CN103125399A - 一种白桦四倍体组培快繁的方法 - Google Patents
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Abstract
一种白桦四倍体组培快繁的方法,涉及一种白桦四倍体组培快繁的方法。本发明是要解决现有白桦组培扩繁技术愈伤组织分化难、增值倍数低的问题。该方法包括以下内容:一、白桦四倍体外植体的选择;二、初代培养;三、愈伤组织分化培养;四、继代增殖培养;五、组培苗的生根培养;六、炼苗及移栽,即得到白桦四倍体。该方法通过对培养基激素种类、含量以及组培苗生根次数的调整,使初代培养获得的四倍体愈伤组织分化率达36%,白桦四倍体增殖倍数达14.89,移栽成活率在95%以上,从而满足白桦优良四倍体快速扩繁的需求。该方法可应用于白桦组培领域。
Description
技术领域
本发明涉及一种白桦四倍体组培快繁的方法。
背景技术
白桦(Betula platyphylla Suk.)是东北地区珍贵的阔叶树种之一,也是主要的造林树种和工业用材树种,我国对于白桦倍性育种的研究始于2004年,采用秋水仙素可以诱导白桦种子创制白桦四倍体。前期的研究表明,四倍体白桦的雄配子不育,而雌配体发育正常,即♀4x×♂2x杂交子代全部为三倍体,这为创制白桦三倍体提供一条最为有效的途径。然而,用于杂交的四倍体母本及杂交获得的三倍体子代家系间在生长、抗性方面存在较大差异,因此为了获得优质、抗逆的白桦三倍体新品种,必须选育优良双亲以满足需要。
白桦四倍体由于染色体组的加倍,伴随着生理代谢等方面的改变,目前采用白桦扦插和嫁接等方式进行无性繁殖十分困难,组培扩繁是最有效的方法,而现有的白桦组培扩繁技术存在愈伤组织分化难、增殖倍数低等诸多问题,已不适用于白桦四倍体的扩繁。
发明内容
本发明的目的是为了解决现有白桦组培扩繁技术愈伤组织分化难、增值倍数低等问题,提供一种白桦四倍体组培快繁的方法。
本发明的一种白桦四倍体组培快繁的方法包括以下步骤:
一、外植体的选择与消毒:选取白桦四倍体当年生枝条流水冲洗1~2天,摘取腋芽在体积百分含量为70%~75%的乙醇溶液中浸泡1~2min,将乙醇倒掉,再将腋芽在灭菌蒸馏水中浸泡1~2min;在超净工作台中剥去外层芽鳞,在体积百分含量为0.1%~0.15%升汞中浸泡5~8min,再将腋芽置于质量百分含量为10%的次氯酸钙溶液中浸泡8~10min,再用灭菌蒸馏水漂洗3~5次,即得到消毒处理后的外植体;
二、初代培养:将步骤一中消毒处理后得到的外植体接种到初代培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d的条件下培养25~30d,得愈伤组织,所述的初代培养基包含WPM培养基和浓度为0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA;
三、愈伤组织的分化培养:将步骤二中得到的愈伤组织接种于分化培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d,得不定芽,所述的分化培养基包含WPM培养基、浓度为0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA及浓度为0.15mg/L的GA3;
四、不定芽增殖培养:将步骤三中得到的不定芽转接至继代增殖培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d~30d,得继代丛生芽,所述的继代增殖培养基包含WPM培养基和浓度为1.0mg/L~1.2mg/L的6-BA;
五、生根培养:将步骤四中得到的继代丛生芽转接至生根培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养20d至基部长出长度为0.5~1cm的根,再将上述生根组培苗转接至用生根培养液浸透的生根基质中,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照为16h/d条件下培养30~35d,得到具有发达根系的生根苗,所述的生根培养基为包含WPM培养基和浓度为0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根培养液为WPM培养液和浓度为0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根基质为3份草炭土、2份黑土、1份蛭石及1份河沙;
六、炼苗及移栽:将步骤五得到的具有发达根系的生根苗在组培室中炼苗1~2d,然后将组培瓶移至塑料大棚中炼苗5~7d,然后移栽至育苗杯中继续生长,即完成白桦四倍体的组织培养。
本发明包含以下有益效果:
该方法通过对培养基激素种类、含量以及组培苗生根次数的调整,使初代培养获得的四倍体愈伤组织由已有技术的不分化,到分化率达36%,白桦四倍体增殖倍数达14.89,移栽成活率在95%以上,从而满足白桦优良四倍体快速扩繁的需求。
附图说明
图1是白桦四倍体初代培养的图片;
图2是腋芽基部生成愈伤组织的图片;
图3是白桦四倍体继代培养的图片;
图4是白桦四倍体生根培养的图片;
图5是白桦四倍体生根培养的图片。
具体实施方式
本发明技术方案不局限于以下所列举具体实施方式,还包括各具体实施方式间的任意组合。
具体实施方式一:本实施方式的一种白桦四倍体组培快繁的方法,其特征在于所述方法按以下步骤进行:
一、外植体的选择与消毒:选取白桦四倍体当年生枝条流水冲洗1~2天,摘取腋芽在体积百分含量为70%~75%的乙醇溶液中浸泡1~2min,将乙醇倒掉,再将腋芽在灭菌蒸馏水中浸泡1~2min;在超净工作台中剥去外层芽鳞,在体积百分含量为0.1%~0.15%升汞中浸泡5~8min,再将腋芽置于质量百分含量为10%的次氯酸钙溶液中浸泡8~10min,再用灭菌蒸馏水漂洗3~5次,即得到消毒处理后的外植体;
二、初代培养:将步骤一中消毒处理后得到的外植体接种到初代培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d的条件下培养25~30d,得愈伤组织,所述的初代培养基包含WPM培养基和0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA;
三、愈伤组织的分化培养:将步骤二中得到的愈伤组织接种于分化培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d,得不定芽,所述的分化培养基包含WPM培养基、0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA及0.15mg/L的GA3;
四、不定芽增殖培养:将步骤三中得到的不定芽转接至继代增殖培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d~30d,得继代丛生芽,所述的继代增殖培养基包含WPM培养基和1.0mg/L~1.2mg/L的6-BA;
五、生根培养:将步骤四中得到的继代丛生芽转接至生根培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养20d至基部长出长度为0.5~1cm的根,再将上述生根组培苗转接至用生根培养液浸透的生根基质中,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照为16h/d条件下培养30~35d,得到具有发达根系的生根苗,所述的生根培养基为包含WPM培养基和0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根培养液为WPM培养液和0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根基质为3份草炭土、2份黑土、1份蛭石及1份河沙;
六、炼苗及移栽:将步骤五得到的具有发达根系的生根苗在组培室中炼苗1~2d,然后将组培瓶移至塑料大棚中炼苗5~7d,然后移栽至育苗杯中继续生长,即完成白桦四倍体的组织培养。
具体实施方式二:本实施方式与具体实施方式一不同的是:步骤一中外植体为当年枝上的健康、饱满腋芽。其它与具体实施方式一相同。
具体实施方式三:本实施方式与具体实施方式一或二不同的是:步骤一中乙醇的体积百分含量为70%。其它与具体实施方式一或二相同。
具体实施方式四:本实施方式与具体实施方式一至三之一不同的是:步骤一中升汞的体积百分含量为0.1%。其它与具体实施方式一至三之一相同。
具体实施方式五:本实施方式与具体实施方式一至四之一不同的是:步骤二初代培养基中包含的6-BA的浓度为0.8mg/L。其它与具体实施方式一至四之一相同。
具体实施方式六:本实施方式与具体实施方式一至五之一不同的是:步骤三分化培养基中包含的6-BA的浓度为0.8mg/L。其它与具体实施方式一至五之一相同。
具体实施方式七:本实施方式与具体实施方式一至六之一不同的是:步骤四继代增殖培养基中包含的6-BA的浓度为1.2mg/L。其它与具体实施方式一至六之一相同。
具体实施方式八:本实施方式与具体实施方式一至七之一不同的是:步骤五生根培养基中包含的IBA的浓度为0.3mg/L,生根培养液中包含的IBA的浓度为0.3mg/L。其它与具体实施方式一至七之一相同。
具体实施方式九:本实施方式与具体实施方式一至八之一不同的是:步骤六中塑料大棚温度条件为:白天25℃~28℃,夜间15℃~20℃。其它与具体实施方式一至八之一相同。
通过以下实施例验证本发明的有益效果:
实施例一:一种白桦四倍体(SB4)组培快繁方法,按以下步骤进行:一、外植体的选择与消毒:选取白桦四倍体(SB4)当年生枝条,切断后流水冲洗2d,摘取腋芽置于体积百分含量为70%的乙醇中浸泡1min,再用灭菌蒸馏水浸泡1min,于超净台上剥去外层芽鳞,随后在体积百分含量为0.1%升汞中浸泡8min后,置于质量百分含量为10%的次氯酸钙溶液中浸泡10min,期间不断搅动,最后用灭菌蒸馏水漂洗5次;二、初代培养:将消毒后的腋芽接种到初代培养基上,如图1所示,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养27d至基部形成愈伤组织,结果如图2所示;三、愈伤组织的分化培养:切取愈伤组织接种于分化培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养25d至形成不定芽;四、芽增殖培养:将不定芽转接至继代增殖培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养25d至形成继代丛生芽,结果如图3所示,根据对丛生芽数量的需求,每隔25天左右按同样方法进行一次再增殖;五、生根培养:切取继代苗单株转接至生根培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养20d至基部长出0.5~1cm的根系,结果如图4所示,再将上述生根组培苗转接至用生根培养液浸透的生根基质中,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养30d至生根,结果如图5所示;六、炼苗及移栽:在组培室中将瓶盖打开1/5炼苗2d,然后将组培瓶移至塑料大棚中,瓶盖打开1/3继续炼苗5d,最后直接带土坨移栽;
其中步骤二所用的初代培养基为:WPM+6-BA0.8mg/L;步骤三所用的分化培养基为:WPM+6-BA0.8mg/L+GA30.15mg/L;其中步骤四所用的继代增殖培养基为:WPM+6-BA1.0mg/L;其中步骤五所用的生根培养基为:WPM+IBA0.4mg/L,生根培养液为:WPM+IBA0.4mg/L,生根基质为3份草炭土、2份黑土、1份蛭石、1份河沙。
通过本实施例进行白桦四倍体(SB4)组培扩繁,愈伤增殖倍数为15.11,移栽成活率为99%。
实施例二:一种白桦四倍体(SB9)组培快繁方法,按以下步骤进行:一、外植体的选择与消毒:选取白桦四倍体(SB9)当年生枝条,切断后流水冲洗1d,摘取腋芽置于体积百分含量为70%乙醇中2min,再用灭菌蒸馏水浸泡2min,于超净台上剥去外层芽鳞,随后在体积百分含量为0.1%升汞中浸泡5min后,置于质量百分含量为10%的次氯酸钙溶液中8min,期间不断搅动,最后用灭菌蒸馏水漂洗4次;二、初代培养:在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养30d至基部形成愈伤组织;三、愈伤组织的分化培养:切取愈伤组织接种于分化培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养25d至形成不定芽;四、芽增殖培养:将不定芽转接至继代增殖培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养27d至形成继代丛生芽,根据对丛生芽数量的需求,每隔25天左右按同样方法进行一次再增殖。五、生根培养:切取继代苗单株转接至生根培养基上,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养20d至基部长出0.5~1cm的根系,再将上述生根组培苗转接至用生根培养液浸透的生根基质中,在温度为25℃,光照强度为1500Lx,光照时间为16h/d条件下培养30d至生根。六、炼苗及移栽:在组培室中将瓶盖打开1/5炼苗2d,然后将组培瓶移至塑料大棚中,瓶盖打开1/3继续炼苗6d,最后直接带土坨移栽;
其中步骤二所用的初代培养基为:WPM+6-BA0.8mg/L;步骤三所用的分化培养基为:WPM+6-BA0.8mg/L+GA30.15mg/L;其中步骤四所用的继代增殖培养基为:WPM+6-BA1.0mg/L;其中步骤五所用的生根培养基为:WPM+IBA0.4mg/L,生根培养液为:WPM+IBA0.4mg/L,生根基质为3份草炭土、2份黑土、1份蛭石、1份河沙。
通过本实施例进行白桦四倍体(SB9)组培扩繁,增殖倍数为14.67,移栽成活率为95%。
Claims (9)
1.一种白桦四倍体组培快繁的方法,其特征在于所述方法包括以下步骤:
一、外植体的选择与消毒:选取白桦四倍体当年生枝条,采用流水冲洗1~2天,然后摘取枝条上的腋芽在体积百分含量为70%~75%的乙醇溶液中浸泡1~2min,将乙醇倒掉,再将腋芽在灭菌蒸馏水中浸泡1~2min;然后在超净工作台中剥去外层芽鳞,在体积百分含量为0.1%~0.15%升汞中浸泡5~8min,再将腋芽置于质量百分含量为10%的次氯酸钙溶液中浸泡8~10min,再用灭菌蒸馏水漂洗3~5次,即得到消毒处理后的外植体;
二、初代培养:将步骤一中消毒处理后得到的外植体接种到初代培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d的条件下培养25~30d,得愈伤组织,所述的初代培养基包含WPM培养基和浓度为0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA;
三、愈伤组织的分化培养:将步骤二中得到的愈伤组织接种于分化培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d,得不定芽,所述的分化培养基包含WPM培养基、浓度为0.8mg/L~1.2mg/L的6-BA和浓度为0.15mg/L的GA3;
四、不定芽增殖培养:将步骤三中得到的不定芽转接至继代增殖培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养25d~30d,得继代丛生芽,所述的继代增殖培养基包含WPM培养基和浓度为1.0mg/L~1.2mg/L的6-BA;
五、生根培养:将步骤四中得到的继代丛生芽转接至生根培养基上,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照时间为16h/d条件下培养20d至基部长出长度为0.5~1cm的根,再将上述生根组培苗转接至用生根培养液浸透的生根基质中,在温度为23~27℃、光照强度为1000~1500Lx、光照为16h/d条件下培养30~35d,得到具有发达根系的生根苗,所述的生根培养基为包含WPM培养基和浓度为0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根培养液包含WPM培养液和浓度为0.2~0.4mg/L的IBA,所述的生根基质包含3份草炭土、2份黑土、1份蛭石以及1份河沙;
六、炼苗及移栽:将步骤五得到的具有发达根系的生根苗在组培室中炼苗1~2d,然后将组培瓶移至塑料大棚中炼苗5~7d,然后移栽至育苗杯中继续生长,即完成白桦四倍体的组织培养。
2.根据权利要求1所述的一种白桦四倍体组培快繁的方法,其特征在于步骤一中外植体为当年枝上的健康、饱满腋芽。
3.根据权利要求2所述的一种白桦四倍体组培快繁的方法,其特征在于步骤一中乙醇的体积百分含量为70%。
4.根据权利要求3所述的一种白桦四倍体组培快繁的方法,其特征在于步骤一中升汞的体积百分含量为0.1%。
5.根据权利要求4所述的一种白桦四倍体组培快繁方法,其特征在于步骤二初代培养基中包含的6-BA的浓度为0.8mg/L。
6.根据权利要求5所述的一种白桦四倍体组培快繁方法,其特征在于步骤三分化培养基中包含的6-BA的浓度为0.8mg/L。
7.根据权利要求6所述的一种白桦四倍体组培快繁方法,其特征在于步骤四继代增殖培养基中包含的6-BA的浓度为1.2mg/L。
8.根据权利要求7所述的一种白桦四倍体组培快繁方法,其特征在于步骤五生根培养基中包含的IBA的浓度为0.3mg/L,生根培养液中包含的IBA的浓度为0.3mg/L。
9.根据权利要求8所述的一种白桦四倍体组培快繁方法,其特征在于步骤六中塑料大棚温度条件为:白天25℃~28℃,夜间15℃~20℃。
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---|---|
CN (1) | CN103125399A (zh) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103430849A (zh) * | 2013-08-24 | 2013-12-11 | 东北林业大学 | 一种利用温度处理提高白桦丛生苗总三萜、齐墩果酸和黄酮含量的方法 |
CN105177039A (zh) * | 2015-10-26 | 2015-12-23 | 东北林业大学 | 外源基因转入白桦实生苗的瞬时表达方法 |
CN105684904A (zh) * | 2016-02-03 | 2016-06-22 | 东北林业大学 | 一种通过离体培养白桦花药获得单倍体再生植株的方法 |
CN106171996A (zh) * | 2016-07-21 | 2016-12-07 | 辽宁大学 | 一种野生白桦的快速繁殖方法 |
CN114424748A (zh) * | 2022-01-21 | 2022-05-03 | 洛阳农林科学院 | 一种无琼脂甘薯脱毒试管苗的生根培养及其栽培方法 |
CN114586686A (zh) * | 2022-04-06 | 2022-06-07 | 东北林业大学 | 一种裂叶桦组培苗高效移栽的方法 |
CN115136887A (zh) * | 2022-08-04 | 2022-10-04 | 东北林业大学 | 一种三倍体紫雨桦的培育方法 |
CN115136886A (zh) * | 2022-08-02 | 2022-10-04 | 东北林业大学 | 一种四倍体紫雨桦的创制方法 |
-
2013
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Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
《东北林业大学学报》 19981130 詹亚光等 白桦组培再生系统的研究(Ⅱ)--影响因素及培养程序 第1-5页 1-9 第26卷, 第6期 * |
YOHICHI WAKITA等: "Plant Regeneration from Cell Suspension Cultures of Betula platyphylla var. japonica", 《PLANT TISSUE CULTURE LETTERS》 * |
占爱瑶等: "不同白桦优树组培快繁体系的筛选", 《东北林业大学学报》 * |
翟俏丽等: "桦树生物技术研究进展", 《中国农学通报》 * |
詹亚光等: "白桦组培再生系统的研究(Ⅱ)——影响因素及培养程序", 《东北林业大学学报》 * |
陶静等: "白桦组培再生系统的研究(Ⅰ)", 《东北林业大学学报》 * |
Cited By (13)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103430849A (zh) * | 2013-08-24 | 2013-12-11 | 东北林业大学 | 一种利用温度处理提高白桦丛生苗总三萜、齐墩果酸和黄酮含量的方法 |
CN103430849B (zh) * | 2013-08-24 | 2015-08-26 | 东北林业大学 | 一种利用温度处理提高白桦丛生苗总三萜、齐墩果酸和黄酮含量的方法 |
CN105177039A (zh) * | 2015-10-26 | 2015-12-23 | 东北林业大学 | 外源基因转入白桦实生苗的瞬时表达方法 |
CN105177039B (zh) * | 2015-10-26 | 2020-04-21 | 东北林业大学 | 外源基因转入白桦实生苗的瞬时表达方法 |
CN105684904A (zh) * | 2016-02-03 | 2016-06-22 | 东北林业大学 | 一种通过离体培养白桦花药获得单倍体再生植株的方法 |
CN105684904B (zh) * | 2016-02-03 | 2017-11-10 | 东北林业大学 | 一种通过离体培养白桦花药获得单倍体再生植株的方法 |
CN106171996B (zh) * | 2016-07-21 | 2018-02-09 | 辽宁大学 | 一种野生白桦的快速繁殖方法 |
CN106171996A (zh) * | 2016-07-21 | 2016-12-07 | 辽宁大学 | 一种野生白桦的快速繁殖方法 |
CN114424748A (zh) * | 2022-01-21 | 2022-05-03 | 洛阳农林科学院 | 一种无琼脂甘薯脱毒试管苗的生根培养及其栽培方法 |
CN114586686A (zh) * | 2022-04-06 | 2022-06-07 | 东北林业大学 | 一种裂叶桦组培苗高效移栽的方法 |
CN115136886A (zh) * | 2022-08-02 | 2022-10-04 | 东北林业大学 | 一种四倍体紫雨桦的创制方法 |
CN115136887A (zh) * | 2022-08-04 | 2022-10-04 | 东北林业大学 | 一种三倍体紫雨桦的培育方法 |
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