一种制备F基因型腮腺炎减毒活疫苗的方法
技术领域
本发明涉及疫苗制备领域,具体地说,涉及一种制备F基因型腮腺炎减毒活疫苗的方法。
背景技术
流行性腮腺炎,简称腮腺炎或流腮,是由腮腺炎病毒所致的急性全身性传染病。腮腺炎在世界范围内流行,全年均可发病,以冬春季为主。任何年龄均可发病,以5-15岁患者居多,1岁以下和15岁以上很少发病。感染后一般可获得终身免疫。感染潜伏期14~25日,平均18日。临床特征为腮腺肿痛,可伴发热、头痛等。早期患者及隐性感染者均为传染源。通过空气飞沫或直接接触唾液及唾液污染的食具玩具等传播。MuV是腮腺炎最常见的病因,可引起脑炎、睾丸炎、卵巢炎、无菌性脑膜炎、胰腺炎、心肌炎、乳腺炎、甲状腺炎等。大多数严重并发症在成人中较多见,青春期后男性患者中25%出现睾丸炎。有1-10%临床腮腺炎患者出现轻型无菌性脑膜炎,腮腺炎脑膜炎可造成永久性后遗症,包括瘫痪、癫瘸、颅神经麻痹、脑积水等。经发现,妊娠早期(3个月内)感染腮腺炎病毒的孕妇中有25%会自然流产,其发生率高于风疹病毒感染。
在我国,尽管已在大范围人群内使用了疫苗,但是近年来腮腺炎呈现一种高发的态势,以卫生部公布的全国法定传染病疫情为例,流行性腮腺炎连续几年均高居全国丙类传染病报告数的第二位。国际通用的Jeryl--Lynn株及我国使用的S79株减毒毒种均属于流行于60年代后的A基因型,而当前我国流行的腮腺炎病毒株主要为F基因型。不同基因型之间的中和抗原会有一定差异,可能会导致不完全交叉性保护。我国近10年来腮腺炎减毒活疫苗纳入免疫规划,无偿接种,但腮腺炎的发病率依然维持在较高水平。此外,目前我国常规使用的Jeryl-Lynn株及S79株减毒活疫苗均是以鸡胚细胞为基质进行生产而来的。鸡胚细胞(CEC)作为一种异源性细胞基质,可能带来过敏反应;可能携带传染性禽逆转录病毒;并且每批原代细胞质量不稳定,导致对同一个病毒灵敏度存在差异,影响产品的稳定性等不足。而使用人二倍体细胞进行腮腺炎减毒毒种的制备以及疫苗的植被,不存在致肿瘤的潜在危险性及其他不良反应,且有利于质量控制。
因而,通过人二倍体细胞基质对腮腺炎病毒进行培养和疫苗的制备,从而研究开发我国流行的绝对优势F基因型腮腺炎疫苗,对我国腮腺炎的防控具有重要意义和实际应用价值。
发明内容
本发明的目的是提供一种制备F基因型腮腺炎减毒活疫苗的方法。
为了实现本发明目的,本发明的一种制备F基因型腮腺炎减毒活疫苗的方法,将腮腺炎减毒毒株MHM-19接种到培养至单层的人胚肺二倍体细胞MHL-3中,待病毒增殖高峰期,冻融细胞释放病毒,离心去除细胞碎片,向离心后的病毒悬液中加入保护剂,制成F基因型腮腺炎减毒活疫苗半成品,将半成品进行冷冻干燥,即得F基因型腮腺炎减毒活疫苗成品。
其中,保护剂配方为:右旋糖酐6%、蔗糖15%、海藻糖9%、精氨酸0.3%、尿素1.5%、人白蛋白1%和谷氨酸钠1.5%,以PBS缓冲液配制。
具体地,上述方法包括如下步骤:
1)在细胞瓶内培养人胚肺二倍体细胞MHL-3至细胞长成单层,用0.25%胰蛋白酶溶液消化成单个细胞,去除细胞瓶内的胰蛋白酶溶液,加入MEM细胞培养液稀释至105个细胞/mL,然后接种于CELLFACTORIES(丹麦NUNC公司)或CELL STACK(美国CORNING公司),置于37℃培养;
2)待MHL-3细胞长成单层弃去培养液,用Earl’s液清洗细胞表面;
3)按MOI=0.1接种F基因型腮腺炎减毒毒株MHM-19的病毒悬液,加入MEM维持液置于33℃培养;
4)培养48h后,弃去维持液,用Earl’s液清洗细胞表面,加入MEM维持液置于33℃培养;
5)待MHL-3细胞完全病变(病变达++++),冻融三次,释放病毒,制成腮腺炎病毒悬液,4000rpm/min、4℃离心,去除细胞碎片;向离心后的病毒悬液中加入保护剂,制成F基因型腮腺炎减毒活疫苗半成品;
