CN110511260A - 一种提取β-谷甾醇的方法 - Google Patents

一种提取β-谷甾醇的方法 Download PDF

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李祝
郭堃
肖洋
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Abstract

本发明公开了一种提取β‑谷甾醇的方法,包括:黑曲霉经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,菌粉与丙酮,回流提取得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩、石油醚萃取,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;硅胶柱层析;再次硅胶柱层析;再次硅胶柱层析,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干;选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3‑0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β‑谷甾醇。本发明底物廉价易得,提取工艺简单、易行,生产过程环保、溶剂残留少、污染低、培养基质容易获得。

Description

一种提取β-谷甾醇的方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体来说涉及一种提取β-谷甾醇的方法。
背景技术
β-谷甾醇(β-sitosterol),是一种常用的医疗原料和保健产品,在降低胆固醇,抑制肿瘤,防治前列腺肥大有重要的作用。有研究表明,β-谷甾醇可通过从植物油脂中分离出来的植物甾醇中进行分离提纯,对人类疾病预防和治疗中具有重要的作用。文献报道β-谷甾醇的提纯方法主要有用乙酸酐将植物甾醇进行酯化反应,后用过量溴溴化,分离提纯,脱溴后进行重结晶可得到甾醇混合物,使用高速逆流色谱法或用特殊溶剂多步萃取后重结晶的方法,但因其生产工艺和设备条件的限制导致其较难分离,且反应步骤多,成本高,溶剂回收率低等特点,从而使得在真正大规模生产中遇到很多困难,增加了产品的成本,降低了产品的价值和竞争力。
发明内容
本发明的目的在于克服上述缺点而提供的一种底物廉价易得,提取工艺简单、易行,生产过程环保、溶剂残留少、污染低、培养基质容易获得的提取β-谷甾醇的方法。
本发明目的及解决其主要技术问题是采用以下技术方案来实现的:
本发明的一种提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
黑曲霉经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:5的菌粉与丙酮,在一个标准大气压下、温度为40-60℃下回流提取3次,每次3h,得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩至总体积的1/10-1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的石油醚萃取得石油醚萃取液,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;
(2)硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,用40~80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干乙酸乙酯后上样在已制备好的200~300目硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;洗脱梯度为100%石油醚,石油醚:丙酮=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%丙酮等比例洗脱,流速为10~20ml/min,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩液;
(3)再次硅胶柱层析
收集石油醚:丙酮=10:1-2:1体系的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,用乙酸乙酯溶解浓缩液后与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20-25ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=10:1,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩组分;
(4)再次硅胶柱层析
通过(3)收集得到的各个浓缩组分在薄层层析上的分析结果,选择在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分继续进行硅胶柱层析,用乙酸乙酯溶解浓缩液后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20-25ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=6:1,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干。
(5)重结晶
选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β-谷甾醇。
上述提取β-谷甾醇的方法,其中:黑曲霉为黑曲霉xj(Aspergillus niger xj),已于2006年3月7日保藏在中国典型培养物保藏中心(地址:中国 武汉 武汉大学),保藏号为:CCTCC NO:M206021。
本发明与现有技术相比,具有明显的有益效果,从以上技术方案可知:本发明通过丙酮回流提取黑曲霉孢子粉,然后于石油醚萃取段经过有目的的分离程序,通过不同薄层色谱层析的结果分析可针对β-谷甾醇进行分离,能够为β-谷甾醇原料来源提供一条新途径。且黑曲霉(Aspergillus niger xj)菌株来源可靠,对温度、pH等自然环境条件的适应范围广,容易培养和保存,可作为提取β-谷甾醇的菌株。该技术生产成本低,分离提取方法操作简单,重复性好,溶剂残留少且易回收,减少了能源的消耗和废气的排放,大大降低了环境污染。
附图说明
图1是实施例1提取的β-谷甾醇EI-MS质谱分析图;
图2是实施例2提取的β-谷甾醇的1H NMR谱图;
图3是实施例3提取的β-谷甾醇的13C-NMR谱图;
具体实施方式
实施例1:
一种提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
黑曲霉xj(Aspergillus niger xj),保藏号为:CCTCC NO:M206021。经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:5的菌粉与丙酮,在一个标准大气压下、温度为60℃下回流提取3次,每次3h,得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩至总体积的1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的石油醚萃取得石油醚萃取液,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;
(2)硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,用40~80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干乙酸乙酯后上样在已制备好的200-300目硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;洗脱梯度为100%石油醚,石油醚:丙酮=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%丙酮等比例洗脱,流速为15ml/min,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩液;
(3)再次硅胶柱层析
收集石油醚:丙酮=10:1-2:1体系的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,用乙酸乙酯溶解浓缩液后与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=10:1,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩组分;
(4)再次硅胶柱层析
通过(3)收集得到的各个浓缩组分在薄层层析上的分析结果,选择在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分继续进行硅胶柱层析,用乙酸乙酯溶解浓缩液后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=6:1,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干。
(5)重结晶
选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β-谷甾醇。
实施例2:
一种提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
黑曲霉xj(Aspergillus niger xj),保藏号为:CCTCC NO:M206021。经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:5的菌粉与丙酮,在一个标准大气压下、温度为50℃下回流提取3次,每次3h,得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩至总体积的1/6后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的石油醚萃取得石油醚萃取液,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;
(2)硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,用40~80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干乙酸乙酯石油醚后上样在已制备好的200-300目硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;洗脱梯度为100%石油醚,石油醚:丙酮=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%丙酮等比例洗脱,流速为18ml/min,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩液;
(3)再次硅胶柱层析
收集石油醚:丙酮=10:1-2:1体系的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,用乙酸乙酯溶解浓缩液后与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为22ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=10:1,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩组分;
(4)再次硅胶柱层析
通过(3)收集得到的各个浓缩组分在薄层层析上的分析结果,选择在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分继续进行硅胶柱层析,用乙酸乙酯溶解浓缩液后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为23ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=6:1,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干。
(5)重结晶
选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β-谷甾醇。
实施例3:
一种提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
黑曲霉xj(Aspergillus niger xj),保藏号为:CCTCC NO:M206021。经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:5的菌粉与丙酮,在一个标准大气压下、温度为55℃下回流提取3次,每次3h,得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩至总体积的1/8后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的石油醚萃取得石油醚萃取液,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;
(2)硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,用40~80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干乙酸乙酯后上样在已制备好的200-300目硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;洗脱梯度为100%石油醚,石油醚:丙酮=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%丙酮等比例洗脱,流速为16ml/min,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩液;
(3)再次硅胶柱层析
收集石油醚:丙酮=10:1-2:1体系的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,用乙酸乙酯溶解浓缩液后与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为21ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=10:1,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩组分;
(4)再次硅胶柱层析
通过(3)收集得到的各个浓缩组分在薄层层析上的分析结果,选择在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分继续进行硅胶柱层析,用乙酸乙酯溶解浓缩液后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为24ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=6:1,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干。
(5)重结晶
选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β-谷甾醇。
试验例:β-谷甾醇的鉴定:
①样品的准备
取实施例1-3制得的物质用氯仿溶解后,采用EI-MS进行波谱解析分析,并取25mg实施例1-3制得的物质用0.5ml氘代氯仿溶解,转入核磁管进行NMR扫描,得到氢谱碳谱图。
②EI-MS分析条件
质谱条件:质谱条件:离子源为EI源;离子源温度230℃;四极杆温度150℃;电子能量70eV;发射电流34.6μA;倍增器电压1482V;接口温度280℃;质量范围29~500amu。溶剂延迟时间:5min。
③NMR分析条件
核磁共振:采用ID-PFG探头,扫描宽度(sw)16.0 ppm,中心频率(O1P):4.9 ppm;
脉冲序列s1pul;时间域数据点(td):32 K;测定温度:303 K;延迟时间(dl):20 s;采样次数(ns):32次;窗函数(lh):0.3 Hz。
④结论
通过EI-MS与NMR检测,从黑曲霉xj(Aspergillus niger xj)菌体分离提取得到的样品EI-MS显示为β-谷甾醇(β-sitosterol),经氢谱碳谱鉴定为β-谷甾醇,结果见图1、图2、图3。
以上所述,仅是本发明的较佳实施例而已,并非对本发明作任何形式上的限制,任何未脱离本发明技术方案内容,依据本发明的技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、等同变化与修饰,均仍属于本发明技术方案的范围内。

Claims (2)

