CN105532650B - 一种细胞冻存液 - Google Patents
一种细胞冻存液 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105532650B CN105532650B CN201610135613.5A CN201610135613A CN105532650B CN 105532650 B CN105532650 B CN 105532650B CN 201610135613 A CN201610135613 A CN 201610135613A CN 105532650 B CN105532650 B CN 105532650B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- present
- cells
- months
- dextran
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
- A01N1/02—Preservation of living parts
- A01N1/0205—Chemical aspects
- A01N1/021—Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Dentistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明提供了一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基;所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。在本发明中,所述培养基在细胞冻存的过程中能够提供良好的营养成分,同时,右旋糖酐能够很好的维持渗透压,即使在温度下降的过程中,仍能维持良好的渗透压环境,避免因温度下降、渗透压改变而出现的细胞死亡现象,从而使的本发明中的细胞冻存液在长时间冻存细胞后,细胞也具有很高的复苏率。实验结果表明,使用本发明中的冻存液在冻存1个月、6个月和12个月后的细胞复苏率分别为95~99%、90~98%和90~96%。
Description
技术领域
本发明属于生物医学技术领域,尤其涉及一种细胞冻存液。
背景技术
细胞培养的传代及日常维持过程中,在培养器具、培养液及各种准备工作方面都需大量的耗费,而且细胞一旦离开活体开始原代培养,它的各种生物特性都将逐渐发生变化并随着传代次数的增加和体外环境条件的变化而不断有新的变化。因此及时进行细胞冻存十分必要。
目前,细胞冻存最常用的技术是液氮冷冻保存法,主要是采用添加适量保护剂的缓慢冷冻法来冻存细胞,如采用甘油或二甲基亚砜(DMSO)为保护剂。因为如果细胞在不加任何保护剂的情况下直接冷冻,细胞内外的水分会很快形成冰晶,从而引起一系列不良反应,如:细胞脱水使局部电解质浓度增高、导致pH值改变,部分蛋白质由于上述原因而变性,从而引起细胞内部空间结构紊乱,溶酶体膜由此遭到损伤而释放出溶酶体酶,使细胞内结构成分造成破坏,线粒体肿胀,功能丢失,并造成能量代谢障碍。胞膜上的类脂蛋白复合体也易被破坏引起细胞膜通透性的改变,使细胞内容物丢失。如果细胞内冰晶形成较多,随冷冻温度的降低,冰晶体积膨胀造成细胞核DNA空间构型发生不可逆的损伤,而致细胞死亡。
现有的冻存方案通常是:采用10%DMSO+90%FBS(胎牛血清)的冻存方案去保存细胞;该方案能够很好的为动物细胞提供营养物质,细胞经短时间冻存再复苏后仍能维持较高的活率。但是该细胞冻存方案经长时间冻存后细胞复苏率较低,只有85%左右,直接制约冻存细胞的临床应用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种细胞冻存液,使用本发明提供的细胞冻存液长时间冻存后的细胞复苏率较高。
本发明提供一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:
9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基;
所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。
优选的,所述二甲基亚砜的体积分数为10~12%。
优选的,所述右旋糖酐包括右旋糖酐-40。
优选的,所述右旋糖酐的体积分数为0.8~2.5%。
优选的,所述右旋糖酐的体积分数为1~2%。
优选的,所述培养基的体积分数为86~90%。
优选的,所述培养基的体积分数为87~89%。
本发明提供了一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基;所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。在本发明中,所述培养基在细胞冻存的过程中能够提供良好的营养成分,同时,右旋糖酐能够很好的维持渗透压,即使在温度下降的过程中,仍能维持良好的渗透压环境,避免因温度下降、渗透压改变而出现的细胞死亡现象,从而使的本发明中的细胞冻存液在长时间冻存细胞后,细胞也具有很高的复苏率。实验结果表明,使用本发明中的冻存液在冻存1个月、6个月和12个月后的细胞复苏率分别为95~99%、90~98%和90~96%。
具体实施方式
本发明提供了一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:
9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基;
所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。
使用本发明提供的细胞冻存液长时间冻存后的细胞复苏率较高。
在本发明中,所述二甲基亚砜(DMSO)的体积分数为9~13%,优选为10~12%,更优选为10%。本发明对所述二甲基亚砜的来源没有特殊的限制,采用常规的市售商品即可。
在本发明中,所述右旋糖酐的体积分数为0.5~3%。优选为0.8~2.5%,更优选为1~2%,最优选为1%;所述右旋糖酐优选包括右旋糖酐-40(即低分子右旋糖酐),所述低分子右旋糖酐可以很好的维持了渗透压,在温度下降的过程中,仍能维持良好的渗透压环境,避免了细胞因温度下降,渗透压改变而出现细胞死亡的现象。本发明对所述右旋糖酐的来源没有特殊的限制,具体的,在本发明的实施例中,可采用广州医药公司提供的体积分数为6%的右旋糖酐-40,规格为500mL/袋。
在本发明中,所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。本发明对所述Lonza基础培养基的来源没有特殊的限制,具体的,在本发明的实施例中,可采用广州昂赛生物技术有限公司提供的Lonza基础培养基。本发明对所述DMEN高糖培养基的来源没有特殊的限制,具体的,可采用Gibco公司提供的500mL/瓶的DMEN高糖培养基。
在本发明中,所述细胞冻存液优选按照以下方法制备得到:
在培养基中加入二甲基亚砜和质量浓度为6%的右旋糖酐,得到最终含有体积分数9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基的细胞冻存液。
在本发明中,所述培养基、二甲基亚砜和右旋糖酐的来源和用量与上述技术方案中培养基、二甲基亚砜和右旋糖酐的来源和用量一致,在此不再赘述。
本发明提供的细胞冻存液可用于冻存多种类型的人体细胞,如人体肝细胞、人体免疫细胞、人体肿瘤细胞或人体成体细胞,具体的,在本发明的实施例中,可采用以下类型和来源的人体细胞:
按照文献:田霖,孙筱放,刘海波.人脂肪干细胞的分离培养与生物学特征.《中国组织工程研究》,2012,16(32):5946-5952中的方法获取ADSCS原代细胞,经过传代培养,获取的P3~P5的细胞。
按照文献:李艳琪,王洪一.人脐带源间充质干细胞分离培养方法的改进.《中国组织工程研究》,2014,18(10):1609-1614中的方法中的方法获取UC-MSC原代细胞,经过传代培养,获取的P3~P5的细胞。
按照文献:陈丹,王小东.三种分离人外周血单核细胞方法的分离.《天津医科大学学报》,2014.6:483-485中的方法获取人外周血单个核细胞(PBMC);
从暨南大学生命科学院获取肿瘤细胞K562、HL60细胞;
按照文献王玲玲,马峰,张玉成.人成纤维细胞的体外分离、纯化培养及细胞鉴定.《中国老年学杂志》,2012,32:1215-1216.中的方法获取成纤维细胞,经过传代培养后,获取P3~P5的细胞。
本发明分别将上述细胞冻存后,于1个月、6个月和12个月将细胞复苏,结果表明,冻存12个月后复苏的细胞活率均在90%以上。在本发明中,所述细胞冻存和复苏的方法为本领域技术人员常用的方法。
本发明提供一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:9~13%的二甲基亚砜、0.5~3%的右旋糖酐和85~91%的培养基;所述培养基包括Lonza基础培养基和/或DMEN高糖培养基。本发明提供的细胞冻存液具有以下优点:
本发明通过优化细胞冻存方案,尽可能避免细胞在冻存过程中因冰晶形成而导致细胞大量死亡;
优化了冻存体系,细胞在复苏后可直接回输至人体;
不添加动物来源的血清,避免了动物来源的病毒污染;
本发明中的冻存液可用于多种细胞类型,如干细胞、免疫细胞、肿瘤细胞,成体细胞等。
为了进一步说明本发明,以下结合实施例对本发明提供的一种细胞冻存液进行详细描述,但不能将其理解为对本发明保护范围的限定。
在以下实施例中,Lonza基础培养基由广州昂赛生物技术有限公司提供,Lonza基础培养基为500mL/瓶,右旋糖苷-40由广州医药公司提供。
在以下实施例中,所涉及到的百分数均为体积百分数。
实施例1人体干细胞ADSCs的冻存
往Lonza基础培养基中分别加入DMSO和6%右旋糖苷-40,形成含有10%DMSO和1%右旋糖酐-40的细胞冻存液。
按照文献:田霖,孙筱放,刘海波.人脂肪干细胞的分离培养与生物学特征.《中国组织工程研究》,2012,16(32):5946-5952中的方法获取ADSCS原代细胞,经过传代培养,获取的P3~P5的细胞。
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的细胞冻存液重悬细胞,取50uL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为1×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏ADSCs的细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mLLonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月ADSCs细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明分别取于1个月、6个月、12个月复苏的ADSCs的细胞,用10%FBS+PBS重悬,并调整成1×106cells/mL的细胞悬液,分别取抗人CD73、CD105、CD45及HLA-DR的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,细胞表面抗原检测结果符合标准。
实施例2人体干细胞UC-MSC的冻存
按照文献:李艳琪,王洪一.人脐带源间充质干细胞分离培养方法的改进.《中国组织工程研究》,2014,18(10):1609-1614中的方法中的方法获取UC-MSC原代细胞,经过传代培养,获取的P3~P5的细胞。
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的实施例1中制得的细胞冻存液重悬细胞,取50uL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为1×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏UC-MSC的细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mLLonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月UC-MSC细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明分别取于1个月、6个月、12个月复苏的UC-MSC的细胞,用10%FBS+PBS重悬,并调整成1×106cells/mL的细胞悬液,分别取抗人CD73、CD105、CD45及HLA-DR的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,细胞表面抗原检测结果符合标准。
实施例3人外周血单个核细胞(PBMC)的冻存
按照文献:陈丹,王小东.三种分离人外周血单核细胞方法的分离.《天津医科大学学报》,2014.6:483-485中的方法获取人外周血单个核细胞(PBMC);
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的实施例1中制得的细胞冻存液重悬细胞,取50uL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为3×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏PBMC的细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mL Lonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月PBMC细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明用10%FBS+PBS重悬复苏后的PBMC,并调整成1×106cells/mL的细胞悬液,分别取抗人CD3、CD56、CD4、CD8、CD19的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,细胞表面抗原表达符合标准。
实施例4人体肿瘤细胞K562细胞的冻存
从暨南大学生命科学院获取肿瘤细胞K562细胞;
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的实施例1中制得的细胞冻存液重悬细胞,取50μL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为5×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏K562的细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mL Lonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月K562细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明用10%FBS+PBS重悬复苏后的细胞并调整成1×106/mL的细胞悬液,分别取抗人CD13、CD117、CD34及HLA-DR的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,结果表明,细胞表面抗原表达符合标准。
实施例5人体肿瘤细胞HL60细胞的冻存
从暨南大学生命科学院获取肿瘤细胞HL60细胞;
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的实施例1中制得的细胞冻存液重悬细胞,取50uL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为5×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏HL60的细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mL Lonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月HL60细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明用10%FBS+PBS重悬复苏后的细胞并调整成1×106/mL的细胞悬液,分别取抗人CD13、CD11b的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,结果表明,细胞表面抗原表达符合标准。
实施例6人成纤维细胞的冻存
按照文献王玲玲,马峰,张玉成.人成纤维细胞的体外分离、纯化培养及细胞鉴定.《中国老年学杂志》,2012,32:1215-1216.中的方法获取成纤维细胞,经过传代培养后,获取P3~P5的细胞;
用PBS重悬后1500r/min离心5min,弃上清。用4℃的实施例1中制得的细胞冻存液重悬细胞,取50uL的细胞悬液,按细胞悬崖(v):0.4%台盼蓝(v)=1:1混匀后进行细胞活率及数量计算;调整细胞密度至冻存密度为3×106cells/mL,把细胞悬液分装至冻存管中,1.5mL/管;进行标记,冻存6管。
把装有细胞悬液的冻存管放入至冻存盒中,放入至-80℃冰箱中,48h后,转入液氮。
分别于1个月、6个月、12个月复苏成纤维细胞,每次复苏两管;具体步骤如下:从液氮中取出细胞,于37℃的水中迅速溶解,把细胞悬液分别转移至含有10mL Lonza基础培养基的50mL离心管中,200g离心5min,弃上清后用lonza基础培养基重悬,并调整密度至1×106cells/mL。
本发明分别计算1、6和12个月成纤维细胞活率(重复3次计数),结果如表1所示,表1为本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率。
本发明用10%FBS+PBS重悬复苏后的细胞并调整成1×106/mL的细胞悬液,分别取抗人波形蛋白抗体(Vimentin)和角蛋白抗体(CK15抗体)的单克隆抗体各5μL,加入细胞悬液200μL,室温下避光孵育20min,同时设立同型对照组,1500r/min离心5min,弃上清,用含10%FBS的PBS洗涤2遍,用500μL 1640基础培养基重悬后上机检测复苏后细胞表面抗原。结果表明,结果表明,细胞表面抗原表达符合标准。
表1本发明实施例1~6冻存的细胞复苏后的细胞活率
实施例 | 细胞类型 | 冻存前细胞活率 | 1个月细胞活率 | 6个月细胞活率 | 12个月细胞活率 |
1 | ADSCs | 98.32±2.54 | 95.46±4.68 | 93.57±3.77 | 92.03±4.29 |
2 | UC-MSC | 99.46±1.87 | 98.63±2.87 | 97.88±5.32 | 94.43±3.67 |
3 | PBMC | 96.55±3.60 | 93.09±4.12 | 90.51±6.22 | 90.68±5.63 |
4 | K562 | 99.23±1.93 | 97.99±1.60 | 97.45±3.06 | 95.29±3.72 |
5 | HL60 | 97.97±2.69 | 96.45±3.43 | 93.06±1.75 | 92.81±2.45 |
6 | 成纤维细胞 | 96.42±3.06 | 96.07±4.23 | 95.64±2.89 | 92.67±3.49 |
由表1可以看出,使用本发明中的细胞冻存液冻存不同类型的人体细胞,即使经过长时间冻存,复苏后仍具有较高的细胞活率。均在90%以上,最高能够达到95%左右。
实施例7~12
往Lonza基础培养基中分别加入DMSO和6%右旋糖苷-40,形成含有9%DMSO和0.5%右旋糖酐-40的细胞冻存液。
采用上述细胞冻存液,按照实施例1~6中的冻存方法分别冻存人体干细胞ADSCs(实施例7)、人体干细胞UC-MSC(实施例8)、人外周血单个核细胞(PBMC)(实施例9)、人体肿瘤细胞K562细胞(实施例10)、人体肿瘤细胞HL60细胞(实施例11)和人成纤维细胞(实施例12),并分别计算了实施例7~12中各细胞的细胞活率(重复3次计数),结果如表2所示,表2为本发明实施例7~12冻存的细胞复苏后的细胞活率。
表2本发明实施例7~12冻存的细胞复苏后的细胞活率
实施例13~18
往Lonza基础培养基中分别加入DMSO和6%右旋糖苷-40,形成含有12%DMSO和3%右旋糖酐-40的细胞冻存液。
采用上述细胞冻存液,按照实施例1~6中的冻存方法分别冻存人体干细胞ADSCs(实施例13)、人体干细胞UC-MSC(实施例14)、人外周血单个核细胞(PBMC)(实施例15)、人体肿瘤细胞K562细胞(实施例16)、人体肿瘤细胞HL60细胞(实施例17)和人成纤维细胞(实施例18),并分别计算了实施例13~18中各细胞的细胞活率(重复3次计数),结果如表3所示,表3为本发明实施例13~18冻存的细胞复苏后的细胞活率。
表3本发明实施例13~18冻存的细胞复苏后的细胞活率
实施例 | 细胞类型 | 冻存前细胞活率 | 1个月细胞活率 | 6个月细胞活率 | 12个月细胞活率 |
13 | ADSCs | 98.32±2.54 | 95.07±8.47 | 88.26±6.55 | 80.46±7.49 |
14 | UC-MSC | 99.46±1.87 | 94.60±6.46 | 91.03±3.86 | 83.50±6.77 |
15 | PBMC | 96.55±3.60 | 89.76±5.72 | 86.72±4.08 | 78.33±7.13 |
16 | K562 | 99.23±1.93 | 94.58±8.48 | 88.75±4.79 | 78.28±5.88 |
17 | HL60 | 97.97±2.69 | 93.67±8.65 | 85.16±6.48 | 86.73±5.75 |
18 | 成纤维细胞 | 96.42±3.06 | 96.87±6.49 | 90.69±4.81 | 80.68±6.42 |
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (1)
1.一种细胞冻存液,包括以下体积分数的组分:
10%的二甲基亚砜、1%的右旋糖酐-40和89%的Lonza基础培养基。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610135613.5A CN105532650B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种细胞冻存液 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610135613.5A CN105532650B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种细胞冻存液 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105532650A CN105532650A (zh) | 2016-05-04 |
CN105532650B true CN105532650B (zh) | 2018-01-30 |
Family
ID=55812653
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201610135613.5A Active CN105532650B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种细胞冻存液 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105532650B (zh) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105941390B (zh) * | 2016-05-20 | 2018-09-04 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种牙髓或牙髓干细胞的冻存液及其冻存方法 |
CN106417260A (zh) * | 2016-11-30 | 2017-02-22 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种脐带组织冻存液 |
CN106508892A (zh) * | 2016-11-30 | 2017-03-22 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种脐带组织冻存液及冻存方法 |
CN106942202A (zh) * | 2017-04-27 | 2017-07-14 | 黑龙江八农垦大学 | 一种用于mdbk细胞的无血清冻存培养基 |
CN108456657B (zh) * | 2018-03-31 | 2020-08-18 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 犬脐带间充质干细胞及其制备方法和冻存方法 |
CN108795853B (zh) * | 2018-05-28 | 2021-08-24 | 天津博雅秀岩生物技术有限公司 | 制备犬胎膜间充质干细胞的方法和犬胎膜间充质干细胞 |
CN113383768B (zh) * | 2021-05-22 | 2022-07-05 | 武汉仝干医疗科技股份有限公司 | 一种肝细胞冻存液及其制备方法和应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104770363A (zh) * | 2015-04-21 | 2015-07-15 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种间充质干细胞的冻存液及冻存方法 |
CN104823967A (zh) * | 2015-05-29 | 2015-08-12 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 组合物及其应用、红细胞冻存制剂及其制备方法 |
CN105087472A (zh) * | 2015-05-20 | 2015-11-25 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种诱导多能干细胞冻存液、其应用及冻存方法 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP5630979B2 (ja) * | 2009-08-04 | 2014-11-26 | 株式会社バイオベルデ | 動物幹細胞凍結保存液 |
-
2016
- 2016-03-10 CN CN201610135613.5A patent/CN105532650B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104770363A (zh) * | 2015-04-21 | 2015-07-15 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种间充质干细胞的冻存液及冻存方法 |
CN105087472A (zh) * | 2015-05-20 | 2015-11-25 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种诱导多能干细胞冻存液、其应用及冻存方法 |
CN104823967A (zh) * | 2015-05-29 | 2015-08-12 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 组合物及其应用、红细胞冻存制剂及其制备方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN105532650A (zh) | 2016-05-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105660606B (zh) | 一种细胞冻存液 | |
CN105532650B (zh) | 一种细胞冻存液 | |
CN105685015B (zh) | 一种细胞冻存液 | |
CN107148967B (zh) | 一种抗原特异性t淋巴细胞冻存液及其制备方法和应用 | |
CN103563888B (zh) | 细胞冻存液 | |
CN103404509B (zh) | 一种细胞保存液、其制备方法和应用 | |
CN105961374A (zh) | 细胞冻存液 | |
CN105076116B (zh) | 一种细胞冻存液及其应用与巨核祖细胞的冻存方法 | |
CN106982821A (zh) | 脐带间充质干细胞临床冻存保护液组合物及其用途 | |
Gramignoli et al. | Isolation of human amnion epithelial cells according to current good manufacturing procedures | |
Buchanan et al. | Preservation of differentiation and clonogenic potential of human hematopoietic stem and progenitor cells during lyophilization and ambient storage | |
CN105211051B (zh) | 一种培养后的nk细胞的冻存液及其制备方法 | |
CN104542578A (zh) | 一种细胞保存液及其制备方法、应用 | |
CN109221092A (zh) | 一种细胞冻存液及其应用 | |
JP2018518965A (ja) | 腫瘍浸潤リンパ球の凍結保存方法 | |
CN104026118A (zh) | 一种免疫细胞冻存液、其制备方法及应用 | |
CN106212443B (zh) | 临床级细胞保护液及其制备方法和应用 | |
CN103704206B (zh) | 胎盘保存液 | |
CN111296412A (zh) | 一种无血清低dmso细胞冻存液及其应用 | |
CN105941389A (zh) | 一种无动物源血清的细胞冻存液 | |
CN108184818A (zh) | 一种人胎盘间充质干细胞悬液保护剂 | |
CN105211052B (zh) | 一种培养后的nkt细胞的冻存液及其制备方法 | |
CN104222069A (zh) | 红系祖细胞冻存液及其应用 | |
CN112167240A (zh) | 临床级细胞冷藏保存液及其制备方法和应用 | |
Petrenko et al. | Cryopreservation of human fetal liver hematopoietic stem/progenitor cells using sucrose as an additive to the cryoprotective medium |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |