CN107141285A

CN107141285A - 一种β‑咔啉化合物及其合成方法和应用

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Publication number: CN107141285A
Application number: CN201710384944.7A
Authority: CN
Inventors: 彭艳; 陈�胜; 龙靖娴; 张国海; 朱艳宏; 杨阳
Original assignee: Guangxi Normal University
Current assignee: Guangxi Normal University
Priority date: 2017-05-26
Filing date: 2017-05-26
Publication date: 2017-09-08
Anticipated expiration: 2037-05-26
Also published as: CN107141285B; WO2018214222A1

Abstract

本发明涉及一种β‑咔啉化合物及其合成方法和应用，属于医药技术领域。所述化合物结构如式I所示，经初步的实验表明，所述化合物体外抗肾纤维化活性显著,并对Balb/c小鼠左侧输尿管梗阻导致的肾间质纤维化的治疗效果好，具有较好的潜在药用价值，可用于各种抗肾纤维化、抗慢性肾病药物的制备。

Description

一种β-咔啉化合物及其合成方法和应用

【技术领域】

本发明涉及医药技术领域，具体涉及一种β-咔啉化合物及其合成方法和应用。

【背景技术】

慢性肾脏病以肾功能进行性丧失、细胞外基质(ECM)大量聚积所导致的肾纤维化为特征，主要包括肾小球硬化和小管间质纤维化。肾间质纤维化几乎是所有慢性肾脏疾病发展的最终结果，与肾功能衰竭进展密切相关，是导致终末期肾衰竭的主要病因。若早期对肾脏纤维化进行干预治疗，将有助于延缓慢性肾脏病进展，极大减少终末期肾病的发生率及其并发症，减轻其所造成的社会经济负担。

研究发现，转化生长因子-β(TGF-β)及其介导的Smad信号通路在肾间质纤维化中起重要作用，被认为是最关键、最强的纤维化诱导因子，参与肾纤维化的各个环节中。它的过度表达能够刺激系膜细胞、间质成纤维细胞合成大量胶原蛋白(Collagen)、纤连蛋白(FN)和层粘连蛋白(LN)，刺激成纤维细胞增殖并活化成肌成纤维细胞，促进ECM的分泌与沉积。TGF-β还能介导肾小管上皮细胞向间质细胞的转分化(EMT)。目前临床上尚无有效的抗肾脏纤维化的治疗方法。拮抗TGF-β及其介导的信号通路，抑制ECM合成或促进其降解，可能为寻找治疗肾脏纤维化提供一个有效的途径。

β-咔啉类生物碱是从新疆药用植物骆驼蓬(Peganum harmala)中分离出来的一种活性成分。具有广谱的药理学活性，如抗焦虑、抗抑郁、抗痉挛、以及抗肿瘤、抗疟疾、抗寄生虫、抗艾滋病等。在中草药配方中，用骆驼蓬种子来治疗癌症由来已久。β-咔啉类生物碱的结构修饰一直备受科研工作者的关注。一般认为，大多数β-咔啉类生物碱的平面共轭结构以及不同取代基团(如苄基(-C6H5)、甲氧基(-OCH3))的存在与其抗肿瘤活性具有显著关系。目前对β-咔啉类生物碱的研究主要包括以下几个方面：一是基于天然产物化学研究从不同科属的植物中发现并进行分离提纯；二是通过有机合成方法对β-咔啉类生物碱进行全合成或半合成，对其结构进行修饰。另外则是对其药理活性(如抗肿瘤活性)进行分子机理研究。如插入DNA，抑制拓扑异构酶、抑制CDK等。但从目前的研究进展来看，β-咔啉类生物碱在天然植物中的含量一般都比较低，而且提取相对比较复杂，不利于对其进行深入研究，而有机半合成方法在产率上虽具有一定的优势，但受到制取成本的限制，因此目前对β-咔啉类生物碱的拓展研究尚显不足。该类化合物有着良好的发展前景，但是目前还未见有1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉及其合成和应用的相关报道。

【发明内容】

本发明的发明目的在于：针对上述存在的问题，提供一种β-咔啉化合物及其合成方法和应用。本发明生产过程环保，生产成本低，操作安全性高，反应条件温和，操作简单；得到的β-咔啉化合物可用于制备抗肾纤维化药物和/或抗慢性肾病药物。

为了实现上述目的，本发明采用的技术方案如下：

一种式I的化合物或其药学上可接受的盐：

上述式I所示化合物的化学名称为，1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉。分子量为：379.17。

本发明还提供了所述式I的化合物的合成方法，包括如下步骤：将氢化钠溶于极性溶剂中，然后加入1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉和3-甲基苄基溴，于常温或加热条件下一锅反应，即得所述式I的化合物。

上述合成方法的合成路线如下：

上述式I所示化合物合成方法的步骤中，原料1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉和另一原料3-甲基苄基溴的物质的量之比通常为1：1.5或1:1，优选3-甲基苄基溴的摩尔量稍大于1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉的物质的量，以使反应充分进行。

进一步地，所述极性溶剂为N，N-二甲基甲酰胺，所述反应温度为20～40℃。反应是否完全可以采用薄层层析(TLC)跟踪检测，通常控制反应时间为20min～2h较合适。

本发明所述的合成方法，还包括分离和纯化步骤，所述分离和纯化为将一锅反应所得产物用乙酸乙酯或氯仿萃取，收集有机相，减压旋蒸除去溶剂，然后采用硅胶柱层析或高效液相色谱法的方式进行纯化；当采用硅胶柱层析的方式进行纯化时，优选地，以体积比为1000：50～100的石油醚和乙酸乙酯组成的洗脱剂进行洗脱，洗脱液除去溶剂，得到纯化后的目标物,较优选地，以无水甲醇和二氯甲烷组成的洗脱剂进行洗脱层析，所述无水甲醇和二氯甲烷的体积比为1000：10～50。当采用高效液相色谱法的方式进行纯化时，以体积比为1000：1～3的60％的甲醇水溶液和三氟乙酸组成的流动相进行梯度洗脱。

本发明还提供了所述的化合物或其药学上可接受的盐在制备抗肾纤维化药物和/或抗慢性肾病药物中的应用。

本发明还提供了一种药物组合物，其包括治疗有效量的权利要求1所述的化合物或其药学上可接受的盐以及药学上可接受的辅料。

综上所述，由于采用了上述技术方案，本发明的有益效果是：

与现有技术相比，本发明提供了一种β-咔啉化合物及其合成方法和应用。发明人对本发明所述化合物的抗肾纤维化、抗慢性肾病活性研究表明，该化合物体外抗肾纤维化活性显著，并对Balb/c小鼠左侧输尿管梗阻导致的肾间质纤维化的治疗效果好，，具有较好的潜在药用价值，可用于各种抗肾纤维化、抗慢性肾病药物的制备。

【附图说明】

图1为本发明实施例1制得的最终产物的核磁共振氢谱图；

图2为本发明实施例1制得的最终产物的核磁共振碳谱图；

图3为本发明实施例1制得的最终产物的电喷雾质谱谱图

图4为本发明实施例1制得的最终产物的高效液相色谱图；

图5为本发明实施例1制得的最终产物的细胞蛋白质免疫印迹实验图；

图6为本发明实施例1制得的最终产物的Balb/c小鼠肾脏组织切片HE-Masson染色图；

图7为本发明实施例1制得的最终产物的Balb/c小鼠肾脏组织Collagen-1免疫组织化学图；

图8为本发明实施例1制得的最终产物的Balb/c小鼠肾脏组织α-SMA免疫组织化学图；

图9为本发明实施例1制得的最终产物的Balb/c小鼠肾脏组织HADC1免疫组织化学图。

【具体实施方式】

实施例1结构如式I所示化合物的制备

1)将400mg(16.6mmol)的NaH，溶于1mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入550mg(2mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入555mg(3mmol)的3-甲基苄溴，常温继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml的氨水调节至中性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)粗产物以石油醚：乙酸乙酯＝1000:100(体积比)组成的溶剂作为洗脱剂，硅胶柱层析，得到橙黄色粉末产物(654mg，产率85.8％，纯度99.90％)。

对所得橙黄色粉末产物进行核磁表征，其核磁共振氢谱和碳谱分别如图1和2所示。

1HNMR(400MHz，CDCl3)δ8.64(ddd，J＝4.9，1.7，0.9Hz，1H)，8.50(d，J＝5.1Hz，1H)，8.02(d，J＝5.1Hz，1H)，7.69–7.61(m，2H)，7.54(dt，J＝7.9，1.0Hz，1H)，7.35(d，J＝9.0Hz，1H)，7.30(ddd，J＝7.5，4.9，1.2Hz，1H)，7.22(dd，J＝9.0，2.5Hz，1H)，6.91–6.84(m，2H)，6.30(s，1H)，6.26(dd，J＝4.8，3.3Hz，1H)，5.44(s，2H)，3.96(s，3H)，2.10(s，3H).

