CN102507949B - 液相芯片检测金黄色葡萄球菌的方法 - Google Patents
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Abstract
一种液相芯片检测金黄色葡萄球菌的方法,属于免疫技术及食品卫生检测技术领域。本发明的目的是提供一种运用液相芯片技术,提供一种用于检测金黄色葡萄球菌的方法,以便实现对金黄色葡萄球菌的快速检测。本发明制备了液相芯片,然后应用液相芯片检测金黄色葡萄球菌。本发明液相芯片是集合流式细胞技术、激光技术、数字信号处理技术及传统化学技术为一体的新型生物分子检测技术,其最大的特点是高通量,灵活性好,灵敏度高。运用液相芯片技术检测金黄色葡萄球菌(staphylococcusaureus)的方法,以便实现对金黄色葡萄球菌的快速检测,为食品安全做出贡献。
Description
技术领域
本发明属于免疫技术及食品卫生检测技术领域。
背景技术
金黄色葡萄球菌是人类的一种重要病原菌,是人类化脓感染中最常见的病原菌,可引起局部化脓感染,也可引起肺炎、伪膜性肠炎、心包炎等,甚至败血症、脓毒症等全身感染。金黄色葡萄球菌存在于自然界的空气、水、灰尘及人和动物的排泄物中。因而,食品受其污染的机会很多。近年来,美国疾病控制中心报告,由金黄色葡萄球菌引起的感染占第二位,仅次于大肠杆菌。金黄色葡萄球菌肠毒素是个世界性卫生难题,在美国由金黄色葡萄球菌肠毒素引起的食物中毒,占整个细菌性食物中毒的33%,加拿大则更多,占到45%,我国每年发生的此类中毒事件也非常多。因此建立一种及时,快速,准确的检测金黄色葡萄球菌的方法显得尤为重要。
发明内容
本发明的目的是提供一种运用液相芯片技术,用于检测金黄色葡萄球菌的方法,以便实现对金黄色葡萄球菌的快速检测。
本发明由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白组成,所述微球为羧基化的31号微球;所述捕获抗体是金黄色葡萄球菌单克隆抗体,所述检测抗体是金黄色葡萄球菌的多克隆抗体,生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG;所述捕获抗体和检测抗体均能特异与金黄色葡萄球菌结合,以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合金黄色葡萄球菌的数量;
捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布;用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS,然后取200μl 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min,取出后弃上清,加入NHS和EDC各10μl,再加入80μl的活化缓冲液,混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清,加入500μl稀释至250μg/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h,取出后离心弃上清,用500μl的PBS进行洗涤,洗涤后加入500μl 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭,封闭后4℃保存;
液相芯片检测金黄色葡萄球菌
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min,取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的金黄色葡萄球菌10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心弃上清,用200μl PBS-TBN洗两次,加入已稀释的检测抗体10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次,然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床反应1h,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次,再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次,重悬于100μl PBS-TBN中,上机进行检测。
本发明液相芯片是集合流式细胞技术、激光技术、数字信号处理技术及传统化学技术为一体的新型生物分子检测技术,其最大的特点是高通量,灵活性好,灵敏度高。运用液相芯片技术检测金黄色葡萄球菌(staphylococcus aureus)的方法,以便实现对金黄色葡萄球菌的快速检测,为食品安全做出贡献。
附图说明
图1是本发明捕获抗体最佳工作浓度;
图2是本发明灵敏度检测结果;
图3是本发明特异性的检测结果;
图4是本发明重复性检测结果;
图5是本发明在进行检测时所显示微球位置以及数量的实时图的点状图;
图6是本发明在进行检测时所显示微球位置以及数量的实时图的柱状图。
具体实施方式
本发明所采用的技术方案是:通过金黄色葡萄球菌的特异抗体,与微球进行偶联后,制备出可以对金黄色葡萄球菌进行检测的液相芯片,在应用时,加入样品增菌液,使增菌液中的金黄色葡萄球菌被微球上的捕获抗体所捕获,检测抗体也与金黄色葡萄球菌结合后,再与生物素标记的抗抗体共同孵育,然后通过生物素与链霉亲和素-藻红蛋白反应,应用Luminex100检测系统实现对金黄色葡萄球菌的特异检测。
本发明涉及的检测金黄色葡萄球菌液相芯片主要由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白(SA-PE)组成。所述微球为羧基化的31号微球;所述捕获抗体是金黄色葡萄球菌的单克隆抗体(St.a mAb),所述检测抗体是金黄色葡萄球菌的多克隆抗体(St.a pAb),生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG(biotin-羊抗兔IgG);所述捕获抗体和检测抗体均能特异与金黄色葡萄球菌结合。以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合金黄色葡萄球菌的数量。
上述的检测抗体是用于识别金黄色葡萄球菌的另一类抗体,其作用是将与液相芯片上捕获抗体结合的金黄色葡萄球菌与抗抗体结合,而抗抗体能与检测荧光偶联,间接将结合的金黄色葡萄球菌浓度与检测荧光的强度结合起来,从而实现对金黄色葡萄球菌的浓度进行定量测定。生物素标记的抗抗体通过生物素与链霉亲和素-藻红蛋白结合,最后通过Luminex100检测系统对金黄色葡萄球菌进行定性定量检测。
(1)捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布。用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS。然后取200μl 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min。取出后弃上清,加入NHS和EDC各10μl,再加入80μl的活化缓冲液。混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清。加入500μl稀释至250μg/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h。取出后离心弃上清,用500μl的PBS进行洗涤,洗涤后加入500μl 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭。封闭后4℃保存。
(2)应用液相芯片检测金黄色葡萄球菌的方法
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min。取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的金黄色葡萄球菌10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl。置于37℃摇床120rpm,1h。取出后离心弃上清,用200μl PBS-TBN洗两次。加入已稀释的检测抗体10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl。 置于37℃摇床120rpm,1h。取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次。然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl。 置于37℃摇床反应1h。取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次。再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次。重悬于100μl PBS-TBN中,上机进行检测。
1.捕获抗体最佳工作浓度的确定
见图1,当单抗浓度为250μg/ml时,其MFI值达到最大,故单抗最佳的工作浓度为250μg/ml。
2.偶联是否成功的检测
生物素标记羊抗鼠IgG | 生物素标记羊抗兔IgG | |
MFI | 7783.6 | 17 |
MFI背景值 | 10 | 6 |
由上述结果可知单抗与微球偶联效果很好,且封闭效果也良好。
3. 正交实验结果—确定反应较优条件
根据上述结果可知实验条件A1B2C2D2为较优实验条件,即多抗工作浓度为1:100,生物素标记的羊抗兔IgG工作浓度为1:1000,SA-PE的工作浓度为2μg/ml,生物素标记的抗体与SA-PE反应时间为40min。
4. 灵敏度检测结果
由图2可以看出,在菌的浓度达到103CFU/ml时仍可被检出。因此本方法的灵敏度较高,可达到103CFU/ml。
5.特异性的检测结果
用已建立的方法检测从图3中可看出此方法特异性良好,与其它的菌无交叉反应。
6. 重复性试验
在1d,5,d,7d用此方法分别检测阳性菌和阴性菌,由图4可见阳性菌,阴性菌MFI值上下浮动都不大,可证明本方法重复性较好。
7. 实际样品添加的检测结果
分别在绿豆和兔肉中添加金葡菌,沙门氏菌,并做空白对照,由上表可见在添加了实际样品后应用本方法仍可将金葡菌检出。
图5中在空白圆圈内所出现的不同颜色的小点就是所检的目标微球。在下方出现的傻大的点可能是气泡,或是微球的聚集体。
图6中在两条红线即逻辑门边界中间所显示的为所检的目标微球,在两条红线外所出现的是微球的聚集物。
Claims (1)
1.一种液相芯片检测金黄色葡萄球菌的方法,其特征在于:液相芯片由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白组成,所述微球为羧基化的31号微球;所述捕获抗体是金黄色葡萄球菌单克隆抗体,所述检测抗体是金黄色葡萄球菌的多克隆抗体,生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG;所述捕获抗体和检测抗体均能特异与金黄色葡萄球菌结合,以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合金黄色葡萄球菌的数量;
捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布;用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS,然后取200μl 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min,取出后弃上清,加入NHS和EDC各10μl,再加入80μl的活化缓冲液,混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清,加入500μl稀释至250μg/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h,取出后离心弃上清,用500μl的PBS进行洗涤,洗涤后加入500μl 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭,封闭后4℃保存;
液相芯片检测金黄色葡萄球菌
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min,取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的金黄色葡萄球菌10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心弃上清,用200μl PBS-TBN洗两次,加入已稀释的检测抗体10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次,然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10μl,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床反应1h,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次,再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100μl,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次,重悬于100μl PBS-TBN中,上机进行检测。
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Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103130867A (zh) * | 2013-01-25 | 2013-06-05 | 丁伟丽 | 一种链霉亲和素偶联物的制备方法 |
CN103698534A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-04-02 | 浙江中医药大学 | 兔血清免疫球蛋白液相悬浮芯片及其制备和应用 |
CN103913572B (zh) * | 2014-04-02 | 2015-07-08 | 上海理工大学 | 检测金黄色葡萄球菌的方法及其单抗 |
CN105861626A (zh) * | 2016-03-25 | 2016-08-17 | 中国科学院长春应用化学研究所 | 一种基于水凝胶微阵列芯片的抗菌药物筛选方法 |
CN109884294B (zh) * | 2019-04-03 | 2022-09-13 | 深圳无微华斯生物科技有限公司 | 一种具有高精密度的荧光免疫试纸条制备方法 |
CN111505278A (zh) * | 2020-04-15 | 2020-08-07 | 西北农林科技大学 | 一种金黄色葡萄球菌检测试纸条、检测方法及应用 |
Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1598544A (zh) * | 2004-08-13 | 2005-03-23 | 汕头大学 | 一种检测空肠弯曲菌的方法 |
CN1766615A (zh) * | 2005-10-11 | 2006-05-03 | 山东省医药生物技术研究中心 | 大肠癌蛋白标记物平行检测液相芯片及其制备方法与应用 |
CN101113476A (zh) * | 2007-05-30 | 2008-01-30 | 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 | 一种病原微生物dna检测芯片及其制备方法和应用 |
CN101216491A (zh) * | 2008-01-08 | 2008-07-09 | 广州益善生物技术有限公司 | 结核分枝杆菌检测液相芯片及其制备方法 |
CN101246163A (zh) * | 2008-01-29 | 2008-08-20 | 广州益善生物技术有限公司 | 脓毒症早期诊断液相芯片及其制备方法 |
CA2619000A1 (en) * | 2007-12-28 | 2009-06-28 | Mcmaster University | Biofet based microfluidic system |
CN101526535A (zh) * | 2009-04-14 | 2009-09-09 | 河南省豫康生物工程技术有限公司 | 多种肿瘤标志物联合检测液相芯片及其制备方法 |
KR20090124020A (ko) * | 2008-05-29 | 2009-12-03 | 경희대학교 산학협력단 | 식중독균 검출용 올리고뉴클레오티드 프로브 세트 및 상기프로브 세트를 포함하는 마이크로어레이 |
WO2010093801A1 (en) * | 2009-02-11 | 2010-08-19 | Cedars-Sinai Medical Center | Antibody to cytolethal distending toxin of campylobacter jejuni |
-
2011
- 2011-11-15 CN CN 201110360554 patent/CN102507949B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1598544A (zh) * | 2004-08-13 | 2005-03-23 | 汕头大学 | 一种检测空肠弯曲菌的方法 |
CN1766615A (zh) * | 2005-10-11 | 2006-05-03 | 山东省医药生物技术研究中心 | 大肠癌蛋白标记物平行检测液相芯片及其制备方法与应用 |
CN101113476A (zh) * | 2007-05-30 | 2008-01-30 | 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 | 一种病原微生物dna检测芯片及其制备方法和应用 |
CA2619000A1 (en) * | 2007-12-28 | 2009-06-28 | Mcmaster University | Biofet based microfluidic system |
CN101216491A (zh) * | 2008-01-08 | 2008-07-09 | 广州益善生物技术有限公司 | 结核分枝杆菌检测液相芯片及其制备方法 |
CN101246163A (zh) * | 2008-01-29 | 2008-08-20 | 广州益善生物技术有限公司 | 脓毒症早期诊断液相芯片及其制备方法 |
KR20090124020A (ko) * | 2008-05-29 | 2009-12-03 | 경희대학교 산학협력단 | 식중독균 검출용 올리고뉴클레오티드 프로브 세트 및 상기프로브 세트를 포함하는 마이크로어레이 |
WO2010093801A1 (en) * | 2009-02-11 | 2010-08-19 | Cedars-Sinai Medical Center | Antibody to cytolethal distending toxin of campylobacter jejuni |
CN101526535A (zh) * | 2009-04-14 | 2009-09-09 | 河南省豫康生物工程技术有限公司 | 多种肿瘤标志物联合检测液相芯片及其制备方法 |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
Allen D. Taylor等.Quantitative and simultaneous detection of four foodborne bacterial pathogens with a multi-channel SPR sensor.《Biosensors and Bioelectronics》.2006,第22卷(第5期), |
Quantitative and simultaneous detection of four foodborne bacterial pathogens with a multi-channel SPR sensor;Allen D. Taylor等;《Biosensors and Bioelectronics》;20061215;第22卷(第5期);第752-758页 * |
液态芯片技术及其应用;王静等;《中华预防医学杂志》;20081231;第42卷(第6期);第1-3页 * |
王国青等.生物芯片技术在食品安全检测中的应用.《现代科学仪器》.2007,(第1期), |
王静等.液态芯片技术及其应用.《中华预防医学杂志》.2008,第42卷(第6期), |
生物芯片技术在食品安全检测中的应用;王国青等;《现代科学仪器》;20071231(第1期);第7-10页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102507949A (zh) | 2012-06-20 |
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