1. 一种提取β-谷甾醇的方法,包括以下步骤:
(1)粗提物的制备
黑曲霉经麦麸发酵收集孢子粉后经喷雾干燥制成菌粉备用,质量比为1:5的菌粉与丙酮,在一个标准大气压下、温度为40-60℃下回流提取3次,每次3h,得黑曲霉孢子粉提取液,减压浓缩至总体积的1/10-1/5后加等体积的水溶解,水溶液与等体积的石油醚萃取得石油醚萃取液,再经减压浓缩至石油醚挥干,得粗提物;
(2)硅胶柱层析
将粗提物用等体积乙酸乙酯溶解后,用40~80目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干乙酸乙酯后上样在已制备好的200~300目硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;洗脱梯度为100%石油醚,石油醚:丙酮=100:1、50:1、20:1、10:1、5:1、2:1、1:1,100%丙酮等比例洗脱,流速为10~20ml/min,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩液;
(3)再次硅胶柱层析
收集石油醚:丙酮=10:1-2:1体系的洗脱液,减压浓缩至有机溶剂挥干,用乙酸乙酯溶解浓缩液后与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20-25ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=10:1,通过薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干,得不同浓缩组分;
(4)再次硅胶柱层析
通过(3)收集得到的各个浓缩组分在薄层层析上的分析结果,选择在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分继续进行硅胶柱层析,用乙酸乙酯溶解浓缩液后,与40目硅胶按体积比为1:1.2拌样,同时水浴挥干溶剂,上样于已制备好的硅胶层析柱上进行常压硅胶柱洗脱;流速为20-25ml/min,洗脱体系为石油醚:乙酸乙酯=6:1,根据薄层层析色谱分析,观察5%的浓硫酸乙醇溶液和0.8%磷钼酸乙醇溶液的显色情况,选取物质成点情况和Rf值相同的流分合并,减压浓缩至有机溶剂挥干;
(5)重结晶
选取在石油醚:乙酸乙酯=5:1展开条件下Rf值在0.3-0.5的流分,在乙酸乙酯:甲醇=1:50的混合溶剂中进行重结晶,结晶后收集晶体即为β-谷甾醇。
2.如权利要求1所述的提取β-谷甾醇的方法,其中:黑曲霉为黑曲霉xj(Aspergillus niger xj),保藏号为:CCTCC NO:M206021。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112341513A (zh) * 2020-10-10 2021-02-09 湖南科技学院 一种从愉悦蓼中提取分离β-谷甾醇的方法
CN115716858A (zh) * 2022-11-10 2023-02-28 河南科技大学 一种从油用牡丹籽粕中提取活性化合物β-谷甾醇的方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108659088A (zh) * 2018-07-24 2018-10-16 贵州大学 一种利用黑曲霉分离提取胆甾-3,5-二烯-7-酮的方法
CN110092809A (zh) * 2019-06-14 2019-08-06 贵州大学 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108659088A (zh) * 2018-07-24 2018-10-16 贵州大学 一种利用黑曲霉分离提取胆甾-3,5-二烯-7-酮的方法
CN110092809A (zh) * 2019-06-14 2019-08-06 贵州大学 一种利用巨大芽孢杆菌分离提取β-谷甾醇的方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DAN LI 等: "Isolation, Purification, and Identification of Taxol and Related Taxanes from Taxol-Producing Fungus Aspergillus niger subsp. taxi", 《J. MICROBIOL. BIOTECHNOL.》 *
冉江: "黑曲霉抗菌活性组分分离及作用机制研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库农业科技辑》 *
张影珍: "猫儿屎内生真菌DS58次生代谢产物的研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库工程科技I辑》 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112341513A (zh) * 2020-10-10 2021-02-09 湖南科技学院 一种从愉悦蓼中提取分离β-谷甾醇的方法
CN112341513B (zh) * 2020-10-10 2024-05-03 湖南科技学院 一种从愉悦蓼中提取分离β-谷甾醇的方法
CN115716858A (zh) * 2022-11-10 2023-02-28 河南科技大学 一种从油用牡丹籽粕中提取活性化合物β-谷甾醇的方法
CN115716858B (zh) * 2022-11-10 2024-03-26 河南科技大学 一种从油用牡丹籽粕中提取活性化合物β-谷甾醇的方法

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