CN104862402A

CN104862402A - 检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法

Info

Publication number: CN104862402A
Application number: CN201510288426.6A
Authority: CN
Inventors: 高劲松; 张英杰; 李星颐; 刘会影; 魏潇; 魏奇
Original assignee: SHENYANG EUGENOM BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Current assignee: SHENYANG EUGENOM BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Priority date: 2015-05-29
Filing date: 2015-05-29
Publication date: 2015-08-26
Anticipated expiration: 2035-05-29
Also published as: CN104862402B

Abstract

本发明公开了一种检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法，其中包括分别检测rs429358位点和rs7412位点的两组引物；第一组引物：rs429358位点的突变型特异性上游引物、rs429358位点的野生型特异性上游引物和rs429358位点的突变型特异性上游引物与野生型特异性上游引物共用的第一下游引物；第二组引物：rs7412位点的突变型特异性上游引物、rs7412位点的野生型特异性上游引物和rs7412位点的突变型特异性上游引物与野生型特异性上游引物共用的第二下游引物；试剂盒具有检测简单、快速、准确、廉价等优点，为科研和临床ApoE基因分型和基因突变分析提供了强有力的工具。

Description

检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法

技术领域

本发明涉及分子生物学基因检测领域，特别提供了检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法，用于ApoE基因rs429358和rs7412两个多态位点的快速检测。

背景技术

ApoE基因与多种心脑血管疾病密切相关，其编码的载脂蛋白E（Apolipoprotein E，ApoE）参与高血脂症、动脉粥样硬化、冠心病等心脑血管疾病的整个发生发展过程，ApoE基因多态性是这些疾病早期及发展过程中个体差异的主要原因。

ApoE 的氨基酸序列的112 位和158 位两种氨基酸残基即精氨酸(Arg) 和半胱氨酸(Cys) 的交换决定了异构体的种类。ApoE基因有3种异构体，分别为ApoE2、ApoE3和ApoE4，其中ApoE3在中国人群中分布比较广泛，所占比例约为60%~70%，也可称为正常基因。每一个等位基因对应于一个主要异构体产生三种纯合子(E2/E2，E3/E3，E4/E4) 和三种杂合子(E2/E3，E2/E4，E3/E4) 共六种常见表型。ApoE基因具有异构体特异性，即不同基因编码的蛋白质功能具有差异性，从而导致不同蛋白质对脂质的代谢能力不同、抗氧化及抗炎症能力不同。

ApoE基因多态性是冠心病（CHD）早期及发展过程中个体差异的主要原因，通过ApoE基因多态性的检测可以了解个体CHD及心肌梗塞（MI）的易感性。ApoE2的作用是降低胆固醇浓度，对冠状动脉硬化的发展有一定的防护作用，而ApoE 4则会使血浆LDL-C、TC浓度升高，易诱发CHD及MI。

另外国内外多项研究发现，ApoE基因是目前已知的阿尔茨海默病最密切的遗传标志物，ApoE4携带者阿尔茨海默病的易感性增加。

目前对基因突变和基因多态性的检测，常见有直接测序法；基因芯片杂交法；PCR-RFLP方法；PCR扩增产物毛细管电泳分析法；PCR-SSCP；PCR高分辨熔解曲线分析技术；PCR-Taqman MGB（Minor Groove Binder）探针法；AS-PCR法；Cast-PCR法等。这些方法或多或少还存在仪器价格高，操作难度大，存在一定假阴性和假阳性，检测成本高，临床普及程度低，不能同时大规模检测临床标本等缺点。

如：1）直接测序法是突变分析的金标准，能发现已知和未知突变位点，但该法检测基因突变的灵敏度为20%（即目的基因的突变基因DNA模板数占野生型DNA模板数的20%）。同时还存在操作复杂，周期长，分析速度慢，常需要2天的时间，而且该法是开管操作，大大增加污染的可能性，不适合对大规模标本的检测，同时还需要昂贵的仪器，存在在基层不易实施等缺点。

2）普通PCR-RFLP方法技术简便，价格便宜，适宜少量样本的实验室检测，但RFLP仅能检测有酶切位点的突变，无酶切位点不能检测，费时费力，还存在PCR产物污染导致假阳性的风险，见[Mol Diagn Ther. 2010 Jun 1;14(3):163-9, United States Patent 20120135406]。

3）芯片技术与传统的仪器检测方法相比具有高通量、微型化、自动化等特点，适用于全基因组突变扫描，不适宜单个基因的突变位点检测，且精度低，价格昂贵。

4）PCR高分辨熔解曲线分析技术，能高通量检测基因的突变情况，试剂成本较低，但因其荧光信号来自染料，特异性受到影响，而且检测仪器是升级版的荧光PCR仪，价格高昂，普及受限，见[Clin Chim ACqa. 2012 Nov 12;413(21-22):1781-5; United States Patent 20110045479]。

5）PCR-Taqman MGB探针法适合已知突变位点，常常需要两条探针，而Taqman MGB探针的合成价格是普通Taqman探针的几倍，见 [J Clin Microbiol. 2010 Aug;48(8):2909-15；United States Patent 20090311679]，并且不能检测样本中的含量较少(≥1,000个中的1个)的等位基因或突变位点。

6）PCR-SSCP法虽然简单，但该法是开放性的检测系统，容易造成PCR产物的污染，而且操作步骤多，费时费力。

7）等位基因特异性引物PCR扩增法(AS-PCR)，这一方法是目前检测基因突变或SNP最简单快速的方法（Wu D Y, Ugozzoli L, Pal B K, Wallace R B., Proc Natl Acad Sci USA 1989; 86:2757-2760)，其原理是引物3'末端碱基与模板的碱基错配，其PCR的效率将会下降10³-10^6.6倍 (Chen, X., and Sullivan, P F, The Pharmacogeonomics Journal 2003, 3, 77-96)。尽管该方法的原理简单，但错配的引物，依然会发生非特异性扩增，扩增情况视突变的类型和检测位点周围的碱基序列相关(Ayyadevara S, Thaden J J, Shmookler Reis R J., Anal Biochem 2000; 284:11-18)，还与样本中存在的等位基因变量的影响。为了增加AS-PCR的特异性，许多科学家做了很多努力。大量的实验证明，该方法最关键的是设计与3'末端突变位点碱基互补或错配的两条特异引物，引物设计不好，将导致高背景的交叉扩增，会导致较高的假阳性。尽管不少人努力将这一弊端克服，如报道的TaqMAMA方法，在3’倒数第二位或第三位上引入突变碱基，的确可以增加反应的特异性，但仍然无法完全消除假阳性，而且在纯合子与杂合子的判断上，缺乏标准，会出现混乱的情况，见[J Virol Methods. 2008 Nov;153(2):156-62;Genomics. 2004 Feb;83(2):311-20]。简单的AS-PCR，通常采用PCR反应结束后再进行电泳，从有无反应条带来判断结果，这种方法虽然不需要昂贵的仪器，但电泳操作，增加了PCR的污染机会，而且耗时费力。尽管有人对该方法作了改进，采用荧光定量PCR技术，但得到的不是“全或无”式的结果，总会有非特异性反应的发生，即同样的引物对野生型和突变型位点都会扩增，只是其得到的Ct（Cycle threshold）不同而已，因此就引入了ΔCt的概念，即ΔCt=野生Ct-突变Ct，但计算复杂，如要ΔCt值大于纯合子Ct值判为突变型纯合子，ΔCt值小于杂合子Ct值，判为杂合子，ΔCt值的引入不仅增加了操作步骤，还会引起混乱，因为ΔCt值的设定标准无法准确定位，不同人员的操作、不同的标本和不同的检测仪器都会有不同的数字，给临床应用带来很大的困难，实际应用依然受限，见[中国专利CN101235415，CN101565742A]。

