CN110079489A - 一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法 - Google Patents

一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB‑co‑4HB)的方法。所述重组盐单胞菌通过将编码4‑羟基丁酰辅酶A转移酶的基因、编码2‑酮戊二酸脱羧酶的基因、编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和编码4‑羟基丁酸脱氢酶的基因引入出发菌盐单胞菌中而得到。本发明的重组盐单胞菌能够利用4HB结构非相关碳源(如葡萄糖、甘油、脂肪酸等)合成P(3HB‑co‑4HB),从而无需添加相关碳源,降低P(3HB‑co‑4HB)的生产成本。

Description

一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法
技术领域
本发明涉及一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法,更具体而言,涉及一种能够实现非相关碳源生产P(3HB-co-4HB)的重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法。
背景技术
聚羟基脂肪酸酯(polyhydroxyalkanoates,PHAs)是一种可以由多种微生物菌株生产和积累的可降解聚合物,根据其组成单体的数目可分为均聚物和共聚物。PHA是一种环境友好型材料,有着广泛的应用前景,可以作为传统石油基塑料替代品。聚-3-羟基丁酸(poly-3-hydroxybutyrate,P3HB)是目前PHAs家族成员中研究的最为清楚的,但它的应用却受到自身性能的限制,如结晶度高、弹性低、柔韧度差等。
3-羟基丁酸-4-羟基丁酸共聚物(P(3HB-co-4HB))是由3-羟基丁酸(3HB)和4-羟基丁酸(4HB)两种单体随机排列组成,具有良好的生物降解性和生物相容性。P(3HB-co-4HB)还可以通过改变其4HB的摩尔分数来调整其物理、化学性能和医学特点,从而获得硬质结晶塑料或者柔软弹性橡胶聚合材料。因而,P(3HB-co-4HB)作为化学塑料的替代品之一备受关注。目前,P(3HB-co-4HB)有多种应用,例如气体过滤薄膜,药物载体,细胞支架等,而P(3HB-co-4HB)的生物合成和工业化生产对其广泛应用至关重要。
据研究报道,多种细菌可以利用结构相关碳源或者非相关碳源来合成P(3HB-co-4HB),其中,富养产碱菌(Ralstonia eutropha),贪铜菌属(Cupriavidus)和大肠杆菌(Escherichia coli)是目前研究的最为清楚的P(3HB-co-4HB)生产菌株,但在生产过程中需要加入4HB结构相关碳源4-羟基丁酸,γ-丁内酯等。1997年,经过代谢工程改造的大肠杆菌(Escherichia coli)第一次可以利用葡萄糖生产P(3HB-co-2.8mol%4HB)。
在大肠杆菌(Escherichia coli)中,可以通过敲除两种编码琥珀酸半醛脱氢酶(SSADH)的基因sad和gabD来优化4HB的合成通路,从而获得能够利用葡萄糖生产4HB摩尔分数含量较高的P(3HB-co-4HB);CRISPRi基因编辑工具可以直接在基因组上进行基因编辑,从而避免在生产时额外加入抗生素;加长的微生物细胞可以有更大的空间来积累PHA;这些技术的应用都可以获得较高的P(3HB-co-4HB)产量。然而,底物成本高、污染风险高、发酵过程复杂、4HB摩尔分数含量低等依然是P(3HB-co-4HB)产业化的瓶颈问题。因此,降低P(3HB-co-4HB)的生产成本,提高4HB摩尔分数是目前生产应用的两大关键因素。
CN102120973A公开的从新疆艾丁湖筛选出的嗜盐微生物盐单胞菌HalomonasTD01(保藏号为CGMCC No.4353),是一种PHA超级生产菌。它可以在高盐、高pH的条件下生长并积累PHA,从而实现在不灭菌的条件下进行连续发酵并持续高效地生产PHA。HalomonasTD01作为低成本生产PHAs的潜力菌株,可以作为许多产品的底盘菌株,如P3HB,PHBV,PhaR蛋白等。因此,用Halomonas TD01作为底盘菌株来进行P(3HB-co-4HB)的生产开发是非常有竞争力和必要的。
Halomonas TD01经基因改造可加添加相关碳源(如γ-丁内酯)的情况下合成P(3HB-co-4HB)(Chen,X.,Yin,J.,Ye,J.,Zhang,H.,Che,X.,Ma,Y.,Li,M.,Wu,L.P.,Chen,G.Q.,2017.Engineering Halomonas bluephagenesis TD01for non-sterile productionof poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate).Bioresour.Technol.,244,534-541),但是相关碳源的添加会给P(3HB-co-4HB)的生产带来额外成本。因此,目前重组盐单胞菌合成P(3HB-co-4HB),需要额外加入4HB结构相关碳源,带来额外的成本,且加入的4HB结构相关碳源对细胞生长有毒性,会影响细胞生长和PHA产量。因此,虽然盐单胞菌Halomonas TD01有潜力作为PHA的工业生产菌,但是野生型菌株无法合成更具有应用前景的P(3HB-co-4HB)。目前基因改造的盐单胞菌能够合成P(3HB-co-4HB),但均需通过额外添加相关碳源(如γ-丁内酯)来实现。因此,需要将Halomonas TD01改造为利用结构非相关碳源(如葡萄糖、甘油、脂肪酸等)直接生产P(3HB-co-4HB),而无需额外添加结构相关碳源。
发明内容
针对现有技术的问题,本发明人进行了广泛深入的研究,最终完成本发明。
本发明的一个目的是提供一种重组盐单胞菌,其能够利用4HB结构非相关碳源(如葡萄糖、甘油、脂肪酸等)合成P(3HB-co-4HB),从而无需添加相关碳源,降低P(3HB-co-4HB)的生产成本。
本发明的另一个目的是提供一种生产P(3HB-co-4HB)的方法。
根据一个方面,本发明提供了一种重组盐单胞菌,其通过将编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因(例如,orfZ基因)、编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因(例如,ogdA基因)、编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因(例如,sucD基因)和编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因(例如,4hbd基因)引入出发菌盐单胞菌中而得到。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述出发菌盐单胞菌可为Halomonas TD01。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因可以是能够将4-羟基丁酸催化为4-羟基丁酰辅酶A的酶的基因,其实例可包括来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridium kluyveri)的orfZ基因。优选地,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因可以如SEQ ID NO:20所述,或者是将SEQ ID NO:20经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:20衍生的DNA分子。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述4-羟基丁酰辅酶A转移酶可以如SEQ IDNO:21所述,或者是将SEQ ID NO:21所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:21衍生的蛋白质。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因可以是能够将2-酮戊二酸催化为琥珀酸半醛的酶的基因,其实例可包括来自聚球蓝细菌(Synechococcussp.)的ogdA基因。优选地,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因可以如SEQ ID NO:22所述,或者是将SEQ ID NO:22经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:22衍生的DNA分子。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述2-酮戊二酸脱羧酶可以如SEQ ID NO:23所述,或者是将SEQ ID NO:23所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:23衍生的蛋白质。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因可以是能够将琥珀酰辅酶A催化为琥珀酸半醛的酶的基因,其实例可包括来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridium kluyveri)的sucD基因。优选地,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因可以如SEQ ID NO:24所述,或者是将SEQ ID NO:24经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:24衍生的DNA分子。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述琥珀酸半醛脱氢酶可以如SEQ ID NO:25所述,或者是将SEQ ID NO:25所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:25衍生的蛋白质。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因可以是能够将琥珀酸半醛催化为4-羟基丁酸的酶的基因,其实例可包括来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridiumkluyveri)的4hbd基因。优选地,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因可以如SEQ ID NO:26所述,或者是将SEQ ID NO:26经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:26衍生的DNA分子。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述4-羟基丁酸脱氢酶可以如SEQ ID NO:27所述,或者是将SEQ ID NO:27所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:27衍生的蛋白质。
优选地,本发明的重组盐单胞菌可以是通过将包含编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因的质粒载体和包含编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因的质粒载体引入出发菌盐单胞菌中而得到。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述质粒载体可以是能够在盐单胞菌中复制,用于表达基因的载体,其实例可包括但不限于pSEVA321,pSEVA331,pSEVA341,pBBR1MCS-1等。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,可以敲除盐单胞菌基因组上的编码的琥珀酸半醛脱氢酶(SSADH)的基因(例如,gabD基因),从而可以提高P(3HB-co-4HB)中4HB的比例。本发明经实验验证,将盐单胞菌基因组上的gabD基因敲除后,重组盐单胞菌在结构非相关碳源(例如,葡萄糖)为底物合成的P(3HB-co-4HB)中4HB的比例上升。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因被整合到盐单胞菌基因组上,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因在质粒载体上。
本发明的重组盐单胞菌中,优选地,以基因组为载体包含所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因、所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因可以由诱导型启动子或组成型启动子控制。优选地,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因可以由如下启动子序列来控制:SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:73。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因可以由诱导型启动子或组成型启动子控制。优选地,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因可以由如下启动子序列来控制:SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:73。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因可以由诱导型启动子或组成型启动子控制。优选地,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因由如下启动子序列来控制:SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:73。
本发明的重组盐单胞菌中,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因可以由诱导型启动子或组成型启动子控制。优选地,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因可以由如下启动子序列来控制:SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:73。
