-06 辽宁医学诊疗科技研发中心有限公司 一种人间充质干细胞条件培养液冻干粉制剂及其制备方法

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040023324A1 (en) * 2000-08-25 2004-02-05 Seiji Sakano Stem cell culture medium and culture method by using the same
KR20080007726A (ko) * 2006-07-18 2008-01-23 포천중문의과대학교 산학협력단 제대혈 유래 중간엽 줄기세포의 체외 배양방법
WO2013022447A1 (en) * 2011-08-10 2013-02-14 Advanced Technologies And Regenerative Medicine, Llc Treatment of peripheral vascular disease using umbilical cord tissue-derived cells
CN103555665A (zh) * 2013-08-12 2014-02-05 北京东方华辉生物医药科技有限公司 一种用于培养间充质干细胞的无血清培养基
CN103589683A (zh) * 2013-08-12 2014-02-19 北京东方华辉生物医药科技有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法和培养方法
CN103396990A (zh) * 2013-08-22 2013-11-20 顺昊细胞生物技术(天津)有限公司 一种制备间充质干细胞的方法
CN103695369A (zh) * 2013-12-31 2014-04-02 章毅 脐带间充质干细胞体外培养和扩增方法
CN105524877A (zh) * 2014-09-29 2016-04-27 四川新生命干细胞科技股份有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法
CN105602893A (zh) * 2015-12-28 2016-05-25 上海吉泉生物技术有限公司 一种无血清培养脐带间充质干细胞方法及应用
CN106222135A (zh) * 2016-07-28 2016-12-14 浙江省人民医院 一种快速获得和纯化人脐带间充质干细胞的方法
CN110257327A (zh) * 2019-06-27 2019-09-20 重庆市细胞生物工程技术有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离培养方法
CN110551684A (zh) * 2019-09-16 2019-12-10 福建省海西细胞生物工程有限公司 一种人脐带间充质干细胞制备方法
CN110872574A (zh) * 2019-11-06 2020-03-10 山西大学 一种高效可靠的hESC-MSC制备方法
CN110804585A (zh) * 2019-11-19 2020-02-18 武汉济源高科技有限公司 一种脐带间充质干细胞的分离方法
CN116211891A (zh) * 2021-12-02 2023-06-06 辽宁医学诊疗科技研发中心有限公司 一种人间充质干细胞条件培养液冻干粉制剂及其制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
李铎;石钏;洪敬欣;孟恒星;韩俊领;张宇光;: "组织块法分离人脐带间充质干细胞的研究", 中国医药导报, no. 24, pages 19 - 22 *
程文广;罗高兴;黄正根;贺伟峰;袁顺宗;陈希炜;吴军;: "人脐带血间充质干细胞体外分离培养及生物学特性研究", 现代生物医学进展, no. 03, pages 34 - 36 *
青莹;黄梦琦;石琦;曹颖光;宋珂;: "人脐带间充质干细胞分离培养及鉴定的相关研究", 临床口腔医学杂志, no. 04, pages 198 - 202 *

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