CN108103155A - ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物及其检测方法 - Google Patents

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    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
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    • C12Q1/6851Quantitative amplification

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Abstract

本发明公开了一种ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物及其检测方法。以数字PCR为检测平台,针对3种型别的BCR/ABL融合基因,设计合成用于检测BCR/ABL融合基因上下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上下游引物和内参基因检测探针,并将待测样品cDNA模板、用于检测BCR/ABL融合基因上下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上下游引物、内参基因检测探针以及PCR预混液混合,制备ddPCR微反应液滴进行PCR扩增反应,根据荧光信号类型判断待测样品中是否含有融合基因模板及其数量和含量。本发明的引物和探针的设计特异性强,结合数字PCR技术检测灵敏度更高,通过软件自动化进行结果判读,避免产生假阴性结果,因此可以用于少量白血病细胞进行检测,减少患者复发的可能。

Description

ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物及其检测方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域中基因的分子生物学检测,尤其涉及一种ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物及其检测方法。
背景技术
abl为一原癌基因,位于9号染色体q34,基因产物是一种非受体型酪氨酸蛋白激酶;bcr基因位于22号染色体q11,正常的bcr基因产物为160kD的胞质磷酸蛋白,由于t(9;22)(q34;q11)的易位,形成bcr/abl融合基因,该易位产生bcr/abl嵌合基因,基因产物为210kD的融合蛋白,它的表达激活了酪氨酸蛋白激酶,改变了细胞的蛋白酪氨酸水平和肌动蛋白结合能力,扰乱了正常的信号传导途径,抑制了凋亡的发生。
bcr基因断裂点集中在三个区域:主要(majorbcr,M-bcr)、次要(minorbcr,m-bcr)和μ(μ-bcr)。abl基因断裂位于第1或第2内含子。因断裂点不一,bcr-abl融合基因及其mRNA和蛋白产物呈多样性。根据bcr基因断裂点的不同,主要有下述几种类型的bcr/abl融合形式:①在典型的CML中,大部分融合基因是在主要断裂点簇集区(M-bcr)内断裂融合而成,由此形成的bcr/abl融合mRNA是由b3a2或b2a2转录而成,其最终产物是相对分子质量210×103的胞浆蛋白P210,这种癌蛋白是绝大多数慢性期CML表型异常的根源所在;②当bcr基因断裂点发生在上游的一段长约54.4kb的内含子,也称m-bcr区,产生一个e1a2接头的杂合mRNA,编码P190融合蛋白;③bcr断裂点也可在M-bcr区的下游,即μ-bcr,产生e19a2融合,编码P230融合蛋白。
bcr/abl融合基因存在于95%以上的慢性粒细胞白血病患者,是CML最重要的分标志,是疾病状态的决定性因素。在一部分成人急性淋巴细胞性白血病(20%-30%)、儿童急性淋巴细胞白血病(2%-10%)和急性粒细胞性白血病的患者中也可表达bcr/abl融合基因。
目前常用的检测BCR/ABL融合基因导致慢性髓细胞白血病(CML)和急性淋巴细胞白血病(ALL)有以下5种方法,
(1)形态学检查,由于白血病细胞的高度异质性和多态性,重复性差,易受主观因素的影响,其诊断一致率约60%-80%。
(2)免疫学检测方法,主要有两种:细胞涂片法和流式细胞术(FCM),细胞涂片法所需设备简单,可在显微镜下清楚地判断细胞抗原和抗体结合的部位,尤其对细胞内抗原进行检测时较易排除因细胞膜渗透处理带来的非特异性反应,但目测不易对大量细胞进行计数,故敏感度较低,一般为10-2,目前主要用于细胞内抗原的检测;而FCM可同时对一个细胞中2个以上的抗原进行检测,并对大量细胞进行快速分析,准确客观、简单方便,但是FCM法需特殊仪器,操作技术要求高,价格昂贵,结果的重复性欠佳。
(3)细胞遗传学检测方法,常规应用直接法或短期培养法进行染色体RHG显带,但是白血病细胞分裂指数低,染色体形态短小,常显带不清,使得一些结构复杂或细微的改变难以准确识别。
(4)荧光原位杂交(FISH),FISH技术灵敏度高,取材方便,骨髓或外周血均可作为研究对象,不仅对分裂中期细胞,而且对间期核细胞均能检测到,对隐匿型、变异型也可同样进行检测分析,是直观、敏感、快速、特异的诊断方法。但是,常用的双色单融合探针检测bcr/abl融合基因时,由于bcr和abl基因信号空间上的随机分布或光学重叠,可造成4%-10%的假阳性率。过高的假阳性率不仅影响到灵敏度与特异性,还可一定程度上影响研究者对实验结果的解释。
