CN109706095A - 一株解淀粉芽孢杆菌及其应用 - Google Patents

一株解淀粉芽孢杆菌及其应用 Download PDF

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CN109706095A CN201811640572.0A CN201811640572A CN109706095A CN 109706095 A CN109706095 A CN 109706095A CN 201811640572 A CN201811640572 A CN 201811640572A CN 109706095 A CN109706095 A CN 109706095A
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Abstract

本发明公开了一种解淀粉芽孢杆菌及其应用,所述解淀粉芽孢杆菌命名为JP‑1,保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏号为CCTCC NO:M 2017848。该解淀粉芽孢杆菌从酱香型窖内酒醅中分离得到,具有良好发酵能力和产蛋白酶、淀粉酶的能力,并且产酱香能力优良。解淀粉芽孢杆菌代谢产生的蛋白酶和淀粉酶可将食品原料中的蛋白质水解成多种氨基酸、淀粉水解为糖类,能在短时间内分解富含蛋白和碳水化合物的食品原料,使其具有特有的酱香风味,增强食品的营养价值并产生浓郁风味。

Description

一株解淀粉芽孢杆菌及其应用
技术领域
本发明涉及一株解淀粉芽孢杆菌及其应用,特别是一株具有良好发酵能力和产蛋白酶和淀粉酶的能力的解淀粉芽孢杆菌及其应用。
背景技术
芽孢杆菌的菌体呈杆状,形态为长直或接近直,大小为0.3~2.2×1.2~7.0微米。多数运动,鞭毛典型侧生。菌体可形成耐热内生孢子,在一个孢子囊细胞中,孢子不多于1个。菌体暴露在空气中并不妨碍孢子的形成,革兰氏染色为阳性呈蓝色。有机化能营养,可利用多种底物进行严格呼吸代谢,严格发酵代谢或者呼吸和发酵二者兼有的代谢。在呼吸代谢中,最终的电子受体是分子氧,在一些种中可以用硝酸盐代替氧,大多数的种可以产生氢氧化物酶,严格好氧或兼性厌氧。
解淀粉芽孢杆菌是芽孢杆菌属中的一个种,严格好氧,革兰氏阳性菌,细胞可运动,大小为0.7~0.9×1.8~3.0微米。菌体经常呈链状排列,可以形成椭圆的芽孢,芽孢中生。最适生长温度为30~40℃,VP反应阳性,可以降解酪蛋白、明胶、淀粉、吐温20、40以及60,能耐受5%以上的盐浓度。
解淀粉芽孢杆菌代谢的蛋白酶可将原料中的蛋白质水解成多种氨基酸,而某些氨基酸对酱香风味的形成有促进作用,且与被解淀粉芽孢杆菌代谢的淀粉酶分解的羰基化合物通过美拉德反应产生多种香味物质。
因此,发掘出一株解淀粉芽孢杆菌并应用于制备富含高蛋白或高碳水化合物的食品发酵中具有重要意义。
发明内容
本发明的目的在于,提供一种解淀粉芽孢杆菌及其应用,本发明解淀粉芽孢杆菌具有良好发酵能力和产蛋白酶、淀粉酶的能力,芽孢杆菌代谢产生的蛋白酶和淀粉酶可将原料中的蛋白质水解成多种氨基酸,淀粉水解成糖类,能在短时间内分解富含蛋白和碳水化合物的食品使其具有特有的酱香风味,增强食品中的营养价值并产生浓郁风味。
本发明的技术方案:一株解淀粉芽孢杆菌,所述解淀粉芽孢杆菌命名为JP-1,于2017年12月28日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏号为CCTCC NO:M 2017848。
一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,所述制品的活性成分包括前述的解淀粉芽孢杆菌。
一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,所述制品的活性成分是前述的解淀粉芽孢杆菌。
前述的富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,所述制品还包括用于制备富含蛋白质和/或碳水化合物制品的常规成分和/或用于培养所述的解淀粉芽孢杆菌的培养基成分。
