CN102888458A - 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法 - Google Patents

一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法 Download PDF

Info

Publication number
CN102888458A
CN102888458A CN2012103681049A CN201210368104A CN102888458A CN 102888458 A CN102888458 A CN 102888458A CN 2012103681049 A CN2012103681049 A CN 2012103681049A CN 201210368104 A CN201210368104 A CN 201210368104A CN 102888458 A CN102888458 A CN 102888458A
Authority
CN
China
Prior art keywords
tilapia
streptococcus agalactiae
reaction
concentration
mentioned steps
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN2012103681049A
Other languages
English (en)
Inventor
易弋
杨军
黄稀
黎娅
伍时华
罗福广
左跃
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
LIUZHOU YUJIALE FEED CO Ltd
Guangxi University of Science and Technology
Original Assignee
LIUZHOU YUJIALE FEED CO Ltd
Guangxi University of Science and Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by LIUZHOU YUJIALE FEED CO Ltd, Guangxi University of Science and Technology filed Critical LIUZHOU YUJIALE FEED CO Ltd
Priority to CN2012103681049A priority Critical patent/CN102888458A/zh
Publication of CN102888458A publication Critical patent/CN102888458A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,涉及一种无乳链球菌的检测方法,本发明以无乳链球菌cfb基因为检测对象,通过检测罗非鱼血液中是否存在无乳链球菌cfb基因,从而判断被检罗非鱼是否受到了无乳链球菌感染。本方法通过反转录的方法将菌体内单拷贝的cfb基因转变为多拷贝,再通过环介导等温扩增技术对目标基因进行检测,从而大大提高检测灵敏度。该方法能在感染初期快速、特异、简便的检出罗非鱼体内的无乳链球菌,为罗非鱼链球菌病的预防提供新的技术手段。

Description

一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法
技术领域
本发明涉及一种无乳链球菌的检测方法,特别是一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法。
背景技术
罗非鱼是全球主要经济鱼类之一,具有生长快、抗病力与抗逆性强、肉质好、繁殖力强、适应性广以及群体产量高等一系列优点,现已成为南方各省出口型养殖规模最大的鱼类,产量占全世界的50%,罗非鱼产业对于增加就业机会、提高农民收入都有十分重要的意义。然而近年来,由于高密度饲养,种群退化,加上养殖水质、环境及气候恶化,各类病害时常大面积爆发,严重影响到罗非鱼产业的健康发展。2009 ~2011年,国内主要的罗非鱼养殖区爆发了非常严重的罗非鱼流行病,患病罗非鱼在水面离群独游,游姿失衡,眼球突出,被养殖户形象的称为“突眼病”。该病发病率一般达20%~30%,死亡率在95%以上。病原分析表明引起罗非鱼“突眼病”的病原为链球菌,主要为海豚链球菌(Streptococcus iniae)和无乳链球菌(Streptococcus agalactiae)。据统计,近几年因链球菌病导致罗非鱼产业的损失达20亿元,如何防治罗非鱼链球菌病已成为农业和渔业管理部门最为关注的问题。
分子诊断技术是当代医学发展的重要前沿领域之一,主要包括免疫诊断技术和分子生物学诊断技术,二者都具有操作简便、快速、准确、特异性强、阳性率高的特点。免疫学技术是利用特异性抗原抗体反应,检测病原微生物,简化了病原微生物的鉴定步骤,备受关注。各大文献数据库提供的数据显示,几乎建立了所有病原体的血清学检测方法,表明该方法已成为一种微生物实验室常用的成熟的检测技术,具有操作简便、快速、准确、特异性强、阳性率高等特点。免疫学方法中常见的几种诊断技术包括凝集技术、荧光抗体技术、酶联免疫技术等。随着分子生物学技术的迅速发展,使人们对微生物的认识从外部表型逐渐转向内部基因结构特征,微生物的检测也从生化、免疫方法转向基因水平检测,对于那些难培养和不可能培养的微生物,可直接通过获得基因信息,给微生物学的检测带来崭新的领域。分子生物学诊断技术中常用的方法有PCR技术、核酸分子杂交、多位点序列分型、环介导等温扩增技术等。同免疫诊断试剂相比较,分子生物学诊断试剂具有生产工艺简单,灵敏度更高的特点,逐渐成为新一代分子诊断试剂开发的主流。
CAMP因子是无乳链球菌特异性产生的一种蛋白质,是无乳链球菌区别于其他细菌的重要特征指标。在传统的无乳链球菌生理生化鉴定中,CAMP试验已成为鉴定无乳链球菌的关键试验。CAMP因子的编码基因是cfb基因,利用分子生物学技术检测样品中是否含有cfb基因即可判断样品是否受到了无乳链球菌的感染。
环介导等温扩增法( loop-mediated isothermal amplification,简称LAMP)是2000 年开发的一种新颖的恒温核酸扩增方法,其特点是针对靶基因的6 个区域设计4 种特异引物,利用一种链置换DNA 聚合酶在等温条件(63 ℃左右) 保温30~60 min,即可完成核酸扩增反应。与常规PCR相比,不需要模板的热变性、温度循环、电泳及紫外观察等过程。LAMP 是一种全新的核酸扩增方法,具有简单、快速、特异性强的特点。该技术在灵敏度、特异性和检测范围等指标上能媲美甚至优于PCR技术,能不依赖任何专门的仪器设备实现现场高通量快速检测。
罗非鱼链球菌病是危害罗非鱼养殖业最严重的爆发性疾病,无乳链球菌是最主要的病原菌。通过分子检测手段,在养殖过程中定期检测罗非鱼是否受到无乳链球菌的感染,是预防链球菌病的一种有效措施。目前已公开的专利和论文多使用PCR的方法检测无乳链球菌,该方法能够特异性的检测无乳链球菌,但检出灵敏度低,只适用于感染后期鱼体内病原菌含量较多的时候。由于感染已发展至后期,因此在得出检测结果后采取预防措施的效果会大打折扣,更有可能在采取措施之前,疾病就已爆发。
发明内容
本发明要解决的技术问题是:提供一种测试灵敏度高、测试速度快的罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法。
解决上述技术问题的技术方案是:一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,包括以下步骤:
S1.抽取待检罗非鱼的血液1~2 mL,提取血液中的总RNA;
S2.以所提取的总RNA为模板,进行反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA;
S3.根据无乳链球菌的cfb基因序列设计并合成用于环介导等温扩增的引物;
S4.以上述步骤S2中获得的cDNA为模板,利用上述步骤S3中合成的引物,进行目标基因的环介导等温扩增;
S5.扩增完成后,检测反应结果,结果阳性的表示供检罗非鱼感染了无乳链球菌,结果阴性的表示供检罗非鱼没有感染无乳链球菌。
本发明的进一步技术方案是:步骤S1中所述的提取罗非鱼血液总RNA,具体方法如下:
S11.抽取待检罗非鱼的血液1 mL,将其于转速为5000 rpm离心10 min,去掉上清液后加入1 mL用于总RNA抽提的trizol试剂,反复吹打重悬沉淀,得重悬液;
S12.将上述步骤S11中所得的重悬液于室温静置5min后,每1 mL trizol加0.2 mL氯仿,用手轻摇3-5次,使得氯仿和trizol试剂混合均匀,在室温静置2-3min后,于4-8℃,转速12000 rpm离心15 min,离心后,溶液分为水层、中间层和氯仿层共3层;
S13.将上述步骤S12中的水层0.4-0.5 mL转移到一只干净的1.5 mL离心管中,加入等体积的异丙醇,用手轻摇3-5次混匀,在室温放置10 min,于4-8℃,转速12000 rpm离心10 min,离心后弃去上清液,所得沉淀备用;
S14.将上述步骤S13中所获的沉淀,用1mL浓度为75%乙醇洗涤后,在4-8℃,转速7500 rpm离心5 min,离心后弃去上清液,所得沉淀即为提取的总RNA;
S15.将上述步骤S14获得的RNA自然干燥后加入40 μL去RNA酶水进行溶解。
步骤S2中所述的以所提取的总RNA为模板,进行反转录反应,具体方法如下:
S21.配制反应体系20μL,包括RNA模板1μl,5倍反应缓冲液4μL,浓度为10 mmol/L的dNTP 2μL,浓度为10U/μL 的RNA酶抑制剂2μL,浓度为25μmol/L的随机引物1μL,浓度为5U/μL的反转录酶2μL,添加去RNA酶水至总体积20μL;
上述的5倍反应缓冲液由pH=8.3的Tris-HCl 250 mmol/L,KCl 375 mmol/L,MgCl2 40 mmol/L和DTT 50 mmol/L组成而得; 
S22.轻微混匀通过上述步骤S21所得的反应液,于室温放置10 min后移入 42℃恒温槽中保温1 h;
S23.将经过上述步骤S22的反应液于冰水中冷却2min完成反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA。
步骤S3中所述的引物是根据GenBank数据库提供的无乳链球菌的cfb基因序列,并结合环介导等温扩增技术的原理设计并合成,分别是:
P1: 5-ATGAACGTTACACATATGATGT-3;
P2: 5-GTTCCCTGAACATTATCTTTGA-3;
P3: 5-TCAGCATGTACTTCTAATACAGCTGATCTATCTGGAACTCTAGTGG-3;
P4: 5-AGTGACAACTCCACAAGTGGTAGCTATCTTGATCAAGCTTTTGAG-3。
步骤S4中所述的目标基因的环介导等温扩增的具体方法如下:
S41.配制反应体系25μL,包括10倍反应缓冲液2.5μL,浓度为25mmol/L的MgSO4 4μL、浓度为10mmol/L的dNTP 4μL,浓度为20μmol/L的引物P1和P2各1.5μL,浓度为10μmol/L的引物P3和P4各0.5μL,浓度为8U/μL的Bst DNA聚合酶大片段1μL,步骤S2中获得的cDNA模板2μL,添加ddH2O至总体积25μL;
上述上10倍反应缓冲液由pH=8.8的Tris-HCl 200mmol/L,KCl 100 mmol/L,(NH4)2SO4 100 mmol/L,MgSO4 20 mmol/L和TritonX-100 1%组成而得;
S42.轻微混匀通过上述步骤S41所得的反应液,于65℃保温1 h;
S43.将经过上述步骤S42的反应液于80℃保温10min以终止反应。
步骤S5中所述的扩增完成后,检测反应结果的方式为:直接用肉眼观察反应结果,若步骤S4中的反应体系中出现白色沉淀者为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染。
步骤S5中所述的扩增完成后,检测反应结果的方式为:使用DNA染料SYBR Green I染料进行染色,即向步骤S4中的反应液中加入SYBR Green I 1 μL,若反应体系在紫外灯下出现绿色荧光为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染。
该方法不经过细菌的培养,直接以罗非鱼血液为样本进行检测。
由于采用上述技术方案,本发明之一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法有以下有益效果:
   1.检测灵敏度高:
本发明结合了反转录技术和环介导等温扩增技术,通过反转录的方法将菌体内单拷贝的cfb基因转变为多拷贝,再通过环介导等温扩增技术对目标基因进行检测,从而大大提高了检测灵敏度高。检出限可到达10~100CFU/mL,能够在罗非鱼感染无乳链球菌初期检出体内的无乳链球菌,为罗非鱼链球菌病的预防提供新的技术手段。
2.检测速度快:
本发明通过分子生物学方法检测罗非鱼血液中是否存在无乳链球菌cfb基因,从而判断被检罗非鱼是否受到了无乳链球菌感染。检测结果可用肉眼直接观察,整个检测时间小于5h。本方法使用罗非鱼的血液为样品进行检测,可以对罗非鱼进行抽血,不会致死,同时也减少了使用肝、脾等器官进行检测时所必需的组织碾磨的步骤。
3.特异性高:
本发明之一种罗非鱼无乳链球菌高灵敏度的快速检测方法,以无乳链球菌特有的cfb基因为目标基因,能避免其他细菌的干扰而特异性的检测无乳链球菌。
具体实施方式:
一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,包括以下步骤:
S1.抽取待检罗非鱼的血液1~2 mL,提取血液中的总RNA;具体方法如下:
S11.抽取待检罗非鱼的血液1 mL,将其于转速为5000 rpm离心10 min,去掉上清液后加入1 mL 用于总RNA抽提的trizol试剂,反复吹打重悬沉淀,得重悬液;
S12.将上述步骤S11中所得的重悬液于室温静置5min后,每1 mL trizol加0.2 mL氯仿,用手轻摇3-5次,使得氯仿和trizol试剂混合均匀,在室温静置2-3min后,于4-8℃,转速12000 rpm离心15 min,离心后,溶液分为水层、中间层和氯仿层共3层;
S13.将上述步骤S12中的水层0.4-0.5 mL转移到一只干净的1.5 mL离心管中,加入等体积的异丙醇,用手轻摇3-5次混匀,在室温放置10 min,于4-8℃,转速12000 rpm离心10 min,离心后弃去上清液,所得沉淀备用;
S14.将上述步骤S13中所获的沉淀,用1mL浓度为75%乙醇洗涤后,在4-8℃,转速7500 rpm离心5 min,离心后弃去上清液,所得沉淀即为提取的总RNA;
S15.将上述步骤S14获得的RNA自然干燥后加入40 μL去RNA酶水进行溶解。
S2.以所提取的总RNA为模板,进行反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA;具体方法如下:
S21.配制反应体系20μL,包括RNA模板1μl,5倍反应缓冲液4μL,浓度为10 mmol/L的dNTP 2μL,浓度为10U/μL 的RNA酶抑制剂2μL,浓度为25μmol/L的随机引物1μL,浓度为5U/μL的反转录酶2μL,添加去RNA酶水至总体积20μL;
上述的5倍反应缓冲液为由pH8.3的Tris-HCl 250 mmol/L,KCl 375 mmol/L,MgCl2 40 mmol/L和DTT 50 mmol/L组成而得; 
S22.轻微混匀通过上述步骤S21所得的反应液,于室温放置10 min后移入 42℃恒温槽中保温1 h;
S23.将经过上述步骤S22的反应液于冰水中冷却2min完成反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA。
S3.根据无乳链球菌的cfb基因序列设计并合成用于环介导等温扩增的引物;
其中,所述的引物是根据GenBank数据库提供的无乳链球菌的cfb基因序列,该序列在数据库中的登陆号为NC_007432,并结合环介导等温扩增技术的原理设计并合成,分别是:
P1: 5-ATGAACGTTACACATATGATGT-3;
P2: 5-GTTCCCTGAACATTATCTTTGA-3;
P3: 5-TCAGCATGTACTTCTAATACAGCTGATCTATCTGGAACTCTAGTGG-3;
P4: 5-AGTGACAACTCCACAAGTGGTAGCTATCTTGATCAAGCTTTTGAG-3。
S4.以上述步骤S2中获得的cDNA为模板,利用上述步骤S3中合成的引物,进行目标基因的环介导等温扩增;具体方法如下:
S41.配制反应体系25μL,包括10倍反应缓冲液2.5μL,浓度为25mmol/L的MgSO4 4μL、浓度为10mmol/L的dNTP 4μL,浓度为20μmol/L的引物P1和P2各1.5μL,浓度为10μmol/L的引物P3和P4各0.5μL,浓度为8U/μL的Bst DNA聚合酶大片段1μL,步骤S2中获得的cDNA模板2μL,添加ddH2O(重蒸水)至总体积25μL;
上述上10倍反应缓冲液为由pH8.8的Tris-HCl 200mmol/L,KCl 100 mmol/L,(NH4)2SO4 100 mmol/L,MgSO4 20 mmol/L和TritonX-100 1%组成而得;
S42.轻微混匀通过上述步骤S41所得的反应液,于65℃保温1 h;
S43.将经过上述步骤S42的反应液于80℃保温10min以终止反应。
S5.扩增完成后,检测反应结果,结果阳性的表示供检罗非鱼感染了无乳链球菌,结果阴性的表示供检罗非鱼没有感染无乳链球菌;其中,检测反应结果的方式为:直接用肉眼观察反应结果,若步骤S4中的反应体系中出现白色沉淀者为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染;也可以使用DNA染料SYBR Green I进行染色,即向步骤S4中的反应液中加入SYBR Green I 1 μL,若反应体系在紫外灯下出现绿色荧光为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染。
本发明之一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法不经过细菌的培养,直接以罗非鱼血液为样本进行检测。

Claims (8)

1.一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:包括以下步骤:
S1.抽取待检罗非鱼的血液1~2 mL,提取血液中的总RNA;
S2.以所提取的总RNA为模板,进行反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA;
S3.根据无乳链球菌的cfb基因序列设计并合成用于环介导等温扩增的引物;
S4.以上述步骤S2中获得的cDNA为模板,利用上述步骤S3中合成的引物,进行目标基因的环介导等温扩增;
S5.扩增完成后,检测反应结果,结果阳性的表示供检罗非鱼感染了无乳链球菌,结果阴性的表示供检罗非鱼没有感染无乳链球菌。
2.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S1中所述的提取罗非鱼血液总RNA,具体方法如下:
S11.抽取待检罗非鱼的血液1 mL,将其于转速为5000 rpm离心10 min,去掉上清液后加入1 mL用于总RNA抽提的trizol试剂,反复吹打重悬沉淀,得重悬液;
S12.将上述步骤S11中所得的重悬液于室温静置5min后,每1 mL trizol加0.2 mL氯仿,用手轻摇3-5次,使得氯仿和trizol试剂混合均匀,在室温静置2-3min后,于4-8℃,转速12000 rpm离心15 min,离心后,溶液分为水层、中间层和氯仿层共3层;
S13.将上述步骤S12中的水层0.4-0.5 mL转移到一只干净的1.5 mL离心管中,加入等体积的异丙醇,用手轻摇3-5次混匀,在室温放置10 min,于4-8℃,转速12000 rpm离心10 min,离心后弃去上清液,所得沉淀备用;
S14.将上述步骤S13中所获的沉淀,用1mL浓度为75%乙醇洗涤后,在4-8℃,转速7500 rpm离心5 min,离心后弃去上清液,所得沉淀即为提取的总RNA;
S15.将上述步骤S14获得的RNA自然干燥后加入40 μL去RNA酶水进行溶解。
3.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S2中所述的以所提取的总RNA为模板,进行反转录反应,具体方法如下:
S21.配制反应体系20μL,包括RNA模板1μl,5倍反应缓冲液4μL,浓度为10 mmol/L的dNTP 2μL,浓度为10U/μL 的RNA酶抑制剂2μL,浓度为25μmol/L的随机引物1μL,浓度为5U/μL的反转录酶2μL,添加去RNA酶水至总体积20μL;
上述的5倍反应缓冲液由pH=8.3的Tris-HCl 250 mmol/L,KCl 375 mmol/L,MgCl2 40 mmol/L和DTT 50 mmol/L组成而得; 
S22.轻微混匀通过上述步骤S21所得的反应液,于室温放置10 min后移入 42℃恒温槽中保温1 h;
S23.将经过上述步骤S22的反应液于冰水中冷却2min完成反转录反应,获得待测罗非鱼血液样品的cDNA。
4.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S3中所述的引物是根据GenBank数据库提供的无乳链球菌的cfb基因序列,并结合环介导等温扩增技术的原理设计并合成,分别是:
P1: 5-ATGAACGTTACACATATGATGT-3;
P2: 5-GTTCCCTGAACATTATCTTTGA-3;
P3: 5-TCAGCATGTACTTCTAATACAGCTGATCTATCTGGAACTCTAGTGG-3;
P4: 5-AGTGACAACTCCACAAGTGGTAGCTATCTTGATCAAGCTTTTGAG-3。
5.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S4中所述的目标基因的环介导等温扩增的具体方法如下:
S41.配制反应体系25μL,包括10倍反应缓冲液2.5μL,浓度为25mmol/L的MgSO4 4μL、浓度为10mmol/L的dNTP 4μL,浓度为20μmol/L的引物P1和P2各1.5μL,浓度为10μmol/L的引物P3和P4各0.5μL,浓度为8U/μL的Bst DNA聚合酶大片段1μL,步骤S2中获得的cDNA模板2μL,添加ddH2O至总体积25μL;
上述上10倍反应缓冲液由pH=8.8的Tris-HCl 200mmol/L,KCl 100 mmol/L,(NH4)2SO4 100 mmol/L,MgSO4 20 mmol/L和TritonX-100 1%组成而得;
S42.轻微混匀通过上述步骤S41所得的反应液,于65℃保温1 h;
S43.将经过上述步骤S42的反应液于80℃保温10min以终止反应。
6.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S5中所述的扩增完成后,检测反应结果的方式为:直接用肉眼观察反应结果,若步骤S4中的反应体系中出现白色沉淀者为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染。
7.根据权利要求1所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:步骤S5中所述的扩增完成后,检测反应结果的方式为:使用DNA染料SYBR Green I染料进行染色,即向步骤S4中的反应液中加入SYBR Green I 1 μL,若反应体系在紫外灯下出现绿色荧光为阳性,说明血液样品中含有无乳链球菌,即表示带检罗非鱼已受到无乳链球菌的感染。
8.根据权利要求1-7任一权利要求所述的一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法,其特征在于:该方法不经过细菌的培养,直接以罗非鱼血液为样本进行检测。
CN2012103681049A 2012-09-27 2012-09-27 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法 Pending CN102888458A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2012103681049A CN102888458A (zh) 2012-09-27 2012-09-27 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2012103681049A CN102888458A (zh) 2012-09-27 2012-09-27 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN102888458A true CN102888458A (zh) 2013-01-23

Family

ID=47532140

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2012103681049A Pending CN102888458A (zh) 2012-09-27 2012-09-27 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN102888458A (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103255090A (zh) * 2013-05-06 2013-08-21 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 一种无乳链球菌快速分离鉴定试剂盒及其应用
CN104263842A (zh) * 2014-10-05 2015-01-07 中山大学 一种鱼源无乳链球菌的荧光定量pcr检测方法
CN104561267A (zh) * 2014-11-26 2015-04-29 福建省淡水水产研究所 检测罗非鱼无乳链球菌的环介导等温扩增反应引物
CN104593509A (zh) * 2015-01-29 2015-05-06 中国水产科学研究院珠江水产研究所 罗非鱼无乳链球菌特异性核酸探针斑点杂交检测试剂盒
CN104726567A (zh) * 2015-03-04 2015-06-24 广西壮族自治区水产科学研究院 一种无乳链球菌环介导等温扩增试剂盒及其应用
CN111485028A (zh) * 2019-01-29 2020-08-04 广东美格基因科技有限公司 用于检测罗非鱼无乳链球菌的荧光定量pcr方法及相应试剂盒
CN114686612A (zh) * 2022-04-26 2022-07-01 广东海大畜牧兽医研究院有限公司 一种罗非鱼链球菌病双重荧光pcr检测引物探针组及冻干型试剂盒

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1727497A (zh) * 2005-07-29 2006-02-01 天津生物芯片技术有限责任公司 B组链球菌检测基因芯片及其检测方法和检测用试剂盒
JP2010284090A (ja) * 2009-06-10 2010-12-24 National Institute Of Infectious Diseases B群連鎖球菌を検出するためのプライマーセット及びその利用
CN102747165A (zh) * 2012-07-26 2012-10-24 中国水产科学研究院珠江水产研究所 一种应用环介导等温扩增技术快速检测罗非鱼无乳链球菌的试剂盒及检测方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1727497A (zh) * 2005-07-29 2006-02-01 天津生物芯片技术有限责任公司 B组链球菌检测基因芯片及其检测方法和检测用试剂盒
JP2010284090A (ja) * 2009-06-10 2010-12-24 National Institute Of Infectious Diseases B群連鎖球菌を検出するためのプライマーセット及びその利用
CN102747165A (zh) * 2012-07-26 2012-10-24 中国水产科学研究院珠江水产研究所 一种应用环介导等温扩增技术快速检测罗非鱼无乳链球菌的试剂盒及检测方法

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DANBING KE,ET AL: "Development of Conventional and Real-Time PCR Assays for the Rapid Detection of Group B Streptococci", 《CLINICAL CHEMISTRY》, vol. 46, no. 3, 31 December 2000 (2000-12-31) *
LIU,M.-X: "streptoccus agalactiae strain GDzl CAMP factor(cfb)gene,complete cds", 《GENBANK:GU217532.1》, 19 December 2009 (2009-12-19) *
SHUANG-HU CAI,ET AL: "Development of Loop-mediated isothermal amplification method for rapid detection of Streptococcus iniae,the causative agent of streptococcicosis in fish", 《JOURNAL OF BASIC MICROBIOLOGY》, vol. 52, 30 April 2012 (2012-04-30), pages 116 - 122 *
王永等: "LAMP检测无乳链球菌方法的建立及应用", 《华北农学报》, vol. 24, no. 5, 31 December 2009 (2009-12-31), pages 234 - 238 *
黎炯等: "双重PCR快速鉴别无乳链球菌和海豚链球菌", 《湖南农业大学学报(自然科学版)》, vol. 36, no. 4, 31 August 2010 (2010-08-31), pages 449 - 452 *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103255090A (zh) * 2013-05-06 2013-08-21 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 一种无乳链球菌快速分离鉴定试剂盒及其应用
CN103255090B (zh) * 2013-05-06 2015-01-07 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 一种无乳链球菌快速分离鉴定试剂盒及其应用
CN104263842A (zh) * 2014-10-05 2015-01-07 中山大学 一种鱼源无乳链球菌的荧光定量pcr检测方法
CN104561267A (zh) * 2014-11-26 2015-04-29 福建省淡水水产研究所 检测罗非鱼无乳链球菌的环介导等温扩增反应引物
CN104593509A (zh) * 2015-01-29 2015-05-06 中国水产科学研究院珠江水产研究所 罗非鱼无乳链球菌特异性核酸探针斑点杂交检测试剂盒
CN104726567A (zh) * 2015-03-04 2015-06-24 广西壮族自治区水产科学研究院 一种无乳链球菌环介导等温扩增试剂盒及其应用
CN111485028A (zh) * 2019-01-29 2020-08-04 广东美格基因科技有限公司 用于检测罗非鱼无乳链球菌的荧光定量pcr方法及相应试剂盒
CN114686612A (zh) * 2022-04-26 2022-07-01 广东海大畜牧兽医研究院有限公司 一种罗非鱼链球菌病双重荧光pcr检测引物探针组及冻干型试剂盒
CN114686612B (zh) * 2022-04-26 2024-05-07 广东海大畜牧兽医研究院有限公司 一种罗非鱼链球菌病双重荧光pcr检测引物探针组及冻干型试剂盒

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102888458A (zh) 一种罗非鱼源无乳链球菌的高灵敏度快速检测方法
CN101475986B (zh) 一种对多种弧菌进行基因检测的共检芯片及其检测与应用
CN110551846A (zh) 一种用于非洲猪瘟病毒核酸快速检测的Cpf1试剂盒及其检测方法
CN108103240A (zh) 对虾传染性肌肉坏死病毒(imnv)的raa恒温荧光检测方法及试剂
CN106191298A (zh) 一种检测副溶血性弧菌Vibrio parahaemolyticus的方法
CN110616272B (zh) 检测对虾肝肠胞虫的引物组及含有该引物组的试剂盒
CN103898108B (zh) 对河流弧菌o2,o4,o13,o15和o18特异的核苷酸及其应用
CN102747165B (zh) 一种应用环介导等温扩增技术快速检测罗非鱼无乳链球菌的试剂盒
CN109913565B (zh) 一种用于检测副溶血弧菌的试剂盒、引物对、探针及方法
CN106520977A (zh) 环介导等温扩增法检测苜蓿根腐病菌的引物及方法
CN104726567A (zh) 一种无乳链球菌环介导等温扩增试剂盒及其应用
Xin et al. Rapid detection and differentiating of the predominant Salmonella serovars in chicken farm by TaqMan multiplex real-time PCR assay
WO2020136595A1 (en) Fast and portable microfluidic detection system as an alternative to salmonella's classical culture method
CN102676664A (zh) 同时检测多种水产品致病菌的荧光定量pcr引物和探针及检测方法
CN103993090B (zh) 对普罗威登斯菌o31,o41,o42,o43和o50特异的核苷酸及其应用
Zhou et al. Rapid visual detection of Aeromonas salmonicida by loop‐mediated isothermal amplification with hydroxynaphthol blue dye
CN104328174B (zh) 一种检测鼠肺炎克雷伯氏菌的lamp引物、试剂盒及方法
CN103409499A (zh) 一种钙黄绿素荧光可视化沙门氏菌lamp检测方法
Pokorova et al. Detection of cyprinid herpesvirus‐3 in field samples of common and koi carp by various single‐round and nested PCR methods
CN103952483B (zh) 利用dpo-pcr方法检测溶藻弧菌的dpo引物序列及检测试剂盒
CN104630328B (zh) 肺炎支原体23S rRNA 2064位点A:G突变检测特异性引物和探针
CN107604081A (zh) 可视化lamp检测铜绿假单胞菌的引物组、试剂盒及方法
CN105200045B (zh) 对河流弧菌o11,o14,o16和o17特异的核苷酸及其应用
CN105200044B (zh) 对河流弧菌o1,o6,o7,o8和o9特异的核苷酸及其应用
CN106048051B (zh) 一种克柔念珠菌荧光pcr检测试剂盒

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20130123