CN105176816A - 一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片及其制备和使用方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,包括位于上层的微脉管系统,中间的类血管内皮屏障系统和下层的肝脏器官多细胞共培养系统,微脉管系统和肝脏器官多细胞共培养系统分别设置于各自的片基上;其中,所述微脉管系统包括由若干阻流栅栏交错布置构成的弯曲脉管,所述弯曲脉管两端分别设有微脉管进口和微脉管出口;所述类血管内皮屏障系统由多孔膜组成;所述肝脏器官多细胞共培养系统包括细胞聚集体富集区和多种细胞共培养区,并在两端分别设置有培养系统进口和培养系统出口。本发明可以进行肝脏疾病模型的制备以及药物代谢动力学和药物活性的研究,具有样品用量小,药物低消耗,便携、经济、高效、准确的特点。

Description

一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片及其制备和使用方法
技术领域
本发明涉及一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片及其制备和使用方法,属于微流体芯片加工设计和生物医药技术领域。
背景技术
研发安全有效的药物是一个长期、艰难和昂贵的进程。细胞培养和动物实验是现代医学和药学研究中广泛使用并极为依赖的两种实验平台。药物进入临床前都要通过离体实验和动物过渡实验来检测药物对体外培养细胞和动物机体的效应,并反复进行药效学、药代动力学、毒理学的定性和定量预测。然而药物研发失败的一个重要原因便是当前用于药物评估的模型与人的疾病模型存在无法回避的差异。通常情况下,细胞培养模式很难模拟人体微环境,同时,使用动物模型对正常和疾病的生理过程进行分析,它不但昂贵、耗时,而且存在伦理上的争论。通过这两类实验平台验证的实验性药物在进入临床试验后被淘汰,或药效低或毒副作用强,导致药物研发中人力和物力的巨大浪费。
器官芯片可以突破细胞培养和模式动物实验的局限。它是一个基于多通道流体芯片的三维细胞培养系统,由多个模拟人体组织和器官环境的细胞培养分区集合而成。在各分区通过仿生循环系统进行连接。微通道的尺寸可以与细胞尺寸相当,可以精确地控制微环境的成分、温度等因素,尽可能模拟细胞外基质的情况,增强实验的可靠性和可操作性。同时可以设计不同的二维或三维结构和精密加工成微电极等器件实现细胞的培养、定位、有序、图案化以及检测等多种功能。在芯片上模拟生物体的环境进行细胞、组织和器官的培养,研究并控制细胞在体外培养过程中的生物学行为,并在药物开发、疾病诊断和治疗方面具有广泛的应用前景。人体器官芯片的研究在国际上尚处于起步阶段,但是欧美日等国家已开发出不同种类的脑芯片、肺芯片、心脏芯片、肾芯片、肝脏芯片、脾芯片、肠芯片等多种器官的芯片,以期用于器官功能模拟和替代动物模型进行药物筛选等研究。
肝脏是人体最重要的解毒器官,也是药物实现转化和代谢的主要器官,构建模拟肝脏器官功能和结构的肝脏芯片将给药物筛选提供良好的平台。然而,目前的肝脏芯片类型非常的少,仅有个别的可以模拟类血管内皮屏障和部分微环境,还是很难实现肝脏微环境的系统模拟并广泛用于药物筛选的研究中。肝脏本身就是一个极佳的肝细胞反应器,肝脏的基本结构和功能单位为肝小叶,其内肝细胞不仅达到数量和密度的要求,还呈现极性有序排列;肝脏细胞处于一种三维环境中,肝细胞与其周围的肝血窦内皮细胞,肝星状细胞,库普弗细胞,及细胞外基质等相互作用,细胞间相互作用也有助于调节细胞的生长和功能分化。肝脏内血管和胆管系统为肝脏细胞提供氧气和营养物质,药物也在肝脏内实现代谢和转化,同时带走肝细胞的代谢废物。
发明内容
针对上述现有技术的不足,本发明的目的是提供一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片及其制备和使用方法,该器官芯片模拟了肝脏复杂的多种微环境要素,解决了传统的药物筛选中使用细胞和动物模型的固有缺陷,解决了现有肝脏细胞培养体系存在的结构单一,和模拟功能少的缺点,能够有效进行多细胞的依次定位植入和培养,并进行药物的安全性和有效性评价。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案:
一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,包括位于上层的微脉管系统,中间的类血管内皮屏障系统和下层的肝脏器官多细胞共培养系统,微脉管系统和肝脏器官多细胞共培养系统分别设置于各自的片基上;其中,所述微脉管系统包括由若干阻流栅栏交错布置构成的弯曲脉管,所述弯曲脉管两端分别设有微脉管进口和微脉管出口;所述类血管内皮屏障系统由多孔膜组成;所述肝脏器官多细胞共培养系统包括细胞聚集体富集区和多种细胞共培养区,并在两端分别设置有培养系统进口和培养系统出口,肝脏器官多细胞共培养系统位于培养系统进口的内部区域设置有两个分流栅栏,其中,细胞聚集体富集区由多个月牙槽状结构组成,每个月牙槽状结构上均设置有若干缝隙,多个月牙槽状结构纵向排列成若干列,且该若干列交错布置,所有月牙槽状结构的开口均朝着培养系统进口。
所述片基为聚二甲基硅氧烷(PDMS)、聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)、玻璃、聚碳酸酯(PC)、聚四氟乙烯、硝酸纤维素、生物膜、硅片的一种或几种。
所述肝脏器官多细胞共培养系统所用的细胞粘附和培养基质为胶原蛋白、纤维蛋白胶、细胞外基质蛋白、BSA蛋白、丝素蛋白、明胶、壳聚糖、精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)、基质胶(Matrigel)、海藻酸钠、异甲基丙烯酰胺(NIPAM)、聚乙二醇(PEG)或聚乙二醇丙烯酸酯(PEGDA)的一种或几种,优先选择为胶原蛋白。
所述微脉管系统的微脉管入口和微脉管出口通道深度,阻流栅栏高度和弯曲脉管深度均为100μm;阻流栅栏的宽度为20μm,形状为半圆形倒角,且与肝脏器官多细胞共培养系统中月牙槽状结构的位置相对应;弯曲脉管是圆滑的通道,通道宽度为600μm,弯曲数为20。
所述多孔膜的材料为聚二甲基硅氧烷(PDMS)、Transwell用的PET或PC膜的一种,厚度为10μm,孔径为0.4,1,3,5,8μm,优先选择孔径为1μm的PDMS柔性膜。
所述肝脏器官多细胞共培养系统的培养系统入口和培养系统出口通道深度,分流栅栏和月牙槽状结构的高度均为100μm;分流栅栏为圆滑弧形,与进口通道对齐,并等距对称布置;月牙槽状结构的个数为80个,其外圆环半径为350μm,内圆环半径为150μm,月牙槽状结构上的缝隙为四个,并均匀发散排列,其宽度为20μm,深度100μm,内圆环开口直线距离为100μm,月牙槽状结构相互之间的间隔距离为100μm。
一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的制备方法,包括以下步骤:
(1)用计算机辅助设计软件设计和绘制器官芯片的掩膜板,精确绘制各层芯片的微结构和微通道图形;
(2)通过微加工技术,特别是光刻蚀的方法,制备出上下两层的掩膜,制备出含有微结构和微通道的芯片;
(3)将上层的微脉管系统芯片,中间的多孔膜和下层的肝脏器官多细胞共培养系统进行对齐,加压,并进行等离子体键合,形成三维立体的微结构和微通道网络;
(4)通过微脉管进口和培养系统进口通道依次种植不同细胞种类,并进行贴壁和三维聚集体培养,并进行肝脏实质细胞形貌和功能性(白蛋白分泌,尿素合成,P450酶活性等)评价;
(5)通过上层和下层通道依次通入药物进行药物肝脏毒性和药物活性评价(药物的长期和短期肝脏毒性,以及药物的IC50值)。
在微脉管系统和类血管内皮屏障系统形成的密闭区域中种植血管内皮细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时,形成血管内皮细胞层。
在肝脏器官多细胞共培养系统依次种植多种细胞,肝脏细胞聚集体首先通过培养系统进口通道进入细胞聚集体富集区的月牙槽状结构,并富集生长为三维聚集体生长;多种细胞共培养区通过培养系统进口通道种植共培养细胞种类,共培养细胞种类包括肝星形细胞,库普弗细胞,角质细胞,以及成纤维细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时。
一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的使用方法,:在进行药物评价时,药物通过微脉管系统进入芯片,然后穿透类血管内皮屏障系统,进入到下层的肝脏器官多细胞共培养系统,从而评价其肝脏的毒性作用以及进行药物的代谢和转化;或者,药物也通过培养系统进口直接进入肝脏器官多细胞共培养系统,与肝实质细胞聚集体和共培养细胞直接进行接触并实现代谢和转化,并验证药物的肝脏毒性和药物活力。
本发明的有益效果是:
(1)肝脏芯片构建了微脉管系统,并以多孔膜和内皮细胞为基础制备了类血管内皮屏障系统,有效模拟了肝血窦内部的微脉管和内皮屏障功能,可以供给营养和氧气。
(2)肝脏芯片通过多缝隙月牙槽设计富集肝实质细胞聚集体,并进行三维聚集体的长期培养,有效实现肝脏内部细胞的高密度、定位和三维培养,有助于实现细胞的信息交流和相互促进作用。
(3)肝脏芯片通过多缝隙月牙槽设计肝细胞聚集体富集区域周围种植其他肝脏种类的细胞,实现多种细胞的共培养,有效模拟了实际肝脏器官内部多样的细胞类型和细胞间的相互作用。
(4)肝脏芯片可以实现肝实质细胞的长期培养,并进行有效的药物评价应用,透明材质可以在线监测细胞、组织和器官的生物学行为,从而为细胞-药物相互作用和药物筛选提供了一个全新的技术平台。
附图说明
图1是本发明的结构示意图;
图2是微脉管系统的结构示意图;
图3是类血管内皮屏障系统的结构示意图;
图4是肝脏器官多细胞共培养系统的结构示意图;
图5是图4中A部位的放大图;
图6是基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的细胞定位分布情况,(a)为贴壁生长在多孔膜上的血管内皮细胞层,并进行了绿色荧光Calcein-AM染色,(b)为肝脏实质细胞三维聚集体富集生长,并进行了蓝色荧光Hochest33342细胞核染色,(c)为贴壁生长在多细胞共培养区域的小鼠胚胎成纤维细胞,并进行了绿色荧光Calcein-AM染色。
图中,1-微脉管系统,2-类血管内皮屏障系统,3-肝脏器官多细胞共培养系统,4-阻流栅栏,5-弯曲脉管,6-微脉管进口,7-微脉管出口,8-多孔膜,9-肝脏细胞聚集体富集区,10-多种细胞共培养区,11-培养系统出口,12-培养系统进口,13-分流栅栏,14-缝隙,15-月牙槽状结构。
具体实施方式
下面结合附图对本发明作更进一步的说明。
如图1-5所示为一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:包括位于上层的微脉管系统1,中间的类血管内皮屏障系统2和下层的肝脏器官多细胞共培养系统3,微脉管系统1和肝脏器官多细胞共培养系统3分别设置于各自的片基上;
其中,如图2,微脉管系统1包括由若干阻流栅栏4交错布置构成的弯曲脉管5,所述弯曲脉管5两端分别设有微脉管进口6和微脉管出口7;
如图3,类血管内皮屏障系统2由多孔膜8组成;
如图4,肝脏器官多细胞共培养系统3包括细胞聚集体富集区9和多种细胞共培养区10,并在两端分别设置有培养系统进口12和培养系统出口11,肝脏器官多细胞共培养系统3位于培养系统进口12的内部区域设置有两个分流栅栏13,其目的是让通入的细胞在通道内均匀分散开,防止边缘没有细胞,直接从中间通道穿过芯片,其中,细胞聚集体富集区9由多个月牙槽状结构15组成,如图5,每个月牙槽状结构15上均设置有若干缝隙14,多个月牙槽状结构15纵向排列成若干列,且该若干列交错布置,所有月牙槽状结构15的开口均朝着培养系统进口12。
片基为聚二甲基硅氧烷(PDMS)、聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)、玻璃、聚碳酸酯(PC)、聚四氟乙烯、硝酸纤维素、生物膜、硅片的一种或几种。
肝脏器官多细胞共培养系统3所用的细胞粘附和培养基质为胶原蛋白、纤维蛋白胶、细胞外基质蛋白、BSA蛋白、丝素蛋白、明胶、壳聚糖、精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)、基质胶(Matrigel)、海藻酸钠、异甲基丙烯酰胺(NIPAM)、聚乙二醇(PEG)或聚乙二醇丙烯酸酯(PEGDA)的一种或几种,优先选择为胶原蛋白。
微脉管系统1的微脉管入口6和微脉管出口7通道深度,阻流栅栏4高度和弯曲脉管5深度均为100μm;阻流栅栏4的宽度为20μm,形状为半圆形倒角,且与肝脏器官多细胞共培养系统3中月牙槽状结构15的位置相对应;弯曲脉管5是圆滑的通道,通道宽度为600μm,弯曲数为20。
多孔膜8的材料为聚二甲基硅氧烷(PDMS)、Transwell用的PET或PC膜的一种,厚度为10μm,孔径为0.4,1,3,5,8μm,优先选择孔径为1μm的PDMS柔性膜。
肝脏器官多细胞共培养系统3的培养系统入口11和培养系统出口12通道深度,分流栅栏13和月牙槽状结构15的高度均为100μm;分流栅栏13为圆滑弧形,与进口通道对齐,并等距对称布置;月牙槽状结构15的个数为80个,其外圆环半径为350μm,内圆环半径为150μm,月牙槽状结构15上的缝隙14为四个,并均匀发散排列,其宽度为20μm,深度100μm,内圆环开口直线距离为100μm,月牙槽状结构15相互之间的间隔距离为100μm。
上述基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的制备方法,包括以下步骤:
(1)用计算机辅助设计软件(如Auto-CAD或Solidwork)设计和绘制器官芯片的掩膜板,精确绘制各层芯片的微结构和微通道图形;
(2)通过微加工技术,特别是光刻蚀的方法,制备出上下两层的掩膜,制备出含有微结构和微通道的芯片;
(3)将上层的微脉管系统芯片,中间的多孔膜和下层的肝脏器官多细胞共培养系统进行对齐,加压,并进行等离子体键合,形成三维立体的微结构和微通道网络;
(4)通过微脉管进口和培养系统进口通道依次种植不同细胞种类,并进行贴壁和三维聚集体培养,并进行肝脏实质细胞形貌和功能性(白蛋白分泌,尿素合成,P450酶活性等)评价;
(5)通过上层和下层通道依次通入药物进行药物肝脏毒性和药物活性评价(药物的长期和短期肝脏毒性,以及药物的IC50值)。
在微脉管系统1和类血管内皮屏障系统2形成的密闭区域中种植血管内皮细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时,形成血管内皮细胞层。
在肝脏器官多细胞共培养系统3依次种植多种细胞,肝脏细胞聚集体首先通过培养系统进口12通道进入细胞聚集体富集区9的月牙槽状结构15,并富集生长为三维聚集体生长;多种细胞共培养区10通过培养系统进口12通道种植共培养细胞种类,共培养细胞种类包括肝星形细胞,库普弗细胞,角质细胞,以及成纤维细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时。
上述基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的使用方法为:在进行药物评价时,药物通过微脉管系统1进入芯片,然后穿透类血管内皮屏障系统2,进入到下层的肝脏器官多细胞共培养系统3,从而评价其肝脏的毒性作用以及进行药物的代谢和转化;或者,药物也通过培养系统进口12直接进入肝脏器官多细胞共培养系统3,与肝实质细胞聚集体和共培养细胞直接进行接触并实现代谢和转化,并验证药物的肝脏毒性和药物活力。
以下结合具体实施例对上述方案做进一步说明。应理解,这些实施例是用于说明本发明而不限于限制本发明的范围。实施例中采用的实施条件可以根据具体条件做进一步调整,未注明的实施条件通常为常规实验中的条件。
实施例1基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的设计和制备
用计算机辅助设计软件(如Auto-CAD或Solidwork等)设计和绘制基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的微结构和微通道图形。首先采用在底片上旋涂光刻胶,通过光刻自显影后形成光刻胶模具,通过微机电加工中的硅深刻蚀技术制作硅摸具,也可利用数控CNC系统加工制备芯片的微结构和微通道。将聚二甲基硅氧烷(PDMS)的预聚体与固化剂混合,经超声、搅拌、真空脱气等步骤后浇铸在上下两层芯片的模具上,在70~80℃热反应1~3小时或65℃过夜热反应,自然冷却。将聚二甲基硅氧烷(PDMS)芯片从模具上小心揭下,并将上下两层芯片与置于中间的洁净的多孔膜进行对齐、粘合、等离子体键合,制成有微脉管系统,类血管内皮屏障系统和肝脏多细胞共培养系统的肝脏芯片。
实施例2肝脏芯片多细胞共培养系统的得细胞植入和定位培养
关闭肝脏多细胞共培养系统通道的进口和入口,打开微脉管系统的进口和出口,经由微脉管系统的进口,将内皮细胞培养液缓慢流经微通道进入微脉管系统的弯曲脉管内部,精致培养2~4小时,待内皮细胞贴壁生长在中间的多孔膜上,形成类血管内皮屏障。关闭微脉管系统的进口和出口,打开肝脏器官多细胞共培养系统的出口和进口,将悬滴法制备的肝脏细胞聚集体培养液缓慢注入肝脏多细胞共培养系统空腔中,因缝隙宽度比较小,培养液和单个细胞很容易通过,而细胞聚集体的直径比较大,细胞聚集体会不断地富集在月牙槽结构内部,形成更大的细胞聚集体,并根据月牙槽结构的形状进行三维的培养和生长,用新鲜培养液清洗掉未被捕获和富集在月牙槽内部的细胞或细胞聚集体。继续将多种肝脏星形细胞胶质细胞,库普弗细胞,以及成纤维细胞等共培养细胞的培养液缓慢流经微通道进入肝脏多细胞培养系统的空腔内,静置培养2~4小时,贴壁生长。待细胞贴壁牢固后,进行连续的培养液供给。
实施例3药物活性及安全性检测
待细胞稳定生长和增殖后,进行药物的肝脏毒性和药物活性评价。药物按不同浓度溶解在细胞培养液中,经由微脉管系统通道入口缓慢流入微脉管系统的弯曲脉管内部,药物穿过类血管内皮屏障系统的多孔膜细胞层,进入到下层的肝脏器官多细胞共培养系统,并经由肝脏实质细胞的代谢和转化,以此进行肝脏细胞形貌表征和细胞功能活性(如白蛋白分泌,尿素合成,P450酶活性)的评价,从而评价药物的肝脏毒性和药物活性。另外,药物按不同浓度溶解在细胞培养液中,经由肝脏器官多细胞共培养系统的进口缓慢流入其空腔内部,药物直接作用于肝实质细胞聚集体和多细胞种类,并经由肝脏实质细胞的代谢和转化,以此进行肝脏细胞形貌表征和细胞功能活性的评价,从而也进行药物对正常肝脏细胞的安全性或药物对病理肝脏细胞的药物活性的检测。
上述实例只为说明本发明的技术构思及特点,其目的在于让熟悉此项技术的人是能够了解本发明的内容并据以实施,并不能以此限制本发明的保护范围。凡根据本发明精神实质所做的等效变换或修饰,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:包括位于上层的微脉管系统(1),中间的类血管内皮屏障系统(2)和下层的肝脏器官多细胞共培养系统(3),微脉管系统(1)和肝脏器官多细胞共培养系统(3)分别设置于各自的片基上;其中,所述微脉管系统(1)包括由若干阻流栅栏(4)交错布置构成的弯曲脉管(5),所述弯曲脉管(5)两端分别设有微脉管进口(6)和微脉管出口(7);所述类血管内皮屏障系统(2)由多孔膜(8)组成;所述肝脏器官多细胞共培养系统(3)包括细胞聚集体富集区(9)和多种细胞共培养区(10),并在两端分别设置有培养系统进口(12)和培养系统出口(11),肝脏器官多细胞共培养系统(3)位于培养系统进口(12)的内部区域设置有两个分流栅栏(13),其中,细胞聚集体富集区(9)由多个月牙槽状结构(15)组成,每个月牙槽状结构(15)上均设置有若干缝隙(14),多个月牙槽状结构(15)纵向排列成若干列,且该若干列交错布置,所有月牙槽状结构(15)的开口均朝着培养系统进口(12)。
2.根据权利要求1所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:所述片基为聚二甲基硅氧烷、聚甲基丙烯酸甲酯、玻璃、聚碳酸酯、聚四氟乙烯、硝酸纤维素、生物膜、硅片的一种或几种。
3.根据权利要求1所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:所述肝脏器官多细胞共培养系统(3)所用的细胞粘附和培养基质为胶原蛋白、纤维蛋白胶、细胞外基质蛋白、BSA蛋白、丝素蛋白、明胶、壳聚糖、精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸、基质胶、海藻酸钠、异甲基丙烯酰胺、聚乙二醇或聚乙二醇丙烯酸酯的一种或几种。
4.根据权利要求1所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:所述微脉管系统(1)的微脉管入口(6)和微脉管出口(7)通道深度,阻流栅栏(4)高度和弯曲脉管(5)深度均为100μm;阻流栅栏(4)的宽度为20μm,形状为半圆形倒角,且与肝脏器官多细胞共培养系统(3)中月牙槽状结构(15)的位置相对应;弯曲脉管(5)是圆滑的通道,通道宽度为600μm,弯曲数为20。
5.根据权利要求1所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:所述多孔膜(8)的材料为聚二甲基硅氧烷、Transwell用的PET或PC膜的一种,厚度为10μm,孔径为0.4,1,3,5,8μm。
6.根据权利要求1所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片,其特征在于:所述肝脏器官多细胞共培养系统(3)的培养系统入口(11)和培养系统出口(12)通道深度,分流栅栏(13)和月牙槽状结构(15)的高度均为100μm;分流栅栏(13)为圆滑弧形,与进口通道对齐,并等距对称布置;月牙槽状结构(15)的个数为80个,其外圆环半径为350μm,内圆环半径为150μm,月牙槽状结构(15)上的缝隙(14)为四个,并均匀发散排列,其宽度为20μm,深度100μm,内圆环开口直线距离为100μm,月牙槽状结构(15)相互之间的间隔距离为100μm。
7.一种权利要求1-6任一所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的制备方法,其特征在于:包括以下步骤:
(1)用计算机辅助设计软件设计和绘制器官芯片的掩膜板,精确绘制各层芯片的微结构和微通道图形;
(2)通过微加工技术,特别是光刻蚀的方法,制备出上下两层的掩膜,制备出含有微结构和微通道的芯片;
(3)将上层的微脉管系统芯片,中间的多孔膜和下层的肝脏器官多细胞共培养系统进行对齐,加压,并进行等离子体键合,形成三维立体的微结构和微通道网络;
(4)通过微脉管进口和培养系统进口通道依次种植不同细胞种类,并进行贴壁和三维聚集体培养,并进行肝脏实质细胞形貌和功能性评价;
(5)通过上层和下层通道依次通入药物进行药物肝脏毒性和药物活性评价。
8.根据权利要求7所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的制备方法,其特征在于:在微脉管系统(1)和类血管内皮屏障系统(2)形成的密闭区域中种植血管内皮细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时,形成血管内皮细胞层。
9.根据权利要求7所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的制备方法,其特征在于:在肝脏器官多细胞共培养系统(3)依次种植多种细胞,肝脏细胞聚集体首先通过培养系统进口(12)通道进入细胞聚集体富集区(9)的月牙槽状结构(15),并富集生长为三维聚集体生长;多种细胞共培养区(10)通过培养系统进口(12)通道种植共培养细胞种类,共培养细胞种类包括肝星形细胞,库普弗细胞,角质细胞,以及成纤维细胞,细胞密度为1x106个/mL,贴壁培养2~4小时。
10.一种权利要求1-6任一所述的基于细胞聚集体的微脉管肝脏芯片的使用方法,其特征在于:在进行药物评价时,药物通过微脉管系统(1)进入芯片,然后穿透类血管内皮屏障系统(2),进入到下层的肝脏器官多细胞共培养系统(3),从而评价其肝脏的毒性作用以及进行药物的代谢和转化;或者,药物也通过培养系统进口(12)直接进入肝脏器官多细胞共培养系统(3),与肝实质细胞聚集体和共培养细胞直接进行接触并实现代谢和转化,并验证药物的肝脏毒性和药物活力。
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Cited By (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107502547A (zh) * 2017-09-25 2017-12-22 中科芯瑞(苏州)生物科技有限公司 一种实现多种细胞共培养的微流控芯片及其应用
CN108004144A (zh) * 2017-12-18 2018-05-08 清华大学深圳研究生院 一种含管道网络的器官芯片单元
CN108504571A (zh) * 2018-03-09 2018-09-07 清华大学深圳研究生院 一种人工肝小叶功能单元的构建装置及构建方法
CN108641931A (zh) * 2018-04-04 2018-10-12 浙江大学 一种数字化微阵列器官芯片及其应用
CN109385394A (zh) * 2018-11-02 2019-02-26 大连理工大学 一种提取、分离和培养同体异种肝原代细胞的方法
CN110387327A (zh) * 2019-07-10 2019-10-29 合肥学院 一种三脉管肝小叶芯片
WO2019222871A1 (zh) * 2018-05-21 2019-11-28 深圳华大生命科学研究院 一种仿生肠-肝器官芯片及其制备方法和应用
CN110612194A (zh) * 2017-03-10 2019-12-24 普瑞利思生物制品公司 用于打印生物材料的方法和系统
CN112264115A (zh) * 2020-10-26 2021-01-26 南京鼓楼医院 一种搭载分子印迹反蛋白石结构微球的鱼骨微流控芯片及其制备方法
CN112626025A (zh) * 2021-01-20 2021-04-09 温州医科大学附属第一医院 一种三维肿瘤细胞耐药模型及其制备方法
US11085018B2 (en) 2017-03-10 2021-08-10 Prellis Biologics, Inc. Three-dimensional printed organs, devices, and matrices
CN113362690A (zh) * 2021-05-31 2021-09-07 中国科学技术大学 肝小叶芯片
CN114317272A (zh) * 2021-12-07 2022-04-12 上海前瞻创新研究院有限公司 一种多细胞共培养的培养装置及细胞培养方法
WO2023116788A1 (zh) * 2021-12-24 2023-06-29 武汉大学 一种肝脏类器官的培养芯片、肝脏类器官模型及其制备方法与应用
CN116445285A (zh) * 2023-03-28 2023-07-18 创芯国际生物科技(广州)有限公司 一种类器官共培养芯片、构建方法及共培养方法
US11767514B2 (en) 2017-05-25 2023-09-26 Prellis Biologics, Inc Three-dimensional printed organs, devices, and matrices

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030215941A1 (en) * 2002-03-12 2003-11-20 Stewart Campbell Assay device that analyzes the absorption, metabolism, permeability and/or toxicity of a candidate compound
CN101285036A (zh) * 2008-05-16 2008-10-15 深圳先进技术研究院 一种自动化细胞培养微流控芯片装置及其方法
CN103502426A (zh) * 2011-02-28 2014-01-08 哈佛大学校长及研究员协会 细胞培养系统
US20140065660A1 (en) * 2012-08-28 2014-03-06 The University Of Utah Research Foundation Microfluidic biological barrier model and associated method
CN103952300A (zh) * 2014-03-31 2014-07-30 大连医科大学 一种微流控芯片及细胞趋化运动研究方法
CN103981096A (zh) * 2014-05-27 2014-08-13 东南大学 一种两层细胞培养体系器官芯片及其制备方法
CN104164360A (zh) * 2014-07-29 2014-11-26 西北农林科技大学 集成微流控芯片及其用于三维肿瘤定位、构建、回收方法
CN104342369A (zh) * 2013-07-25 2015-02-11 国家纳米科学中心 一种采用微流控芯片构建三维神经网络的装置及其制备和使用方法
CN104388299A (zh) * 2014-10-30 2015-03-04 东南大学 一种用于细胞捕获的微流控芯片

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030215941A1 (en) * 2002-03-12 2003-11-20 Stewart Campbell Assay device that analyzes the absorption, metabolism, permeability and/or toxicity of a candidate compound
CN101285036A (zh) * 2008-05-16 2008-10-15 深圳先进技术研究院 一种自动化细胞培养微流控芯片装置及其方法
CN103502426A (zh) * 2011-02-28 2014-01-08 哈佛大学校长及研究员协会 细胞培养系统
US20140065660A1 (en) * 2012-08-28 2014-03-06 The University Of Utah Research Foundation Microfluidic biological barrier model and associated method
CN104342369A (zh) * 2013-07-25 2015-02-11 国家纳米科学中心 一种采用微流控芯片构建三维神经网络的装置及其制备和使用方法
CN103952300A (zh) * 2014-03-31 2014-07-30 大连医科大学 一种微流控芯片及细胞趋化运动研究方法
CN103981096A (zh) * 2014-05-27 2014-08-13 东南大学 一种两层细胞培养体系器官芯片及其制备方法
CN104164360A (zh) * 2014-07-29 2014-11-26 西北农林科技大学 集成微流控芯片及其用于三维肿瘤定位、构建、回收方法
CN104388299A (zh) * 2014-10-30 2015-03-04 东南大学 一种用于细胞捕获的微流控芯片

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
PHILIP J. LEE等: "An Artificial Liver Sinusoid With a Microfluidic Endothelial-Like Barrier for Primary Hepatocyte Culture", 《BIOTECHNOLOGY AND BIOENGINEERING》 *

Cited By (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11919231B2 (en) 2017-03-10 2024-03-05 Prellis Biologics, Inc. Three-dimensional printed organs, devices, and matrices
US11085018B2 (en) 2017-03-10 2021-08-10 Prellis Biologics, Inc. Three-dimensional printed organs, devices, and matrices
CN110612194A (zh) * 2017-03-10 2019-12-24 普瑞利思生物制品公司 用于打印生物材料的方法和系统
US11767514B2 (en) 2017-05-25 2023-09-26 Prellis Biologics, Inc Three-dimensional printed organs, devices, and matrices
CN107502547A (zh) * 2017-09-25 2017-12-22 中科芯瑞(苏州)生物科技有限公司 一种实现多种细胞共培养的微流控芯片及其应用
CN108004144A (zh) * 2017-12-18 2018-05-08 清华大学深圳研究生院 一种含管道网络的器官芯片单元
CN108004144B (zh) * 2017-12-18 2021-04-06 清华大学深圳研究生院 一种含管道网络的器官芯片单元
CN108504571A (zh) * 2018-03-09 2018-09-07 清华大学深圳研究生院 一种人工肝小叶功能单元的构建装置及构建方法
CN108504571B (zh) * 2018-03-09 2021-12-31 清华大学深圳研究生院 一种人工肝小叶功能单元的构建装置及构建方法
CN108641931A (zh) * 2018-04-04 2018-10-12 浙江大学 一种数字化微阵列器官芯片及其应用
CN111971384A (zh) * 2018-05-21 2020-11-20 深圳华大生命科学研究院 一种仿生肠-肝器官芯片及其制备方法和应用
WO2019222871A1 (zh) * 2018-05-21 2019-11-28 深圳华大生命科学研究院 一种仿生肠-肝器官芯片及其制备方法和应用
CN111971384B (zh) * 2018-05-21 2022-06-03 深圳华大生命科学研究院 一种仿生肠-肝器官芯片及其制备方法和应用
CN109385394A (zh) * 2018-11-02 2019-02-26 大连理工大学 一种提取、分离和培养同体异种肝原代细胞的方法
CN110387327A (zh) * 2019-07-10 2019-10-29 合肥学院 一种三脉管肝小叶芯片
CN112264115A (zh) * 2020-10-26 2021-01-26 南京鼓楼医院 一种搭载分子印迹反蛋白石结构微球的鱼骨微流控芯片及其制备方法
CN112626025A (zh) * 2021-01-20 2021-04-09 温州医科大学附属第一医院 一种三维肿瘤细胞耐药模型及其制备方法
CN113362690A (zh) * 2021-05-31 2021-09-07 中国科学技术大学 肝小叶芯片
CN113362690B (zh) * 2021-05-31 2023-08-08 中国科学技术大学 肝小叶芯片
CN114317272A (zh) * 2021-12-07 2022-04-12 上海前瞻创新研究院有限公司 一种多细胞共培养的培养装置及细胞培养方法
CN114317272B (zh) * 2021-12-07 2024-01-12 上海前瞻创新研究院有限公司 一种多细胞共培养的培养装置及细胞培养方法
WO2023116788A1 (zh) * 2021-12-24 2023-06-29 武汉大学 一种肝脏类器官的培养芯片、肝脏类器官模型及其制备方法与应用
CN116445285A (zh) * 2023-03-28 2023-07-18 创芯国际生物科技(广州)有限公司 一种类器官共培养芯片、构建方法及共培养方法

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