8）美国LIFE公司采用一种MGB封闭探针的方法，称作Cast-PCR（ Competitive allele specific Taqman PCR），用MGB探针将不检测的位点封闭，然后用等位基因特异引物荧光定量PCR的方法检测目的位点，这虽然提高了检测的特异性，但由于多加入一条MGB封闭探针，势必增加成本，对反应效率多少会带来干扰，见[Exp Mol Pathol. 2012 Jun;92(3):275-80； United States Patent 20100221717；CN102428190A]。有人采用锁核酸(LNA)( Plant Method 2007，3：2)或修饰的碱基(Anal Biochem.2005，340：287-294)的PCR引物，可以使得AS-PCR检测灵敏度提高。然而，这些方法增加了分析的总体成本，并需对反应进行深度优化。

目前，国内已上市有注册证的ApoE基因检测试剂盒有如下几种：1、广州科方生物技术有限公司的“载脂蛋白E(ApoE)测定试剂盒(免疫比浊法)”，粤食药监械(准)字2014第2400852号；2、北京利德曼生化股份有限公司的“载脂蛋白E测定试剂盒-APOE(免疫比浊法)”京食药监械(准)字2012第2400826号；3、北京恩济和生物科技有限公司的“载脂蛋白E(ApoE)测定试剂盒(免疫比浊法)”，京食药监械(准)字2013第2401277号；4、长春汇力生物技术有限公司的“载脂蛋白E(ApoE)测定试剂盒(免疫比浊法)”，吉食药监械(准)字2014第2400070号等共9种产品，均是免疫学方法。

免疫比浊法是抗原抗体结合动态测定方法，通过测定反应液的浊度与一系列标准品对照，即可计算出检样中抗原的含量。操作过程受很多因素的限制，如抗原或抗体量太大过剩，可出现可溶性复合物，造成误差；必须维持反应管中抗体蛋白始终过剩；易受到脂血的影响。免疫比浊法分为三类：免疫透射比浊法；免疫散射比浊法和免疫胶乳比浊法。对实验操作条件均有较多的要求，且结果判断繁琐。

目前从基因水平检测ApoE多态性的方法大致有以下几种，反向斑点杂交、基因芯片、Taqman-MGB双探针法及直接测序等方法。中国专利CN1786188A报道了用反向斑点杂交方法检测ApoE基因型的方法，该法存在操作复杂，周期长，以及分析速度慢，容易发生PCR产物的污染出现假阳性等缺点。中国专利CN 102010897 A公开了一种用液相基因芯片检测ApoE多态性的方法，芯片技术与传统的仪器检测方法相比具有高通量、微型化、自动化等特点，适用于全基因组突变扫描，不适宜单个基因的突变位点检测，且精度低，价格昂贵，同样也存在操作复杂，周期长，以及分析速度慢，容易发生PCR产物的污染出现假阳性等缺点。中国专利CN101608229A公开了一种用Taqman-MGB双探针荧光PCR的方法，检测ApoE基因型，该法常常需要两条探针，而Taqman MGB探针的合成价格是普通Taqman探针的几倍，见 [J Clin Microbiol. 2010 Aug;48(8):2909-15；United States Patent 20090311679]，并且不能检测样本中的含量较少(≥1,000个中的1个)的等位基因或突变位点。中国专利CN 102676669 A采用焦磷酸测序法检测ApoE 基因多态性，直接测序法是目前鉴定基因型别的金标准方法，能发现已知和未知突变位点，但该方法需要昂贵的仪器，每个位点均需PCR扩增，然后测序，操作复杂，成本较高、工作量大、周期长、在基层不易实行。

因此，如何解决检测ApoE 基因多态性存在的问题，成为人们亟待解决的问题。

发明内容

鉴于此，本发明提供了一种检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法，以至少解决以往试剂盒存在的结果判读复杂、检测仪器价格高，操作难度大，存在一定假阴性和假阳性，检测成本高，临床普及程度低，不能同时大规模检测临床标本等一个或多个问题。

本发明提供的方案具体为：一种检测ApoE基因多态性的引物，其特征在于，所述引物包括分别检测rs429358位点和rs7412位点的两组引物；

第一组引物：

rs429358位点的突变型特异性上游引物、rs429358位点的野生型特异性上游引物和rs429358位点的突变型特异性上游引物与野生型特异性上游引物共用的第一下游引物，且所述rs429358位点的突变型特异性上游引物具有SEQ No.21序列，所述rs429358位点的野生型特异性上游引物具有SEQ No.24序列，所述共用的第一下游引物具有SEQ No.23序列；

第二组引物：

rs7412位点的突变型特异性上游引物、rs7412位点的野生型特异性上游引物和rs7412位点的突变型特异性上游引物与野生型特异性上游引物共用的第二下游引物，且所述rs7412位点的突变型特异性上游引物具有SEQ No.29序列，所述rs7412位点的野生型特异性上游引物具有SEQ No.32序列，所述共用的第二下游引物具有SEQ No.30序列。

本发明一方面还提供了一种检测ApoE基因多态性的试剂，其特征在于：所述试剂含有上述的引物。

本发明另一方面还提供了一种检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒含有上述的引物。

优选，所述试剂盒还包括分别与上述第一组引物和第二组引物配合使用的第一探针和第二探针，且所述第一探针和第二探针均为Taqman探针，其中，所述第一探针具有SEQ No.22序列，所述第二探针具有SEQ No.31序列。

进一步优选，所述试剂盒还包括PCR反应管、dNTPs和Taq酶混合液、PCR缓冲液、检测管家基因GAPDH的上游引物、检测管家基因GAPDH的下游引物、检测管家基因GAPDH的探针、阳性质控品和空白对照；

所述检测管家基因GAPDH的上游引物具有SEQ No.26序列；所述检测管家基因GAPDH的下游引物具有SEQ No.27序列；所述检测管家基因GAPDH的探针具有SEQ No.28序列。

进一步优选，所述rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一C型PCR反应管内；所述rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一T型PCR反应管内；所述rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二T型PCR反应管内；所述rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二C型PCR反应管内。

进一步优选，所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm。

进一步优选，所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm。

本发明还提供了一种上述引物或上述试剂盒的PCR方法，其特征在于：PCR反应按两步扩增循环程序进行，且第一步扩增的循环数小于第二步扩增的循环数，所述第一步扩增的退火温度高于所述第二步扩增的退火温度。

优选，所述PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，55℃~68℃ 退火 32s，循环10~15次；第二步，95℃ 变性 5s，50℃~65℃ 退火、延伸32s，循环30~50次，收集荧光信号；进一步优选，所述PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，63℃ 退火 32s，循环15次；第二步，95℃ 变性 5s，60℃ 退火、延伸 32s，循环40次，收集荧光信号。

本发明提供的检测ApoE基因多态性的引物及其试剂盒，能够大大增加等位基因特异性引物PCR区分不同等位基因位点的能力，使不同位点间的非特异性交叉扩增的可能性降到最低，能够做到真正“全或无”式的扩增，不仅有很好的特异性，也具有非常好的灵敏度，能检出1ng基因组DNA中的基因型分布情况。

本发明提供的检测ApoE基因多态性的引物及其试剂盒，具有以下优点：

1）通过对引物序列上的人为改变使检测结果真正做到对结果“全或无”判断，大大简化了结果判读的难度，降低了出错的可能，为科研和临床应用提供了便利。

2）Ｔaq酶与dNTPs的混合，保障了dNTPs的稳定性，使其可经受多次反复冻融的考验。

3）提前预配好可直接使用的缓冲液，使用者更加方便。

4）引物和探针提前包被在PCR反应管内，避免了操作者出现位点配错的可能，而且也节约了大量操作时间。

5）本发明中引物和试剂盒具有特异性好，检测的灵敏度高，检测速度快，整个过程能在1小时20分钟内完成。

6）试剂盒内仅用一条常规Taqman探针，别无其他诸如封闭探针，降低成本。

7）该试剂盒具有检测简单、快速、准确、价廉等优点。

附图说明

图1为不同突变型特异性引物产生的扩增信号图；

图2为E2/E2型ApoE基因的扩增曲线图；

图3为E2/E3型ApoE基因的扩增曲线图；

图4为E2/E4型ApoE基因的扩增曲线图；

图5为E3/E3型ApoE基因的扩增曲线图；

图6为E3/E4型ApoE基因的扩增曲线图；

图7为E4/E4型ApoE基因的扩增曲线图；

图8为管家基因GAPDH的PCR扩增曲线图。

具体实施方式

下面以具体的案例对本发明进行进一步解释，但并不用于限制本发明的保护范围。

若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段，所用产品均为市购。

以下定义是本发明中相关术语的解释：

“等位基因”一般是指DNA区段，同源染色体上的相同物理位置上，控制相对性状的一对基因。在一些情况下，等位基因可以对应于特定物理基因座上的单核苷酸的替换。在其它情况中，等位基因可以对应于核苷酸(单个或多个)插入或缺失。

