CN110092809B - 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 - Google Patents
一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN110092809B CN110092809B CN201910516881.5A CN201910516881A CN110092809B CN 110092809 B CN110092809 B CN 110092809B CN 201910516881 A CN201910516881 A CN 201910516881A CN 110092809 B CN110092809 B CN 110092809B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ethyl acetate
- silica gel
- gel column
- column chromatography
- carrying
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07J—STEROIDS
- C07J9/00—Normal steroids containing carbon, hydrogen, halogen or oxygen substituted in position 17 beta by a chain of more than two carbon atoms, e.g. cholane, cholestane, coprostane
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
本发明公开了一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:粗提物的制备:巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.04‑0.06MPa、温度为40‑60℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/10‑1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;常压硅胶柱层析,再次常压硅胶柱层析,第三次常压硅胶柱层析,凝胶柱层析,重结晶。本发明底物廉价易得,工艺简单易行,生产过程环保。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体来说涉及一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法。
背景技术
β-谷甾醇(β-sitosterol)是植物甾醇的主要成分之一,属于四环三帖类化合物,在常温下为白色晶体粉末,无臭无味,熔点可达130—140℃,不溶于水,在一定的有机溶剂中可以溶解,并具有较高的营养价值与生物活性,被广泛应用于医药、食品、保健品及化妆品等领域。近年的研究表明,β-谷甾醇具有明显地降胆固醇、止咳、抗癌、抗炎、抗氧化、防治高血压等药理作用,其分离方法主要有化学法和物理法。化学法存在反应步骤繁琐、操作难度大、成本高且回收率低等缺陷,不能达到理想的分离结果,因而难以实现规模化的工业生产;主要应用的物理法有分子蒸馏法、高效液相法、吸附法、溶剂结晶法等,其中溶剂结晶法具有操作简便、工艺流程短简单、产品纯度高、溶剂易于回收、适合工业化生产等优点,但仅适合溶解度随温度变化不大的物质。
发明内容
本发明的目的在于克服上述缺点而提供的一种底物廉价易得,工艺简单易行,生产过程环保的利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法。
本发明目的及解决其主要技术问题是采用以下技术方案来实现的:
本发明的一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.04-0.06MPa、温度为40-60℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/10-1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;
(2)常压硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,与40-80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,70℃水浴挥干乙酸乙酯后上样,在已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱层析;用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,乙酸乙酯:甲醇=30:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%甲醇进行梯度洗脱,流速为10-20 mL/min,分段收集洗脱液,通过薄层层析色谱(TLC)分析,Rf值、5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液显色综合判断,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩液;
(3)再次常压硅胶柱层析
浓缩液进行抑菌活性测定,其中对青枯雷尔氏菌活性抑菌率为75%-85%的浓缩液再次进行常压硅胶柱层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=30:1、10:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩组分;
(4)第三次常压硅胶柱层析
浓缩组分又再次进行硅胶层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=5:1、2:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得目标粗品;
(5)凝胶柱层析
将目标粗品先用体积比为1:1的氯仿与甲醇溶液溶解,然后进行葡聚糖凝胶柱层析,用体积比为氯仿:纯甲醇=1:1的氯甲溶液反复洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,其中洗脱组分中有肉眼可见的白色晶体析出;
(6)重结晶
对洗脱组分析出得到的白色晶体,采用重结晶的方法纯化,得到β-谷甾醇。
上述的一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,其中:巨大芽孢杆菌为巨大芽孢杆菌L2(Bacillus megaterium L2),已于2012年9月26日保藏在中国典型培养物保藏中心(地址:中国 武汉 武汉大学),保藏号为:CCTCC NO:M2012381。
本发明与现有技术相比,具有明显的有益效果,从以上技术方案可知:本发明利用巨大芽孢杆菌L2菌体制备β-谷甾醇,巨大芽孢杆菌L2(Bacillus megaterium L2)菌株来源可靠,对温度、pH等自然环境条件的适应范围广,容易培养和保存,该技术生产操作简单,对环境友好。
附图说明
图1是实施例1提取的β-谷甾醇的1H NMR谱图;
图2是实施例2提取的β-谷甾醇的13C-NMR谱图。
具体实施方式
实施例1:
一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.04MPa、温度为40℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/10后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;
(2)常压硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,水浴(70℃)挥干乙酸乙酯后上样,在已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱层析;用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,乙酸乙酯:甲醇=30:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%甲醇进行梯度洗脱,流速为10 mL/min,收集洗脱液,通过薄层层析色谱(TLC)分析,Rf值、5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液显色综合判断,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩液;
(3)再次常压硅胶柱层析
浓缩液进行抑菌活性测定,其中对青枯雷尔氏菌活性抑菌率为75%的浓缩液又进行常压硅胶柱层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=30:1、10:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩组分;
(4)第三次常压硅胶柱层析
浓缩组分又再次进行硅胶层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=5:1、2:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得目标粗品;
(5)凝胶柱层析
将目标粗品先用体积比为1:1的氯仿与甲醇溶液溶解,然后进行葡聚糖凝胶柱层析,用体积比为氯仿:纯甲醇=1:1的氯甲溶液反复洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,其中洗脱组分中有肉眼可见的白色晶体析出;
(6)重结晶
对洗脱组分析出得到的白色晶体,采用重结晶的方法纯化,得到β-谷甾醇。
实施例2:
一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.05MPa、温度为50℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/8后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;
(2)常压硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,与60目硅胶按体积比为1:1.2拌样,水浴(70℃)挥干乙酸乙酯后上样,在已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱层析;用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,乙酸乙酯:甲醇=30:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1 ,100%甲醇进行梯度洗脱,流速为15 mL/min,收集洗脱液,通过薄层层析色谱(TLC)分析,Rf值、5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液显色综合判断,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩液;
(3)再次常压硅胶柱层析
浓缩液进行抑菌活性测定,其中对青枯雷尔氏菌活性抑菌率为80%的浓缩液又进行常压硅胶柱层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=30:1、10:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩组分;
(4)第三次常压硅胶柱层析
浓缩组分又再次进行硅胶层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=5:1、2:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得目标粗品;
(5)凝胶柱层析
将目标粗品先用体积比为1:1的氯仿与甲醇溶液溶解,然后进行葡聚糖凝胶柱层析,用体积比为氯仿:纯甲醇=1:1的氯甲溶液反复洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,其中洗脱组分中有肉眼可见的白色晶体析出;
(6)重结晶
对洗脱组分析出得到的白色晶体,采用重结晶的方法纯化,得到β-谷甾醇。
实施例3:
一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.06MPa、温度为60℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;
(2)常压硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,与80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,水浴(70℃)挥干乙酸乙酯后上样,在已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱层析;用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,乙酸乙酯:甲醇=30:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1 ,100%甲醇进行梯度洗脱,流速为10 mL/min,收集洗脱液,通过薄层层析色谱(TLC)分析,Rf值、5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液显色综合判断,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩液;
(3)再次常压硅胶柱层析
浓缩液进行抑菌活性测定,其中对青枯雷尔氏菌活性抑菌率为85%的浓缩液又进行常压硅胶柱层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=30:1、10:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩组分;
(4)第三次常压硅胶柱层析
浓缩组分又再次进行硅胶层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=5:1、2:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得目标粗品;
(5)凝胶柱层析
将目标粗品先用体积比为1:1的氯仿与甲醇溶液溶解,然后进行葡聚糖凝胶柱层析,用体积比为氯仿:纯甲醇=1:1的氯甲溶液反复洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,其中洗脱组分中有肉眼可见的白色晶体析出;