优选地,本发明的重组盐单胞菌可以选自Halomonas TDWT-D2、Halomonas TDG-D2、Halomonas TD68/LP4so、Halomonas TD68-LP4so、Halomonas TD68-4so68、HalomonasTD68-4so194、Halomonas TD50-4so68和Halomonas TD50-4so194中。
本发明中,Halomonas TDWT-D2、Halomonas TDG-D2、Halomonas TD68/LP4so、Halomonas TD68-LP4so、Halomonas TD68-4so68、Halomonas TD68-4so194、HalomonasTD50-4so68和Halomonas TD50-4so194均是实施例中制备的重组盐单胞菌。
根据另一个方面,本发明提供了一种生产P(3HB-co-4HB)的方法,其特征在于,利用本发明的重组盐单胞菌生产P(3HB-co-4HB)。
本发明的生产P(3HB-co-4HB)的方法中,可以利用4HB结构非相关碳源(如葡萄糖)进行P(3HB-co-4HB)生产,无需额外添加相关碳源(如γ-丁内酯)。
本发明中,术语“相关碳源”是指4-羟基丁酸及化学结构与4-羟基丁酸相似的化合物,其实例包括1,4-丁二醇、γ-丁内酯等;“非相关碳源”是指相关碳源以外的,作为微生物培养的一般碳源,其实例包括葡萄糖、甘油、脂肪酸等。
本发明经实验验证,出发菌盐单胞菌Halomonas TD01在非相关碳源(葡萄糖)为底物时,所积累的PHA当中不含有4HB组分,而本发明的重组菌所积累的PHA当中检测到了4HB组分,说明4个基因能够在盐单胞菌中实现非相关碳源为底物合成P(3HB-co-4HB)。因此,本发明构建的重组盐单胞菌,实现了利用4HB结构非相关碳源(如葡萄糖)进行P(3HB-co-4HB)生产,无需额外添加相关碳源(如γ-丁内酯),在工业生产上能够降低成本,具有重要的应用价值。
附图说明
图1为显示利用非相关碳源生产P(3HB-co-4HB)的代谢通路的示意图。
图2为两个质粒载体的示意图。
具体实施方式
在下文中,将通过实施例详细描述本发明。然而,在此提供的实施例仅用于说明目的,并不用于限制本发明。
下述实施例所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
所用酶试剂采购自ThermoFisher公司和New England Biolabs(NEB)公司,质粒构建方法为Gibson Assembly,质粒提取试剂盒购自Qiangen(Shanghai,China)。引物和DNA片段的合成由Life Technologies(Carlsbad,USA)完成。基因片段的合成由无锡青兰生物科技有限公司完成。相应的操作步骤严格按照产品说明书进行,所有培养基如无特殊说明均用去离子水配制。
培养基配方:
1)大肠杆菌培养基
LB培养基:5g/L酵母提取物(购自英国OXID公司,产品目录号LP0021),10g/L蛋白胨(购自英国OXID公司,产品目录号LP0042),10g/L NaCl,其余为水。调pH值至7.0-7.2,高压蒸汽灭菌。
2)嗜盐菌培养基
60LB培养基:5g/L酵母提取物(购自英国OXID公司,产品目录号LP0021),10g/L蛋白胨(购自英国OXID公司,产品目录号LP0042),60g/L NaCl,其余为水。调pH值至7.0-7.2,高压蒸汽灭菌。
60MMG培养基:60g/L NaCl,30g/L葡萄糖,1g/L酵母提取物,2g/L NH4Cl,0.2g/LMgSO4,9.65g/L Na2HPO4·12H2O,1.5g/L KH2PO4,10ml/L微量元素溶液I和1ml/L微量元素溶液II。其中微量元素溶液I的组成为:5g/L柠檬酸铁铵,2g/L CaCl2,用1M HCl配制。微量元素溶液II的组成为:100mg/L ZnSO4·7H2O,30mg/L MnCl2·4H2O,300mg/L H3BO3,200mg/LCoCl2·6H2O,10mg/L CuSO4·5H2O,20mg/L NiCl2·6H2O,30mg/L NaMoO4·2H2O,用1M HCl配制。培养基的最终pH用5M NaOH溶液调至8.5。上述试剂购自国药集团化学试剂公司。
在实际培养过程中,可向上述培养基中加入一定浓度的抗生素以维持质粒的稳定性,如100μg/mL氨苄青霉素或25μg/mL的氯霉素。
接合转化:
接合转化是一种将质粒转入Halomonas TD01的有效方法。本研究中,通过接合转化将质粒由E.coli S17-1pir中转入Halomonas TD01菌株。
1)60LB液体培养基培养受体菌Halomonas TD01(可由清华大学提供,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No.4353),LB液体培养基中加入对应的抗生素培养带质粒的供体菌E.coli S17-1pir(ATCC编号:47055,可购自美国菌种保藏中心American Type Culture Collection),培养至对数期前期,OD600在0.6-0.8之间。
2)分别取1ml菌体于1.5ml EP管中,4℃,5,000g,离心10min,收集菌体,用LB培养基(或60LB培养基)洗涤菌体。
3)以1:1的比例混合供体菌和受体菌,并将混合菌液滴于含有相应抗生素的60LB平板中央,平板保持正置,置于37℃培养6-8h。
4)向平板上加入200-300μl 60LB,将平板中央的菌苔重悬并涂布到整个平板。
5)平板倒置于37℃培养箱中直到长出克隆。
摇瓶实验48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,方法如下:
用量筒量取30ml菌液放入50ml离心管,10000rpm离心10min收集菌体。用去离子水重悬细胞洗涤一次,10000rpm离心10min,弃掉上清。将菌体在-80℃冷冻1h后,进行真空冷冻干燥12h以上至完全去除水分。称量取样前后离心管重量,其差值为细胞干重CDW。
酯化液的配制:取485ml无水甲醇,加入1g/L苯甲酸,缓慢加入15ml浓硫酸,即制成约500ml的酯化液。
样品制备:称取30至60mg冷冻干燥后的菌体,精确称重后置于酯化管中,加入2ml酯化液和2ml氯仿。称取10mg左右的PHA样品,同样方式处理作为标准样品。酯化管加盖密封后100度反应4小时。反应结束后待酯化管冷却至室温,加入1ml去离子水,漩涡震荡至充分混合,静置分层。水相和有机相完全分离后,取下层有机相用于气相色谱法(GC)分析。
GC分析PHA组成及含量:使用岛津公司的GC-2014型气相色谱仪。色谱仪的配置为:HP-5型毛细管色谱柱,氢火焰离子化检测器FID,SPL分流进样口;高纯氮气作为载气,氢气为燃气,空气为助燃气;使用AOC-20S型自动进样器,丙酮为洗涤液。GC分析程序的设置为:进样口温度240度,检测器温度250度,柱温起始温度为80度,维持1.5分钟;以30度/分钟的速率升至140度并维持0分钟;以40度/分钟的速率升至240度并维持2分钟;总计时间为8分钟。GC结果采用内标归一法根据峰面积进行定量计算PHA组成及含量。
实施例1:盐单胞菌TD01中以非相关碳源为底物合成P(3HB-co-4HB)的质粒载体
本发明在盐单胞菌TD01中引入了两个不同的酶(琥珀酸半醛脱氢酶sucD和2-酮戊二酸脱羧酶ogdA)合成4HB前体----琥珀酸半醛(SSA)的代谢途径,这两条途径在下游利用共同的酶(4-羟基丁酸脱氢酶4hbd,4-羟基丁酰辅酶A转移酶orfZ)将SSA转化生成4HB-CoA,然后和TD01自身代谢生产的3HB-CoA在PHA合酶(phaC)的作用下实现P(3HB-co-4HB)的合成,相关原理见附图1。
以质粒pSEVA321(Silva-Rocha,R.,de Lorenzo,V.,2013.The StandardEuropean Vector Architecture(SEVA):a coherent platform for the analysis anddeployment of complex prokaryotic phenotypes.Nucleic Acids Res.41,666–675.)为模板,用引物扩增得到质粒骨架;以质粒pRE112-pMB1(Fu XZ,Tan D,Aibaidula G,Wu Q,Chen JC,Chen GQ(2014)Development of Halomonas TD01as a host for openproduction of chemicals.Metab Eng23:78–91)为模板,用引物扩增得到启动子片段;以合成的ogdA片段(由无锡青兰生物科技有限公司合成)为模板,用引物扩增得到ogdA基因片段。上述3片段通过Gibson Assembly方法连接,得到质粒pSEVA321-porin-ogdA。所用的引物信息如下:
以质粒pSEVA321-porin-ogdA为模板,用引物扩增得到含有质粒骨架和ogdA的片段;以质粒pMCSH5(Li,Z.J.,Shi,Z.J.,Guo,Y.Y.,Wu,Q.,Chen,G.Q.,2010.Production ofpoly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate)from unrelated carbon sources bymetabolically engineered Escherichia coli.Metab.Eng.,12,4,352-359.)为模板,用引物扩增得到含有sucD和4hbd的片段;上述两个片段通过Gibson Assembly方法连接,得到质粒pSEVA321-porin-os4-Cm。所用引物信息如下:
以质粒pSEVA341(Silva-Rocha,R.,de Lorenzo,V.,2013.The StandardEuropean Vector Architecture(SEVA):a coherent platform for the analysis anddeployment of complex prokaryotic phenotypes.Nucleic Acids Res.41,666–675.)为模板,用引物扩增得到质粒骨架;以质粒p68orfZ(Li,Z.J.,Shi,Z.J.,Guo,Y.Y.,Wu,Q.,Chen,G.Q.,2010.Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate)fromunrelated carbon sources by metabolically engineered Escherichiacoli.Metab.Eng.,12,4,352-359.)为模板扩增得到含有orfZ基因的片段;以质粒pSEVA434(Silva-Rocha,R.,de Lorenzo,V.,2013.The Standard European Vector Architecture(SEVA):a coherent platform for the analysis and deployment of complexprokaryotic phenotypes.Nucleic Acids Res.41,666–675.)为模板,用引物扩增得到含有壮观霉素抗性基因的片段;将上述3片段用Gibson Assembly方法连接,得到质粒pSEVA341-orfZ-spe。所用引物信息如下:
以质粒pSEVA341-orfZ-spe为模板,用引物扩增得到含有质粒骨架和orfZ基因的片段;以质粒p68orfZ为模板,用引物扩增得到含有氨苄霉素抗性基因的片段;将2个片段通过Gibson Assembly的方法连接,得到质粒pSEVA341-orfZ-Am-Spe。所用引物信息如下:
两个质粒pSEVA341-orfZ-Am-Spe和pSEVA321-porin-os4-Cm即为在盐单胞菌中实现非相关碳源合成P(3HB-co-4HB)的载体。其中pSEVA341-orfZ-Am-Spe包含编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的orfZ基因;pSEVA321-porin-os4-Cm包含编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因ogdA,编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因sucD,编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因4hbd。载体结构示意图见附图2。
所述orfZ基因序列为:
ATGGAGTGGGAAGAGATATATAAAGAGAAACTGGTAACTGCAGAAAAAGCTGTTTCAAAAATAGAAAACCATAGCAGGGTAGTTTTTGCACATGCAGTAGGAGAACCCGTAGATTTAGTAAATGCACTAGTTAAAAATAAGGATAATTATATAGGACTAGAAATAGTTCACATGGTAGCTATGGGCAAAGGTGAATATACAAAAGAGGGTATGCAAAGACATTTTAGACATAATGCTTTATTTGTAGGCGGATGTACTAGAGATGCAGTAAATTCAGGAAGAGCAGATTATACACCTTGTTTTTTCTATGAAGTGCCAAGTTTGTTTAAAGAAAAACGTTTGCCTGTAGATGTAGCACTTATTCAGGTAAGTGAGCCAGATAAATATGGCTACTGCAGTTTTGGAGTTTCCAATGACTATACCAAGCCAGCAGCAGAAAGTGCTAAGCTTGTAATTGCAGAAGTGAATAAAAACATGCCAAGAACTCTTGGAGATTCTTTTATACATGTATCAGATATTGATTATATAGTGGAAGCTTCACACCCATTGTTAGAATTGCAGCCTCCTAAATTGGGAGATGTAGAAAAAGCCATAGGAGAAAACTGTGCATCTTTAATTGAAGATGGAGCTACTCTTCAGCTTGGAATAGGTGCTATACCAGATGCGGTACTTTTATTCTTAAAGAACAAAAAGAATTTAGGAATACATTCTGAGATGATATCAGATGGTGTGATGGAACTGGTGAAGGCAGGGGTTATCAATAACAAGAAAAAGACCCTCCATCCAGGCAAAATAGTTGTAACATTTTTAATGGGAACAAAAAAATTATATGATTTTGTAAACAATAATCCAATGGTAGAAACTTATTCTGTAGATTATGTAAATAATCCACTGGTAATTATGAAAAATGACAATATGGTTTCAATAAATTCTTGTGTTCAAGTAGACTTAATGGGACAAGTATGTTCTGAAAGTATAGGATTGAAACAGATAAGTGGAGTGGGAGGCCAGGTAGATTTTATTAGAGGAGCTAATCTATCAAAGGGTGGAAAGGCTATTATAGCTATACCTTCCACAGCTGGAAAAGGAAAAGTTTCAAGAATAACTCCACTTCTAGATACTGGTGCTGCAGTTACAACTTCTAGAAATGAAGTAGATTATGTAGTTACTGAATATGGTGTTGCTCATCTTAAGGGCAAAACTTTAAGAAATAGGGCAAGAGCTCTAATAAATATCGCTCATCCAAAATTCAGAGAATCATTAATGAATGAATTTAAAAAGAGATTTTAG(SEQ ID NO:20)
所述orfZ基因所编码的4-羟基丁酰辅酶A转移酶的氨基酸序列为:
MEWEEIYKEKLVTAEKAVSKIENHSRVVFAHAVGEPVDLVNALVKNKDNYIGLEIVHMVAMGKGEYTKEGMQRHFRHNALFVGGCTRDAVNSGRADYTPCFFYEVPSLFKEKRLPVDVALIQVSEPDKYGYCSFGVSNDYTKPAAESAKLVIAEVNKNMPRTLGDSFIHVSDIDYIVEASHPLLELQPPKLGDVEKAIGENCASLIEDGATLQLGIGAIPDAVLLFLKNKKNLGIHSEMISDGVMELVKAGVINNKKKTLHPGKIVVTFLMGTKKLYDFVNNNPMVETYSVDYVNNPLVIMKNDNMVSINSCVQVDLMGQVCSESIGLKQISGVGGQVDFIRGANLSKGGKAIIAIPSTAGKGKVSRITPLLDTGAAVTTSRNEVDYVVTEYGVAHLKGKTLRNRARALINIAHPKFRESLMNEFKKRF*(*代表蛋白质的终止密码子)(SEQ IDNO:21)
所述ogdA基因序列为:
ATGAATACTGCAGAATTATTGATCCGATGTCTAGAAAATGAAGGGGTGGAGTATATTTTTGGGCTGCCGGGGGAAGAAAATCTCCATATCCTCGAAGCCCTTAAGGAGTCTCCCATCCGCTTTATCACCGTCCGCCATGAACAGGGTGCCGCTTTTATGGCCGATGTGTATGGTCGTTTAACCGGGAAAGCAGGGGTTTGTCTGTCTACCCTGGGGCCTGGGGCTACCAATCTAATGACTGGGGTTGCCGATGCGAACCTCGATGGGGCGCCCCTGATTGCGATTACAGGGCAGGTGGGTACCGACCGCATGCACATTGAATCCCACCAATATCTTGATCTGGTGGCGATGTTTGCCCCCGTCACCAAGTGGAATAAACAAATTGTCCGACCGAACACGACCCCGGAGGTGGTACGTCGTGCCTTTAAAATTGCCCAGCAGGAAAAACCAGGGGCAGTACACATCGATCTCCCTGAAAATATTGCGGCGATGCCCGTAGAAGGTCAGCCCCTCCAGCGGGATGGTCGTGAAAAAATCTATGCTTCAAGCCGGAGTTTAAACCGGGCTGCCGAGGCGATCGCCCATGCCAAGAGTCCTTTAATTCTGGTGGGTAATGGCATTATTCGCGCCGATGCCGCCGAAGCCCTCACCGATTTTGCCACCCAGTTGAATATTCCCGTAGTCAACACCTTTATGGGCAAAGGGGCAATTCCCTACACCCATCCCCTGTCCCTGTGGACGGTAGGACTCCAACAGCGGGATTTTGTCACCTGTGCCTTTGAACAGAGCGATTTGGTGATTGCAGTGGGCTACGATCTGATCGAATATTCCCCCAAACGCTGGAACCCAGAGGGAACGACCCCAATTATCCACATTGGTGAAGTGGCCGCCGAAATTGATAGTAGTTATATTCCCCTCACAGAAGTTGTCGGCGACATTGGCGATGCCTTAAATGAAATTCGTAAACGCACAGACCGTGAGGGCAAAACCGCGCCAAAATTTCTCAATGTCCGGGCTGAGATTCGGGAGGACTATGAACGCCACGGCACCGACGCTAGTTTTCCGGTCAAACCCCAAAAAATCATCTACGATCTCCGCCAAGTGATGGCCCCAGAGGACATCGTCATTTCTGATGTGGGGGCCCACAAAATGTGGATGGCCCGCCATTACCATTGCGATCGCCCCAATACTTGCCTGATTTCCAATGGATTTGCGGCGATGGGCATTGCGATTCCCGGTGCTGTAGCAGCCAAATTAGTCTACCCAGAAAAAAATGTCGTGGCTGTCACAGGGGACGGGGGATTTATGATGAACTGCCAGGAGCTCGAAACGGCCCTGCGCATTGGGGCGAACTTTGTCACCCTAATTTTCAATGATGGTGGCTATGGTTTGATCGGTTGGAAACAGATTAACCAGTTCGGTGCACCAGCCTTTGTGGAGTTTGGCAATCCCGATTTTGTGCAGTTTGCCGAAAGTATGGGCCTCAAGGGTTATCGGATTACCGCCGCCGCCGACCTTGTGCCGACCTTAAAAGAAGCCCTAGCCCAGGATGTACCAGCGGTGATCGATTGCCCCGTGGACTACAGTGAGAATGTGAAATTCTCCCAAAAATCAGGGGATTTAATCTGCCGTATGTAA(SEQ IDNO:22)
所述ogdA基因编码的2-酮戊二酸脱羧酶的氨基酸序列为:
MNTAELLIRCLENEGVEYIFGLPGEENLHILEALKESPIRFITVRHEQGAAFMADVYGRLTGKAGVCLSTLGPGATNLMTGVADANLDGAPLIAITGQVGTDRMHIESHQYLDLVAMFAPVTKWNKQIVRPNTTPEVVRRAFKIAQQEKPGAVHIDLPENIAAMPVEGQPLQRDGREKIYASSRSLNRAAEAIAHAKSPLILVGNGIIRADAAEALTDFATQLNIPVVNTFMGKGAIPYTHPLSLWTVGLQQRDFVTCAFEQSDLVIAVGYDLIEYSPKRWNPEGTTPIIHIGEVAAEIDSSYIPLTEVVGDIGDALNEIRKRTDREGKTAPKFLNVRAEIREDYERHGTDASFPVKPQKIIYDLRQVMAPEDIVISDVGAHKMWMARHYHCDRPNTCLISNGFAAMGIAIPGAVAAKLVYPEKNVVAVTGDGGFMMNCQELETALRIGANFVTLIFNDGGYGLIGWKQINQFGAPAFVEFGNPDFVQFAESMGLKGYRITAAADLVPTLKEALAQDVPAVIDCPVDYSENVKFSQKSGDLICRM*(*代表蛋白质的终止密码子)(SEQ ID NO:23)
所述sucD基因序列为:
ATGAGTAATGAAGTATCTATAAAAGAATTAATTGAAAAGGCAAAGGTGGCACAAAAAAAATTGGAAGCCTATAGTCAAGAACAAGTTGATGTACTAGTAAAAGCACTAGGAAAAGTGGTTTATGATAATGCAGAAATGTTTGCAAAAGAAGCAGTTGAAGAAACAGAAATGGGTGTTTATGAAGATAAAGTAGCTAAATGTCATTTGAAATCAGGAGCTATTTGGAATCATATAAAAGACAAGAAAACTGTAGGCATAATAAAAGAAGAACCTGAAAGGGCACTTGTTTATGTTGCTAAGCCAAAGGGAGTTGTGGCAGCTACTACGCCTATAACTAATCCAGTGGTAACTCCTATGTGTAATGCAATGGCTGCTATAAAGGGCAGAAATACAATAATAGTAGCACCACATCCTAAAGCAAAGAAAGTTTCAGCTCATACTGTAGAACTTATGAATGCTGAGCTTAAAAAATTGGGAGCACCAGAAAATATCATACAGATAGTAGAAGCACCATCAAGAGAAGCTGCTAAGGAACTTATGGAAAGTGCTGATGTAGTTATTGCTACAGGCGGTGCTGGAAGAGTTAAAGCTGCTTACTCCAGTGGAAGACCAGCTTATGGCGTTGGACCTGGAAATTCACAGGTAATAGTTGATAAGGGATACGATTATAACAAAGCTGCACAGGATATAATAACAGGAAGAAAATATGACAATGGAATTATATGTTCTTCAGAGCAATCAGTTATAGCTCCTGCTGAAGATTATGATAAGGTAATAGCAGCTTTTGTAGAAAATGGGGCATTCTATGTAGAAGATGAGGAAACAGTAGAAAAGTTTAGATCAACTTTATTTAAAGATGGAAAAATAAACAGCAAGATTATAGGTAAATCCGTCCAAATTATTGCGGATCTTGCAGGAGTAAAAGTACCAGAAGGTACTAAGGTTATAGTACTTAAGGGTAAAGGTGCAGGAGAAAAAGATGTACTTTGTAAAGAAAAAATGTGTCCAGTTTTAGTAGCATTGAAATATGATACTTTTGAAGAAGCAGTTGAAATAGCTATGGCTAATTATATGTATGAAGGAGCTGGTCATACAGCAGGCATACATTCTGACAATGACGAGAACATAAGATATGCAGGAACTGTATTACCTATAAGCAGATTAGTTGTAAATCAGCCTGCAACTACTGCTGGAGGAAGTTTCAATAATGGATTTAACCCTACTACTACACTAGGCTGCGGATCATGGGGCAGAAACAGTATTTCAGAAAATCTTACTTACGAGCATCTTATAAATGTTTCAAGAATAGGGTATTTCAATAAAGAAGCAAAAGTTCCTAGCTATGAGGAAATATGGGGATAA(SEQ ID NO:24)
所述sucD基因编码的琥珀酸半醛脱氢酶的氨基酸序列为:
MSNEVSIKELIEKAKVAQKKLEAYSQEQVDVLVKALGKVVYDNAEMFAKEAVEETEMGVYEDKVAKCHLKSGAIWNHIKDKKTVGIIKEEPERALVYVAKPKGVVAATTPITNPVVTPMCNAMAAIKGRNTIIVAPHPKAKKVSAHTVELMNAELKKLGAPENIIQIVEAPSREAAKELMESADVVIATGGAGRVKAAYSSGRPAYGVGPGNSQVIVDKGYDYNKAAQDIITGRKYDNGIICSSEQSVIAPAEDYDKVIAAFVENGAFYVEDEETVEKFRSTLFKDGKINSKIIGKSVQIIADLAGVKVPEGTKVIVLKGKGAGEKDVLCKEKMCPVLVALKYDTFEEAVEIAMANYMYEGAGHTAGIHSDNDENIRYAGTVLPISRLVVNQPATTAGGSFNNGFNPTTTLGCGSWGRNSISENLTYEHLINVSRIGYFNKEAKVPSYEEIWG*(*代表蛋白质的终止密码子)(SEQ ID NO:25)
所述4hbd基因序列为:
ATGAAGTTATTAAAATTGGCACCTGATGTTTATAAATTTGATACTGCAGAGGAGTTTATGAAATACTTTAAGGTTGGAAAAGGTGACTTTATACTTACTAATGAATTTTTATATAAACCTTTCCTTGAGAAATTCAATGATGGTGCAGATGCTGTATTTCAGGAGAAATATGGACTCGGTGAACCTTCTGATGAAATGATAAACAATATAATTAAGGATATTGGAGATAAACAATATAATAGAATTATTGCTGTAGGGGGAGGATCTGTAATAGATATAGCCAAAATCCTCAGTCTTAAGTATACTGATGATTCATTGGATTTGTTTGAGGGAAAAGTACCTCTTGTAAAAAACAAAGAATTAATTATAGTTCCAACTACATGTGGAACAGGTTCAGAAGTTACAAATGTATCAGTTGCAGAATTAAAGAGAAGACATACTAAAAAAGGAATTGCTTCAGACGAATTATATGCAACTTATGCAGTACTTGTACCAGAATTTATAAAAGGACTTCCATATAAGTTTTTTGTAACCAGCTCCGTAGATGCCTTAATACATGCAACAGAAGCTTATGTATCTCCAAATGCAAATCCTTATACTGATATGTTTAGTGTAAAAGCTATGGAGTTAATTTTAAATGGATACATGCAAATGGTAGAGAAAGGAAATGATTACAGAGTTGAAATAATTGAGGATTTTGTTATAGGCAGCAATTATGCAGGTATAGCTTTTGGAAATGCAGGAGTGGGAGCGGTTCACGCACTCTCATATCCAATAGGCGGAAATTATCATGTGCCTCATGGAGAAGCAAATTATCTGTTTTTTACAGAAATATTTAAAACTTATTATGAGAAAAATCCAAATGGCAAGATTAAAGATGTAAATAAACTATTAGCAGGCATACTAAAATGTGATGAAAGTGAAGCTTATGACAGTTTATCACAACTTTTAGATAAATTATTGTCAAGAAAACCATTAAGAGAATATGGAATGAAAGAGGAAGAAATTGAAACTTTTGCTGATTCAGTAATAGAAGGACAGCAGAGACTGTTGGTAAACAATTATGAACCTTTTTCAAGAGAAGACATAGTAAACACATATAAAAAGTTATATTAA(SEQ ID NO:26)
所述4hbd基因编码的4-羟基丁酸脱氢酶的氨基酸序列为:
MKLLKLAPDVYKFDTAEEFMKYFKVGKGDFILTNEFLYKPFLEKFNDGADAVFQEKYGLGEPSDEMINNIIKDIGDKQYNRIIAVGGGSVIDIAKILSLKYTDDSLDLFEGKVPLVKNKELIIVPTTCGTGSEVTNVSVAELKRRHTKKGIASDELYATYAVLVPEFIKGLPYKFFVTSSVDALIHATEAYVSPNANPYTDMFSVKAMELILNGYMQMVEKGNDYRVEIIEDFVIGSNYAGIAFGNAGVGAVHALSYPIGGNYHVPHGEANYLFFTEIFKTYYEKNPNGKIKDVNKLLAGILKCDESEAYDSLSQLLDKLLSRKPLREYGMKEEEIETFADSVIEGQQRLLVNNYEPFSREDIVNTYKKLY*(*代表蛋白质的终止密码子)(SEQ ID NO:27)
将质粒pSEVA341-orfZ-Am-Spe和pSEVA321-porin-os4-Cm分别转入大肠杆菌S17-1(ATCC编号:47055,可购自美国菌种保藏中心American Type Culture Collection),再通过接合转化方法(Fu XZ,Tan D,Aibaidula G,Wu Q,Chen JC,Chen GQ(2014)Developmentof Halomonas TD01as a host for open production of chemicals.Metab Eng 23:78–91)将两个质粒载体都转入盐单胞菌Halomonas TD01(可由清华大学提供,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为CGMCC No.4353),得到重组菌盐单胞菌Halomonas TD01/(pSEVA341-orfZ-Am-Spe,pSEVA321-porin-os4-Cm),命名为HalomonasTDWT-D2。
上述重组菌与出发菌Halomonas TD01均在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后按5%接种至50ml 60MMG培养基,200rmp,37℃,培养48小时。48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,结果如下表所示:
出发菌Halomonas TD01在非相关碳源(葡萄糖)为底物时,所积累的PHA当中不含有4HB组分,而重组菌Halomonas TDWT-D2所积累的PHA当中检测到了4HB组分,说明两个质粒载体所包含的4个基因能够在盐单胞菌中实现非相关碳源为底物合成P(3HB-co-4HB)。
实施例2:敲除盐单胞菌中的gabD基因,提高P(3HB-co-4HB)中4HB的比例
盐单胞菌Halomonas TD01基因组上的gabD基因所编码的琥珀酸半醛脱氢酶(SSADH)可以把琥珀酸半醛转化成琥珀酸,会与4HB的合成产生竞争。本实施例通过敲除盐单胞菌基因组上的gabD基因来提高4HB的比例。
以质粒pRE112-6IsceI(Fu,X.Z.,Tan,D.,Aibaidula,G.,Wu,Q.,Chen,J.C.,Chen,G.Q.,2014.Development of Halomonas TD01as a host for open production ofchemicals.Metab.Eng.,23,2,78-91.)为模板,用引物扩增得到质粒骨架;以HalomonasTD01的基因组为模板,用引物分别扩增得到gabD2基因的上下游同源臂片段,与质粒骨架通过Gibson Assembly的方法连接,得到质粒pRE112-6IsceI-gabD2。所用的引物信息如下:
将质粒转入大肠杆菌S17-1,再通过接合转化方法转入盐单胞菌Halomonas TD01,在氯霉素抗性平板上筛选阳性克隆,阳性克隆在无抗培养基中每24h转接一次,传代培养7次,最后稀释涂布于平板,筛选丢失氯霉素抗性标签的菌株,并用引物gabD2-up-F和gabD2-down-R进行PCR验证,野生型得到的条带大小为2.0kb,敲除型得到的条带大小为1.0kb。最终得到敲除gabD2基因的重组菌Halomonas TD01ΔgabD2。
以质粒pRE112-6IsceI为模板,用引物扩增得到质粒骨架;以Halomonas TD01的基因组为模板,用引物分别扩增得到gabD3基因的上下游同源臂片段,与质粒骨架通过GibsonAssembly的方法连接,得到质粒pRE112-6IsceI-gabD3。所用的引物信息如下:
将质粒转入大肠杆菌S17-1,再通过接合转化方法转入盐单胞菌Halomonas TD01ΔgabD2,在氯霉素抗性平板上筛选阳性克隆,阳性克隆在无抗培养基中每24h转接一次,传代培养7次,最后稀释涂布于平板,筛选丢失氯霉素抗性标签的菌株,并用引物gabD3-up-F和gabD3-down-R进行PCR验证,野生型得到的条带大小为2.0kb,敲除型得到的条带大小为1.1kb。最终得到敲除gabD2和gabD3基因的重组菌Halomonas TD01ΔgabD2ΔgabD3,命名为Halomonas TDG。
将实施例1中的质粒pSEVA341-orfZ-Am-Spe和pSEVA321-porin-os4-Cm一起转入Halomonas TDG,方法同实施例1,得到重组菌Halomonas TDG/(pSEVA341-orfZ-Am-Spe,pSEVA321-porin-os4-Cm),命名为Halomonas TDG-D2。
上述重组菌与实施例1中的Halomonas TDWT-D2均在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后按5%接种至50ml 60MMG培养基,200rmp,37℃,培养48小时。48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,结果如下表所示:
将盐单胞菌基因组上的gabD基因敲除后,重组盐单胞菌在非相关碳源(葡萄糖)为底物合成的P(3HB-co-4HB)中4HB的比例上升。
比较例:ogdA基因表达与否对P(3HB-co-4HB)中4HB的比例的影响
以实施例1中的质粒pSEVA321-porin-os4-Cm为模板,用引物attttctagacatcggatcaataattctgc(SEQ ID NO:40)和taaggggtggagtatatttttgggc(SEQID NO:41)扩增得到片段,用T4连接酶将片段自连的方法得到质粒pSEVA321-porin-o*s4,该质粒中ogdA基因的第14个氨基酸突变为了终止密码子(由gaa变为taa),因此ogdA基因无法正常表达。
将质粒pSEVA321-porin-o*s4和实施例1中的质粒pSEVA341-orfZ-Am-Spe一起转入实施例2中的Halomonas TDG,方法同实施例1,得到重组菌Halomonas TDG/(pSEVA341-orfZ-Am-Spe,pSEVA321-porin-o*s4),命名为Halomonas TDG-D1。
将上述重组菌与实施例2中的Halomonas TDG-D2均在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后按5%接种至50ml 60MMG培养基,200rmp,37℃,培养48小时。48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,结果如下表所示:
在接种之后的几个小时之内,发酵液的pH迅速降到的4-5,可能是因为琥珀酸半醛(SSA)的快速积累。为了稳定发酵过程中的pH,进行了1L的发酵实验,将发酵液的pH值稳定在pH8.5,结果如下:
有ogdA基因表达的重组菌Halomonas TDG-D2与ogdA基因无法表达的重组菌Halomonas TDG-D1相比,细胞干重、PHA含量及4HB比例均更高,说明ogdA基因的表达更有利于盐单胞菌以非相关碳源(葡萄糖)为底物合成P(3HB-co-4HB)。
实施例3:重组盐单胞菌在批式补料发酵中生产P(3HB-co-4HB)
以实施例2中的重组盐单胞菌Halomonas TDG-D2在7L发酵罐中进行批式补料发酵生产P(3HB-co-4HB),具体方法如下:
7升发酵罐中装液量为3升;种子液在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后接种至发酵培养基中,接种量为300mL;发酵培养基为60MMG,其中酵母提取物替换为2g/L,另外添加1.5g/L的尿素;发酵温度控制在37度,pH通过5M NaOH溶液控制在8.5;初始搅拌速度为200rpm,最高为800rpm;采用溶氧控制策略,保持溶氧在30%以上;空气通气量为3L/min;补料溶液包括葡萄糖、尿素和酵母提取物(120g葡萄糖、3g酵母提取物和1g尿素溶于100mL自来水中),在12h到24h之间进行补料;24h之后再进行一次补料,补料液只包含800g/L的葡萄糖。48小时结束发酵过程,在发酵过程中对葡萄糖浓度进行离线监测。发酵结束后,检测发酵液中的细胞干重CDW和PHA含量及4HB比例,检测方法同实施例1所述。结果如下:
通过对残糖含量的控制,进行了三个不同批次补料发酵,结果如下:
重组盐单胞菌Halomonas TDG-D2在批式补料发酵中以非相关碳源(葡萄糖)为底物生产P(3HB-co-4HB),其中4HB的组分可通过控制残量含量实现可控变化。
实施例4:诱导启动子控制基因表达调控P(3HB-co-4HB)中的4HB比例
以一种启动子库(专利申请号201710413338.3,可从北京蓝晶微生物科技有限公司获得)中的启动子为模板,用引物扩增得到启动子序列;以质粒p68orfZ(Li,Z.J.,Shi,Z.J.,Guo,Y.Y.,Wu,Q.,Chen,G.Q.,2010.Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate)from unrelated carbon sources by metabolically engineeredEscherichia coli.Metab.Eng.,12,4,352-359.)为模板,用引物扩增得到orfZ基因;用Halomonas TD01基因组为模板,引物分别扩增得到整合到基因组所需的上游同源臂H1和下游同源臂H2;以质粒pRE112-6IsceI为模板,用引物扩增得到质粒骨架。上述5片段通过Gibson Assembly的方法连接,得到质粒pRE112-68orfZ。所用的启动子序列为:
agcggataacaatttcacacaggaatgcctccacaccgctcgtcacatcctgttgcgttcactggaatcccagactagagtttgacctgcgagcaagctgtcaccggatgtgctttccggtctgatgagtccgtgaggacgaaacagcctctacaaataattttgtttaa(SEQ ID NO:42)
所用的引物信息如下:
将质粒pRE112-68orfZ转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入实施例2中的Halomonas TDG中,利用自杀质粒无法在宿主菌内复制的特性,用氯霉素抗性的60LB平板筛选出阳性克隆。该阳性克隆中带有同源片段的重组质粒整合到基因组上的H1和H2所在的特定位置,为第一次同源重组菌。
诱导质粒pBBR1MCS1-ISceI(Fu,X.Z.,Tan,D.,Aibaidula,G.,Wu,Q.,Chen,J.C.,Chen,G.Q.,2014.Development of Halomonas TD01as a host for open production ofchemicals.Metab.Eng.,23,2,78-91.)表达一种归为内切酶I-SceI,将第一次同源重组菌的基因组上的6个I-SceI位点进行切割,产生双链DNA缺口,从而诱发第二次同源重组的发生,产生突变型或者野生型,然后通过特异的PCR引物将突变株筛选出来。将诱导质粒pBBR1MCS1-ISceI通过接合转化方法导入上述第一次同源重组菌,壮观霉素的60LB平板上筛选得到阳性克隆。该阳性克隆为Halomonas TDG的基因组上整合了启动子和orfZ,得到的重组菌为Halomonas TDG-68orfZ。
以质粒p321-Ptac-GFP(Zhao,H.,Zhang,H.M.,Chen,X.,Li,T.,Wu,Q.,Ouyang,Q.,Chen,G.Q.,2016.Novel T7-like expression systems used forHalomonas.Metab.Eng.,39,128-140.)为模板,用引物扩增得到质粒骨架;以实施例1中的合成片段为模板,用引物扩增得到ogdA基因;以质粒pMCSH5(Li,Z.J.,Shi,Z.J.,Guo,Y.Y.,Wu,Q.,Chen,G.Q.,2010.Production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate)from unrelated carbon sources by metabolically engineeredEscherichia coli.Metab.Eng.,12,4,352-359.)为模板,用引物分别扩增sucD基因和4hbd基因;上述4片段通过Gibson Assembly的方法连接,得到质粒p321-Ptac-4so。质粒中所用的诱导型启动子Ptac序列为:
tgttgacaattaatcatcggctcgtataatgtgtggaattgtgagcgctcacaattagctgtcaccggatgtgctttccggtctgatgagtccgtgaggacgaaacagcctctacaaataattttgtttaa(SEQ ID NO:73)
所用的引物信息如下:
将质粒p321-Ptac-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入上述重组菌Halomonas TDG-68orfZ,得到重组菌Halomonas TDG-68orfZ/p321-Ptac-4so,命名为Halomonas TD68/LP4so。
上述重组菌Halomonas TD68/LP4so包含编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因orfZ,编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因ogdA,编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因sucD,编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因4hbd。其中orfZ基因在基因组载体上,ogdA、sucD与4hbd在质粒载体上。
所述orfZ基因序列同实施例1,所述orfZ基因编码的4-羟基丁酰辅酶A转移酶的氨基酸序列同实施例1。
所述ogdA基因序列同实施例1,所述ogdA基因编码的2-酮戊二酸脱羧酶的氨基酸序列同实施例1。
所述sucD基因序列同实施例1,所述sucD基因编码的琥珀酸半醛脱氢酶的氨基酸序列同实施例1。
所述4hbd基因序列同实施例1,所述4hbd基因编码的4-羟基丁酸脱氢酶的氨基酸序列同实施例1。
将上述重组菌Halomonas TD68/LP4so在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后按5%接种至50ml 60MMG培养基,并添加不同浓度的诱导剂IPTG,在200rmp,37℃培养48小时。48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,结果如下表所示:
用诱导启动子控制ogdA、sucD与4hbd的表达,能够根据诱导剂IPTG的添加量控制重组菌所合成的P(3HB-co-4HB)中4HB的比例。4HB的比例不同,P(3HB-co-4HB)的材料性能也会不同。因此,所述重组菌实现了根据产物中4HB的目标比例调整发酵条件,达到了一株菌生产不同P(3HB-co-4HB)产物的效果。
实施例5:以盐单胞菌基因组为载体表达P(3HB-co-4HB)合成所需的基因
以实施例4中的质粒p321-Ptac-4so为模板,用引物扩增得到含有Ptac启动子和ogdA、sucD与4hbd基因的片段;以Halomonas TD01基因组为模板,用引物分别扩增得到整合到基因组所需的上游同源臂H1和下游同源臂H2;以质粒pRE112-6IsceI为模板,用引物扩增得到质粒骨架。上述4片段通过Gibson Assembly的方法连接,得到质粒pRE112-Ptac-4so。所用引物信息如下:
将质粒pRE112-Ptac-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入实施例4中的重组菌Halomonas TDG-68orfZ,用与实施例4相同的方法得到Ptac启动子和ogdA、sucD与4hbd基因整合到基因组上的重组菌,重组菌命名为Halomonas TD68-LP4so。
在实施例4中所述启动库中选取两个启动子,用引物扩增分别得到启动子序列;以质粒p321-Ptac-4so为模板,用引物扩增得到含有ogdA、sucD与4hbd基因的片段;其余整合到基因组所需的上游同源臂H1和下游同源臂H2,以及pRE112-6IsceI质粒骨架用本实施例中上文所述同样方法获得。上述片段通过Gibson Assembly的方法连接,分别得到质粒pRE112-68-4so和pRE112-194-4so。其中一个启动子序列与实施例4中的相同,另一个启动子序列为:
agcggataacaatttcacacaggaatgcctccacaccgctcgtcacatcctgttgcgttcactggaatcccagtatctaatttgacctgcgagcaagctgtcaccggatgtgctttccggtctgatgagtccgtgaggacgaaacagcctctacaaataattttgtttaa(SEQ ID NO:69)
所用引物信息如下:
将质粒pRE112-68-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入实施例4中的重组菌Halomonas TDG-68orfZ,用与实施例4相同的方法得到ogdA、sucD与4hbd基因整合到基因组上的重组菌,重组菌命名为Halomonas TD68-4so68。
将质粒pRE112-194-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入实施例4中的重组菌Halomonas TDG-68orfZ,用与实施例4相同的方法得到ogdA、sucD与4hbd基因整合到基因组上的重组菌,重组菌命名为Halomonas TD68-4so194。
将质粒pRE112-6ISceI-orfZ(Chen,X.,Yin,J.,Ye,J.,Zhang,H.,Che,X.,Ma,Y.,Li,M.,Wu,L.P.,Chen,G.Q.,2017.Engineering Halomonas bluephagenesis TD01fornon-sterile production of poly(3-hydroxybutyrate-co-4-hydroxybutyrate).Bioresour.Technol.,244,534-541)转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入实施例2中的Halomonas TDG中,用与实施例4相同的方法得到orfZ基因整合到基因组上的重组菌,该重组菌命名为Halomonas TD50。
将质粒pRE112-68-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入重组菌Halomonas TD50,用与实施例4相同的方法得到ogdA、sucD与4hbd基因整合到基因组上的重组菌,重组菌命名为Halomonas TD50-4so68。
将质粒pRE112-194-4so转入大肠杆菌S17-1中,再通过接合转化方法转入重组菌Halomonas TD50,用与实施例4相同的方法得到ogdA、sucD与4hbd基因整合到基因组上的重组菌,重组菌命名为Halomonas TD50-4so194。
本实施例所述得到的5株重组菌Halomonas TD68-LP4so,Halomonas TD68-4so68,Halomonas TD68-4so194,Halomonas TD50-4so68,Halomonas TD50-4so194均为以基因组为载体,包含编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因orfZ,编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因ogdA,编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因sucD,编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因4hbd,区别在于表达这几个基因的启动子不同。
所述orfZ基因序列同实施例1,所述orfZ基因编码的4-羟基丁酰辅酶A转移酶的氨基酸序列同实施例1。
所述ogdA基因序列同实施例1,所述ogdA基因编码的2-酮戊二酸脱羧酶的氨基酸序列同实施例1。
所述sucD基因序列同实施例1,所述sucD基因编码的琥珀酸半醛脱氢酶的氨基酸序列同实施例1。
所述4hbd基因序列同实施例1,所述4hbd基因编码的4-羟基丁酸脱氢酶的氨基酸序列同实施例1。
将上述5株重组菌在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后按5%接种至50ml60MMG培养基,其中Halomonas TD68-LP4so添加200mg/L的诱导剂IPTG,在200rmp,37℃培养48小时。48小时后收集菌体,检测细胞干重和PHA含量,结果如下表所示:
以基因组为载体表达4个基因,同样能够实现重组盐单胞菌以非相关碳源(葡萄糖)为底物合成P(3HB-co-4HB),不同的启动子表达4个基因,实现不同比例4HB的P(3HB-co-4HB)的合成。
实施例6:基因组为载体的重组盐单胞菌在批式补料发酵中生产P(3HB-co-4HB)
以实施例5中的重组盐单胞菌Halomonas TD50-4so194在7L发酵罐中进行批式补料发酵生产P(3HB-co-4HB),具体方法如下:
7升发酵罐中装液量为3升;种子液在60LB培养基中200rpm,37℃培养12小时后接种至发酵培养基中,接种量为300mL;发酵培养基为60MMG,其中酵母提取物替换为2g/L,另外添加1.5g/L的尿素;发酵温度控制在37度,pH通过5M NaOH溶液控制在8.5;初始搅拌速度为200rpm,最高为800rpm;采用溶氧控制策略,保持溶氧在30%以上;空气通气量为3L/min;补料溶液包括葡萄糖、尿素和酵母提取物(120g葡萄糖、3g酵母提取物和1g尿素溶于100mL自来水中),在12h到24h之间进行补料;24h之后再进行一次补料,补料液只包含800g/L的葡萄糖。48小时结束发酵过程,在发酵过程中对葡萄糖浓度进行离线监测。发酵结束后,检测发酵液中的细胞干重CDW和PHA含量及4HB比例,检测方法同实施例1所述。结果如下:
以实施例5中的重组盐单胞菌Halomonas TD68-4so194在7L发酵罐中进行批式补料发酵生产P(3HB-co-4HB),具体方法同上。发酵结束后,检测发酵液中的细胞干重CDW和PHA含量及4HB比例,检测方法同实施例1所述。结果如下:
基因组为载体的重组菌在发酵罐中生产P(3HB-co-4HB),细胞干重超过50克/升,P(3HB-co-4HB)达到70%左右,具备放大生产应用于工业化生产的潜力。
SEQUENCE LISTING
<110> 北京蓝晶微生物科技有限公司
清华大学
<120> 一种重组盐单胞菌以及利用其生产P(3HB-co-4HB)的方法
<130> DI18-0003-XC37
<160> 73
<170> PatentIn version 3.3
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<213> Artificial
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atagaaaacc atagcagggt agtttttgca catgcagtag gagaacccgt agatttagta 120
aatgcactag ttaaaaataa ggataattat ataggactag aaatagttca catggtagct 180
atgggcaaag gtgaatatac aaaagagggt atgcaaagac attttagaca taatgcttta 240
tttgtaggcg gatgtactag agatgcagta aattcaggaa gagcagatta tacaccttgt 300
tttttctatg aagtgccaag tttgtttaaa gaaaaacgtt tgcctgtaga tgtagcactt 360
attcaggtaa gtgagccaga taaatatggc tactgcagtt ttggagtttc caatgactat 420
accaagccag cagcagaaag tgctaagctt gtaattgcag aagtgaataa aaacatgcca 480
agaactcttg gagattcttt tatacatgta tcagatattg attatatagt ggaagcttca 540
cacccattgt tagaattgca gcctcctaaa ttgggagatg tagaaaaagc cataggagaa 600
aactgtgcat ctttaattga agatggagct actcttcagc ttggaatagg tgctatacca 660
gatgcggtac ttttattctt aaagaacaaa aagaatttag gaatacattc tgagatgata 720
tcagatggtg tgatggaact ggtgaaggca ggggttatca ataacaagaa aaagaccctc 780
catccaggca aaatagttgt aacattttta atgggaacaa aaaaattata tgattttgta 840
aacaataatc caatggtaga aacttattct gtagattatg taaataatcc actggtaatt 900
atgaaaaatg acaatatggt ttcaataaat tcttgtgttc aagtagactt aatgggacaa 960
gtatgttctg aaagtatagg attgaaacag ataagtggag tgggaggcca ggtagatttt 1020
attagaggag ctaatctatc aaagggtgga aaggctatta tagctatacc ttccacagct 1080
ggaaaaggaa aagtttcaag aataactcca cttctagata ctggtgctgc agttacaact 1140
tctagaaatg aagtagatta tgtagttact gaatatggtg ttgctcatct taagggcaaa 1200
actttaagaa atagggcaag agctctaata aatatcgctc atccaaaatt cagagaatca 1260
ttaatgaatg aatttaaaaa gagattttag 1290
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<212> PRT
<213> Artificial
<220>
<223> orfZ基因所编码的4-羟基丁酰辅酶A转移酶的氨基酸序列
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Ala Val Ser Lys Ile Glu Asn His Ser Arg Val Val Phe Ala His Ala
20 25 30
Val Gly Glu Pro Val Asp Leu Val Asn Ala Leu Val Lys Asn Lys Asp
35 40 45
Asn Tyr Ile Gly Leu Glu Ile Val His Met Val Ala Met Gly Lys Gly
50 55 60
Glu Tyr Thr Lys Glu Gly Met Gln Arg His Phe Arg His Asn Ala Leu
65 70 75 80
Phe Val Gly Gly Cys Thr Arg Asp Ala Val Asn Ser Gly Arg Ala Asp
85 90 95
Tyr Thr Pro Cys Phe Phe Tyr Glu Val Pro Ser Leu Phe Lys Glu Lys
100 105 110
Arg Leu Pro Val Asp Val Ala Leu Ile Gln Val Ser Glu Pro Asp Lys
115 120 125
Tyr Gly Tyr Cys Ser Phe Gly Val Ser Asn Asp Tyr Thr Lys Pro Ala
130 135 140
Ala Glu Ser Ala Lys Leu Val Ile Ala Glu Val Asn Lys Asn Met Pro
145 150 155 160
Arg Thr Leu Gly Asp Ser Phe Ile His Val Ser Asp Ile Asp Tyr Ile
165 170 175
Val Glu Ala Ser His Pro Leu Leu Glu Leu Gln Pro Pro Lys Leu Gly
180 185 190
Asp Val Glu Lys Ala Ile Gly Glu Asn Cys Ala Ser Leu Ile Glu Asp
195 200 205
Gly Ala Thr Leu Gln Leu Gly Ile Gly Ala Ile Pro Asp Ala Val Leu
210 215 220
Leu Phe Leu Lys Asn Lys Lys Asn Leu Gly Ile His Ser Glu Met Ile
225 230 235 240
Ser Asp Gly Val Met Glu Leu Val Lys Ala Gly Val Ile Asn Asn Lys
245 250 255
Lys Lys Thr Leu His Pro Gly Lys Ile Val Val Thr Phe Leu Met Gly
260 265 270
Thr Lys Lys Leu Tyr Asp Phe Val Asn Asn Asn Pro Met Val Glu Thr
275 280 285
Tyr Ser Val Asp Tyr Val Asn Asn Pro Leu Val Ile Met Lys Asn Asp
290 295 300
Asn Met Val Ser Ile Asn Ser Cys Val Gln Val Asp Leu Met Gly Gln
305 310 315 320
Val Cys Ser Glu Ser Ile Gly Leu Lys Gln Ile Ser Gly Val Gly Gly
325 330 335
Gln Val Asp Phe Ile Arg Gly Ala Asn Leu Ser Lys Gly Gly Lys Ala
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Ile Ile Ala Ile Pro Ser Thr Ala Gly Lys Gly Lys Val Ser Arg Ile
355 360 365
Thr Pro Leu Leu Asp Thr Gly Ala Ala Val Thr Thr Ser Arg Asn Glu
370 375 380
Val Asp Tyr Val Val Thr Glu Tyr Gly Val Ala His Leu Lys Gly Lys
385 390 395 400
Thr Leu Arg Asn Arg Ala Arg Ala Leu Ile Asn Ile Ala His Pro Lys
405 410 415
Phe Arg Glu Ser Leu Met Asn Glu Phe Lys Lys Arg Phe
420 425
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<211> 1638
<212> DNA
<213> Artificial
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<223> ogdA基因序列
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gggctgccgg gggaagaaaa tctccatatc ctcgaagccc ttaaggagtc tcccatccgc 120
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accgggaaag caggggtttg tctgtctacc ctggggcctg gggctaccaa tctaatgact 240
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<211> 545
<212> PRT
<213> Artificial
<220>
<223> ogdA基因编码的2-酮戊二酸脱羧酶的氨基酸序列
<400> 23
Met Asn Thr Ala Glu Leu Leu Ile Arg Cys Leu Glu Asn Glu Gly Val
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Glu Tyr Ile Phe Gly Leu Pro Gly Glu Glu Asn Leu His Ile Leu Glu
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Ala Leu Lys Glu Ser Pro Ile Arg Phe Ile Thr Val Arg His Glu Gln
35 40 45
Gly Ala Ala Phe Met Ala Asp Val Tyr Gly Arg Leu Thr Gly Lys Ala
50 55 60
Gly Val Cys Leu Ser Thr Leu Gly Pro Gly Ala Thr Asn Leu Met Thr
65 70 75 80
Gly Val Ala Asp Ala Asn Leu Asp Gly Ala Pro Leu Ile Ala Ile Thr
85 90 95
Gly Gln Val Gly Thr Asp Arg Met His Ile Glu Ser His Gln Tyr Leu
100 105 110
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Ile Ala Ala Met Pro Val Glu Gly Gln Pro Leu Gln Arg Asp Gly Arg
165 170 175
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Ala Lys Leu Val Tyr Pro Glu Lys Asn Val Val Ala Val Thr Gly Asp
420 425 430
Gly Gly Phe Met Met Asn Cys Gln Glu Leu Glu Thr Ala Leu Arg Ile
435 440 445
Gly Ala Asn Phe Val Thr Leu Ile Phe Asn Asp Gly Gly Tyr Gly Leu
450 455 460
Ile Gly Trp Lys Gln Ile Asn Gln Phe Gly Ala Pro Ala Phe Val Glu
465 470 475 480
Phe Gly Asn Pro Asp Phe Val Gln Phe Ala Glu Ser Met Gly Leu Lys
485 490 495
Gly Tyr Arg Ile Thr Ala Ala Ala Asp Leu Val Pro Thr Leu Lys Glu
500 505 510
Ala Leu Ala Gln Asp Val Pro Ala Val Ile Asp Cys Pro Val Asp Tyr
515 520 525
Ser Glu Asn Val Lys Phe Ser Gln Lys Ser Gly Asp Leu Ile Cys Arg
530 535 540
Met
545
<210> 24
<211> 1362
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> sucD基因序列
<400> 24
atgagtaatg aagtatctat aaaagaatta attgaaaagg caaaggtggc acaaaaaaaa 60
ttggaagcct atagtcaaga acaagttgat gtactagtaa aagcactagg aaaagtggtt 120
tatgataatg cagaaatgtt tgcaaaagaa gcagttgaag aaacagaaat gggtgtttat 180
gaagataaag tagctaaatg tcatttgaaa tcaggagcta tttggaatca tataaaagac 240
aagaaaactg taggcataat aaaagaagaa cctgaaaggg cacttgttta tgttgctaag 300
ccaaagggag ttgtggcagc tactacgcct ataactaatc cagtggtaac tcctatgtgt 360
aatgcaatgg ctgctataaa gggcagaaat acaataatag tagcaccaca tcctaaagca 420
aagaaagttt cagctcatac tgtagaactt atgaatgctg agcttaaaaa attgggagca 480
ccagaaaata tcatacagat agtagaagca ccatcaagag aagctgctaa ggaacttatg 540
gaaagtgctg atgtagttat tgctacaggc ggtgctggaa gagttaaagc tgcttactcc 600
agtggaagac cagcttatgg cgttggacct ggaaattcac aggtaatagt tgataaggga 660
tacgattata acaaagctgc acaggatata ataacaggaa gaaaatatga caatggaatt 720
atatgttctt cagagcaatc agttatagct cctgctgaag attatgataa ggtaatagca 780
gcttttgtag aaaatggggc attctatgta gaagatgagg aaacagtaga aaagtttaga 840
tcaactttat ttaaagatgg aaaaataaac agcaagatta taggtaaatc cgtccaaatt 900
attgcggatc ttgcaggagt aaaagtacca gaaggtacta aggttatagt acttaagggt 960
aaaggtgcag gagaaaaaga tgtactttgt aaagaaaaaa tgtgtccagt tttagtagca 1020
ttgaaatatg atacttttga agaagcagtt gaaatagcta tggctaatta tatgtatgaa 1080
ggagctggtc atacagcagg catacattct gacaatgacg agaacataag atatgcagga 1140
actgtattac ctataagcag attagttgta aatcagcctg caactactgc tggaggaagt 1200
ttcaataatg gatttaaccc tactactaca ctaggctgcg gatcatgggg cagaaacagt 1260
atttcagaaa atcttactta cgagcatctt ataaatgttt caagaatagg gtatttcaat 1320
aaagaagcaa aagttcctag ctatgaggaa atatggggat aa 1362
<210> 25
<211> 453
<212> PRT
<213> Artificial
<220>
<223> sucD基因编码的琥珀酸半醛脱氢酶的氨基酸序列
<400> 25
Met Ser Asn Glu Val Ser Ile Lys Glu Leu Ile Glu Lys Ala Lys Val
1 5 10 15
Ala Gln Lys Lys Leu Glu Ala Tyr Ser Gln Glu Gln Val Asp Val Leu
20 25 30
Val Lys Ala Leu Gly Lys Val Val Tyr Asp Asn Ala Glu Met Phe Ala
35 40 45
Lys Glu Ala Val Glu Glu Thr Glu Met Gly Val Tyr Glu Asp Lys Val
50 55 60
Ala Lys Cys His Leu Lys Ser Gly Ala Ile Trp Asn His Ile Lys Asp
65 70 75 80
Lys Lys Thr Val Gly Ile Ile Lys Glu Glu Pro Glu Arg Ala Leu Val
85 90 95
Tyr Val Ala Lys Pro Lys Gly Val Val Ala Ala Thr Thr Pro Ile Thr
100 105 110
Asn Pro Val Val Thr Pro Met Cys Asn Ala Met Ala Ala Ile Lys Gly
115 120 125
Arg Asn Thr Ile Ile Val Ala Pro His Pro Lys Ala Lys Lys Val Ser
130 135 140
Ala His Thr Val Glu Leu Met Asn Ala Glu Leu Lys Lys Leu Gly Ala
145 150 155 160
Pro Glu Asn Ile Ile Gln Ile Val Glu Ala Pro Ser Arg Glu Ala Ala
165 170 175
Lys Glu Leu Met Glu Ser Ala Asp Val Val Ile Ala Thr Gly Gly Ala
180 185 190
Gly Arg Val Lys Ala Ala Tyr Ser Ser Gly Arg Pro Ala Tyr Gly Val
195 200 205
Gly Pro Gly Asn Ser Gln Val Ile Val Asp Lys Gly Tyr Asp Tyr Asn
210 215 220
Lys Ala Ala Gln Asp Ile Ile Thr Gly Arg Lys Tyr Asp Asn Gly Ile
225 230 235 240
Ile Cys Ser Ser Glu Gln Ser Val Ile Ala Pro Ala Glu Asp Tyr Asp
245 250 255
Lys Val Ile Ala Ala Phe Val Glu Asn Gly Ala Phe Tyr Val Glu Asp
260 265 270
Glu Glu Thr Val Glu Lys Phe Arg Ser Thr Leu Phe Lys Asp Gly Lys
275 280 285
Ile Asn Ser Lys Ile Ile Gly Lys Ser Val Gln Ile Ile Ala Asp Leu
290 295 300
Ala Gly Val Lys Val Pro Glu Gly Thr Lys Val Ile Val Leu Lys Gly
305 310 315 320
Lys Gly Ala Gly Glu Lys Asp Val Leu Cys Lys Glu Lys Met Cys Pro
325 330 335
Val Leu Val Ala Leu Lys Tyr Asp Thr Phe Glu Glu Ala Val Glu Ile
340 345 350
Ala Met Ala Asn Tyr Met Tyr Glu Gly Ala Gly His Thr Ala Gly Ile
355 360 365
His Ser Asp Asn Asp Glu Asn Ile Arg Tyr Ala Gly Thr Val Leu Pro
370 375 380
Ile Ser Arg Leu Val Val Asn Gln Pro Ala Thr Thr Ala Gly Gly Ser
385 390 395 400
Phe Asn Asn Gly Phe Asn Pro Thr Thr Thr Leu Gly Cys Gly Ser Trp
405 410 415
Gly Arg Asn Ser Ile Ser Glu Asn Leu Thr Tyr Glu His Leu Ile Asn
420 425 430
Val Ser Arg Ile Gly Tyr Phe Asn Lys Glu Ala Lys Val Pro Ser Tyr
435 440 445
Glu Glu Ile Trp Gly
450
<210> 26
<211> 1116
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 4hbd基因序列
<400> 26
atgaagttat taaaattggc acctgatgtt tataaatttg atactgcaga ggagtttatg 60
aaatacttta aggttggaaa aggtgacttt atacttacta atgaattttt atataaacct 120
ttccttgaga aattcaatga tggtgcagat gctgtatttc aggagaaata tggactcggt 180
gaaccttctg atgaaatgat aaacaatata attaaggata ttggagataa acaatataat 240
agaattattg ctgtaggggg aggatctgta atagatatag ccaaaatcct cagtcttaag 300
tatactgatg attcattgga tttgtttgag ggaaaagtac ctcttgtaaa aaacaaagaa 360
ttaattatag ttccaactac atgtggaaca ggttcagaag ttacaaatgt atcagttgca 420
gaattaaaga gaagacatac taaaaaagga attgcttcag acgaattata tgcaacttat 480
gcagtacttg taccagaatt tataaaagga cttccatata agttttttgt aaccagctcc 540
gtagatgcct taatacatgc aacagaagct tatgtatctc caaatgcaaa tccttatact 600
gatatgttta gtgtaaaagc tatggagtta attttaaatg gatacatgca aatggtagag 660
aaaggaaatg attacagagt tgaaataatt gaggattttg ttataggcag caattatgca 720
ggtatagctt ttggaaatgc aggagtggga gcggttcacg cactctcata tccaataggc 780
ggaaattatc atgtgcctca tggagaagca aattatctgt tttttacaga aatatttaaa 840
acttattatg agaaaaatcc aaatggcaag attaaagatg taaataaact attagcaggc 900
atactaaaat gtgatgaaag tgaagcttat gacagtttat cacaactttt agataaatta 960
ttgtcaagaa aaccattaag agaatatgga atgaaagagg aagaaattga aacttttgct 1020
gattcagtaa tagaaggaca gcagagactg ttggtaaaca attatgaacc tttttcaaga 1080
gaagacatag taaacacata taaaaagtta tattaa 1116
<210> 27
<211> 371
<212> PRT
<213> Artificial
<220>
<223> 4hbd基因编码的4-羟基丁酸脱氢酶的氨基酸序列
<400> 27
Met Lys Leu Leu Lys Leu Ala Pro Asp Val Tyr Lys Phe Asp Thr Ala
1 5 10 15
Glu Glu Phe Met Lys Tyr Phe Lys Val Gly Lys Gly Asp Phe Ile Leu
20 25 30
Thr Asn Glu Phe Leu Tyr Lys Pro Phe Leu Glu Lys Phe Asn Asp Gly
35 40 45
Ala Asp Ala Val Phe Gln Glu Lys Tyr Gly Leu Gly Glu Pro Ser Asp
50 55 60
Glu Met Ile Asn Asn Ile Ile Lys Asp Ile Gly Asp Lys Gln Tyr Asn
65 70 75 80
Arg Ile Ile Ala Val Gly Gly Gly Ser Val Ile Asp Ile Ala Lys Ile
85 90 95
Leu Ser Leu Lys Tyr Thr Asp Asp Ser Leu Asp Leu Phe Glu Gly Lys
100 105 110
Val Pro Leu Val Lys Asn Lys Glu Leu Ile Ile Val Pro Thr Thr Cys
115 120 125
Gly Thr Gly Ser Glu Val Thr Asn Val Ser Val Ala Glu Leu Lys Arg
130 135 140
Arg His Thr Lys Lys Gly Ile Ala Ser Asp Glu Leu Tyr Ala Thr Tyr
145 150 155 160
Ala Val Leu Val Pro Glu Phe Ile Lys Gly Leu Pro Tyr Lys Phe Phe
165 170 175
Val Thr Ser Ser Val Asp Ala Leu Ile His Ala Thr Glu Ala Tyr Val
180 185 190
Ser Pro Asn Ala Asn Pro Tyr Thr Asp Met Phe Ser Val Lys Ala Met
195 200 205
Glu Leu Ile Leu Asn Gly Tyr Met Gln Met Val Glu Lys Gly Asn Asp
210 215 220
Tyr Arg Val Glu Ile Ile Glu Asp Phe Val Ile Gly Ser Asn Tyr Ala
225 230 235 240
Gly Ile Ala Phe Gly Asn Ala Gly Val Gly Ala Val His Ala Leu Ser
245 250 255
Tyr Pro Ile Gly Gly Asn Tyr His Val Pro His Gly Glu Ala Asn Tyr
260 265 270
Leu Phe Phe Thr Glu Ile Phe Lys Thr Tyr Tyr Glu Lys Asn Pro Asn
275 280 285
Gly Lys Ile Lys Asp Val Asn Lys Leu Leu Ala Gly Ile Leu Lys Cys
290 295 300
Asp Glu Ser Glu Ala Tyr Asp Ser Leu Ser Gln Leu Leu Asp Lys Leu
305 310 315 320
Leu Ser Arg Lys Pro Leu Arg Glu Tyr Gly Met Lys Glu Glu Glu Ile
325 330 335
Glu Thr Phe Ala Asp Ser Val Ile Glu Gly Gln Gln Arg Leu Leu Val
340 345 350
Asn Asn Tyr Glu Pro Phe Ser Arg Glu Asp Ile Val Asn Thr Tyr Lys
355 360 365
Lys Leu Tyr
370
<210> 28
<211> 33
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-v-F
<400> 28
tcttgtcaac ctagaagaag cttgggatcg ggc 33
<210> 29
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-v-R
<400> 29
gctcagtcag cccgggaatt catgcagttc acttac 36
<210> 30
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-up-F
<400> 30
cttcttctag gttgacaaga atttatacca aagctgtct 39
<210> 31
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-up-R
<400> 31
gcataaaagt aggctcgctc tttcgctgta cgctttttc 39
<210> 32
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-down-F
<400> 32
tacagcgaaa gagcgagcct acttttatgc acgtgactac 40
<210> 33
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD2-down-R
<400> 33
gaattcccgg ctgactgagc ttctcagcca ctttaa 36
<210> 34
<211> 33
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-v-F
<400> 34
ctggttaata ctagaagaag cttgggatcg ggc 33
<210> 35
<211> 35
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-v-R
<400> 35
aagtgcggtt ccgggaattc atgcagttca cttac 35
<210> 36
<211> 36
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-up-F
<400> 36
cttcttctag tattaaccag cattgcttta cgctcg 36
<210> 37
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-up-R
<400> 37
aagaagccaa gcgtaggcgt taatgaaggg ctgatttcta 40
<210> 38
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-down-F
<400> 38
cccttcatta acgcctacgc ttggcttctt cagcgaaaaa 40
<210> 39
<211> 31
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> gabD3-down-R
<400> 39
gaattcccgg aaccgcactt gcttactcaa a 31
<210> 40
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 引物
<400> 40
attttctaga catcggatca ataattctgc 30
<210> 41
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 引物
<400> 41
taaggggtgg agtatatttt tgggc 25
<210> 42
<211> 170
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 启动子序列
<400> 42
agcggataac aatttcacac aggaatgcct ccacaccgct cgtcacatcc tgttgcgttc 60
actggaatcc cagactagag tttgacctgc gagcaagctg tcaccggatg tgctttccgg 120
tctgatgagt ccgtgaggac gaaacagcct ctacaaataa ttttgtttaa 170
<210> 43
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> p68-F
<400> 43
cgagactatc atgcctccac accgctcg 28
<210> 44
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> p68-R
<400> 44
cttgttaaat ttaaacaaaa ttatttgtag aggctgtttc 40
<210> 45
<211> 48
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> orfZ-F
<400> 45
aaataatttt gtttaaattt aacaagacag gatagggagg agataact 48
<210> 46
<211> 56
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> orfZ-R
<400> 46
ctatatcacc ctaaaatctc tttttaaatt cattcattaa tgattctctg aatttt 56
<210> 47
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-up-F
<400> 47
atcgacgaat ctggggtccg tgactgagga 30
<210> 48
<211> 35
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-up-R
<400> 48
gtggaggcat gatagtctcg aatcttccga ccaat 35
<210> 49
<211> 38
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-down-F
<400> 49
gagattttag ggtgatatag agtgtatcgc gcaaagtt 38
<210> 50
<211> 34
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-down-R
<400> 50
gaattcccgg gtcagcaccg gtttggtaaa tctg 34
<210> 51
<211> 33
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-v-F
<400> 51
cggaccccag ctagaagaag cttgggatcg ggc 33
<210> 52
<211> 35
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 68orfZ-v-R
<400> 52
cggtgctgac ccgggaattc atgcagttca cttac 35
<210> 53
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P321-Ptac-F
<400> 53
ttaataacag gacttaaaca aaattatttg tagaggctgt ttcgtc 46
<210> 54
<211> 41
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P321-Ptac-R
<400> 54
atgaactgta caaatgagtc gtgactggga aaaccctggc g 41
<210> 55
<211> 59
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-ogdA-F
<400> 55
tactagagaa agaggagaaa tactagtatg aatactgcag aattattgat ccgatgtct 59
<210> 56
<211> 49
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-ogdA-R
<400> 56
tcatttgtac agttcattta catacggcag attaaatccc ctgattttt 49
<210> 57
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4hbd-F
<400> 57
attttgttta agtcctgtta ttaaaaagta tataaggagg 40
<210> 58
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4hbd-R
<400> 58
attcaaaaca ctatgggata tttaatgatt gtaggttaca ta 42
<210> 59
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-sucD-F
<400> 59
aaatatccca tagtgttttg aatataggat ccaaggagat atacc 45
<210> 60
<211> 48
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-sucD-R
<400> 60
ctagtatttc tcctctttct ctagtattat ccccatattt cctcatag 48
<210> 61
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-F
<400> 61
agatgagaca ggcagctaat ccctcgagcc gtcaattgtc 40
<210> 62
<211> 42
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-R
<400> 62
ttttaatgat gatgcacatg ttacatacgg cagattaaat cc 42
<210> 63
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-up-F
<400> 63
atcgacgaat agtaggcgat 20
<210> 64
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-up-R
<400> 64
attagctgcc tgtctcatct 20
<210> 65
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-down-F
<400> 65
catgtgcatc atcattaaaa att 23
<210> 66
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-down-R
<400> 66
gctatcaatc aacggcccta 20
<210> 67
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-v-F
<400> 67
tagggccgtt gattgatagc ccgggaattc atgcagttca cttac 45
<210> 68
<211> 43
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Ptac-4so-v-R
<400> 68
atcgcctact attcgtcgat ctagaagaag cttgggatcg ggc 43
<210> 69
<211> 170
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 启动子序列
<400> 69
agcggataac aatttcacac aggaatgcct ccacaccgct cgtcacatcc tgttgcgttc 60
actggaatcc cagtatctaa tttgacctgc gagcaagctg tcaccggatg tgctttccgg 120
tctgatgagt ccgtgaggac gaaacagcct ctacaaataa ttttgtttaa 170
<210> 70
<211> 41
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> P-4so-F
<400> 70
aattttgttt aagtcctgtt attaaaaagt atataaggag g 41
<210> 71
<211> 40
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Promoter-F
<400> 71
agatgagaca ggcagctaat atgcctccac accgctcgtc 40
<210> 72
<211> 37
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> Promoter-R
<400> 72
aataacagga cttaaacaaa attatttgta gaggctg 37
<210> 73
<211> 131
<212> DNA
<213> Artificial
<220>
<223> 诱导型启动子Ptac序列
<400> 73
tgttgacaat taatcatcgg ctcgtataat gtgtggaatt gtgagcgctc acaattagct 60
gtcaccggat gtgctttccg gtctgatgag tccgtgagga cgaaacagcc tctacaaata 120
attttgttta a 131

Claims (10)

1.一种重组盐单胞菌,其通过将编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因、编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因引入出发菌盐单胞菌中而得到。
2.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述出发菌盐单胞菌为HalomonasTD01。
3.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因是来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridium kluyveri)的orfZ基因;和/或,其中,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因是来自聚球蓝细菌(Synechococcus sp.)的ogdA基因;和/或,其中,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因是来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridium kluyveri)的sucD基因;和/或,其中,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因是来自克氏梭状芽胞杆菌(Clostridium kluyveri)的4hbd基因。
4.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因如SEQ ID NO:20所述,或者是将SEQ ID NO:20经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:20衍生的DNA分子;和/或,其中,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因如SEQ ID NO:22所述,或者是将SEQ ID NO:22经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:22衍生的DNA分子;和/或,其中,所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因如SEQ ID NO:24所述,或者是将SEQ IDNO:24经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ IDNO:24衍生的DNA分子;和/或,其中,所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因如SEQ ID NO:26所述,或者是将SEQ ID NO:26经过一个或几个核苷酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:26衍生的DNA分子。
5.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述4-羟基丁酰辅酶A转移酶如SEQ IDNO:21所述,或者是将SEQ ID NO:21所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:21衍生的蛋白质;和/或,其中,所述2-酮戊二酸脱羧酶如SEQ ID NO:23所述,或者是将SEQ ID NO:23所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:23衍生的蛋白质;和/或,其中,所述琥珀酸半醛脱氢酶如SEQ ID NO:25所述,或者是将SEQ ID NO:25所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:25衍生的蛋白质;和/或,其中,所述4-羟基丁酸脱氢酶如SEQ ID NO:27所述,或者是将SEQ ID NO:27所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由SEQ ID NO:27衍生的蛋白质。
6.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其是通过将包含编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因的质粒载体和包含编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因的质粒载体引入出发菌盐单胞菌中而得到。
7.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,敲除盐单胞菌基因组上的编码琥珀酸半醛脱氢酶(SSADH)的基因。
8.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因被整合到盐单胞菌基因组上,所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因在质粒载体上;或者,其中,以基因组为载体包含所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因、所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因。
9.根据权利要求1所述的重组盐单胞菌,其中,所述编码4-羟基丁酰辅酶A转移酶的基因、所述编码2-酮戊二酸脱羧酶的基因、所述编码琥珀酸半醛脱氢酶的基因和/或所述编码4-羟基丁酸脱氢酶的基因由诱导型启动子或组成型启动子控制,优选地,由如下启动子序列来控制:SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:73。
10.一种生产P(3HB-co-4HB)的方法,其特征在于,利用权利要求1-9中任一项所述的重组盐单胞菌生产P(3HB-co-4HB)。
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