发明内容
为了解决上述技术问题,本发明用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统,其包括底盘和上层芯片;
所述上层芯片包括位于上层芯片中心的加样区和七个与所述加样区连通的微流控反应检测通道:
睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道、雌二醇微流控反应检测通道、促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道;
其中,所述睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道和雌二醇微流控反应检测通道包括:样本分离区,其与加样区连通;抗原包被区,其通过毛细管微通道与所述样本分离区连通;抗体包被区,其通过毛细管微通道与所述抗原包被区连通;磁微粒包被区,其通过毛细管微通道与所述抗体包被区连通;废液收集区,其通过毛细管微通道与所述磁微粒包被区连通;
睾酮微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的睾酮,抗体包被区包被有具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体;孕酮微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的孕酮,抗体包被区包被有具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体;雌二醇微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的雌二醇,抗体包被区具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体;
所述促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道均包括:样本分离区,其与加样区连通;第一抗体包被区,其通过毛细管微通道与所述样本分离区连通;第二抗体包被区,其通过毛细管微通道与所述第一抗体包被区连通;磁微粒包被区,其通过毛细管微通道与所述第二抗体包被区连通;废液收集区,其通过毛细管微通道与所述磁微粒包被区连通;
所述促卵泡激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体;所述促黄体生成素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体;所述催乳素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的催乳素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体;所述β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体;
应用时,所述底盘设置于上层芯片的下方,所述底盘对应各微流控反应检测通道的磁微粒包被区的位置设有磁铁,所述磁铁为永磁铁或电磁铁。
作为优选技术方案,所述加样区通过加样通道与各微流控反应检测通道的样本分离区连通;所述加样通道为围绕加样区形成的环形通道,加样通道的一端与所述加样区连通,加样通道的侧壁连通各微流控反应检测通道的样本分离区。
作为优选技术方案,所述发光物质为辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、葡萄糖氧化酶或吖啶酯;所述具有特异亲和性的一对物质为生物素和链霉亲和素,生物素和亲和素,或者为荧光素和抗荧光素。
作为优选技术方案,磁微粒的平均粒径在0.5~2μm。
作为优选技术方案,所述睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道和雌二醇微流控反应检测通道中:抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1小于出口直径B1;抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2小于出口直径B2;磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3小于出口直径B3;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4小于出口直径B4;抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1、抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2、磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径和废液收集区A3与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径依次缩小A4;
所述促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中:第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1’小于出口直径B1’;第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2’小于出口直径B2’;磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3’小于出口直径B3’;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4’小于出口直径B4’;第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1’、第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2’、磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3’和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4’依次缩小。
作为另一优选技术方案(图中为示出),所述睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道和雌二醇微流控反应检测通道中:抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径的大于出口直径;抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的出口直径、抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的出口直径、磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的出口直径依次缩小;
所述促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中:第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的出口直径、第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径、磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的出口直径依次缩小。
作为优选技术方案,所述上层芯片与所述底盘为形状相同的圆形,所述加样区位于上层芯片的圆心,所述微流控反应检测通道沿所述上层芯片的半径方向形成;底盘的中心设有通孔。
作为优选技术方案,所述底盘上的磁铁为圆环形,对应位于磁微粒包被区的下方。
本发明还提供上述的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统的制备方法,包括如下步骤:
1)在芯片基板上开设所述加样区和7个微流控反应检测通道;
2)将发光物质标记的睾酮溶液覆于所述睾酮微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体溶液覆于所述睾酮微流控反应检测通道的抗体包被区;将发光物质标记的孕酮溶液覆于所述孕酮微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体溶液覆于所述孕酮微流控反应检测通道的抗体包被区;将发光物质标记的雌二醇溶液覆于所述雌二醇微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体溶液覆于所述雌二醇微流控反应检测通道的抗体包被区;
将发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体溶液覆于所述促卵泡激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体溶液覆于所述促卵泡激素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体溶液覆于所述促黄体生成素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体溶液覆于所述促黄体生成素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的催乳素的一株抗体溶液覆于所述催乳素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体溶液覆于所述催乳素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体溶液覆于所述β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体溶液覆于所述β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;
干燥;
3)将表面标记有具有特异亲和性的一对物质中的另一个的磁微粒的溶液覆于磁微粒包被区,干燥;
4)底盘对应所述磁微粒包被区的位置设置磁铁。
本发明还提供上述的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统的应用方法,包括如下步骤:
1)上层芯片固定在检测仪器的自转轴上部;当底盘上的磁铁为永磁铁时,将底盘套设在自转轴的下部远离上层芯片底面;当底盘上的磁铁为电磁铁时,底盘贴附在上层芯片底面,电磁铁对应位于上层芯片的磁微粒包被区下方,电磁铁不通电;从加样区加入全血样本,启动仪器,自转轴自转,在离心力的作用下,全血经设置在加样区的抗红细胞滤血膜过滤,进入各微流控反应检测通道的样本分离区;
2)待全血样本流动稳定后,通过增加自转轴自转转速以加大离心作用使样本分离区的血样样本冲破毛细管微通道的毛细管微阀作用而流向各微流控通道的抗原包被区或第一抗体包被区:
在睾酮微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的睾酮不与发光物质标记的睾酮反应;孕酮微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的孕酮不与发光物质标记的孕酮反应;雌二醇微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的雌二醇不与发光物质标记的雌二醇反应;在促卵泡激素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的促卵泡激素与发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在促黄体生成素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的促黄体生成素与发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在催乳素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的催乳素与发光物质标记的催乳素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的β-人绒毛膜促性腺激素与发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;
3)随后加大离心力使抗原或一抗免疫复合物进入各微流控通道的抗体包被区或第二抗体包被区:
在睾酮微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的睾酮与发光物质标记的睾酮构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体发生反应形成免疫复合物;在孕酮微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的孕酮与发光物质标记的孕酮构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体发生反应形成免疫复合物;在雌二醇微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的雌二醇与发光物质标记的雌二醇构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体发生反应形成免疫复合物;在促卵泡激素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在促黄体生成素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在催乳素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;
4)通过再次加大离心力使各微流控反应检测通道中的免疫复合物或二抗免疫复合物冲破毛细管微通道的毛细管微阀作用进入到磁微粒包被区,标记在磁微粒表面的具有特异亲和性的一对物质中的另一个与免疫复合物或二抗免疫复合物中的具有特异亲和性的一对物质中的一个快速发生反应形成结合磁微粒的免疫复合物,然后,将带永磁铁的底盘向上移动至贴合上层芯片的底面,永磁铁对应位于上层芯片的磁微粒包被区下方;或者对带电磁铁的底盘的电磁铁通电使其富有磁性;由于磁铁的磁吸力,结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物在磁场的作用下富集到磁微粒包被区的底端,然后通过再次加大离心力使未参加反应的样本经毛细管微通道流向废液收集区;
5)从加样区加入清洗液洗涤结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物,清洗液移动到磁微粒包被区时,将带永磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,或者断开通电装置使电磁铁失去磁性,超声振荡,结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物得到充分洗涤,然后将带永磁铁的底盘向上层芯片处运动,或者对带电磁铁的底盘的电磁铁通电使其富有磁性,将结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物富集到磁微粒包被区的底端,通过加大离心力使清洗液流入废液收集区;
6)从加样区加入发光基底液,通过离心将发光基底液转移至磁微粒包被区,将带磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,或者断开通电装置使电磁铁失去磁性,超声振荡后,仪器检测系统检测发光信号的强度,从而实现待测物的定量检测。
本发明能够达到如下效果:
1、本发明将微流控技术和磁微粒化学发光技术巧妙地结合,实现目标物质的快速、高度灵敏、准确定量检测。
2、采用磁微粒免疫富集分离反应,简化了分离过程,提高样品检测的灵敏度。磁微粒的分离效应,有效捕捉待测样本中低浓度待测样品,结合化学发光检测方式,使灵敏度大幅度提高。
3、本发明的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统可同时进行多项检测,节约时间、提高效率。
4、本发明的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统可以用于全血检测,克服了传统化学发光只能进行血清检测的,而不能进行全血检测的缺陷,简化操作过程。
5、在反应和洗涤的过程中采用超声振荡的方式,有效地提高了反应速度以及消除非特异性吸附造成的干扰。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明,以使本领域的技术人员可以更好的理解本发明并能予以实施,但所举实施例不作为对本发明的限定。
结合图1A~1B所示,一种用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统,包括底盘2和上层芯片1;
上层芯片1包括位于上层芯片1中心的加样区10和七个与加样区连通的微流控反应检测通道,在优选的实施方式中,加样区10的孔口上方可覆盖有抗红细胞滤血膜(图中未示出),抗红细胞滤血膜上可覆盖有血液盖(图中未示出)。该7个微流控反应检测通道分别为:睾酮微流控反应检测通道11a、孕酮微流控反应检测通道11b、雌二醇微流控反应检测通道11c、促卵泡激素微流控反应检测通道11d、促黄体生成素微流控反应检测通道11e、催乳素微流控反应检测通道11f和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道11g;
如图3A所示,睾酮微流控反应检测通道11a、孕酮微流控反应检测通道11b和雌二醇微流控11c反应检测通道均包括:样本分离区100,其与加样区10连通;抗原包被区102,其通过毛细管微通道101与样本分离区100连通;抗体包被区104,其通过毛细管微通道103与抗原包被区102连通;磁微粒包被区106,其通过毛细管微通道105与抗体包被区104连通;废液收集区108,其通过毛细管微通道107与磁微粒包被区106连通;
睾酮微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的睾酮,抗体包被区包被有具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体;孕酮微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的孕酮,抗体包被区包被有具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体;雌二醇微流控反应检测通道的抗原包被区包被有发光物质标记的雌二醇,抗体包被区具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体;
如图3B所示,促卵泡激素微流控反应检测通道11d、促黄体生成素微流控反应检测通道11e、催乳素微流控反应检测通道11f和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道11g均包括:样本分离区200,其与加样区10连通;第一抗体包被区202,其通过毛细管微通道201与样本分离区200连通;第二抗体包被区204,其通过毛细管微通道203与第一抗体包被区202连通;磁微粒包被区206,其通过毛细管微通道205与第二抗体包被区204连通;废液收集区208,其通过毛细管微通道207与磁微粒包被区206连通;
促卵泡激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体;促黄体生成素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体;催乳素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的催乳素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体;β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区包被有发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体,第二抗体包被区包被的是具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体;
如图2所示,应用时,底盘2设置于上层芯片的下方,底盘(塑料盘)对应磁微粒包被区的位置设有磁铁20,磁铁20可为永磁铁或电磁铁。
在本发明的优选实施方式中,上层芯片1与底盘2为形状相同的圆形,加样区10位于上层芯片的圆心,各微流控反应检测通道沿上层芯片1的半径方向形成;底盘2的中心设有通孔。
结合图1B,在本发明的另一优选实施方式中,加样区10通过加样通道12与各微流控反应检测通道的样本分离区连通;加样通道12为围绕加样区10形成的环形通道,加样通道12的一端与加样区10连通,加样通道的侧壁连通各微流控反应检测通道的样本分离区。
本发明中,发光物质为辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、葡萄糖氧化酶或吖啶酯;具有特异亲和性的一对物质为生物素和链霉亲和素,生物素和亲和素,或者为荧光素和抗荧光素。
磁微粒的平均粒径在0.5~2μm。
为了形成毛细管微阀效应,在本发明的一具体实施方式中,睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道和雌二醇微流控反应检测通道中:抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1小于出口直径B1,抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2小于出口直径B2,磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3小于出口直径B3,废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4小于出口直径B4;抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1、抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2、磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径依次缩小A4;
促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中:第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1’小于出口直径B1’,第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2’小于出口直径B2’,磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3’小于出口直径B3’,废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4’小于出口直径B4’;第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径A1’、第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A2’、磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径A3’和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径A4’依次缩小。
为了形成毛细管微阀效应,在本发明的另一具体实施方式中(图中未示出),睾酮微流控反应检测通道、孕酮微流控反应检测通道和雌二醇微流控反应检测通道中:抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径的大于出口直径;抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;抗原包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的出口直径、抗体包被区与抗原包被区之间的毛细管微通道的出口直径、磁微粒包被区与抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的出口直径依次缩小;
促卵泡激素微流控反应检测通道、促黄体生成素微流控反应检测通道、催乳素微流控反应检测通道和β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中:第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的入口直径大于出口直径;第一抗体包被区与样本分离区之间的毛细管微通道的出口直径、第二抗体包被区与第一抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径、磁微粒包被区与第二抗体包被区之间的毛细管微通道的出口直径和废液收集区与磁微粒包被区之间的毛细管微通道的出口直径依次缩小。
本发明的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统的制备方法,包括如下步骤:
1)在芯片基板上开设加样区和7个微流控反应检测通道;
2)将发光物质标记的睾酮溶液覆于睾酮微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体溶液覆于睾酮微流控反应检测通道的抗体包被区;将发光物质标记的孕酮溶液覆于孕酮微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体溶液覆于孕酮微流控反应检测通道的抗体包被区;将发光物质标记的雌二醇溶液覆于雌二醇微流控反应检测通道的抗原包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体溶液覆于雌二醇微流控反应检测通道的抗体包被区;
将发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体溶液覆于促卵泡激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体溶液覆于促卵泡激素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体溶液覆于促黄体生成素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体溶液覆于促黄体生成素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的催乳素的一株抗体溶液覆于催乳素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体溶液覆于催乳素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;将发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体溶液覆于β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第一抗体包被区,将具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体溶液覆于β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道的第二抗体包被区;
干燥;
3)将表面标记有具有特异亲和性的一对物质中的另一个的磁微粒的溶液覆于磁微粒包被区,干燥;
4)底盘对应磁微粒包被区的位置设置磁铁。
本发明的用于检测性腺系列的磁微粒的微流控化学发光检测系统的应用方法,包括如下步骤:
1)结合图2所示,上层芯片1固定在检测仪器的自转轴3上部;当底盘上的磁铁为永磁铁时,将底盘2套设在自转轴的下部远离上层芯片1底面;当底盘上的磁铁为电磁铁时,底盘2贴附在上层芯片1底面,电磁铁对应位于上层芯片的磁微粒包被区下方,电磁铁不通电;如图4A和图4B所示,从加样区10加入全血样本,启动仪器,自转轴3自转,在离心力的作用下,全血经设置在加样区的抗红细胞滤血膜过滤,进入各微流控反应检测通道的样本分离区;
2)如图5A和图6A所示,待全血样本流动稳定后,通过增加自转轴自转转速以加大离心作用使样本分离区的血样样本冲破毛细管微通道的毛细管微阀作用而流向各微流控通道的抗原包被区或第一抗体包被区:
如图5A所示,在睾酮微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的睾酮不与发光物质标记的睾酮反应;孕酮微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的孕酮不与发光物质标记的孕酮反应;雌二醇微流控反应检测通道中,在抗原包被区,血样样本中的雌二醇不与发光物质标记的雌二醇反应。如图6A,在促卵泡激素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的促卵泡激素与发光物质标记的促卵泡激素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在促黄体生成素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的促黄体生成素与发光物质标记的促黄体生成素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在催乳素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的催乳素与发光物质标记的催乳素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;在β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中,在第一抗体包被区,血液样本中的β-人绒毛膜促性腺激素与发光物质标记的β-人绒毛膜促性腺激素的一株抗体发生反应形成一抗免疫复合物;
3) 如图5B和图6B所示,随后加大离心力使抗原或一抗免疫复合物进入各微流控通道的抗体包被区或第二抗体包被区:
如图5B,在睾酮微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的睾酮与发光物质标记的睾酮构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗睾酮抗体发生反应形成免疫复合物;在孕酮微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的孕酮与发光物质标记的孕酮构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗孕酮抗体发生反应形成免疫复合物;在雌二醇微流控反应检测通道中,在抗体包被区,血样样本中的雌二醇与发光物质标记的雌二醇构成竞争关系,分别与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的抗雌二醇抗体发生反应形成免疫复合物。如图6B,在促卵泡激素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促卵泡激素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在促黄体生成素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的促黄体生成素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在催乳素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的催乳素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;在β-人绒毛膜促性腺激素微流控反应检测通道中,在第二抗体包被区,一抗免疫复合物与具有特异亲和性的一对物质中的一个标记的β-人绒毛膜促性腺激素的另一株抗体反应,形成二抗免疫复合物;
4)如图7A和图7B所示,通过再次加大离心力使各微流控反应检测通道中的免疫复合物或二抗免疫复合物冲破毛细管微通道的毛细管微阀作用进入到磁微粒包被区,标记在磁微粒表面的具有特异亲和性的一对物质中的另一个与免疫复合物或二抗免疫复合物中的具有特异亲和性的一对物质中的一个快速发生反应形成结合磁微粒的免疫复合物,然后,将带永磁铁的底盘向上移动至贴合上层芯片的底面,永磁铁对应位于上层芯片的磁微粒包被区下方;或者对带电磁铁的底盘的电磁铁通电使其富有磁性;由于磁铁的磁吸力,结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物在磁场的作用下富集到磁微粒包被区的底端,然后通过再次加大离心力使未参加反应的样本经毛细管微通道流向废液收集区;
5)如图8所示,从加样区加入清洗液洗涤结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物,清洗液移动到磁微粒包被区时,将带永磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,或者断开通电装置使电磁铁失去磁性,超声振荡,结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物得到充分洗涤,然后将带永磁铁的底盘向上层芯片处运动,或者对带电磁铁的底盘的电磁铁通电使其富有磁性,将结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物富集到磁微粒包被区的底端,通过加大离心力使清洗液流入废液收集区;
6)如图9所示,从加样区加入发光基底液,通过离心将发光基底液转移至磁微粒包被区,将带磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,或者断开通电装置使电磁铁失去磁性,超声振荡后,仪器检测系统检测发光信号的强度,从而实现待测物的定量检测。
本发明的用于检测性腺功能的磁微粒的微流控化学发光检测系统的检测过程需要的离心力来自于配套的检测仪器。自转轴不属于微流控化学发光检测系统的一部分,而是与微流控化学发光检测系统配套使用的仪器中的一部分,轴承与芯片托盘相连接固定;芯片可以夹在芯片托盘上;底盘不依附于自转轴,其通过通孔套设在自转轴上而自由上下移动。
磁场产生装置的磁场由磁铁提供,永磁铁可以通过移动与芯片的相对位置(电磁铁通过通电或断电),使磁微粒处于或脱离磁铁的磁场,来实现收集磁微粒技术效果。
一下提供一具体实施方式以对本发明进行说明:
步骤1 从加样口(此处有抗红细胞滤血膜)加入35~350μL全血样本,盖上血液盖,将微流控化学发光检测系统放入配套的仪器中,启动仪器,在离心力的作用下,全血经抗红细胞滤血膜过滤,随后通过加样通道依次填满七个样本分离区,剩余的样本流入到剩余样本分离区;
步骤2 待样本流动稳定后,通过加大离心作用使样本分离区的样本冲破毛细管微阀流向三个抗原包被区(T、P、E2)和四个第一抗体包被区(FSH、LH、PRL、ß-HCG),样本将烘干后形成的粉末状的碱性磷酸酶标记的抗原或抗体进行复溶,T反应检测体系中样本中的睾酮不与碱性磷酸酶标记的睾酮发生反应,P反应检测体系中样本中的孕酮不与碱性磷酸酶标记的孕酮发生反应,E2反应检测体系中样本中的雌二醇不与碱性磷酸酶标记的雌二醇发生反应,FSH反应检测体系中样本中的促卵泡激素与碱性磷酸酶标记的抗促卵泡激素抗体发生反应形成一抗免疫复合物,LH反应检测体系中样本中的促黄体生成素与碱性磷酸酶标记的抗促黄体生成素抗体发生反应形成一抗免疫复合物,PRL反应检测体系中样本中的催乳素与碱性磷酸酶标记的抗催乳素抗体发生反应形成一抗免疫复合物,β-HCG反应检测体系中样本中的β-人绒毛膜促性腺激素与碱性磷酸酶标记的抗β-人绒毛膜促性腺激素抗体发生反应形成一抗免疫复合物,随后通过再次加大离心力使抗原或一抗免疫复合物冲破毛细管微阀流向相应的抗体包被区或第二抗体包被区,T反应检测体系样本中的睾酮和碱性磷酸酶标记的睾酮构成竞争关系分别与生物素标记的抗睾酮抗体发生反应形成免疫复合物,P反应检测体系样本中的孕酮和碱性磷酸酶标记的孕酮构成竞争关系分别与生物素标记的抗孕酮抗体发生反应形成免疫复合物,E2反应检测体系样本中的雌二醇和碱性磷酸酶标记的雌二醇构成竞争关系分别与生物素标记的抗雌二醇抗体发生反应形成免疫复合物,FSH反应检测体系中的一抗免疫复合物与生物素标记的另一株抗促卵泡激素抗体发生反应形成二抗免疫复合物,LH反应检测体系中的一抗免疫复合物与生物素标记的另一株抗促黄体生成素抗体发生反应形成二抗免疫复合物,PRL反应检测体系中的一抗免疫复合物与生物素标记的另一株抗催乳素抗体发生反应形成二抗免疫复合物,β-HCG反应检测体系中的一抗免疫复合物与生物素标记的另一株抗β-人绒毛膜促性腺激素抗体发生反应形成二抗免疫复合物,
步骤3 通过加大离心力使免疫复合物或二抗免疫复合物冲破毛细管微阀进入到各自的磁微粒包被区,复溶在该区域的链霉亲和素标记的微磁粒(平均粒径1 μm),链霉亲和素与免疫复合物中的生物素快速发生反应形成结合磁微粒的免疫复合物,1~5 min后,将带永磁铁的底盘向上层芯片处运动,结合磁微粒的免疫复合物在磁场的作用下富集到磁微粒包被区的底端,然后通过再次加大离心力使未参加反应的样本经毛细管微阀流向废液收集区;
步骤4 从加样口加入两次清洗液洗涤结合磁微粒的免疫复合物,清洗液移动到磁微粒包被区时,将带永磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,超声振荡,结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物得到充分洗涤,将带永磁铁的底盘向上层芯片处运动,将结合磁微粒的免疫复合物或二抗免疫复合物富集到磁微粒包被区的底端,通过加大离心力使清洗液流入废液收集区;
步骤5 从加样口加入碱性磷酸酶发光底物,通过离心将发光基底液转移至磁微粒包被区,将带永磁铁的底盘向下移动远离上层芯片,超声振荡后,仪器检测系统检测发光信号的强度,从而实现分析物的定量检测。
在全血样本中T的结果如下表1所示,检测灵敏度范围为0~32 ng/mL,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表1 T
浓度(ng/mL) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
556506 |
2.9% |
1 |
281493 |
0.7% |
4 |
167164 |
1.3% |
8 |
111006 |
0.6% |
16 |
84716 |
0.9% |
32 |
52107 |
1.5% |
在全血样本中P的结果如下表2所示,检测灵敏度范围为0~80 ng/mL,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表2 P
浓度(ng/mL) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
480052 |
1.5% |
0.25 |
356039 |
0.2% |
1.25 |
270392 |
1.1% |
5 |
213305 |
0.5% |
20 |
160760 |
0.7% |
80 |
101110 |
1.3% |
在全血样本中E2的结果如下表3所示,检测灵敏度范围为0~3000 pg/mL,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表3 E2
浓度(pg/mL) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
840793 |
1.0% |
30 |
607806 |
0.4% |
100 |
477897 |
0.2% |
300 |
297725 |
2.0% |
1000 |
148035 |
0.3% |
3000 |
70245 |
1.5% |
在全血样本中FSH的结果如下表4所示,检测灵敏度范围为0~100 IU/L,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表4 FSH
浓度(IU/L) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
1023 |
3.2% |
1 |
13574 |
0.1% |
5 |
51463 |
1.3% |
15 |
134113 |
1.9% |
40 |
321372 |
2.3% |
100 |
758881 |
2.0% |
在全血样本中LH的结果如下表5所示,检测灵敏度范围为0~200 mIU/mL,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表5 LH
浓度(mIU/mL) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
1047 |
1.1% |
2 |
9722 |
1.4% |
6 |
33982 |
0.8% |
20 |
119161 |
2.3% |
60 |
386069 |
0.4% |
200 |
1325317 |
0.4% |
在全血样本中PRL的结果如下表6所示,检测灵敏度范围为0~1500 mIU/L,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表6 PRL
浓度(mIU/L) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
3114 |
0.8% |
20 |
69684 |
1.2% |
50 |
146390 |
1.9% |
150 |
278871 |
0.4% |
500 |
748242 |
2.4% |
1500 |
2016783 |
0.7% |
在全血样本中β-HCG的结果如下表7所示,检测灵敏度范围为0~1000 mIU/mL,并且在此范围的检测CV值低于10%。
表7 β-HCG
浓度(mIU/mL) |
相对光单位(RLU) |
变异系数(CV) |
0 |
1009 |
0.5% |
5 |
11544 |
0.2% |
20 |
43766 |
0.5% |
80 |
135149 |
1.2% |
320 |
449904 |
0.7% |
1000 |
1233239 |
0.1% |
1.碱性磷酸酶标记的抗原或抗体
(1)碱性磷酸酶标记的睾酮
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的睾酮溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的睾酮溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mMTB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(2)碱性磷酸酶标记的孕酮
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的孕酮溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的孕酮溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mMTB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(3)碱性磷酸酶标记的雌二醇
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的雌二醇溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的雌二醇溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mM TB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(4)碱性磷酸酶标记的一株抗促卵泡激素抗体
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的一株鼠抗FSH单克隆抗体溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的鼠抗FSH单克隆抗体的溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mM TB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(5)碱性磷酸酶标记的一株抗促黄体生成素抗体
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的一株鼠抗LH单克隆抗体溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的鼠抗LH单克隆抗体的溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mM TB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(6)碱性磷酸酶标记的一株抗催乳素抗体
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的一株鼠抗PRL单克隆抗体溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的鼠抗PRL单克隆抗体的溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mM TB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