6)将半成品分装并进行冷冻干燥,制成F基因型腮腺炎减毒活疫苗成品。
步骤1)中使用丹麦NUNC公司生产的CELL FACTORIES或美国CORNING公司生产的Cell STACK,译为细胞工厂或细胞培养室,两者培养原理相同,外观尺寸略有不同。细胞工厂可有效节省空间和培养液,保证操作的无菌性。
步骤1)中所述MEM培养液中含有0.03%谷氨酰胺、0.08%碳酸氢钠和10%小牛血清,以水配制;步骤3)和4)中所述MEM维持液中含有0.08%碳酸氢钠、0.03%谷氨酰胺和2%小牛血清,以水配制。
步骤5)中病毒悬液与保护剂按2:1的体积比混合。
本发明还提供根据上述所述方法制备的F基因型腮腺炎减毒活疫苗。
本发明还提供所述F基因型腮腺炎减毒活疫苗在制备用于预防腮腺炎的药物中的应用。
本发明中涉及的F基因型腮腺炎减毒毒株MHM-19是将F基因型腮腺炎病毒MHM-19株连续在MHL-3细胞上传代28次获得的减毒毒株。具体为:取含有人胚肺二倍体细胞MHL-3的冻存管,迅速放入40℃水浴中融化,然后加入到预温到37℃的MEM细胞培养液中,置于37℃培养,经2-3天长成单层后接种F基因型腮腺炎病毒MHM-19株悬液,75cm2培养瓶接种1mL病毒悬液,加20mL维持液,置于33℃培养,培养10天,冻融三次,充分释放病毒到细胞上清中,制成病毒悬液。其中,所述维持液为MEM加2%的小牛血清。按以上方法,将F基因型腮腺炎病毒MHM-19株连续在MHL-3细胞上传代28次,最终获得在MHL-3细胞上适应性好的F基因型腮腺炎减毒毒株MHM-19。
本发明进一步提供一种疫苗冻干保护剂,所述保护剂的配方为:右旋糖酐6%、蔗糖15%、海藻糖9%、精氨酸0.3%、尿素1.5%、人白蛋白1%和谷氨酸钠1.5%,以PBS缓冲液配制。
通过本发明方法制备的F基因型腮腺炎减毒活疫苗(MHM-19株减毒活疫苗)在免疫注射恒河猴之后,可诱导产生较好的体液免疫效果,在免疫接种后不同时间测定其免疫效价均高于腮腺炎参考苗S79,且安全性实验表明,MHM-19减毒活疫苗对恒河猴没有产生腮腺炎相关症状,病理组织观察情况与S79株相比无显著差异,因此MHM-19疫苗具有良好的安全性。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段,所用原料均为市售商品。
本发明中涉及到的百分号“%”,若未特别说明,是指质量百分比;但溶液的百分比,除另有规定外,是指100mL溶液中含有溶质的克数。
实施例1F基因型腮腺炎减毒活疫苗及其制备方法
取长成单层的人胚肺二倍体细胞MHL-3(MHL-3购自北京民海生物科技有限公司),用0.25%胰蛋白酶溶液消化,细胞经胰蛋白酶溶液浸泡后形成单个细胞后,倒去细胞瓶内的胰蛋白酶溶液,加入已预温37℃的MEM细胞培养液稀释到105个细胞/mL。然后接种于细胞工厂,置于37℃培养24-48h。
待MHL-3细胞长成单层弃去原培养液,用Earl’s液清洗细胞面及细胞工厂侧壁。按0.1MOI接种F基因型腮腺炎病毒MHM-19悬液,加MEM维持液置于33℃培养。
其中,MEM培养液为含有0.03%谷氨酰胺、0.08%碳酸氢钠、10%小牛血清;MEM维持液为含有0.08%碳酸氢钠、0.03%谷氨酰胺、2%小牛血清。细胞工厂是丹麦NUNC公司出品的CELL FACTORIES或美国CORNING公司出品的Cell STACK,译为细胞工厂或细胞培养室,两者培养原理相同,外观尺寸略有不同。细胞工厂可有效节省空间和培养液,保证操作的无菌性。
待培养48h后,弃去培养液,用Earl’s液清洗细胞面,以充分去除残留的牛血清白蛋白,加MEM维持液置于33℃培养;待MHL-3细胞完全病变时(病变达++++),将细胞培养物冻融三次,使病毒充分释放。4000rpm/min,4℃离心去除细胞碎片,制备成腮腺炎病毒悬液。
对腮腺炎减毒活疫苗MHM-19病毒原液进行相关检测。检测项为病毒鉴定、病毒滴度滴定、澄清度检测、无菌检测、支原体检测,外源因子检测、神经毒力检测。检测结果如表1所示。
表1MHM-19病毒原液相关检测结果
所述腮腺炎减毒活疫苗MHM-19病毒原液的制备方法为:取含有人胚肺二倍体细胞MHL-3的冻存管,迅速放入40℃水浴中融化,然后加入到预温到37℃的MEM细胞培养液中,置于37℃培养,经2-3天长成单层后接种F基因型腮腺炎病毒MHM-19株悬液,75cm2培养瓶接种1mL病毒悬液,加20mL维持液,置于33℃培养,培养10天,冻融三次,充分释放病毒到细胞上清中,制成病毒悬液。其中,所述维持液为MEM加2%的小牛血清。按以上方法,将F基因型腮腺炎病毒MHM-19株连续在MHL-3细胞上传代28次制备获得。
将离心后的病毒悬液加入保护剂制成F基因型腮腺炎减毒活疫苗半成品,病毒液与保护剂混合比例为2:1,保护剂配方(3×)为:右旋糖酐6%、蔗糖15%、海藻糖9%、精氨酸0.3%、尿素1.5%、人白蛋白1%和谷氨酸钠1.5%,以PBS缓冲液配制。
对F基因型腮腺炎减毒活疫苗半成品进行无菌检测。检测结果为阴性。
将F基因型腮腺炎减毒活疫苗半成品按0.6mL/只分装并进行冷冻干燥,制备成F基因型腮腺炎减毒活疫苗成品。
实施例2F基因型腮腺炎减毒活疫苗的质量检测
对实施例1中制备的F基因型腮腺炎减毒活疫苗成品进行相关检测。检测项目有:鉴定实验、外观检查、水分检测、病毒滴度、热稳定性试验、牛血清白蛋白残留量检测、无菌检查、异常毒性检查。检测结果如表2所示。
表2F基因型腮腺炎减毒活疫苗成品相关检测结果
实施例3F基因型腮腺炎减毒活疫苗的免疫原性分析
筛选腮腺炎抗体阴性的恒河猴15只(年龄2-3岁,体重3kg±0.5kg),随即分为3组,MHM-19株(实施例1中制备)与S79株腮腺炎减毒活疫苗分别各免疫一组恒河猴,阴性对照一组注射0.5mlDMEM,免疫方式为皮下免疫。免疫后2、4、8、12、24周取血分离血清进行中和抗体测定。结果如表3所示,阴性对照组的血清中和抗体效价均小于2,呈阴性,MHM-19及S79实验组均具有较好的中和抗体反应,且MHM-19与S79株免疫效果具有显著差异(P<0.05)。在试验期间,各试验组恒河猴均无腮腺肿大,体温升高,精神状态异常等体征。于免疫4周时,取试验组各2只恒河猴,猴体取腮腺组织进行病理观察,结果表明,各试验猴腮腺组织均无淋巴细胞浸润等病理现象,因此,MHM-19安全性较好,不低于S79参考腮腺炎疫苗。
表3MHM-19与S79疫苗恒河猴免疫原性结果
免疫时间 |
MHM-19 |
S79 |
2 |
1:20 |
1:8 |
4 |
1:40 |
1:32 |
8 |
1:70 |
1:40 |
12 |
1:121 |
1:65 |
24 |
1:90 |
1:20 |
经猴体免疫原性实验表明,采用本发明方法制备的F基因型腮腺炎减毒活疫苗免疫原性及安全性优于参考苗。本发明可以提供我国流行的腮腺炎病毒绝对优势F基因型疫苗,其免疫原性及安全性均不低于现行使用的腮腺炎疫苗。由于采用人二倍体细胞作为培养基质,避免了异源基质疫苗产生的过敏反应等不良影响。
另外,本发明还提供了一种不含明胶的疫苗冷冻干燥保护剂,使得疫苗在冻干后具有良好的外观,较低的水分以及较好的稳定性。本疫苗生产简化工艺,缩短生产周期,降低生产成本,实现F基因型腮腺炎减毒活疫苗的规模化生产。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。