CN105087628A - 一种利用重组钝齿棒杆菌全细胞转化生产l-鸟氨酸的方法 - Google Patents

一种利用重组钝齿棒杆菌全细胞转化生产l-鸟氨酸的方法 Download PDF

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张显
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Abstract

通过大肠杆菌和钝齿棒杆菌之间的穿梭质粒pXMJ19,将来源于Bacillus?cereus的精氨酸酶成功在C.crenatum?SDNN403中表达。酶活测定结果表明,原始菌不具有精氨酸酶的活性,而重组工程菌的精氨酸酶酶活达到24.3U/mg。以此工程菌全细胞菌体作为生物催化剂,以L-精氨酸作为底物,同时基于精氨酸酶酶学性质,确定了最佳的反应温度为40℃和pH为9.0。将200ml?LBG培养的重组菌菌体重新悬浮于200ml的底物缓冲液中,在最佳的转化条件下进行转化法生产L-鸟氨酸。8h后可以得到149.2g/L的L-鸟氨酸,底物L-精氨酸的摩尔转化率达到99.5%。本发明方法生产L-鸟氨酸具有效率高,专一性强,能耗低等优点。

Description

一种利用重组钝齿棒杆菌全细胞转化生产L-鸟氨酸的方法
技术领域
本发明涉及到精氨酸酶基因的克隆表达获得重组工程菌,同时将该工程菌应用于L-鸟氨酸的生产,属于生物工程和生物技术领域。
技术背景
L-精氨酸酶(E.C.3.5.3.1)是尿素循环中的一种关键酶,其催化L-精氨酸形成L-鸟氨酸和尿素,精氨酸酶广泛存在于各种动植物和微生物体内,来源于Bacillusbrevis,Bacillussubtilis和Bacillusthuringiensis等微生物的精氨酸酶已经获得较好的研究。
鸟氨酸是一种碱性氨基酸,易溶于水和乙醇,微溶于乙醚等有机溶剂。鸟氨酸接受二分子NH4 +和一分子CO2形成一分子L-精氨酸。L-精氨酸亦可以在精氨酸酶的作用下被水解成鸟氨酸和尿素。
L-鸟氨酸是一种重要的非蛋白质氨基酸,是精氨酸和脯氨酸合成的重要前体物质。同时L-鸟氨酸是人体内尿素循环的重要中间代谢产物,因此其对肝脏的解毒功能具有重要的保障作用。L-鸟氨酸能够刺激体内生长激素的分泌,促进蛋白质的合成以及糖类和脂质的分解代谢作用。L-鸟氨酸和其他氨基酸一起制成的复方氨基酸有很好的保肝护肝以及激发病态下肝脏的活力的作用。联合使用L-鸟氨酸和苯乙酸能有效治疗肝性脑病,特别是对于鸟氨酸循环障碍的患者,L-鸟氨酸能通过促进谷氨酰胺的合成和排泄来稳定的降低患者血氨浓度。鸟氨酸α-酮戊二酸盐是很好的临床营养剂,促进外科创伤病人的恢复,改善慢性营养不良,改善免疫功能。同时鸟氨酸和苹果酸盐和柠檬酸盐合用能够改善食品和饮料的口味,减少苦味。在欧洲、美国以及日本,L-鸟氨酸都是作为膳食药物来销售的。
工业上L-鸟氨酸的合成包括化学合成法、微生物发酵法和L-精氨酸水解法。化学合成作为早期L-鸟氨酸的生产方法,一般以丙烯醛、氰化氢、氨气、CO2为原料合成L-鸟氨酸。但效果并不是很理想,主要表现在于合成的步骤繁琐,产物得率低,而且得到的产物是L-鸟氨酸和D-鸟氨酸的混合物,为后期的分离纯化带来很大的困难。同时化学法合成L-鸟氨酸由于其环境的危害性,越来越不被现代工业所接受。生物合成法相对化学合成法具有生产成本较低,环境污染小等优点而受到重视。微生物发酵生产L-鸟氨酸主要是通过诱变或者基因工程的方法获得L-鸟氨酸高产菌株,以较为便宜的葡萄糖甚至是淀粉等最为初始原料合成L-鸟氨酸。在这方面日本起步较早,上世纪五六十年代就开始鸟氨酸生产的研究,主要以诱变筛选为主。1957年kinoshita等首先报道了利用谷氨酸棒状杆菌的瓜氨酸或精氨酸的突变株发酵生产鸟氨酸。此后,okumuraheShibuya等人在这方面也做了大量的工作总结出了具有精氨酸缺陷型及精氨酸氧肟酸盐抗性的谷氨酸棒杆菌以及具有精氨酸和瓜氨酸,以及霉酚酸抗性等标记的柠檬酸节杆菌突变株用于工业生产中。国内陈宁、刘树庆等人在1999年开始研究鸟氨酸的生产,并以谷氨酸棒杆菌为出发菌株,通过硫酸二乙酯和紫外线诱变定向选育出一种鸟氨酸生产菌,并通过发酵优化使得鸟氨酸产量达到9.85g/L。近几年,随着代谢工程技术的兴起,通过代谢工程改造的方法,鸟氨酸的发酵生产取得一定的进展,其中,中山大学蒋玲艳等人以谷氨酸棒杆菌为出发菌株,通过表达异源的谷氨酸脱氢酶和甘油醛-3-磷酸脱氢酶,增加代谢流中NADPH的含量,使得L-鸟氨酸产量得到提高,最终到14.8g/L,而后蒋又通过代谢进化和代谢工程的方法,最后得到鸟氨酸的产量为24.1g/L。通过发酵法进行鸟氨酸生产可以利用较简单的碳源,如葡萄糖等,成本非常低廉,适合于工业的发展,但发酵周期一般都相对较长,而且发酵的产量较低对于后期分离需要较高的技术需求。
L-精氨酸水解法生产L-鸟氨酸包括,碱水解法和酶水解法,特别是酶水解,由于其反应效率高,产物转专一性高而受到越来越多的重视。近几年,国内有人开始尝试以精氨酸为底物进行酶转化法生产L-鸟氨酸。北京化工大学徐焘,通过筛选得到一株精氨酸酶活力较高的苏云金芽孢杆菌,以此细胞作为生物催化剂,以L-精氨酸为底物进行L-鸟氨酸生产,并最终得到43.57g/LL-鸟氨酸。而后张涛等人提取苏云金芽孢杆菌的精氨酸酶,以精氨酸为底物,精氨酸酶纯酶作催化剂,并最终得到72.1g/L的精氨酸酶。宋伟等人构建表达外源精氨酸酶的E.coliBL21,并以重组细胞为催化剂,L-精氨酸为底物,最终得到112.3g/L的L-鸟氨酸
本发明通过表达载体pXMJ19,实现了将来源于Bacilluscereus的精氨酸酶基因argI成功在钝齿棒杆菌CorynebacteriumcrenatumSDNN403(该菌株为本课题组多年研究,产用传统诱变方法获得一株菌株,保藏编号CGMCC0890,专利号为:ZL03112896.3)中进行高效表达,并利用此基因工程菌的全细胞作为生物催化剂,以L-精氨酸为底物,实现了L-鸟氨酸的高效生产。
发明内容
本发明的主要研究内容:本发明利用分子技术克隆了来自Bacilluscereus的精氨酸酶基因argI,构建重组表达载体pXMJ19-argI,并通过电转化方法将其转化至C.crenatumSDNN403中,成功构建了基因工程菌株C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI。酶活力测定结果发现重组C.crenatumSDNN403工程菌的精氨酸酶活实现从无到有,比酶活达到24.3U/mg。基于获得的基因工程菌,对该菌株用于转化L-精氨酸生产L-鸟氨酸进行了初步的研究。在8h内,L-鸟氨酸的产量为149.2g/L,精氨酸摩尔转化率达到99.5%。
本发明采取的技术方案:
精氨酸酶基因工程菌,是将出发菌株Bacilluscereus的精氨酸酶基因连接在表达载体pXMJ19上,并转化至C.crenatumSDNN403得到重组菌株。以该工程菌为基础,基于精氨酸酶酶学性质为基础,以L-精氨酸为底物,构建转化化法生产L-鸟氨酸的最佳转化体系,实现高效生产L-鸟氨酸的方法。
1.精氨酸酶引物设计
根据NCBI中Bacilluscereus全基因组核酸序列中argI基因序列,设计精氨酸酶基因的PCR引物P1和P2。
F:5’-ACCCGAAGCTTATGAAAAAAGAAATCTCAGTTATTGG-3’(HindIII)
R:5’-ACCGGGATCCTTATTTTAGTTTTTCACCGAATAAAG-3’(BamHI)
2.重组表达载体pXMJ19-argI的构建
参照博大泰克公司胶回收试剂盒说明书回收PCR产物,胶回收产物按一定比例与pMD18-Tvector过夜连接,转化E.coliJM109感受态细胞,使用氨苄青霉素抗性平板筛选重组菌,重组质粒经BamHI/hindIII酶切释放出大小为2.7kb和894bp的基因条带,表明重组质粒构建成功,重组质粒命名为pMD18-T-argI。
提取保存于E.coliJM109中的质粒pMD18-T-argI和pXMJ19,质粒pMD18-T-argI和pXMJ19经BamHI/hindIII双酶切,胶回收纯化,16℃过夜连接,将连接物热击转化E.coliJM109感受态细胞,用卡那霉素抗性平板筛选阳性转化子,提取转化子质粒,重组质粒经BamHI/HindIII双酶切后释放出大小为6.6kb和894bp的基因片段,证明重组质粒构建成功,重组质粒命名为pXMJ19-argI。
3.重组质粒pXMJ19-argI转化模式菌株C.crenatumSDNN403
将经验证构建成功的重组质粒pMA5-argI通过电击转化法转化至模式菌株C.crenatumSDNN403中。
4.重组菌株C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI阳性转化子的筛选
挑取在具有氯霉素抗性平板上长出的菌落,摇瓶发酵,提取质粒进行酶切验证。
5.重组菌株酶活力测定
酶活测定方法:配制0.2M底物L-精氨酸(0.2M碳酸盐缓冲液,pH9.0),取0.9ml底物溶液,加入0.1ml酶液,40℃反应10min。将酶反应液稀释相应的倍数,取1ml稀释后的反应液,用Chinard比色法测定反应液中L-鸟氨酸的含量。酶活定义单位为1min催化1umolL-精氨酸转化成L-鸟氨酸所需的酶量。
Chinard比色法:1ml标准液中依次加入1ml的冰醋酸,1ml混合酸(茚三酮溶液),于沸水浴中反应1h,测定515nm下的吸光度值。
6.重组菌全细胞转化法生产L-鸟氨酸
以重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ-argI的微生物菌体为生物催化剂。以一定浓度的L-精氨酸为底物,在最佳转化体系下进行转化法生产L-鸟氨酸。用高效液相色谱法测定转化液中L-鸟氨酸和L-精氨酸的含量。
氨基酸分析色谱条件
(a)色谱柱:安捷伦色谱柱TC-C18250*4.6*5
(b)柱温:40℃
(C)流动相:A相:称取8.0克结晶乙酸钠于1000毫升烧杯中,加入1000毫升水搅拌至所有结晶水溶解,再加入225微升三乙胺,搅拌并滴加5%的醋酸,将PH调到7.20±0.05;加入5毫升四氢呋喃,混合后备用。
B相:称取12.0克结晶乙酸钠于800毫升烧杯中;加入400毫升水搅拌至所有结晶溶解;滴加5%醋酸将PH调到7.20±0.05;将此溶液加入800毫升乙腈和800毫升甲醇,混合后备用。
(d)检测器:紫外检测器338nm
本发明的优点和积极效果是:
(1)本发明首次在C.crenatumSDNN403中克隆表达了来源于Bacilluscereus的精氨酸酶基因argI。实现了精氨酸酶在C.crenatumSDNN403中的高效表达,重组菌中精氨酸的酶活的达到24.3U/mg
(2)本发明基于精氨酸酶基因在C.crenatumSDNN403中的高效表达,研究了了转化法产L-鸟氨酸,并在8h内获得了149.5g/L的L-鸟氨酸。精氨酸的摩尔转化率达到99.5%。本次发明采用转化法生产L-鸟氨酸,具有产物专一性强、转化效率高等优点。
具体实施方式
实施例1:精氨酸酶引物设计
根据NCBI中Bacilluscereus全基因组核酸序列中argI基因序列,设计精氨酸酶基因的PCR引物P1和P2。