(5)分子生物学检测,目前主要有两种PCR方法:一种为直接原位RT-PCR,这种方案更直接且容易实施,直接原位RT-PCR检测慢粒bcr/abl Mrna具有特异性好,敏感度高,且无需提取RNA等优点。但由于引物错配和非特异性退火发生,容易产生非特异性结果;另一种为荧光定量PCR(qPCR),PCR扩增时,加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针,该探针为一寡核苷酸,两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团,探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收,PCR扩增过程中,Taq酶的5’~3’外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而使荧光检测系统接受到荧光信号,每个模板的Ct值(即每个反应管内的荧光信号到达设定的阈值时所经历的循环数)与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系,起始拷贝数越多,Ct值越小。利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,其中纵坐标为起始拷贝数的对数,横坐标代表Ct值,然后根据待测样本的Ct值从标准曲线上计算出该样本的起始拷贝数,荧光定量PCR具有重复性好,特异性强等优点,但由于其依赖于Ct值,定量的准确度不够,且灵敏度比较差,目前该方法的灵敏度最好的为1%,无法满足某些高灵敏度的检测需求。
根据白血病的缓解指标分类,“临床治愈”指白血病临床症状消失,BCR/ABL转录水平下降4个对数级以上,利用RT-PCR技术无法检测到体内bcr/abl转录本。但是由于RT-PCR检测技术限制(灵敏度最好的为1%),即使无法检测出体内bcr/abl转录本的患者仍可能残留少量白血病细胞,这些残留白血病细胞仍存在复发的可能。因此需要一种检测限更低的技术,将患者的复发风险降到更低。
发明内容
为了克服现有技术的上述不足,本发明的目的是针对RT-PCR灵敏度低的缺陷,提出一种ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物及其检测方法,该引物和探针针对性强,同时引物的设计可同时实现3种型别的检测,本发明的ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因方法灵敏度更高,并且避免假阴性结果。
为了达到上述目的,本发明是通过以下技术方案实现的:
本发明提供了ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物和探针,用于检测BCR/ABLP210融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:1所示,用于检测BCR/ABL P190融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:2所示,用于检测BCR/ABL P230融合基因的上游引物序列如SEQID NO:3所示;用于检测BCR/ABLP210融合基因和BCR/ABL P190融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:4所示,用于检测BCR/ABLP230融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:5所示;BCR/ABL融合基因检测探针序列如SEQ ID NO:6所示。
进一步地,所述检测BCR/ABL融合基因探针为经过荧光标记的,其5’端标记有报告基团,3’端标记有非荧光淬灭基团。
本发明还提供了一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,包含以下步骤:
1)提取受试者骨髓、外周血或组织的RNA提取;
2)将步骤1)提取的RNA反转录成cDNA;
3)以cDNA为模板,将待测样品cDNA模板、用于检测BCR/ABL融合基因上下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上下游引物、内参基因检测探针以及PCR预混液混合,制备ddPCR混合液;
所述BCR/ABL融合基因包括BCR/ABL P210融合基因、BCR/ABLP190融合基因和BCR/ABL P230融合基因,用于检测BCR/ABL P210融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:1所示,用于检测BCR/ABL P190融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:2所示,用于检测BCR/ABLP230融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:3所示;用于检测BCR/ABL P210融合基因和BCR/ABL P190融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:4所示,用于检测BCR/ABL P230融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:5所示;BCR/ABL融合基因检测探针序列如SEQ ID NO:6所示;内参基因的上下游引物序列如SEQ ID NO:6和SEQ ID NO:7所示,内参基因检测探针序列如SEQ ID NO:8所示;
4)ddPCR混合液制作PCR微反应液滴,再进行PCR扩增反应;
5)收集信号并进行结果判读:PCR扩增反应后的产物进行信号收集,根据荧光信号类型判断待测样品中是否含有融合基因模板及其数量和含量。
进一步地,ddPCR混合液中cDNA模板的含量为3~8ng/μL。
进一步地,ddPCR混合液中上游引物和下游引物含量均为400~700nM,BCR/ABL融合基因检测探针含量为200~400nM。
进一步地,ddPCR混合液中内参基因上游和下游引物含量均为400~700nM,内参基因检测探针含量为200~400nM。
进一步地,步骤4)中ddPCR混合液制作PCR微反应液滴的方法为:将ddPCR混合液加入微滴发生器,生成10000-20000个微反应液滴。
进一步地,步骤4)中PCR扩增反应条件为:93-97℃预变性3-15分钟;93-95℃变性5-50秒,55-60℃退火/延伸30-70秒,共进行35-45个循环,2-10℃终止反应。
更进一步地,步骤4)中PCR扩增反应条件为:95℃预变性5分钟;94℃变性30秒,55℃退火/延伸1分钟,共进行40个循环,10℃终止反应。
与现有技术相比,本发明的有益效果在于:
(1)本发明的引物和探针的设计特异性强,结合数字PCR技术检测灵敏度更高,通过软件自动化进行结果判读,避免产生假阴性结果。
(2)本发明的检测方法具有较高的灵敏度(0.01%)(即可以从1万个正常DNA分子中检测到一个突变分子的存在);
