CN107338325A - 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用 - Google Patents

一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN107338325A
CN107338325A CN201710807245.9A CN201710807245A CN107338325A CN 107338325 A CN107338325 A CN 107338325A CN 201710807245 A CN201710807245 A CN 201710807245A CN 107338325 A CN107338325 A CN 107338325A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mycoplasma bovis
loop
isothermal amplification
mediated isothermal
mycoplasma
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201710807245.9A
Other languages
English (en)
Inventor
李�权
李一权
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jilin Kaibo Biotechnology Co Ltd
Original Assignee
Jilin Kaibo Biotechnology Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jilin Kaibo Biotechnology Co Ltd filed Critical Jilin Kaibo Biotechnology Co Ltd
Priority to CN201710807245.9A priority Critical patent/CN107338325A/zh
Publication of CN107338325A publication Critical patent/CN107338325A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种牛支原体环介导等温扩增检测方法,包括以下步骤:(1)引物合成;(2)配制PPLO液体培养基;(3)培养牛支原体;(4)环介导等温扩增反应;(5)环介导等温扩增反应产物分析。本发明根据牛支原体特异性基因P81设计两对特异性引物建立的牛支原体环介导等温扩增方法,快速、简单、灵敏,能够特异的检测出牛支原体感染。

Description

一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用
技术领域
本发明涉及动物病原分子检测技术领域,具体涉及一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用。
背景技术
牛支原体(mycoplasma bovis)是一种重要的引起牛呼吸道炎症、乳腺炎和关节炎等多系统炎症的致病性病原体。牛支原体属于柔膜体纲,支原体目,支原体属,1961年Hale等在美国首次从患有乳腺炎的病牛中分离得到。世界多个国家都证实该病原及其相关疾病广泛流传,极大地威胁了养牛业的健康发展。我国自2008年首次在病牛肺脏分离得到M.bovis病原,随后证实该病在全国不同地方广泛流行,导致严重的经济损失。虽然,病毒分离可确诊牛支原体,但是,由于支原体培养周期长、难度大,不能作为快速诊断牛支原体感染的方法。PCR方法虽然快速精确,但是需要在实验室才能完成,不适合临床和基层使用。因此,建立一种高效、快速、特异的检测方法具有重要意义。
环介导等温扩增技术(Loop-mediated isothermal amplification method,LAMP)具有高特异性、高灵敏性、简单、快捷及成本低的特点,很好的解决了上述难题,广泛用于疾病的诊断、检测等领域。
发明专利CN 101736085 B公开了一种牛支原体环介导等温扩增检测方法,其步骤包括:(1)引物合成:根据牛支原体特异性基因UvrC的序列设计两对特异引物;(2)培养牛支原体;(3)提取牛支原体总DNA;(4)环介导等温扩增反应和(5)环介导等温扩增反应产物分析。本发明可以100%扩增到临床分离到的牛支原体,且特异性强,对呼吸道常见菌可以作鉴别检测。