CN104031933A - 一株l-鸟氨酸合成菌的构建及其应用方法 - Google Patents
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Abstract
本发明敲除钝齿棒杆菌(Corynebacteriumcrenatum)SYPA5-5中编码鸟氨酸乙酰转移酶(Ornithinecarbamoyltransferase,OTC)的argF基因,对获得的重组菌株进行发酵产L-鸟氨酸的研究,属于生物技术领域。首先,构建argF基因内缺失片段(△argF),连接至pK18mobsacB中获得重组质粒pK18mobsacB△argF,将其电转入SYPA5-5中,经两次同源重组,筛选获得重组菌株SYPA5-5△argF。其次,考察不同营养条件对重组菌株生长及L-鸟氨酸积累的影响,发现添加0.3g/LL-精氨酸可满足SYPA5-5△argF的生长及L-鸟氨酸积累所需,利用糖质原料,发酵96h,L-鸟氨酸产量可达21.5g/L,糖酸转化效率为0.17g(L-ornithine)/g(glucose)。
Description
技术领域
敲除钝齿棒杆菌(Corynebacterium
crenatum)SYPA5-5中编码鸟氨酸乙酰转移酶(Ornithine carbamoyltransferase,OTC)的argF基因,并对获得的重组菌株进行发酵产L-鸟氨酸的研究,属于生物技术领域。
背景技术
L-鸟氨酸(L-ornithine)为非蛋白质氨基酸,是尿素循环的重要中间代谢产物,因具有重要的生理功能而广泛应用于食品、医药及化工领域。微生物发酵法有节能环保、易提取分离等优点,具有重要的工业化应用价值。
实现微生物发酵法生产氨基酸的关键在于高产菌株的选育。代谢工程作为理性育种的技术手段被广泛应用于工业微生物的改造。目前,该技术已应用于L-鸟氨酸高产菌株的构建。Lee YJ等构建的大肠杆菌W3110 (△argF△argR△proB△speF,ParaB-arg214)在添加谷氨酸的条件下发酵,可积累13.2 mg/g (dry cell
weight) L-鸟氨酸; Jiang
LY等构建的谷氨酸棒杆菌ATCC13032 (△argF△argR△proB△speE),经生长偶联的菌株驯养后,可积累17.2 g/L L-鸟氨酸。但上述L-鸟氨酸生产菌株仍存在产量不高或携带外源质粒等问题,限制了其工业化应用。
钝齿棒杆菌(Corynebacterium
crenatum) SYPA5-5是本研究室经过多级诱变筛选获得的一株L-精氨酸高产菌株,利用葡萄糖为碳源,摇瓶发酵96 h可积累约30 g/L L-精氨酸。L-精氨酸的生物合成是以L-谷氨酸为前体,先通过5步酶促反应生成L-鸟氨酸;再经鸟氨酸氨甲酰转移酶(Ornithine
carbamoyltransferase,OTC)将L-鸟氨酸转化为L-瓜氨酸;最后,在精胺琥珀酸合成酶(Argininosuccinate
synthase,ASS)和精胺琥珀酸裂解酶 (Argininosuccinase,ASL)催化下合成L-精氨酸。前期研究表明,SYPA5-5发酵生产L-精氨酸的过程中,中间代谢物L-鸟氨酸的积累量较低。本研究以SYPA5-5为出发菌株,敲除其编码鸟氨酸氨甲酰转移酶的基因argF,阻断L-鸟氨酸进一步合成L-精氨酸的途径,构建了能够积累L-鸟氨酸的重组菌株SYPA5-5△argF,并研究了其发酵性能,为实现采用糖质原料直接发酵生产上述氨基酸奠定了基础。
发明内容
本发明提供合成L-鸟氨酸的钝齿棒杆菌(Corynebacterium crenatum) SYPA5-5△argF的构建及发酵生产L-鸟氨酸的方法。该菌株是利用SYPA5-5为出发菌株,以自杀质粒pK18mobsacB对其argF基因进行敲除后获得,在添加300 mM
L-精氨酸条件下,利用糖质原料发酵96 h,积累21.5 g/L L-鸟氨酸,该菌株已经保存于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保存号为CGMCCNo.8637,保存日期为2013年12月25日。本发明提供的方法属于基金项目:国家863资助项目(No. 2012AA022102)的研究内容。具体发明方案如下:
1. 重组菌株SYPA5-5△argF的构建
以SYPA5-5基因组DNA为模板,分别以F1/F2、F3/F4为引物,扩增argF上、下游片段,通过crossover PCR扩增获得argF基因内缺失片段(△argF)。将获得的△argF连入pK18mobsacB质粒得到重组质粒pK18mobsacB△argF。将重组质粒电转化入SYPA5-5感受态细胞中,经两次同源重组,对获取的转化子,提取基因组,进行PCR扩增并送至上海生工测序。
引物序列如下:
2. 不同浓度L-精氨酸对SYPA5-5△argF发酵积累L-精氨酸的影响
采用摇瓶分批发酵的方式对SYPA5-5△argF进行发酵。首先,在发酵培养基中添加0-0.5 g/L L-精氨酸,考查其添加对SYPA5-5△argF的生长及L-鸟氨酸积累的影响,并确定有利于菌体生长及L-鸟氨酸积累的浓度范围;其次,在该范围内选择不同L-精氨酸添加浓度,以获得最适添加浓度。具体发酵方案如下:
(1) 摇瓶种子培养:保存于斜面的SYPA5-5△argF,划线到肉汤平板上,置于30℃培养箱中培养24 h,挑取菌体,接种至摇瓶种子培养基中,置于30 ℃ 120 rpm往复式摇床上培养12-16 h,至OD562nm约为15。肉汤培养基组分 (g/L):葡萄糖 20;蛋白胨 10;牛肉膏 10;酵母粉5;NaCl 5;琼脂粉20;pH 7.0~7.2;121 ℃高压蒸汽灭菌20 min。种子培养基组分(g/L):葡萄糖 30;玉米浆 20;(NH4)2SO4
20;KH2PO4 1;MgSO4·7H2O 0.5;尿素 1.5;pH 7.0~7.2;121 ℃高压蒸汽灭菌20 min。
(2) 摇瓶分批发酵:在发酵培养基中分别添加不同浓度L-精氨酸,将培养好的种子按5%的接种量接种于摇瓶发酵培养基中,置于30 ℃ 120 rpm往复式摇床上培养96 h,发酵至24 h补加50 g/L葡萄糖。摇瓶发酵培养基组分(g/L):葡萄糖(分消) 100;酵母粉 10;(NH4)2SO4
50;KH2PO4 1.5;MgSO4.7H2O
0.5;FeSO4·7H2O 0.02;MnSO4·H2O 0.02;生物素 8 ×10-5;L-组氨酸5×10-4;CaCO3 30;pH 7.0~7.2;115 ℃高压蒸汽灭菌7 min。
(3) 发酵参数检测:
A. 生物量:用0.25 mol/L HCl对发酵液进行适当倍数稀释后,紫外分光光度计测定OD562nm,OD值与菌体干重的关系为1 OD562nm =
0.375 g(DCW)/L。
B. 游离氨基酸:将发酵液进行适当倍数稀释后,用异硫氰酸苯酯对发酵液中氨基酸进行衍生化,用HPLC分析各游离氨酸含量。
C. 葡萄糖含量:将发酵液进行适当倍数稀释后,用DNS法测定。
3. 菌株发酵过程比较
采用摇瓶发酵分批发酵模式,比较出发菌株SYPA5-5及重组菌株SYPA5-5△argF的发酵过程。按照2中所述方法进行发酵,在发酵过程中,每隔12 h取样,检测相关发酵参数。
附图说明
图1 重组菌株SYPA5-5△argF的构建。
(A) argF基因内缺失片段(△argF)的构建1: Marker; 2: argF上游片段; 3: argF下游片段; 4:△argF片段;
(B) 重组质粒pK18mobsacB△argF的构建1: Marker; 2: pMD 19-T-△argF单酶切; 3: pMD
19-T-△argF双酶切; 4: pK18mobsacB△argF的单酶切; 5: pK18mobsacB△argF的双酶切;
(C) 重组菌株SYPA5-5△argF的验证1: Marker; 2:以pK18mobsacB△argF为模板扩增△argF片段(对照); 2: 以重组菌株SYPA5-5△argF基因组DNA为模板扩增△argF片段;
图2不同浓度L-精氨酸对SYPA5-5△argF生长(白色)及产L-鸟氨酸(黑色)的影响。
图3 SYPA5-5 (A, a)与SYPA5-5△argF (B, b)摇瓶发酵过程参数及发酵结束后发酵液的液相图谱分析。■ L-精氨酸或L-鸟氨酸产量;▲ 菌体生物量;● 葡萄糖含量。
具体实施方式
实施实例1. 重组菌株SYPA5-5△argF的构建
(1) 重组敲除质粒pK18mobsacB-argF的构建
以SYPA5-5基因组DNA为模板,分别以F1/F2、F3/F4为引物 (表1),扩增argF上游片段为517 bp,下游片段450 bp,通过crossover PCR扩增获得argF基因内缺失片段(△argF) 950 bp
(图1A)。将获得的△argF连入pK18mobsacB质粒得到重组质粒pK18mobsacB△argF (图1B)。
表1 本研究所用的引物
(2) 重组菌株SYPA5-5△argF获取、筛选及验证
将重组质粒pK18mobsacB△argF电转化入SYPA5-5感受态细胞中,经两次同源重组,对获取的转化子,提取基因组,进行PCR扩增并送至上海生工测序,结果表明,成功构建了敲除argF的重组菌株SYPA5-5△argF (图1C)。
实施实例2. 重组菌株SYPA5-5△argF发酵产L-鸟氨酸的研究
(1) 不同浓度L-精氨酸对重组菌株SYPA5-5△argF发酵产L-鸟氨酸的影响
在发酵培养基中添加0-5 g/L的 L-精氨酸,摇瓶发酵96 h,结果如图2A所示:在添加0-0.5 g/L L-精氨酸时,菌体生物量及L-鸟氨酸的产量随L-精氨酸浓度的增加而增加;随着添加浓度继续增加,菌体生物量及L-鸟氨酸的产量略有下降。进一步研究了添加0-0.5 g/L的L-精氨酸的影响(图2B),当L-精氨酸浓度为0.3 g/L时,重组菌株SYPA5-5△argF的生物量及L-鸟氨酸的产量达到最高值,分别为24.4 g/L和21.3 g/L,较不添加L-精氨酸时的生物量(12.5 g/L)和L-鸟氨酸产量(10.7 g/L)均提高约1倍。
(2) 重组菌株SYPA5-5△argF摇瓶发酵过程
分别考察出发菌株SYPA5-5及重组菌株SYPA5-5△argF的发酵过程,结果如图3所示。添加0.3 g/L L-精氨酸后,SYPA5-5△argF的生长速率与SYPA5-5基本保持一致,发酵结束后其生物量达23.3 g/L,与后者的25.5 g/L相当。
SYPA5-5可大量积累L-精氨酸,至发酵结束时产量达29.6 g/L (图3A),同时,积累一定量的L-瓜氨酸(2.1 g/L)及L-鸟氨酸(1.8 g/L),且L-赖氨酸及L-异亮氨酸作为副产物也有少量积累(图3a)。SYPA5-5△argF可大量积累L-鸟氨酸,至发酵结束时产量达21.5 g/L (图3B),但发酵液中无L-瓜氨酸及L-精氨酸的积累,该结果表明,在L-精氨酸生产菌株SYPA5-5中敲除argF基因,可阻断L-鸟氨酸进一步转化为L-瓜氨酸的合成途径,进而实现L-鸟氨酸的大量积;该菌发酵液中L-赖氨酸的积累量较出发菌株略低,但L-谷氨酸和L-天冬氨酸的积累量较出发菌株略高(图3b)。
至发酵结束, SYPA5-5消耗约94%的葡萄糖,糖酸转化效率为0.22 g (L-arginine)/g (glucose);SYPA5-5△argF消耗约84%的葡萄糖,较出发菌株葡萄糖消耗量略低,糖酸转化率为0.17 g (L-ornithine)/g (glucose)。上述结果表明,重组菌株可利用葡萄糖为碳源直接发酵合成大量L-鸟氨酸,但由于基因敲除后对菌体生长产生影响,而导致葡萄糖的利用效率存在差异。
Claims (4)
1.构建一株利用糖质原料发酵大量积累L-鸟氨酸的菌株的方法,其特征为:出发菌株分类命名为钝齿棒杆菌(Corynebacterium crenatum) SYPA5-5∆argF,已保存于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,菌株保存号为CGMCC No.8637,保存日期为2013年12月25日。
2.权利要求1中所述的方法,其特征为:利用高产L-精氨酸的钝齿棒杆菌(Corynebacterium crenatum) SYPA5-5为出发菌株,以pK18mobsacB质粒对其编码鸟氨酸乙酰转移酶(Ornithine
carbamoyltransferase,OTC)的argF基因进行敲除,筛选获得的重组菌株可积累L-鸟氨酸。
3.利用糖质原料发酵大量积累L-鸟氨酸的方法,其特征为:
(1) 种子活化:将斜面保存的菌种划线于肉汤斜面中,30℃静置培养24 h;肉汤培养基组分 (g/L):葡萄糖 20;蛋白胨 10;牛肉膏 10;酵母粉5;NaCl 5;琼脂粉20;pH 7.0~7.2;121 ℃ 高压蒸汽灭菌20 min;
(2) 摇瓶种子:将活化后的种子,挑取一环接种于摇瓶种子培养基中,30℃ 120 rpm往复式摇床培养 12-16 h,至OD562nm约为15;种子培养基组分(g/L):葡萄糖 30;玉米浆 20;(NH4)2SO4
20;KH2PO4
1;MgSO4·7H2O 0.5;尿素 1.5;pH 7.0~7.2;121 ℃高压蒸汽灭菌20 min;
(3) 摇瓶发酵:将液体种子按5%的接种量接种至发酵培养基,30℃ 120 rpm往复式摇床培养 96 h,发酵至24 h补加50 g/L葡萄糖;摇瓶发酵培养基组分 (g/L):葡萄糖(分消) 100;酵母粉 10; (NH4)2SO4
50;KH2PO4
1.5;MgSO4.7H2O
0.5;FeSO4·7H2O 0.02;MnSO4·H2O 0.02;生物素 8 ×10-5;L-组氨酸5×10-4;CaCO3 30;pH 7.0~7.2;115 ℃高压蒸汽灭菌7 min。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征为:添加适量L-精氨酸以有利于菌体的生长及L-鸟氨酸的积累。
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