(3)本发明的检测方法灵敏度高,检测结果稳定,因此可以用于少量白血病细胞进行检测,减少患者复发的可能。
(4)本方法可以一次检测3种型别的BCR/ABL融合情况,操作更加简便。
附图说明
图1为实施例2中不同含量BCR/ABL融合样本的荧光检测结果。
图2为实施例2中不同含量BCR/ABL融合样本的荧光检测结果。
具体实施方式
展示一下实例来具体说明本发明的某些实施例,且不应解释为限制本发明的范围。对本发明公开的内容可以同时从材料、方法和反应条件进行改进,所有这些改进,均应落入本发明的的精神和范围之内。非特殊说明,本发明实施例采用的试剂均为市售商品,本发明实施例采用的数据库均为公开的在线数据库。
实施例1:ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物、探针的设计与合成
针对BCR/ABLP210、BCR/ABL P190和BCR/ABL P2303种型别的融合基因,以BCR/ABL融合基因e13/14a2、e1a2、e19a2全长cDNA为模板,使用Oligo软件分析TaqMan引物和探针的位点,并根据同时考虑BCR和ABL两基因组DNA序列的情况,从中选择最佳组合如下:
BCR/ABL融合基因上、下游引物:
BCR/ABLP210上游引物SEQ NO:1:5’-CATTCCGCTGACCATCAAT-3’
BCR/ABLP190上游引物SEQ NO:2:5’-ACTGCCCGGTTGTCGTG-3’
BCR/ABL P210、BCR/ABL P190下游引物SEQ NO:4:5’-GTCCAGCGAGAAGGTTTTCC-3’
BCR/ABLP230上游引物SEQ NO:3:5’-GGTCCAAGGTGCCCTACATC-3’
BCR/ABLP230下游引物SEQ NO:5:5’-GTCCAGCGAGAAGGTTTTCC-3‘
BCR-ABL融合基因检测探针为:SEQ NO:6:5’-FAM-CCTTCAGCGGCCAGTAG-MGB-3’
内参基因的上、下游引物:
内参基因上游引物SEQ NO:7:5’-CAGTGCGTGGAGGAGATCGA-3’
内参基因下游引物SEQ NO:8:5’-CGATGCCCTCTGCGAAGTTG-3’
内参基因检测探针为SEQ NO:9:5’-VIC-CAGCCTTCGACGTCAA-MGB-3’
本发明中的用于检测BCR/ABL融合基因上下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上下游引物、内参基因检测探针是针对3种型别的BCR/ABL融合基因选择出来的,特异性强,用于数字PCR检测时能大大提高灵敏度。
实施例2:组织中BCR/ABL融合基因的检测
1.准备待测样品:含有内参BCR基因的RNA、BCR/ABL整合的融合阳性RNA以及内参基因与融合RNA混合样本,其中融合型与内参基因的含量比分别为1/100和1/1000。
2.RNA的提取:采用Biomiga Blood RNA miniprep kit(Cat#R6411)提取全血中白细胞的mRNA,具体的操作参见QIAGEN公司的RNABlood Mini Kit试剂盒说明书。
3.RNA反转录成cDNA:参考ThermoFisher公司的High Capacity cDNA ReverseTranscription Kit试剂盒说明书,将RNA反转录为cDNA。
4.在PCR板中按照以下配比制备PCR反应液:2×数字PCR预混液(Biorad,#1863010)与BCR/ABL融合基因上、下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上、下游引物、内参基因检测探针及与待检测cDNA混合,用蒸馏水补足至终体积为20mL,配制成数字PCR混合液。其中上下游引物含量分别为600nM,检测探针含量分别为300nM。
5.将装有配制好的20mL数字PCR混合液的PCR板、新的96孔PCR板、枪头、微滴发生卡和微滴生成油装入AutoDG自动化微滴发生器,用于制备PCR微反应微滴。
6.将装有PCR微反应液滴的96孔PCR板用封板膜进行热封,生成的微反应液滴数量为10000~20000个。
7.将96孔PCR板放入PCR仪按照下面条件进行扩增反应:95℃预变性5分钟;94℃变性30秒,55℃退火/延伸1分钟,共进行40个循环,10℃终止反应。
8.PCR扩增反应后将PCR反应板放置于PCR微反应液滴信号读取仪(QX200微滴荧光信号收集系统)中进行信号收集,检测FAM和VIC的荧光信号。进行定量分析,得出样本中融合基因的绝对含量以及相对与总RNA的比例。例如,待测样本中含有X个融合基因目标分子,Y个内参基因目标分子,经过反应和检测后,结果采用这样的方式进行分析。用QuantaSoft(Biorad)软件进行数据分析结果如图1和图2所示。
则融合基因检测数目为X=A+B,内参基因检测数目为Y=C,其融合基因占比为X/(X+Y)=(A+B)/(A+B+C)。
根据上述的方法对不同融合型与内参基因的含量进行样品检测,融合阳性信号与总信号数如下:
1/100样品:计算值融合/内参=1/100;
1/1000样品:计算值融合/内参=1/1000。
由此可知,融合型RNA模板与内参基因RNA模板比例为1/100-1/1000时,定量检测误差为零,因此可以用于少量白血病细胞进行检测,减少患者复发的可能。
序列表
<110> 良培基因生物科技(武汉)有限公司
<120> ddPCR技术检测BCR-ABL融合基因的引物及其检测方法
<160> 9
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
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<210> 2
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<212> DNA
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<211> 16
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
cagccttcga cgtcaa 16

Claims (9)

1.ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物和探针,其特征在于,用于检测BCR/ABLP210融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:1所示,用于检测BCR/ABL P190融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:2所示,用于检测BCR/ABL P230融合基因的上游引物序列如SEQID NO:3所示;用于检测BCR/ABLP210融合基因和BCR/ABL P190融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:4所示,用于检测BCR/ABLP230融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:5所示;BCR/ABL融合基因检测探针序列如SEQ ID NO:6所示。
2.根据权利要求1所述的ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的引物和探针,其特征在于,所述检测BCR/ABL融合基因探针为经过荧光标记的,其5’端标记有报告基团,3’端标记有非荧光淬灭基团。
3.一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,包含以下步骤:
1)提取受试者骨髓、外周血或组织的RNA提取;
2)将步骤1)提取的RNA反转录成cDNA;
3)以cDNA为模板,将待测样品cDNA模板、用于检测BCR/ABL融合基因上下游引物、BCR/ABL融合基因检测探针、内参基因的上下游引物、内参基因检测探针以及PCR预混液混合,制备ddPCR混合液;
所述BCR/ABL融合基因包括BCR/ABL P210融合基因、BCR/ABLP190融合基因和BCR/ABLP230融合基因,用于检测BCR/ABL P210融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:1所示,用于检测BCR/ABL P190融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:2所示,用于检测BCR/ABL P230融合基因的上游引物序列如SEQ ID NO:3所示;用于检测BCR/ABL P210融合基因和BCR/ABLP190融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:4所示,用于检测BCR/ABL P230融合基因的下游引物序列如SEQ ID NO:5所示;BCR/ABL融合基因检测探针序列如SEQ ID NO:6所示;内参基因的上下游引物序列如SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8所示,内参基因检测探针序列如SEQID NO:9所示;
4)ddPCR混合液制作PCR微反应液滴,再进行PCR扩增反应;
5)收集信号并进行结果判读:PCR扩增反应后的产物进行信号收集,根据荧光信号类型判断待测样品中是否含有融合基因模板及其数量和含量。
4.根据权利要求3所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,ddPCR混合液中cDNA模板的含量为3~8ng/μL。
5.根据权利要求3所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,ddPCR混合液中上游引物和下游引物含量均为400~700nM,BCR/ABL融合基因检测探针含量为200~400nM。
6.根据权利要求3所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,ddPCR混合液中内参基因上游和下游引物含量均为400~700nM,内参基因检测探针含量为200~400nM。
7.根据权利要求3所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,步骤4)中ddPCR混合液制作PCR微反应液滴的方法为:将ddPCR混合液加入微滴发生器,生成10000-20000个微反应液滴。
8.根据权利要求3所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,步骤4)中PCR扩增反应条件为:93-97℃预变性3-15分钟;93-95℃变性5-50秒,55-60℃退火/延伸30-70秒,共进行35-45个循环,2-10℃终止反应。
9.根据权利要求8所述的一种基于ddPCR技术检测BCR/ABL融合基因的方法,其特征在于,步骤4)中PCR扩增反应条件为:95℃预变性5分钟;94℃变性30秒,55℃退火/延伸1分钟,共进行40个循环,10℃终止反应。
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