但是,牛支原体和牛无乳支原体在16sRNA的同源性为99%,且两者的其他基因序列也有很大相似性,因此,能否准确区分这两种菌株体现引物特异性高低,该专利选用的牛支原体UvrC基因与牛无乳支原体的UvrC基因的同源性为82%-83%,用UvrC基因分辨牛支原体和牛无乳支原体有一定的难度,而且,特异性实验中样本也没有包含牛无乳支原体,所以该套引物能否区分牛支原体和牛无乳支原体还未可知;并且,选用的菌株为丝状支原体山羊亚种PG3、绵羊肺炎支原体Y98、牛鼻气管炎病毒、大肠杆菌、牛型分枝杆菌、金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、炭疽芽孢杆菌,其中丝状支原体山羊亚种PG3、绵羊肺炎支原体Y98是不会感染牛的,因此选用这两种菌株根本无实际意义;该专利采用SYBR Green I染料进行染色,但是,申请人根据大量实验发现,该方法特异性不强,阴性和阳性结果区分很不明显,不管肉眼还是紫外光下观察都没有明显区别,因为SYBR Green I染料是结合于所有的双链DNA双螺旋区域,具有绿色激发波长的染料,而DNA浓度实验过程中的改变对荧光的强度影响肉眼无法准确区分,因此该方法结果有时无法判定。
发明专利CN 104651519 A公开了一种牛支原体环介导等温扩增试剂盒,该试剂盒包括LAMP引物、2×反应缓冲液、Bst DNA聚合酶、荧光目视检测试剂、超纯水和牛支原体DNA模板,所述的LAMP引物包括外引物F3与B3和内引物FIP与BIP。特异性检测和敏感性检测证实,该专利申请提供的LAMP检测方法可实时监测反应并且定量检测出牛支原体的拷贝数,快速准确的获得检测结果,为简便、快速和可靠的检测牛支原体带来便利。但是,该专利在结果检测中采用的对照菌株没有无乳支原体,因此,该套引物能否区分和牛支原体相似性最高的牛无乳支原体未知,所以其结果的特异性就有待考证;并且,申请人通过大量实验发现钙黄绿素荧光试剂的结果特异性不高,肉眼无法区分,且结果不稳定,不适合实际应用,并且,
也不推荐临床使用。
发明内容
为解决现有技术的不足和缺陷,本发明提供了一种牛支原体环介导等温扩增检测方法,该方法在牛支原体检测中快速、灵敏、特异而又简单实用。
一种牛支原体环介导等温扩增检测方法,具体包括以下步骤:
(1)引物合成:根据牛支原体特异性基因P81设计两对特异性引物,所述引物组成的DNA序列如下:
FIP
5’-TGACCAGATGAAAAGCTAACACCTTATGAAGATCTAGGAAAAGATGCA-3’,
BIP
5’-TGAGGCTCACAAAAATGATAAACACTCAGGGTAACCTGAACCTA-3’,
F3 5’-CTAAGTGTGGTGGAACTGTA-3’,
B3 5’-TTTAATTCAGTGATGACTGTGT-3’;
(2)配置PPLO液体培养基;
(3)培养牛支原体:取PPLO液体培养基接种牛支原体菌液,在含有5%CO2、37℃温箱中培养3天,待PPLO液体培养基由红色变为橙色并液体透亮后停止培养,使用DNA提取试剂盒提取DNA;
(4)环介导等温扩增反应:以FIP、BIP为内引物,F3、B3为外引物对牛支原体DNA进行等温扩增,其反应体系为:1mM dNTPs,2.5μL10×Bst Buffer,5U Bst聚合酶,2μL模板,4mM MgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL,置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应;
(5)环介导等温扩增反应产物分析:步骤(4)的反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。
凝胶成像结果中,产物为梯形条带证明为牛支原体阳性,反之,为牛支原体阴性。
优选的,步骤(2)PPLO液体培养基的配置中,取肉汤粉4.2g,酵母提取物5g,1%酚红指示剂0.4mL,葡萄糖1g,加水至200mL,高压灭菌后冷却至后加入40mL马血清,100mg/mL的青霉素200μL。
进一步,步骤(3)中,按照1:1000的比例将牛支原体菌液接种至PPLO液体培养基上。
优选的,步骤(3)中,所述DNA提取试剂盒为血液DNA提取试剂盒或组织DNA提取试剂盒。
进一步,本发明的牛支原体环介导等温扩增检测方法在牛支原体检测中的应用。
本发明方法具有如下优点:
(1)与传统的普通PCR方法相比,本发明的牛支原体环介导等温扩增检测方法经济实用,不需要昂贵的PCR仪器,水浴锅即可;本发明的方法灵敏度高,可检测到103拷贝数的牛支原体目的基因,普通PCR只能检测到104拷贝数,灵敏度高10倍;本发明采用4条引物,特异性强,识别6个位点,增加了与牛支原体目的基因结合的特异性。
(2)与现有的牛支原体环介导等温扩增方法相比,本发明采用的牛支原体P81基因与牛无乳支原体同源性74%,比UvrC基因的同源性更低,并且,通过特异性检测实验可以证明,本发明的引物能够准确区分牛支原体和牛无乳支原体,检测过程中能够把最有可能干扰检测结果的菌株排除。
(3)与现有的牛支原体环介导等温扩增方法相比,本发明在结果检测中采用的菌株为无乳支原体、丝状支原体丝状亚种小克隆、多杀性巴氏杆菌、化脓性隐秘杆菌、牛肺炎链球菌、溶血性曼氏杆菌,其中,无乳支原体和牛支原体基因相似度高,并且,其他菌株也都是能引起牛肺炎的病原,与牛支原体引起的主要症状一致,较说服力更强,因此,本发明具有更强的实用性能。
