CN106497797A - 一种真菌培养物的提取物及其制备方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明适用于生物制药领域,提供了一种真菌培养物的提取物及其制备方法和应用,所述提取物为环二肽类化合物,所述环二肽类化合物可编号为CCTCC M 2015628的深海真菌发酵培养物中分离得到。所述环二肽类化合物具有较强抑制一氧化氮(NO)产生的活性,且对细胞无毒性;可用于治疗阿尔茨海默病的药物的制备。

Description

一种真菌培养物的提取物及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及生物制药领域,尤其涉及一种真菌培养物的提取物及其制备方法和应用。
背景技术
目前困扰人们的日常炎性疾病包括,关节炎症例如骨关节炎、类风湿性关节炎、类风湿性脊椎炎、痛风关节炎等;炎性皮肤病例如湿疹、牛皮癣、皮炎等;炎性眼疾例如色素层炎、结膜炎等;肺部疾病例如哮喘、支气管炎、急性呼吸窘迫综合症等;菌血症、那毒素血症、口疮溃疡、龈炎、胰腺炎等;胃肠道疾病例如节段性回肠炎、萎缩性胃炎、溃疡性结肠炎、腹腔炎、消化性溃疡、应激性肠道综合症例如由幽门螺旋杆菌感染而引起的粘膜炎症或者由非甾体类抗炎药引起的肠胃病等等。近年来,关于神经退行性疾病的研究表明,神经细胞的损伤也与炎症有密切的关系。
有关各种炎症致病作用的机理,已知体内一氧化氮(NO)是介导细胞免疫和炎症的毒性物质。其前体是左旋精氨酸(L-arg),L-arg在NO合成酶(NOS)的作用下生成NO。目前已经分离出三种不同类型的NOS,包括内皮NO合成酶(eNOS),神经元NO合成酶(nNOS)及诱导型NO合成酶(iNOS)。目前已知,巨噬细胞、肝细胞、平滑肌细胞、腺癌细胞、神经胶质细胞以及上皮细胞均能表达iNOS。某些炎性细胞因子和微生物产物如脂多糖(LPS)则可诱导iNOS表达。iNOS一旦被诱导即可表达出高度活性,产生大量NO。NO的过量生成造成炎症的增恶,从而导致各种急慢性疾病。而神经胶质细胞过量产生NO,会造成神经细胞损伤,进而导致神经退行性疾病,包括老年痴呆,老年痴呆特别是阿尔茨海默型痴呆(Alzheimer’s Disease:AD),也就是通常所说的阿尔茨 海默病,是一种进行性发展的致死性神经退行性疾病,临床表现为认知和记忆功能不断恶化,日常生活能力进行性减退,并有各种神经精神症状和行为障碍。AD在发病过程中常伴有炎症反应,并在β-淀粉样沉淀中发现了被激活的小胶质细胞和炎症分子;同时抗炎症药物能够减缓AD发病的过程,因此,目前认为激活的小胶质细胞及炎症反应能与老年痴呆症的发病密切相关。
因此,长时间以来,人们致力于寻找诱导型NO合成酶iNOS的抑制剂来治疗与之相关的炎性疾病,尤其是治疗阿尔茨海默病。但这些抑制剂大多局限于化学合成的物质,副作用较大。
发明内容
鉴于上述现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种真菌培养物的提取物及其制备方法和应用,该提取物对于具有抑制一氧化氮的活性并且对细胞无毒性,尤其对神经胶质细胞(BV2)具有抑制一氧化氮的活性并且对细胞无毒性,旨在提供一种新的能够抑制一氧化氮产生的化合物及其制备方法。
本发明的技术方案如下:
本发明所用的真菌是深海真菌Aspergillus sp.SCSIOW2,该深海真菌已保藏于中国典型培养物保藏中心(CCTCC中国,武汉,武汉大学),保藏编号为CCTCC M No.2015628,保藏日期:2015年10月21日。该真菌以下简称深海真菌CCTCC M 2015628。
本发明是这样实现的,一种真菌培养物的提取物,所述提取物是从深海真菌CCTCCM 2015628的发酵培养液的乙酸乙酯萃取液中浓缩、分离得到的环二肽类化合物;所述环二肽类化合物包括以下化合物中的一种或两种,化合物的结构式如下所示:
本发明还提供了上述所述的真菌培养物的提取物的制备方法,包括以下步骤:
将菌种深海真菌CCTCC M 2015628接种到种子培养基中,27~29℃培养47~49小时,得到种子培养液;
将种子培养液接种到液体培养基中,室温静置避光培养15~16天,获得深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物,其中含有环二肽类化合物;
其中,种子培养基的配方为:葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%;
