CN103361326A - 一种耐热性提高的偏甘油酯脂肪酶突变体及突变质粒、重组菌株和制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种耐热性提高的偏甘油酯脂肪酶突变体及突变质粒、重组菌株和制备方法,该突变体是对马拉色霉菌(Malassezia globosa)偏甘油酯脂肪酶进行定点饱和突变获得的酶突变体,其中突变位点为116位的Trp。本发明的突变体具有更好的热稳定性能,进而有利于延长酶的使用寿命。
Description
技术领域
本发明属于酶的基因工程技术领域,具体涉及一种耐热性提高的偏甘油酯脂肪酶突变体及制备方法,还涉及该突变体的重组菌株。
背景技术
脂肪酶(EC3.1.1.3)不仅能催化水解油脂,也能在非水相反应体系中参与酯合成,转酯化,酸解等反应,被广泛的应用于化学,食品,制药和洗涤剂或生物能源工业中。不同于普通脂肪酶,偏甘油酯脂肪酶只能分解甘油二酯或甘油单酯,而不能分解甘油三酯,而其参与的酯化反应也只合成甘油二酯或甘油单酯。甘油二酯或甘油单酯具有良好的表面活性,目前被广泛应用于化妆品、食品、洗涤剂工业中。传统的生产甘油二酯或甘油单酯的工艺耗能大,向环境排放废弃物多,不利于环境保护,而利用酶法来制备甘油二酯或甘油单酯则具有更经济和环保的优点。文献报道的偏甘油酯脂肪酶数量较少,而目前只有来源于卡门柏青霉的一种偏甘油酯脂肪酶被商业化。前期,发明人从球形马拉色霉菌中分离了一种偏甘油酯脂肪酶SMG1,并应用于甘油二酯的合成。对该酶深入研究发现该脂肪酶是一种低温脂肪酶,具有结构稳定性不强的特点。高温会破坏蛋白构象而引起酶制剂活性的丧失。
发明内容
本发明解决的技术问题是提供一种热稳定性提高的SMG1脂肪酶突变体。通过理性选择突变位点,是由马拉色霉菌属(Malassezia globosa)SMG1脂肪酶基因(genbank登录号XM_001732152.1),通过对其蛋白结构(PDB:3UUE)的分析,运用定点突变的方法而获得的脂肪酶突变体。进行定点饱和突变获得酶突变体,亲本SMG1氨基酸序列SEQ ID NO:1中在氨基酸取代位置发生突变,采用“原始氨基酸-位置-替换的氨基酸”来表示脂肪酶突变体中突变的氨基酸,所述脂肪酶突变体为:Trp116Ala,Trp116His,Trp116Phe。
本发明的技术方案具体如下:
一种耐热性提高的偏甘油酯脂肪酶突变体,该突变体是对马拉色霉菌(Malassezia globosa)偏甘油酯脂肪酶进行定点饱和突变获得的酶突变体,其中突变位点为116位的Trp。
所述116位的Trp突变为Ala、His或Phe。
所述突变体的DNA序列为SEQ NO.2、SEQ NO.3或SEQ NO.4。
利用上述突变体制备突变质粒的方法,包括如下步骤:
(1)利用重叠延伸PCR方法引入目的突变氨基酸位点,先分段扩增含有突变氨基酸位点的上下游片段,然后将带有突变位点基因片段拼接成含有突变位点全长基因片段;
(2)将上述扩增产物经DNA纯化后,限制性内切酶Kpn I和Sal I分别对纯化的基因片段和质粒pGAPZαA进行双酶切消化,连接,转化至大肠杆菌E.coli DH5α感受态细胞,得到突变质粒。
所述PCR的引物序列如下:
SMG For 5’-GGGGTACCAGCAGTATTTACGCCCGTGGCCG-3’
3'AOX 5’-GGCAAATGGCATTCTGACAT-3’
Trp116His For 5’-GATGCGAAGTTCCATCAAGAAGAC-3’
Trp116His Rev 5’-GTCTTCTTGATGGAACTTCGCATC-3’
Trp116Phe For 5’-GATGCGAAGTTCTTCCAAGAAGAC-3’
Trp116Phe Rev 5’-GTCTTCTTGGAAGAACTTCGCATC-3’
Trp116ala For 5’-GATGCGAAGTTCGCGCAAGAAGAC-3’
Trp116ala Rev 5’-GTCTTCTTGCGCGAACTTCGCATC-3’
一种重组菌株的制备方法,包括如下步骤:
(1)将权利要求4的含有突变体基因的质粒经限制性内切酶Bln I线性化后,电转至宿主细胞;
(2)将转化液涂布于含有100mg/ml博来霉素的YPD平板中,30℃培养3天后,平板上长出酵母单菌落为重组菌株。
所述宿主细胞为巴斯德毕赤酵母X-33(Pichia pastoris)。
与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:
(1)本发明基于蛋白空间结构信息,对结构内部特殊氨基酸位点周围的空间环境及氨基酸之间包括氢键,离子键,范德瓦尔里等的相互作用进行分析,结合分子生物学技术对特定的氨基酸位点进行改造,通过理性设计突变位点,运用定点突变的方法获得马拉色霉菌属SMG1脂肪酶突变体,可提高获得正向突变的酶突变体的概率,同时也大大减少了突变体筛选的工作量。本发明提高了酶的结构稳定性,进而有利于延长酶的使用寿命。
(2)本发明所得突变体为Trp116Ala,Trp116His,Trp116Phe三个热稳定性提高的突变体,更适合工业生物转化的应用。酶耐热性的提高可以通过酶的半衰期t50来表示,即一定温度下酶活力降低到原始酶活力一半的时间,t50值越大表明酶分子的热稳定性越好。三个SMG-Trp116突变体耐热性均有不同程度的提高。其中SMG1-Trp116Ala突变体的t50为247.55min,比野生型的SMG1脂肪酶的t50提高了4.1,具有更好的热稳定性能。
附图说明
图1为SMG1脂肪酶结构图。图注:盖子闭合状态的SMG1脂肪酶蛋白结构,箭头指向的为Trp116氨基酸残基。
图2为SMG1及其突变体纯化图。泳道M:蛋白分子量Marker,泳道1:SMG1,泳道2:SMG1-Trp116Ala,泳道3:SMG1-Trp116His,泳道4:SMG1-Trp116Phe。
具体实施方式
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。
实施例中涉及到的培养及配方如下:
LB液体培养基:酵母提取液0.5%,蛋白胨1%,NaCl1%,pH7.0。121℃灭菌20min。
YPD培养基:酵母提取液1%,蛋白胨2%,葡萄糖2%,制作平板时加入Agar2%,115℃灭菌20min。用于Zeocin抗生素筛选时,终浓度为1ug/ml。
上述培养基中的单位为%(W/V)。
实施例1
脂肪酶SMG1116氨基酸位点突变体构建
采用定点突变技术构建突变体Trp116Ala,Trp116His,Trp116Phe,利用重叠延伸PCR方法引入目的突变位点,定点突变反应条件:
扩增突变上游片段:
10X pfu buffer: | 5 |
d NTP: | 2.5 |
SMG for: | 2.5 |
Trp116His rev: | 2.5 |
Pfu DNA聚合酶: | 1.5 |
双蒸水: | 40 |
PGAPZα5A-SMG1: | 2 |
扩增突变下游片段:
10X pfu buffer | 5 |
dNTP: | 2.5 |
Trp116His for: | 2.5 |
3’AOX: | 2.5 |
Pfu DNA聚合酶: | 1.5 |
双蒸水: | 40 |
PGAPZα5A-SMG1: | 2 |
扩增带有突变位点的全长基因片段:
10Xpfu buffer: | 10 |
dNTP: | 5 |
SMG for: | 5 |
3’AOX: | 5 |
Pfu DNA聚合酶: | 3 |
双蒸水: | 8 |
上游片段: | 5 |
下游片段: | 5 |
使用的引物,见下表:
PCR扩增条件:94℃5min;94℃20s,53℃30s,72℃80s,25个循环;72℃7min。重叠延伸PCR扩增产物经DNA纯化试剂盒纯化后,限制性内切酶Kpn I和Sal I分别对纯化的基因片段和质粒pGAPZαA进行双酶切消化,连接,转化至大肠杆菌E.coli DH5α感受态细胞。涂布于LB(含25ug/mlzeocion)平板。生长15h后,挑取平板上10个单菌落进行菌落PCR,挑取阳性克隆通过Kpn I和SalI双酶切鉴定并基因测序,结果表明获得了正确的突变质粒。
实施例2
脂肪酶SMG1及其突变体重组菌株及纯化
将突变质粒经限制性内切酶Bln I线性化后,电转至毕赤酵母X-33感受态态细胞。将转化液涂布于YPD(100ug/ml Zeocin)平板,30℃培养3天后,挑取平板上单菌落于100ml YPD培养基中发酵72小时后,离心并浓缩发酵液进行SDS-PAGE检测,获得能够表达脂肪酶SMG1突变体阳性重组菌株。
将野生型菌株以及各脂肪酶突变体菌株,接种至100ml YPD培养基中,30℃,200rpm振荡培养48-72小时后,收集发酵上清液(10,000rpm,离心20min,4°C)。
将SMG1野生型及其突变体菌株的发酵上清液用0.22um的滤膜抽滤。后用10KD膜胞(Vivaflow200,Sartorius)将发酵液置换成20mM pH8.0Tris-HCl缓冲液,并将发酵液浓缩到大约30ml。浓缩发酵上清利用Q SepharoseTM FastFlow阴离子交换层析柱,流速5ml/min,最后用pH8.0含1M NaCl的Tris-HCl缓冲液梯度洗脱,目标蛋白在80mM盐离子浓度处被洗脱下来。利用SDS-PAGE电泳对纯化的重组蛋白进行纯度鉴定(见附图2)。
实施例3
脂肪酶突变体热稳定性测定
脂肪酶活性测定:反应总体系为200ul,酶活性采用相对酶活性表示,根据酶标仪测得的A405处吸光值相对大小来表示酶活力的大小。
实验组:先加入80ul的50mM pH6.0的磷酸盐缓冲液,然后加入10μL的酶液,将酶标板置于25℃下预热5min。然后加入10ul的pNPC-C8底物溶液,置于25℃反应5min,反应结束后,立即加入100μL的异丙醇终止酶促反应。于酶标仪上测定其吸光值OD405。