“等位基因特异性引物”是指与目标等位基因的序列互补，在PCR时能够延伸完成特异的PCR反应。等位基因特异性引物可以设计成能检测出靶序列中少至1个核苷酸差异十分特异的引物，该引物可以包含等位基因特异性核苷酸部分、3’端靶标特异性部分和尾巴。

“MGB基团”是指小沟结合剂。当与寡核苷酸的3’末端缀合时，MGB基团能够作为不可延伸的封闭部分发挥作用。MGB是能结合于双链DNA的小沟内的分子，通常采用DPI3（其合成方法参见美国专利号6,084,102；和6,727,356)。

“检测探针”是指：指示扩增的多种信号传导分子中的任意一种。例如，SYBR Green和其它DNA结合染料都是检测探针。一些检测探针可以是序列特异性的，例如Taqman探针(美国专利号5,538,848)，多种茎环分子信标(美国专利号6,103,476和5,925,517以及Tyagi and Kramer，Nature Biotechnology，1996，14：303-308)，无茎的或线性信标(WO99/21881)，PNA Molecular Beacons TM(美国专利号6,355,421和6,593,091)，线性PNA信标(Kubista等人，2001，SPIE4264：53-58)，非-FRET探针(美国专利号6,150,097)，Sunrise/Amplifluor探针(美国专利号6,548,250)，茎环和双链Scorpion TM探针(Solinas等人，2001，NucleicAcidsResearch29：E96和美国专利号6,589,743)，鼓起的环探针(美国专利号6,590,091)，假结探针(美国专利号6,589,250)，cyclicon(美国专利号6,383,752)，MGB Eclipse TM探针(Epoch Biosciences)，发夹探针(美国专利号6,596,490)，肽核酸(PNA)探针。检测探针可以包含荧光报告分子，例如，6-羧基荧光素(6-FAM)或四氯荧光素(TET)，和淬灭分子部分，例如四甲基若丹明(TAMRA)，Black Hole QuencheRS (Biosearch)，Iowa Black(IDT)，QSY猝灭剂(Molecular Probes)和Dabsyl和Dabcel磺酸盐/羧酸盐猝灭剂(Epoch)。

“共用特异性引物”是指在PCR反应中与等位基因特异性引物配对的引物，它能同不同位点的等位基因特异性引物配对使用。

“热稳定性的聚合酶”是指对热稳定性的或热抗性的酶，主要指DNA聚合酶，该酶在PCR扩增时，在升高的温度条件下不会发生失活。

寡核苷酸的“T_m”或“熔解温度”是指一段DNA中50％的分子与互补序列杂交时的温度。Tm值可以使用熟知的公式来计算(见，Maniatis，T.等人：Molecular cloning，Cold Spring Harbor，N.Y.：1982)。

“灵敏性”是指能够被检出模板的最小量(拷贝数)。

“特异性”是指区分匹配模板和错配模板的能力。特异性经常表示为ΔCt＝Ct错配-Ct匹配。

“选择性”是指AS-PCR测定可用于测定混合物中的少数(通常是突变)等位基因而无来自多数(经常是野生型)等位基因的干扰的程度。选择性经常表示为比例或百分率。例如，能够在存在100个野生型模板的情况下检出1个突变模板的测定被称作具有1∶100或1％的选择性。

“Ct值”是指循环阈值，代表PCR扩增曲线由基线变为指数增长拐点时的循环数。

“德尔塔Ct”或“ΔCt”是指信号通过固定阈值时，两个不同样品或反应之间的循环数差异。ΔCt是达到指数扩增时，两个不同样品或反应之间的循环数差异。ΔCt可用于鉴定匹配引物与错配引物之间的特异性。

本发明涉及快速检测ApoE基因多态性的引物和试剂盒。具体地讲，本发明是基于Past-PCR（Perfect allele-specific Taqman PCR）方法的基础上，成功应用于ApoE基因rs429358位点和rs7412位点的检测。所谓Past-PCR是由检测基因SNP或突变的高特异性AS-PCR方法和Taqman探针的荧光PCR技术结合而成，其每个位点仅用一条Taqman探针，在多数的情况下，这条探针为常规的Taqman探针，仅在部分基因中因富含AT碱基的特殊序列，采用Taqman-MGB或LNA等探针，除此之外无需任何额外的封闭探针或报告探针，Past-PCR方法将AS-PCR和Taqman荧光PCR两种方法完美结合，并使两者的优点得到了极度的发挥，具体表现在AS-PCR方法中，在不增加任何成本的情况下，靠引物设计和独特的验证方法成功消除了非特异性扩增，使得结果判断呈现出“全和无”方式，即有就有，没有就没有，使得结果的判断简单而准确，这是对过去的AS-PCR方法最大的改进，也是对AS-PCR方法为人所诟病的有效弥补，从而将AS-PCR方法的优点发挥到了极致，是该方法所能达到的最高境界。众所周知，Taqman荧光PCR具有密闭性检测的特点，无需反应完结后的处理，不仅节省了时间，而且减少了PCR产物污染的风险，探针的第二次识别靶序列保障了检测的特异性和可靠性，还可用于对基因的定量检测，达到了临床使用标准等优点。Past-PCR方法具有AS-PCR方法和Taqman荧光PCR方法的双重优点，并且是这两种方法结合在一起时，检测组份所能达到的最简化构成，因此，我们将其称作为完美的等位基因特异性Taqman PCR。

基于Past-PCR方法，发明了用于检测ApoE基因多态性的试剂盒，其基本组成为：(a)高度特异的等位基因特异性引物；(b)荧光检测探针；(c)与等位基因特异性引物配对的另一条特异性引物。

其中，本发明提供的一种检测ApoE基因多态性的引物，包括分别检测rs429358位点和rs7412位点的两组引物；

第一组引物：

第二组引物：

同时还提供了含有上述引物的检测试剂和试剂盒，以至少解决以往试剂盒存在的结果判读复杂、检测仪器价格高，操作难度大，存在一定假阴性和假阳性，检测成本高，临床普及程度低，不能同时大规模检测临床标本等问题，实现了检测简单、快速、准确、廉价的理想要求，为科研和临床基因型和基因突变分析提供了强有力的工具。

优选，所述试剂盒还包括分别与上述第一组引物和第二组引物配合使用的第一探针和第二探针，且所述第一探针和第二探针均为Taqman探针，其中，所述第一探针具有SEQ No.22序列，所述第二探针具有SEQ No.31序列，整个试剂盒每个反应管中仅使用一条Taqman探针，别无其他诸如封闭探针等，降低试剂盒的成本。

所述检测管家基因GAPDH的上游引物具有SEQ No.26序列；所述检测管家基因GAPDH的下游引物具有SEQ No.27序列；所述检测管家基因GAPDH的探针具有SEQ No.28序列；其中，将dNTPs和Taq酶混合，能够保障dNTPs的稳定性，使其可经受多次反复冻融的考验；检测管家基因GAPDH的上游引物、下游引物和探针是用于作为内参照，为防止检测时出现假阴性；阳性质控品为CT型人基因组DNA；空白对照为灭菌超纯水。

进一步优选，所述rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一C型PCR反应管内；所述rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一T型PCR反应管内；所述rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二T型PCR反应管内；所述rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二C型PCR反应管内，按最佳的反应用量预先包被在PCR反应管中，每一个反应管中实际包被六条寡核甘酸，即一条针对等位基因的一种特异性上游引物，一条探针（通常为Taqman探针）、一条共用特异性下游引物、一条检测管家基因GAPDH的上游引物、一条检测管家基因GAPDH的下游引物和一条检测管家基因GAPDH的探针，这样为了检测一个位点不同的基因多态性，每个位点常需要分别包被两管或两管以上的PCR反应管，它们中探针、共用特异性下游引物、检测管家基因GAPDH的上游引物、检测管家基因GAPDH的下游引物和检测管家基因GAPDH的探针是一样的，不同的仅是鉴定等位基因不同型别的特异性上游引物，这样预先包被避免了操作者出现位点配错的可能，而且节约了大量操作时间。

进一步优选，所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；最为优选，所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm。

由于在等位基因特异性引物内引入了错配的碱基，使其在反应时的效率下降，不同的引物下降程度不同，通常要增加10至20个循环才能达到没有错配时的效果，保证检测的灵敏度，优选PCR反应按两步扩增循环程序进行，且第一步扩增的循环数小于第二步扩增的循环数，所述第一步扩增的退火温度高于第二步扩增的退火温度，第一步扩增使用较高退火温度，第二步扩增使用较低退火温度，目的是增加第一步扩增时引物退火时的特异性，从而保证Past-PCR检测高度特异性的目的；具体而言优选所述PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，55℃~68℃ 退火 32s，循环10~15次；第二步，95℃ 变性 5s，50℃~65℃ 退火、延伸 32s，循环30~50次，收集荧光信号；更为优选PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，63℃ 退火 32s，循环15次；第二步，95℃ 变性 5s，60℃ 退火 32s，循环40次，收集荧光信号。

具体的检测过程为：

1）将待检测样品分别放入两组用于检测两个不同位点的PCR反应管中，且每组设有两个PCR反应管，分别预先包被有野生型特异性上游引物、共用的下游引物、探针、检测管家基因GAPDH的上游引物、检测管家基因GAPDH的下游引物和检测管家基因GAPDH的探针以及突变型特异性上游引物、共用的下游引物、探针、检测管家基因GAPDH的上游引物、检测管家基因GAPDH的下游引物和检测管家基因GAPDH的探针，并加入PCR缓冲液、dNTPs和Taq酶混合液、灭菌超纯水和基因组DNA，盖紧管盖，在荧光定量PCR仪上进行反应，并收集荧光信号；

2）分别观察各组中的两个PCR反应管：

当所述荧光信号仅在突变型反应管在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，表明待检测样品为突变等位基因纯合子；

当所述荧光信号仅在野生型反应管在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，表明待检测样品为野生等位基因纯合子；

当所述荧光信号在突变型反应管和野生型反应管均有在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，表明待检测样品为杂合；

如果检测样本突变型和野生型反应管在FAM通道均无对数增长的扩增曲线，可能样本或操作存在问题，或者样本DNA浓度过低，应重新提取样本DNA进行试验。

综合两组的反应情况，就能得出ApoE的六种不同的基因型。

下面详述检测过程中各组份介绍：

（一）等位基因特异性引物：

等位基因特异性引物的等位基因特异性核苷酸部分互补于基因的一个等位基因位点，但不互补于该基因的另一个等位基因位点。通常而言，等位基因特异性引物的等位基因特异性核苷酸部分位于等位基因特异性引物的3’端的末位碱基。在某些情况下，等位基因特异性核苷酸部分也可位于等位基因特异性引物3’末端的其他碱基位置。

在一些情况下，等位基因特异性引物除3’末端互补于等位基因位点有所变化外，我们常常要在引物的其他位置引入错配的碱基，如在引物3’端倒数第二位或第三位引入碱基错配，或第二和第三位的连续错配；针对不同的SNP或突变位点，在引物3’端倒数第二位或第三位引入碱基错配的基础上，还可在引物的其它位点增加碱基错配来满足反应特异性的要求，越远离3’端，增加错配的碱基数越多，在5’端可达最多。等位基因特异性引物的长度主要依据其T_m值来决定，通常而言其T_m值比PCR循环的退火温度低大约5-20℃。

两条检测对应基因多态性的等位基因特异性上游引物，除3’端检测的位点其碱基不同外，其余序列尽可能相同，两条引物的T_m值也尽可能一致。

低T_m的等位基因特异性引物(ASP)有更高的特异性。一般情况下，等位基因特异性引物为短寡核苷酸，其长度是大约15-30，其T_m是大约40℃至60℃，比扩增过程中使用的PCR循环条件的退火/延伸温度低大约5℃至20℃。

由于等位基因特异性引物的设计和筛选十分重要，好的引物需要从众多待选的引物中选出，因此我们建立了一个筛选的方法，其等位基因特异性引物的具体筛选过程如下：

⑴设计外围引物及PCR扩增：首先在待检基因突变点或SNP位点的上下游，设计一对PCR扩增引物，然后用该对引物，对目的基因进行常规的PCR反应，其中扩增片段长度可在几十至数千碱基对，优选长度为200至500碱基对；

⑵克隆PCR产物：将扩增出的PCR产物，利用AT克隆的方法，重组到普通的T载体质粒中，得到重组质粒，其中得到的重组质粒可以进行测序验证，从而确保PCR产物的正确性；

⑶构建重组突变体：根据生物信息学所提供的信息，采用分子克隆技术，将突变体的序列，构建至上述得到的重组质粒中，将构建的重组突变体进行测序验证序列，从而确保其正确性；

⑷设计及筛选突变位点特异性引物：设计两条等位基因特异引物，一条引物的3’端同突变序列互补，另一条引物的3’端同正常序列互补；然后分别用等位基因特异性引物和对应的常规PCR共同下游引物配对，以上述构建好的重组突变体作为反应模板，利用荧光定量PCR仪，对反应体系，进行筛选；其中，反应可采用荧光染料，如SYBR GREEN，也可采用特异性的Taqman荧光探针，按照所加样品量为0.1微克全基因组DNA的标准进行筛选，其具体的筛选内容如下：

（a）设定PCR反应条件：首先设定PCR反应的退火温度完全一致，具体温度为55℃～68℃，PCR循环次数为40次，PCR反应的酶和缓冲体系均优化后固定不变，此反应条件的设定是为了方便同时检测多种基因突变；

（b）特异性筛选：采用突变型的引物以野生型的重组质粒为模板，筛选出的引物其Ct大于40；

其中循环阈值的确定原因如下，突变型引物在野生型模板发生非特异性扩增比野生型引物在野生型模板发生特异性扩增多19个循环，按照临床实际检测时，所加样品量为0.1微克全基因组DNA的标准，我们通过下列公式，拷贝数=(DNA量ng×6.022×10²³)/(长度bp×10⁹×660)，其中全基因组DNA的长度为30亿对碱基，因此0.1微克全基因组DNA的拷贝数为：3.09×10⁴，反映在荧光定量PCR的Ct（定量循环阈值）大概为21，这样我们得到第二个筛选指标，即用突变型的引物，在野生型的重组质粒为模板时，所得的Ct 应该大于40，方能保证检测不会出现假阳性，两者的扩增效率相差为40-21=19个循环，即扩增效率相差19个循环以上，将成为我们判断等位基因特异性引物特异性好坏的客观指标。我们知道当引物3’端与模板错配时，延伸效率将下降10³-10^6.6倍，换算成反应循环数则下降约13至27个循环，这就是我们能筛选出理想引物的理论依据，因为不进行引物筛选，19-13=6个循环，势必产生假阳性，该引物的特异性就不好，而19-27=-8，不可能产生假阳性，有8个循环数的范围供我们对引物进行筛选。按照这一要求，我们设计一系列等位基因特异性引物，从长短上、从靠近3’端人为引入碱基错配上着手，加上其配对的下游引物，利用构建好的野生型和突变型重组质粒，分别进行荧光定量PCR反应的交叉筛选，即当用突变引物与野生型的模板进行扩增时，与用野生型引物同野生型模板的反应要多用19个循环数以上，反之亦然，那么这样的引物就具备高度的特异性。

（c）敏感性筛选：将筛选出的特异性引物用与重组突变型质粒作敏感性试验，将检测灵敏度小于10-1000个拷贝的特异性引物筛选出来，即为所需的突变特异性引物。

通过以上几方面的筛选，所得到的等位基因特异性引物将具备高度特异和高度敏感的理想引物。

（二）检测探针：

在一些情况下，检测探针的T_m值大约为60℃至70℃，最佳为63℃，探针长度根据其T_m值决定。尽管有多种不同形式的探针可供选择，Taqman探针(Applied Biosystems，Foster City)常常是首选。在一些特殊的情况下，如检测序列中AT含量过高，可以采用提高T_m值的Taqman-MGB等类型的探针。

共用的特异性引物，在一些情况下，共用的特异性引物的T_m值大约为50℃至70℃，最佳为60℃，其长度由其T_m值决定，一般在15-25碱基之间。

（三）其他成分：

本发明使用的DNA聚合酶是Taq酶，及其突变体、衍生物或片段，也可是其他的耐热DNA聚合酶，在一些情况下，也可采用Hotstart Taq酶，以增加反应的特异和高效性。

本发明中所提供的针对ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法，主要是针对等位基因特异性引物PCR扩增法的缺点，利用分子克隆技术，事先分别构建含待检基因野生型和突变型的重组质粒，以此重组质粒为阳性模板，筛选确定特异地分别与3'末端突变位点或野生位点碱基互补的两条特异引物，一旦筛选出的特异引物序列，将是我们检测体系的关键元素。本发明的上述产品，可用于任何型号的荧光定量PCR仪，试剂成本同如今市面上的荧光定量PCR试剂相当，因此较好地克服了其他采用等位基因特异性引物PCR扩增法的不足。

本发明的优点在于：所述的引物和试剂盒具有操作简单，成本低，结果判断简单容易，灵敏度高，本试剂盒检测基因突变灵敏度可以达到1%（即目的基因的突变基因DNA 模板数占野生型DNA模板数的1%）；而直接测序中检测基因突变的灵敏度为20%（即目的基因的突变基因DNA 模板数占野生型DNA 模板数的20%）；Taqman探针技术保障了试剂盒的检测为闭管反应，有效的避免了假阳性的产生，其检测特异性也充分得到保证，而且检测快速方便，整个检测过程只有80分钟，而直接测序则需要2 天的时间，而且是开管操作，PCR产物污染的可能性大增。

本发明中PCR（Past-PCR）的实施步骤：

1.阳性质粒的构建

在待检测的ApoE基因多态性的两个突变位点的上下游各设计一对PCR引物，其扩增片段的长度可在500bp的范围内，用gDNA为模板，采用常规PCR方法，扩增出这一片段，通过AT克隆的方式，将该片段克隆至测序的质粒中，通常用Invitrogen的PCR2.1 Topo T载体试剂盒，操作按说明书进行，也可用其他厂家的T载体试剂盒，甚至可用自己制备的T载体质粒。得到的阳性克隆，经测序验证，证明序列的正确性，然后采用Stratagene 公司的Quickchange试剂盒，设计对应位点的另一个基因型引物，通过Quickchange的方法，得到该突变型别的阳性克隆，操作按说明书进行，所得到的阳性质粒都必须经测序验证为正确方可进入下一步的使用。Taqman定量质粒，并用作模板以验证给定的测定法的灵敏性、线性动态范围、特异性。

2.等位基因特异性引物(ASP)的设计和筛选

在引物3’末端分别互补于对应的基因突变碱基位点，而在引物3’末端倒数第二位或第三位引入碱基错配，或第二和第三位的连续错配；针对不同的SNP或突变位点，在引物3’端倒数第二位或第三位引入碱基错配的基础上，还可在引物的其它位点增加碱基错配来满足反应特异性的要求，越远离3’端，增加错配的碱基数越多，在5’端可达最多的等位基因特异性引物。

ASP的筛选是利用构建好的野生型和突变型重组质粒，分别进行荧光定量PCR反应的交叉筛选，即当用突变型引物与野生型的模板进行扩增时，与用野生型引物同野生型模板的反应要多用19个循环数以上，反之亦然，那么这样的引物就具备高度的特异性。将筛选出的特异性引物用与对应的重组质粒作敏感性试验，检测灵敏度小于10-1000个拷贝的引物即达到检测的灵敏度要求，满足上述两个条件的引物就是我们选出的ASP引物，可进行下一步的检测。

3.扩增试剂准备及加入被检测样品

（1）从试剂盒中取出各组成成分，室温缓慢融化PCR缓冲液、dNTPs和Taq酶混合液、阳性质控品、空白对照，颠倒摇匀。每个反应管需加入PCR缓冲液、Taq酶（dNTPs）、灭菌超纯水和DNA样本。盖紧管盖，瞬时离心后转移到PCR扩增区。

（2）建议每次PCR反应均同时进行样本、阳性质控品、空白对照的分析，阳性质控品和空白对照的加样方法同样本加入方法。

4.PCR反应条件

每个反应管中 (反应终体积的范围可在10-50μl，最佳在20-25μl反应体积)包含PCR缓冲液（10mM Tris-HCl pH8.3,50mM KCl, 0.1%Triton X-100，2.0mM MgCl₂，5%DMSO），10-100ng DNA或1,000,000个拷贝的质粒DNA，50nM-400nM一个共同的通用特异性Taqman探针，一个50nM-2uM共同的通用反向特异性下游引物，50nM-2uM不同等位基因特异性引物，1pm-20pm检测管家基因GAPDH的上游引物，1pm-20pm检测管家基因GAPDH的下游引物，0.05pm-5pm检测管家基因GAPDH的探针，再加上1.5单位Taq聚合酶，200μM dNTPs。

1）、循环条件设置

为使荧光曲线更加美观，建议从第二步开始收集荧光信号。

2）、仪器检测通道选择

荧光信号采集温度设为60℃，具体设置方法请参照相应仪器使用说明书。

3）、检测类型设定：空白对照设为“NTC”，阳性质控品和待检样本设为“Unknown”。

5.结果分析

分别分析两组检测不同位点多态性的PCR反应管，如果检测样本仅有突变型反应管在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，可判定样本为突变型纯合子；如果检测样本仅有野生型反应管在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，可判定样本为野生型纯合子；如果检测样本突变型和野生型反应管在FAM通道均有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，可判定样本为杂合子；由于本方法结果是“全或无”，结果极易判断，哪一个管有反应，哪一个管就是阳性。

具体实施例

下面以对ApoE基因型检测的情形为例，具体对本发明作进一步详细的说明。

实施例1：针对ApoE基因多态性检测的野生型和突变型阳性质粒的制备

人ApoE的基因位于第19号染色体长臂13区2带（19q132）上，基因全长为3.7kb，含有4个外显子和3个内含子，其cDNA长为 1.163kb。ApoE蛋白前体由317个氨基酸组成，含有18个氨基酸信号肽，成熟的ApoE蛋白由299个氨基酸组成。ApoE基因有两个SNPs，rs429358和rs7412分别位于密码子112（c.388 T>C）和158（c.526 C>T）。

首先我们从基因库中调出ApoE 基因rs429358位点前后的基因序列，并将多态性位点用双下划线标记，在ApoE基因rs429358位点的上下游适当位置（用黑体字和下划线标示），设计一对克隆引物，扩增片段为218bp，多态性位点包含其内，基因序列显示如下：

SEQ No.1：

gtctctctggctcatccccatctcgcccgccccatcccagcccttctccccgcctcccactgtgcgacaccctcccgccctctcggccgcagg gcgctgatggacgagaccatg aaggagttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcggaggagacgcgggcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggacgtg t gcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcaggccatgctcggc cagagcaccgaggagctgcg ggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcc

同样ApoE 基因rs7412位点扩增片段为341bp，基因序列如下：

SEQ No.2：

gcggcgaggtgcaggccatgctcggccagagcaccgaggagctgcgggtgcgcctcg cctcccacctgcgcaagctg cgtaagcggctcctccgcgatgccgatgacctgcagaag c gcctggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatccgcgagcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccactgtgggctccctggccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcggatggaggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcggaggtgcgcgccaagctggag gagcaggcccagcagatacgc ctgcaggccgaggccttccaggcccgcctcaagagctg

实验步骤如下：

1）提取基因组DNA

用国内天根公司或Qiagen公司的基因组DNA提取试剂盒，提取基因组DNA，具体操作步骤按说明书进行。制备好的DNA标本，经紫外分光光度计测定浓度，将其浓度调整到50ng/μl，保存于-20℃，或直接进行下面的反应。

2）AT克隆获得阳性质粒

首先在突变点上下游设计克隆引物，见表1：

表1. ApoE基因多态性位点野生型克隆引物

在12.5μl 的2×PCR Master Mix (Fermentas) 的PCR扩增体系，加入10μM上游引物和10μM下游引物，5%DMSO以及基因组DNA50ng，加水至总体积25μl，PCR反应条件设定为95℃预变性3min，95℃变性10s，60℃退火及延伸30s，总共35个循环，反应结束后取15μl反应产物，进行浓度2.5%的凝胶电泳，电泳结束后观察，条带与预测的大小相符，表明扩增成功。采用美国Life公司的pCR2.0 TOPO T载体，按其操作说明，通过TA克隆的方式，分别获得含有ApoE基因rs429358位点和rs7412位点的野生型阳性质粒，具体的基因序列如下，其中，两个ApoE基因的阳性质粒中多态位点，分别显示为t和c，说明为野生型，测序证明所获质粒正确。

含有ApoE基因rs429358野生型位点（SEQ No.7）：gtctctctggctcatccccatctcgcccgccccatcccagcccttctccccgcctcccactgtgcgacaccctcccgccctctcggccgcagggcgctgatggacgagaccatgaaggagttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcggaggagacgcgggcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggacgtg t gcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcaggccatgctcggccagagcaccgaggagctgcgggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcc

含有ApoE基因rs7412野生型位点（SEQ No.8）

cctcccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcctccgcgatgccgatgacctgcagaag c gcctggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatccgcgagcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccactgtgggctccctggccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcggatggaggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcggaggtgcgcgccaagctggaggagcaggcccagcagatacgc

3）快速突变法获得突变质粒

然后，采用产生快速突变的方法（Quickchange,QC），设计突变引物，引物序列见表2.

表2. 获得ApoE基因多态性位点突变型克隆引物

按照（Stratagene公司）Quickchange 试剂盒的反应条件和步骤，完成突变体的构建，所得到的，具体的基因序列如下，经测序验证含有ApoE基因rs429358位点的重组质粒，其多肽位点显示为c，含有ApoE基因rs7412位点的重组质粒其多态位点显示为t，均为突变型，然后将突变型与野生型质粒分别置-20℃保存备用。

含有ApoE基因rs429358突变型位点（SEQ No.13）：gtctctctggctcatccccatctcgcccgccccatcccagcccttctccccgcctcccactgtgcgacaccctcccgccctctcggccgcagggcgctgatggacgagaccatgaaggagttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcggaggagacgcgggcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggacgtg c gcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcaggccatgctcggccagagcaccgaggagctgcgggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcc

含有ApoE基因rs7412突变型位点（SEQ No.14）：

cctcccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcctccgcgatgccgatgacctgcagaag t gcctggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatccgcgagcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccactgtgggctccctggccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcggatggaggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcggaggtgcgcgccaagctggaggagcaggcccagcagatacgc

实施例2：等位基因特异性引物（ASP）的设计和特异性筛选

针对ApoE基因的rs429358位点，设计野生型和一系列突变型特异性引物如下：

ApoE-rs429358-WT-F: cgcggacatggaggacgagt（SEQ No.15）

ApoE-rs429358-mut-F: cgcggacatggaggacgagc（SEQ No.16）

ApoE-rs429358-mut-F1:ggacatggaggacgtcc（SEQ No.17）

ApoE-rs429358-mut-F2: cggacatggaggacgagc（SEQ No.18）

ApoE-rs429358-mut-F3: gcggacatggaggacgtcc（SEQ No.19）

ApoE-rs429358-mut-F4: cggacatggaggacgtcc（SEQ No.20）

ApoE-rs429358-mut-F5:gcggacatggaggacgagc（SEQ No.21）

同时设计合成Taqman 特异性探针（SEQ No.22）：FAM-ccgcggcgaggtgcaggccatgc-BHQ1。相关引物和探针在生工生物工程（上海）有限公司进行合成。

然后分别用上述7条引物与ApoE-rs429358-R（SEQ No.23）: 5’-cgcagctcctcggtgctctg-3’引物配对，加上Taqman 特异性探针，加入前述构建所得到的野生型重组质粒约3万个拷贝为模板，在荧光定量PCR仪上进行引物特异性筛选，反应条件设定为第一步95℃2min 预变性，95℃ 5s，63℃ 30s，共15个循环，不收集荧光信号，第二步95℃ 5s，60℃ 30s，共40个循环，收集荧光信号，结果见下图1。

其中，图1中1~7曲线分别代表ApoE-rs429358-WT-F、ApoE-rs429358-mut-F、ApoE-rs429358-mut-F1、ApoE-rs429358-mut-F2、ApoE-rs429358-mut-F3、ApoE-rs429358-mut-F4、ApoE-rs429358-mut-F5的PCR扩增曲线，从图1中我们看出1号野生型引物在29个循环产生扩增信号，2-6号引物的特异性较差，分别在30-33 个循环时产生非特异性扩增，同野生型引物（1号）扩增效率相差小于19个循环，第7号引物满足我们的要求，在40个循环时，仍然没有扩增，同野生型引物扩增效率相差大于19个循环。为了与突变引物有更好的可比性，我们参照第7号引物重新设计野生型的引物为：gcggacatggaggacgagt（SEQ No.24）。

实施例3：ASP灵敏度筛选

我们再用突变型引物分别同ApoE-rs429358-R引物配对，用突变型重组质粒，按照10⁶，10⁵，10⁴，10³，10²，10，0作梯度稀释，加上Taqman 特异性探针，在荧光定量PCR仪上进行灵敏度验证。第7号突变型特异性引物能检测出100个拷贝的突变体，因此这一引物就是按我们的方法筛选出检测ApoE多态性位点的最佳引物，具体见表3所示。

按照相同的方法，我们设计筛选得到ApoE rs7412位点特异性突变和野生型引物，共同下游引物以及探针，具体见表3所示。

实施例4：预制的本发明PCR（Past-PCR）反应管

按照每个突变位点两个反应管的要求，即一管检测野生型位点，另一管检测突变型位点，将适宜浓度的引物探针预先包被于0.2ML乳白色的PCR管中。

为了防止检测时出现假阴性，在每个反应管中均预先包被有检测管家基因GAPDH的上游引物、下游引物和探针，其中，GAPDH基因序列如下：

cctccgggaaactgtggcgtgatggccgcggggctctccagaacatcatccctgcctctactggcgctgccaaggctgtgggcaaggtcatccctgagctgaacgggaagctcactggcatggccttccgtgtccccactgccaacgtgtcagtggtggacctgacctgccgtctagaaaaacctgccaaatatgatgacatcaagaaggtggtgaagcaggcgtcggagggccccctcaagggcatcctgggctacactgagcaccaggtggtctcctctgacttcaacagcgacacccactcctccacctttgacgctggggctggcattgccctcaacg（SEQ No.25）

检测管家基因GAPDH的上游引物序列为：ggctgtgggcaaggtcatc（SEQ No.26）

检测管家基因GAPDH的下游引物序列为:ctccgacgcctgcttcaccac(SEQ No.27）

检测管家基因GAPDH的探针序列为：ccttccgtgtccccactgccaacgt(SEQ No.28)

其中，检测管家基因GAPDH的探针5’端用HEX荧光标记，3’端用BHQ标记，由于HEX和VIC属于同一通道检测，而许多仪器往往采用VIC标示，因此文中用VIC叙述。

PCR反应管中具体的细节见表3.

表3. 预制ApoE 多态性位点 PCR反应管的组分和浓度

由于我们预先把突变型和野生型上游引物、探针、共同下游引物、检测管家基因GAPDH的上、下游引物和检测管家基因GAPDH的探针包被在编好号的不同反应管中，有效避免了使用者的操作误差，同时大大提高了操作效率，极大方便了在临床上的实际使用。

实施例5：标本的验证

采集正常人群的外周血或口腔脱落细胞标本，并用Qiagen公司的基因组DNA提取试剂盒，提取基因组DNA，具体操作步骤按说明书进行。制备好的DNA标本，经紫外分光光度计测定浓度，将其浓度调整到100ng/μl备用。

针对于rs7412位点和rs429358位点，两组检测不同的位点PCR反应管，我们分别用筛选出的突变型特异性引物，同时用野生型引物作对照，在同一个PCR反应板上，每两个反应管检测一个基因位点，其中一个是突变位点，另一个是野生型位点。每个反应管20μl反应体积中包含10mM Tris-HCl pH8.3，50mM KCl，0.1%Triton X-100，2.0mM MgCl₂，5%DMSO，100ng人基因组DNA，100nM一个特异性Taqman探针，500nM共用特异性下游引物，500nM野生型特异性上游引物或突变型特异性上游引物，5pm检测管家基因GAPDH的上游引物，5pm检测管家基因GAPDH的下游引物，2.5pm检测管家基因GAPDH的探针，再加上1.5单位Taq DNA聚合酶，200μM dNTPs，其余为去离子水。

第一步PCR反应条件是：37℃ 2min，95℃ 2min预变性，然后95℃ 5s，63℃ 32s ，15个循环，此步不收集荧光；第二步PCR反应条件是：95℃ 5s，60℃ 32s，共40个循环，此步收集荧光。为了方便起见，我们将ApoE 多态性正常而多见位点认定为野生型（rs429358位点为t 、rs7412位点为c），而少见的位点则为突变型（rs429358位点为c、rs7412位点为t），将检测rs7412位点和rs429358位点的野生型和突变型特异性引物对应的PCR反应管按照先后次序命名为：rs429358-WT（t）、rs429358-MUT（c）以及rs7412-WT（c）、rs7412-MUT（t），如果对应的反应管在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，就判断为该位点阳性，单一信号就为tt或cc，视反应管的引物编号来定，如两管均在FAM通道有对数增长的扩增曲线，同时VIC通道有对数增长的扩增曲线，则c/t均为阳性，综合两个位点的反应情况，就能得出ApoE的六种不同的基因型，结果判断参照表4。

表4.ApoE基因的3个异构体（E2、E3、E4）产生的六种不同基因型

且每种异构体对应的PCR反应管中收集到的PCR扩增曲线见表5，其中√代表该PCR反应管中的信号曲线上升、空白代表该PCR反应管中信号曲线无反应

表5.三种异构体组合对应的扩增曲线表

1、按照上述方法进行E2/E2基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图2所示，其中，a曲线代表检测E2 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，c曲线代表检测E2 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，b曲线代表检测E2 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，d曲线代表检测E2 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线。

2、按照上述方法进行E2/E3基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图3所示，其中，e曲线代表检测E2和E3 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，h曲线代表检测E2和E3 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，f曲线代表检测E2 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，g曲线代表检测E3 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线。

3、按照上述方法进行E2/E4基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图4所示，其中，i曲线代表检测E2 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，j曲线代表检测E4 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，k曲线代表检测E2 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，l曲线代表检测E4 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线。

4、按照上述方法进行E3/E3基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图5所示，其中，m曲线代表检测E3 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，o曲线代表检测E3 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，n曲线代表检测E3 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，p曲线代表检测E3 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线。

5、按照上述方法进行E3/E4基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图6所示，其中，q曲线代表检测E3 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，r曲线代表检测E4 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，s曲线代表检测E3和E4 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，t曲线代表检测E3和E4 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线。

6、按照上述方法进行E4/E4基因型检测，其具体基因序列为：

收集到的FAM通道PCR扩增曲线图，如图7所示，其中，u曲线代表检测E4 rs429358位点突变型PCR反应管中的扩增曲线，w曲线代表检测E4 rs429358位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，v曲线代表检测E4 rs7412位点野生型PCR反应管中的扩增曲线，x曲线代表检测E4 rs7412位点突变型PCR反应管中的扩增曲线。

同时上述6个检测案例中，当VIC通道管家基因GAPDH有对数增长的扩增曲线，如图8所示，同时FAM通道有对数增长的扩增曲线，则此次实验结果有效。

因此，从上述的检测试验可见，本试剂盒的检测结果为“全或无”的结果，如果对应的反应管在FAM通道和VIC通道均有对数增长的扩增曲线，就判断为该位点阳性，单一信号就为tt或cc，视反应管的引物编号来定，如两反应管均在FAM通道和VIC通道均有对数增长的扩增曲线，则c/t均为阳性，综合两个位点的反应情况，就能得出ApoE的六种不同的基因型，该试剂盒的检测结果判读简单，减少了以往试剂盒的检测结果需要进行ΔCt等一系列复杂计算的过程，降低错判率，同时还有效避免了以往试剂盒检测结果中存在假阴性假阳性现象的发生，对试剂盒的发展做出了巨大的突破性贡献。此外本发明提供的试剂盒可用于任何型号的荧光定量PCR仪，检测仪器简单，一个位点一条Taqman探针，成本低，为科研和临床ApoE基因分型和基因突变分析提供了强有力的工具。

序列表

<110> 沈阳优吉诺生物科技有限公司

<120> 检测ApoE基因多态性的引物、试剂盒及其PCR方法

<130> 2015

<160> 56

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 355

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 1

gtctctctggctcatcccca tctcgcccgc cccatcccagcccttctccc cgcctcccac 60

tgtgcgacaccctcccgccctctcggccgc agggcgctga tggacgagac catgaaggag 120

ttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcgga ggagacgcgg 180

gcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggac 240

gtgtgcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcagg ccatgctcgg ccagagcacc 300

gaggagctgcgggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagc tgcgtaagcg gctcc 355

<210> 2

<211> 436

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 2

gcggcgaggtgcaggccatgctcggccagagcaccgaggagctgcgggtg cgcctcgcct 60

cccacctgcgcaagctgcgtaagcggctcc tccgcgatgc cgatgacctg cagaagcgcc 120

tggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatccgcg 180

agcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccactgtg ggctccctgg 240

ccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcggatgg 300

aggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcggagg 360

tgcgcgccaagctggaggagcaggcccagcagatacgcctgcaggccgag gccttccagg 420

cccgcctcaagagctg 436

<210> 3

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 3

gcgctgatggacgagaccatg 21

<210> 4

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 4

cgcagctcctcggtgctctg 20

<210> 5

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 5

cctcccacctgcgcaagctg 20

<210> 6

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 6

gcgtatctgctgggcctgctc 21

<210> 7

<211> 355

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 7

gtctctctgg ctcatcccca tctcgcccgc cccatcccag cccttctccc cgcctcccac 60

tgtgcgacaccctcccgccctctcggccgc agggcgctga tggacgagac catgaaggag 120

ttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcgga ggagacgcgg 180

gcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggac 240

gtgtgcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcagg ccatgctcgg ccagagcacc 300

gaggagctgcgggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagc tgcgtaagcg gctcc 355