综合上述,本发明根据牛支原体特异性基因P81设计两对特异性引物建立的牛支原体环介导等温扩增方法,快速、简单、灵敏,能够特异的检测出牛支原体感染。
附图说明
序列表SEQ ID NO:1是本发明牛支原体特异性基因P81的核苷酸序列;
图1为LMAP扩增目的片段,下划线序列为引物结合区域;
图2为LAMP检测牛支原体试验流程;
图3为组织样本检测;其中,泳道M:DL2000DNA Marker,泳道1-6:阳性组织、阴性组织、阴性组织、阳性组织、阳性组织、阴性对照;
图4为牛支原体特异性检测;其中,泳道M:DL2000DNA Marker,泳道1-8分别为:牛支原体、无乳支原体、丝状支原体丝状亚种小克隆、多杀性巴氏杆菌、化脓性隐秘杆菌、牛肺炎链球菌、溶血性曼氏杆菌、阴性对照;
图5为P81基因PCR电泳;其中,泳道M:DL2000DNA Marker,泳道1:P81基因;
图6为牛支原体灵敏度检测;其中,泳道M:DL2000DNA Marker,泳道1-9:依次阳性质粒拷贝数为109、108、107、106、105、104、103、102、10;
图7为普通PCR灵敏度检测;其中,泳道M:DL2000DNA Marker,泳道1-9:依次阳性质粒拷贝数为109、108、107、106、105、104、103、102、10;
图8为牛支原体菌落镜检图片。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
实施例1对临床分离到的牛支原体进行检测
1、牛支原体的分离及培养
将病牛肺脏组织表面用酒精棉灼烧灭菌后,切取一小块深层病变组织,接种PPLO固体培养基(配方:PPLO肉汤粉4.2g,酵母提取物5g,1%酚红指示剂0.4mL,葡萄糖1g,加水至200mL,高压灭菌后冷却至后加入40mL马血清,100mg/mL的青霉素200μL,琼脂粉3g)。在含有5%CO2的37℃温箱培养3天,置于40×显微镜下观察有煎蛋样支原体菌落,挑取单菌落接种PPLO液体培养基,5%CO2的37℃温箱培养3天,液体由红色变为橙色透明液体表明仅有支原体生长。
2、LAMP扩增
如图1所示,根据牛支原体特异性基因P81通过LAMP在线引物设计软件(http://primerexplorer.jp/e/index.html)及primer explorer V5设计引物,最终确定71bp-296bp的碱基序列之间的6个不同区域设计LAMP扩增反应所需要的两对特异性引物,其中,内引物为FIP和BIP,外引物为F3和B3,且引物组成的DNA序列如下:
FIP
5’-TGACCAGATGAAAAGCTAACACCTTATGAAGATCTAGGAAAAGATGCA-3’,
BIP
5’-TGAGGCTCACAAAAATGATAAACACTCAGGGTAACCTGAACCTA-3’,
F3 5’-CTAAGTGTGGTGGAACTGTA-3’,
B3 5’-TTTAATTCAGTGATGACTGTGT-3’;
提取牛支原体总DNA:使用商品化试剂盒提取DNA,-20℃保存。该DNA提取试剂盒为血液DNA提取试剂盒或组织DNA提取试剂盒均可。
如图2所示,环介导等温扩增反应:以FIP、BIP为内引物,F3、B3为外引物对牛支原体DNA进行等温扩增,反应体系为:1mM dNTPs,2.5μL10×Bst Buffer,5U Bst聚合酶,2μL模板,4mM MgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL。置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应。
环介导等温扩增反应产物分析:其反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。如图3所示,产物为梯形条带证明为牛支原体阳性,反之,为牛支原体阴性。
实施例2牛支原体LAMP检测方法特异性实验
培养表1所列菌株:无乳支原体、丝状支原体丝状亚种小克隆、多杀性巴氏杆菌、化脓性隐秘杆菌、牛肺炎链球菌、溶血性曼氏杆菌。
表1牛支原体LAMP检测方法特异性实验(验证实验)
注:“+”表示可以检测到有梯形条带,“-”表示不能检测到。
环介导等温扩增反应:以FIP、BIP为内引物,F3、B3为外引物分别对从牛支原体、无乳支原体、丝状支原体丝状亚种小克隆、多杀性巴氏杆菌、化脓性隐秘杆菌、牛肺炎链球菌、溶血性曼氏杆菌的DNA进行等温扩增,反应体系为:1mM dNTPs,2.5μL10×Bst Buffer,5UBst聚合酶,2μL模板,4mM MgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL,置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应。
