CN108130325A - 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱 - Google Patents

一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱 Download PDF

Info

Publication number
CN108130325A
CN108130325A CN201810107720.6A CN201810107720A CN108130325A CN 108130325 A CN108130325 A CN 108130325A CN 201810107720 A CN201810107720 A CN 201810107720A CN 108130325 A CN108130325 A CN 108130325A
Authority
CN
China
Prior art keywords
filter core
purification column
ribonucleic acid
column
purification
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201810107720.6A
Other languages
English (en)
Inventor
吹野丰
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Suzhou Yu Chi New Mstar Technology Ltd
Original Assignee
Suzhou Yu Chi New Mstar Technology Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Suzhou Yu Chi New Mstar Technology Ltd filed Critical Suzhou Yu Chi New Mstar Technology Ltd
Priority to CN201810107720.6A priority Critical patent/CN108130325A/zh
Publication of CN108130325A publication Critical patent/CN108130325A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C12N15/1017Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor by filtration, e.g. using filters, frits, membranes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

本发明公开了一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于该纯化柱的滤芯采用平均直径小于2μm的无机纤维制成。本发明提供的这种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其相比目前采用有机材料作为滤芯的纯化柱,内部滤芯对于核糖核酸具有更高的吸附效果。根据人体血清miRNA提取实验的qPCR检测实验结果,本发明的纯化效果相比国产纯化柱提高10倍左右,而相比某进口纯化柱提高4倍左右,进一步提升了已有核糖核酸纯化柱的纯化品质。

