CN109797139B - 一种3型鸭甲肝病毒弱毒株ch-p60及其应用 - Google Patents

一种3型鸭甲肝病毒弱毒株ch-p60及其应用 Download PDF

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文兴建
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Abstract

本发明公开了一种3型鸭甲肝病毒弱毒株CH‑P60及其应用,该病毒株于2018年12月2日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏地址为:湖北省武汉市武昌区八一路299号武汉大学校内,保藏编号为CCTCC NO:V201861。所述的3型鸭甲肝病毒弱毒株对雏鸭安全,无致病力,且可保护同源强毒的攻毒,具有实际和广泛的应用价值。

Description

一种3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60及其应用
技术领域
本发明属于微生物技术领域,具体涉及一种3型鸭甲肝病毒弱毒 株CH-P60及其应用。
背景技术
鸭病毒性肝炎(Duck virus hepatitis,DVH)是由鸭肝炎病毒(Duck hepatitisvirus,DHV)感染雏鸭引起的一种急性、高度接触性传染病。 目前世界上主要养鸭地区均有本病的存在,具有间歇爆发、地方流行 性等特点,是危害养鸭业的主要疾病之一。该病主要侵害一月龄以内 的雏鸭,具有发病急,传播迅速,病程短和死亡率高等特点;临床主 要表现为雏鸭死前发生痉挛,头向背部后仰,呈“角弓反张”;病理 变化主要为剖检可见肝脏肿大发炎和大量的出血性斑点。该病主要由 属于小RNA病毒科(Picornaviridae)禽肝病毒属(Avihepatovirus)的 鸭甲肝病毒(Duck hepatitis Avirus,DHAV)引起。DHAV具有三种血清型,即DHAV-1、DHAV-2和DHAV-3。近年来,我国流行的DHAV主 要是DHAV-1和DHAV-3。
当前市场上对DHAV的防控主要是使用DHAV-1的弱毒疫苗,它 们可以有效防控DHAV-1在我国的流行,但是不能完全阻止属于不同 血清型的DHAV-3病毒的流行给养殖业造成了巨大的经济损失。因此, 研制适合我国DHAV-3流行情况的疫苗迫在眉睫。
发明内容
为了解决现有技术中存在的问题,本发明的目的是提供一种3型 鸭甲肝病毒弱毒株,并对其在鸭病毒性肝炎预防方面的应用进行研究。
本发明具体通过以下技术方案实现:
本发明提供了一种3型鸭甲肝病毒CH-P60株DHAV-3CH-P60,该 病毒株于2018年12月2日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏地 址为:湖北省武汉市武昌区八一路299号武汉大学校内,保藏编号为 CCTCC NO:V201861。
本发明所述3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60是由DHAV-3分离株作 为种子病毒,经过多次传代致弱获得,具体是使用9日龄健康鸭胚对 DHAV-3进行连续传代致弱,每个代次通过尿囊腔接种5枚鸭胚,每 枚鸭胚接种0.2mL,置于37℃恒温培养箱内孵育36~48小时后无菌 收集鸭胚尿囊液,然后将尿囊液使用灭菌生理盐水稀释100倍后,使 用前述方法做同样处理,将病毒连续传至第60代,获得的病毒即为 CH-P60株。
对病毒株CH-P60进行VP1基因遗传进化分析,其核苷酸序列如 SEQ ID NO:7所示,从GenBank上搜索下载已公布的37株具有代表 意义的DHAV-1、DHAV-2和DHAV-3毒株VP1基因序列,并应用MEGA 7.0软件按Clustal W法对序列进行比对,然后并按Neighbor-Joining法,选bootstrap method 1000参数,构建系统进化树进行病毒遗传进 化分析,病毒株CH-P60在遗传进化树中与流行于中国地区3型鸭甲 肝病毒属于同一分支,与流行于韩国地区的3型鸭甲肝病毒属于不同 分支。
进一步,本发明通过ELD50测定、雏鸭致病力试验、鸭胚中和实 验和雏鸭攻毒保护试验来测定弱毒株生物学特性。试验结果表明 CH-P60毒株对鸭胚适应性增强,对雏鸭不具有致死性,且免疫雏鸭 后,雏鸭的攻毒保护率升高。
在本发明的另一方面,所述的CH-P60毒株在制备预防3型鸭甲 肝病毒疫苗中的应用也在本发明的保护范围内。
在本发明的另一方面,一种预防3型鸭甲肝病毒疫苗,该疫苗有 效成分为3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60。
上述所预防3型鸭甲肝病毒疫苗通过以下步骤制备:
将3型鸭甲肝病毒弱毒株(CH-P60)作为种毒用灭菌生理盐水稀 释后,尿囊腔接种9日龄鸭胚,收集24-72小时死亡鸭胚尿囊液,按 照现行《中华人民共和国兽药典》附录进行无菌和支原体检验,并测 定病毒含量(ELD50);
将经无菌和支原体检验合格的鸭胚尿囊液病毒用无菌PBS或生 理盐水稀释为所需的ELD50,直接作为3型鸭甲肝病毒弱毒(CH-P60) 疫苗;或者向病毒液中加入终浓度为0.1%甲醛溶液,37℃处理24小 时后获得灭活的病毒液,然后使用灭菌磷酸盐缓冲溶液将其稀释至适 当浓度后与弗氏不完全佐剂按照1:1体积比混合,乳化后即制成3型 鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60灭活疫苗。
本发明的有益效果为:
本发明所述3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60是经过连续传代致弱 手段获得的,并且对雏鸭无毒力,将所述弱毒株制成疫苗安全有效, 可保护同源强毒的攻毒,具有实际和广泛的应用价值。
附图说明
图1为病毒分离株接种鸭胚后死亡鸭胚胚体;
图2为RT-PCR方法检测3型鸭甲肝病毒的琼脂糖凝胶电泳结果;
图3为3型鸭甲肝病毒分离株和弱毒株(CH-P60)与其他37株 鸭甲肝病毒参考毒株VP1蛋白氨基酸序列的遗传进化树。
具体实施方式
以下结合具体实施例,对本发明进行详细说明,不是对本发明的 进一步限定。下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常 规方法。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从 商业途径得到。
实施例1 3型鸭甲肝病毒分离鉴定
1.病毒分离
DHAV-3CH分离株于2013年从四川省成都市周边鸭场9日龄发 病北京鸭中分离,具体过程如下:
无菌采集病死雏鸭肝脏,按体积比1:5的比例加入灭菌磷酸盐缓 冲溶液,研磨,反复冻融3次,12000g离心10min,上清液经0.22μ m滤器过滤除菌后经尿囊腔途径接种9日龄鸭胚10枚,每胚接种0.2 mL,接种后的鸭胚置于37℃恒温培养箱内孵育,每8小时照胚1次,记录接种7天内鸭胚死亡情况,弃去24小时之内的死亡鸭胚,收集 其余死亡鸭胚尿囊液,如此盲传5代,死亡鸭胚均呈现典型的鸭肝炎 病毒病变,如图1所示,表现为鸭胚发育不良、胚体四肢水肿严重, 充血等,接种鸭胚死亡时间集中在在接种后36~56小时之间,收获 的病毒(CH-P5)存于-80℃。
2.病毒含量测定
用无菌生理盐水溶液倍比稀释3型鸭甲肝病毒分离株(CH-P5), 选择10-3、10-4、10-5、10-6、10-7和10-8这6个稀释度,分别以每胚 0.2mL的量经尿囊腔途径接种5枚9日龄的鸭胚,另设灭菌生理盐水 对照5个,接种后置于37℃恒温培养箱内孵育,24小时内死亡鸭胚不计,观察并记录7天内接种鸭胚的死亡和存活情况,按Reed-Muech 法计算ELD50,结果显示每0.2mL鸭胚尿囊液中3型鸭甲肝病毒含量 为10-5.50ELD50。
3.病毒鉴定
3.1血清中和试验
采用固定病毒稀释血清法测定兔抗3型鸭甲肝病毒血清对病毒 分离株的中和效价,首先将发明人所在实验室前期制备的兔抗 DHAV-3标准血清(效价≥1:128)用灭菌生理盐水作倍比稀释从2-1到2-9这9个稀释度,同时将经毒价滴定的病毒稀释成每个单位剂量(0.2mL)含200ELD50,然后两者等量混合并加入5%的青、链霉素 双抗37℃水浴l小时,然后以每胚0.2mL的计量接种9日龄健康鸭 胚尿囊腔内,每个稀释度接种5枚鸭胚。另设病毒对照(3型鸭甲肝 病毒CH1株)、阳性血清对照(兔抗CH1株血清)、阴性血清对照(健 康兔血清)和空白对照组(灭菌生理盐水),弃去24小时内死亡的鸭 胚,观察并记录7天内的鸭胚死亡和存活的情况,然后计算病毒的中 和效价。
结果病毒对照组和阴性血清对照组鸭胚全部死亡,阳性血清对照 组和生理盐水对照组鸭胚全部健活,当血清稀释度在2-1~2-6之间时, 鸭胚全部健活,当稀释度在2-7时鸭胚开始失去保护,此时开始,随 稀释度越高,鸭胚保护率越低,直到稀释度为2-9时鸭胚彻底失去保 护。
3.2RT-PCR鉴定
参照TaKaRa MiniBEST Universal RNA Extraction试剂盒的使用说明 书操作,分别从鸭胚尿囊液、肌肉组织和肝脏组织中抽提总RNA,并 使用核酸蛋白检测仪(Bio Rad,Smartspec3000)测定其的核酸浓度和 纯度后,-70℃保存备用。然后使用专利《1型和3型鸭甲肝病毒一步 法双重RT-PCR检测试剂盒、引物对及方法》中的试剂盒以及特异性 引物(表1)对抽提的RNA样品进行一步法双重RT-PCR检测。反应 结束后取PCR扩增产物进行1.0%琼脂糖凝胶电泳检查结果,电泳结 束后于凝胶成像系统中观察并记录结果,如图2所示,获得预期大小 的目的条带。
表1鉴定DHAV-1和DHAV-3的引物序列
Figure BDA0001946153890000061
3.3VP1基因测序与分析
扩增的目的片段经1%琼脂糖凝胶电泳分离后,采用凝胶回收试 剂盒(Omega)切胶回收目的片段。然后将回收的DNA片段送至上 海生工生物工程有限公司进行DNA序列测序,结果显示扩增的目的 基因序列具体为SEQ ID NO:5所示的单链DNA,其与其他3型鸭甲肝病毒VP1基因序列相似性为92~100%。
3.4动物回归试验
将收获的鸭胚尿囊液通过腿部肌肉注射10只1日龄雏鸭,0.2mL/ 只,室内饲养,观察7天,剖解24~96小时内死亡雏鸭。然后取有 典型DVH病变的肝脏制成匀浆并加入双抗溶液(青霉素、链霉素终 浓度均为100IU/mL),8000g离心10min,取上清液经腿部肌肉再次 注射10只1日龄雏鸭,0.2mL/只,室内饲养,观察7天。结果显示 雏鸭发病率为100%,死亡率为80%。
4.病毒纯化
将含3型鸭甲肝病毒分离株(CH-P5)的鸭胚尿囊液经鸭胚有限 稀释法纯化5次后,获得分离株CH-P10株,具体过程如下:
含有病毒的鸭胚尿囊液做10-4~10-9倍的10倍倍比稀释,取各稀 释度的鸭胚尿囊液经尿囊腔途径分别接种5枚9日龄鸭胚,每胚接种 0.2mL,接种后的鸭胚置于37℃恒温培养箱内孵育,每8小时照胚1 次,弃去24小时之内的死亡鸭胚,分别收集其余鸭胚尿囊液,收获 的病毒通过RT-PCR方法检测是否含有DHAV-3病毒。然后取稀释倍数 最低的含毒尿囊液用相同方法连续传代5次进行纯化,最终收获的含 毒尿囊液再次通过病毒含量测定、血清中和试验和动物回归试验,鉴 定纯化效果,结果表明获得纯化的3型鸭甲肝病毒分离株(CH-P10)。
实施例2 3型鸭甲肝病毒弱毒株(CH-P60)的培育
1.毒株连续传代致弱
使用9日龄鸭胚对3型鸭甲肝病毒分离株(CH-P10)进行连续传 代致弱,每代次通过尿囊腔接种5枚鸭胚,0.2mL/枚,接种后置于 37℃恒温培养箱内继续孵育,弃去24小时内死亡鸡胚,收获24~48 小时内死亡的鸭胚的鸭胚尿囊液混匀,然后使用灭菌生理盐水将胚液 进行100倍稀释后进行下一次传代,如此连续传代50代获得CH-P60, 最后进行病毒含量、无菌和支原体检测、外源病毒检测和对易感雏鸭 的安全性试验以确定毒力是否致弱。
2.病毒含量测定
用无菌生理盐水溶液倍比稀释CH-P60,选择10-3、10-4、10-5、10-6、 10-7和10-8这6个稀释度,分别以每胚0.2mL的量接种于9日龄的鸭 胚,每个稀释度接种5枚鸭胚,另设灭菌生理盐水对照5个,接种后 置于37℃恒温培养箱内孵育,24小时内死亡鸭胚不计,观察并记录7天内接种鸭胚的死亡和存活情况,按Reed-Muech法计算ELD50, 每0.2mL病毒含量为10- 8.37ELD50,表明CH-P60毒株对鸭胚适应性增 强。
3.无菌和支原体检测
将CH-P60按照现行《中华人民共和国兽药典》附录进行无菌和 支原体检验,检测结果均为阴性。
4.外源病毒检测
将CH-P60按照现行《中华人民共和国兽药典》附录进行外源病 毒检测,检测结果均为阴性。
5.对易感雏鸭的安全性试验
使用亲本毒(CH-P10)和CH-P60进行安全性试验,1日龄健康 雏鸭30只随机分为3组,试验组经肌肉注射途径接种亲本毒(CH-P10) 和CH-P60,每只接种105.0ELD50/0.2mL,另一组作为对照接种0.2mL 灭菌生理盐水,在不同动物房内隔离饲养,自由饮水采食,接种后每 日观察,记录雏鸭的发病、死亡情况,及时剖检死亡雏鸭,观察7天 后剖检存活雏鸭,记录雏鸭肝脏、肾脏等器官的病变情况。
亲本毒(CH-P10)接种后雏鸭发病率100%,死亡率为80%,而 CH-P60致病力已明显下降,雏鸭在接种后同注射灭菌生理盐水的对 照组雏鸭一样,精神采食完全正常,无神经症状,无死亡,剖检肝脏 和肾脏无病变,结果表明表明该减毒毒株毒力已明显下降。
6.VP1基因遗传进化分析
参照TaKaRa MiniBEST Universal RNA Extraction试剂盒的使用说明 书操作,分别从亲本毒(CH-P10)和CH-P60的尿囊液中抽提总RNA, 并使用核酸蛋白检测仪(BioRad,Smartspec3000)测定其的核酸浓度 和纯度后,使用专利《1型和3型鸭甲肝病毒一步法双重RT-PCR检 测试剂盒、引物对及方法》中的试剂盒以及特异性引物(表1)对抽 提的RNA样品进行一步法双重RT-PCR检测。反应结束后取PCR扩增 产物经1%琼脂糖凝胶电泳分离后,采用凝胶回收试剂盒(Omega) 切胶回收目的片段。然后将回收的DNA片段送至上海生工生物工程 有限公司进行DNA序列测序,结果显示扩增的目的基因序列具体为SEQ ID NO:6和SEQ ID NO:7所示的单链DNA,它们与分离株(CH-P5) 的VP1基因序列相似性为100%,显示病毒在传代过程中其主要结构 蛋白VP1未发生突变。
另外,从GenBank上搜索下载已公布的37株具有代表意义的 DHAV-1、DHAV-2和DHAV-3毒株VP1基因序列,并应用MEGA 7.0软 件按Clustal W法对序列进行比对,然后并按Neighbor-Joining法,选 bootstrap method 1000参数,构建系统进化树进行病毒遗传进化分析, 结果如图3所示,本发明中的3型鸭甲肝病毒强毒株(CH-P5和CH-P10) 和弱毒株(CH-P60)在遗传进化树中与流行于中国地区3型鸭甲肝病 毒属于同一分支,与流行于韩国地区的3型鸭甲肝病毒属于不同分支。
实施例3 3型鸭甲肝病毒弱毒株(CH-P60)的应用
1.病毒液的制备
将实施例二获得的3型鸭甲肝病毒弱毒株(CH-P60)作为种毒用 灭菌生理盐水稀释100倍,尿囊腔接种20枚9日龄鸭胚,每胚0.2mL, 置37℃恒温培养箱内继续孵育,接种后24小时后照蛋1次,弃去死 胚,以后每隔8小时照蛋1次,将死亡的鸭胚随时取出,至48小时,鸭胚全部死亡,将收集的鸭胚气室向上直立,置于4℃冷却8小时, 将冷却后的无菌收集鸭胚尿囊液,置于-20℃保存备用。
2.毒液的检验
收获的病毒液按照现行《中华人民共和国兽药典》附录进行无菌 和支原体检验,并抽样一份测定病毒含量(ELD50),结果收获的病毒液 无菌生长,每0.2mL病毒含量为107.91ELD50。
3.疫苗的制备方法
将上述经无菌和支原体检验合格的鸭胚尿囊液病毒用无菌PBS 或生理盐水稀释为所需的ELD50,直接作为3型鸭甲肝病毒弱毒 (CH-P60)疫苗;同时采用终浓度为0.1%的甲醛溶液处理检验合格 的病毒液,37℃灭活24小时,然后使用灭菌磷酸盐缓冲溶液将病毒含量稀释至106ELD50/0.1mL后与弗氏不完全佐剂等体积乳化混匀, 即制成3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60灭活疫苗。
4.疫苗的安全性试验
以10倍免疫剂量免疫1日龄雏鸭,检验疫苗的安全性,疫苗免 疫1日龄雏鸭10只,每只经腿部肌肉接种途径接种3型鸭甲肝病毒 弱毒(CH-P60)活疫苗0.2mL(106ELD50)或10羽份灭活疫苗,同 时取10只雏鸭注射灭菌生理盐水作为对照组,隔离饲养,自由饮水 采食,每日观察记录雏鸭的健康情况,观察7天后剖解雏鸭,结果3 型鸭甲肝病毒弱毒(CH-P60)活疫苗和灭活疫苗免疫组与对照组雏鸭 在接种7天内均无发病,且肝脏、肾脏等器官无病变,表明疫苗对1 日龄雏鸭没有致病性。
5.疫苗的效力试验
1日龄雏鸭30只随机分为3组,第一组10只免疫一羽份上述制 备得到的3型鸭甲肝病毒弱毒(CH-P60)活疫苗,腿部肌肉注射途径 每只105ELD50/0.2mL;第二组10只免疫一羽份上述制备得到的3型 鸭甲肝病毒弱毒(CH-P60)灭活疫苗;第三组注射等量灭菌生理盐水作为对照,隔离饲养,自由饮水采食,接种后每日观察记录雏鸭的情 况,5天后用10倍LD50剂量亲本毒(CH-P10株)进行攻毒,攻毒后 每日观察记录雏鸭的发病、死亡情况,及时剖检死亡雏鸭,持续观察 1周,剖检存活雏鸭,记录肝脏、肾脏等器官的病变情况。
免疫后5天内实验组和对照组雏鸭均正常,攻毒后对照组第2天 有雏鸭精神不振,出现神经症状,至第7天,共5只死亡,存活雏鸭 有不同程度的肝脏出血等病变,发病率80%(8/10),死亡率60% (6/10),而免疫组雏鸭无发病死亡,雏鸭健康无异常,表明用致弱 的CH-P60病毒制备的疫苗安全有效,可以保护同源强毒的攻毒。
应当理解的是,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明 加以改进或变换,而所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要 求的保护范围。
序列表
<110> 四川农业大学
<120> 一种3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60及其应用
<160> 7
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
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<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
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<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
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<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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Claims (3)

1.一种3型鸭甲肝病毒(Duck hepatitis A virus)弱毒株CH-P60,其特征在于,所述的3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60于2018年12月2日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC NO:V201861;
所述的3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60的VP1核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示。
2.权利要求1所述的3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60在制备预防3型鸭甲肝病毒疫苗中的应用。
3.一种预防3型鸭甲肝病毒疫苗,其特征在于,该疫苗有效成分为3型鸭甲肝病毒弱毒株CH-P60。
CN201910036716.XA 2019-01-15 2019-01-15 一种3型鸭甲肝病毒弱毒株ch-p60及其应用 Active CN109797139B (zh)

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