一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品的制备方法,采用前述的解淀粉芽孢杆菌作为制备所述制品的活性成分或活性成分之一。
一种制备富含蛋白质和/或碳水化合物食品的方法,在制备过程中添加和/或使用前述的制品。
一种具有产蛋白酶和淀粉酶能力的微生物菌剂,所述菌剂的活性成分包括前述的解淀粉芽孢杆菌。
一种具有产蛋白酶和淀粉酶能力的微生物菌剂,所述菌剂的活性成分是前述的解淀粉芽孢杆菌。
前述的具有产蛋白酶和/或淀粉酶能力的微生物菌剂,还包括用于制备菌剂的常规成分。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
1、本发明从酱香酒醅中分离出解淀粉芽孢杆菌,具有优良的产酱香能力,且具有产蛋白酶、淀粉酶能力,芽孢杆菌代谢产生蛋白酶和淀粉酶可将原料中的蛋白质水解成多种氨基酸,淀粉水解成糖类,能在短时间内分解富含蛋白质和碳水化合物的食物原料,形成酱香风味物质或其前体物质,增强食品的营养价值并产生浓郁风味。
2、该解淀粉芽孢杆菌经过本发明的培养基优优化后具有更强的产蛋白酶、淀粉酶的能力和并且能产生更好风味。
3、本发明的解淀粉芽孢杆菌耐高温,为应用中的运输和保存提供了便利。
附图说明
图1是JP-1镜检图;
图2是JP1-系统发育树图;
图3是4株芽孢杆菌发酵大豆的评分图;
图4是发酵后的大豆图;
图5是酪氨酸标准曲线图;
图6是葡萄糖标准曲线图;
图7是发酵时间对JP-1菌株产蛋白酶活力的影响;
图8是发酵时间对JP-1菌株产淀粉酶活力的影响;
图9是温度对JP-1菌株产蛋白酶活力的影响;
图10是温度对JP-1菌株产淀粉酶活力的影响;
图11是接种量对JP-1菌株产蛋白酶活力的影响;
图12是接种量对JP-1菌株产淀粉酶活力的影响。
具体实施方式
实施例1:
本发明解淀粉芽孢杆(命名为JP-1)是从酱香型酒醅中分离获得到的,保藏于中国典型培养物保藏中心保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏号为CCTCC NO:M 2017848。
1、解淀粉芽孢杆菌CCTCC NO:M 2017848的鉴定
(1)菌体形态
将分离的解淀粉芽孢杆菌CCTCC NO:M 2017848在牛肉膏蛋白胨琼脂培养基上培养48h后菌落为圆形,白色,平展,表面粗糙,中间有圆环形突起,边缘整齐;光学显微镜下观察到杆状细胞(图1),大多数运动,鞭毛周生,细胞为0.6~0.8×3~5μm,革兰氏染色均匀,并可见细胞中被染成蓝紫色芽孢。
(2)细菌的16S rRNA分子学鉴定
提取方法主要参照TIANGEN TIANamp BACTERia DNA Kit试剂盒说明书进行,提取得到DNA后PCR扩增测序(16s rDNA序列测定由上海生工生物工程有限公司进行序列测定),得到结果如图2,鉴定为解淀粉芽孢杆菌Bacillus amyloliquefaciens,命名为JP-1。
实施例2:
本发明提供一种解淀粉芽孢杆菌微生物菌剂应用于富含高蛋白和/或高碳水化合物的食品中,也可根据实际的生产条件及产品进行相应的调整;解淀粉芽孢杆菌微生物菌剂的备步骤如下:
1)种子液的制备:将保藏于-80℃的解淀粉芽孢杆菌放置于4℃的环境中,待其解冻后于牛肉膏蛋白胨琼脂培养基上划线于47℃培养24小时,从培养基上挑取一环菌苔接种至装有牛肉膏蛋白胨培养液的三角瓶中,在47℃下,180r/min摇床振荡培养18h,然后将培养液于温度为4℃的离心机中在转速为4000r/min离心3min,弃去上清液取沉淀用生理盐水洗涤1次,离心收集菌体,加入生理盐水调整浓度为108CFU/mL得到种子液;
2)接种培养:接3%的种子液于发酵培养基上于47℃下发酵48h,待培养基中孢子含量≥1000亿/克时停止发酵,将其磨成粉末得到微生物菌剂。
步骤2)中所述的发酵培养基的制备方法如下:将高粱、小麦、麸皮按1:1:1的质量比混匀,加入三者总重量60%的水,浸润20h,经蒸煮后冷却至室温打散,121℃灭菌30min得到发酵培养基。
且所述的高粱与小麦是将干燥高粱、干燥小麦破碎为高粱沙、高粱粉以及小麦沙和小麦粉且添加沙与粉的比例都为1:1。
实施例:3:
1解淀粉芽孢杆菌产酱香性能测定
1.1材料与设备
1.1.1菌种
实验菌株为4株芽孢杆菌:解淀粉芽孢杆菌(JP-1)、蜡样芽孢杆菌(CP-3)、2株纳豆芽孢杆菌(ND-1、ND-2),其中解淀粉芽孢杆菌从贵州某酱香酒厂得窖内酒醅中分离得到,而蜡样芽孢杆菌从酱香成品曲分离得到,2株纳豆芽孢杆菌从日本纳豆中分离得到。
1.1.2实验试剂
生理盐水,0.85g氯化钠,蒸馏水100mL;0.1mol/L盐酸;0.1mol/L氢氧化钠;平板计数琼脂(PCA):上海博微生物科技有限公司。
牛肉膏蛋白胨培养液:牛肉膏3g,蛋白胨10g,氯化钠5g,蒸馏水1000mL。
大豆培养基:大豆原产地为贵州大方。大豆:水量的体积比为1:4,浸泡过夜14h,称40g的大豆装入250ml的三角瓶中,纱布封口,121℃灭菌20min。
1.1.3实验仪器与设备
电子分析天平:上海青海仪器有限公司;LS-B75L-I立式压力蒸汽灭菌锅:江阴滨江医疗设备有限公司;XW-80涡旋混合器:江苏海门市麒麟医用仪器厂;超净工作台:苏州市金净净化设备科技有限公司;HPX-9082MBE数显电热培养箱:上海博讯实业有限公司医疗设备厂;TGL20M台式高速冷冻离心机:长沙麦佳森仪器设备有限公司;HZQ-X100恒温振荡培养箱:太仓市试验设备厂;HPX-9082MBE数显电热培养箱:上海博讯实业有限公司医疗设备厂;
1.2实验方法
1.2.1种子液制备
将活化的菌株挑取几环菌苔接种至装有牛肉膏蛋白胨培养液的三角瓶中。47℃,180r/min摇床振荡培养18h左右。菌液4000r/min离心3min,沉淀再用生理盐水洗涤1次,离心收集菌体,用生理盐水配制一定的浓度,使其菌落数达到108CFU/mL。
1.2.2解淀粉芽孢杆菌产酱香的初步评定
1.2.2.1接种
在无菌超净台上,向装有灭菌冷却30℃左右的大豆培养基中接入3%的种子液,混匀,封口,置于42~47℃恒温培养箱培养48h。同时以三株芽孢杆菌(菌株号分别为ND-1、ND-2、CP-3))发酵大豆作为对照,以未接种的大豆发酵培养基为空白。
1.2.2.2感官评定
邀请12名食品专业研究生和老师组成评定小组,对发酵的大豆进行感官评分,每隔半小时重复评分两次(取平均值)。评分时,评分人员之间不得交谈,独立进行评分,避免相互影响。以酱香得分和总分的平均值高低进行产酱香菌株的筛选。评分标准见表1:
表1芽孢杆菌产酱香的评分标准
感官评价结果:大豆的评分包括酱香、色泽(由于大豆表面布满菌体,而与三角瓶接触的底部菌体较少,故褐变的判断通过观看瓶底底部)和粘稠度或拉丝,褐变与美拉德反应有关,粘稠度或拉丝与芽孢杆菌的有关分泌的酶有关(拉丝物质是谷氨酸多肽与果聚糖混合物)。由图3可以看出,从总分上来看,JP-1>ND-1>CP-3>ND-2>K,从酱香的评分上,JP-1>ND-1>CP-3>ND-2>K,JP-1菌株发酵大豆的总分和酱香得分均最高,最低的是空白K。通过对4株芽孢杆菌的产酱香评定,JP-1菌株产酱香评分最高,具有产酱香的特性。各菌株发酵的大豆见图4。
通过接种发酵大豆,对其产酱香进行了感官评定,解淀粉芽孢杆菌具有产酱香特性。且芽孢杆菌JP-1的酱香评分最高,产酱香较好、酱香浓郁。
2解淀粉芽孢杆菌产酶性能测定
2.1材料与设备
2.1.1实验试剂
3,5-二硝基水杨酸(分析纯):国药集团化学试剂有限公司;酒石酸钾钠:成都金山化学试剂有限公司;无水碳酸钠:天津市永大化学试剂有限公司;福林酚试剂、L-酪氨酸:北京Solarbio公司;酪蛋白:Biosharp公司;三氯乙酸(TCA):天津富宇精细化工有限公司;磷酸氢二钾:天津市致远化学试剂有限公司;磷酸二氢钾:上海广诺化学科技有限公司;可溶性淀粉、葡萄糖、氯化钠、氢氧化钠、亚硫酸钠:成都金山化学试剂有限公司;盐酸:重庆川东化(集团)有限公司。如无特殊说明,均为分析纯。
牛肉膏蛋白胨培养液:牛肉膏3g,蛋白胨10g,氯化钠5g,蒸馏水1000mL。
麸皮培养基:麸皮99g,葡萄糖1g,加水70ml,搅拌均匀后,121℃灭菌15min。
高粱培养基:将干燥高粱破碎为高粱沙、高粱粉各半,加入60%的水,浸润18h,蒸煮、冷却、打散,称取40g于250mL的三角瓶中,121℃灭菌15min备用。
小麦培养基:将干燥小麦麦粒破碎为麦沙、麦粉各半,后续操作同高粱培养基。