Description

一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱
技术领域
本发明涉及一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱。
背景技术
核糖核酸纯化柱(Spin column)是目前公知的用于各种材料的RNA提取以及精制的核心装置。其具有操作简单、回收率高、性能稳定等特点,目前这种产品已经为国内外大多数实验室和公司使用。
已知的纯化柱的滤芯主要采用硅胶膜、硅基质膜或者硝化纤维等有机材料作为核糖核酸的特异性吸附材料,这类材料对其他生物材料基本不吸附,可以保障最大程度地回收样品中的DNA\RNA,同时去除其他杂质。
众所周知,分子生物学研究中MicroRNA(miRNA)是由内源基因编码、长度约21~25nt的一类非编码单链RNA分子,其主要功能是参与动植物转录后的基因表达与调控。提取纯化RNA是一个基础性的工作,各种临床检测或者基础科研中都需要提取纯化RNA。在核酸样本中低丰度的核酸检测中,纯化效率高则低丰度的核酸能获得更多,便于下游检测”等以突出该纯化柱的优势。
目前国内外提取纯化RNA的方法中较为常见的一种为Trizol法。以提取正常人体血清microRNA为例,其流程通常为先取一定量的血清样品,加入Trizol裂解液和氯仿,离心取上清液,把上清液与乙醇混一起,上纯化柱提取,最后采用无RNase水(无RNA酶的水)洗脱。
由于不同滤芯材料的纯化柱对于RNA的提取效果是不同的,因此对于提取后的RNA含量的后续检测也是评定纯化柱对于核酸吸附效果的重要环节。通常情况下,如果纯化柱的提取效果好则提取的总RNA含量高,那么在其中miRNA含量相对也高。当然现有技术中主要采取qPCR检测法,即实时PCR检测法专门检测个别miRNA的含量,如果含量高,则对应的Ct值小,说明纯化柱的提取效果好(提取物纯度高);如果含量低,则对应的Ct值大,说明纯化柱提取效果差(提取物纯度低),对于目前的纯化柱来说,在相同的提取方法及操作条件下,最后能通过Ct的大小判断核酸纯化柱,或者说核酸纯化柱的滤芯的提取吸附效果。当然,RNA要进行PCR检测,必须将RNA先转换为DNA,所以在PCR检测环节中,RNA提取之后需要通过逆转录反应将RNA转换为DNA后再进行PCR检测。
根据我们了解的情况并通过长期实践,目前以有机材料作为滤芯的纯化柱在提取效果上(miRNA含量)的提升有限,提取含量低于预期。这主要归结为现有纯化柱中滤芯材料的性能,因此为了提取得到纯度更高,量更大的核糖核酸,必须寻找更好的纯化柱滤芯替代材料。
发明内容
本发明目的是:提供一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其相比目前采用有机材料作为滤芯的纯化柱,提取效果更好。
本发明的技术方案是:一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于该纯化柱的滤芯采用平均直径小于2μm的无机纤维制成。
进一步的,本发明中所述无机纤维选用下述单一或几种物质的混合物:氧化铝纤维、硅酸铝纤维及玻璃纤维。
更进一步的,本发明中所述玻璃纤维是指C-玻璃纤维,D-玻璃纤维,E-玻璃纤维和AR玻璃纤维中的一种或几种的混合物。
进一步的,本发明中所述氧化铝纤维的组分质量百分比含量为:Al2O3 65~99%,SiO2 1~35%。
更进一步的,本发明中所述硅酸铝纤维的组分质量百分比含量为:Al2O3 30~55%,SiO2 60~35%,ZrO2 0~17%。
更进一步的,本发明中所述玻璃纤维的组分质量百分比含量为:SiO2 50~67%。Al2O3 0~16%,CaO+MgO 0~25%,R2O 0~18%,ZrO2 0~21%,B2O3 0~10%,其中R2O是指Na2O和K2O中的一种。
进一步的,本发明中所述无机纤维密度为0.2~1g/cm3
更进一步的,本发明中所述无机纤维密度为0.3~0.5g/cm3
本发明的优点是:
本发明提供的这种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其相比目前采用有机材料作为滤芯的纯化柱,内部滤芯对于核糖核酸具有更高的吸附效果。根据人体血清miRNA提取实验的qPCR检测实验结果,本发明的纯化效果相比国产纯化柱提高10倍左右,而相比某进口纯化柱提高4倍左右,进一步提升了已有核糖核酸纯化柱的纯化品质。
附图说明
下面结合附图及实施例对本发明作进一步描述:
图1为Hsa-miR-16的一组qPCR检测扩增曲线图(3个NO-1纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图2为Hsa-miR-16的另一组qPCR检测扩增曲线图(3个NO-2纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图3为Hsa-miR-16的另一组qPCR检测扩增曲线图(6个NO-3纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图4为Hsa-miR-16的另一组qPCR检测扩增曲线图(6个NO-3纯化柱中去除偏差最大的一个后与国产、进口纯化柱比较);
图5为Hsa-miR-16的另一组qPCR检测扩增曲线图(6个NO-3纯化柱中最好的三个与国产、进口纯化柱比较);
图6为hsa-miR-122的一组qPCR检测扩增曲线图(3个NO-1纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图7为hsa-miR-122的另一组qPCR检测扩增曲线图(3个NO-1纯化柱中去除偏差最大的一个后与国产、进口纯化柱比较);
图8为hsa-miR-122的另一组qPCR检测扩增曲线图(3个NO-2纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图9为hsa-miR-122的另一组qPCR检测扩增曲线图(6个NO-3纯化柱与国产、进口纯化柱比较);
图10为hsa-miR-122的另一组qPCR检测扩增曲线图(6个NO-3纯化柱中最好的三个与国产、进口纯化柱比较)。
具体实施方式
实施例1:纯化柱的编号NO-1,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料选用平均直径1.8μm的氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 72%,SiO2 28%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米、氧化铝纤维密度0.38g/cm3
实施例2:纯化柱的编号NO-2,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料是平均直径1.8μm的氧化铝纤维、平均直径1.2μm的C玻璃纤维和平均直径1.2μm的E玻璃纤维的混合物,它们各自质量百分含量为氧化铝纤维20%,C玻璃纤维40%,E玻璃纤维40%。其中:
氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为Al2O372%,SiO2 28%;