对照组:先加入80ul的50mM pH6.0的磷酸盐缓冲液,然后加入10ul的酶液和100ul异丙醇终止液,酶标板置于25℃下预热5min。然后加入10ul的pNPC-C8底物溶液,置于25℃反应5min,测定其OD405。
SMG1脂肪酶半衰期t50测定:
将纯化的酶蛋白于45℃下分别孵育0h,0.5h,1h,1.5h,2h,后4℃放置20min,检测各个酶的残留活力,根据实验组和对照组的数据的差异,并与初始酶活(0h)进行比较获得相对酶活性,将孵育不同时间后所测得的酶活力转换成残留酶活百分比(%)。以残留活性百分比的ln值对时间T(min)作图,直线的斜率为常数K。由t50=ln2/K得到SMG1脂肪酶在该温度下的t50。
突变体 | 45°C下的半衰期(t50,min) | 提高的倍数 |
SMG1-WT | 60.27 | 1.0 |
SMG1-Trp116His | 130.78 | 2.1 |
SMG1-Trp116Phe | 80.59 | 1.33 |
SMG1-Trp116Ala | 247.55 | 4.1 |
结果显示,三个SMG-Trp116突变体耐热性均有不同程度的提高。其中SMG1-Trp116Ala突变体的t50为247.55min,比野生型的SMG1脂肪酶的t50提高了4.1,具有更好的热稳定性能。
Claims (9)
1.一种耐热性提高的偏甘油酯脂肪酶突变体,其特征在于,该突变体是对马拉色霉菌(Malassezia globosa)偏甘油酯脂肪酶进行定点饱和突变获得的酶突变体,其中突变位点为116位的Trp。
2.根据权利要求1所述的突变体,其特征在于,所述116位的Trp突变为Ala、His或Phe。
3.根据权利要求1所述的突变体,其特征在于,所述突变体的DNA序列为SEQ NO.2、SEQ NO.3或SEQ NO.4。
4.一种利用权利要求1~3任意一项突变体制得的突变质粒。
5.权利要求4所述突变质粒的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)利用重叠延伸PCR方法引入目的突变氨基酸位点,先分段扩增含有突变氨基酸位点的上下游基因片段,然后将带有突变位点的基因片段拼接成含有突变位点全长基因片段;
(2)将上述扩增基因PCR产物经DNA纯化后,限制性内切酶Kpn I和Sal I分别对纯化的基因片段和质粒pGAPZαA进行双酶切消化,连接,转化至大肠杆菌E.coli DH5α感受态细胞,得到突变质粒。
6.权利要求5所述的制备方法,其特征在于,所述PCR的引物序列如下:
SMG For 5’-GGGGTACCAGCAGTATTTACGCCCGTGGCCG-3’
3'AOX 5’-GGCAAATGGCATTCTGACAT-3’
Trp116His For 5’-GATGCGAAGTTCCATCAAGAAGAC-3’
Trp116His Rev 5’-GTCTTCTTGATGGAACTTCGCATC-3’
Trp116Phe For 5’-GATGCGAAGTTCTTCCAAGAAGAC-3’
Trp116Phe Rev 5’-GTCTTCTTGGAAGAACTTCGCATC-3’
Trp116ala For 5’-GATGCGAAGTTCGCGCAAGAAGAC-3’
Trp116ala Rev 5’-GTCTTCTTGCGCGAACTTCGCATC-3’
7.一种重组菌株的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)将权利要求4的含有突变体基因的质粒经限制性内切酶Bln I线性化后,电转至宿主细胞;
(2)将转化液涂布于含有100mg/ml博莱霉素的YPD平板中,30℃培养3天后,平板上长出酵母单菌落为重组菌株。
8.根据权利要求7所述的制备方法,其特征在于,所述宿主细胞为巴斯德毕赤酵母X-33(Pichia pastoris)。
9.权利要求7或8所述方法制备的重组菌株。
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Effective date of registration: 20180408 Address after: 510640 Tianhe District, Guangdong, No. five road, No. 381, Co-patentee after: Yiduoli Biological Science & Tech. Co., Ltd., Guangdong Patentee after: South China University of Technology Address before: 510640 Tianhe District, Guangdong, No. five road, No. 381, Patentee before: South China University of Technology |
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