<210> 8

<211> 341

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 8

cctcccacctgcgcaagctg cgtaagcggc tcctccgcga tgccgatgac ctgcagaagc 60

gcctggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatcc 120

gcgagcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccact gtgggctccc 180

tggccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcgga 240

tggaggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcgg 300

aggtgcgcgccaagctggaggagcaggcccagcagatacgc 341

<210> 9

<211> 28

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 9

catggaggacgtgcgcggccgcctggtg 28

<210> 10

<211> 28

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 10

caccaggcggccgcgcacgtcctccatg 28

<210> 11

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 11

gacctgcagaagtgcctggcagtgtac 27

<210> 12

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 12

gtacactgccaggcacttctgcaggtc 27

<210> 13

<211> 355

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 13

gtctctctgg ctcatcccca tctcgcccgc cccatcccag cccttctccc cgcctcccac 60

tgtgcgacaccctcccgccctctcggccgc agggcgctga tggacgagac catgaaggag 120

ttgaaggcctacaaatcggaactggaggaacaactgaccccggtggcgga ggagacgcgg 180

gcacggctgtccaaggagctgcaggcggcgcaggcccggctgggcgcggacatggaggac 240

gtgcgcggccgcctggtgcagtaccgcggcgaggtgcaggccatgctcgg ccagagcacc 300

gaggagctgcgggtgcgcctcgcctcccacctgcgcaagc tgcgtaagcg gctcc 355

<210> 14

<211> 341

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 14

cctcccacct gcgcaagctg cgtaagcggc tcctccgcga tgccgatgac ctgcagaagt 60

gcctggcagtgtaccaggccggggcccgcgagggcgccgagcgcggcctcagcgccatcc 120

gcgagcgcctggggcccctggtggaacagggccgcgtgcgggccgccact gtgggctccc 180

tggccggccagccgctacaggagcgggcccaggcctggggcgagcggctgcgcgcgcgga 240

tggaggagatgggcagccggacccgcgaccgcctggacgaggtgaaggagcaggtggcgg 300

aggtgcgcgccaagctggaggagcaggcccagcagatacgc 341

<210> 15

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 15

cgcggacatggaggacgagt 20

<210> 16

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 16

cgcggacatggaggacgagc 20

<210> 17

<211> 17

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 17

ggacatggaggacgtcc 17

<210> 18

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 18

cggacatggaggacgagc 18

<210> 19

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 19

gcggacatggaggacgtcc 19

<210> 20

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 20

cggacatggaggacgtcc 18

<210> 21

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 21

gcggacatggaggacgagc 19

<210> 22

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 22

ccgcggcgaggtgcaggccatgc 23

<210> 23

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 23

cgcagctcctcggtgctctg 20

<210> 24

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 24

gcggacatggaggacgagt 19

<210> 25

<211> 342

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 25

cctccgggaa actgtggcgt gatggccgcg gggctctcca gaacatcatc cctgcctcta 60

ctggcgctgc caaggctgtg ggcaaggtca tccctgagct gaacgggaag ctcactggca 120

tggccttccg tgtccccact gccaacgtgt cagtggtgga cctgacctgc cgtctagaaa 180

aacctgccaa atatgatgac atcaagaagg tggtgaagca ggcgtcggag ggccccctca 240

agggcatcct gggctacact gagcaccagg tggtctcctc tgacttcaac agcgacaccc 300

actcctccac ctttgacgct ggggctggca ttgccctcaa cg 342

<210> 26

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 26

ggctgtgggcaaggtcatc 19

<210> 27

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 27

ctccgacgcc tgcttcacca c 21

<210> 28

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 28

ccttccgtgt ccccactgcc aacgt 25

<210> 29

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 29

cgatgccgat gacctgcaga act 23

<210> 30

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 30

gcgtatctgc tgggcctgct c 21

<210> 31

<211> 22

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 31

ccgcgtgcgg gccgccactg tg 22

<210> 32

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 32

cgatgccgat gacctgcaga acc 23

<210> 33

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 33

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 34

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 34

cctgcagaag tgcctggcag t 21

<210> 35

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 35

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 36

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 36

cctgcagaag tgcctggcag t 21

<210> 37

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 37

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 38

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 38

cctgcagaag tgcctggcag t 21

<210> 39

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 39

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 40

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 40

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 41

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 41

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 42

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 42

cctgcagaag tgcctggcag t 21

<210> 43

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 43

ggaggacgtg cgcggccgcc t 21

<210> 44

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 44

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 45

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 45

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 46

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 46

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 47

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 47

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 48

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 48

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 49

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 49

ggaggacgtg tgcggccgcc t 21

<210> 50

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 50

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 51

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 51

ggaggacgtg cgcggccgcc t 21

<210> 52

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 52

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 53

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 53

ggaggacgtg cgcggccgcc t 21

<210> 54

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 54

cctgcagaag cgcctggcag t 21

<210> 55

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 55

ggaggacgtg cgcggccgcc t 21

<210> 56

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工合成

<400> 56

cctgcagaag cgcctggcag t 21

Claims

1.一种检测ApoE基因多态性的引物，其特征在于，所述引物包括分别检测rs429358位点和rs7412位点的两组引物；

第一组引物：

第二组引物：

2.一种检测ApoE基因多态性的试剂，其特征在于：所述试剂含有权利要求1所述的引物。

3.一种检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒含有权利要求1所述的引物。

4.按照权利要求3所述检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒还包括分别与权利要求1所述第一组引物和第二组引物配合使用的第一探针和第二探针，且所述第一探针和第二探针均为Taqman探针，其中，所述第一探针具有SEQ No.22序列，所述第二探针具有SEQ No.31序列。

5.按照权利要求4所述检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒还包括PCR反应管、dNTPs和Taq酶混合液、PCR缓冲液、检测管家基因GAPDH的上游引物、检测管家基因GAPDH的下游引物、检测管家基因GAPDH的探针、阳性质控品和空白对照；

6.按照权利要求5所述检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一C型PCR反应管内；所述rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第一T型PCR反应管内；所述rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二T型PCR反应管内；所述rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针被预先包被于第二C型PCR反应管内。

7.按照权利要求6所述检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为50nM-2um、50nM-2uM、50nM-400nM、1pm-20pm、1pm-20pm、0.05pm-5pm。

8.按照权利要求7所述检测ApoE基因多态性的试剂盒，其特征在于：所述第一C型PCR反应管内rs429358位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第一T型PCR反应管内rs429358位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第一下游引物、所述第一探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针的浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；所述第二T型PCR反应管内rs7412位点的突变型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm；以及所述第二C型PCR反应管内rs7412位点的野生型特异性上游引物、所述共用的第二下游引物、所述第二探针、所述检测管家基因GAPDH的上游引物、所述检测管家基因GAPDH的下游引物和所述检测管家基因GAPDH的探针浓度分别为500nM、500nM、100nM、5pm、5pm、2.5pm。

9.一种权利要求1所述引物或权利要求3~8任一试剂盒的PCR方法，其特征在于：PCR反应按两步扩增循环程序进行，且第一步扩增的循环数小于第二步扩增的循环数，所述第一步扩增的退火温度高于所述第二步扩增的退火温度。

10.按照权利要求9所述的PCR方法，其特征在于，所述PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，55℃~68℃ 退火 32s，循环10~15次；第二步，95℃ 变性 5s，50℃~65℃ 退火、延伸32s，循环30~50次，收集荧光信号；或所述PCR反应的条件为：37℃ 2min，95℃ 2min 预变性；第一步扩增，95℃ 变性 5s，63℃ 退火 32s，循环15次；第二步，95℃ 变性 5s，60℃ 退火、延伸32s，循环40次，收集荧光信号。