(7)碱性磷酸酶标记的一株抗β-人绒毛膜促性腺激素抗体
将2.5mg的碱性磷酸酶(50IU/mg)加入到200μL 100mM的PBS缓冲溶液(pH=6.8)中,其中含有1.25%的戊二醛,搅拌混匀,4℃下活化24小时,透析至50mM(pH=7.2),18小时,换液3次;将1.8mg的一株抗β-HCG单克隆抗体溶于120μL 1M的碳酸盐溶液(pH=9)中;将活化的碱性磷酸酶加入到配置的鼠抗β-HCG单克隆抗体的溶液中,混合均匀,4℃下反应24h,然后再加入20μL 100 mM的赖氨酸溶液,混合均匀,在20℃下反应4h;4℃下透析12h至50 mM PBS(pH=7.2),换液3次;离心去上层清液,用50mM TB7.4+0.6% BSA+0.05%NaN3稀释,在-20℃下保存。
2.生物素标记的抗体
(1)生物素标记的抗睾酮抗体
先用碳酸钠缓冲液将鼠抗T单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL鼠抗T单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜;最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(2)生物素标记的抗孕酮抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗P单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗P单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜;最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(3)生物素标记的抗雌二醇抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗E2单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗E2单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜,最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(4)生物素标记的另一株抗促卵泡激素抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗FSH单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗FSH单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜,最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(5)生物素标记的另一株抗促黄体生成素抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗LH单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗LH单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜,最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(6)生物素标记的另一株抗催乳素抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗PRL单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗PRL单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜,最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
(7)生物素标记的另一株抗β-人绒毛膜促性腺激素抗体
先用碳酸钠缓冲液将另一株鼠抗β-HCG单克隆抗体稀释成1mg/mL,并用碳酸钠缓冲液室温(25℃±5℃)避光搅拌4小时透析;随后用N,N-二甲基酰胺(DMF)将6-氨基己酸-N羟基琥珀酰亚胺-生物素(BCNHS)配置成1mg/mL;在1mL另一株鼠抗β-HCG单克隆抗体溶液中加入上述DMF溶液125μL~66.7μL,玻璃瓶中混合,室温(25℃±5℃)避光搅拌2小时;加入1mol/L 氯化铵溶液9.6μL,室温(25℃±5℃)避光搅拌10分钟;然后混合溶液转入透析袋,用磷酸缓冲液4℃透析过夜,最后取出加等量甘油-20℃保存即可。
3.加样孔处抗红细胞滤血膜的处理
所选材料为玻璃纤维素膜或者聚酯纤维膜,浸泡于浓度为30 mg/L的鼠抗人红细胞单克隆抗体溶液,浸泡时长为1~6 h;随后将其置于湿度<35%的环境中沥干水分,时长8·16小时;最后将抗红细胞滤血膜裁剪成相应规格,用仪器将其贴于加样孔处。
4.抗体和抗原包被区的处理
将碱性磷酸酶标记的抗原或抗体5~50μg于抗原包被区或第一抗体包被区,将生物素标记的抗体于5~50μg抗体包被区或第二抗体包被区,置于湿度<35%环境中干燥8~16小时。
5.磁微粒包被区的处理
磁微粒溶液的的配置:选用表面标记有链霉亲和素的具有超顺磁性的生物纳米磁珠,直径1μm,将其用磁微粒稀释液溶解成1~20 mg/mL。
磁微粒包被区的干燥:取5~15μL配置好的微磁粒溶液置于芯片上的微磁粒包被区,置于湿度<35%环境中干燥8~16小时。
6.检测
取35-350μL全血滴于样本区,在毛细管或者离心力的作用下,样本流经芯片。5-20分钟后,在化学发光免疫分析仪下检测磁微粒包被区的发光强度,即可反算出样本中相应物质的浓度。
附:所需溶液配制
(1)鼠抗人红细胞单克隆抗体浸泡液
磷酸二氢钠 0.99g
磷酸氢二钠 5.16g
牛血清蛋白 1g
氯化钠 0.9g
鼠抗人红细胞单克隆抗体 34mg
叠氮钠 1g
纯化水定容至 1000mL。
(2)磁微粒稀释液
磷酸二氢钠 0.99g
磷酸氢二钠 5.16g
氯化钠 0.9g
牛血清蛋白 5g
十六烷基三甲基氯化铵 0.224g
叠氮钠 0.5g
Proclin300 1mL
罗氏清洁抗体(HBR-3) 50mg
纯化水定容至 1000mL。
(3)清洗液
磷酸二氢钠 0.99g
磷酸氢二钠 5.16g
吐温-20 1ml
Proclin300 1mL。
以上所述实施例仅是为充分说明本发明而所举的较佳的实施例,本发明的保护范围不限于此。本技术领域的技术人员在本发明基础上所作的等同替代或变换,均在本发明的保护范围之内。本发明的保护范围以权利要求书为准。