13CNMR(101MHz，CDCl3)δ158.35，154.25，148.00，143.09，138.00，137.84，137.79，137.36，136.43，134.82，131.05，128.16，127.69，126.34，125.14，122.71，122.66，121.59，118.57，114.46，111.35，103.35，56.02，48.69，21.26.

对所得橙黄色粉末产物进行质谱和高效液相色谱分析，结果分别如图3和4所示。

因此，可确定上述橙黄色粉末产物为：1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉，其化学结构式如下式I所示：

实施例2结构如式I所示化合物的制备

将200mg(8.33mmol)的NaH，溶于1mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入275mg(1mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入277.5mg(1.5mmol)的3-甲基苄基溴，常温继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml氨水调节至中性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

粗产物以石油醚：乙酸乙酯＝1000:80(体积比)组成的溶剂作为洗脱剂，硅胶柱层析，得到橙黄色粉末产物(248mg，产率65.4％，纯度99.93％)。

所得橙黄色粉末产物经过核磁表征，确定为本发明所述的1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉。

实施例3结构如式I所示化合物的制备

1)将200mg(8.33mmol)的NaH，溶于5mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入275mg(1mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入277.5mg(1.5mmol)的3-甲基苄基溴，常温继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml氨水调节至中性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)粗产物以石油醚：乙酸乙酯＝1000:50(体积比)组成的溶剂作为洗脱剂，硅胶柱层析，得到橙黄色粉末产物(286mg，产率76.3％，纯度99.90％)。

实施例4结构如式I所示化合物的制备

1)将200mg(8.33mmol)的NaH，溶于8mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入275mg(1mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入277.5mg(1.5mmol)的3-甲基苄基溴，常温继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml氨水调节至中性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)粗产物以无水甲醇：二氯甲烷＝1000：10(体积比)组成的溶剂作为洗脱剂，硅胶柱层析，得到橙黄色粉末产物(228mg，产率60.8％，纯度99.92％)。

实施例5结构如式I所示化合物的制备

1)将200mg(8.33mmol)的NaH，溶于10mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入275mg(1mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌20min，然后再逐滴加入277.5mg(1.5mmol)的3-甲基苄基溴，常温继续反应约40min；反应结束后所得产物用500ml氨水调节至中性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)粗产物以无水甲醇：二氯甲烷＝1000：50(体积比)组成的溶剂作为洗脱剂，硅胶柱层析，得到橙黄色粉末产物(297mg，产率79.2％，纯度99.93％)。

实施例6结构如式I所示化合物的制备

1)将400mg(16.6mmol)的NaH，溶于1mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入550mg(2mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入555mg(3mmol)的3-甲基苄溴，加热至40℃继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml的氨水调节至碱性，用氯仿萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)采用高效液相色谱法对粗产物进行纯化：以苯基硅烷键合硅胶为固定相，以60％的甲醇水溶液：三氟乙酸＝1000：1～3(体积比)组成的溶剂为流动相，将色谱柱平衡5分钟后上样，运行梯度纯化，监测并收集目的峰馏分，减压干燥，得到橙黄色粉末产物(262mg，产率34.5％，纯度99.99％)。

实施例7结构如式I所示化合物的制备

1)将200mg(8.33mmol)的NaH，溶于8mLN，N-二甲基甲酰胺中，搅拌10min，并逐渐加入275mg(1mmol)的1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉，室温搅拌10min，然后再逐滴加入277.5mg(1.5mmol)的3-甲基苄基溴，加热至35℃继续反应约20min；反应结束后所得产物用400ml氨水调节至碱性，用乙酸乙酯萃取，收集有机相，减压除去溶剂，得黄色油状液体的粗产物；

2)采用高效液相色谱法对粗产物进行纯化：以苯基硅烷键合硅胶为固定相，以60％的甲醇水溶液：三氟乙酸＝1000：1(体积比)组成的溶剂为流动相，将色谱柱平衡5分钟后上样，运行梯度纯化，监测并收集目的峰馏分，减压干燥，得到橙黄色粉末产物(135mg，产率35.6％，纯度99.99％)。

实施例8

一、1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉对大鼠正常肾成纤维细胞NRK-49F的增殖抑制活性实验：

1、细胞株与细胞培养

本实验选用大鼠正常肾成纤维细胞NRK-49F细胞株。

所用细胞株培养在含10wt％小牛血清、100U/mL青霉素、100U/mL链霉素的DMEM/F-12培养液内，置37℃含体积浓度5％CO2孵箱中培养。

2、待测化合物的配制

所用的1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉为本发明实施例1制得产物，由柱层析提纯所得，纯度≥95％。将待测的受试化合物以DMSO溶解后，再用直径d＝0.22μm的微孔滤膜过滤除菌，置于4℃下保存。将其DMSO储液(浓度为0.002mol/L)通过无血清DMEM/F-12培养基依次稀释成五个浓度梯度，分别为20、10、5、2.5、1.25μmol/L，其中助溶剂DMSO终浓度≤1％。首先测试不同浓度下的目标产物对于NRK-49F细胞增殖的抑制率，视为初筛结果；再分别测试不同梯度浓度下目标产物对NRK-49F细胞的增殖抑制程度，用以拟合计算半数抑制浓度，即IC50值。

3、细胞生长抑制实验(MTT法)

(1)取对数生长期的细胞，经胰蛋白酶消化后，用含10％小牛血清的培养液配制成浓度为5000个/mL的细胞悬液，以每孔180μL接种于96孔培养板中，使待测细胞密度至1000～10000个/孔(边缘孔用无菌PBS填充)；

(2)5％CO2，37℃孵育12h，待细胞贴壁后，换无血清DMEM/F-12培养液继续培养12h，每孔加入一定浓度梯度的药物20μL，每个浓度梯度设5个复孔；

(3)5％CO2，37℃孵育48小时，倒置显微镜下观察；

(4)每孔加入10μL的MTT溶液(5mg/mLPBS，即0.5％MTT)，继续培养4～8h；

(5)终止培养，小心吸去孔内培养液，每孔加入200μLDMSO充分溶解甲瓒沉淀，振荡器混匀后，在酶标仪用波长为570nm，参比波长为450nm测定各孔的光密度值；

(6)同时设置调零孔(培养基、MTT、DMSO)，对照孔(细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、DMSO)。

(7)根据测得的光密度值(OD值)，来判断活细胞数量，OD值越大，细胞活性越强。

利用公式：

计算化合物对细胞生长的抑制率。其测试结果如以下表1所示。

表1：化合物在不同浓度下对NRK-49F细胞株的生长抑制率(％)

进一步通过SPSS软件对三个浓度梯度的抑制率数据进行拟合，求出产物对NRK-49F细胞株的半数抑制浓度(IC50值，单位μmol/L)，化合物对于NRK-49F细胞株的IC50值如表2所示。

表2：化合物对NRK-49F细胞株的IC50值(μM)

从体外测试结果来看，1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉对大鼠正常肾成纤维细胞NRK-49F细胞株都表现出显著的增殖抑制活性，用MTT法测得在20、10、5、2.5、1.25μmol/L浓度时抑制率分别为82.08％、65.43％、55.93％、46.83％、30.51％，计算得到IC50值为3.476μM。

二、1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉对大鼠肾成纤维化细胞NRK-49F的肾纤维化相关蛋白的蛋白质免疫印迹实验：

本发明用TGF-β1(2ng/ml)刺激NRK-49F细胞，建立体外纤维化模型，同时加入不同浓度(2μM，4μM，6μM)的上述(I)所示化合物，共同作用48小时后，将细胞裂解后抽提蛋白，进行蛋白质免疫印迹实验，分析纤连蛋白(Fibronectin，FN)、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、胶原蛋白Ⅰ(CollagenⅠ)等蛋白的表达情况，具体操作如下：

