具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步详细的描述,但本发明的实施方式不限于此。
实施例1
A、淀粉酶基因敲除质粒的构建
(1)重组片段的合成
重组片段由淀粉酶基因的前半部分(SEQ ID NO.2),潮霉素B抗性基因表达单元(SEQ ID NO.3),淀粉酶基因的后半部分(SEQ ID NO.4)组成,合成的重组片段(SEQ ID NO.1)用NcoI酶液2 μL(TakaRa购买),30 ℃酶切16 h。
(2)pCAMBIA1300提取及酶切
含有pCAMBIA1300质粒的大肠杆菌E.coli DH5α于37 ℃振荡培养12 h。取1.5 mL菌体于EP管,以4000 rpm离心3 min,弃上清液。加0.l mL溶液I(1%葡萄糖,50 mM EDTA pH 8.0,25 mM Tris-HCl pH 8.0)充分混合。加入0.2 mL溶液II(0.2 mM NaOH,1% SDS),轻轻翻转混匀,置于冰浴5 min。加入0.15 mL预冷溶液III(5 mol/L KAc,pH4.8),轻轻翻转混匀,冰浴5 min。以10000 rpm离心20 min,取上清液于另一新EP管。加入等体积的异戊醇,混匀后静置10 min。再以10000 rpm离心20 min,弃上清。用70%乙醇0.5 mL洗涤一次,抽干所有液体。待沉淀干燥后,溶于0.05 mL TE缓冲液中。
提取的pCAMBIA1300质粒50 μL加入NcoI酶液2 μL(TakaRa购买),30 ℃酶切16 h,酶切后65 ℃水浴10 min。
(3)连接
酶切的合成片段100 μL和酶切的质粒20 μL用5 μL T4 DNA ligase(TakaRa购买)16 ℃连接24 h。
B、感受态细胞制备
(1)将E.coli DH5α置于LB培养基上,在37 ℃下过夜培养。
(2)高温灭菌大的离心瓶(250-500mL)以备第二天摇瓶用。
(3)准备几瓶灭菌水(总量约1.5升),保存于冷冻室中以备第二天重悬浮细胞用。
(4)转移0.2-1 mL过夜培养物至装有20 mL LB(或其他营养丰富的培养基)的100 mL摇瓶。
(5)37 ℃下剧烈振荡培养6小时。
(6)监控O.D.600值(培养1小时后每半小时测定一次)。
(7)当O.D.600值达到0.5-1.0时,从摇床中取出摇瓶,置于冰上冷却15分钟。
(8)细胞在4 ℃ 5000g下离心15分钟,弃上清液。
(9)用灭菌的冰水重悬浮细胞。先用涡旋仪或吸液管重悬浮细胞于少量体积中(几毫升),然后加水稀释至离心管的2/3体积。
(10)照上面步骤重复离心,小心弃去上清液。
(11)照上面步骤用灭菌的冰水重悬浮细胞。
(12)离心,弃上清液。
(13)用20 mL灭菌的、冰冷后的10%甘油重悬浮细胞。
(14)照上面步骤离心,小心弃去上清液(沉淀可能会很松散)。
(15)用10%甘油重悬浮细胞至最终体积为2-3 mL。
(16)将细胞按150 μL等份装入微量离心管,于-80 ℃保存。
C、转化大肠杆菌
(1)在冰上解冻B步骤制得的感受态细胞。
(2)每100 μL感受态细胞添加10 μL连接的质粒,冰上培育约5分钟。
(3)转移DNA/细胞混合物至冷却后的2 mm电穿孔容器中。
(4)加载电转化仪,准备好300 μL LB培养基。
(5)对电穿孔容器进行脉冲(200 欧姆,25 μFd,2.5 千伏)(检查时间常数,应该在3以上)。
(6)立即添加300 μL的LB至电穿孔容器中。
(7)37 ℃下培养细胞40分钟至1小时以复原。
(8)转移细胞至含有卡那霉素(100 μg/mL)选择培养基上培养。长出为含有质粒pCAMBIA1300-gh的转化子。
D、淀粉酶基因敲除质粒的提取
C步骤得到的转化子37 ℃振荡培养12 h。取1.5 mL菌体于EP管,以4000 rpm离心3 min,弃上清液。加0.l mL溶液I(1%葡萄糖,50 mM EDTA pH 8.0,25 mM Tris-HCl pH 8.0)充分混合。加入0.2 mL溶液II(0.2 mM NaOH,1% SDS),轻轻翻转混匀,置于冰浴5 min。加入0.15 mL预冷溶液III(5 mol/L KAc,pH4.8),轻轻翻转混匀,冰浴5 min。以10000 rpm离心20 min,取上清液于另一新EP管。加入等体积的异戊醇,混匀后静置10 min。再以10000 rpm离心20 min,弃上清。用70%乙醇0.5 mL洗涤一次,抽干所有液体。待沉淀干燥后,溶于0.05 mL TE缓冲液中。
E、转化农杆菌
农杆菌感受态的制备:液体保存的农杆菌涂布于LB培养基上,28 ℃培养,等到单菌落长出后,挑取单菌落,接种于5 mL的液体培养基,28 ℃、150 r/m培养24 h,按照1:10的接种比例接种于5 mL新鲜的液体培养基中,28 ℃、150 r/m培养24 h。培养的菌体冰浴40 min,5000 r/m离心5 min,用10 mL的0.02 mol/L CaCl2菌体重悬菌体。再次5000 r/m离心5 min,菌体悬浮于1 mL的0.02 mol/L CaCl2溶液,放置于冰上保藏。
取提取的质粒pCAMBIA1300-gh 1 μL与40 μL的农杆菌感受态悬液混合,轻轻摇动混合5 min后,在液氮上迅速冰冻5 min,37 ℃水浴5 min。加入 1 mL液体LB培养基,28 ℃轻轻震荡4 h。菌体5000 r/m离心5 min,弃去上清液,加入LB培养基50 μL,震荡重新悬浮液体。液体涂布于含有100 μg/mL卡那霉素的LB平板上,长出的菌落接种于含有100 μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中28 ℃、150 r/m培养24 h。
F、农杆介导转化黑曲霉敲除淀粉酶基因
黑曲霉(从ATCC购买,菌株编号ATCC10582,Aspergillus niger)接种于PDA培养基斜面上,37 ℃培养 72 h,用灭菌的蒸馏水冲洗下孢子,孢子用蒸馏水稀释到108个孢子/mL。孢子与等体积的含有质粒pCAMBIA1300-gh的农杆菌混合均匀,加入乙酰丁香酮至200 μmol/L,30 ℃避光培养24 h。然后把孢子涂布在平板上(200 g土豆用1 L自来水煮沸30min,纱布过滤,滤液中加入20 g葡萄糖、20 g可溶性淀粉、20 g琼脂、200 μmol头孢噻肟、200 mg潮霉素B),30 ℃培养到长出菌落。菌落周围无透明圈的为基因敲除的菌株,筛选得到不产淀粉酶的菌株,酶活达到21.0 U/g。出发菌株在相同条件下的酶活为10.7 U/g。
纤维素酶酶活测定:以滤纸为底物,在50 ℃进行酶降解反应。在25 mL试管中加入10 mL pH 5.0的0.05 M柠檬酸缓冲液,加入滤纸条2 g(1 cm×5 cm),加入发酵液离心后上清液2 mL,在水浴锅中50 ℃保温30 min,然后用沸水煮沸5 min。用DNS法测定还原糖的含量。酶活定义为:每分钟释放出1 μmol还原糖所需要的酶量。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
SEQUENCE LISTING
<110> 湖北工业大学
<120> 一种基因敲除选育纤维素酶高产菌株的方法
<130> 1
<160> 4
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 2662
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 重组片段
<400> 1
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tgtttacggt agtaacgcta tttcctttcc gatagcaagt tctacggaga cggctgtcac 1200
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<211> 638
<212> DNA
<213> Aspergillus niger
<400> 2
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<211> 1465
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> 潮霉素B抗性基因表达单元
<400> 3
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