环介导等温扩增反应产物分析:其反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。如图4所示,产物为梯形条带证明为牛支原体阳性,反之,为牛支原体阴性。
实施例3牛支原体LAMP检测方法灵敏度实验
用牛支原体P81基因的阳性质粒作模板,检测牛支原体LAMP方法的灵敏度。方法如下:
按照实施例1的方法培养牛支原体并提取牛支原体总DNA。
用普通PCR扩增出目的片段:用P81全长引物扩增出牛支原体总DNA中目的基因,反应体系:Ex-taq酶1μL,上游引物1μL,下游引物1μL,10×Buffer 4μL,dNTP 4μL,ddH2O 27μL,模板DNA 2μL。将上述试剂混匀放置于PCR仪中,反应参数设置为:
PCR产物分析:取50μL PCR产物在1.5%的琼脂糖凝胶中进行电泳,120V电泳30min,凝胶成像系统中成像。如图5所示,可以看到2100bp片段。
阳性质粒构建:将扩增的目的基因从琼脂糖凝胶上切下,使用琼脂糖凝胶试剂盒回收目的片段(购自TIANGEN公司)。将回收目的产物与pMD-18T载体连接,连接体系为:pMD-18T载体1μL,目的片段5μL,solution I 4μL,16℃连接8h。将连接产物转化DH5ɑ感受态,37℃摇床培养12h,提取质粒,通过测序的方法鉴定重组质粒。
将阳性质粒通过紫外分光光度计测定浓度,计算质粒拷贝数。公式为:
经计算阳性质粒拷贝数为:2.33×1010。用ddH2O将上述质粒进行倍比稀释,使其终浓度109copies/μL,108copies/μL,107copies/μL,106copies/μL,105copies/μL,104copies/μL,103copies/μL,102copies/μL,10copies/μL。
LAMP灵敏度实验:以FIP/BIP为内引物,以F3/B3为外引物对阳性质粒进行扩增,使体系中含质粒拷贝数依次为:109,108,107,106,105,104,103,102,10。体系中其它试剂为1mMdNTPs,2.5μL10×Bst Buffer,5U Bst聚合酶,2μL模板,4mM MgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL。置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应。
结果分析:其反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。如图6所示,结果LAMP对阳性质粒的扩增下限为103个。
对阳性质粒进行普通PCR扩增,使体系中含质粒拷贝数依次为:109,108,107,106,105,104,103,102,10。如图7所示,普通PCR对阳性质粒的扩增下限为104个。
实施例4:对牛支原体肺炎病变肺脏检测
对临床三份牛支原体阳性肺脏和两份牛支原体阴性肺脏进行LAMP检测。
牛支原体培养方法如下:将病牛肺脏组织表面用酒精棉灼烧灭菌后,切取一小块深层病变组织,接种PPLO固体培养基。在含有5%CO2的37℃温箱培养3天,置于40×显微镜下观察有煎蛋样支原体菌落,挑取单菌落接种PPLO液体培养基,5%CO2的37℃温箱培养3天,液体由红色变为橙色透明液体表明仅有支原体生长。显微镜下观察结果如图8,可见典型的煎蛋样菌落。
LAMP检测程序如下:取出1g左右组织,放置高压灭菌后的玻璃研磨器中,加入1mLPBS研磨,5000rpm离心1min,取上清,使用DNA提取试剂盒提取DNA。
环介导等温扩增反应:以FIP、BIP为内引物,F3、B3为外引物对牛支原体DNA进行等温扩增,反应体系为:1mM dNTPs,2.5μL10×Bst Buffer,5U Bst聚合酶,2μL模板,4mMMgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL。置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应。
环介导等温扩增反应产物分析:其反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。如图3所示,三份为牛支原体阳性肺脏和两份为牛支原体阴性肺脏,与事实相符。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施例对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
序列表
<110> 吉林省凯博生物技术有限公司
<120> 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用
<130> 2017-08-03
<160> 1
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 2080
<212> DNA
<213> 牛支原体(mycoplasma bovis)
<400> 1
atgagtaaga aaaataaatt aatgattggg ctttcatcta ctgctatccc gcttttagca 60
gcagtgtctg ctaagtgtgg tggaactgta aattatgaag atctaggaaa agatgcaaaa 120
aaaatatcac ttggtgttag cttttcatct ggtcagccac aatgaaatac tatggcttca 180
ttaataaaat attataatga ggctcacaaa aatgataaac actttttacc tgtagaacta 240
aaacacttag gttcaggtta ccctgaaggt gaaaacacag tcatcactga attaaaagca 300
aaaagaaatg aagttgttaa tttagctttt aactatggtt cactggcttc tagattagct 360
tcatctgaaa tgcgtgactt atacaaaatg gataaagttc taaactttga agataatgat 420
aaagatataa gtgttgattt aaagaacatt aacgagaaat ttgcaagagc aaattcaaac 480
accgaaaatc tacctaataa tggtacattt atgattccaa tgttaaagtc aatccaagtt 540
atgtctgcta acgcgccagt attacaatac atctttaaaa ctttcgagaa taaaggtgca 600
aaatttgatg attcatttaa gaaatcagcc agataccaag atattatgac aaatggtaag 660
ggcgacgaaa gtgaagtaca aaaattatga ggtgaatttg aaagttcaca gcaagatgct 720
gttaaaaaat taacaataag tagtagtaca ttcgaaaatc ttgaggaact tttaaatttt 780
gctaacatag cacaaaaaag ttttaaaaac tcagctgcca aaaactctag attacatatc 840
ttaggtgttg atgacgtttc gggattaatt caatcactgc catatgcaat gattaatgca 900
gatgctaatg actttttcat ccaaactggt cttgttaaga ataaaacaac agtaaattac 960
aaaaaaatta aagacaaaaa caataagtca gttaaagctc tttcagaaat ttacaacaaa 1020
ttcaaagaat ctctagctac taaatctctt acattactag ctggtggtga atatacatct 1080
tcataccaaa caaaacacga atatgctttt ggtattggat cagccgctgg atatagacat 1140
aactttattt cagacaaaac taaaaaagtt attttcacac ttaaaggtac tgatgttagt 1200
ggcgaaaaag ataaagaatt taaaaatgta attaaaaaga cagaaaaagg cgttgatcaa 1260
ttgtttgtta ctttcaaaga aaatgctaat aaagtttata aatcaacagt agatacagat 1320
aaacttgatg atgaagaaaa agactcatta agatacagtt ataaatctct tgactctgca 1380
acagacagta aaatggatga gatactcaag aaaataacaa atactgatcc agaagctagt 1440
gataataaac aatgactatt attcttaaga gaagataatc aaagcgatat taaaacagtt 1500
aaggaaaaag gtgctcaaga agttggaacc gttattgaaa ctaagataag tggagcatct 1560
aaatataaaa ttttcttctt aaacgatgaa agtttattag ttagaaaaga actttcatca 1620
aaaggaacac ttcaagaaaa agaattaata gtgtttgctg tgcctggtaa atgaaataaa 1680
tctaatgaaa agagagttat ttattcacaa ggcccttcac ttattggtgt aagtagaggt 1740
gcaaaacctg atagagcggc taaaaatttt gctaagttcc ttacttctct agaaaaaata 1800
gatattacac ttagcaaata tgacaaagat atgaaaaaga ccaaagatag tagagataaa 1860
ccttacaaac aagttactcc tgcacaattt attagtgatg ctgcttcata tgtattccct 1920
gtaaaaggtt ttgaaaaaac tgatacatct aagatcaaaa ataagtacat tgttcataca 1980
tataacgaat taaaagaagc tgtaacaaat aaaaatgttg ttatatatga agaaccagct 2040
ggattccact catcatcatt tagagaaagc ttaggttcag 2080

Claims (5)

1.一种牛支原体环介导等温扩增检测方法,其特征在于,所述检测方法包括以下步骤:
(1)引物合成:根据牛支原体特异性基因P81设计两对特异性引物,所述引物组成的DNA序列如下:
FIP
5’-TGACCAGATGAAAAGCTAACACCTTATGAAGATCTAGGAAAAGATGCA-3’,
BIP
5’-TGAGGCTCACAAAAATGATAAACACTCAGGGTAACCTGAACCTA-3’,
F3 5’-CTAAGTGTGGTGGAACTGTA-3’,
B3 5’-TTTAATTCAGTGATGACTGTGT-3’;
(2)配制PPLO液体培养基;
(3)培养牛支原体:取PPLO液体培养基接种牛支原体菌液,在含有5%CO2、37℃温箱中培养3天,待PPLO液体培养基由红色变为橙色并液体透亮后停止培养,使用DNA提取试剂盒提取DNA;
(4)环介导等温扩增反应:以FIP、BIP为内引物,F3、B3为外引物对牛支原体DNA进行等温扩增,其反应体系为:1mM dNTPs,2.5μL 10×Bst Buffer,5U Bst聚合酶,2μL模板,4mMMgSO4,外引物和内引物各0.8μM,ddH2O补齐至25μL,置于64℃水浴锅中40min,80℃10min终止反应;
(5)环介导等温扩增反应产物分析:步骤(4)的反应产物用2%的琼脂糖凝胶电泳,120V电压电泳30min,在凝胶成像系统中成像。
2.根据权利要求1所述的牛支原体环介导等温扩增检测方法,其特征在于:步骤(2)PPLO液体培养基的配置中,取肉汤粉4.2g,酵母提取物5g,1%酚红指示剂0.4mL,葡萄糖1g,加水至200mL,高压灭菌后冷却至后加入40mL马血清,100mg/mL的青霉素200μL。
3.根据权利要求1所述的牛支原体环介导等温扩增检测方法,其特征在于:步骤(3)中,按照1:1000的比例将牛支原体菌液接种至PPLO液体培养基上。
4.根据权利要求1所述的牛支原体环介导等温扩增检测方法,其特征在于:步骤(3)中,所述DNA提取试剂盒为血液DNA提取试剂盒或组织DNA提取试剂盒。
5.根据权利要求1-4任一项所述的牛支原体环介导等温扩增检测方法在牛支原体检测中的应用。
CN201710807245.9A 2017-09-08 2017-09-08 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用 Pending CN107338325A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710807245.9A CN107338325A (zh) 2017-09-08 2017-09-08 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710807245.9A CN107338325A (zh) 2017-09-08 2017-09-08 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN107338325A true CN107338325A (zh) 2017-11-10

Family

ID=60215395

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710807245.9A Pending CN107338325A (zh) 2017-09-08 2017-09-08 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107338325A (zh)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101736085A (zh) * 2009-11-18 2010-06-16 华中农业大学 牛支原体环介导等温扩增检测方法
US20150104799A1 (en) * 2013-10-16 2015-04-16 Wisconsin Alumni Research Foundation DNA-Based Detection and Identification of Eight Mastitis Pathogens
