CN102286631A - 多重pcr快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法 - Google Patents

多重pcr快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了了一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,包括如下步骤:1)首先选择5条上游引物和1条下游引物;2)取阳性对照标准菌液和待检菌液分别制备基因组DNA模板;3)分别在阳性对照标准菌液制备的基因组DNA模板和待检菌液制备的基因组DNA模板中添加所述上游引物和下游引物进行PCR扩增反应;4)取扩增后的产物进行电泳;5)结果判定。本发明是一种快速、准确、灵敏的多重PCR检测和鉴定5种李斯特菌的方法,为分子生物学方法鉴定李斯特菌种提供选择。不仅提高了效率,节约时间,而且节省检测成本。

Description

多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法
技术领域
本发明涉及一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法。
背景技术
目前国际上公认的李斯特菌共有6种:单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes,简称单增李斯特菌)、绵羊李斯特菌(Listeria ivanovii)、英诺克李斯特菌(Listeria innocua)、威尔李斯特菌(Listeria welshimeri)、格氏李斯特菌(Listeria grayi)和西尔李斯特菌(Listeria seeligcri)。其中单增李斯特菌是一种人畜共患的病原菌,可引起严重的传染病,如败血症、脑炎、脑膜炎。该菌广泛存在于自然界中,肉类、蛋类、禽类、海产品、乳制品、蔬菜等都已被证实是单增李斯特菌的感染源,食品中存在的单增李斯特菌对人类的安全具有威胁,该菌在4 ℃的环境中仍可生长繁殖,是冷藏食品威胁人类健康的主要病原之一,2000年被WHO食品安全工作计划列为检测的食源性致病菌之一;绵羊李斯特菌主要危害动物,特别是反刍兽,常表现为败血症和流产,对人危害较少;英诺克李斯特菌在近期国内外报道存在食品中,对人类具有一定的潜在致病性。尤其在发生由非溶血性变为溶血性的变异时,有致病的潜力;其余3种李斯特菌对人和动物的危害相对较小。英诺克李斯特菌、威尔李斯特菌、格氏李斯特菌等李斯特菌虽不是常规致病菌,但由于其常与致病的李斯特菌共同存在于食品中,因此也被作为致病李斯特菌的指示菌。在食品中,虽然不同李斯特菌的危害严重性不同,但任何一种李斯特菌的存在,均被认为是卫生状况不良的指示。
从上世纪80年代起,美国、日本、新西兰、德国、英国、法国、欧洲等国家多次因食品污染爆发人类李斯特菌病。至2003年,我国有报道的散发性李斯特菌病例150例,死亡率26%。2008年,加拿大共发生57起李斯特菌感染,造成23人死亡。
目前,鉴定李斯特菌的方法主要分为两类:一类是传统的生化鉴定方法,包括微量生化反应方法和血清学方法等。另一类是分子生物学方法,包括普通PCR方法和实时荧光PCR方法等。传统方法费时、费力,且实验重复性相对较低,但其准确性使很多国家在制定标准时依然采用传统方法。分子生物学方法鉴定细菌具备快速、简便的特点,但在准确性和特异性方面尚有需要改进之处。
发明内容
本发明的目的在于提供了一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法;本发明是一种快速、准确、灵敏的多重PCR检测和鉴定5种李斯特菌的方法,为分子生物学方法鉴定李斯特菌种提供选择。不仅提高效率,节约时间,而且节省检测成本。
为了达成上述目的,本发明的解决方案是:
一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,包括如下步骤:1)首先选择5条上游引物和1条下游引物;2)取阳性对照标准菌液和待检菌液分别制备基因组DNA模板;3)分别在阳性对照标准菌液制备的基因组DNA模板和待检菌液制备的基因组DNA模板中添加所述上游引物和下游引物进行PCR扩增反应;4)取扩增后的产物5 μL点样于1%琼脂糖凝胶,其中含0.5 μg/mL溴化乙锭,以2000 bp Marker为标准分子参照,进行电泳;电泳结果用紫外凝胶成像系统分析;5)结果判定,待检样品与阳性对照同时扩增出230~250 bp条带的,判定为格氏李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出650~660 bp条带的,判定为单增李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出460~470 bp条带的,判定为威尔李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出360~370 bp条带的,判定为绵羊李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出860~870 bp条带的,判定为英诺克李斯特菌阳性。
所述的5条上游引物和1条下游引物的引物序列分别为:
上游引物MonoA:5-CAAACTGCTAACACAGCTACT-3;
上游引物Ino2:5'-ACTAGCACTCCAGTTGTTAAAC-3';
上游引物WelD:5'-ACAGTAATACAACTGCACCAA-3';
上游引物Gra1:5'-AATCAAGTAGGTCTTAGCCTTTCTG-3';
上游引物IvaA:5'-TAGCAGCACGGCAAGCGCAA-3';
下游引物lis1B:5'-TTATACGCGACCGAAGCCAAC-3'。
所述的PCR反应条件如下:95 ℃变性3 min;95 ℃15 s、58 ℃30 s、72 ℃45 s,进行30个循环扩增;72 ℃延伸5 min。
所述PCR反应体系如下:
10×扩增缓冲液            5 μl;(购于FERMENTAS)
  4种dNTP混合物       各200 μmol/L ;    
   引物              各0.5 μmol/L; 
 DNA模板                2 μg;    
 Taq DNA聚合酶              2 u;(购于生工生物工程(上海)有限公司)    
MgCl2               1.5 mmol/L; 加ddH2O至                50 μl;
其中所述的4种dNTP混合物指:三磷酸腺嘌呤脱氧核苷酸dATP,脱氧胸苷三磷酸dTTP,脱氧鸟苷三磷酸三钠dGTP ,脱氧胞苷三磷酸dCTP。(购于Bio Basic Inc)
所述的扩增缓冲液配方为:pH 8.8,25℃,100 mM Tris-HCl;500 mM, KCl;0.8%(v/v),乙基苯基聚乙二醇(Nonidet P40)。    所述的阳性对照标准菌液和待检菌液分别制备基因组DNA模板的方法为:取5种李斯特菌(ATCC33090英诺克李斯特菌,CMCC54002单核增生李斯特菌,ATCC19119绵羊李斯特菌,ATCC35897威尔李斯特菌,ATCC25401格氏李斯特菌)的标准菌株细菌培养液1 ml(购于上海复祥生物公司)或者是待检菌液1 ml,置于无菌的1.5 ml Eppendorf离心管中,12000 rpm离心1 min,去上清,用灭菌蒸馏水洗涤两次,收集菌体;加入400 μl裂解液混匀,置于37 ℃水浴1 h;然后加入200 μl 5 mol/L的氯化钠溶液,混匀后于13000 rpm离心15 min;取上清液,用苯酚抽提2次,氯仿抽提1次;加两倍体积无水乙醇,1/10体积,3 mol/L ,pH8.0的醋酸钾,-20 ℃保存1 h后,13000 rpm离心15 min,弃上清液,沉淀用70%乙醇洗2次;置于室温干燥后,溶于50 μl TE溶液(购于上海索莱宝生物科技有限公司)中,置4 ℃保存备用。
所述的裂解液配方为:40 mmol/L Tris-醋酸,20 mmol/L醋酸钠,1 mmol/L EDTA,1%十二烷基硫酸钠(SDS),pH7.8。     本发明的有益效果为:本发明建立了利用多条引物竞争性退火的多重PCR方法检测和鉴别5种李斯特菌的方法,并经实际样本检测测试,未发现假阳性结果,表明该方法切实可行。本方法采用PCR扩增技术,使得检测5种李斯特菌的灵敏度大大提高。由于本方法经一次PCR即可鉴别5种李斯特菌,不需要对每种李斯特菌分别进行确证鉴定,节省了实验时间,加快了检出速度。综上所述:本发明的李斯特菌检测和鉴定方法具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点,较传统的生理生化鉴定方法具有更高的可重复性,较普通PCR更为快速、简便,可实现对5种李斯特菌的快速、准确、特异的检测和分析。