F:5’-ACCCGAAGCTTATGAAAAAAGAAATCTCAGTTATTGG-3’(HindIII)
R:5’-ACCGGGATCCTTATTTTAGTTTTTCACCGAATAAAG-3’(BamHI)
实施例2:精氨酸酶基因的克隆
以Bacilluscereus总DNA为模板,利用上面提供的引物做PCR扩增,扩增条件为:94℃预变性,5min,一个循环;94℃变性,1min,56℃退火,1min,72℃延伸,45s,35个循环;72℃终延伸10min。PCR扩增体系:模板1μL,上下游引物各0.4μL,dNTPMix4μL,10×ExTaqBuffer5μL,灭菌的双蒸水37μL,ExTaqDNA聚合酶1μL。采用凝胶回收试剂盒对PCR产物进行纯化和回收,电泳检验回收产物的浓度。回收产物存放在1.5ml的离心管中,-20℃冰箱保存备用。回收产物与pMD18-TVector连接,连接产物转化E.coilJM109,转化产物涂布含氨苄青霉素的LB平板,经37℃培养过夜,挑取菌落到10ml液体LB培养基中,37℃摇床过夜培养后提取质粒,命名为pMD18-T-argI,经酶切验证连接成功后,加入甘油至终浓度15%~20%(w/v),-70℃冰箱保藏。
实施例3:重组质粒pXMJ19-argI的构建
提取保存于E.coliJM109中的质粒pMD18-T-argI和pXMJ19,并分别用BamHI和HindIII进行双酶切,利用凝胶回收试剂盒回收后进行连接,连接体系:目的基因酶切产物7μL,pXMJ19酶切产物1μL,T4DNA连接酶buffer1μL,T4DNA连接酶1μL,16℃过夜连接。将连接好的重组质粒pXMJ9-argI转化到感受态E.coilJM109,用LB氯霉素抗性培养基,挑取阳性菌落。37℃摇床过夜培养后提取质粒,命名为pXMJ9-argI,酶切验证正确后,加入甘油至终浓度15%~20%(w/v),-70℃冰箱保藏备用。
实施例4:重组质粒pXMJ9-argI转化C.crenatumSDNN403
感受态制备:挑取C.crenatumSDNN403接种于一支10mlLBG(LB+0.5%葡萄糖)液体培养基,30℃摇床培养过夜,取500μL过夜培养的菌液转接入含3%甘氨酸和0.1%吐温-80的50ml液体LB培养基中,使得初始细胞OD600达到0.3于30℃,200r/min培养到细胞OD600达到0.9。细胞培养结束后将菌液预冷15min,然后离心收集菌体。用预冷的10%甘油洗涤菌体4次,最后用0.2ml10%甘油重悬细胞,用1.5ml管分装,每管80ul直接用于电转化。
电转:1800V电转5ms,电转后加入800ulLB培养基30℃培养2-3h
重组菌获得:涂布于氯霉素抗性LBG培养基,30℃培养,挑取阳性菌落,提取质粒酶切验证,得到重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI。
实施例5:重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI精氨酸酶活力测定
将实施例4构建的重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI,与出发菌株C.crenatumSDNN403分别接种于10ml含氯霉素的LBG培养基中,30℃振荡培养过夜,次日按1%的接种量转接于50mlLBG培养基中,30℃培养8h后至OD600为0.9时加入终浓度为0.7mM的IPTG,30℃诱导8h,取发酵液于4℃,10000r/min离心10min,pH7.0的Tris-HCl缓冲液清洗3次,最后用5mlpH7.0Tris-HCl缓冲液中。超声波破碎处理制备粗酶液。
配制0.2M底物L-精氨酸(pH9.0,0.2M碳酸盐缓冲液),取0.9ml底物溶液,加入0.1ml酶液,40℃反应10min。将酶反应液稀释相应的倍数,取1ml稀释后的反应液,用Chinard比色法测定反应液中L-鸟氨酸的含量。酶活定义单位为1min催化1umolL-精氨酸转化成L-鸟氨酸所需的酶量。
Chinard比色法:1ml标准液中依次加入1ml的冰醋酸,1ml混合酸(茚三酮溶液),于沸水浴中反应1h,测定515nm下的吸光度值。
结果表明重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI表达的精氨酸酶比酶活为24.3U/mg,而原始菌C.crenatumSDNN403并没有检测到精氨酸的酶活,从而实现了在C.crenatumSDNN403中精氨酸酶酶活力的从无到有。
实施例6:重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI全细胞转化法生产L-鸟氨酸
重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI接种于200mlLBG培养基中培养8h后加入终浓度为0.7mM的IPTG,30℃诱导8h后,获得细胞。pH7.0Tris-HCl洗涤两次后重悬于200ml底物缓冲液(0.2M磷酸盐缓冲液,200g/LL-精氨酸,0.5mMMn2+,pH9.0),40℃转化8h后用高效液相色谱法(HPLC)测定转化液中L-鸟氨酸和L-精氨酸的含量。
结果表明,转化8h后,转化液中的L-鸟氨酸的含量的149.4g/L,L-精氨酸的摩尔转化率为99.5%。

Claims (5)

1.一种新型重组表达载体的构建,其特征是以Bacilluscereus基因组DNA为模板,扩增得到精氨酸基因argI,将其克隆到表达载体pXMJ19上,构建重组表达型质粒pXMJ19-argI。
2.一株具有较高精氨酸酶酶活的重组基因工程菌,其特征是将权利要求1中构建的重组载体pXMJ19-argI用电击转化法转化到C.crenatumSDNN403中,argI在IPTG诱导下能够高效的表达。
3.根据权利要求2所述的高精氨酸酶酶活的基因工程菌应用于全细胞转化法生产L-鸟氨酸的方法,其特征在于,以重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI全细胞作为生物催化剂,以L-精氨酸为底物进行转化法生产L-鸟氨酸。
4.权利要求3所述的生产L-鸟氨酸的方法,其特征是:重组菌C.crenatumSDNN403/pXMJ19-argI接种于10mLLBG培养基中,30℃振荡培养12h后,取2ml转接于200mlLBG(LB+0.5%葡萄糖)30℃培养8h后,添加终浓度为0.7mM的IPTG对重组菌的精氨酸酶进行诱导表达,诱导10h后离心收集重组菌细胞,重悬于200ml底物缓冲液,用于全细胞转化生产L-鸟氨酸。
5.权利要求2所述的菌株在权利要求4所述的菌体培养策略下在转化法生产L-鸟氨酸中的方法,其特征是:优选催化温度为40℃,优选转化pH为9.0,优选Mn2+添加浓度为0.5mM,200g/L底物L-精氨酸,以0.3M碳酸盐为缓冲液,转化合成L-鸟氨酸。
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CN112522171A (zh) * 2020-12-18 2021-03-19 浙江中山化工集团股份有限公司 一种工程菌、含鸟氨酸溶液的处理方法及试剂盒

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