高粱小麦固态培养基:称取粉、沙各半的小麦、高粱,质量比1:1混匀,后续操作同高粱培养基。
高粱小麦麸皮培养基:称取粉、沙各半的小麦、高粱,在加入麸皮,三者质量比为1:1:1混匀,后续操作同高粱培养基。
2.1.2实验仪器与设备
电子分析天平:上海青海仪器有限公司;LS-B75L-I立式压力蒸汽灭菌锅:江阴滨江医疗设备有限公司;XW-80涡旋混合器:江苏海门市麒麟医用仪器厂;超净工作台:苏州市金净净化设备科技有限公司;HPX-9082MBE数显电热培养箱:上海博讯实业有限公司医疗设备厂;TGL20M台式高速冷冻离心机:长沙麦佳森仪器设备有限公司;HZQ-X100恒温振荡培养箱:太仓市实验设备厂;HPX-9082MBE数显电热培养箱:上海博讯实业有限公司医疗设备厂;L5S紫外可见分光光度计:上海仪电分析仪器有限公司。
2.2实验方法
2.2.1种子液制备
同1.2.1。
2.2.2产酱香培养基的选择
试验前期对芽孢杆菌JP-1在固、液态培养基中发酵做了对比,发现固态发酵产酱香比较浓郁,而液态发酵中杂味较多,且酱香较淡,故采用固态发酵。
2.2.2.1接种培养
将JP-1的种子液按3%的接种量分别接种至麸皮培养基、小麦培养基、高粱培养基、高粱小麦培养基、高粱小麦麸皮培养基中。45℃恒温培养箱培养4d。
2.2.2.2感官评定
邀请7名具有食品专业且在酱香型酒厂参加两星期实习的同学和一名老师组成评定小组,以很弱、弱、一般、强、很强五个等级对酱香味进行评定,每隔半小时重复评分两次(结果取平均值)。评分标准如表2所示。
表2酱香味强弱的评分标准(10分)
2.2.3产酶发酵条件的单因素实验设计
2.2.3.1发酵时间
2.2.3.1.1接种培养
在2.2.2筛选到的培养基基础上,向装有10g已灭菌的培养基中接入3%的种子液,每个瓶子分别编上0h、12h、24h、48h、72h、96h,做两个平行,置于45℃培养箱中培养,到相应的时间取出对应编号的三角瓶。
2.2.3.1.2粗酶液的制备
向发酵醅中加入100mL的蒸馏水,置于40℃水浴锅浸提1h,每隔15min搅拌一次,1h后转入离心管中,6000r/min离心3min,取上清液作为粗酶液。
2.2.3.1.3蛋白酶活力测定
(1)绘制标准曲线
称取干燥无水的酪氨酸0.1000g,用0.1mol/L的盐酸溶液溶解,定容到100mL,得到1mg/mL的酪氨酸溶液。
吸取1mg/mL的酪氨酸溶液10mL,用蒸馏水定容到100mL,得到100μg/mL的酪氨酸溶液,再配制成0、10、20、30、40、50、60、70、80μg/mL的酪氨酸溶液。
分别取上述酪氨酸溶液各1mL(做3个平行),各加0.4mol/碳酸钠溶液5mL、福林试剂(2倍蒸馏水稀释)1mL。混合,置于40℃水浴显色20min,在680nm处测定吸光度(1cm比色皿,以不含酪氨酸的反应液为空白对照),绘制标准曲线(3个平行取平均值)。
(2)酶活测定——福林酚法
吸取酶浸出液1mL,注入10mL离心管中,在40℃±2℃水浴中预热5min,准确加入20g/L酪蛋白溶液1mL,计时,准确保温10min,立刻加入2mL 0.4mol/L三氯乙酸溶液,以沉淀多余的蛋白质,终止酶解反应。15min后离心分离(或用干滤纸过滤)。吸取上层清液1mL,注入试管中,加入5mL 0.4mol/L碳酸钠溶液和1mL福林酚试剂,摇匀,在40℃±2℃水浴中加热显色20min。
空白试验:与试样测定同时进行,离心管中先后注入酶浸出液1mL,三氯乙酸2mL、20g/L酪蛋白。15min后离心分离或过滤,以下的操作均与试样测定相同。
以空白液为对照,在680nm波长下,1cm比色皿测定试样的吸光度。
定义:1g发酵醅,在40℃,一定pH条件下,1min水解酪蛋白生成1mg酪氨酸所需的酶量为1个酶活力单位(U/g)。
蛋白酶活力=K*A*4*100*1/10*1/m
式中K——吸光度为1时相当的酪氨酸微克数(吸光数);
A——试样吸光度;
m——干曲质量;
100——酶浸出液总体积,mL;
4——酶反应液总体积,mL;
10——反应时间,min;
2.2.3.1.4淀粉酶活力测定
(1)葡萄糖标准曲线
称取烘至恒重的葡萄糖0.1000g,配置成0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2mg/ml的标准液,采用3,5-二硝基水杨酸显色法,在540nm处测定吸光值,葡萄糖含量为横坐标,吸光值为纵坐标,绘制标准曲线。
(2)酶活测定——3,5-二硝基水杨酸法
粗酶液0.2mL与质量分数为1%的淀粉溶液1mL于40℃水浴5min后,沸水浴5min终止反应,加入1ml 3,5-二硝基水杨酸(DNS),沸水浴5min后迅速冷却,10ml定容,于波长540nm处测定其吸光度值,以煮沸1%的淀粉溶液为空白。
酶活力单位定义:在40℃,1g发酵醅1min催化底物生成1mg葡萄糖的酶量为一个酶活力单位(U/g)。
2.2.3.2发酵温度
2.2.3.2.1接种培养
在发酵时间确定的基础上,向培养基中将接入3%的种子液,分别置于32℃、37℃、42℃、47℃、52℃的恒温培养箱中培养。
2.2.3.2.2粗酶液的制备
方法同2.2.3.1.2。
2.2.3.2.3蛋白酶活力测定
方法同2.2.3.1.3。
2.2.3.2.4淀粉酶活力测定
方法同2.2.3.1.4。
2.2.3.3接种量
2.2.3.3.1接种培养
在发酵温度确定的基础上,将种子液按1%、3%、5%、7%、9%分别接入培养基中,置于培养箱中培养。
2.2.3.3.2粗酶液的制备
方法同2.2.3.1.2。
2.2.3.3.3蛋白酶活力测定
方法同2.2.3.1.3。
2.2.3.3.4淀粉酶活力测定
方法同2.2.3.1.4。
2.2.4产酶发酵条件的正交实验设计
根据解淀粉芽孢杆菌发酵条件的单因素实验结果,选择发酵时间、发酵温度、接种量3个影响因素,每个因素取3个水平,如表3到表4所示。按照正交表L9(34)设计方案并进行实验。
表3JP-1菌株产蛋白酶的正交试验因素及水平
表4JP-1菌株产淀粉酶的正交试验因素及水平
2.3试验结果
2.3.1解淀粉芽孢杆菌产酱香培养基的确定
表5JP-1菌株发酵产酱香味强弱的评分结果
由表5可以看出,JP-1菌株以高粱小麦麸皮培养基发酵产酱香的评分最高,产酱香的评分属于强级。以麸皮为培养基的评分最低,基本上只有麸皮的味道。
2.3.2酪氨酸标准曲线
如图5所示,酪氨酸浓度在0~80μg/mL范围内时,对应的吸光值与酪氨酸浓度成良好的线性关系,回归方程为y=0.013x+0.0006,R2=0.9972。将y=1带入回归方程,计算出K值。
2.3.3葡萄糖标准曲线
如图6所示,葡萄糖含量在0~1.2mg范围内时,对应的吸光值与葡萄糖含量成良好的线性关系,回归方程为y=1.1952x-0.0283,R2=0.9986。将芽孢杆菌产淀粉酶的吸光度带入回归方程即可计算出相应的葡萄糖含量。
2.3.4发酵时间对解淀粉芽孢杆菌产酶的影响
由图7可以看出,在0h时,培养基中的蛋白酶活力基本为零,在0~72h内,解淀粉芽孢杆菌JP-1产蛋白酶的活力均呈上升趋势,在72h蛋白酶活力菌均达到最大,JP-1菌株的蛋白酶活力为197.01±11.935U/g,在72~96h时,蛋白酶活力下降,故芽孢杆菌JP-1产蛋白酶活力的最佳发酵时间为72h。
由图8可以看出,芽孢杆菌JP-1在0~72h内产淀粉酶活力呈上升趋势,在72h产淀粉酶活力达到最大,为23.96±0.942U/g,在72~96h呈下降趋势,故芽孢杆菌JP-1产淀粉酶活力的最佳发酵时间为72h。
2.3.5发酵温度对解淀粉芽孢杆菌产酶的影响
由图9可以看出,芽孢杆菌JP-1在32~47℃范围内产蛋白酶活力呈上升趋势,在47℃蛋白酶活力最大,为236.17±5.867U/g,在52℃时酶活力基本为零,故芽孢杆菌JP-1产蛋白酶活力的最佳发酵温度为47℃。
由图10可以看出,芽孢杆菌JP-1在32~47℃范围内产淀粉酶活力呈上升趋势,在47℃淀粉酶活力最大,为25.4±0.529U/g,故芽孢杆菌JP-1产淀粉酶活力的最佳发酵温度为47℃。
2.3.6接种量对解淀粉芽孢杆菌产酶的影响
由图11可以看出,芽孢杆菌JP-1接种量为1~5%时,蛋白酶活力呈上升趋势,接种量为5%时蛋白酶活力最大,为268.86±7.128U/g,接种量为5~9%时,蛋白酶活力呈下降趋势。故芽孢杆菌JP-1产蛋白酶活力的最佳接种量为5%。
由图12可以看出,芽孢杆菌JP-1接种量为1~9%时,淀粉酶活力呈上升趋势,接种量为9%时淀粉酶活力最大,为26.69±0.982U/g,接种量为9~13%时,淀粉酶活力呈下降趋势。故芽孢杆菌JP-1产淀粉酶活力的最佳接种量为9%。
2.3.7解淀粉芽孢杆菌产酶条件的优化
表6JP-1菌株产蛋白酶条件的正交实验结果
表7JP-1菌株产蛋白酶条件的正交实验方差分析
注:*代表方差分析差异显著(p<0.05)
由表6、表7可知,极差分析表明影响芽孢杆菌JP-1产蛋白酶的因素显著程度依次为:B发酵温度>C接种量>A发酵时间,发酵温度对芽孢杆菌JP-1产蛋白酶的影响显著(p<0.05)。最佳产酶条件组合A1B2C1,即发酵时间为48h、发酵温度为47℃、接种量为3%,验证实验测得在此条件下蛋白酶活力为305.56±7.382U/g,较优化前提高了41.53%。
表8JP-1菌株产淀粉酶条件的正交实验结果
表9JP-1菌株产淀粉酶条件的正交实验方差分析
注:*代表方差分析差异显著(p<0.05)
由表8、表9可知,极差分析表明影响芽孢杆菌JP-1产淀粉酶的因素显著程度依次为:A发酵时间>C接种量>B发酵温度,发酵时间、接种量对芽孢杆菌JP-1产淀粉酶的影响显著(p<0.05)。最佳产酶条件组合A2B1C3,即发酵时间为72h、发酵温度为42℃、接种量为11%,验证实验测得在此条件下淀粉酶活力为23.35±1.431U/g,较优化前提高了51.92%。
通过以上实验例证明解淀粉芽孢杆菌JP-1具有良好发酵能力和产蛋白酶、淀粉酶的能力,并且产酱香能力良好;且通过本发明的发酵培养基培养后蛋白酶活力和淀粉酶活力均得到优化,蛋白酶活力为305.56±7.382U/g,较优化前提高了41.53%;淀粉酶活力为23.35±1.431U/g,较优化前提高了51.92%。
序列表
<110> 贵州大学
<120> 一种解淀粉芽孢杆菌及其应用
<130> 2018
<141> 2018-12-29
<160> 1
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1512
<212> DNA
<213> 解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)
<400> 1
atgagttaac ctggtgtacg actcacccat tcatctgttc aactcgcgct ggcttcccaa 60
aaaaggtact cacgaactcg gggtgttaac aaactctcgt ggtgtgacgg cggtgtgtac 120
aaggccggga aacgtattca ccgcggcatg ctgatccgcg attactagcg attccagctt 180
cacgcagtcg agttgcagac tgcgatccga actgagaaca gatttgtggg attggcttaa 240
cctcgcggtt tcgctgccct ttgttctgcc cattgtagca cgtgtgtagc ccaggtcata 300
aggggcatga tgatttgacg tcatccccac cttcctccgg tttgtcaccg gcagtcacct 360
tagagtgccc aactgaatgc tggcaactaa gatcaagggt tgcgctcgtt gcgggactta 420
acccaacatc tcacgacacg agctgacgac aaccatgcac cacctgtcac tctgcccccg 480
aaggggacgt cctatctcta ggattgtcag aggatgtcaa gacctggtaa ggttcttcgc 540
gttgcttcga attaaaccac atgctccacc gcttgtgcgg gcccccgtca attcctttga 600
gtttcagtct tgcgaccgta ctccccaggc ggagtgctta atgcgttagc tgcagcacta 660
aggggcggaa accccctaac acttagcact catcgtttac ggcgtggact accagggtat 720
ctaatcctgt tcgctcccca cgctttcgct cctcagcgtc agttacagac cagagagtcg 780
ccttcgccac tggtgttcct ccacatctct acgcatttca ccgctacacg tggaattcca 840
ctctcctctt ctgcactcaa gttccccagt ttccaatgac cctccccggt tgagccgggg 900
gctttcacat cagacttaag aaaccgcctg cgagcccttt acgcccaata attccggaca 960
acgcttgcca cctacgtatt accgcggctg ctggcacgta gttagccgtg gctttctggt 1020
taggtaccgt caaggtgccg ccctatttga acggcacttg ttcttcccta acaacagagc 1080
tttacgatcc gaaaaccttc atcactcacg cggcgttgct ccgtcagact cttcgtccat 1140
tgcggaagat tccctactgc tgcctcccgt aggagtctgg gccgtgtctc agtcccagtg 1200
tggccgatca ccctctcagg tcggctacgc atcgtcgcct tggtgagccg ttacctcacc 1260
aactagctaa tgcgccgcgg gtccatctgt aagtggtagc cgaagccacc ttttatgtct 1320
gaaccatgcg gttcaaacaa gcatccggta ttagccccgg tttcccggag ttatcccagt 1380
cttacaggca ggttacccac gtgttactca cccgtccgcc gctaacatca gggagcaagc 1440
tcccatctgt ccgctcgact tgcatgtatt aggcacgccg ccagcgttcg tcctgagcca 1500
ggatcaaact ct 1512

Claims (9)

1.一株解淀粉芽孢杆菌,其特征在于:所述解淀粉芽孢杆菌命名为JP-1,于2017年12月28日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏号为CCTCCNO:M2017848。
2.一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,其特征在于:所述制品的活性成分包括权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌。
3.一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,其特征在于:所述制品的活性成分是权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌。
4.如权利要求2或3所述的富含蛋白质和/或碳水化合物的制品,其特征在于:所述制品还包括用于制备富含蛋白质和/或碳水化合物制品的常规成分和/或用于培养所述的解淀粉芽孢杆菌的培养基成分。
5.一种富含蛋白质和/或碳水化合物的制品的制备方法,其特征在于:采用权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌作为制备所述制品的活性成分或活性成分之一。
6.一种制备富含蛋白质和/或碳水化合物食品的方法,其特征在于:在制备过程中添加和/或使用权利要求2-4中任一项所述的制品。
7.一种具有产蛋白酶和淀粉酶能力的微生物菌剂,其特征在于:所述菌剂的活性成分包括权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌。
8.一种具有产蛋白酶和淀粉酶能力的微生物菌剂,其特征在于:所述菌剂的活性成分是权利要求1所述的解淀粉芽孢杆菌。
9.如权利要求7或8所述的具有产蛋白酶和/或淀粉酶能力的微生物菌剂,其特征在于:还包括用于制备菌剂的常规成分。
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