CN104651519A (zh) * 2015-03-04 2015-05-27 广西壮族自治区兽医研究所 一种牛支原体环介导等温扩增试剂盒及其应用
CN106635891A (zh) * 2016-11-25 2017-05-10 宁夏大学 牛支原体专用快速培养基及牛支原体的分离纯化方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101736085A (zh) * 2009-11-18 2010-06-16 华中农业大学 牛支原体环介导等温扩增检测方法
US20150104799A1 (en) * 2013-10-16 2015-04-16 Wisconsin Alumni Research Foundation DNA-Based Detection and Identification of Eight Mastitis Pathogens
CN104651519A (zh) * 2015-03-04 2015-05-27 广西壮族自治区兽医研究所 一种牛支原体环介导等温扩增试剂盒及其应用
CN106635891A (zh) * 2016-11-25 2017-05-10 宁夏大学 牛支原体专用快速培养基及牛支原体的分离纯化方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
金云云等: "基于牛支原体P81基因环介导等温扩增方法的建立及应用", 《中国兽医学报》 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101736085B (zh) 牛支原体环介导等温扩增检测方法
CN113249499B (zh) 一种伤寒沙门氏菌的检测试剂盒、其制备方法及其应用
Gupta et al. Single-step PCR for detection of Brucella melitensis from tissue and blood of goats
CN112725480B (zh) 一种利用lamp技术快速检测伤寒沙门氏菌的引物组、检测方法、试剂盒
CN109337995B (zh) 土拉杆菌及其亚种的pcr检测方法和试剂盒
CN102634596A (zh) 百日咳博德特氏菌和副百日咳博德特氏菌的特异性检测用引物探针组合和试剂盒
CN107312849B (zh) 一种检测牛支原体的cpa检测方法及其试剂盒与应用
CN101948914A (zh) 温氏附红细胞体的环介导等温扩增检测方法
CN110218806A (zh) 沙门菌fimW基因新型可视化LAMP快速检测引物组与试剂盒
CN109811073B (zh) 双重pcr早期快速检测无乳链球菌和海豚链球菌的引物及其应用
CN110656192B (zh) 一种检测脑膜炎奈瑟氏菌的环介导等温扩增引物组及检测方法
CN103160587A (zh) 10种常见致病军团菌的基因分型芯片及检测用试剂盒
EP0739987A2 (en) Oligonucleotides for detecting Salmonella species and detection process using the same
CN116121408A (zh) 一种基于CRISPR/Cas12a检测单增李斯特菌的现场可视化试剂盒及应用
CN107338325A (zh) 一种牛支原体环介导等温扩增检测方法及其应用
CN108342499B (zh) 一对同时快速检测无乳链球菌和海豚链球菌的引物及其应用
CN107699639B (zh) 一种鉴别牛轮状病毒和产肠毒大肠杆菌的引物及方法
CN111996268A (zh) 溶藻弧菌双重TaqMan探针实时荧光定量PCR检测试剂盒及其制备方法
CN102102126B (zh) 一种适用于转人乳铁蛋白基因牛的快速简便检测方法
Abdulridha et al. Evaluation of a rapid and reliable multiplex PCR assay for the detection of Salmonella Typhi in stool samples
JP2007020423A (ja) 腸内細菌群検出用核酸断片
CN109234360A (zh) 一种基于菌毛基因的新生仔猪源大肠杆菌lamp检测方法
CN108715897A (zh) 基于特异性序列的维氏气单胞菌检测引物、试剂盒、检测方法及其开发方法
CN107815491B (zh) 一种快速专一检测结核分支杆菌的试剂盒及其使用方法
KR102654964B1 (ko) 랄스토니아 시지키의 특이적 프라이머 세트 및 이를 이용한 랄스토니아 시지키의 검출방법

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20171110

WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication