CN103014144A - 检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法 - Google Patents

检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法,可有效解决现有检测设备及方法耗时长,投入大的问题,其技术方案是:设计并合成引物和探针,用灭菌水溶解合成好的探针,用基因芯片点样仪按预先设定好的程序在醛基化基片上接触式点样,制备用于检测猪链球菌2型的基因芯片,其使用方法是,提取待测猪链球菌2型细菌的基因组DNA,采用不对称PCR制备杂交用PCR产物,与制备好的基因芯片杂交,经洗涤与干燥后,将芯片置于激光共聚焦扫描仪上扫描,分析结果,本发明操作简便易行,省去了已点样芯片的水化处理和预杂交步骤,杂交只需半小时,大大节省了时间,采用5μm/L的探针浓度就可以达到信号强度,检测成本低,可用于大规模检测。

Description

检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法
发明领域
本发明涉及生物医学领域,特别是一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法。 
背景技术
现有的猪链球菌检测方法有微生物学方法、血清学鉴定及PCR检测等。微生物学检测方法是根据细菌的形态、培养特性和生化特性等进行鉴定。链球菌在显微镜下呈圆形或卵圆形,直径小于0.2μm,常成双排列或成链状。革兰氏染色阳性,除D群个别细菌外,均无鞭毛,多数有荚膜。血琼脂平板上可长成直径0.1~1.0mm,灰白色、表面光滑、边缘整齐的小菌落,多数致病菌株具有溶血能力,溶血环的大小和类型因菌株而异。血清学的鉴定方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、协同凝集试验、毛细沉淀或平板凝聚试验, 其中ELISA与协同凝集试验的应用最为广泛。PCR检测方法有很强的特异性和高度的敏感性。 
基因芯片作为检测手段,有高灵敏性、高度精确性、高信息量等优点,被应用于多种微生物的检测中, 已建立有针对猪病致病菌的基因芯片的检测方法,但需要对已点样的芯片进行水化和预杂交处理,且所需杂交探针的浓度较高,检测成本高。 
发明内容
针对上述情况,为解决现有技术之缺陷,本发明的目的就是提供一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备及其应用方法,可有效解决现有检测设备及方法耗时长,投入大的问题。 
本发明的技术方案是:设计并合成引物和探针,用灭菌水溶解合成好的探针,用基因芯片点样仪按预先设定好的程序在醛基化基片(公知市售产品)上接触式点样,制备用于检测猪链球菌2型的基因芯片。 
本发明还提供了用于检测猪链球菌2型的基因芯片的使用方法,包括以下步骤:提取待测猪链球菌2型细菌的基因组DNA,采用不对称PCR制备杂交用PCR产物,与制备好的基因芯片杂交,经洗涤与干燥后,将芯片置于激光共聚焦扫描仪上扫描,分析结果。 
本发明操作简便易行,省去了已点样芯片的水化处理和预杂交步骤,杂交只需半小时,大大节省了时间,达到了快速检测的目的,采用5μm/L的探针浓度就可以达到较高的信号强度,降低了检测成本,可用于大规模检测。 
附图说明
图1为本发明2型猪链球菌基因芯片点样示意图。 
具体实施方式
以下结合实施例对本发明具体实施方式作进一步详细说明。 
一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:(1)设计引物和探针:以猪链球菌2型(菌株号为S735,GenBank序列号为AF118389)的cps2J基因序列为靶序列,设计特异性引物和探针,上游引物:5’-TGGAATACGCA GAGCAA GAT-3’,下游引物:5’Cy3-AGCAAGTAACCCTCCCGACA-3’,探针:5’NH2-TTTTTTTTTTTTT TTT-ACGG TATCAAAAATAGCACAGCAAA-3’,在下游引物5’端用Cy3进行荧光标记,探针的5’端进行氨基化修饰,修饰氨基和探针之间加上16个T; 
(2)对引物和探针进行合成:将步骤(1)所设计的引物和探针,交公司进行合成(这是公知的合成途径);
(3)基因芯片的制备:用灭菌水溶解合成好的探针,用基因芯片点样仪按预先设定好的程序在醛基化基片(公知市售产品)上接触式点样,点样完毕后将芯片静置于25-30℃烘箱干燥过夜8-12小时。
一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的使用方法,其特征在于,包括以下步骤:(1)提取待测猪链球菌2型细菌的基因组DNA; 
(2)杂交用PCR产物的制备:采用不对称PCR,先预混合反应体系中除下游引物以外的所有成份,最后在暗室中加入下游引物,混匀后置于PCR仪进行扩增,所述的反应体系为:10×Buffer为2.5μl,上游引物(20μM/L)为0.2μl,下游引物(20μM/L)为0.5μl,dNTP(10mmol/μl)为2.0μl,模板DNA 1.0μl,ExTaqTM酶为0.3μl,ddH2O为18.5μl,总体积为25μl ,PCR扩增反应条件为:95℃预变性5 min;95℃变性45,56℃退火45s,72℃延伸1 min,共35个循环;72℃延伸10 min;
(3)杂交用PCR产物与权利要求1所述的基因芯片杂交:将杂交用PCR扩增产物置于PCR仪上98℃变性10min后,立即取出冰浴5min,取PCR扩增产物20μl和杂交缓冲液180μl加于离心管中,混匀后取该混合液加到芯片的点样区,尽量避免产生气泡,将芯片放入杂交盒内,置于42℃水浴锅中避光杂交30min;
(4)基因芯片的洗涤与干燥:基因芯片的洗涤应在暗室中完成,杂交完毕的芯片放置在玻片架上,立即用洗液1、洗液2、洗液3各洗涤2min,离心干燥;
(5)基因芯片的结果分析:将芯片置于激光共聚焦扫描仪上扫描,分析Cy3荧光信号的强度和比值。
所述的引物浓度为20μm/L。 
所述探针浓度为5μm/L —20μm/L。 
点样环境参数为相对湿度55-65%,温度15-30℃,各探针点间距为1.5mm,点样阵列根据实验要求设定。 
所述的杂交芯片洗涤所用洗液1为1×SSC/0.2%SDS;洗液2为0.1×SSC/0.2%SDS;洗液3为0.1×SSC。 
所述的基因芯片杂交结果判定的依据如下: 
(1)模板DNA的PCR扩增效果良好;
(2)信号强度中位值≥1000,结合杂交扫描图像,杂交斑点清晰;
(3)检测基因芯片杂交结果判断时引入样点信号阈值概念SNR,它是信号强度中位值与噪音中位值之比,当它们的比值大于或等于1.5时,表明杂交信号良好,即SNR≥1.5。
经试验证明,此方法灵敏可靠。应用效果好,有关资料如下: 
1材料与方法
1.1材料
1.1.1标准菌株来源
猪链球菌2型菌株(S735)由河南农业大学惠赠。
1.1.2芯片材料 
基因芯片基片采用醛基化载玻片,购自上海百傲生物科技有限公司。
1.1.3试验仪器 
基因芯片点样仪                          美国Bio-Dot公司
MILIPORE-21JO纯水机                    美国MILIPORE公司
YEAR2000 PCR仪                         英国Whatman Biometra公司
DBT-07凝胶成像系统                     英国UVITEC公司
MLTRA PR080型超高速冷冻离心机          德国HermLer公司
TGL-16C台式高速低温离心机              德国Eppendorf公司
基因芯片扫描仪                          法国Innopsys公司
-80℃超低温冰柜                         Thermo公司
UVI紫外凝胶成像系统                     UVItec ST John,s innovation centre
YJ-875净化工作台                        苏州净化设备公司
SHA-C水浴恒温振荡器                     江苏恒丰仪器厂
DYY-31A型稳压稳流电泳仪                 北京六一仪器厂
DBT-07凝胶成像系统                      英国UVITEC公司
PCR扩增仪                               Biometra公司
1.1.4主要试剂和溶液
TaKaRa Agarose Gel DNA Purification Kit Ver.2.0  大连宝生物工程有限公司
ExTaqTM酶、DNA Marker DL2000                     大连宝生物工程有限公司
细菌基因组DNA提取试剂盒(离心柱型)             北京索莱宝科技有限公司
Proteinase K, Tritirachium album                 CALBIOCHEM
BIOWEST AGAROSE                                  SPECIFICATIONS
杂交缓冲液                                       上海百傲生物科技有限公司
LB增菌液(加有5%的小牛血清)、5×电泳储存液(5×TBE)、1.0%琼脂糖凝胶、100×Denhardt、20×SSC、10%SDS、基因芯片点样缓冲液、洗脱液均由本实验室配制,见附件1。
1.2方法 
1.2.1细菌的培养
用接种环在无菌条件下取保存的细菌菌株,接种于绵羊血琼脂平板上,37℃培养24小时,挑取血平板上的单个菌落接种于5ml加入5%小牛血清的LB液体培养基中,37℃,180rmp,培养16小时;置于-4℃保存备用。
1.2.2细菌基因组DNA(即模板DNA)的提取及注意事项 
1.2.2.1提取细菌基因组DNA的步骤
对上述培养的细菌采用北京索莱宝科技有限公司的细菌基因组DNA提取(离心柱型)试剂盒提取,具体步骤如下:
(1)取细菌培养液1.5ml,12000rmp离心1min,尽量吸尽上清。
(2)向菌体沉淀中加入200ul溶液A,振荡至菌体充分悬浮,或用加样枪缓慢反复吹打数次,加入20ul终浓度为20mg/ml的溶菌酶,加入20ul 10mg/ml的RnaseA,37℃放置15min。 
(3)向管中加入20ul 10mg/ml的蛋白酶K,充分混匀,65℃消化30-60min,期间可颠倒离心管混匀数次,直至样品消化完全为止。消化完全的标志是:液体清亮及粘稠。 
(4)向管中加入200ul溶液B,充分混匀。如出现白色沉淀,可放65℃15-30min,沉淀即会消失,不影响后续实验。如溶液未变清亮,说明样品消化不彻底,可能导致提取的DNA量少及不纯,还有可能导致上柱后堵柱子。 
(5)向管中加入200ul无水乙醇,颠倒混匀(此时可能会出现絮状沉淀),不影响DNA的提取,可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中,静置2min。 
(6)12000rmp离心2min,弃掉废液,将吸附柱放入收集管中。 
(7)向吸附柱中加入700ul漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇!),12000rmp离心1min,弃掉废液, 将吸附柱放入收集管中。 
(8)向吸附柱中加入500ul漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇!),12000rmp离心1min,弃掉废液, 将吸附柱重新放入收集管中。 
(9)12000rmp离心2min,将吸附柱置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。 
(10)将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液,室温放置5min,12000rmp离心2min。 
(11)将离心所得洗脱液重新加入离心吸附柱中,室温放置2min,12000rmp离心2min, 
即可得到高质量的细菌基因组DNA。
1.2.2.2提取过程中的注意事项 
(1)细菌培养液应避免反复冻融,最好用新培养的,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
(2)若溶液A或溶液B中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,不影响实验结果。 
(3)如果菌体沉淀消化不彻底,后imd离心步骤中可能会出现堵柱子的现象,可适当延长离心时间。 
(4)洗脱缓冲液的体积最好不少于50ul,体积过小会影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于7.0会降低洗脱效率;回收的DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。 
1.2.3引物的设计与合成 
参照文献, 以猪链球菌2型(菌株号为S735,GenBank序列号为AF118389)的cps2J基因序列为靶序列,利用Primer Premier 5.0软件设计特异性引物和探针。上游引物:5’-TGGAATACGCAGAGCAAGAT-3’,下游引物:5’Cy3-AGCAAGTAACCCTCCCGACA-3’; 探针:5’NH2-TTTTTTTTTTTTTTTT-ACGGTATCAAAAATAGCACAGCAAA-3’。 在下游引物5’端用Cy3进行荧光标记,探针的5’端进行氨基化修饰,修饰氨基和探针之间加上16个T。引物和探针均由上海生工公司合成。先用灭菌水将合成好的冻干引物稀释成100μM/L的母液, 再稀释为20μM/L 的浓度置于-20℃冻存备用。
1.2.4基因芯片的制备  
先用灭菌水将合成好的冻干探针稀释成100um/L的母液,再依次稀释成5um/L(5ul探针+45ul灭菌水+50ul点样缓冲液)、10um/L(10ul探针+40ul灭菌水+50ul点样缓冲液)、20um/L(20ul探针+30ul灭菌水+50ul点样缓冲液)。在96孔U形板的A1孔加入100ul点样缓冲液作空白对照,B1、C1、D1孔分别加入100ul 5um/L、10um/L、20um/L的探针,使用美国Bio-Dot公司的 AD1500基因芯片点样仪按预先设定好的程序在醛基化基片上接触式点样。点样环境参数为相对湿度55-65%,温度15-30℃,各探针点间距为1.5mm,点样阵列根据实验要求设定为四个矩阵,每个矩阵点样为7×3,点样完毕的芯片静置于30℃烘箱干燥过夜备用。芯片点样示意图见图1;
1.2.5杂交用PCR产物的制备与鉴定
对反应条件和参数逐个进行优化,确立最佳浓度和扩增反应条件,杂交用产物需采用不对称PCR。反应总体积为25ul,其组成如下:
10×Buffer                            2.5ul
dNTP(10mmol/ul)                      2.0ul
上游引物(20μM/L)                   0.2ul
下游引物(20μM/L)                   0.5ul
模板DNA                              1.0ul
ExTaqTM酶                             0.3ul
ddH2O                                18.5ul
Total                                25.0ul
试验时先预混合上述反应体系中除下游引物以外的所有成份,最后在暗室中加入下游引物,混匀后置于PCR仪进行扩增。
PCR扩增反应条件为:95℃预变性5 min,(95℃变性45s, 56℃退火45s, 72℃延伸1 min,共35个循环) 72℃延伸10 min。 
取PCR扩增产物5ul与1ul 6×Lording Buffer,用10ul移液器混合均匀后,将枪头小心深入到加样孔中,注意不要伸到孔底部,以免穿透加样孔而导致样品外溢,缓慢推出使样品垂直落入加样孔中。 
加样结束后,盖上电泳槽盖,调节电压为5v/cm(80v),关闭电泳室灯光,避光电泳20min。待电泳结束后,小心取出凝胶放置于UVI凝胶成像系统中,观察结果并拍照保存。 
1.2.6基因芯片的杂交 
将PCR扩增产物置于PCR仪上98℃变性10min后,立即取出冰浴5min,取PCR扩增产物20ul和杂交缓冲液180ul加于离心管中,混匀后取该混合液加到芯片的点样区,尽量避免产生气泡,将芯片放入杂交盒内,置于42℃水浴锅中避光杂交30min。
1.2.7基因芯片的洗涤和干燥 
芯片的洗涤应在暗室中完成。杂交完毕的芯片放置在玻片架上,立即用洗液1、洗液2、洗液3各洗涤2min,离心干燥后即可用于扫描分析。
1.2.8基因芯片的扫描及扫描结果分析 
将芯片置于InnoScan 700A高性能激光共聚焦扫描仪上扫描,如果背景较高可用洗液3(1×SSC)再洗涤一次,以TIF格式保存图像,然后再另存为为JPG格式图片。用MAPIX软件分析Cy3荧光信号的强度和比值,用以下三个条件作为基因芯片杂交结果判定的依据:
(1)模板DNA的PCR扩增效果良好;
(2)信号强度中位值≥1000,结合杂交扫描图像,杂交斑点清晰(清晰程度和杂交条件有很大关系);
(3)检测基因芯片杂交结果判断时引入样点信号阈值概念SNR,它是信号强度中位值与噪音中位值之比,当它们的比值大于或等于1.5时,表明杂交信号良好,即SNR≥1.5。
本发明工艺简单,能对猪链球菌2型进行快速、灵敏的检测,经试验取得了满意的效果,有关试验结果如下: 
1、PCR扩增结果
以2型猪链球菌基因组DNA为模板,与其特异性引物进行不对称PCR扩增,经琼脂糖凝胶电泳分析扩增片段大小约为209bp,与预计目的片段相同,特异性较好。
2.2 基因芯片杂交结果 
不对称PCR扩增产物置于PCR仪上95℃变性10min后,立即冰浴5min,取该产物20ul和杂交缓冲液180ul加于离心管中充分混合均匀,将该混合液全部加到芯片点样区,将芯片放入杂交盒内,置于42℃水浴锅避光杂交30min。杂交结果经扫描仪扫描,各杂交斑点的SNR值均大于1.5。
结果表明,采用5μm/L的探针浓度就可以达到较高的信号强度,从而降低了检测成本,可用于大规模检测。 
本发明操作简便易行,省去了已点样芯片的水化处理和预杂交步骤,杂交只需半小时,大大节省了时间,达到了快速检测的目的,采用5μm/L的探针浓度就可以达到较高的信号强度,降低了检测成本,可用于大规模检测。 

Claims (6)

1.一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)设计引物和探针:以猪链球菌2型的cps2J基因序列为靶序列,设计特异性引物和探针,上游引物:5’-TGGAATACGCAGAGCAAGAT-3’,下游引物:5’Cy3-AGCAAGTAACCCTCCCG ACA-3’,探针:5’NH2-TTTTTTTTTTTTTTTT-ACGGTATCAAAAATAGCACAGCAAA-3’,在下游引物5’端用Cy3进行荧光标记,探针的5’端进行氨基化修饰,修饰氨基和探针之间加上16个T;
(2)按常规方法对引物和探针进行合成;
(3)基因芯片的制备:用灭菌水溶解合成好的探针,用基因芯片点样仪(按预先设定好的程序)在醛基化基片上接触式点样,点样完毕后将芯片静置于25-30℃烘箱干燥过夜8-12小时。
2.根据权利要求1所述的用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备方法,其特征在于,所述的引物浓度为20μM/L。
3.根据权利要求1所述的用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备方法,其特征在于,所述探针浓度为5μM/L —20μM/L。
4.根据权利要求1所述的用于检测猪链球菌2型的基因芯片的制备方法,其特征在于,点样环境参数为相对湿度55-65%,温度15-30℃,各探针点间距为1.5mm,点样阵列根据实验要求设定。
5.一种用于检测猪链球菌2型的基因芯片的应用方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)提取待测猪链球菌2型细菌的基因组DNA;
(2)杂交用PCR产物的制备:采用不对称PCR,先预混合反应体系中除下游引物以外的所有成份,最后在暗室中加入下游引物,混匀后置于PCR仪进行扩增,所述的反应体系为:10×Buffer为2.5μl,上游引物(20μM/L)为0.2μl,下游引物(20μM/L)为0.5μl,dNTP(10mmol/μl)为2.0μl,模板DNA 1.0μl,ExTaqTM酶为0.3μl,ddH2O为18.5μl,PCR扩增反应条件为:95℃预变性5 min;95℃变性45,56℃退火45s,72℃延伸1 min,共35个循环;72℃延伸10 min;
(3)杂交用PCR产物与权利要求1所述的基因芯片杂交:将杂交用PCR扩增产物置于PCR仪上98℃变性10min后,立即取出冰浴5min,取PCR扩增产物20μl和杂交缓冲液180μl加于离心管中,混匀后取该混合液加到芯片的点样区,尽量避免产生气泡,将芯片放入杂交盒内,置于42℃水浴锅中避光杂交30min;
(4)基因芯片的洗涤与干燥:基因芯片的洗涤应在暗室中完成,杂交完毕的芯片放置在玻片架上,立即用洗液1、洗液2、洗液3各洗涤2min,离心干燥;
(5)基因芯片的结果分析:将芯片置于激光共聚焦扫描仪上扫描,分析Cy3荧光信号的强度和比值,基因芯片杂交结果判定的依据如下:模板DNA的PCR扩增效果良好;信号强度中位值≥1000,结合杂交扫描图像,杂交斑点清晰;检测基因芯片杂交结果判断时引入样点信号阈值概念SNR,它是信号强度中位值与噪音中位值之比,当它们的比值大于或等于1.5时,表明杂交信号良好,即SNR≥1.5。
6.根据权利要求2所述的用于检测猪链球菌2型的基因芯片的使用方法,其特征在于, 所述的杂交芯片洗涤所用洗液1为1×SSC和0.2%SDS;洗液2为0.1×SSC和0.2%SDS;洗液3为0.1×SSC。
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