CN102876790A - 一种菊属及其近缘种属通用的ssr标记pcr反应方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法,其PCR反应体系中,引物浓度为0.32μM/μl,Taq酶浓度为0.2U/μl,dNTP浓度为0.4μM/μl,Mg2+的浓度为0.65μM/μl,DNA的浓度为2~4ng/μl。应用本发明所用的方法进行SSR分子标记PCR反应,所得到的条带清晰、多态性好、重复性高,而且操作简单,在菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属的野生种和品种间通用,应用前景十分广阔。
Description
技术领域
本发明属于植物生物技术领域,具体涉及一种菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法。
背景技术
聚合酶链反应(Polymerase Chain Reaction,PCR)是80年代中期发展起来的体外核酸扩增技术。它具有特异、敏感、产率高、快速、简便、重复性好、易自动化等优点,能在一个试管内将所要研究的目的基因或某一DNA片段于数小时内扩增至十万乃至百万倍,使肉眼能直接观察和判断。
PCR五因素:引物、TaqDNA聚合酶、dNTP、DNA模板和Mg2+。
PCR技术的基本原理:类似于DNA的天然复制过程,其特异性依赖于与靶序列两端互补的寡核苷酸引物。PCR由变性-退火-延伸三个基本反应步骤构成:①模板DNA的变性:模板DNA经加热至93℃左右一定时间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列配对结合;③引物的延伸:DNA模板-引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制原理,合成一条新的与模板DNA链互补的半保留复制链重复循环变性-退火-延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链”,而且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~4分钟,2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。
SSR标记是一类重要的分子标记,应用于植物的育种、品种鉴定等领域,SSR标记的开发与利用需要一个灵敏度高,准确性好的PCR反应方法。而目前在菊属及其近缘种属(菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属)尚未研究出高效、通用性强的SSR标记的PCR反应方法。
发明内容
为填补在菊属、亚菊属,太行菊属、芙蓉菊属的野生种和品种之间没有通用的SSR标记PCR反应方法的空白,本发明的目的是提供一种菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法。
本发明提供的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法,其PCR反应体系如下:
其中,所述引物可选自以下2对引物中的任意一对:
SSR标记LHJ-1引物序列:
上游引物:5'-ATGGTGGTGGTAGCTGGGT-3'(如SEQ ID NO.1所示)
下游引物:5'-GAGATCGGAGGGTGCGTG-3'(如SEQ ID NO.2所示)
SSR标记YH-2引物序列:
上游引物:5'-TTCGACGGGTGGTGGTGTT-3'(如SEQ ID NO.3所示)
下游引物:5'-GACACCACAACGCTACCGC-3'(如SEQ ID NO.4所示)
其中,反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,50-62℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。
本发明还提供所述菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法在菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属的野生种和品种中的应用。
本发明所提供的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法具有如下优点:
1、本发明填补了在菊属,亚菊属,太行菊属,芙蓉菊属的野生种和品种之间缺少通用的SSR标记PCR反应方法的空白。
2、本发明的SSR标记PCR反应方法灵敏度高,重复性好,易于操作,而且通用性好。
3、有利于菊属,亚菊属,太行菊属,芙蓉菊属SSR标记的开发和利用,推动菊属及近缘种属的新品种培育和商品花卉生产。
附图说明
图1为本发明方法所做菊属品种和野生种的SSR标记PCR产物的琼脂糖电泳图。
图2为本发明方法所做亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属及菊属野生种的SSR标记PCR产物的琼脂糖电泳图。
其中,图1中PCR产物琼脂糖凝胶电泳条带序号代表的种类依次是:1野菊、2甘菊、3甘野菊、4毛华菊、5小红菊、6菊花脑、7紫花野菊、8神农香菊、9阳光小菊、10繁白露、11四季黄、12香玉、13上海小菊、14夏菊、15国庆红、16玉人面、17神马、18帅旗、19粉玉卷帘、20金葵台、21精兴将军。图2中PCR产物琼脂糖凝胶电泳条带序号代表的种类依次是:1亚菊、2矶菊、3灌木亚菊、4细裂亚菊、5异色亚菊、6柳叶亚菊、7太行菊、8长裂太行菊、9芙蓉菊、10甘野菊、11毛华菊。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中,菊属及近缘种属植物材料均取自北京林业大学种质资源圃,DNA样品的提取采用天根生化科技(北京)有限公司DNA提取试剂盒完成,所用的Tag酶、dNTP和MgCl2是由Promega公司生产的,SSR引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。
实施例1本发明菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法的建立
(1)提取了菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属内常用的野生种及其栽培品种的DNA样品。
菊属野生种类有:野菊,甘菊,甘野菊,毛华菊,小红菊,菊花脑,紫花野菊,神农香菊。
菊属栽培种类中小菊品种有:阳光小菊(盆栽小菊),繁白露(北方地被小菊),四季黄(北方地被小菊),香玉(切花小菊),上海小菊(南方地被小菊),夏菊(夏季开花种类),国庆红(南方地被小菊),玉人面(茶用菊品种);
菊属栽培种类中大菊有:神马(重要切花菊品种),帅旗(中国传统大菊品种),粉玉卷帘(中国传统大菊品种),金葵台(中国传统大菊品种),精兴将军(日本大菊品种);
亚菊属种类:亚菊,矶菊(原产日本),灌木亚菊,细裂亚菊,异色亚菊,柳叶亚菊;
太行菊属:太行菊,长裂太行菊(此属为中国特有,仅此两种);
芙蓉菊属:芙蓉菊(仅此一种,特产我国)。
(2)经过大量的预实验,设计了25μl体系PCR五因素4水平正交试验:
Taq酶(5U/μl):0.25μl,0.5μl,0.75μl,1.0μl;
dNTP(20μM/μl):0.25μl,0.5μl,0.75μl,1.0μl;
Mg2+(6.5μM/μl):1.5μl,2.0μl,2.5μl,3.0μl;
引物(10μM/L):0.2μl,0.4μl,0.6μl,0.8μl;
DNA样品(50ng/μl):0.5μl,1.0μl,1.5μl,2.0μl
根据正交实验设计原理得到16个不同的反应体系,见表1。
表1PCR反应体系1-16
因素 | Taq酶 | dNTP | Mg2+ | 引物 | DNA样品 |
体系1 | 0.25μl | 0.25μl | 1.5μl | 0.2μl | 0.5μl |
体系2 | 0.25μl | 0.5μl | 2.0μl | 0.4μl | 1.0μl |
体系3 | 0.25μl | 0.75μl | 2.5μl | 0.6μl | 1.5μl |
体系4 | 0.25μl | 1.0μl | 3.0μl | 0.8μl | 2.0μl |
体系5 | 0.5μl | 0.25μl | 2.0μl | 0.6μl | 2.0μl |
体系6 | 0.5μl | 0.5μl | 1.5μl | 0.8μl | 1.5μl |
体系7 | 0.5μl | 0.75μl | 3.0μl | 0.2μl | 1.0μl |
体系8 | 0.5μl | 1.0μl | 2.5μl | 0.4μl | 0.5μl |
体系9 | 0.75μl | 0.25μl | 2.5μl | 0.8μl | 1.0μl |
体系10 | 0.75μl | 0.5μl | 3.0μl | 0.6μl | 0.5μl |
体系11 | 0.75μl | 0.75μl | 1.5μl | 0.4μl | 2.0μl |
体系12 | 0.75μl | 1.0μl | 2.0μl | 0.2μl | 1.5μl |
体系13 | 1.0μl | 0.25μl | 3.0μl | 0.4μl | 1.5μl |
体系14 | 1.0μl | 0.5μl | 2.5μl | 0.2μl | 2.0μl |
体系15 | 1.0μl | 0.75μl | 2.0μl | 0.8μl | 0.5μl |
体系16 | 1.0μl | 1.0μl | 1.5μl | 0.6μl | 1.0μl |
选用SSR标记LHJ-1引物,与步骤(1)提取的DNA样品按照正交实验设计得出的16个体系进行PCR反应,每个体系重复3次;初步筛选出有PCR产物的体系:体系9,体系15,体系16。
SSR标记LHJ-1引物序列(退火温度60℃):
上游引物:5'-ATGGTGGTGGTAGCTGGGT-3'(如SEQ ID NO.1所示)
下游引物:5'-GAGATCGGAGGGTGCGTG-3'(如SEQ ID NO.2所示)
PCR扩增反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,60℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。
(3)利用能分别与菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属各个种的DNA模板产生PCR产物的不同的SSR引物筛选反应体系,最终选出PCR产物条带最亮,重复性最好的体系15:
(4)在体系15的基础上,以上述引物和(1)中的DNA样品对各因素进行单因素多水平实验,继续优化PCR反应体系。
单因素不同水平设计:
Taq酶(5U/μl):0.15μl,0.25μl,0.5μl,0.75μl,1.0μl,1.25μl,1.5μl;
dNTP(20μM/μl):0.15μl,0.25μl,0.5μl,0.75μl,1.0μl,1.25μl,1.5μl;
Mg2+(6.5μM/μl):0.5μl,1.5μl,1.5μl,2.0μl,2.5μl,3.0μl;
引物(10μM/L):0.2μl,0.4μl,0.6μl,0.8μl,1.0μl,1.2μl;
DNA样品(50ng/μl):0.2μl,0.5μl,1.0μl,1.5μl,2.0μl。
经过其他因素保持同一水平的基础上单一因素多水平摸索,得到最佳的、能在菊属,亚菊属,太行菊属,芙蓉菊属的野生种和品种之间通用的SSR标记PCR反应体系:
以上述PCR反应体系进行菊属品种和野生种的SSR标记PCR产物的琼脂糖电泳,PCR扩增反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,50.5℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。电泳结果见图1,PCR产物琼脂糖凝胶电泳条带序号代表的种类依次是:1野菊、2甘菊、3甘野菊、4毛华菊、5小红菊、6菊花脑、7紫花野菊、8神农香菊、9阳光小菊、10繁白露、11四季黄、12香玉、13上海小菊、14夏菊、15国庆红、16玉人面、17神马、18帅旗、19粉玉卷帘、20金葵台、21精兴将军。
以上述PCR反应体系进行亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属及菊属野生种的SSR标记PCR产物的琼脂糖电泳,PCR扩增反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,62.5℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。电泳结果见图2,其中PCR产物琼脂糖凝胶电泳条带序号代表的种类依次是:1亚菊、2矶菊、3灌木亚菊、4细裂亚菊、5异色亚菊、6柳叶亚菊、7太行菊、8长裂太行菊、9芙蓉菊、10甘野菊、11毛华菊。
上述结果表明,本发明的SSR标记PCR反应方法所得到的条带清晰、灵敏度高,重复性好,易于操作,而且通用性好。
实施例2利用本发明的方法进行菊花SSR标记的筛选
(1)根据SSR分子标记的设计原则,根据菊花已发表的EST序列,应用Primer5设计软件,设计3对SSR引物:
SSR标记YH-1引物序列:
上游引物:5'-TTCGCATGGGTGGTGGGTT-3'(如SEQ ID NO.5所示)
下游引物:5'-CAACAACACAACATGGGGG-3'(如SEQ ID NO.6所示)
SSR标记YH-2引物序列:
上游引物:5'-TTCGACGGGTGGTGGTGTT-3'(如SEQ ID NO.3所示)
下游引物:5'-GACACCACAACGCTACCGC-3'(如SEQ ID NO.4所示)
SSR标记YH-3引物序列:
上游引物:5'-GGGACCCAAGCAGTAGAATG-3′(如SEQ ID NO.7所示)
下游引物:5'-ACCAAACAACCCTCCAACC-3'(如SEQ ID NO.8所示)
(2)提取菊花品种玉龙,金鸡红翎,铺地粉黛,米白早,旌旗,黄金甲的DNA样品。
(3)按照发明的PCR反应体系进行PCR反应:
PCR扩增反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,50-62℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。
(4)筛选出能产生PCR产物并且具有多态性的SSR引物组合为SSR标记YH-2引物:
上游引物:5'-TTCGACGGGTGGTGGTGTT-3'(如SEQ ID NO.5所示)
下游引物:5'-GACACCACAACGCTACCGC-3'(如SEQ ID NO.6所示)
该引物的退火温度为56℃。
(5)应用菊属野生种类:野菊,小红菊,毛华菊,菊花脑,甘菊,甘野菊,紫花野菊,神农香菊的DNA样品作为模板,利用本发明的PCR反应方法,测试YH-2引物在菊属的野生种类中的通用性。YH-2的多态性条带统计见表2,结果显示YH-2引物在菊属的野生种中具有通用性,并且具有较高的多态性。
(6)运用本发明的PCR反应方法,利用亚菊属矶菊,太行菊属太行菊,芙蓉菊属芙蓉菊的DNA样品作为模板测试YH-2引物在亚菊属,太行菊属,芙蓉菊属的可转移性,YH-2引物的多态性条带统计见表2。结果显示YH-2引物在亚菊属,太行菊属具有可转移性,不能转移到芙蓉菊属利用。
表2EST-SSR引物YH-2的多态性条带统计
AL#1 | AL#2 | AL#3 | AL#4 | ||
野菊 | PCR01.H04.fsa | 329 | 353 | ||
小红菊 | PCR02.H05.fsa | 329 | 333 | 343 | |
毛华菊 | PCR03.A06.fsa | 340 | |||
菊花脑 | PCR04.B06.fsa | 334 | 344 | ||
太行菊 | PCR05.C06.fsa | 327 | 331 | ||
芙蓉菊 | PCR06.D06.fsa | 345 | 347 | ||
矶菊 | PCR07.E06.fsa | 329 | 339 | 343 | |
玉龙 | PCR08.F06.fsa | 341 | |||
晚粉 | PCR09.G06.fsa | 340 | |||
药红 | PCR10.H06.fsa | 329 | 333 | ||
米白早 | PCR11.A07.fsa | 333 | 341 | ||
淡寒粉 | PCR12.B07.fsa | 340 | |||
铺地粉黛 | PCR13.C07.fsa | 333 | 341 | ||
旌旗 | PCR14.D07.fsa | 333 | 341 | ||
黄金甲 | PCR15.E07.fsa | 341 | |||
粉地毯 | PCR16.F07.fsa | 316 | 333 | 341 | 343 |
金鸡红翎 | PCR17.G07.fsa | 333 | 337 | 341 | 343 |
甘野菊 | PCR18.H07.fsa | 329 | 333 | 341 | 343 |
甘菊 | PCR19.A08.fsa | 333 | 343 | 349 | |
神农香菊 | PCR20.B08.fsa | 341 | |||
金光万丈 | PCR21.C08.fsa | 333 | 341 | 343 |
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明技术原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (5)
2.如权利要求1所述的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法,其特征在于,引物为SSR标记LHJ-1引物序列:
上游引物:5'-ATGGTGGTGGTAGCTGGGT-3'
下游引物:5'-GAGATCGGAGGGTGCGTG-3′。
3.如权利要求1所述的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法,其特征在于,引物为SSR标记YH-2引物序列:
上游引物:5'-TTCGACGGGTGGTGGTGTT-3'
下游引物:5'-GACACCACAACGCTACCGC-3'。
4.如权利要求1所述的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法,其特征在于,反应条件为:94℃预变性5min;94℃变性0.5min,50-62℃复性0.5min,72℃延伸1min,30个循环;72℃延伸5min。
5.权利要求1-4任一项所述的菊属及其近缘种属通用的SSR标记PCR反应方法在菊属、亚菊属、太行菊属、芙蓉菊属的野生种和品种中的应用。
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