具有降解氨基甲酸乙酯功能的胶红酵母及其在酒类及食品中的应用
技术领域
本发明涉及一株能够降解氨基甲酸乙酯的胶红酵母,以及一种通过酶法降解酒类及食品中氨基甲酸乙酯,以提高食品安全性的方法,属于生物工程技术领域。
背景技术
氨基甲酸乙酯(Ethyl carbamate,简称EC,又称Urethane),是烟草叶及香烟的天然成分,也是发酵食品(如面包,酸奶,乳酪等)和酒精饮品(如葡萄酒、白兰地、威士忌、果酒、中国黄酒和日本清酒等)的伴随产物。它能够导致肺肿瘤、淋巴癌、肝癌、皮肤癌等。自2002年以来,EC已经成为世界卫生组织重点监控物质之一。人类从膳食中摄入的氨基甲酸乙酯,主要来自发酵食品和饮品,其中酒精饮品是已知的氨基甲酸乙酯主要来源。根据公布的2005年2月在意大利罗马召开的JECFA(联合食品添加剂专家委员会)第64次会议对EC的MOE(暴露最大限量,Margin of Exposure)讨论的结论认为,加上酒精饮品后的EC食品总摄入量存在风险,因此应该继续进行降低酒类食品中EC含量的努力。2007年4月10日,世界卫生组织的国际癌症研究机构(IARC)正式将氨基甲酸乙酯归为2A类致癌物,与丙烯酰胺同等危险,美国国家毒理计划将其列入“有理由预料引起癌症的物质”名单。因此如何降低酒精饮品中EC的含量正逐渐受到研究人员的重视。
对EC的研究始于20世纪中期,1943年,Nattleship等人就证明其潜在的致癌作用,1971年,Lofroth和Gcjval在发酵食品中发现了EC,1976年,Ough发现酒精饮品中含有EC。由于EC的致癌作用,世界卫生组织对软饮料中EC制定了限量标准。1985年,加拿大报道了某些酒中EC含量高,同年加拿大政府的卫生与福利组织规定了各类酒中的EC限量标准:佐餐葡萄酒30μg/L,强化葡萄酒100μg/L,蒸馏酒150μg/L,烈性酒、水果白兰地400μg/L,日本清酒100μg/L。美国的葡萄酒工业也对葡萄酒中EC含量做出了限定:佐餐葡萄酒15μg/L,餐后甜葡萄酒60μg/L。
国内外很多研究学者对葡萄酒和黄酒等酒精饮品的生产过程中EC的形成做了很多研究报道,主要的形成途径有4类:焦碳酸二乙酯同氨反应形成氨基甲酸乙酯;氨基甲酸磷酸同乙醇反应;尿素同乙醇反应;瓜氨酸与乙醇反应。其中尿素与乙醇的反应被认为是EC的主要形成途径。
目前对于酒精饮品中EC含量控制问题的研究,主要集中于酸性脲酶的使用以及低产尿素酿酒酵母的选育,旨在通过前体尿素的降低来达到控制EC含量的目的。中国新型黄酒工艺也积极通过煎酒温度与时间的控制来控制EC。然而,这些都不能从根本上解决酿造酒中EC的污染问题,EC一经形成,就极稳定,不能被脲酶降解,所以对于已经形成的EC,目前的方法就显得束手无策。因此利用微生物酶法降解EC的研究迫在眉睫,开发微生物合成的EC降解酶,实现其有效应用,对于提高酿造食品安全性具有重要的作用。
发明内容
针对现有技术难点及存在的问题,本发明的目的在于提供一株能够用于酒类及发酵食品中EC去除的胶红酵母菌株。本发明所述的菌株能够通过微生物酶的生物催化作用,在乙醇浓度0~20%,糖浓度0~400g/L,及pH 3.5-11.0的环境中以分解EC的方式达到提高酒类及食品安全性的目的。
本发明的技术方案:一株降解EC的酵母菌株,其分类命名为胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa),已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为CGMCC No:5081。
所述的胶红酵母,其具体筛选步骤如下:(1).将一定量待分离样品中国白酒大曲、黄酒麦曲及小鼠粪便于装有玻璃珠的适量无菌生理盐水中震荡打散,取一定量接种于50mL以EC为唯一碳源的无机盐培养基中富集,进行摇床震荡培养,温度30℃,转速150r·min-1;当菌液变得浑浊时,进行下一次转接,经过连续驯化培养,最终得到能以EC为唯一碳源的稳定菌液。(2).将(1)中所得菌液在以EC为唯一碳源,另外添加指示剂的固体培养基上进行稀释涂布,挑取能形成变色圈的单菌落作为初筛菌株。(3).将上述初筛菌株进行液态发酵,采用GC-FID方法检测EC降解情况,考察、比较各菌的降解效果,选取EC浓度较低的菌株作为复筛菌株。(4).将上述复筛菌株接种于改进的YPD培养基中,30℃摇床震荡培养72h,取一定量发酵液离心收集菌体,经生理盐水与缓冲液充分洗涤,进行酶活测定。最终得到一株能够高效降解EC的胶红酵母菌株。
所述的胶红酵母菌株CGMCC No:5081,具有耐酒精、耐高渗透压、生长温度范围与生长pH范围广等特性,方便了实际酒体环境中的应用。其菌株生长温度范围为4~37℃;生长pH范围为2.0~12.0;可在分别含400g/L的葡萄糖、2.0mol/L KCl以及6%(v/v)C2H5OH的环境中生长。其形态特征:在YPD平板上长出的菌落呈橙红色,菌落粘稠、湿润,表面突起、无褶皱、边缘整齐;在WL平板上长出的菌落与YPD平板形态相似,产酸少。显微镜观察细胞呈卵形至椭圆形,大小为(1.8-5.0)×(2.4-6.1)μm。扫描电镜下,细胞呈椭球状,不形成子囊孢子。
所述具EC降解功能的胶红酵母产EC降解酶的培养条件:碳源可为碳水化合物,脂肪酸,有机酸等;氮源可为有机氮源(如酵母膏,蛋白胨,棉籽粉,麦芽汁,玉米浆等)和无机氮源(如硫酸铵,硝酸铵,磷酸铵,氯化铵等);另外添加氨基甲酸乙酯或者其类似物如氨基甲酸甲酯,氨基甲酸丙酯,或者酰胺类化合物如甲酰胺,乙酰胺,丁酰胺,乳酰胺,N-甲基乙酰胺,青霉素钠等。培养方式可为静置培养或振荡培养,温度以25 oC -33 oC为宜,培养时间足够微生物的生长以及EC降解酶的产生。
所述的胶红酵母在酒类及食品中的应用,胶红酵母活细胞、冷冻干燥制得的干细胞、固定化细胞均能在乙醇浓度0~20%,糖浓度0~400g/L以及pH 3.5-11.0的环境中有效去除EC。
所述的胶红酵母在酒类及食品中的应用,其适用于各种酿造酒、蒸馏酒、配制酒的酿造工业和食品工业中EC的去除。
所述的胶红酵母在酒类及食品中的应用,用菌株制成的酶制剂处理样品,从而得到EC含量降低、安全性提高的酒类及食品。酒精饮品及食品中添加的EC降解酶酶量为0.1-20 U/L时即可达到较好的EC去除效果。
所述的胶红酵母在酒类及食品中的应用方法,可用于EC去除的酶制剂可为:活细胞,冷冻干燥得到的干菌体,固定化细胞,粗酶或者经过分离纯化的酶等一切形式的来自能够降解EC的胶红酵母CGMCC No:5081的酶制剂。
EC降解酶活性通过检测产物NH4 +的生成来表征。菌体超声破碎取上清液作为粗酶液待用。10mM EC,0.1M磷酸钾缓冲液,pH7.0。反应以向300μL底物中加入200μL粗酶液开始,30℃水浴反应10min。 Berthelot反应测定产生的NH4 +。酶活定义为每分钟分解EC产生1μmol NH4 +的酶量为1个酶活单位。
本发明中用于EC去除的酶制剂最终可以通过过滤、离心等物理方式去除。
本发明的有益效果:本发明提供的胶红酵母通过微生物酶促反应实现EC的分解,改善了以往酒类及食品中对于已经形成的EC束手无策的局面;胶红酵母可在醇、糖、酸环境中有效降解EC。本发明提供的胶红酵母可作为生物解毒剂,添加到现有的含EC的酒精饮品中,使其更符合现代人们对健康理念的追求;例如可将清酒中EC控制在40μg/L以下,威士忌中EC低于60μg/L,葡萄酒中不高于15μg/L。同时,本发明提供的胶红酵母,对于其他不含酒精类饮品和发酵类食品中EC的去除也存在着广阔的应用潜力。
生物材料样品保藏:一株降解氨基甲酸乙酯EC的酵母菌株,其分类命名为胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa),已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所,保藏编号为CGMCC No:5081,保藏日期:2011年7月18日。
附图说明
图1 本发明的Rhodotorula mucilaginosa CGMCC No:5081菌株放大10000倍的电镜照片。
图2 本发明的Rhodotorula mucilaginosa CGMCC No:5081菌株在以EC为唯一碳源且EC初始浓度为5g/L条件下进行液态发酵时EC的降解曲线图,图中左侧纵坐标表示EC的回收率,单位为%。图中:—□—为刚接种完经灭活的对照组,—■—为接种了菌株Rhodotorula mucilaginosa CGMCC NO:5081的情况。
图3 本发明的Rhodotorula mucilaginosa CGMCC No:5081菌株全细胞降解EC反应体系中EC,以及产物NH4 +与C2H5OH浓度随时间的变化情况。图中左侧纵坐标表示反应体系中EC的浓度,单位为μmol/mL,右侧纵坐标表示NH4 +与C2H5OH浓度,单位为μmol/mL。图中:—■—代表EC浓度,—□—代表NH4 +浓度,—●—代表C2H5OH浓度。
具体实施方式
实施例1:
能够降解EC的胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa)CGMCC No:5081菌株的筛选
本发明涉及的菌株来源于生产‘口子窖’、‘郎酒’、‘今世缘’、‘茅台’等酱香型白酒生产大曲,‘古越龙山’、‘金枫’等黄酒麦曲,健康小鼠粪便以及灌胃EC的小鼠粪便(灌胃量为10mg/kg/d)。将一定量待分离样品于无菌生理盐水中震荡打散,取适量接种于50mL以EC为唯一碳源,另外添加无机盐的富集培养基中,30℃,150rpm摇床上震荡培养,当菌液变得浑浊时,进行下一次转接,经过连续驯化培养得到能以EC为唯一碳源的稳定菌液。在EC为唯一碳源另外添加指示剂的固体培养基上进行稀释涂布,挑选能形成变色圈的单菌落作为初筛菌株。之后采用GC-FID方法跟踪检测液态发酵过程中EC降解情况,考察、比较各菌的降解效果,选取EC浓度较低的上述菌株作为复筛菌株。
将上述复筛菌株接种于改进的YPD培养基中,30℃摇床培养72h,取一定量发酵液离心收集菌体,经生理盐水与缓冲液充分洗涤,进行酶活测定。最终筛选出具有较高EC降解能力的菌株,经鉴定为胶红酵母Rhodotorula mucilaginosa,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为CGMCC No:5081。
实施例2:
菌株生理生化性质
菌株CGMCC No:5081不发酵糖类,可同化葡萄糖、蔗糖、麦芽糖、纤维二糖、半乳糖、D-木糖、D-核糖、琥珀酸、柠檬酸等多种碳源,不能同化肌醇,可同化硫酸铵、硝酸铵、氯化铵等无机氮源,不能同化尿素。生长温度范围为4~37 ℃,适温为25~33 ℃;生长pH范围为2.0~12.0,优选4.0~8.0;可在分别含400g/L的葡萄糖、2.0 mol/L KCl以及6%乙醇的环境生长中。
实施例3:
胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa)CGMCC No:5081菌株好氧降解EC功能
(1)在250mL三角瓶中加入50mL种子培养基,培养基成分为:酵母膏(1%),蛋白胨(1%),葡萄糖(2%),磷酸二氢钾(0.25%),磷酸氢二铵(1%),硫酸铵(0.4%),氯化钠(0.2%),七水合硫酸镁(0.05%),七水合硫酸锌(0.02%),七水合硫酸亚铁(0.005%),四水合硫酸锰(0.015%)。另外添加氨基甲酸乙酯或者其类似物如氨基甲酸甲酯、氨基甲酸丙酯,或者酰胺类化合物如甲酰胺、乙酰胺、丁酰胺、乳酰胺、N-甲基乙酰胺、青霉素钠等,自然pH;将上述实施例1获得的CGMCC No:5081菌株进行接种,30℃,150rpm,进行好氧培养36-60小时;
(2)取上述(1)中培养好的菌液按体积比为4%的接种量接入装有100mL相同培养基的500mL的三角瓶中,30℃,150rpm,进行好氧培养,图2为胶红酵母对EC的降解情况。
实施例4:
菌株CGMCC No:5081全细胞用于中国黄酒中EC去除
(1)按上述实施例3培养方法获得CGMCC No:5081发酵液,离心收集细胞,测定其分解EC的酶活为0.4U/g干菌。
(2)将该细胞添加于市售的两种黄酒样品中,分别为半干型黄酒样品中(样品1:酒精度8%,EC含量88μg/L,pH 3.8),与半甜型黄酒样品(样品2:酒精度14%,EC含量402μg/L,pH4.1),样品2为向市售黄酒中额外添加部分EC制得,最终酶浓度均为2U/L,然后于30℃处理一周,结果见下表1所示。
表1 全细胞对黄酒中EC去除效果
样品 |
初始EC浓度(μg/L) |
EC降解率(%) |
样品
1 |
88.51 |
33.53 |
样品
2 |
402.42 |
12.26 |
实施例5:
不同加酶量条件下黄酒中EC去除情况
(1)按上述实施例3培养方法获得CGMCC No:5081发酵液,离心收集细胞。
(2)将收集的细胞添加于同实施例4中市售的半干型黄酒样品中(酒精度8%,EC含量88μg/L,pH3.8),最终酶浓度分别为2、4、6、10 U/L,然后于30℃处理一周,结果见下表2。
表2 不同加酶量对黄酒中EC去除效果
降解酶添加量(U/L) |
2 |
4 |
6 |
10 |
处理后EC浓度(μg/L) |
83.22 |
56.13 |
47.29 |
40.67 |
实施例6:
菌株CGMCC No:5081固定化细胞用于不同酒精饮品中EC的去除
(1)CGMCC NO:5081培养方式如实施例3,所得的培养物经离心收集菌体,然后用生理盐水进行洗涤。
(2)取湿细胞2g悬浮于2mL生理盐水中,然后与20mL灭菌的海藻酸钠溶液(2%)混合,逐滴滴入氯化钙溶液中(2%)制成固定化细胞。
(3)该固定化细胞,经过滤,洗涤,取等量分别加入50mL待测日本清酒、中国黄酒、红葡萄酒、苹果酒、中国白酒、威士忌、白兰地样品中,然后于30℃放置30天,结果如下表3所示。
表3 固定化细胞对酒精饮品中EC去除效果
实施例7:
粗酶液用于葡萄酒样品中EC去除
菌株CGMCC No:5081培养方式如实施例3。经离心收集细胞,用含1mM EDTA,1mM DTT的0.1M的磷酸缓冲液(pH7.0)洗涤两次,重悬于相同的缓冲液中,超声进行破碎。破碎液经离心得到的上清液作为粗酶液,再经超滤进行浓缩。将浓缩后的粗酶液添加于某红葡萄酒样品中,EC含量218μg/L,通过向一种市售红葡萄酒样品(乙醇含量13%,pH3.4)中添加部分EC制得,降解酶终浓度为10U/L。30℃摇床处理,EC含量随处理时间的变化如下表4所示。
表4 粗酶液对红葡萄酒中EC去除效果
处理时间(d) |
0 |
4 |
6 |
10 |
20 |
EC浓度(μg/L) |
218 |
124 |
96 |
74 |
58 |