液体培养基的成分包括海盐、去离子水、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物,其中,葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%。
进一步地,所述液体培养基的制备方法为:按比例称取海盐、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物溶于去离子水中,待完全溶解后,调节PH至7.4~7.6。
进一步地,所述的真菌培养物的提取物的制备方法还包括以下步骤:
将所述深海真菌的发酵培养物用乙酸乙酯超声萃取,萃取液在低于50℃下减压浓缩得发酵液浸膏;重复前述萃取步骤2次以上,合并发酵液浸膏;
将发酵液浸膏后经Sephadex LH-20开放柱,用1:1的氯仿-甲醇洗脱剂等浓度洗脱,选取具有抗一氧化氮活性的组分2;
将组分2拌入硅胶后装硅胶柱,以环己烷-乙酸乙酯为洗脱溶剂梯度洗脱,经TLC分析选取组分W2-2-14、W2-2-16用反向HPLC柱进一步分离纯化;
组分W2-2-14用HPLC分离纯化,0-30min内50%的甲醇等浓度洗脱,收集后即可得到纯化的式(I)环二肽类化合物(190mg,td=8.3min);
组分W2-2-16用HPLC分离纯化,0-20min内乙腈浓度由20%梯度上升到40%,收集后即可得到纯化的式(Ⅱ)环二肽类化合物(90mg,td=7.0min);
所述组分W2-2-14由环己烷-乙酸乙酯体积比7:3的洗脱剂洗脱后得到,所述组分W2-2-16由环己烷-乙酸乙酯体积比6:4的洗脱剂洗脱后得到。
进一步地,所述超声萃取过程中,按照每5mL种子培养液配245~255mL的乙酸乙酯比例添加乙酸乙酯。
进一步地,所述硅胶柱层析分离过程中,所用硅胶为200-300目,洗脱溶剂梯度为环己烷-乙酸乙酯体积比100:0,97:3,95:5,9:1,8:2,7:3,6:4,0:100。
本发明还提供了上述所述的真菌培养物的提取物的应用,将所述环二肽类化合物用于抑制一氧化氮产生的药物的制备。
进一步地,将所述环二肽类化合物用于抗炎活性药物的制备。
进一步地,将所述环二肽类化合物用于治疗阿尔茨海默病的药物的制备。
本发明的有益效果:本发明在深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物中首次分离出两种环二肽类化合物,对所述环二肽类化合物进行一氧化氮(NO)产生抑制活性测定,实验浓度为10μM/ml时,对LPS诱导BV2细胞释放NO具有明显的抑制活性,抑制率高于50%,且对应的细胞存活率均是100%,表明所述环二肽类化合物在这种浓度下具有一定的NO抑制活性,并且对细胞无毒性,可用于制备抑制一氧化氮产生的药物,尤其可用于治疗阿尔茨海默病的药物的制备。
附图说明
图1为本发明实施例2中亚硝酸盐曲线测定样品的加样顺序及对应的加样浓度。
具体实施方式
本发明提供一种真菌发酵培养物的提取物及其制备方法和应用,为使本发明的目的、技术方案及效果更加清楚、明确,以下对本发明进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
海洋真菌是一种能够产生复杂而独特的化学结构以及丰富且多样生物活性物质的资源,分布广泛,但是由于各种原因和条件限制,海洋真菌的代谢产物的相关研究是最近几十年才开始,其次级代谢产物的研究从1988年才开始有文献报道。随着各国科研者对于海洋真菌代谢产物的重视,许多实验者都得出海洋真菌能够产生多种多样的新颖的活性物质基本共识。据统计,到2011年为止已从海洋真菌的发酵产物中发现了1117个新的次生代谢产物,其生物活性主要表现为抗肿瘤、抗菌和抗病毒活性。深入研究和开发海洋真菌次生代谢产物具有重要的理论意义和实际应用价值。
而本发明中就是采用南海海泥的深海真菌,在深海真菌活性次级代谢产物筛选的基础上,用大米培养基对深海来源真菌20株进行了初步发酵,乙酸乙酯萃取得到提取物后,对提取物进行了多种活性测定,包括一氧化氮(NO)产生抑制活性、抗癌细胞毒活性、A-Beta蛋白聚集抑制活性、以及多种细菌的抗菌活性。其中发现深海真菌CCTCC M 2015628表现出一定的一氧化氮(NO)产生抑制活性。
该深海真菌CCTCC M 2015628菌株具有如下分子生物学特征:
ITS rDNA序列信息如下所示(GeneBank登录号:FR822773.1):
GCTGCCTCCGGGCGCCCACCTCCCACCCGTGACTACCTAACACTGTTGCTTCGGCGGGGAGCCCTCTCGGGGGCGAGCCGCCGGGGACTACTGAACTTCATGCCTGAGAGTGATGCAGTCTGAGTCTGAATATAAAATCAGTCAAAACTTTCAACAATGGATCTCTTGGTTCCGGCATCGATGAAGAACGCAGCGAACTGCGATAAGTAATGTGAATTGCAGAATTCAGTGAATCATCGAGTCTTTGAACGCACATTGCGCCCCCTGGCATTCCGGGGGGCATGCCTGTCCGAGCGTCATTGCTGCCCATCAAGCCCGGCTTGTGTGTTGGGTCGTCGTCCCCCCCCGGGGGACGGGCCCGAAAGGCAGCGGCGGCACCGTGTCCGGTCCTCGAGCGTATGGGGCTTTGTCACCCGCTCGATTTAGGGCCGGCCGGGCGCCAGCCGACGTCCAACCATTTCTTCAGGTGACCTCGGATCAG(SEQ ID NO.1)。
经过采用多种分离纯化的手段,在深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物中分离出2种环二肽类化合物,式(I)和式(Ⅱ)是已知化合物,这2种类化合物结构如下:
对所述环二肽类化合物进行一氧化氮(NO)产生抑制活性测定,实验浓度为100μg/ml时,对LPS诱导BV2细胞释放NO具有明显的抑制活性,抑制率高于50%,且对应的细胞存活率均是100%,表明此环二肽类在这种浓度下具有一定的NO抑制活性,并且对细胞无毒性,将所述环二肽类化合物用于抑制一氧化氮产生的药物的制备,更进一步地,可用于抗炎活性及因炎症导致的其他类型疾病(如神经退行性疾病、癌症等)药物的制备。
具体地,本发明中提供所述真菌培养物的提取物的制备方法,主要分为两个部分:一是利用深海真菌CCTCC M 2015628发酵得到发酵培养物;二是从深海真菌CCTCC M2015628发酵培养物中提取纯化得到环二肽类化合物。
其中,利用深海真菌CCTCC M 2015628发酵获取所述真菌培养物的提取物的方法,具体包括以下步骤:
一、种子培养:
将低温保藏的深海真菌菌种CCTCC M 2015628复苏后,将此菌株接入到上述种子培养基中,于27~29℃、220r/min转速下摇床培养47~49小时得到种子培养液;
其中,种子培养基的配方为:葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%,经121℃高压灭菌20分钟。
二、发酵培养:
将种子培养液接种到液体培养基中,室温静置避光培养14~16天,获得深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物;
其中,液体培养基的成分包括海盐、去离子水、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物,其中,葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%。具体的制备方法为:称取海盐、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物溶于去离子水中,待完全溶解后,调节PH至7.4~7.6,经121℃高压灭菌30分钟。按照每5mL种子培养液配245~255ml液体培养基的比例接种。
按照上述方法发酵后,就可以得到含有所述环二肽类化合物的深海真菌CCTCC M2015628的发酵培养物,为了获取所述环二肽类化合物,还需要进一步提取分离。本发明中还提供利用深海真菌CCTCC M 2015628发酵物提取纯化所述环二肽类化合物的方法,具体包括以下步骤:
超声萃取:将深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物用乙酸乙酯超声萃取,萃取液在低于50℃下减压浓缩得发酵液浸膏;重复前述萃取步骤数次,合并发酵液浸膏;
分子筛层析:将发酵液浸膏后经Sephadex LH-20开放柱,用3L氯仿-甲醇1:1的洗脱剂洗脱,第1L洗脱剂为组分1,第2L洗脱剂为组分2,第3L洗脱剂为组分3,选取具有抗一氧化氮活性的组分2;
硅胶柱层析分离:将组分2拌入硅胶后装硅胶柱,洗脱溶剂梯度为环己烷-乙酸乙酯体积比100:0,97:3,95:5,9:1,8:2,7:3,6:4,0:100。每个梯度1.5升洗脱剂,经TLC分析共得到21个组分,其中活性组分W2-2-14 (环己烷-乙酸乙酯体积比7:3)、W2-2-16(环己烷-乙酸乙酯体积比6:4)需用反向HPLC柱进一步分离纯化;
反向HPLC分离纯化:组分W2-2-14用HPLC分离纯化,0-30min内50%的甲醇等浓度洗脱,收集后即可得到纯化的式(I)环二肽类化合物(190mg,td=8.3min)。
组分W2-2-16用HPLC分离纯化,0-20min内乙腈浓度由20%梯度上升到40%,收集后即可得到纯化的式(Ⅱ)环二肽类化合物(90mg,td=7.0min)。
其中,所述超声萃取过程中,按照每5mL种子培养液配245~255mL的乙酸乙酯比例添加乙酸乙酯。所述硅胶柱层析分离过程中,所用硅胶为200-300目,洗脱溶剂梯度为环己烷-乙酸乙酯体积比100:0,97:3,95:5,9:1,8:2,7:3,6:4,0:100。
以下通过具体实施例对本发明做进一步说明。
实施例1:真菌培养物的提取物的制备和结构鉴定
一、真菌培养物的提取物的制备
1.种子培养:
(1)配制种子培养基:葡萄糖2.1%,蛋白胨1.9%,酵母提取物0.6%,海盐2.5%,经121℃高压灭菌20分钟,获得灭菌的种子培养基;
(2)种子的培养:低温保藏的深海真菌CCTCC M 2015628经复苏后,将此菌株接入到上述种子培养基中,于29℃、220r/min转速下摇床培养49小时得到种子培养液。
2.发酵培养:
(1)配制发酵培养基(液体培养基):称取海盐、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物溶于去离子水中,待完全溶解后,调节PH至7.6,经121℃高压灭菌30分钟。按照每5mL种子培养液配255ml液体培养基的比例接种,获得灭菌的发酵培养基。
(2)发酵培养:
在超净的工作台中,将5mL种子培养液接入装有255ml液体培养基的1000mL的锥形瓶中,总共160瓶。室温静置避光培养14天,获得深海真菌CCTCC M 2015628的发酵培养物。
3.提取分离:
将上述每瓶固体发酵液用255ml的乙酸乙酯超声萃取,萃取液在低于50℃下减压浓缩得发酵液浸膏,反复萃取3次,合并得到发酵液浸膏16.0克。该发酵液浸膏经SephadexLH-20开放柱,用氯仿-甲醇(1:1)洗脱剂等浓度洗脱得到3个组分。选取组分2拌入200-300的硅胶后装硅胶柱,经硅胶柱层析分离,采用环己烷-乙酸乙酯(体积比100:0,97:3,95:5,9:1,8:2,7:3,6:4,0:100)梯度洗脱,经TLC分析,减压浓缩后,相应的得到21个馏分。组分W2-2-14用HPLC分离纯化,0-30min内50%的甲醇等浓度洗脱,收集后即可得到纯化的式(I)环二肽类化合物(190mg,td=8.3min)。
组分W2-2-16用HPLC分离纯化,0-20min内乙腈浓度由20%梯度上升到40%,收集后即可得到纯化的式(Ⅱ)环二肽类化合物(90mg,td=7.0min)。
二、环二肽类化合物的相对结构鉴定
对上述步骤中所得到的环二肽类化合物进行结构分析测试,得到以下数据:
式(I)化合物,Cyclopenin,黄色油状物;1H NMR(600MHz,DMSO-d6)和13C NMR(100MHz,DMSO-d6)数据见如下表1。
表1:式(I)化合物的NMR数据
(600/125MHz,DMSO-d6,TMS为内标,J in Hz,δin ppm)
式(Ⅱ)化合物,Cyclopenol,无色固体;1H NMR(600MHz,DMSO-d6)和13C NMR(125MHz,DMSO-d6)数据见如下表2
表2:式(Ⅱ)化合物的NMR数据
(600/125MHz,DMSO-d6,TMS为内标,J in Hz,δin ppm)
实施例2:对实施例1所得到的环二肽类化合物的抗炎活性的实验
本实施例中,抗炎活性检测包括三部分:
(1)亚硝酸盐标准曲线的测量;(2)检测NO的产生量;(3)MTT法检测样品对细胞的毒性。
(1)亚硝酸盐标准曲线的测量:
将0.1M的亚硝酸盐溶液用缓冲液稀释到100μM,取100μM的亚硝盐溶液1ml。在96孔板上选定3排孔,分别向B-H的孔内加入50μl的缓冲液,A排孔 中分别加入50μl的100μM的亚硝酸盐溶液。按照A-H的顺序将亚硝酸盐2倍稀释,即依次从上一排孔中取50μl的溶液加入下一排孔,最终A-H的孔中亚硝酸盐的浓度依次是100,50,25,12.5,6.25,3.13和1.56μM,每一个孔中的溶液体积均为50μl。最后以OD值为纵坐标,亚硝酸盐的浓度为横坐标做出亚硝酸盐的标准曲线。
(2)测定BV2细胞经样品处理NO的产生量:
将BV2细胞传代接种于96孔板含1%的双抗(1%100U/mL盘尼西林和100μg/mL链霉素),10%血清的DMEM高糖培养基中,细胞数目为1×105个细胞/孔,于37℃、5%的CO2细胞培养箱中贴壁培养4-6h后,弃去上清液,换成无血清培养基并分别加入不同浓度的样品孵育2h,接着每空加入500ng/mL LPS于37℃、5%的CO2细胞培养箱中培养24h。然后,从每孔培养基上清液中取出50μL细胞悬液置于另一块96孔板中。向各孔中加入50μL磺胺(Sulfanilamide,SUL)试剂,避光孵育5min后,再加入50μL萘基乙烯基二(N-1-naphthylethylenediamine dihydrochloride,NED)试剂,然后,用酶标仪在545nm处检测其吸光值。
待测样品在100μM/ml、50μM/ml和10μM/ml梯度浓度下的NO抑制率。实验结果见表3。
(3)MTT法检测样品对细胞的毒性:
在上述培养板每孔中加入MTT溶液(终浓度200μg/mL),置于5%二氧化碳培养箱中继续培养4h后,弃去上清,吸干残留液体,加入DMSO 150μL,振摇10min使生成的甲瓒结晶充分溶解后,以630nm为参比波长在570nm下测定吸光值。
表3环二肽类化合物对于BV2细胞NO产生抑制率
上述实验结果表明,本发明的真菌培养物的提取物——环二肽类化合物具有抑制一氧化氮(NO)产生的活性,表现出一定的抗炎活性。当环二肽类化合物实验浓度为100μM/ml时,2种化合物的抑制率分别是90.20%,87.90%;实验浓度为50μM/ml时,2种化合物的抑制率分别是69.13%,71.07%,当环二肽类化合物实验浓度为10μM/ml时,2种化合物的抑制率分别是55.73%,58.97%;对应的细胞存活率均是100%,表明此环二肽类化合物在这三种浓度下具有一定的NO抑制活性,并且对细胞无毒性。
应当理解的是,本发明的应用不限于上述的举例,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明加以改进或变换,所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要求的保护范围。
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<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 481
<212> DNA
<213> Aspergillus sp. SCSIOW2菌株 ITS rDNA序列
<400> 1
gctgcctccg ggcgcccacc tcccacccgt gactacctaa cactgttgct tcggcgggga 60
gccctctcgg gggcgagccg ccggggacta ctgaacttca tgcctgagag tgatgcagtc 120
tgagtctgaa tataaaatca gtcaaaactt tcaacaatgg atctcttggt tccggcatcg 180
atgaagaacg cagcgaactg cgataagtaa tgtgaattgc agaattcagt gaatcatcga 240
gtctttgaac gcacattgcg ccccctggca ttccgggggg catgcctgtc cgagcgtcat 300
tgctgcccat caagcccggc ttgtgtgttg ggtcgtcgtc cccccccggg ggacgggccc 360
gaaaggcagc ggcggcaccg tgtccggtcc tcgagcgtat ggggctttgt cacccgctcg 420
atttagggcc ggccgggcgc cagccgacgt ccaaccattt cttcaggtga cctcggatca 480
g 481

Claims (10)

1.一种深海真菌Aspergillus sp.SCSIOW2,其保藏编号为:CCTCC M 2015628。
2.一种真菌培养物的提取物,其特征在于,所述提取物是从保藏编号为CCTCC M2015628的深海真菌的发酵培养液的乙酸乙酯萃取液中浓缩、分离得到的环二肽类化合物.
3.如权利要求2所述的真菌培养物的提取物,其特征在于,所述环二肽类化合物包括以下化合物中的一种或两种,化合物的结构式如下所示:
4.如权利要求2~3任意一项所述的真菌培养物的提取物的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
将保藏编号为CCTCC M 2015628的深海真菌接种到种子培养基中,27~29℃培养47~49小时,得到种子培养液;
将种子培养液接种到液体培养基中,室温静置避光培养15~16天,获得所述深海真菌的发酵培养物,其中含有环二肽类化合物;
其中,种子培养基的配方为:葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%;
液体培养基的成分包括海盐、去离子水、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物,其中,葡萄糖1.9~2.1%,蛋白胨0.9~1.1%,酵母提取物0.4~0.6%,海盐2~4%。
5.如权利要求4所述的真菌培养物的提取物的制备方法,其特征在于,所述液体培养基的制备方法为按比例称取海盐、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物溶于去离子水中,待完全溶解后,调节PH至7.4~7.6。
6.如权利要求4所述的真菌培养物的提取物的制备方法,其特征在于,所述的真菌培养物的提取物的制备方法还包括以下步骤:
将所述深海真菌的发酵培养物用乙酸乙酯超声萃取,萃取液在低于50℃下减压浓缩得发酵液浸膏;重复前述萃取步骤2次以上,合并发酵液浸膏;
将发酵液浸膏后经Sephadex LH-20开放柱,用1:1的氯仿-甲醇洗脱剂等浓度洗脱,选取具有抗一氧化氮活性的组分2;
将组分2拌入硅胶后装硅胶柱,以环己烷-乙酸乙酯为洗脱溶剂梯度洗脱,经TLC分析选取组分W2-2-14、W2-2-16用反向HPLC柱进一步分离纯化;
组分W2-2-14用HPLC分离纯化,0-30min内50%的甲醇等浓度洗脱,收集后即可得到纯化的式(I)环二肽类化合物;
组分W2-2-16用HPLC分离纯化,0-20min内乙腈浓度由20%梯度上升到40%,收集后即可得到纯化的式(Ⅱ)环二肽类化合物;
所述组分W2-2-14由环己烷-乙酸乙酯体积比7:3的洗脱剂洗脱后得到,所述组分W2-2-16由环己烷-乙酸乙酯体积比6:4的洗脱剂洗脱后得到。
7.如权利要求6所述的真菌培养物的提取物的制备方法,其特征在于,所述超声萃取过程中,按照每5mL种子培养液配245~255mL的乙酸乙酯比例添加乙酸乙酯。
8.如权利要求2~3任意一项所述的真菌培养物的提取物的应用,其特征在于,所述应用为将所述环二肽类化合物用于抑制一氧化氮产生的药物的制备。
9.如权利要求8所述的真菌培养物的提取物的应用,其特征在于,所述应用为将所述环二肽类化合物用于抗炎活性药物的制备。
10.如权利要求8所述的真菌培养物的提取物的应用,其特征在于,所述应用为将所述环二肽类化合物用于治疗阿尔茨海默病的药物的制备。
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