1.蛋白提取

(1)接种细胞：选择收集生长状态良好的NRK-49F细胞，种于直径为10cm的培养皿，置于37℃，CO2浓度为5％的恒温培养箱培养12h，换无血清DMEM/F-12培养液继续培养12h。

(2)给药：待细胞贴壁增殖达对数生长期时，分别加入2ng/ml的TGF-β1和不同体积、浓度为2×10-3M的化合物Ⅰ(由实施例1制得)，充分混合均匀后在恒温培养箱中孵育48h。

(3)收集细胞：待细胞给药处理48h后，用浓度为0.25％胰蛋白酶消化贴壁细胞，转移至15mL离心管中，转至离心机，2000rpm离心10min。

(4)细胞裂解：用细胞裂解液(RIPA)：PMSF(苯甲基磺酰氟)＝100:1的体积比分别加入，混匀悬浮细胞，置于冰上低温环境下裂解30～50min。

(5)收集蛋白：将裂解好的细胞悬液低温4℃，12000r离心10min；上清液用BCA蛋白浓度测定试剂盒(增强型)进行蛋白定量，-80℃储存。

2.SDS-PAGE电泳

(1)浓缩胶与分离胶的制备：根据实验需要，配制8％、10％分离胶与5％的浓缩胶。将分离胶灌入垂直玻璃槽中，用蒸馏水进行液封。分离胶凝固后，弃去蒸馏水，再将浓缩胶灌入垂直玻璃槽插入梳子，待胶凝固。待分离胶凝固后，拔出梳子，将垂直电泳装置放入电泳槽中等待后续加待测样品进行电泳。

(2)上样与电泳：取20μg样品用5×上样缓冲液按体积比为4:1比例稀释，沸水浴中加热5min，冷却后上样，在胶板左侧，加入5μL蛋白预染。加入电泳液，电泳槽灌满，按浓缩胶60V，60min，分离胶80V，160min进行电泳。

(3)转膜：取出玻璃板，将凝胶剥离并浸于转膜缓冲液中平衡10min；根据彩色预染蛋白条带进行切胶。取8张滤纸剪裁成与转膜海绵相同大小，在转膜缓冲液中浸湿备用；取合适孔径大小(0.45μm或0.22μm)醋酸纤维素膜(PVDF)，剪裁成与切割的PAGE胶相同大小。取8张滤纸剪裁成与转膜海绵相同大小，在转膜缓冲液中浸湿备用；取合适孔径大小(0.45μm或0.22μm)醋酸纤维素膜(PVDF)，剪裁成与切割的PAGE胶相同大小。将转膜夹放入转膜槽中，加入转膜缓冲液，恒流200mA，进行转膜电泳。待转膜结束，可用考马斯亮蓝染胶，用丽春红染液染膜，检测转膜效果；PVDF膜用清水洗过后，进行下一步操作。

(4)免疫反应：待转膜结束，PVDF膜用PBS漂洗后再用快速封闭液封闭30min。PBST漂洗5min，转至按适当比例配置的一抗纤连蛋白(Fibronectin，FN)、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、胶原蛋白Ⅰ(CollagenⅠ)和胶原蛋白Ⅲ(COL3A1))溶液中，4℃孵育过夜。用二抗稀释液稀释二抗，室温下在脱色摇床上孵育约1h，用PBST和PBS漂洗后进行化学发光反应。

(5)化学发光：取化学发光试剂(superECL超敏发光液，普利莱基因技术有限公司)，与膜蛋白面充分接触，在化学发光成像系统上显影。

实验结果如图5所示。

从抗肾纤维化测试结果来看，1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉可显著抑制TGF-β1诱导的NRK-49F细胞的FN、α-SMA、CollagenI和COL3A1的表达，且呈剂量依赖关系，表明该化合物体外抗肾纤维化活性显著，具有较好的潜在药用价值，有望用于各种抗肾纤维化、抗慢性肾脏病药物的制备。

三、1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉对Balb/c小鼠左侧输尿管梗阻导致的肾间质纤维化的治疗效果实验，具体如下：

1、实验小鼠UUO模型的建立、给药及解剖和固定保存

①将小鼠随机分为三组，为假手术组、模型组和给药组(其中假手术组仅切开腹腔并游离左侧输尿管，但不结扎)，同时给小鼠进行编号，称重及做标记。

②对小鼠进行单侧输尿管结扎，保证在手术过程中外部环境保持无菌条件。

单侧输尿管结扎实验步骤

⑴先用10％的水合氯醛麻醉小鼠，将小鼠全身用酒精棉球擦一遍，将小鼠放在无菌包上，固定小鼠四肢，腹部朝上。

⑵用灭菌过的剪刀和镊子将小鼠肚皮左侧皮层剪开一个小口，再将腹膜同样剪开同样大小的一个小口，用止血钳将肚皮小口尽量撑开，暴露出内脏。

⑶用无菌的湿棉签将小鼠内脏游离出腹部(注意动作一定要轻)，找到输尿管，用镊子暴露出输尿管。

⑷用丝线在离肾脏稍远的地方结扎一个线头，用止血钳将其扯出肚皮，固定住输尿管。

⑸再用丝线在肾脏下方用丝线扎上第二个结，接着在其下方一点扎上第三个结。

⑹用灭菌的剪刀将多余的线头剪干净，同时注意留出一点线头，防止脱落。

⑺剪掉线头后，用无菌的湿棉签将外面的内脏一点一点拨入腹部，注意动作一定要轻。

⑻将内脏送回腹部后，用丝线现将腹膜缝好，再将外部皮层缝好。

⑼将小鼠放入恒温箱中，待麻醉效果过后，等小鼠醒来。

③对小鼠进行腹腔注射给药，所用的1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉为本发明实施例1制得产物，由柱层析提纯所得，纯度≥95％，将其DMSO储液(浓度为0.002mol/L)依次稀释成三个浓度梯度，分别为1.25mg/kg·d；2.5mg/kg·d；5mg/kg·d，其中助溶剂DMSO终浓度≤5％。其中假手术组及模型组以等量脂肪乳+DMSO进行注射，给药组以脂肪乳+DMSO+药物进行注射。注射量按0.2ml/20g进行注射。

④用颈椎脱臼法处死各组小鼠，解剖。取其肾脏，其中左肾一半放在10％的福尔马林里进行固定保存，用来做石蜡切片；另一半装入EP管中，放入-110℃冰箱中进行冷冻保存，用于Westernblot实验。

2、石腊快的制作

①洗涤：用脱水夹将各组织分别装好，用先串起来，流水冲洗6-8h。

②脱水：材料依次经75％、75％、85％、95％、95％、100％、100％各级乙醇溶液脱水，各步骤脱水时长不超过1小时。

③透明：材料依次经过纯酒精与二甲苯等量混合液、二甲苯、二甲苯(至透明为止)，各步骤透明时长不超过1小时。

④透蜡：材料依次放入1/3二甲苯和1/3石蜡混合液、1/2二甲苯和1/2石蜡混合液、石蜡、石蜡透蜡各50-60min。

⑤包埋：包埋时，用镊子夹取石蜡模子(金属质地)在酒精灯上稍加热，放在平的桌面上，从温箱中取出盛放纯石蜡的蜡杯，倒入少许石蜡。再将镊子在酒精灯上稍加热，夹取材料将组织块放入蜡模中，排列整齐。再放上包埋盒，轻轻倒入熔蜡。注意保持组织块的整齐排列，包埋动作要迅速，否则熔蜡凝固。轻轻将纸盒两侧的把手提起，慢慢地平放在面盆，并立即使它沉入水中，使盒中包埋块迅速凝固。待石蜡完全凝固(约30min)后即可取出备用。

3、石蜡切片

①将已固定和修好的石蜡块装在切片机的夹物台上。

②将切片刀固定在刀夹上，刀口向上。摇动推动螺旋，使石蜡块与刀口贴近，但不可超过刀口。

③调整石蜡块与刀口之间的角度与位置，刀片与石蜡切片约成15度左右。调整厚度调节器到所需的切片厚度，一般为6-10μm。我们所需为3μm。

④一切调整好后主可以开始切片。此时先将蜡块进行粗切，右手摇动转轮，让蜡块切成蜡带，让组织暴露出最大面积。

⑤此时可以进行细切，左手持毛笔将蜡带提起，摇转速度不可太急，通常以40-50r/min。

⑥切成的蜡带到一定长度时，右手用另一支毛笔轻轻将蜡带挑起，以免卷曲。

⑦将挑起的蜡带轻轻放在摊片机的水面上。(事先将摊片机打开，使水温维持在40-45℃)

⑧小镊子轻轻地将连在一起的切片分开，用一个载玻片将已展开的切片捞起来，放在烘片机上滤过水分。

⑨在载玻片的磨面上标记或贴上标签，放于切片架上。将切片机等机器收拾好。

⑩60℃烤箱烤片2h至蜡融化。

4、HE染色

①石蜡切片常规脱蜡至水。(石蜡切片经二甲苯Ⅰ、Ⅱ脱蜡各15min，然后放入1/2二甲苯和1/2无水乙醇的混合液，1/2二甲苯和1/2无水乙醇的混合液各3min，再放入100％、95％、90％、85％、75％、50％各级酒精溶液中各3-5min，再放入蒸馏水中3min。)

②苏木素染液染色15min，自来水冲洗。

③分化液分化30s。

④自来水浸泡15min.

⑤用伊红染液染5min，自来水冲洗。

⑥自来水浸泡5min。

⑦梯度酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶封片。

5、Masson染色

①石蜡切片常规脱蜡至水。

②用配置好的weight铁苏木素染色液染色5-10min。

③酸性乙醇分化液分化30s，稍水洗。

④Masson蓝化液返蓝5min，稍水洗；蒸馏水洗1min。

⑤丽春红品红染色液染色5-10min。

⑥在上述操作过程中按蒸馏水：弱酸溶液＝2:1比例配制弱酸工作液，用弱酸工作液洗1min。

⑦磷泪酸溶液洗2min。用配制好的弱酸工作液洗1min。

⑧直接放入苯胺蓝染色液中染色2min。用配制好的弱酸工作液洗1min。

⑨梯度酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶封片。

6、免疫组织化学

①石蜡切片常规脱蜡至水。

②抗原修复：将脱蜡的片子按不同修复方法进行分类放入装片槽中，修复液用高压锅加热至沸，拿下，将分类好的片子放相应配好的修复液中。将高压锅加热至开始冒气后，开始计时2min，等时间到了，将高压锅拿下，自然冷却3min后，用冷水冲洗至室温。

③放入H2O2(3％)中室温孵育10min，孵育好放入保湿盒上。

④PBS冲洗3次，每次3min，油笔标记。

⑤5％羊血清封闭30min。PBS冲洗3次，每次3min。

⑥一抗4℃孵育过夜。PBS冲洗3次，每次3min。滴加二抗室温下孵育15min。PBS冲洗3次，每次3min。

其中一抗稀释比例为：Collagen-11:3000；HADC11:500；Smad2/31:1600

⑦除去PBS，每张切片加2滴新鲜配制的DAB溶液。

⑧将片子放入架子中用自来水冲洗5min。然后放入苏木素染缸中1min左右，取出水洗后返蓝。

⑨梯度酒精脱水，中性树胶封片。

⑩拍照成像。

7、实验结果

①HE染色：模型组纤维母细胞较假手术组明显增多，药物组纤维母细胞较模型组有所减少，如图6。

②Masson染色：在模型组的片子中，被染液染成亮蓝色的即为胶原纤维，发现模型组的肾组织中存在大量的胶原纤维，而药物组肾组织中存在的胶原纤维较模型组显著减少，纤维化程度减轻，如图6。

③免疫组织化学

⑴Collagen-1：据拍照结果显示，假手术组呈阴性，模型组和药物组呈阳性。模型组和药物组由于左侧输尿管结扎造成肾小管肿胀，从而在照片上存在空洞，而随着药物浓度的升高，Collagen-1蛋白的表达随之降低，呈弱阳性，手术结扎造成的影响也有一定程度的减轻，如图7。

⑵Smad2/3：据拍照结果显示，假手术组呈阴性，模型组和药物组呈阳性。随着药物浓度的升高，Smad2/3蛋白的表达随之降低，呈弱阳性，如图8。

⑶HADC1：据拍照结果显示，三组均呈阳性。其中阳性程度模型组＞假手术组＞药物组，随着药物浓度的升高，HADC1蛋白的表达随之降低，如图9。

从体内抗肾纤维化测试结果来看，1-吡啶-6-甲氧基-9-(3-甲基苄)β-咔啉可显著抑制BALB/c小鼠左侧输尿管梗阻导致的肾间质纤维化，显著抑制CollagenI、Smad2/3、HADC1的表达，且呈剂量依赖关系，表明该化合物体内抗肾纤维化活性显著，具有较好的潜在药用价值，可用于各种抗肾纤维化、抗慢性肾脏病药物的制备。

实施例10药物组合物

本发明提供的式I所示化合物	15％
		淀粉	40％
微晶纤维素	25％
		羧甲基淀粉纳	19％
硬脂酸镁	1％

以上药物和辅料粉碎后过筛，混合即得。

实施例11药物组合物

本发明提供的式I所示化合物	8％
		淀粉	47％
微晶纤维素	22％
		羧甲基淀粉纳	20％
硬脂酸镁	3％

以上药物和辅料粉碎后过筛，混合即得。

实施例11药物组合物

以上药物和辅料粉碎后过筛，混合后于压片机上压片，即得。

实施例11药物组合物

本发明提供的式I所示化合物	15％
		干淀粉	65％
硬脂酸镁	20％

以上药物和辅料粉碎后过筛，混合后填充入硬明胶胶囊中，即得。

实施例12药物组合物

本发明提供的式I所示化合物	1％
		氯化钠	1％
注射用水	98％

将本发明提供的化合物加氯化钠及适量注射用水，搅拌均匀，加入0.1％针用活性碳，吸附，过滤脱碳，补加注射用水至规定量，微孔过滤膜过滤，按1mL/支灌封，100℃湿热灭菌20min，经灯检合格，即得。

实施例13药物组合物

本发明提供的式I所示化合物	0.1％
		乙醇	0.4％
氯化钠	0.1％
		甘露醇	0.6％
注射用水	99％

将本发明提供的化合物加乙醇搅拌溶解，加氯化钠、甘露醇及适量注射用水，搅拌均匀，加入0.1％针用活性碳，吸附，过滤脱碳，补加注射用水至规定量，微孔过滤膜过滤，按4mL/支分装，冷冻干燥，封装，经检验合格，即得。

上述说明是针对本发明较佳可行实施例的详细说明，但实施例并非用以限定本发明的专利申请范围，凡本发明所提示的技术精神下所完成的同等变化或修饰变更，均应属于本发明所涵盖专利范围。

Claims

1.一种式I的化合物或其药学上可接受的盐：

2.根据权利要求1所述化合物的合成方法，其特征在于，包括如下步骤：将氢化钠溶于极性溶剂中，然后加入1-吡啶-6-甲氧基-β-咔啉和3-甲基苄基溴，于常温或加热条件下一锅反应，即得所述式I的化合物。

3.根据权利要求2所述的合成方法，其特征在于：所述极性溶剂为N，N-二甲基甲酰胺，所述反应温度为20～40℃。

4.根据权利要求2所述的合成方法，其特征在于，还包括分离和纯化步骤，所述分离和纯化为将一锅反应所得产物用乙酸乙酯或氯仿萃取，收集有机相，减压旋蒸除去溶剂，然后采用硅胶柱层析或高效液相色谱法的方式进行纯化。

5.根据权利要求4所述的合成方法，其特征在于，所述硅胶柱层析采用石油醚和乙酸乙酯组成的洗脱剂进行洗脱层析，所述石油醚和乙酸乙酯的体积比为1000：50～100。

6.根据权利要求4所述的合成方法，其特征在于，所述硅胶柱层析采用无水甲醇和二氯甲烷组成的洗脱剂进行洗脱层析，所述无水甲醇和二氯甲烷的体积比为1000：10～50。

7.根据权利要求4所述的合成方法，其特征在于，所述高效液相色谱法为：用60％的甲醇水溶液和三氟乙酸组成的流动相进行梯度洗脱，所述60％的甲醇水溶液和三氟乙酸的体积比为1000：1～3。

8.权利要求1所述的化合物或其药学上可接受的盐在制备抗肾纤维化药物和/或抗慢性肾病药物中的应用。

9.一种药物组合物，其特征在于，包括治疗有效量的权利要求1所述的化合物或其药学上可接受的盐以及药学上可接受的辅料。