CN102276717B - 使用羟磷灰石层析除去高分子量聚集体 - Google Patents

使用羟磷灰石层析除去高分子量聚集体 Download PDF

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Abstract

本发明涉及羟磷灰石层析在从含有高分子量聚集体的制剂纯化至少一种抗体的应用。此外，本发明涉及陶瓷羟磷灰石层析整合到组合层析方案用于从抗体制剂除去高分子量聚集体。

Description

使用羟磷灰石层析除去高分子量聚集体
本申请是申请号为200480038753.6(国际申请号为PCT/US2004/032883)、申请日为2004年10月6日、发明名称为“使用羟磷灰石层析除去高分子量聚集体”的中国专利申请的分案申请。
本申请要求2003年11月20日申请的美国临时专利申请号60/523,335和2003年10月27日申请的美国临时专利申请号60/514,018的优先权的利益，它们的公开内容在此全部引入作为参考。
发明领域
本发明涉及使用羟磷灰石层析从抗体制剂中除去高分子量聚集体的方法。在本发明的某些实施方案中，最终制剂中存在的高分子量聚集体的量可以显著降低，如从40％至小于1％。
背景技术
期望鉴定不含破坏或显著降低蛋白生物活性的纯化蛋白的有用方法。在抗体制剂用于诊断应用、治疗应用、应用细胞生物学和功能研究之前，必须从它们中除去污染物。例如，从杂交瘤细胞系收获的抗体制剂常常含有不需要的组分，如由细胞系制备的抗体的高分子量聚集体(HMWA)。这种聚集体的形成通过施用后引起补体激活或过敏性，可以不利地影响产物安全。此外，聚集体形成通过引起产物产量降低、峰加宽和活性丧失可以阻碍制造过程。
最常见的蛋白纯化方法以待纯化的蛋白和污染物之间在大小、电荷和可溶性上存在差异为基础。基于这些参数的方案包括亲和层析、离子交换层析、大小排阻层析和疏水作用层析。然而，这些层析方法在分离聚集或多聚种类的抗体中有时存在技术困难。例如，诸如离子交换和疏水作用层析的技术可以诱导聚集体形成，这是由于蛋白浓度增加或洗脱过程中所需缓冲液浓度和/或pH的改变。此外，几种情况下，抗体显示出太小的等电点差异，以至于不允许用离子交换层析分离它们。Tarditi，J.I mmunol.Methods 599：13-20(1992)。大小排阻层析麻烦且引起产物显著稀释，它是大规模、基于效率的制造方法中的障碍。配体从亲和层析柱泄漏也可能发生，它引起洗脱产物不合需要的污染。Steindl，J.Immunol.Methods 235：61-69(2000)。申请人企图使用阴离子交换层析、阳离子交换层析以及疏水作用层析从抗GDF-8抗体制剂中除去HMWA。然而，所有这些方法基本上不能从抗GDF-8抗体制剂中除去HMWA。
羟磷灰石层析是利用不溶的羟基化磷酸钙[Ca10(PO4)6(OH)2]纯化蛋白的方法，不溶的羟基化磷酸钙形成基质和配体。功能基团由正电荷钙离子(C位点)对和负电荷磷酸根基团(P位点)簇组成。羟磷灰石和蛋白之间的相互作用是复杂和多模式的。然而在相互作用的一个方法中，蛋白上的正电荷氨基与负电荷P位点结合，且蛋白羧基通过配位络合至C位点而相互作用。Shepard，J.of Chroma tography 891：93-98(2000)。
结晶羟磷灰石是用于层析的第一种羟磷灰石类型，但是它被结构难点所限。开发了陶瓷羟磷灰石(cHA)层析来克服与结晶羟磷灰石相关的一些困难，如有限的流速。陶瓷羟磷灰石具有高耐用性、蛋白结合力好和可以在比结晶羟磷灰石更高的流速和压力使用。Vola等人，BioTechniques  14：650-655(1993)。
羟磷灰石已被用于蛋白、核酸以及抗体的层析分离。在羟磷灰石层析中，柱于低浓度磷酸盐缓冲液中被正常平衡和施加样品，并接着以磷酸盐缓冲液浓度梯度洗脱吸附的蛋白。Giovannini，Biotechnology and Bioengineering 73：522-529(2000)。有时浅梯度磷酸钠成功用于洗脱蛋白，而在其它情况下，已经成功使用最高达到400mM磷酸钠的浓度梯度。参见例如Stanker，J.ImmunologicalMethods 76：157-169(1985)(10mM至30mM磷酸钠洗脱梯度)；Shepard，J.Chromatography 891：93-98(2000)(10mM至74mM磷酸钠洗脱梯度)；Tarditi，J.Chromatography 599：13-20(1992)(10mM至350mM磷酸钠洗脱梯度)。虽然盐如NaCl已被掺入结合缓冲液，以使用羟磷灰石层析纯化抗体，Giovannini，R.Biotechnologyand Bioengineering 73：522-529(2000)，但是不知晓盐如NaCl和(NH4)2SO4影响羟磷灰石层析中的蛋白洗脱。Karlsson等人，ExchangeChromatography，in Protein Purification，VCH Publishers，Inc.(Janson and Ryden eds.，1989)。
在几种情况下，研究者已不能从羟磷灰石选择性洗脱抗体或发现羟磷灰石层析不产生足够纯的产物。Junbauer，J.Chromatography476：257-268(1989)；Giovannini，Biotechnology andBioengineering 73：522-529(2000)。申请人失败地企图使用基于现有技术教导的陶瓷羟磷灰石层析和磷酸钠洗脱将高分子量聚集体与抗体制剂分离(图1)。此外，已知苛刻的洗脱条件当用于企图打破蛋白与基质的紧密结合时破坏蛋白的生物活性。因此，需要从抗体制剂除去杂质如高分子量聚集体的有效方法，所述方法不破坏抗体生物活性。
发明内容
申请人意外地发现NaCl可以用在新的羟磷灰石层析方法中用于纯化免疫球蛋白和从不同原材料中除去HMWA(图2)。因此，本发明涉及从抗体制剂除去高分子量聚集体的方法，其通过使所述制剂接触羟磷灰石树脂和从树脂选择性洗脱抗体来实现。可供选择地，抗体制剂可被缓冲液更换入平衡缓冲液，然后允许其流过羟磷灰石树脂。这些结合/流通羟磷灰石层析方法的组合也可以用来纯化抗体制剂。
本发明特征为含有1至20mM磷酸钠和0.2至2.5M NaCl的洗脱缓冲液或加样缓冲液，其中洗脱缓冲液或加样缓冲液具有6.4至7.6的pH。
在结合/流通组合模式中，本发明特征为含有1至20mM磷酸钠、0.01至2.0M NaCl、0至200mM精氨酸和0至200mM HEPES的平衡缓冲液和洗涤缓冲液，其中平衡缓冲液和洗涤缓冲液具有6.2至8.0的pH。
在一个实施方案中，纯化的抗体含有小于5％的高分子量聚集体。
在又一个实施方案中，纯化的抗体含有小于1％的高分子量聚集体。
在另外的实施方案中，抗体制剂含有至少一个IgG抗体。更具体而言，抗体制剂含有选自抗IL-21受体、抗GDF-8、抗Abeta、抗CD22、抗Lewis Y、抗IL-13或抗IL-22的至少一个抗体。
至少一种纯化方法可以与本发明的羟磷灰石层析组合使用。可以使用各种纯化方法，包括但不限于A蛋白层析、亲和层析、疏水作用层析、固定化金属亲和层析、大小排阻层析、渗滤、超滤、病毒除去过滤、阴离子交换层析和/或阳离子交换层析。
在一个实施方案中，阴离子交换和A蛋白层析与陶瓷羟磷灰石层析组合使用。阴离子交换和A蛋白层析可以组合使用，例如通过使抗体制剂接触A蛋白支持体，允许抗体吸附于支持体，用至少一种A蛋白洗涤缓冲液洗涤支持体和吸附的抗体，用至少一种A蛋白洗脱缓冲液洗脱吸附的抗体，使制剂接触离子交换支持体，允许抗体流过支持体，用至少一种离子交换洗涤缓冲液洗涤支持体，使离子交换流通物(flow-through)接触羟磷灰石树脂，允许流通物吸附于树脂，用至少一种羟磷灰石洗涤缓冲液洗涤树脂和用至少一种羟磷灰石洗脱缓冲液从树脂洗脱纯化的抗体。
在又一实施方案中，阴离子交换和A蛋白层析可以组合使用，例如通过使制剂接触A蛋白支持体，允许抗体吸附于A蛋白支持体，用至少一种A蛋白洗涤缓冲液洗涤A蛋白支持体和吸附的抗体，用至少一种A蛋白洗脱缓冲液洗脱吸附的抗体，使A蛋白洗脱物接触离子交换支持体，允许抗体流过离子交换支持体，用至少一种离子交换洗涤缓冲液洗涤离子交换支持体，离子交换流通物被更换入包含1至20mM磷酸钠和0.2至2.5M NaCl的加样缓冲液，使离子交换流通物接触羟磷灰石树脂，允许抗体流过羟磷灰石树脂和用至少一种羟磷灰石洗涤缓冲液洗涤羟磷灰石树脂。
在又一个实施方案中，阴离子交换和A蛋白层析与陶瓷羟磷灰石层析组合使用。阴离子交换和A蛋白层析可以组合使用，例如通过使抗体制剂接触A蛋白支持体，允许抗体吸附于支持体，用至少一种A蛋白洗涤缓冲液洗涤支持体和吸附的抗体，用至少一种A蛋白洗脱缓冲液洗脱吸附的抗体，使制剂接触离子交换支持体，允许抗体流过支持体，用至少一种离子交换洗涤缓冲液洗涤支持体，使离子交换流通物接触羟磷灰石树脂，允许流通物吸附于树脂，允许HMWA比抗体单体更紧密地结合，和当继续加样时，用HMWA替换结合的单体，用至少一种羟磷灰石洗涤缓冲液洗涤树脂，和收集替换的抗体单体。
本发明另外的目的和优点将在随后的说明书中部分阐述和由说明书本发明将部分显而易见，或可以从本发明的实践中学习。本发明的目的和优点将依靠特别是在所附权利要求中指出的要素和组合来实现和完成。
应当理解上述一般说明和下列详细说明仅仅是示范和说明性的，并没有限制要求保护的本发明。
并入和组成本说明书一部分的附图连同说明书用来解释本发明的原理。
附图说明
图1显示了现有技术磷酸盐梯度洗脱不能将HMWA和抗GDF-8抗体制剂分离。
图2显示了使用NaCl梯度洗脱导致大部分HMWA和抗GDF-8抗体制剂分离。
图3显示了使用cHA层析将HMWA和抗CD22抗体制剂分离。
图4显示了使用cHA层析将HMWA和抗Abeta抗体制剂分离。
具体实施方式
A.定义
为了可以更容易地理解本发明，首先定义某些术语。另外的定义贯穿详述来阐述。
术语“抗体”是指任何免疫球蛋白或其片段，并包括包含抗原结合部位的任何多肽。该术语包括但不限于多克隆的、单克隆的、单特异性的、多特异性的、非特异性的、人源化的、人的、单链的、嵌合的、合成的、重组的、杂合的、突变的、嫁接的和体外产生的抗体。术语“抗体”也包括抗体片段，如Fab、F(ab′)2、Fv、scFv、Fd、dAb和保留抗原结合功能的其它抗体片段。一般地，这种片段将包含抗原结合结构域。
本发明也可以纯化的抗体包括化学修饰的形式，如通过用PEG处理，和包含免疫球蛋白部分的融合蛋白。抗体或其片段可以选自任何已知抗体同型和它们的构象，例如IgA、IgG、IgD、IgE、IgM单体、IgA二聚体、IgA三聚体或IgM五聚体。
术语“抗体制剂”是指含有抗体和/或不需要的组分的任何组合物，该组分如这种抗体的高分子量聚集体。
“陶瓷羟磷灰石”或“cHA”是指式[Ca10(PO4)6(OH)2]的不溶羟基化磷酸钙，它已在高温下烧结为球状、大孔陶瓷形式。术语“cHA”包括但不限于I型和I I型陶瓷羟磷灰石。除非具体说明，“cHA”是指任何颗粒大小，包括但不限于20、40和80μm。
术语“高分子量聚集体”或“HMWA”是指至少两种抗体的结合。可以用任何方法发生所述结合，包括但不限于共价的、非共价的、二硫键或非还原交联。至少两种抗体可以结合相同或不同的抗原。至少两种抗体可以是抗体、抗体片段的形式，或上面“抗体”定义中描述的其它形成。
术语“流通模式”是指抗体制剂分离技术，其中制剂中所含的至少一种抗体意欲流过层析树脂或支持体，而至少一种潜在污染物或杂质与层析树脂或支持体结合。流通模式可以用于例如羟磷灰石层析和离子交换层析中。
“结合模式”指抗体制剂分离技术，其中制剂中所含的至少一种抗体与层析树脂或支持体结合，而至少一种污染物或杂质流过。结合模式可以用于例如羟磷灰石层析和离子交换层析中。
B.方法描述
本发明提供了使用羟磷灰石层析以结合模式、流通模式或其组合从抗体制剂除去高分子量聚集体(HMWA)的方法。本发明在大规模抗体制剂纯化中具有应用。
在结合模式中，该方法使用装载着中性pH和低离子强度的磷酸盐的羟磷灰石支持体以结合抗体和HMWA两者。然后用磷酸盐缓冲液洗涤柱以除去松弛结合的杂质。接下来，使用含有0.2至2.5M NaCl、在弱酸性至弱碱性pH的高离子强度磷酸盐缓冲液选择性洗脱抗体。任选随后使用中性pH的甚至更高离子强度和高磷酸盐浓度缓冲液从树脂洗掉HMWA。最后，任选使用氢氧化钠和磷酸钾溶液再生树脂。
在流通模式中，抗体制剂被缓冲液更换入含有0.2至2.5M NaCl的弱酸至弱碱性pH的加样缓冲液。然后允许抗体制剂流过羟磷灰石柱，而杂质如HMWA与柱结合。任选随后洗涤柱以允许另外的纯化的抗体流过柱。最后，任选解吸(strip)柱，然后使用氢氧化钠和磷酸钾溶液再生柱。
在结合/流通组合模式中，允许抗体制剂流过羟磷灰石柱，其中抗体单体和HMWA最初结合。然而，当继续加样时，进来的HMWA能够比抗体单体更紧密结合，并因此替换结合的单体。因此，替换的单体流过柱。任选随后洗涤柱以允许另外的替换的抗体流过柱。最后，任选用高盐高磷酸盐溶液解吸该柱，并然后使用氢氧化钠和磷酸钾溶液再生该柱。
在本发明的一个实施方案中，纯化的抗体含有小于5％HMWA，在一个实施方案中，小于3％HMWA，和在另一个实施方案中，小于1％HMWA。
1.抗体
本发明的抗体制剂可以从很多来源分离，所述来源包括但不限于免疫动物的血清、腹水、杂交瘤或骨髓瘤上清液、来源于培养表达抗体分子的重组细胞系的条件培养基，和从所有抗体产生性细胞的细胞提取物中分离。在本发明的一个实施方案中，来自各种抗体产生性重组细胞系的条件细胞培养基的抗体被纯化。尽管人们可以预期细胞系与细胞系间和各种抗体产物间的一些变异，但是基于在此公开的内容，使在此的发明适应于抗体蛋白和产生细胞系的特定组合是在本领域普通技术人员的范围之内的。
仅仅为了例证，本发明应用于IgG同型和碱性pI的几个抗体的纯化。更具体而言，本发明应用于美国临时专利申请号60/419,964描述的抗GDF-8的单克隆抗体(在下文中称为“Myo-29”)、美国专利申请号10/428,894描述的与CD22抗原特异性反应的单克隆抗体(在下文中称为“抗CD22”)和国际申请号PCT/US01/46587描述的抗Abeta抗原的单克隆抗体(在下文中称为“抗Abeta”)。上面提及的申请中详述了生产Myo-29和CD22和Abeta抗体的重组系统的构建。
2.羟磷灰石树脂
各种羟磷灰石层析树脂是商业上可获得的，和任何可获得形式的材料可以用于本发明的实施。在本发明的一个实施方案中，羟磷灰石是结晶形式。用于本发明的羟磷灰石可以是附聚以形成颗粒和高温下烧结为稳定多孔的陶瓷块的羟磷灰石。
羟磷灰石的颗粒大小可以广泛变化，但是一般的颗粒大小范围是直径1μm至1,000μm，和可以是10μm至100μm。在本发明的一个实施方案中，颗粒大小是20μm。在本发明的另一个实施方案中，颗粒大小是40μm。在本发明的又一个实施方案中，颗粒大小是80μm。
很多层析支持体可以用于cHA柱的制备，最广泛使用的是I型和II型羟磷灰石。I型具有高蛋白结合能力和酸性蛋白的较好能力。然而，II型具有较低的蛋白结合能力，但是具有较好的核酸和某些蛋白的分辨率。II型材料也对清蛋白具有非常低的亲和力并特别适于很多种和类别的免疫球蛋白的纯化。特定羟磷灰石类型的选择可以由本领域技术人员确定。
本发明可以使用疏松的、填充于柱中的或位于连续环形层析仪中的羟磷灰石树脂。在本发明的一个实施方案中，陶瓷羟磷灰石树脂被填充于柱中。柱尺寸的选择可以由本领域技术人员确定。在本发明的一个实施方案中，床高度约20cm的至少0.5cm的柱直径可以用于小规模纯化。在本发明另外的实施方案中，可以使用约35cm至约60cm的柱直径。在本发明又一个实施方案中，可以使用60cm至85cm的柱直径。在本发明的某些实施方案中，陶瓷羟磷灰石树脂在pH9.0的200mM Na2HPO4溶液中的浆液可用于以以约4cm/分钟的恒定流速或以重力填充柱。
2.缓冲液组成和加样条件
在羟磷灰石树脂接触抗体制剂之前，可能需要调节参数，如pH、离子强度和温度，和在有些情况下添加不同种类的物质。因此，用给抗体制剂纯化带来必要特征的溶液(例如用于调节pH、离子强度等，或用于引入去污剂的缓冲液)洗涤羟磷灰石基质来实施它的平衡是任选步骤。
在结合/流通组合模式羟磷灰石层析中，用溶液平衡和洗涤羟磷灰石基质，从而给抗体制剂纯化带来必要特征。在本发明一个实施方案中，可以使用含有0.01至2.0M NaCl的弱酸至弱碱性pH的溶液平衡基质。例如，平衡缓冲液可以含有1至20mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有1至10mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有2至5mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有2mM磷酸钠，和在另一个实施方案中，可以含有5mM磷酸钠。平衡缓冲液可以含有0.01至2.0M NaCl，在一个实施方案中，0.025至0.5MNaCl，在另一个实施方案中，0.05M NaCl，和在另一个实施方案中，0.1M NaCl。加样缓冲液的pH可以是6.2至8.0的范围。在一个实施方案中，pH可以是6.6至7.7，和在另一个实施方案中，pH可以是7.3。平衡缓冲液可以含有0至200mM精氨酸，在另一个实施方案中，它可以含有120mM精氨酸，和在另一个实施方案中，它可以含有100mM精氨酸。平衡缓冲液可以含有0至200mM HEPES，在另一个实施方案中，它可以含有20mM HEPES，和在另一个实施方案中，它可以含有100mM HEPES。
在流通模式羟磷灰石层析制备中，抗体制剂也可以被缓冲液更换入适当的缓冲液或加样缓冲液。在本发明的一个实施方案中，抗体制剂可以被缓冲液更换入含有0.2至2.5M NaCl的弱酸至弱碱性pH的加样缓冲液。例如，加样缓冲液可以含有1至20mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有2至8mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有3至7mM磷酸钠，和在另一个实施方案中，可以含有5mM磷酸钠。加样缓冲液可以含有0.2至2.5M NaCl，在一个实施方案中，0.2至1.5M NaCl，在另一个实施方案中，0.3至1.0M NaCl，和在另一个实施方案中，350mM NaCl。加样缓冲液的pH可以是6.4至7.6的范围。在一个实施方案中，pH可以是6.5至7.0，和在另一个实施方案中，pH可以是6.8。
抗体制剂以结合模式、流通模式或其组合的任一模式接触羟磷灰石树脂，可以在填充床柱、含有固相基质的流化/膨胀床柱和/或固相基质与溶液混合的简单分批操作中进行某一段时间。
在羟磷灰石树脂接触抗体制剂后，任选实施洗涤步骤。然而，在非常高纯度免疫球蛋白并不关键或不需要另外流通抗体的一些情况下，可以省去洗涤步骤，从而节约加工步骤以及洗涤溶液。使用的洗涤缓冲液将取决于羟磷灰石树脂的性质、使用的羟磷灰石层析模式，并因此可以由本领域普通技术人员确定。在流通模式和结合/流通组合模式中，任选柱洗涤后获得的纯化的抗体流通物可以与其它纯化的抗体级分合并。
在结合模式下，在任选的洗涤步骤后，抗体可以从柱洗脱。为了从柱洗脱抗体，本发明使用含有约0.2至2.5M NaCl的弱酸至弱碱性pH的高离子强度磷酸盐缓冲液。例如，洗脱缓冲液可以含有1至20mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有2至8mM磷酸钠，在另一个实施方案中，它可以含有2至6mM磷酸钠，在另一个实施方案中，可以含有3mM磷酸钠，和在另一个实施方案中，可以含有5mM磷酸钠。洗脱缓冲液可以含有0.2至2.5M NaCl，在一个实施方案中，0.2至1.5M NaCl，在另一个实施方案中，0.3至1.1M NaCl，在另一个实施方案中，1.0M NaCl，和在另一个实施方案中，0.35MNaCl。洗脱缓冲液的pH可以是6.4至7.6的范围。在一个实施方案中，pH可以是6.5至7.3，在另一个实施方案中，pH可以是7.2，和在另一个实施方案中，pH可以是6.8。为从柱以连续梯度或阶式梯度洗脱抗体，洗脱缓冲液可以改变。
在结合、流通模式及其组合中，在抗体洗脱或流通之后，可以任选净化固相基质，即解吸和再生。一般有规律地进行这个步骤以使杂质在固相表面上的建立最小化和/或对基质进行灭菌以避免微生物对产物的污染。
缓冲液组分可以根据本领域普通技术人员的知识来调节。表1、表2和表3分别提供了结合模式、流通模式和结合/流通组合模式的样品缓冲液组成范围和实例。不是所有缓冲液或步骤都是必要的，但仅仅为了例证而提供。例如，可能不必具有两种不同的平衡步骤，和可能不必解吸、再生或保存羟磷灰石树脂。如实施例11描述的高通量筛选可以用来有效最优化cHA柱层析的缓冲条件。
表1.结合模式的实例缓冲液组成范围
表2.流通模式的实例缓冲液组成范围
表3.结合/流通组合模式的实例缓冲液组成范围
在本发明的一个实施方案中，cHA树脂上的加样可以例如在≤20mg/ml的加样挑战(load challenge)和加样中≤40％HMWA的起始聚集体水平下。在本发明的某些实施方案中，1.8至10.4mg/ml的加样挑战可以与加样中约15％的起始聚集体水平使用。
在本发明另外的实施方案中，cHA树脂可以在至少20mg/ml的加样挑战和加样中≤40％HMWA的起始聚集体水平下加样。在本发明的某些实施方案中，30至40mg/ml的加样挑战可以与加样中约27％的起始聚集体水平使用。
3.另外的任选步骤
尽管已经发现可以单独使用羟磷灰石层析来将单体IgG和聚集体分离，如上所述，但是本发明的纯化方法可以与其它蛋白纯化技术组合使用。在本发明的一个实施方案中，期望羟磷灰石步骤之前的一个或多个步骤降低污染物或杂质的加样挑战。在本发明的另一个实施方案中，可能期望羟磷灰石步骤之后的一个或多个纯化步骤以除去另外的污染物或杂质。
任选所述cHA纯化方法与其它纯化步骤组合，包括但不限于A蛋白层析、亲和层析、疏水作用层析、固定化金属亲和层析、大小排阻层析、渗滤、超滤、病毒除去过滤和/或离子交换层析。
在一个实施方案中，在cHA纯化步骤之前，任选用A蛋白层析步骤初步纯化收获物培养基。例如，可以有用地使用由与受控多孔玻璃共价偶联的A蛋白组成的PROSEP-ATM(Millipore，英国)。其它有用的A蛋白制剂包括A蛋白Sepharose FAST FLOWTM(AmershamBiosciences，Piscataway，NJ)、TOYOPEARLTM650M A蛋白(TosoHaasCo.，Philadelphia，PA)和MABSELECTM柱(Amersham Biosciences，Piscataway，NJ)。
作为cHA纯化前的任选步骤，可以使用离子交换层析。在这个方面，为了形成用于层析的阴离子或阳离子支持体，各种阴离子或阳离子取代基可以附着于基质。阴离子交换取代基包括二乙氨乙基(DEAE)、三甲氨乙基丙烯酰胺(TMAE)、四级氨乙基(QAE)和季铵类(Q)基团。阳离子交换取代基包括羧甲基(CM)、磺乙基(SE)、磺丙基(SP)、磷酸根(P)和磺酸根(S)。纤维素离子交换树脂如DE23、DE32、DE52、CM-23、CM-32和CM-52可从Whatman Ltd.Maidstone，Kent，英国获得。基于Sephadex的和交联的离子交换剂也是已知的。例如，DEAE-、QAE-、CM-和SP-Sephadex，和DEAE-、Q-、CM-和S-Sepharose，和Sepharose都可以从Amersham Biosciences，Piscataway，NJ获得。此外，DEAE和CM衍生的乙二醇-异丁烯酸共聚物如TOYOPEARLTMDEAE-650S或M和TOYOPEARLTMCM-650S或M可以从Toso Haas Co.，Philadelphia，PA获得。
在本发明的一个实施方案中，离子交换层析可以用于结合模式或流通模式。
在某些实施方案中，首先实施A蛋白层析步骤，其次实施阴离子交换步骤和第三步实施cHA步骤。
4.另外杂质的除去
除HMWA除去之外，已表明cHA层析对从抗体制剂除去其它杂质有用。本发明cHA层析方法可以除去的其它杂质包括但不限于来自在以前纯化步骤的DNA、宿主细胞蛋白、外来病毒和A蛋白污染物。
在本发明的一个实施方案中，本发明能够从抗体制剂除去A蛋白。在本发明的某些实施方案中，最终制剂中存在的A蛋白的量可以显著降低，如300ppm至小于1ppm。
实施例
下列实施例仅为例证目的而提供。
实施例1：抗GDF-8抗体的纯化
以下概述的纯化方法是为抗GDF-8单克隆抗体(在此称作“Myo-29”)开发的。Myo-29抗体是IgGl亚型抗体并具有大约8.1的p I。纯化方法包括三个层析步骤(A蛋白亲和、阴离子交换和羟磷灰石)、病毒灭活步骤和超滤/渗滤步骤以浓缩和更换产物进入最终缓冲液。所有步骤都在18至25℃进行，除了A蛋白层析步骤在2至8℃运行。
纯化方法可以规格化为任何规模。列出的线性流速与柱直径无关，且加样比是每单位体积的质量。A蛋白层析步骤每批可以循环多次以容纳收获生物反应器中变化量的细胞培养效价。认为每个循环是独立单位操作并保存洗脱库用于下一步骤。A蛋白步骤具有每升MabSelect大约35克Myo-29的能力。该方法的下游步骤(例如阴离子交换层析和陶瓷羟磷灰石层析)被调整为容纳每升阴离子交换树脂大约15g Myo-29和每升陶瓷羟磷灰石树脂大约10g Myo-29。
1.从培养物除去细胞
Myo-29抗体在中国仓鼠卵巢(CHO)细胞中表达并生长在搅拌的2500L罐式生物反应器中。为收获培养物流体，使用Prostak微量过滤装置(Millipore，Billerica，MA)取出细胞。收集澄清的条件培养基(CCM)进行第一个层析步骤-A蛋白层析。
2.A蛋白亲和层析纯化步骤
用5柱体积的平衡缓冲液(10mM Tris，100mM NaCl，pH 7.5)平衡重组A蛋白树脂的17.7L(30cm直径x 25cm高度)MabSelect柱。CCM以2.5cm/分钟的流速和每升树脂35g Myo-29的加样挑战应用于柱。柱加样后，用5柱体积的高盐洗涤缓冲液(20mM Tris，1.0M NaCl，pH 7.5)，然后用10柱体积低盐洗涤缓冲液(10mM Tris，100mM NaCl，pH 7.5)洗涤。通过应用6柱体积洗脱缓冲液(100mM精氨酸，50mM NaCl，pH 3.0)洗脱Myo-29。然后将洗脱库保持在3.6±0.5的pH下1.5±0.5小时作为预防措施以促进潜在外来病毒污染物的灭活。接着用pH 8.0的2M HEPES缓冲液中和洗脱库至pH 7.3，以防止Myo-29的酸不稳定部分的降解。
用几个参数监控柱流出物，包括肉眼检查UV吸光度和传导率层析谱，和用于加样效价的使用A蛋白HPLC的产物回收和用于洗脱库浓度的280nm吸光度。
用6M盐酸胍解吸柱，然后用解吸洗涤缓冲液(10mM Tris，100mM NaCl，pH 7.5)洗涤该柱。将柱保存在16％乙醇中。
3.阴离子交换层析纯化步骤
在Q SEPHAROSE FF树脂的75L柱(80cm直径X 15cm长度)(Amersham Biosciences，Piscataway，NJ)上通过阴离子交换层析进一步纯化A蛋白柱洗脱物。用5柱体积的第一平衡缓冲液(20mMHEPES，1000mM NaCl，pH 7.3)，然后用5柱体积第二平衡缓冲液(100mM精氨酸、50mM NaCl，100mM HEPES，pH 7.3)平衡柱。A蛋白柱洗脱物以2.5cm/分钟的流速和每升树脂15克Myo-29的加样比应用于平衡的柱。加样后，用5柱体积的第二平衡缓冲液洗涤柱。收集阴离子交换柱流通物。
用几个参数监控收集的柱流通物，包括肉眼检查UV吸光度和传导率层析谱，和使用280nm吸光度的产物回收。
用解吸缓冲液(20mM HEPES，1M NaCl，pH 7.3)解吸阴离子交换柱和用再生缓冲液(500mM NaOH，1M NaCl，pH 13.3)再生该柱。将柱保存在0.01M NaOH中。
4.病毒保留过滤
这个任选步骤的目的是除去可能存在于CHO细胞培养物中的逆转录病毒样颗粒和通过除去潜在外来病毒污染物提供另外的安全。收集阴离子交换柱流通物并使其通过35nm Planova一次性使用的过滤器(Asahi-Kasei Corp.，New York，NY)。通过使阴离子交换柱洗涤缓冲液(100mM精氨酸，50mM NaCl，100mM HEPES，pH 7.3)通过该装置来回收组件中的剩余产物。
通过与历史性能数据相比的Planova库280nm吸光度和SDS-PAGE分析来估计病毒保留过滤后的产物回收。
5.cHA层析纯化步骤
用40μM颗粒大小的cHA II型树脂(BioRad，Hercules，CA)填充的羟磷灰石柱(60cm x 20cm)进一步纯化病毒被滤过的溶液。用3柱体积平衡缓冲液1(0.3M磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)平衡柱。用4柱体积平衡缓冲液2(5mM磷酸钠，50mM NaCl，pH 7.2)进行第二个平衡步骤。部分纯化的培养基于加样缓冲液1∶1(v/v)(10mM磷酸钠，pH 7.2)中，并以2.5cm/分钟的流速加样于树脂上。用3柱体积洗涤缓冲液(5mM磷酸钠，50mM NaCl，pH 7.2)洗涤cHA柱。使用6柱体积洗脱缓冲液(5mM磷酸钠，350mM NaCl，pH 6.8)从cHA树脂洗脱Myo-29抗体。
通过肉眼检查UV吸光度和传导率层析谱、由280nm吸光度确定的产物回收、大小排阻层析(SEC)分析测定的HMWA的除去和竞争性酶联免疫吸附测定(ELISA)测定的A蛋白的除去来监控cHA纯化步骤。
用解吸缓冲液(0.3M磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸cHA柱和用再生缓冲液(0.5M磷酸钾，1.0M NaOH，pH 13.3)再生该柱。将柱保存在0.02M NaOH中。表4证明了cHA层析从抗体制剂有效地除去了HMWA杂质。此外，cHA层析能够除去其它杂质，如A蛋白。
表4.HMWA清除率和抗体单体产量
  样品   HMWA加样％   HMWA峰％   ProA加样(ppm)   ProA峰
  1   14.6   1.0   17   BLOQ*
  2   16.4   0.7   20   BLOQ
  3   15.1   1.6   23   BLOQ
  4   16.0   0.9   13   BLOQ
*BLOQ＝低于1ng/ml的定量限度。
6.超滤/渗滤和最终过滤
使cHA洗脱库通过切向流超滤系统，其中使用由标称分子量限度为30,000的复合再生纤维素膜组成的PLCTK Pellicon 2盒(Millipore，Billerica，MA)。这个步骤的目的是将cHA产物库浓缩和缓冲液更换入制剂缓冲液。用50％蔗糖溶液(w/v)掺入c HA产物库以导致蔗糖浓度至2％。将Myo-29抗体浓缩至大约20gL-1，然后用大约≥9洗涤体积的制剂缓冲液(0.01M L-组氨酸，2％蔗糖，pH 6.0)渗滤。渗滤完成后，进一步浓缩产物至大约60gL-1并通过重力下水和向下吹气，之后用制剂缓冲液冲洗保留物通道而从该装置中回收产物。药物物质中Myo-29的浓度目标是≥35g/L。
Myo-29药物物质最终通过0.22微米过滤器过滤，用制剂缓冲液(0.01M L-组氨酸，2％蔗糖，pH 6.0)平衡，等分试样入瓶中，然后保存在-80℃。
实施例2：使用I型树脂cHA纯化抗GDF-8抗体制剂
也成功地使用40μM颗粒大小、填充于3.1L柱中的I型cHA树脂纯化了Myo-29抗体。用3柱体积平衡缓冲液1(0.3M磷酸钠、1.0M NaCl、pH 6.8)平衡柱。用4柱体积平衡缓冲液2(5mM磷酸钠、50mMNaCl、pH 7.2)进行第二个平衡步骤。将从阴离子交换纯化步骤部分纯化的介质以35mg/ml的加样挑战和1.5cm/分钟的流速加样于树脂上。用3柱体积洗涤缓冲液(5mM磷酸钠，50mM NaCl，pH 7.2)洗涤cHA柱。使用6柱体积洗脱缓冲液(3mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 7.2)从cHA树脂洗脱Myo-29抗体。
用解吸缓冲液(0.3M磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸cHA柱和用再生缓冲液(0.5M磷酸钾，1.0M NaOH，pH 13.3)再生该柱。将柱保存在0.02M NaOH中。
通过肉眼检查UV吸光度和传导率层析谱、由280nm吸光度确定的产物回收、大小排阻层析(SEC)分析测定的HMWA的除去和竞争性酶联免疫吸附测定(ELISA)测定的A蛋白的除去来监控cHA纯化步骤。如表5所示，使用I型树脂的cHA纯化能够使第一个循环中HMWA百分比从27％降低至0.9％，和第二个循环中HMWA百分比进一步降低至0.6％。此外，I型树脂容纳比I I型树脂更高的加样挑战，同时仍产生足够的单体产量。最后，使用I型树脂的cHA纯化能够降低A蛋白杂质的量。
表5.使用I型树脂的HMWA清除率和抗体单体产量
  样品   HMWA％   单体产量％   A蛋白(ppm)
  cHA加样   27.0   N/A   169
  cHA峰(#1循环)   0.9   86.6   BLOQ*
  cHA峰(#2循环)   0.6   86.6   BLOQ
*BLOQ＝低于1ng/ml的定量限度
实施例3：使用I型树脂cHA纯化抗CD22抗体制剂和抗Abeta抗体制剂
实施例2描述的cHA纯化方法也能够充分地从抗CD22和抗Abeta抗体制剂除去HMWA。使用的方法类似于实施例2描述的，只是除了纯化的抗体单体在15柱体积的洗脱缓冲液(3mM磷酸钠，1.5M NaCl，pH 7.2)中梯度洗脱。
如表6所证明，使用I型树脂的cHA纯化能够使抗CD22抗体制剂中的HMWA降低至0.5％和抗Abeta抗体制剂中的HMWA降至低于检测极限。此外，cHA纯化步骤能够从抗体制剂除去A蛋白污染物。
表6.使用I型树脂纯化抗CD22和抗Abeta抗体制剂的HMWA清除 率和抗体单体产量
  样品   HMWA％   单体产量％   A蛋白(ppm)
  抗CD22加样   3.7   N/A   30
  抗CD22峰   0.5   87   BLOQ*
  抗Abeta加样   1.87   N/A   40
  抗Abeta峰   0.0   89   BLOQ
*BLOQ＝低于1ng/ml的定量限度
实施例4：抗GDF-8抗体的流通模式cHA纯化
也成功地使用流通模式cHA纯化方案纯化了Myo-29抗体。在200mM磷酸氢二钠，pH 9.0中，使用Macro-Prep陶瓷羟磷灰石II型，40μM颗粒大小树脂(BioRad，Hercules，CA)填充1.6x20cm Vantage柱(Millipore，Billerica，MA)。用3柱体积平衡缓冲液1(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)和3柱体积平衡缓冲液2(350mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)平衡柱。Myo-29抗体制剂被缓冲液更换入含有350mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8的加样缓冲液，然后加样于cHA柱上。用洗涤缓冲液(350mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)洗涤柱，用解吸缓冲液(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸该柱，然后用再生缓冲液(500mM磷酸钾，1.0M NaOH，pH 13.3)再生该柱。所有流速均保持在2.5至3cm/分钟。使用HPLC系统通过SEC-HPLC分析柱流出物。
表7提供了Myo-29回收和从抗体制剂除去HMWA的概要。该制剂最初含有14.4％HMWA(加样)，其使用本发明的cHA纯化方法降低为0.2％HMWA(流通)。
表7.myo-29回收和HMWA的除去
  样品   Myo-29回收率％   样品中HMWA％
  加样   N/A   14.4
  流通   79.6   0.2
  洗涤   12.2   1.9
  洗涤后   1.5   5.6
  解吸   10.3   84.3
实施例5：使用I型树脂，流通模式cHA纯化抗GDF-8抗体
在200mM磷酸氢二钠，pH 9.0中，使用Macro-Prep陶瓷羟磷灰石I型，40μM颗粒大小树脂(BioRad，Hercules，CA)填充1.1x 21cmVantage柱(Millipore，Billerica，MA)。用3柱体积平衡缓冲液1(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)和3柱体积平衡缓冲液2(1.0MNaCl，3mM磷酸钠，pH 7.2)平衡柱。Myo-29抗体制剂被缓冲液更换入含有1.0M NaCl，3mM磷酸钠，pH 7.2的加样缓冲液，然后以26mg/ml的加样挑战加样于cHA柱上。用洗涤缓冲液(1.0M NaCl，3mM磷酸钠，pH 7.2)洗涤柱，用解吸缓冲液(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸该柱，然后用5柱体积再生缓冲液(500mM磷酸钾，1.0M NaOH，pH 13.3)再生该柱。加样和洗涤流速保持小于90cm/小时，且其余纯化过程流速小于240cm/小时。使用HPLC系统通过SEC-HPLC分析柱流出物。
该抗体制剂最初含有27.2％HMWA(加样)，其降低为6.1％HMWA(流通)。此外，抗体单体回收是72％。
实施例6：抗CD22抗体制剂的cHA纯化
也表明陶瓷HA层析纯化对纯化抗CD22抗体制剂有用。在200mM磷酸氢二钠，pH 9.0中，使用Macro-Prep陶瓷羟磷灰石II型，40μM颗粒大小树脂(BioRad，Hercules，CA)填充1.6x 20cm Vantage柱(Millipore，Billerica，MA)。用3柱体积平衡缓冲液1(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)和3柱体积平衡缓冲液2(50mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)平衡柱。抗CD22抗体制剂被缓冲液更换入50mMNaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8中，然后加样于cHA柱上。用3柱体积洗涤缓冲液(50mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)洗涤柱，然后用15柱体积的5mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8对该柱进行梯度洗脱。用解吸缓冲液(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸cHA柱，然后用再生缓冲液(500mM磷酸钾，1.0M NaOH)再生该柱。所有流速均保持在2.5至3cm/分钟。使用HPLC系统通过SEC-HPLC分析柱流出物。
如图3所示，cHA纯化从抗CD22抗体制剂成功除去HMWA。加样中HMWA百分比是1.7％，而cHA洗脱物中HMWA百分比是0.0％。
实施例7：抗Abeta抗体的cHA纯化
也表明陶瓷HA层析纯化对纯化抗Abeta抗体制剂有用。在200mM磷酸氢二钠，pH 9.0中，使用Macro-Prep陶瓷羟磷灰石II型，40μM颗粒大小树脂(BioRad，Hercules，CA)填充1.6x 20cm Vantage柱(Millipore)。用3柱体积平衡缓冲液1(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)和5柱体积平衡缓冲液2(50mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)平衡柱。抗Abeta抗体制剂被缓冲液更换入50mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8，然后加样于柱上。用5柱体积洗涤缓冲液(50mM NaCl，5mM磷酸钠，pH 6.8)洗涤柱，然后用15柱体积的5mM磷酸钠，1.0MNaCl，pH 6.8对该柱进行梯度洗脱。用解吸缓冲液(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸柱，然后用再生缓冲液(500mM磷酸钾，1.0M NaOH)再生该柱。所有流速均保持在2.5至3cm/分钟。使用HPLC系统通过SEC-HPLC分析柱流出物。
如图4所示，cHA纯化从抗Abeta抗体制剂成功除去HMWA。加样中HMWA百分比是2.6％，而cHA洗脱物中HMWA百分比是0.0％。
实施例8：纯化的Myo-29抗体活性的评估
使用竞争性酶联免疫吸附测定(ELISA)测定根据实施例1所述方法纯化的抗GDF-8抗体Myo-29的结合活性。可以修改竞争性ELISA以测试其它纯化抗体的结合活性。参见例如Antibodies：ALaboratory Manual，Harlow and Land(eds.)，1988，Cold SpringHarbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，N.Y.。GDF-8受体-ActRIIβ.Fc(2μg/mL)以100μl/孔的体积吸附到96孔微量滴定板上。然后板在2至8℃温育过夜。板用洗涤缓冲液(50mM Tris-HCl，pH 8.0，0.05％Tween 20)洗涤两次，并用4％牛血清清蛋白(BSA)溶液封闭以使非特异性结合最小化。板在室温下温育1.5至3.0小时并用洗涤缓冲液(50mM Tris-HCl，pH 8.0，0.05％Tween 20)洗涤两次。
将Myo-29抗体参照标准在测定稀释剂(0.5％BSA，137mM NaCl，2.7mM KCl)中连续稀释4倍，产生共8个标准点。测试样品含有A蛋白层析步骤纯化的Myo-29抗体级分以及另外的cHA纯化步骤后纯化的级分。也将这些测试样品在测定稀释剂中连续稀释2倍，产生落在标准曲线范围内的8个点。将标准样品和测试样品以50μl/孔添加至适当的测定孔中。然后将生物素化竞争剂-生物素标记的GDF-8(50ng/mL)以50μl/孔添加至每个孔。在板式摇床上室温下温育板过夜。
板用洗涤缓冲液(50mM Tris-HCl，pH 8.0，0.05％Tween 20)洗涤四次，并添加100μl/孔链霉抗生物素蛋白缀合的辣根过氧化物酶(1∶5,000；Southern Biotech，Birmingham，Alabama)检测结合的生物素标记的GDF-8。板在板式摇床上室温下温育50至70分钟，然后通过添加100μl/孔3，3’，5，5’-四甲联苯胺(BioFX，Owings Mills，MD)显色。在450nm下用ELISA板读出器(Molecular Devices，Sunnyvale，CA)测定每孔的吸光度。测试样品中有活性的Myo-29的量与测定中产生的信号成反比。通过添100μl/孔0.18M H2SO4来终止反应。
能够结合测试样品中生物素化的GDF-8的Myo-29浓度从使用4参数逻辑方程拟合的标准曲线内推得来。活性蛋白浓度(通过ELISA测定的)除以总蛋白浓度(通过A280测定的)和用100乘这个比率来计算测试样品的生物活性值(活性蛋白％)。如果相同样品在分开批次中纯化，那么计算生物活性平均值。表8报道了生物活性值。
表8.抗GDF-8抗体结合活性(活性蛋白％)
  样品   A蛋白纯化后   cHA纯化后
  1   88   108
  2   86   104
  3   94   108
如表8证明的，在用实施例1所述方法纯化后，Myo-29保持了它结合GDF-8的能力。来自A蛋白纯化的峰洗脱液级分中的纯化的Myo-29的结合活性稍低。然而，如实施例1所述的另外cHA纯化步骤后，结合活性超过参照Myo-29抗体。
实施例9：抗GDF-8抗体的结合/流通组合模式cHA纯化
也表明结合/流通组合模式的陶瓷HA层析纯化对纯化抗GDF-8抗体制剂有用。下面详述的实验在FPLC系统(General Electric)上运行。在200mM磷酸氢二钠，pH 9.0中，使用Macro-Prep陶瓷羟磷灰II型，40μM颗粒大小树脂(BioRad，Hercules，CA)填充1.1x21cm Vantage柱(Millipore)。用3柱体积平衡缓冲液1(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)和5柱体积平衡缓冲液2(50mM NaCl，2.0mM磷酸钠，100mM精氨酸，100mM HEPES，pH 7.3)平衡柱。抗GDF-8抗体制剂20mg/ml的加样挑战加样于柱上。用平衡缓冲液2洗涤柱，用解吸缓冲液(300mM磷酸钠，1.0M NaCl，pH 6.8)解吸该柱，然后用再生缓冲液(500mM磷酸钾，1.0M NaOH，pH 13.3)再生该柱。加样和洗涤的流速是1.5cm/分钟。其余纯化步骤的流速保持在2.5至3.0cm/分钟。使用HPLC系统通过SEC-HPLC分析柱流出物。
结果证明结合/流通组合模式中cHA II型树脂的操作从抗体制剂有效除去HMWA。该制剂最初含有27％HMWA(加样)，其使用本发明的cHA纯化方法降低为1.1％HMWA(流通)。
实施例10：使用I型树脂，结合/流通组合模式cHA纯化抗GDF-8抗体
使用I型cHA树脂代替II型cHA树脂重复实施例9描述的方法。缓冲条件与实施例9中使用的相同，只是除了平衡缓冲液2，其由5.0mM磷酸钠，100mM NaCl，120mM精氨酸，20mM HEPES，pH 7.3组成。
如表9所示，结合/流通组合模式中I型cHA树脂的操作从抗体制剂有效除去HMWA，同时保持抗体单体产量。此外，结合/流通组合模式有效除去A蛋白杂质。最后，I型cHA树脂允许55mg/ml的增加的加样挑战。
表9.结合/流通组合模式操作的I型cHA树脂的HMWA清除率和 抗体单体产量
实施例11：cHA缓冲条件的高通量筛选
进行高通量筛选以最优化用于使用cHA I型树脂纯化Myo-029抗体制剂的缓冲条件。筛选改变了磷酸钠、氯化钠、精氨酸和I型cHA树脂上Myo-29的水平，并检查了Myo-029和高分子量聚集体(HMWA)与树脂结合的程度。
将I型cHA树脂(50μL)添加至96孔滤板的每孔中。表10-12中标记为A1、A2...H11、H12的每孔在由20mM HEPES，pH 7.2和磷酸盐(表10)、氯化钠(表11)和精氨酸(表12)的独特组合制成的平衡缓冲液中进行平衡。
表10.每孔中的磷酸盐水平
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11   12
 A   1mM   1mM   1mM   6mM   5mM   4mM   1mM   1mM   1mM   3mM   2mM   1mM
 B   1mM   1mM   1mM   6mM   5mM   4mM   1mM   1mM   1mM   3mM   2mM   1mM
 C   1mM   1mM   1mM   6mM   5mM   4mM   1mM   1mM   1mM   3mM   2mM   1mM
 D   1mM   1mM   1mM   6mM   5mM   4mM   1mM   1mM   1mM   3mM   2mM   1mM
 E   2mM   3mM   4mM   8mM   10mM   16mM   2mM   3mM   4mM   5mM   6mM   8mM
 F   2mM   3mM   4mM   8mM   10mM   16mM   2mM   3mM   4mM   5mM   6mM   8mM
 G   2mM   3mM   4mM   8mM   10mM   16mM   2mM   3mM   4mM   5mM   6mM   8mM
 H   2mM   3mM   4mM   8mM   10mM   16mM   2mM   3mM   4mM   5mM   6mM   8mM
表11.每孔中的NaCl水平
  1  2  3   4  5  6   7   8   9   10   11   12
 A   25mM  25mM  25mM   25mM  25mM  25mM   750mM   625mM   500mM   500mM   400mM   300mM
 B   25mM  25mM  25mM   25mM  25mM  25mM   750mM   625mM   500mM   500mM   400mM   300mM
 C   50mM  100mM  200mM   50mM  100mM  200mM   1,250mM   1,750mM   2,500mM   600mM   800mM   1,000mM
 D   50mM  100mM  200mM   50mM  100mM  200mM   1,250mM   1,750mM   2,500mM   600mM   800mM   1,000mM
 E   25mM  25mM  25mM   25mM  25mM  25mM   750mM   625mM   500mM   500mM   400mM   300mM
 F   25mM  25mM  25mM   25mM  25mM  25mM   750mM   625mM   500mM   500mM   400mM   300mM
 G   50mM  100mM  200mM   50mM  100mM  200mM   1,250mM   1,750mM   2,500mM   600mM   800mM   1,000mM
 H   50mM  100mM  200mM   50mM  100mM  200mM   1,250mM   1,750mM   2,500mM   600mM   800mM   1,000mM
表12.每孔中的精氨酸水平
 1  2  3   4  5   6   7  8  9   10   11   12
 A  350mM  300mM  200mM   12mM  12mM   12mM   12mM  12mM  12mM   75mM   50mM   25mM
 B  450mM  500mM  600mM   40mM  120mM   200mM   40mM  120mM  200mM   125mM   150mM   300mM
 C  350mM  300mM  200mM   12mM  12mM   12mM   12mM  12mM  12mM   75mM   50mM   25mM
 D  450mM  500mM  600mM   40mM  120mM   200mM   40mM  120mM  200mM   125mM   150mM   300mM
 E  350mM  300mM  200mM   12mM  12mM   12mM   12mM  12mM  12mM   75mM   50mM   25mM
 F  450mM  500mM  600mM   40mM  120mM   200mM   40mM  120mM  200mM   125mM   150mM   300mM
 G  350mM  300mM  200mM   12mM  12mM   12mM   12mM  12mM  12mM   75mM   50mM   25mM
 H  450mM  500mM  600mM   40mM  120mM   200mM   40mM  120mM  200mM   125mM   150mM   300mM
将独特的平衡缓冲液添加至每孔后，将Myo-029和聚集体的混合物添加至每孔。加样挑战中的聚集体水平是25％。缓冲液成分保持在与平衡过程中相同的水平。将材料振荡20分钟，允许达到平衡。从滤板的每孔除去上清液。进行添加抗体制剂的另一个阶段，和振荡板，并除去上清液。进行最多七个阶段。分析每个阶段尚未结合的蛋白以测定总蛋白浓度(通过A280nm的吸光度)。通过大小排阻HPLC测量单体和聚集体的量。聚集体的任何减少都表明有助于纯化的条件。表13和14显示了前四个阶段的库中每孔的聚集体和单体的百分比。
表13.聚集体水平(％)
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11   12
 A   8％   6％   3％   4％   7％   16％   3％   3％   3％   5％   3％   3％
 B   12％   15％   17％   3％   3％   5％   3％   4％   4％   6％   5％   5％
 C   7％   6％   3％   4％   4％   3％   5％   4％   4％   6％   6％   4％
 D   13％   14％   14％   6％   4％   7％   5％   6％   4％   8％   8％   7％
 E   11％   10％   6％   4％   19％   11％   5％   6％   7％   9％   8％   6％
 F   15％   19％   20％   4％   3％   10％   6％   8％   10％   10％   10％   17％
 G   10％   9％   6％   6％   3％   7％   8％   14％   17％   10％   16％   22％
 H   16％   18％   20％   4％   5％   17％   9％   15％   17％   12％   17％   18％
表14.单体回收(％)
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11   12
  A   51％   44％   24％   3％   3％   2％   43％   34％   25％   53％   32％   11％
  B   64％   70％   78％   4％   24％   43％   42％   40％   38％   57％   42％   44％
  C   49％   43％   27％   4％   6％   23％   60％   62％   62％   58％   60％   48％
  D   65％   68％   75％   5％   35％   54％   61％   64％   64％   63％   63％   62％
  E   61％   58％   44％   3％   3％   5％   58％   62％   64％   66％   65％   63％
  F   70％   76％   88％   5％   33％   63％   59％   63％   68％   67％   68％   74％
  G   57％   57％   50％   4％   7％   65％   72％   82％   85％   70％   80％   83％
  H   71％   75％   85％   5％   48％   75％   69％   82％   88％   71％   80％   87％
高通量筛选能够定性预测柱纯化方案中单体回收和HMWA的除去。在用cHA I型树脂填充的柱上测试例如，孔C8的条件(20mM HEPES，1mM磷酸盐，1750mM NaCl和12mM精氨酸，pH 7.2)。柱纯化后，聚集体水平降至2.5％且单体产量是72％。也在用cHA-I型树脂填充的柱上测试孔D5的条件(20mM HEPES，5mM磷酸盐，100mM NaCl和120mM精氨酸，pH 7.2)。柱纯化后，聚集体水平降至0.7％且单体产量是73％。最后，在用cHA-1树脂填充的柱上测试等同于孔C3的条件(100mM HEPES，1mM磷酸盐，120mM NaCl和200mM精氨酸，pH7.2，其中高水平HEPES促成类似于NaCl的离子强度)。纯化柱后，聚集体水平降至4％，单体回收为69％。这些结果证明高通量筛选低估了由单体回收和HMWA的除去所测量的柱性能。然而，高通量筛选能够定性预测产量和纯度。
在此引用的所有参考文献的全部内容在此并入作为参考，且为了所有目的，达到如同为了所有目的，将每个单独的出版物或专利或专利申请的全部内容具体和单独地在此并入作为参考的程度。在并入作为参考的出版物和专利或专利申请与说明书中含有的公开内容相矛盾的方面来说，说明书意欲代替和/或优先于这种矛盾材料。
说明书和权利要求中使用的表达成分的量、反应条件等的数字被理解为在所有情况下被术语“约”修饰。因此，除非相反指出，说明书和所附权利要求中阐述的数字参数是近似值，且可以依赖由本发明寻求获得的期望性质而变化。至少，且不是企图限制相当于权利要求范围的学说应用，应当在考虑到有效数字的数目和通常的四舍五入方法的情况下解释每个数字参数。
如将对本领域技术人员显而易见的，可以进行本发明的很多修改和变化，而不背离它的精神和范围。在此描述的具体实施方案仅仅是作为举例提供的且不意味着以任何方式限制。意图是说明书和实施例被认为仅仅是示范性的，本发明的真实范围和精神由下列权利要求指出。

Claims (27)

1.一种从含有高分子量聚集体的抗体制剂中纯化至少一种抗体单体的方法，其包括：
使所述抗体制剂经受羟磷灰石层析，其中所述羟磷灰石层析包括使在柱中的羟磷灰石树脂接触溶于包含1至20mM磷酸钠和0.2至2.5MNaCl的加样缓冲液中的抗体制剂并允许纯化的抗体单体流出所述柱，其中所述高分子量聚集体是至少两个抗体的结合,所述加样缓冲液具有6.4至7.6的pH。
2.权利要求1的方法，其进一步包括使所述抗体制剂经受(a)A蛋白亲和层析和(b)离子交换层析。
3.权利要求2的方法，其中首先进行A蛋白亲和层析，和最后进行羟磷灰石层析。
4.权利要求1的方法，其中所述加样缓冲液含有3mM至5mM磷酸钠。
5.权利要求1的方法，其中所述加样缓冲液含有0.35M至1M NaCl。
6.权利要求1的方法，其中所述加样缓冲液具有6.8至7.2的pH。
7.权利要求1或2的方法，其中所述抗体单体是IgG、IgA、IgD、IgE或IgM抗体。
8.权利要求1或2的方法，其中所述抗体单体是单克隆的、多克隆的、嵌合的、人源化的或其片段。
9.权利要求1或2的方法，其中所述抗体单体是抗IL-21受体、抗GDF-8、抗Abeta、抗CD22、抗Lewis Y、抗IL-13或抗IL-22抗体。
10.权利要求1或2的方法，其中所述抗体单体具有碱性pI。
11.权利要求1或2的方法，其中所述树脂是I型或I I型陶瓷羟磷灰石。
12.权利要求11的方法，其中所述树脂是I型陶瓷羟磷灰石。
13.权利要求2的方法，其中所述离子交换层析是阴离子交换层析。
14.权利要求1的方法，其中洗涤所述柱，以允许另外的纯化的抗体单体流出所述柱。
15.一种从含有高分子量聚集体的抗体制剂中纯化至少一种抗体单体的方法，其包括：
(a)使所述制剂接触A蛋白支持体；
(b)允许所述抗体吸附于A蛋白支持体；
(c)用至少一种A蛋白洗涤缓冲液洗涤A蛋白支持体和吸附的抗体；
(d)用至少一种A蛋白洗脱缓冲液洗脱吸附的抗体；
(e)使A蛋白洗脱物接触离子交换支持体；
(f)允许抗体流过离子交换支持体；
(g)用至少一种离子交换洗涤缓冲液洗涤离子交换支持体；
(h)将步骤(g)获得的离子交换流通物更换入含有1至20mM磷酸钠和0.2至2.5M NaCl的加样缓冲液；
(i)使步骤(h)获得的离子交换流通物接触羟磷灰石树脂；
(j)允许抗体单体流过羟磷灰石树脂；和
(k)用至少一种羟磷灰石洗涤缓冲液洗涤羟磷灰石树脂,
其中所述高分子量聚集体是至少两个抗体的结合,所述加样缓冲液具有6.4至7.6的pH。
16.权利要求15的方法，其中所述加样缓冲液含有5mM磷酸钠。
17.权利要求15的方法，其中所述加样缓冲液含有350mM NaCl。
18.权利要求15的方法，其中所述加样缓冲液具有6.8的pH。
19.权利要求15的方法，其中所述抗体单体是IgG、IgA、IgD、IgE或IgM抗体。
20.权利要求15的方法，其中所述抗体单体是单克隆的、多克隆的、嵌合的、人源化的或其片段。
21.权利要求15的方法，其中所述抗体单体是抗IL-21受体、抗GDF-8、抗Abeta、抗CD22、抗Lewis Y、抗IL-13或抗IL-22抗体。
22.权利要求15的方法，其中所述抗体单体具有碱性pI。
23.权利要求15的方法，其中所述树脂是I型或I I型陶瓷羟磷灰石。
24.权利要求23的方法，其中所述树脂是I型陶瓷羟磷灰石。
25.权利要求15的方法，其中所述离子交换层析是阴离子交换层析。
26.权利要求15的方法，进一步包括在应用于羟磷灰石树脂之前，过滤离子交换流通物，从而减少病毒污染物。
27.权利要求15的方法，进一步包括使羟磷灰石流通物经受超滤或渗滤中的至少一种。
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Families Citing this family (69)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0304576D0 (en) * 2003-02-28 2003-04-02 Lonza Biologics Plc Protein a chromatography
CA2543193C (en) * 2003-10-27 2015-08-11 Wyeth Removal of high molecular weight aggregates using hydroxyapatite chromatography
BRPI0608584B8 (pt) * 2005-03-11 2021-05-25 Wyeth Corp métodos de recuperar um produto purificado
MY144484A (en) * 2005-06-17 2011-09-30 Wyeth Corp Methods of purifying anti a beta antibodies
AU2006261920A1 (en) * 2005-06-23 2007-01-04 Medimmune, Llc Antibody formulations having optimized aggregation and fragmentation profiles
PE20070796A1 (es) * 2005-10-24 2007-08-15 Wyeth Corp Metodo de produccion proteica utilizando compuestos anti-senescencia
CA2634131C (en) * 2005-12-21 2014-02-11 Wyeth Protein formulations with reduced viscosity and uses thereof
EP2012118A4 (en) 2006-04-25 2009-12-16 Tosoh Corp IgG PURIFICATION SEPARATOR, AND IgG MONOMER PURIFICATION METHOD USING THE SAME
EP2069387A4 (en) * 2006-06-14 2011-02-02 Glaxosmithkline Llc METHODS OF PURIFYING ANTIBODIES USING HYDROXYAPATITE CERAMIC
EA017733B1 (ru) * 2006-08-28 2013-02-28 Арес Трейдинг С.А. СПОСОБ ОЧИСТКИ Fc-СЛИТЫХ БЕЛКОВ
FI2061803T4 (fi) 2006-08-28 2023-03-14 Process for the purification of fc-containing proteins
CL2007002615A1 (es) * 2006-09-08 2008-04-18 Wyeth Corp Metodos para aislar o purificar un producto que comprende poner el producto enlazado en contacto con al menos una solucion de lavado que comprende arginina y luego eluir el producto; y dicho producto.
SG174804A1 (zh) 2006-09-13 2011-10-28 Abbott Lab
US8911964B2 (en) 2006-09-13 2014-12-16 Abbvie Inc. Fed-batch method of making human anti-TNF-alpha antibody
US7691980B2 (en) * 2007-01-09 2010-04-06 Bio-Rad Laboratories, Inc. Enhanced capacity and purification of antibodies by mixed mode chromatography in the presence of aqueous-soluble nonionic organic polymers
US7999085B2 (en) * 2007-01-09 2011-08-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Enhanced capacity and purification of protein by mixed mode chromatography in the presence of aqueous-soluble nonionic organic polymers
WO2008090217A1 (en) * 2007-01-26 2008-07-31 Merck Serono S.A. Purification of fc-tact fusion proteins using the oilbody technology
EP2719705B1 (en) 2007-10-26 2020-07-29 Asahi Kasei Kabushiki Kaisha Method for purifying protein
EP2265129B1 (en) 2008-04-08 2015-10-28 Bio-Rad Laboratories, Inc. Chromatography purification of antibodies
ES2749190T3 (es) 2008-08-14 2020-03-19 Genentech Inc Métodos para eliminar un contaminante usando cromatografía de membrana de intercambio iónico de desplazamiento de proteínas indígenas
US9109010B2 (en) 2008-10-20 2015-08-18 Abbvie Inc. Viral inactivation during purification of antibodies cross reference to related applications
CN102257006A (zh) * 2008-10-20 2011-11-23 雅培制药有限公司 使用a蛋白亲和层析分离和纯化抗体
KR101581986B1 (ko) 2008-10-29 2016-01-04 아블린쓰 엔.브이. 단일 도메인 항원 결합 분자의 제형
CN102272154A (zh) 2008-10-29 2011-12-07 惠氏有限责任公司 单域抗原结合性分子的纯化方法
CA2739568C (en) * 2008-10-31 2015-12-01 Shujun Sun Purification of acidic proteins using ceramic hydroxyapatite chromatography
CA2751000A1 (en) * 2009-03-11 2010-12-23 Wyeth Llc Methods of purifying small modular immunopharmaceutical proteins
WO2010126979A1 (en) 2009-04-29 2010-11-04 Bio-Rad Laboratories, Inc. Purification of immunoconjugates
WO2011001963A1 (ja) 2009-07-03 2011-01-06 旭化成ケミカルズ株式会社 多孔質基材に固定されたグラフト鎖に結合しているアミノ基及びアルキル基を有する多孔膜を用いた抗体の精製方法
JP5914342B2 (ja) 2009-10-20 2016-05-11 アッヴィ・インコーポレイテッド プロテインａアフィニティークロマトグラフィーを利用した抗ｉｌ−１３抗体の単離精製
MX2012007103A (es) 2009-12-18 2012-07-17 Novartis Ag Solucion y metodo de lavado por cromatografia de afinidad.
EP2519537A4 (en) * 2009-12-29 2013-07-10 Reddys Lab Ltd Dr CLEANING PROTEINS
WO2011088225A1 (en) * 2010-01-15 2011-07-21 Bio-Rad Laboratories, Inc. Surface neutralization of apatite
CA2792717A1 (en) * 2010-04-14 2011-10-20 F. Hoffmann-La Roche Ag Immunoglobulin aggregate removal
GB201006753D0 (en) 2010-04-22 2010-06-09 Biotest Ag Process for preparing an immunolobulin composition
US20110301333A1 (en) * 2010-06-08 2011-12-08 Millipore Corporation Removal of protein aggregates from biopharmaceutical preparations using calcium phosphate salts
US8895707B2 (en) * 2010-08-18 2014-11-25 Bio-Rad Laboratories, Inc. Elution of proteins from hydroxyapatite resins without resin deterioration
JP2013540787A (ja) * 2010-11-01 2013-11-07 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー．ブイ． 単一ユニットイオン交換クロマトグラフィー抗体精製
JP5881744B2 (ja) * 2011-02-02 2016-03-09 バイオ−ラッド ラボラトリーズ インコーポレーティッド アルカリ溶液でのアパタイトの表面中和方法
EP3210662A1 (en) * 2011-06-08 2017-08-30 Agency For Science, Technology And Research Purification of biological products by constrained cohydration chromatography
EP2721052A1 (en) * 2011-06-16 2014-04-23 DSM IP Assets B.V. Single unit chromatography antibody purification
SG10201701224UA (en) 2012-03-12 2017-04-27 Merck Patent Gmbh Removal of protein aggregates from biopharmaceutical preparations in a flowthrough mode
CN104507952B (zh) 2012-05-30 2018-08-10 生物辐射实验室股份有限公司 基于磷灰石的色谱树脂的原位恢复
WO2014003142A1 (ja) * 2012-06-27 2014-01-03 旭化成メディカル株式会社 抗体
JP2014105180A (ja) * 2012-11-27 2014-06-09 Hoya Corp モノマー化方法
CN107693781B (zh) 2013-03-13 2021-11-09 巴扎德制药公司 用于眼部递送的嵌合细胞因子制剂
CN105324393A (zh) * 2013-05-13 2016-02-10 米迪缪尼有限公司 具有最小单体分离的重组多克隆抗体多聚体的分离
PL3016729T3 (pl) 2013-07-05 2020-09-07 Laboratoire Français Du Fractionnement Et Des Biotechnologies Société Anonyme Matryca do chromatografii powinowactwa
JP6479305B2 (ja) 2013-07-12 2019-03-06 株式会社Ｕｍｎファーマ ウイルス様粒子の精製方法
US10519194B2 (en) 2013-07-12 2019-12-31 Merck Patent Gmbh Removal of fragments from a sample containing a target protein using activated carbon
CN105980047B (zh) 2013-12-12 2019-01-04 Emd密理博公司 使用含丙烯酰胺的过滤器分离蛋白
KR102344170B1 (ko) 2013-12-27 2021-12-27 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 등전점이 낮은 항체의 정제방법
US10099157B2 (en) 2014-06-23 2018-10-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apatite in-situ restoration
WO2015200282A1 (en) 2014-06-23 2015-12-30 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apatite pretreatment
US10617975B2 (en) 2014-12-15 2020-04-14 Merck Patent Gmbh Target molecule capture from crude solutions
AU2016233557B2 (en) * 2015-03-13 2021-06-24 Bristol-Myers Squibb Company Use of alkaline washes during chromatography to remove impurities
EP3394082B1 (en) 2015-12-21 2020-08-12 Pfizer Inc Purification of antibody drug conjugates using a sodium phosphate gradient
US11919924B1 (en) * 2016-03-15 2024-03-05 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Methods of purifying and producing an adalimumab antibody
US11186858B1 (en) 2016-03-15 2021-11-30 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Methods for increasing biosimilarity
CN106977591B (zh) * 2017-05-04 2020-05-05 广州康盛生物科技股份有限公司 一种分离纯化重组葡萄球菌蛋白a的方法
EP3672981A4 (en) 2017-08-22 2021-09-15 Biogen MA Inc. METHOD OF PURIFYING ANTIBODIES WITH AGGREGATES WITH REDUCED HIGH MOLECULAR WEIGHT
WO2019116096A1 (en) * 2017-12-15 2019-06-20 Laboratoire Francais Du Fractionnement Et Des Biotechnologies Production of fc fragments
SG11202007222RA (en) * 2018-02-27 2020-09-29 Pfizer Antibody purification
CN111902720A (zh) 2018-03-21 2020-11-06 沃特世科技公司 基于非抗体高亲和力的样品制备、吸附剂、装置和方法
EP3773969A1 (en) 2018-04-03 2021-02-17 Merck Patent GmbH Cex chromatography media and low salt elution of target proteins from biopharmaceutical feeds
JP6951051B2 (ja) * 2018-05-24 2021-10-20 ＨＯＹＡ Ｔｅｃｈｎｏｓｕｒｇｉｃａｌ株式会社 吸着剤の生産方法
IL293047A (en) 2019-11-22 2022-07-01 Morphosys Ag A method for increasing antibody yield during ion exchange chromatography
JP2020099909A (ja) * 2020-03-17 2020-07-02 ＨＯＹＡ Ｔｅｃｈｎｏｓｕｒｇｉｃａｌ株式会社 処理方法、生産方法およびハイドロキシアパタイト充填剤
CN115397868A (zh) 2020-03-30 2022-11-25 埃博灵克斯股份有限公司 用于产生和纯化多价免疫球蛋白单可变域的方法
CA3182368A1 (en) * 2020-05-01 2021-11-04 Kashiv Biosciences, Llc An improved process of purification of protein

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US523335A (en) 1894-07-24 Air-bolt for flour-mills
US428894A (en) 1890-05-27 Process of making tool-handles
US514018A (en) 1894-02-06 Edward j
US419964A (en) 1890-01-21 Transom-lifter
US4745183A (en) * 1984-02-21 1988-05-17 Bio-Rad Laboratories, Inc. Use of hydroxylapatite for the analysis and preparation of purified monoclonal antibodies
JPH03291300A (ja) * 1989-12-28 1991-12-20 Mitsui Toatsu Chem Inc ポリクローナル抗体の分離方法
GB9022545D0 (en) * 1990-10-17 1990-11-28 Wellcome Found Culture medium
TWI255272B (en) * 2000-12-06 2006-05-21 Guriq Basi Humanized antibodies that recognize beta amyloid peptide
DE60231651D1 (de) 2001-12-21 2009-04-30 Immunex Corp Proteinreinigungsverfahren
AU2004215653B2 (en) 2003-02-28 2011-03-17 Lonza Biologics Plc. Antibody purification by protein A and ion exchange chromatography
CA2543193C (en) * 2003-10-27 2015-08-11 Wyeth Removal of high molecular weight aggregates using hydroxyapatite chromatography

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
isolation of a recombinant antibody from cellculturesupernatant:continuous annular versus batchandexpanded-bed chromatography;GIOVANNINI ROBERTO ET AL;《BIOTECHNOLOGY AND BIOENGINEERING》;20010503;第37卷(第6期);第524页右栏第二段-第525页右栏第一段,图2-3 *
国产羟基磷灰石纯化单克隆抗体的探讨;邹岳奇等;《生物化学与生物物理进展》;19911231;第18卷(第2期);第164-165页 *
羟磷灰石纯化单克隆抗体;严自助;《上海免疫学杂质》;19891231;第9卷(第6期);第368-369页 *

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Publication number Publication date
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