C玻璃纤维,其组分质量百分比含量为SiO2 60%,Al2O3 6%,CaO+MgO 20%,Na2O10%,B2O3 4%;
E玻璃纤维,其组分质量百分比含量为SiO2 52%,Al2O3 16%,CaO+MgO 25%,K2O0.6%,B2O3 6.4%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,该滤芯材料密度0.38g/cm3
实施例3:纯化柱的编号NO-3,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料选用平均直径0.5μm的硅酸铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 46%,SiO2 54%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,硅酸铝纤维密度0.42g/cm3
作为比较例:
国产纯化柱:为目前市面上可以买到的硅胶膜滤芯纯化柱。
该硅胶膜滤芯重量0.03克,厚度2毫米,其滤芯材料密度0.38g/cm3
进口纯化柱:某欧洲公司的217004miRNeasy Mini Kit,其中纯化柱滤芯材料为有机高分子树脂。该进口纯化柱使用滤芯重量0.03克,厚度2毫米,其滤芯材料密度0.38g/cm3
下面通过将上述实施例的纯化柱样例与国产、进口纯化柱共同进行人体血清miRNA的提取,并且通过qPCR检测法检测总RNA中特定基因Hsa-miR-16,Hsa-miR-122两种miRNA的Ct值来评估纯化柱性能。对应纯化柱检测得到的Ct值越小,说明对应纯化柱得到的miRNA越多,则其纯化效率越高。
1.纯化柱:
2.RNA提取方法采用经典的Trizol法:
取3ml血清样品,加入Trizol裂解液裂解,再加入氯仿,离心后取上清,上清液中加入结合液,混匀后将混合液均匀加入17个纯化柱内(一定要保证每个纯化柱内加入的混合液均匀且量相等)提取RNA,之后用100ul无RNase水洗脱得到样品。
对17个纯化柱分别进行编号NO-1(1),NO-1(2),NO-1(3),NO-2(1),NO-2(2),NO-2(3),NO-3(1),NO-3(2),NO-3(3),NO-3(4),NO-3(5),NO-3(6),国产纯化柱(1),国产纯化柱(2),国产纯化柱(3),进口纯化柱(1),进口纯化柱(2)。
3.从各纯化柱中取等体积RNA样品做hsa-miR-16和hsa-miR-122的逆转录反应,之后用逆转录产物做qPCR检测。
4.结果:
而各纯化柱提取后经qPCR检测的Hsa-miR-16的Ct值见下表(对获取的每一样品均检测记录两次Ct值):
从上述表格我们可以看出:NO-1和NO-2纯化柱系中,Ct值结果偏差最大的一个是NO-1(2),其获取的样品两次检测结果为25.21544和25.25136,略大于NO-1和NO-2系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于国产和进口纯化柱获取样品检测的Ct值。
NO-3纯化柱中最好的三个是NO-3(1),NO-3(2)和NO-3(5)。而偏差最大的一个是NO-3(3),其获取的样品两次检测结果为25.62504和25.68264,略大于NO-3系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于国产和进口纯化柱获取样品检测的Ct值。
各纯化柱提取后经PCR检测的hsa-miR-122的Ct值见下表:
从上述表格我们可以看出:NO-1纯化柱中,Ct值结果偏差最大的一个是NO-1(2),其获取的样品两次检测结果为30.96686和30.98852,略大于NO-1系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于国产和进口纯化柱获取样品检测的Ct值。
NO-3纯化柱中最好的三个是NO-3(1),NO-3(2)和NO-3(4)。
而qPCR检测hsa-miR-16的扩增曲线图如图1~图5所示,而qPCR检测hsa-miR-122的扩增曲线图如图6~图10所示。
从图中我们可以看到,经本案实施例NO-1、NO-2和NO-3纯化柱提取得到的RNA中相应基因hsa-miR-16和hsa-miR-122逆转录产物的扩增曲线明显都优于国产和进口纯化柱。
从上述表格和图中我们可以得出结论:
采用本发明无机材料滤芯的NO-1、NO-2、NO-3纯化柱提取得到的hsa-miR-16d的Ct值几乎无差异,且均小于国产纯化柱和进口纯化柱的提取样品Ct值。同样NO-1、NO-2、NO-3纯化柱提取得到的hsa-miR-122的Ct值也几乎无差异,且均小于国产纯化柱和进口纯化柱的提取样品Ct值,
Ct值小,说明纯化柱对样品的提取效果好(提取物量更大,纯度更高)。这表明本发明的纯化柱其对于miRNA的纯化效果大大优越于国产纯化柱和进口纯化柱。经过长期实验对比检测,本发明的纯化柱的纯化效果比国产纯化柱效果高10倍左右,比进口纯化柱的纯化效果高4倍左右。
实施例4:纯化柱的编号NO-4,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料选用平均直径1.2μm的氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 97%,SiO2 3%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,氧化铝纤维密度0.38g/cm3
实施例5:纯化柱的编号NO-5,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料是平均直径1.2μm的氧化铝纤维、平均直径1.1μm的C玻璃纤维的混合物,它们各自质量百分含量为氧化铝纤维20%,C玻璃纤维80%。其中:
氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为Al2O397%,SiO2 3%;
C玻璃纤维,其组分质量百分比含量为SiO2 67%,Al2O32%,CaO+MgO 20%,Na2O8%,B2O3 3%;每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,滤芯材料密度0.42g/cm3
实施例6:纯化柱的编号NO-6,其结构参见现有技术,特殊设计点是滤芯材料选用平均直径0.8μm的硅酸铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 35%,SiO2 50%,ZrO215%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,硅酸铝纤维密度0.38g/cm3
作为比较例:
自制对比例1:纯化柱结构参见现有技术,滤芯材料选用平均直径5μm的氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 72%,SiO2 28%。
每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,氧化铝纤维密度0.38g/cm3
自制对比例2:纯化柱结构参见现有技术,滤芯材料是平均直径5μm的氧化铝纤维和平均直径2.6μm的C玻璃纤维的混合物,它们各自质量百分含量为氧化铝纤维50%,C玻璃纤维50%,其中:
氧化铝纤维,其组分质量百分比含量为Al2O372%,SiO2 28%;
C玻璃纤维,其组分质量百分比含量为SiO2 60%,Al2O3 6%,CaO+MgO 20%,Na2O10%,B2O3 4%;每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,滤芯材料密度0.38g/cm3
自制对比例3:纯化柱结构参见现有技术,滤芯材料选用平均直径3μm的硅酸铝纤维,其组分质量百分比含量为:Al2O3 46%,SiO2 54%。每个实验用纯化柱使用滤芯纤维重量0.03克,厚度2毫米,硅酸铝纤维密度0.38g/cm3
下面通过将上述实施例4~6的纯化柱样例与三个自制对比例共同进行人体血清microRNA的提取,并且通过qPCR检测法检测总RNA中特定基因Hsa-miR-16,Hsa-miR-122两种microRNA的Ct值来评估纯化柱性能。对应纯化柱检测得到的Ct值越小,说明对应纯化柱得到的miRNA越多,则其纯化效率越高。
5.纯化柱:
6.RNA提取方法采用经典的Trizol法:
取3ml血清样品,加入Trizol裂解液裂解,再加入氯仿,离心后取上清,上清液中加入结合液,混匀后将混合液均匀加入18个纯化柱内(一定要保证每个纯化柱内加入的混合液均匀且量相等)提取RNA,之后用100ul无Rnase水洗脱得到样品。
对18个纯化柱分别进行编号NO-4(1),NO-4(2),NO-4(3),NO-5(1),NO-5(2),NO-5(3),NO-6(1),NO-6(2),NO-6(3),NO-6(4),NO-6(5),NO-6(6),自制对比例1(1),自制对比例1(2),自制对比例2(1),自制对比例2(2),自制对比例3(1),自制对比例3(2)。
7.从各纯化柱中取等体积RNA样品做hsa-miR-16和hsa-miR-122的逆转录反应,之后用逆转录产物做qPCR检测。
8.结果:
而各纯化柱提取后经qPCR检测的Hsa-miR-16的Ct值见下表(对获取的每一样品均检测记录两次Ct值):
从上述表格我们可以看出:NO-4和NO-5纯化柱系中,Ct值结果偏差最大的一个是NO-4(2),其获取的样品两次检测结果为25.17644和25.23254,略大于NO-4和NO-5系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于自制对比例的各化柱获取样品检测的Ct值。
NO-6纯化柱中最好的三个是NO-6(1),NO-6(2)和NO-6(5)。而偏差最大的一个是NO-6(3),其获取的样品两次检测结果为25.52504和25.63234,略大于NO-6系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于自制对比例的各化柱获取样品检测的Ct值。
各纯化柱提取后经PCR检测的hsa-miR-122的CT值见下表:
从上述表格我们可以看出:NO-4、NO-5和NO-6纯化柱系中,Ct值结果偏差最大的一个是NO-6(3),其获取的样品两次检测结果为29.98688和29.96645,略大于系中其他纯化柱获取样品检测的Ct值,但仍旧小于自制对比例的各化柱获取样品检测的Ct值。
从上述表格我们可以得出结论:
采用本发明无机材料滤芯的NO-4、NO-5、NO-6纯化柱提取得到的hsa-miR-16d的Ct值几乎无差异,且均小于自制对比例的各化柱获取样品检测的Ct值。同样NO-4、NO-5、NO-6纯化柱提取得到的hsa-miR-122的Ct值也几乎无差异,且均小于自制对比例的各化柱获取样品检测的Ct值。Ct值小,说明纯化柱对样品的提取效果好(提取物量更大,纯度更高)。这表明本发明的纯化柱其对于miRNA的纯化效果大大优越于自制对比例(以平均直径>2μm的无机材料作为滤芯)的各化柱。
当然上述实施例只为说明本发明的技术构思及特点,其目的在于让熟悉此项技术的人能够了解本发明的内容并据以实施,并不能以此限制本发明的保护范围。凡根据本发明主要技术方案的精神实质所做的修饰,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于该纯化柱的滤芯采用平均直径小于2μm的无机纤维制成。
2.根据权利要求1所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述无机纤维选用下述单一或几种物质的混合物:氧化铝纤维、硅酸铝纤维及玻璃纤维。
3.根据权利要求2所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述玻璃纤维是指C-玻璃纤维,D-玻璃纤维,E-玻璃纤维和AR玻璃纤维中的一种或几种的混合物。
4.根据权利要求2所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述氧化铝纤维的组分质量百分比含量为:Al2O3 65~99%,SiO2 1~35%。
5.根据权利要求2所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述硅酸铝纤维的组分质量百分比含量为:Al2O3 30~55%,SiO2 60~35%,ZrO2 0~17%。
6.根据权利要求2所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述玻璃纤维的组分质量百分比含量为:SiO2 50~67%。Al2O3 0~16%,CaO+MgO 0~25%,R2O 0~18%,ZrO2 0~21%,B2O3 0~10%,其中R2O是指Na2O和K2O中的一种。
7.根据权利要求1所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述无机纤维密度为0.2~1g/cm3
8.根据权利要求7所述的一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱,其特征在于所述无机纤维密度为0.3~0.5g/cm3
CN201810107720.6A 2018-02-02 2018-02-02 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱 Pending CN108130325A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810107720.6A CN108130325A (zh) 2018-02-02 2018-02-02 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810107720.6A CN108130325A (zh) 2018-02-02 2018-02-02 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN108130325A true CN108130325A (zh) 2018-06-08

Family

ID=62430409

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810107720.6A Pending CN108130325A (zh) 2018-02-02 2018-02-02 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108130325A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111206030A (zh) * 2020-02-18 2020-05-29 南京农业大学 一种基于玻纤滤纸的病毒核酸提取方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0389063A2 (en) * 1989-03-23 1990-09-26 Akzo Nobel N.V. Process for isolating nucleic acid
US20040019196A1 (en) * 2001-10-12 2004-01-29 Robert Jackson Bair Compositions and methods for using a solid support to purify RNA
US20050054847A1 (en) * 2003-08-01 2005-03-10 Invitrogen Corporation Compositions and methods for preparing short RNA molecules and other nucleic acids
US20060252142A1 (en) * 2005-05-06 2006-11-09 Hitachi High-Technologies Corporation Method for nucleic acid isolation and an instrument for nucleic acid isolation
US20090107927A1 (en) * 2007-10-31 2009-04-30 Akonni Biosystems, Inc. Apparatus, system, and method for purifying nucleic acids
JP2010158190A (ja) * 2009-01-07 2010-07-22 Hitachi High-Technologies Corp 核酸回収方法及び核酸回収装置
CN102031249A (zh) * 2010-09-14 2011-04-27 广西大学 一种简易纯化核酸的方法
JP2014002008A (ja) * 2012-06-18 2014-01-09 Renaissance Energy Investment:Kk 抗体精製方法、及び、抗体精製用カラム
JP2016176920A (ja) * 2015-03-18 2016-10-06 東ソー株式会社 繊維状高分子及びそれを用いた測定方法

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0389063A2 (en) * 1989-03-23 1990-09-26 Akzo Nobel N.V. Process for isolating nucleic acid
US20040019196A1 (en) * 2001-10-12 2004-01-29 Robert Jackson Bair Compositions and methods for using a solid support to purify RNA
US20050054847A1 (en) * 2003-08-01 2005-03-10 Invitrogen Corporation Compositions and methods for preparing short RNA molecules and other nucleic acids
US20060252142A1 (en) * 2005-05-06 2006-11-09 Hitachi High-Technologies Corporation Method for nucleic acid isolation and an instrument for nucleic acid isolation
US20090107927A1 (en) * 2007-10-31 2009-04-30 Akonni Biosystems, Inc. Apparatus, system, and method for purifying nucleic acids
JP2010158190A (ja) * 2009-01-07 2010-07-22 Hitachi High-Technologies Corp 核酸回収方法及び核酸回収装置
CN102031249A (zh) * 2010-09-14 2011-04-27 广西大学 一种简易纯化核酸的方法
JP2014002008A (ja) * 2012-06-18 2014-01-09 Renaissance Energy Investment:Kk 抗体精製方法、及び、抗体精製用カラム
JP2016176920A (ja) * 2015-03-18 2016-10-06 東ソー株式会社 繊維状高分子及びそれを用いた測定方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111206030A (zh) * 2020-02-18 2020-05-29 南京农业大学 一种基于玻纤滤纸的病毒核酸提取方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2012777C (en) Process for isolating nucleic acid
JP4699868B2 (ja) 核酸精製方法及び核酸精製器具
JP2012502632A (ja) スモールrnaの単離法
CN102154264B (zh) 一种快速提取血液总核糖核酸的方法
CN103710338B (zh) 一种人类全血白细胞中dna提取试剂盒
CN103215251B (zh) 一种分离叶绿体dna的方法
JP2006311803A (ja) 核酸精製方法、及び核酸精製器具
CN101748116A (zh) 磁性微粒大量提取dna的方法
CN110257368A (zh) 从含有游离核酸的样品中分离游离核酸的方法和系统
CN112899266A (zh) 一种核酸提取用裂解结合液及其试剂盒和应用
CN113186315B (zh) 一种用于检测水稻细菌性条斑病菌的引物对及检测方法
CN108130325A (zh) 一种核糖核酸提取用无机材料滤芯的高效纯化柱
CN101586162A (zh) 一种提取靶核酸并进行pcr扩增检测的方法
CN101899432A (zh) 一种提取高纯度芝麻线粒体dna的方法
CN113718064A (zh) 一种鉴别pcv2和pcv3的探针引物组合、试剂盒及应用
CN112941067A (zh) 一种全血核酸提取用裂解结合液及其试剂盒和应用
CN208167029U (zh) 一种核糖核酸提取用高效纯化柱
CN102251046A (zh) 一种用于检测血液中肿瘤突变基因的方法
CN107365766B (zh) 机械破碎法提取霉菌孢子rna的方法
CN111235145B (zh) 一种核酸纯化试剂及纯化方法
CN108950015B (zh) 鉴别福寿螺杂交型的多重pcr检测试剂盒及其检测方法
CN1274836C (zh) 一种快速质粒抽提纯化试剂盒及其应用
CN105087549A (zh) 一种同时高效提取rna和dna的方法及试剂
CN102586231B (zh) 一种快速的大片段基因组脱氧核糖核酸提取方法
CN109897849A (zh) 多糖多酚植物基因组dna提取ctab方法的技术改进

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination