CN102417924B - 基于高分辨率溶解曲线的黄瓜杂交种纯度鉴定方法 - Google Patents
基于高分辨率溶解曲线的黄瓜杂交种纯度鉴定方法 Download PDFInfo
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- CN102417924B CN102417924B CN 201110198187 CN201110198187A CN102417924B CN 102417924 B CN102417924 B CN 102417924B CN 201110198187 CN201110198187 CN 201110198187 CN 201110198187 A CN201110198187 A CN 201110198187A CN 102417924 B CN102417924 B CN 102417924B
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Abstract
本发明公开了一种基于高分辨率溶解曲线(
highresolutionmelting
,
HRM
)的黄瓜杂交种种子纯度鉴定的方法。该方法对
CLA1
或
CLA6SNP
位点进行
HRM
分析,能够对市售黄瓜杂交品种进行纯度鉴定。本发明的检测方法在
1-2h
之内即可完成种子纯度鉴定工作,具有快速、低成本、操作方便和闭管检测防止污染等优势。
Description
技术领域
本发明属于农业的蔬菜育种与应用技术领域,具体涉及黄瓜杂交种纯度鉴定方法,是一种基于高分辨率溶解曲线分析技术(
high
resolution melting
,
HRM
)的杂交种种子纯度鉴定方法。
背景技术
纯度是种子重要的指标,关系农业生产产量和农民收入,用于蔬菜种子纯度及品种鉴定的方法有田间试验、
RAPD
、
SSR
等技术,但在操作性、稳定性、多态性等方面不能满足目前的需要。单核苷酸多态性(
single
nucleotide polymorphism
,
SNP
),是指在基因组水平上由单个核苷酸的变异所引起的
DNA
序列多态性,主要有密度高,遗传稳定性好、具有代表性、分析易自动化等特性,已成为继微卫星之后的新一代遗传学标记,近年来被广泛应用于蔬菜分子辅助育种及品种鉴定。
Jin-kee
Jung
等(
2010
)利用
Allele Specific PCR (AS-PCR)
从
conserved ortholog set II (COSII) markers
中筛选出
40
个辣椒
SNP
位点,能区分
81
个商品种子中的
79
个,能鉴定
17
个甜辣椒;
Wim
Deleu
等(
2009
)从甜瓜公共
EST
数据库发掘
SNP
标记,鉴定获得
45
个
SNP
位点,丰富了甜瓜基因变异图谱,并将
SNP
标记用于甜瓜品种鉴定。
是由犹他大学和爱德华科技公司合作开发的一种
SNP
及碱基突变研究的技术(
Gundry
C N
,
2002
),是常规溶解曲线技术与饱和荧光染料和高精密度
PCR
仪相结合的再发展技术。其原理是通过实时监测精密升温过程中双链
DNA
饱和荧光染料与
PCR
扩增产物的结合情况,以区分出
PCR
产物中碱基的细微差异。
HRM
技术具有高通量、低成本、操作简便、闭管检测、分析简单等优势,广泛应用于医学分子分型诊断及甲基化研究。
用于植物
DNA
变异检测的历史较短,但已涉及多个研究方向。
David
De Koeyer
等(
2009
)评估了
HRM
技术在马铃薯分型和多倍体检测上的应用,认为
HRM
技术在马铃薯基础和应用研究上非常有用;
Hee-Jin Jeong
等(
2011
)利用
HRM
技术对区分
6
类辣椒品种及进行品种鉴定;
Shu-Biao
Wu
等(
2009
)通过
HRM
技术对杏树中
12
个
SNP-anchored putative
基因进行分型分析,并完善遗传图谱,为后续的功能研究奠定基础。
本专利将
HRM
技术应用于黄瓜
SNP
位点筛选,并获得
2
个
SNP
位点,平均每
481 bp
筛选出
1
个
SNP
,验证了
HRM
技术在黄瓜
SNP
筛选工作中的可行性。本研究通过
Illumina
Eco real-time PCR system
进行
HRM
研究,在试验过程中,充分体现了
HRM
技术快速、低成本、操作方便和闭管检测防止污染等优势。筛选出的
2
个
SNP
位点在市售黄瓜品种中具有较强的多态性,适宜于其中
11
个品种的纯度鉴定,并且具备用于品种鉴定的潜能,为完善黄瓜遗传图谱及相关功能基因研究打下基础。
发明内容
本发明的目的在于公开了一种基于高分辨率溶解曲线分析技术(
high resolution
melting
,
HRM
)的杂交种种子纯度鉴定方法,为实现上述目的,本发明提供如下的技术方案:
本方法通过对供试黄瓜杂交种进行
DNA
提取、
PCR
扩增和
HRM
分析,确认
CLA1
或
CLA6
SNP
位点分型,从而对黄瓜杂交种进行纯度鉴定。候选
SNP
位点类型及
PCR
引物见下表:
供试黄瓜杂交种取样及
DNA
提取方法为:每品种取
40
粒种子,去壳,液氮冷冻研磨(
Retsch
MM400
生物粉碎仪),加入
CTAB
裂解缓冲液(
20 g/L CTAB
,
1.4 M
NaCl
,
0.1 M Tris-HCl
,
20 mM Na2EDTA
)
500
μ
L
,
65
℃恒温水浴(
Neslab
)裂解
30min
,后续
DNA
提取纯化按树脂型基因组
DNA
提纯试剂盒(赛百盛)操作进行。
DNA
提取后浓度统一稀释至
50
±
1 ng/
μ
L
,
Nanodrop ND1000
,
Thermol
)。
DNA
提取方法也可以按市售试剂盒进行。
供试黄瓜杂交种
PCR
方法为:
(1)CLA1
上游引物序列
H-A1F1
:
5
’
-GAAACAAAAAAACACATTACTCCCA
-3
’,
CLA1
下游引物序列
H-A1R1
:
5
’
- CTGCACAATCGTCAACACT -3
’。
上游引物序列
H-A6F1
:
5
’
-GTGGGTGAGTTTTATCTTTAAACGA -3
’,
CLA6
下游引物序列
H-A6R1
:
5
’
-
CTTCAATTCTACTGGCTCCAT -3
’。
采用上述
PCR
扩增引物对供试种子样品模板
DNA
进行
PCR
扩增,其中的
PCR
扩增反应的总体积为
10
μ
L
,扩增反应体系为:
2
×带有
ROX
的
Platinum
定量
PCR
SuperMix-UDG
(
invitrogen
)
5
μ
L
,
20
×
Evagreen
(
biotium
)
0.5
μ
L
,上游引物和下游引物(
10
μ
mol/L
)各
0.2
μ
L
,基因组
DNA
模板(
50 ng/
μ
L
)
0.5
μ
L
,双蒸水补足
10
μ
L
。
PCR
反应程序为
95
℃预变性
10 min
,
40
个扩增循环(
95
℃
15
sec
,
60
℃
30
sec
)。
供试黄瓜杂交种
HRM
分析方法为:
95
℃变性
15 sec
,
55
℃退火
15 sec
,然后逐步上升至
95
℃保持
15 sec
。
供试黄瓜杂交种
SNP
分型鉴定:通过分析
HRM
结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图(
Normailized
)和差异视图(
Difference
),对供试种子样品进行
SNP
分型。
供试黄瓜杂交种纯度鉴定:通过计算供试种子样品中杂交种的比例确定种子纯度。
本发明的检测方法在不计算
DNA
提取过程耗时的情况下,
PCR
耗时
40-90min
,
HRM
分析
10-30min
,所以本发明的检测方法在
1-2h
之内即可完成种子纯度鉴定工作,具有快速、低成本、操作方便和闭管检测防止污染等优势。
本发明方法能够对市售
80%
以上黄瓜杂交品种进行纯度鉴定。
为了能更加清楚的说明本发明的测定方法,下面对本发明的试验方法做以详细的说明。
、原理
本方法应用一种新型的核酸分析方法其原理是:通过荧光信号实时监测精密升温过程中双链
DNA
饱和荧光染料与
PCR
扩增产物的结合情况,比较
PCR
产物中碱基的细微差异对供试样品进行
SNP
分型鉴定,从而计算杂交种的纯度。
、引物设计
通过测序比对和查询
NCBI
、
ICuGI
数据库等方法获得
2
个候选
SNP
位点,分别为
CLA1
和
CLA6
,其类型、功能及引物序列详见表
1
。
HRM
引物设计采用小片段法,使用软件
LightScanner
Primer Design software
设计,引物由上海生工合成
:
引物序列表如下:
3
、取样及
DNA
提取
供试品种取
40
粒种子,去壳,液氮冷冻研磨(
Retsch MM400
生物粉碎仪),加入
CTAB
裂解缓冲液(
20 g/L CTAB
,
1.4 M
NaCl
,
0.1 M Tris-HCl
,
20 mM Na2EDTA
)
500
μ
L
,
65
℃恒温水浴(
Neslab
)裂解
30min
,后续
DNA
提取纯化按树脂型基因组
DNA
提纯试剂盒(赛百盛)操作进行。
DNA
提取后浓度统一稀释至
50
±
1 ng/
μ
L
,
Nanodrop ND1000
,
Thermol
)。
DNA
提取方法也可以按市售试剂盒进行。
、
PCR
反应
采用
(1)CLA1
上游引物序列
H-A1F1
:
5
’
-GAAACAAAAAAACACATTACTCCCA -3
’,
CLA1
下游引物序列
H-A1R1
:
5
’
-
CTGCACAATCGTCAACACT -3
’。
上游引物序列
H-A6F1
:
5
’
-GTGGGTGAGTTTTATCTTTAAACGA -3
’,
CLA6
下游引物序列
H-A6R1
:
5
’
- CTTCAATTCTACTGGCTCCAT
-3
’。
扩增引物对供试种子样品模板
DNA
进行
PCR
扩增(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
),其中的
PCR
扩增反应的总体积为
10
μ
L
,扩增反应体系为:
2
×带有
ROX
的
Platinum
定量
PCR SuperMix-UDG
(
invitrogen
)
5
μ
L
,
20
×
Evagreen
(
biotium
)
0.5
μ
L
,上游引物和下游引物(
10
μ
mol/L
)各
0.2
μ
L
,基因组
DNA
模板(
50
ng/
μ
L
)
0.5
μ
L
,双蒸水补足
10
μ
L
。
PCR
反应程序为
95
℃预变性
10
min
,
40
个扩增循环(
95
℃
15 sec
,
60
℃
30 sec
)。
、
HRM
分析(仪器为
Illumina
Eco real-time PCR system
)
95
℃变性
15 sec
,
55
℃退火
15 sec
,然后逐步上升至
95
℃保持
15 sec
。
、
SNP
分型鉴定:通过分析
HRM
结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图(
Normailized
)和差异视图(
Difference
),对供试种子样品进行
SNP
分型。
用
CLA1
位点检测,
HRM
分析结果是
C/T
的测试种子是杂交种,
HRM
分析结果是
C/C
或者
T/T
的测试种子不是杂交种。
用
CLA6
位点检测,
HRM
分析结果是
A/G
的测试种子是杂交种,
HRM
分析结果是
A/A
或者
G/G
的测试种子不是杂交种。
、纯度鉴定
通过计算供试种子样品中杂交种的比例确定种子纯度
:
种子纯度
=
杂交种数量
/
供试种子数量
*100%
。
附图说明
:
图
1
为
CLA1
位点的
HRM
分析标准视图(
Normailized
);
图
2
为
CLA1
位点的
HRM
分析差异视图(
Difference
);
图
3
为
CLA6
位点的
HRM
分析标准视图(
Normailized
);
图
4
为
CLA6
位点的
HRM
分析差异视图(
Difference
)。
具体实施方式
为了能更加清楚的说明本发明的方法,下面对本发明的试验方法做以详细的说明,在此需加以说明的是:本发明所述的引物序列见表
1
。
实施例
1
(
1
)样品包括
SNP
位点
CLA1 HRM
分析对照母本、父本和杂交种的
DNA
,以及供试黄瓜品种津优
36
,属于地黄瓜,产地天津。
(
2
)
PCR
引物序列表如下:
(
3
)取样及
DNA
提取
供试品种取
40
粒种子,去壳,液氮冷冻研磨(
Retsch MM400
生物粉碎仪),加入
CTAB
裂解缓冲液(
20 g/L CTAB
,
1.4 M
NaCl
,
0.1 M Tris-HCl
,
20 mM Na2EDTA
)
500
μ
L
,
65
℃恒温水浴(
Neslab
)裂解
30min
,后续
DNA
提取纯化按树脂型基因组
DNA
提纯试剂盒(赛百盛)操作进行。
DNA
提取后浓度统一稀释至
50
±
1 ng/
μ
L
,
Nanodrop ND1000
,
Thermol
)。
DNA
提取方法也可以按市售试剂盒进行。
(
4
)
PCR
反应
按上表所述的
PCR
扩增引物对供试种子样品模板
DNA
进行
PCR
扩增(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
),其中的
PCR
扩增反应的总体积为
10
μ
L
,扩增反应体系为:
2
×带有
ROX
的
Platinum
定量
PCR SuperMix-UDG
(
invitrogen
)
5
μ
L
,
20
×
Evagreen
(
biotium
)
0.5
μ
L
,上游引物和下游引物(
10
μ
mol/L
)各
0.2
μ
L
,基因组
DNA
模板(
50
ng/
μ
L
)
0.5
μ
L
,双蒸水补足
10
μ
L
。
PCR
反应程序为
95
℃预变性
10 min
,
40
个扩增循环(
95
℃
15 sec
,
60
℃
30 sec
)。
孔
PCR
反应板分布为:母本、父本、杂交种各
2
孔,阴性对照
2
孔,
40
个样品各
1
孔,共
48
孔。
(
5
)
HRM
分析(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
)
95
℃变性
15 sec
,
55
℃退火
15 sec
,然后逐步上升至
95
℃保持
15
sec
。
(
6
)
SNP
分型鉴定:通过分析
HRM
结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图(
Normailized
)和差异视图(
Difference
),对供试种子样品进行
SNP
分型鉴定。
分型鉴定结果为
C/T
类型种子
39
粒,
C/C
类型种子
1
粒。
(
7
)纯度鉴定
通过计算供试种子样品中杂交种的比例确定种子纯度。
种子纯度
=39/40*100%=97.5%
。
实施例
2
(
1
)样品包括
SNP
位点
CLA6 HRM
分析对照母本、父本和杂交种的
DNA
,以及供试黄瓜品种欧美水果黄瓜,属于水果黄瓜,产地宁阳。
(
2
)
PCR
引物序列表如下:
(
3
)取样及
DNA
提取
供试品种取
40
粒种子,去壳,液氮冷冻研磨(
Retsch MM400
生物粉碎仪),加入
CTAB
裂解缓冲液(
20 g/L CTAB
,
1.4 M
NaCl
,
0.1 M Tris-HCl
,
20 mM Na2EDTA
)
500
μ
L
,
65
℃恒温水浴(
Neslab
)裂解
30min
,后续
DNA
提取纯化按树脂型基因组
DNA
提纯试剂盒(赛百盛)操作进行。
DNA
提取后浓度统一稀释至
50
±
1 ng/
μ
L
,
Nanodrop ND1000
,
Thermol
)。
DNA
提取方法也可以按市售试剂盒进行。
(
4
)
PCR
反应
按上表所述的
PCR
扩增引物对供试种子样品模板
DNA
进行
PCR
扩增(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
),其中的
PCR
扩增反应的总体积为
10
μ
L
,扩增反应体系为:
2
×带有
ROX
的
Platinum
定量
PCR SuperMix-UDG
(
invitrogen
)
5
μ
L
,
20
×
Evagreen
(
biotium
)
0.5
μ
L
,上游引物和下游引物(
10
μ
mol/L
)各
0.2
μ
L
,基因组
DNA
模板(
50
ng/
μ
L
)
0.5
μ
L
,双蒸水补足
10
μ
L
。
PCR
反应程序为
95
℃预变性
10
min
,
40
个扩增循环(
95
℃
15 sec
,
60
℃
30 sec
)。
孔
PCR
反应板分布为:母本、父本、杂交种各
2
孔,阴性对照
2
孔,
40
个样品各
1
孔,共
48
孔。
(
5
)
HRM
分析(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
)
95
℃变性
15 sec
,
55
℃退火
15 sec
,然后逐步上升至
95
℃保持
15
sec
。
(
6
)
SNP
分型鉴定:通过分析
HRM
结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图(
Normailized
)和差异视图(
Difference
),对供试种子样品进行
SNP
分型鉴定。
分型鉴定结果为
A/G
类型种子
38
粒,
G/G
类型种子
2
粒。
(
7
)纯度鉴定
通过计算供试种子样品中杂交种的比例确定种子纯度。
种子纯度
=38/40*100%=92.5%
。
实施例
3
(
1
)样品包括
SNP
位点
CLA6 HRM
分析对照母本、父本和杂交种的
DNA
,以及供试黄瓜品种津绿龙胜,属于地黄瓜,产地天津。
(
2
)
PCR
引物序列表如下:
(
3
)取样及
DNA
提取
供试品种取
40
粒种子,去壳,液氮冷冻研磨(
Retsch MM400
生物粉碎仪),加入
CTAB
裂解缓冲液(
20 g/L CTAB
,
1.4 M
NaCl
,
0.1 M Tris-HCl
,
20 mM Na2EDTA
)
500
μ
L
,
65
℃恒温水浴(
Neslab
)裂解
30min
,后续
DNA
提取纯化按树脂型基因组
DNA
提纯试剂盒(赛百盛)操作进行。
DNA
提取后浓度统一稀释至
50
±
1 ng/
μ
L
,
Nanodrop ND1000
,
Thermol
)。
DNA
提取方法也可以按市售试剂盒进行。
(
4
)
PCR
反应
按上表所述的
PCR
扩增引物对供试种子样品模板
DNA
进行
PCR
扩增(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
),其中的
PCR
扩增反应的总体积为
10
μ
L
,扩增反应体系为:
2
×带有
ROX
的
Platinum
定量
PCR SuperMix-UDG
(
invitrogen
)
5
μ
L
,
20
×
Evagreen
(
biotium
)
0.5
μ
L
,上游引物和下游引物(
10
μ
mol/L
)各
0.2
μ
L
,基因组
DNA
模板(
50
ng/
μ
L
)
0.5
μ
L
,双蒸水补足
10
μ
L
。
PCR
反应程序为
95
℃预变性
10
min
,
40
个扩增循环(
95
℃
15 sec
,
60
℃
30 sec
)。
孔
PCR
反应板分布为:母本、父本、杂交种各
2
孔,阴性对照
2
孔,
40
个样品各
1
孔,共
48
孔。
(
5
)
HRM
分析(仪器为
Illumina Eco real-time PCR system
)
95
℃变性
15 sec
,
55
℃退火
15 sec
,然后逐步上升至
95
℃保持
15
sec
。
(
6
)
SNP
分型鉴定:通过分析
HRM
结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图(
Normailized
)和差异视图(
Difference
),对供试种子样品进行
SNP
分型鉴定。
分型鉴定结果为
A/G
类型种子
39
粒,
G/G
类型种子
1
粒。
(
7
)纯度鉴定
通过计算供试种子样品中杂交种的比例确定种子纯度。
种子纯度
=39/40*100%=97.5%
。
序列表
<110>
天津市农业科学院中心实验室
<120>
基于高分辨率溶解曲线的黄瓜杂交种纯度鉴定方法
<160>
4
<170>
PatentIn version 3.5
<210>
1
<211>
25
<212>
DNA
<213>
基因序列
<400>
1
gaaacaaaaa
aacacattac tccca
25
<210>
2
<211>
19
<212>
DNA
<213>
基因序列
<400>
2
ctgcacaatc
gtcaacact
19
<210>
3
<211>
25
<212>
DNA
<213>
基因序列
<400>
3
gtgggtgagt
tttatcttta aacga
25
<210>
4
<211>
21
<212>
DNA
<213>
基因序列
<400>
4
cttcaattct
actggctcca t
21
Claims (2)
1.用于黄瓜SNP位点CLA6 HRM分析的一对PCR扩增引物,其特征在于,包括上游引物序列:5’-
GTGGGTGAGTTTTATCTTTAAACGA -3’, 下游引物序列: 5’- CTTCAATTCTACTGGCTCCAT -3’。
2.一种采用权利要求1所述引物基于高分辨率溶解曲线分析技术的黄瓜杂交种种子纯度鉴定的方法,其特征在于包括如下步骤:
(1)采用权利要求1所述的 PCR扩增引物对供试种子样品模板DNA进行PCR扩增,其中的PCR扩增反应的总体积为10 μL,扩增反应体系为:invitrogen 生产的2×带有ROX的Platinum 定量PCR SuperMix-UDG 5μL,biotium生产的20×Evagreen 0.5μL,上游和下游引物10μmol/L,各0.2μL,浓度为50ng/μL的供试黄瓜杂交种基因组DNA模板0.5μL,双蒸水补足10 μL;PCR反应程序为95℃预变性10 min,40个扩增循环,循环条件为95℃ 15 sec,60℃ 30 sec;
(2)对PCR扩增产物进行HRM分析,程序为95℃ 变性15 sec,55 ℃退火15 sec,然后逐步上升至95℃保持15 sec;
(3)通过分析HRM结果,比较标准样品和供试种子样品的标准视图和差异视图,对供试种子样品进行SNP分型;通过计算供试种子样品中杂交种数量占总种子数量的比例确定种子纯度 。
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