附图说明
图1为本发明标准菌株的多重PCR扩增产物电泳图;其中1、格氏李斯特菌,2、单增李斯特菌,3、威尔李斯特菌,4、绵羊李斯特菌,5、英诺克李斯特菌,M、2000 bp DNA Ladder Marker; 
   图2为本发明实施例1的样品检测的多重PCR电泳图;其中1、单增李斯特菌,2、威尔李斯特菌,3、绵羊李斯特菌,4、英诺克李斯特菌,5、格氏李斯特菌,6、样品,N、阴性对照,M、2000 bp DNA Ladder Marker。
具体实施方式
实施例1
特异性引物和标准菌株鉴定实验
1)、引物:
根据Genebank中公布的5种李斯特菌(单增李斯特菌,绵羊李斯特菌,英诺克李斯特菌,威尔李斯特菌,格氏李斯特菌)iap基因序列的保守区和可变区,以及相关文献,使用Primer5.0软件设计引物;经预实验选择5条上游引物(MonoA、Ino2、WelD、Gra1、IvaA)和1条下游引物(lis1B)为最佳组合,引物序列如下:
上游引物MonoA:5-CAAACTGCTAACACAGCTACT-3;
上游引物Ino2:5'-ACTAGCACTCCAGTTGTTAAAC-3';
上游引物WelD:5'-ACAGTAATACAACTGCACCAA-3';
上游引物Gra1:5'-AATCAAGTAGGTCTTAGCCTTTCTG-3';
上游引物IvaA:5'-TAGCAGCACGGCAAGCGCAA-3';
下游引物lis1B:5'-TTATACGCGACCGAAGCCAAC-3'
引物由大连宝生物工程有限公司合成;预期扩增的片段大小分别为:格氏李斯特菌230~250 bp,单增李斯特菌650~660 bp,威尔李斯特菌460~470 bp,绵羊李斯特菌360~370 bp,英诺克李斯特菌860~870 bp。
2)、阳性对照标准菌液的DNA模板的制备:
取5种李斯特菌(ATCC33090英诺克李斯特菌,CMCC54002单核增生李斯特菌,ATCC19119绵羊李斯特菌,ATCC35897威尔李斯特菌,ATCC25401格氏李斯特菌)的标准菌株细菌培养液1 ml,置于无菌的Eppendorf离心管中,12000 rpm离心1 min,去上清,用灭菌蒸馏水洗涤两次,收集菌体;加入400 μl裂解液(40 mmol/L Tris-醋酸,20 mmol/L醋酸钠,1 mmol/L EDTA,1%SDS,pH7.8)混匀,置于37 ℃水浴1 h;然后加入200 μl 5 mol/L的氯化钠溶液,混匀后于13000 rpm离心15 min。取上清液,用苯酚抽提2次,氯仿抽提1次;加两倍体积无水乙醇,1/10体积醋酸钾(3 mol/L,pH8.0),-20 ℃保存1 h后,13000 rpm离心15 min,弃上清液,沉淀用70%乙醇洗2次;置于室温干燥后,溶于50 μl TE溶液中,置4 ℃保存备用。
3)、在阳性对照标准菌液制备的基因组DNA模板中添加所述上游引物和下游引物进行PCR扩增反应;
所述PCR反应体系如下:
10×扩增缓冲液           5 μl;(购于FERMENTAS;100 mM Tris-HCl(pH 8.8,25℃),500 mM KCl,0.8%(v/v) Nonidet P40)   4种dNTP混合物    各200 μmol/L ;    
   引物          各0.5 μmol/L; 
 DNA模板            2 μg;    
 Taq DNA聚合酶          2 u;    
MgCl2          1.5 mmol/L; 加ddH2O至             50 μl;
其中所述的4种dNTP混合物指:三磷酸腺嘌呤脱氧核苷酸dATP,脱氧胸苷三磷酸dTTP,脱氧鸟苷三磷酸三钠dGTP ,脱氧胞苷三磷酸dCTP。     PCR反应条件如下:
95 ℃变性3 min;95 ℃15 s、58 ℃30 s、72 ℃45 s,进行30个循环扩增;72 ℃延伸5 min。
4)取扩增后的产物5 μL点样于1%琼脂糖凝胶,其中含0.5 μg/mL溴化乙锭,以2000 bp Marker为标准分子参照,以5 V/cm的电场强度于0.5×TBE电泳缓冲液中电泳30 min;电泳结果用紫外凝胶成像系统分析、拍照;结果如图1。实验表明5种李斯特菌分别产生长度差异显著的特异性扩增条带。
5)PCR产物的序列鉴定:
切下含有所需DNA片段的凝胶,用DNA回收试剂盒(TAKARA)从琼脂糖凝胶中回收纯化目的片段;DNA测序由大连宝生物工程有限公司完成;测序证明,PCR扩增片段与预期一致:格氏李斯特菌230~250 bp,单增李斯特菌650~660 bp,威尔李斯特菌460~470 bp,绵羊李斯特菌360~370 bp,英诺克李斯特菌860~870 bp。
实施例2
冻猪肉样品培养物(经生化鉴定为单增李斯特阳性)检测实验
1)样品DNA模板的制备:
取疑似菌落的细菌培养液1 ml,置于无菌的1.5 ml Eppendorf离心管中,12000 rpm离心1 min,去上清,用灭菌蒸馏水洗涤两次,收集菌体;加入400 μl裂解液(40 mmol/L Tris-醋酸,20 mmol/L醋酸钠,1 mmol/L EDTA,1%SDS,pH7.8)混匀,置于37 ℃水浴1 h;.然后加入200 μl 5 mol/L的氯化钠溶液,混匀后于13000 rpm离心15 min。取上清液,用苯酚抽提2次,氯仿抽提1次;加两倍体积无水乙醇,1/10体积醋酸钾(3 mol/L,pH8.0),-20 ℃保存1 h后,13000 rpm离心15 min,弃上清液,沉淀用70%乙醇洗2次;置于室温干燥后,溶于50 μl TE溶液中,置4 ℃保存备用。
2)、在待检样品菌液制备的基因组DNA模板中添加所述上游引物和下游引物进行PCR扩增反应;
所述PCR反应体系如下:
10×扩增缓冲液           5 μl;(购于FERMENTAS;100 mM Tris-HCl(pH 8.8,25℃),500 mM KCl,0.8%(v/v) Nonidet P40)   4种dNTP混合物    各200 μmol/L ;    
   引物          各0.5 μmol/L; 
 DNA模板            2 μg;    
 Taq DNA聚合酶          2 u;    
MgCl2          1.5 mmol/L; 加ddH2O至             50 μl;
其中所述的4种dNTP混合物指:三磷酸腺嘌呤脱氧核苷酸dATP,脱氧胸苷三磷酸dTTP,脱氧鸟苷三磷酸三钠dGTP,脱氧胞苷三磷酸dCTP。
 PCR反应条件如下:
95 ℃变性3 min;95 ℃15 s、58 ℃30 s、72 ℃45 s,进行30个循环扩增;72 ℃延伸5 min。
3)取扩增后的产物5 μL点样于1%琼脂糖凝胶,其中含0.5 μg/mL溴化乙锭,以2000 bp Marker为标准分子参照,以5 V/cm的电场强度于0.5×TBE电泳缓冲液中电泳30 min;电泳结果用紫外凝胶成像系统分析、拍照;结果如图2。
4)结果判定,实验表明冻猪肉样品中含有单增李斯特菌。待检样品与阳性对照同时扩增出230~250 bp条带的,判定为格氏李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出650~660 bp条带的,判定为单增李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出460~470 bp条带的,判定为威尔李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出360~370 bp条带的,判定为绵羊李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出860~870 bp条带的,判定为英诺克李斯特菌阳性。同时对PCR产物的序列鉴定:切下带有所需DNA片段的凝胶,用DNA回收试剂盒(TAKARA)从琼脂糖凝胶中回收纯化目的片段;DNA测序由大连宝生物工程有限公司完成;测序证明,PCR扩增片段与预期一致。

Claims (7)

1.一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于包括如下步骤:1)首先选择5条上游引物和1条下游引物;2)取阳性对照标准菌液和待检菌液分别制备基因组DNA模板;3)分别在阳性对照标准菌液制备的基因组DNA模板和待检菌液制备的基因组DNA模板中添加所述上游引物和下游引物进行PCR扩增反应;4)取扩增后的产物5 μL点样于1%琼脂糖凝胶,其中含0.5 μg/mL溴化乙锭,以2000 bp Marker为标准分子参照,进行电泳;电泳结果用紫外凝胶成像系统分析;5)结果判定,待检样品与阳性对照同时扩增出230~250 bp条带的,判定为格氏李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出650~660 bp条带的,判定为单增李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出460~470 bp条带的,判定为威尔李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出360~370 bp条带的,判定为绵羊李斯特菌阳性;待检样品与阳性对照同时扩增出860~870 bp条带的,判定为英诺克李斯特菌阳性。
2.如权利要求1所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于:所述的5条上游引物和1条下游引物的引物序列分别为:
上游引物MonoA:5-CAAACTGCTAACACAGCTACT-3;
上游引物Ino2:5'-ACTAGCACTCCAGTTGTTAAAC-3';
上游引物WelD:5'-ACAGTAATACAACTGCACCAA-3';
上游引物Gra1:5'-AATCAAGTAGGTCTTAGCCTTTCTG-3';
上游引物IvaA:5'-TAGCAGCACGGCAAGCGCAA-3';
下游引物lis1B:5'-TTATACGCGACCGAAGCCAAC-3'。
3.如权利要求1所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于所述的PCR反应条件如下:95 ℃变性3 min;95 ℃15 s、58 ℃30 s、72 ℃45 s,进行30个循环扩增;72 ℃延伸5 min。
4.如权利要求3所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于所述PCR反应体系如下:
10×扩增缓冲液           5 μl;
  4种dNTP混合物    各200 μmol/L ;    
   引物          各0.5 μmol/L; 
 DNA模板            2 μg;    
 Taq DNA聚合酶          2u;      
MgCl2            1.5 mmol/L; 加双蒸水至             50 μl;
其中所述的4种dNTP混合物指:三磷酸腺嘌呤脱氧核苷酸dATP,脱氧胸苷三磷酸dTTP,脱氧鸟苷三磷酸三钠dGTP ,脱氧胞苷三磷酸dCTP。
5.如权利要求4所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于所述的扩增缓冲液配方为:pH 8.8,25℃,100 mM Tris-HCl;500 mM, KCl;0.8%(v/v),乙基苯基聚乙二醇。
6.   如权利要求1所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于所述的阳性对照标准菌液和待检菌液分别制备基因组DNA模板的方法为:取5种李斯特菌的标准菌株细菌培养液1 ml或者是待检菌液1 ml,置于无菌的1.5 ml Eppendorf离心管中,12000 rpm离心1 min,去上清,用灭菌蒸馏水洗涤两次,收集菌体;加入400 μl裂解液混匀,置于37 ℃水浴1 h;然后加入200 μl 5 mol/L的氯化钠溶液,混匀后于13000 rpm离心15 min;取上清液,用苯酚抽提2次,氯仿抽提1次;加两倍体积无水乙醇,1/10体积,3  mol/L ,pH8.0的醋酸钾,-20 ℃保存1 h后,13000 rpm离心15 min,弃上清液,沉淀用70%乙醇洗2次;置于室温干燥后,溶于50 μl TE溶液(上海索莱宝生物科技有限公司)中,置4 ℃保存备用。
7.如权利要求6所述的一种多重PCR快速检测和鉴定五种李斯特菌的方法,其特征在于所述的裂解液配方为:40 mmol/L Tris-醋酸,20 mmol/L醋酸钠,1 mmol/L EDTA,1%十二烷基硫酸钠(SDS),pH7.8。
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