(6)重结晶
对洗脱组分析出得到的白色晶体,采用重结晶的方法纯化,得到β-谷甾醇。
试验例:
巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium L2)提取物β-谷甾醇的鉴定:
①样品的准备
取0.5 mL氯仿溶解实施例1、2所得白色针晶物纯样品,转入核磁管进行NMR扫描,得到1H-NMR(参见图1)、13C-NMR谱图(参见图2)。
②NMR分析条件
核磁共振:采用ID-PFG探头,扫描宽度(sw)16.0 ppm,中心频率(O1P):4.9 ppm;脉冲序列s1pul;时间域数据点(td):32 K;测定温度:303 K;延迟时间(dl):20 s;采样次数(ns):32次;窗函数(lh):0.3 Hz。
③结论:通过NMR检测,从巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium L2)菌体分离提取得到的样品Rf值与标准品一致,该单体化合物为β-谷甾醇(β-sitosterol)。结果见图1、2,1H-NMR ( 500 MHz, CDCl3 ) δ: 5.30 ( 1H, br.d, H-6 ), 3.65 ( 1H, m, H-3 ),0.96 ( 3H, s, H-19 ), 0.88 ( 3H, d, J = 6.6 Hz, H-21 ), 0.82 ( 3H, t, J = 7.5Hz, H-29 ), 0.80 ( 3H, d, J = 6.8 Hz, H-27 ), 0.77 ( 3H, d, J = 6.8 Hz, H-26 ), 0.64 ( 3H, s, H-18 ); 13C-NMR ( 125 MHz, CDCl3 ) δ: 37.2 ( C-1 ), 31.4( C-2 ), 71.6 ( C-3 ), 42.1 ( C-4 ), 140.8 ( C-5 ), 121.6 ( C-6 ), 31.8 (C-7 ), 31.8 ( C-8 ), 50.0 ( C-9 ), 36.4 ( C-10 ), 21.0 ( C-11 ), 39.7 ( C-12 ), 42.2 ( C-13 ), 56.7 ( C-14 ), 24.2 ( C-15 ), 28.2 ( C-16 ), 55.9 (C-17 ), 11.8 ( C-18 ), 19.3 ( C-19 ), 36.1 ( C-20 ), 18.9 ( C-21 ), 33.8 ( C-22 ), 29.0 ( C-23 ), 45.7 ( C-24 ), 25.9 ( C-25 ), 18.7 ( C-26 ), 19.7 (C-27 ), 23.0 ( C-28 ), 11.8 ( C-29 )。故鉴定为β-谷甾醇。
以上所述,仅是本发明的较佳实施例而已,并非对本发明作任何形式上的限制,任何未脱离本发明技术方案内容,依据本发明的技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、等同变化与修饰,均仍属于本发明技术方案的范围内。
Claims (1)
1.一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
巨大芽孢杆菌菌体细胞经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:3的菌粉与乙醇,在压力为0.04-0.06MPa、温度为40-60℃下回流提取3次,时间为每次4h,得巨大芽孢杆菌提取液,减压浓缩至总体积的1/10-1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的乙酸乙酯萃取得上层乙酸乙酯萃取液,再经减压浓缩至乙酸乙酯挥干,得粗提物;
(2)常压硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,与40-80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,70℃水浴挥干乙酸乙酯后上样,在已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱层析;用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,乙酸乙酯:甲醇=30:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%甲醇进行梯度洗脱,流速为10-20 mL/min,分段收集洗脱液,通过薄层层析色谱(TLC)分析,Rf值、5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液显色综合判断,合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩液;
(3)再次常压硅胶柱层析
浓缩液进行抑菌活性测定,其中对青枯雷尔氏菌活性抑菌率为75%-85%的浓缩液再次进行常压硅胶柱层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=30:1、10:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得浓缩组分;
(4)第三次常压硅胶柱层析
浓缩组分又再次进行硅胶层析,用100%石油醚,体积比为100%石油醚:乙酸乙酯=5:1、2:1,100%甲醇进行梯度洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,得目标粗品;
(5)凝胶柱层析
将目标粗品先用体积比为1:1的氯仿与甲醇溶液溶解,然后进行葡聚糖凝胶柱层析,用体积比为氯仿:纯甲醇=1:1的氯甲溶液反复洗脱,收集洗脱液,经TLC色谱和显色分析后合并相同组分的洗脱液,其中洗脱组分中有肉眼可见的白色晶体析出;
(6)重结晶
对洗脱组分析出得到的白色晶体,采用重结晶的方法纯化,得到β-谷甾醇;
其中:巨大芽孢杆菌为巨大芽孢杆菌L2,保藏号为:CCTCC NO:M2012381。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910516881.5A CN110092809B (zh) | 2019-06-14 | 2019-06-14 | 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201910516881.5A CN110092809B (zh) | 2019-06-14 | 2019-06-14 | 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN110092809A CN110092809A (zh) | 2019-08-06 |
CN110092809B true CN110092809B (zh) | 2021-06-11 |
Family
ID=67450968
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201910516881.5A Active CN110092809B (zh) | 2019-06-14 | 2019-06-14 | 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN110092809B (zh) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110343032B (zh) * | 2019-08-31 | 2022-01-04 | 贵州大学 | 一种分离提取5-十五烷基间苯二酚的方法 |
CN110511260A (zh) * | 2019-08-31 | 2019-11-29 | 贵州大学 | 一种提取β-谷甾醇的方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2213112A1 (en) * | 1997-08-14 | 1999-02-14 | Fytokem Products Inc. | Non-chromatographic process for selective crystallization of vegetable steroids |
CN101475459A (zh) * | 2009-01-22 | 2009-07-08 | 浙江林学院 | 一种从山核桃外果皮中提取球松素及β-谷甾醇的方法 |
CN103740799A (zh) * | 2014-01-21 | 2014-04-23 | 华东理工大学 | 一种生物转化植物甾醇制备甾体药物中间体的方法 |
CN108004277A (zh) * | 2018-01-24 | 2018-05-08 | 贵州大学 | 一种利用巨大芽孢杆菌制备亚油酸的方法 |
-
2019
- 2019-06-14 CN CN201910516881.5A patent/CN110092809B/zh active Active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2213112A1 (en) * | 1997-08-14 | 1999-02-14 | Fytokem Products Inc. | Non-chromatographic process for selective crystallization of vegetable steroids |
CN101475459A (zh) * | 2009-01-22 | 2009-07-08 | 浙江林学院 | 一种从山核桃外果皮中提取球松素及β-谷甾醇的方法 |
CN103740799A (zh) * | 2014-01-21 | 2014-04-23 | 华东理工大学 | 一种生物转化植物甾醇制备甾体药物中间体的方法 |
CN108004277A (zh) * | 2018-01-24 | 2018-05-08 | 贵州大学 | 一种利用巨大芽孢杆菌制备亚油酸的方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
Development of patchouli extraction with quality control and isolation of active compounds with antibacterial activity;Kongkathip, N.a;《Kasetsart Journal - Natural Science》;20091231;第43卷(第3期);519-525 * |
巨大芽孢杆菌L2粗提物的抑菌效果及其抑菌成分分析;吉玉玉;《中国酿造》;20190325;第38卷(第3期);第120-124页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN110092809A (zh) | 2019-08-06 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Liang et al. | Rapid determination of eight bioactive alkaloids in Portulaca oleracea L. by the optimal microwave extraction combined with positive–negative conversion multiple reaction monitor (+/− MRM) technology | |
CN110092809B (zh) | 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法 | |
CN110407847B (zh) | 一种从土曲霉中获得的azaphilones类化合物及其制备和应用 | |
CN109705188B (zh) | 青龙衣中一种三萜类化合物及其制备方法与应用 | |
CN108395464B (zh) | 一种从积雪草出发制备积雪草苷、羟基积雪草苷和积雪草苷b的方法 | |
Fang et al. | Large-scale separation of alkaloids from Gelsemium elegans by pH-zone-refining counter-current chromatography with a new solvent system screening method | |
CN103088083A (zh) | 抗炎、抗肿瘤活性倍半萜内酯类化合物的制备方法 | |
CN110818669A (zh) | 沉香四氢2-(2-苯乙基)色酮类化合物及其分离方法和应用 | |
CN104277090B (zh) | 金花茶皂苷a标准品及其制备方法 | |
CN109400665B (zh) | 从毛冬青中制备四种三萜类化合物对照品的方法 | |
CN112028959A (zh) | 无柄灵芝中具有抗糖尿病活性的三萜化合物的制备方法及应用 | |
CN114380885B (zh) | 小花清风藤中2种三萜类化合物及其制备方法 | |
CN110511260A (zh) | 一种提取β-谷甾醇的方法 | |
CN103467556B (zh) | 一种肉桂酸植物甾醇酯的制备方法 | |
CN110790777B (zh) | 一种长春新碱类化合物杂质及其制备方法与应用 | |
CN104119419B (zh) | 一种从野棉花叶中提取三萜皂苷类化合物的制备方法 | |
Bao et al. | Preparative separation of structural isomeric pentacyclic triterpenes from Eriobotrya japonica (Thunb.) leaves by high speed countercurrent chromatography with hydroxypropyl-β-cyclodextrin as additive | |
CN102532243A (zh) | 一种同时制备野蔷薇苷和蔷薇苷化合物的方法 | |
CN110343032B (zh) | 一种分离提取5-十五烷基间苯二酚的方法 | |
CN102584772A (zh) | 一种赭曲霉毒素b的制备方法 | |
CN108864240A (zh) | 地塞米松环氧水解物的提纯方法 | |
CN110467554B (zh) | 一种丁二酰亚胺的生物制备方法 | |
CN110526925A (zh) | 一种25β-仲丁烯基-23β-异丁酰氧基米尔贝霉素衍生物的分离方法及其应用 | |
CN111635450B (zh) | 鸡蛋花中具有抗糖尿病活性的化合物及其制备方法 | |
CN113307837B (zh) | 一种桦褐孔菌三萜类单体化合物的分离纯化方法及应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |