CN102228683A - 冻干人凝血因子ⅷ的制备方法 - Google Patents
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Abstract
一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,包括如下工艺:以含肝素3-10IU/ml的注射用水作为肝素钠溶液溶解冷沉淀,经PEG沉淀后取上清液,离心过滤,24-26℃S/D灭活,DEAESepharoseFastFlow层析柱平衡、吸附、洗涤、洗脱,分子膜超滤,配制、除菌分装,冻干、轧盖,99.5-100.5℃干热灭活。本发明采用PEG沉淀和离子交换层析技术相结合的工艺方法,操作简便,既提高FⅧ活性回收率,又可大量去除杂蛋白,产品收率达到60%以上,产品比活达到5IU/mg,明显高于药典不少于1IU/mg的规定。同时,PEG残留为0.08g/L,明显低于药典≤0.5g/L规定,避免了Al(OH)3凝胶法最终制剂中Al3+残留,产品纯度高、安全性好,最终制品质量得到明显改善。
Description
技术领域
本发明属于生物制药领域,具体涉及一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法。
背景技术
凝血因子Ⅷ(简称FⅧ)制剂与白蛋白制剂、免疫球蛋白制剂在国外同为血浆蛋白制剂的三大支柱产品,FⅧ制剂是临床用于甲型血友病患者出血症替补治疗的特效制剂,由于该病至今无根治之术,病人一生都需要输注FⅧ制剂,因此国内外市场需求量较大,为了避免潜在的血液来源的病毒传染,出于安全考虑,目前我国禁止进口凝血因子类血液制品。目前国内具备人凝血因子Ⅷ的生产厂家只有上海莱仕、华兰生物等少数几家具有人凝血因子Ⅷ的生产批文。现有生产工艺生产人凝血因子Ⅷ比活、产品得率及成功率较低,面对国内人凝血因子Ⅷ的短缺,现阶段研发生产安全性高、产品纯度高、产品比活性好的人凝血因子Ⅷ具有积极意义。
发明内容
本发明的目的是克服现有技术的上述不足,而提供一种安全性高、产品纯度高、工艺简单、产品比活性好的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法。
本发明的技术方案是:一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,包括如下工艺:以含肝素3-10IU/ml的注射用水作为肝素钠溶液溶解冷沉淀,经PEG沉淀后取上清液,离心过滤,24-26℃S/D灭活,DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡、吸附、洗涤、洗脱,分子膜超滤,配制、除菌分装,冻干、轧盖,99.5-100.5℃干热灭活;PEG沉淀时,在冷沉淀溶解后的上清液中加入PEG至溶液中PEG终浓度为2.5-4.5%。
DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡时,用平衡液平衡层析柱至流出液pH值为6.5-7.5,平衡液中含80-115mmol/LNaCl、15-25mmol/L柠檬酸钠、1.0-4.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1.5-2.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
洗涤时,用1-2倍柱体积洗涤液洗涤层析柱8次以上,洗涤液中含115-135mmol/LNaCl、15-25mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1.5-2.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
洗脱时,用1-2倍柱体积洗脱液洗脱2次,洗脱液中含800-1000mmol/LNaCl、20-40mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、2-4mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
超滤时,用十万分子量膜的超滤器超滤预浓缩至洗脱液一半,然后用透析液对半超滤至浓缩液电导率u≦15ms/cm,透析液中含10-15mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1-1.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
洗脱后的DEAE Sepharose Fast Flow层析柱可再生后使用,其方法是:先用1-2倍柱体积1.0-1.5mol/LNaCl再生液洗涤DEAE Sepharose Fast Flow层析柱2-4次,其次用1-2倍柱体积注射用水洗涤2-4次,再用3-4个柱体积0.5mol/LNaOH洗涤层析柱,然后用2-3个柱体积0.2mol/LNaOH洗涤层析柱,最后用0.2mol/LNaOH保存。
本发明所提出的上述用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱对FⅧ吸附分离方法,可以适用于任何一种常规方法,包括普通柱层析方法和搅拌柱层析方法。
本发明所用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱还可以是DEAE 650M凝胶层析柱或DEAE SepharoseTSK650M凝胶层析柱。
本发明采用PEG沉淀和离子交换层析技术相结合,在第一步FⅧ粗提过程中,本发明选用肝素溶液作为溶解液,取代常用的Tris-HCl溶液,在制备过程中有效的减少了FⅧ:C活性的损失,使FⅧ:C活性提高30%以上,比活提高3倍,并且澄明度也好。试验结果见表一。
表1 肝素钠溶解液与Tirs-HCl溶解液抽提后PEG上清FⅧ活性、比活的比较(Xn=8)
溶解液 | 肝素钠溶解液抽提后PEG上清 | Tirs-HCl溶解液抽提后PEG上清 |
蛋白含量(%) | 0.60 | 1.48 |
活性(IU/ml) | 4.68 | 3.48 |
比活(IU/ml蛋白质) | 0.90 | 0.30 |
澄明度 | 澄清 | 浑浊 |
本发明选用2.5-4.5%PEG沉淀法取代常用的Al(OH)3凝胶法,不仅有去除维生素K依赖因子Ⅱ、Ⅶ、Ⅸ、Ⅹ的作用,而且对其他杂蛋白的清除效果也很明显。本发明操作简便,既提高FⅧ活性回收率,又可大量去除杂蛋白,保证FⅧ制剂的稳定性,同时又避免了最终制剂中残留Al3+。试验表明,选用浓度为2.5-4.5%PEG时,既保证最终制品的澄明度,又能得到较高的活性回收率,试验结果见表二。
表2 不同浓度PEG上清FⅧ活性和蛋白浓度的比较(Xn=8)
PEG浓度(%) | 活性(IU/ml) | 蛋白含量(%) | 最终制品澄明度 |
6.0-8.0 | 2.80 | 0.38 | 澄清 |
2.5-4.5 | 3.62 | 0.53 | 澄清 |
1.0-2.0 | 4.44 | 0.55 | 有颗粒析出 |
本发明在S/D后,采用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱吸附,由于PEG不带电荷,不被离子交换剂吸附,而所要目标蛋白FⅧ吸附在DEAE Sepharose Fast Flow层析柱上,通过用洗涤液分次洗涤层析柱,即可轻易去除S/D溶液和PEG,很好的解决了PEG残留问题。同时,利用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱选择性吸附,将第一步PEG沉淀粗提后的FⅧ尽最大可能的纯化,试验结果表明,本发明此步操作,制品的回收率可以达到80%,活性由处理前2.42IU/ml提高到处理后5.03IU/ml,试验结果见表三。
表3 DEAE Sepharose Fast Flow层析柱处理前后质量分析(Xn=8)
DEAE Sepharose Fast Flow层析柱处理前后比较 | DEAE Sepharose Fast Flow层析柱处理前 | DEAE Sepharose Fast Flow层析柱处理后 |
人凝血因子Ⅷ总效价(IU) | 118.6万 | 95.3万 |
活性(IU/ml) | 2.42 | 5.03 |
PEG残留(g/L) | 25-45 | 0.08 |
澄明度 | 澄清 | 澄清 |
本发明所提出的上述用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱对FⅧ吸附分离方法,可以适用于在普通柱层析方法、搅拌柱层析方法等任何一种常规方法中使用。
本发明所用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱还可以是DEAE 650M凝胶层析柱或DEAE SepharoseTSK650M凝胶层析柱。
本发明采用S/D法去除脂包膜病毒以及99.5-100.5℃水浴干热灭活去除非脂包膜病毒,显著提高了临床用药的安全性。
本发明提出的工艺方法,操作简便,既提高FⅧ活性回收率,产品收率达到60%以上,又能得到较高的活性回收率,产品比活达到5IU/mg,明显高于药典不少于1IU/mg的规定。同时,PEG残留为0.08g/L,明显低于药典≤0.5g/L规定,避免了Al(OH)3凝胶法最终制剂中Al3+残留。最终制品质量得到明显改善,最终制品质量分析结果见表四。
表4 连续3批冻干人凝血因子Ⅷ的质量分析
本发明采用低离子浓度的透析液进行超滤,能够有效控制和降低本发明产品中氯离子和钠离子浓度,使其在100mmol/L以下,从而提高本发明产品的质量(氯离子和钠离子浓度会破坏人体中的钠离子平衡)。
以下结合具体实施方式对本发明的详细内容作进一步描述。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅局限于下述实例,凡基于本发明上述内容所实现的内容均属于本发明的内容。
具体实施方式
基本要求:
1、原料血浆的采集和质量应符合《中国药典》血液制品生产用人血浆的要求;
2、生产设备管线器具应清洁消毒;
3、生产过程应符合血液制品生产规范要求。
S/D溶液:按110gTween80和33gTNBP加注射用水至1kg,搅拌至清亮。
实施例一:
一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,包括如下工艺:以含肝素3-10IU/ml的注射用水作为肝素钠溶液溶解冷沉淀,经PEG沉淀后取上清液,离心过滤,24-26℃S/D灭活,DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡、吸附、洗涤、洗脱,分子膜超滤,配制、除菌分装,冻干、轧盖,99.5-100.5℃干热灭活;具体工艺如下:
一、取符合药典要求的血浆冷沉淀:室温融解1-2小时,处理成1.5-2.5cm的小块,湿法粉碎;
二、冷沉淀溶解:将冷沉淀置于5-6倍体积的肝素钠溶解液中,搅拌1小时,然后用1mol/LHCl调pH至6.5-7.5,继续搅拌20分钟,静置1小时;
三、PEG沉淀:取上清液,加入PEG至溶液中PEG终浓度为2.5%,搅拌30分钟,使充分反应;
四、离心过滤:离心温度控制在20℃以下,离心速度14000rmp/min,上清液澄清过滤;
五、S/D灭活:取超滤液,加入S/D溶液,使TNBP和Tween80终浓度分别为0.3%和1%,24-26℃保温6小时;
六、DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡:用平衡液平衡DEAE Sepharose Fast Flow凝胶至流出液pH值为6.5-7.5;
七、吸附:将S/D后溶液上柱,吸附45-60分钟,使人凝血因子Ⅷ充分吸附在DEAE Sepharose Fast Flow凝胶上;
八、洗涤:用1-2倍柱体积洗涤液洗涤层析柱8次以上;
九、洗脱:用1-2倍柱体积洗脱液洗脱2次,收集洗脱液;
十、DEAE Sepharose Fast Flow层析柱再生:先用1-2倍柱体积1.0-1.5mol/LNaCl再生液洗涤DEAE Sepharose Fast Flow层析柱2-4次,其次用1-2倍柱体积注射用水洗涤2-4次,再用3-4个柱体积0.5mol/LNaOH洗涤层析柱,然后用2-3个柱体积0.2mol/LNaOH洗涤层析柱,最后用0.2mol/LNaOH保存;
十一、超滤:用十万分子量膜的超滤器超滤预浓缩至洗脱液一半,然后用透析液对半超滤至浓缩液电导率u≦15ms/cm;
十二、配液、除菌分装:检测浓缩液效价,依据检测结果进行配制、除菌分装;
十三、冻干:
①制品常温进柜;
②隔板10分钟从常温降至0℃,保持30分钟;
③隔板30分钟从0℃降到-40℃,在-40℃保持1-2小时;
④开真空泵到真空达到0.3mbar稳定;
⑤1小时隔板升温到-33℃,保持1小时;
⑥5小时隔板升温到0℃,保持30小时;
⑦2小时隔板升温到10℃,保持6小时;
⑧2小时隔板升温到35℃,保持6小时;
⑨1小时使真空到0.05mbar,保持1小时,真空压塞;
十四、出柜、轧盖;
十五、干热病毒灭活:99.5-100.5℃水浴干热灭活30分钟。
主要试剂配制:
1molHCl:90ml浓盐酸用水稀释到1000ml。
肝素钠溶解液:含肝素6IU/ml的注射用水。
平衡液:含80mmol/LNaCl、15mmol/L柠檬酸钠、1.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、1.5mmol/L CaCl2,pH值6.6,其余为注射用水。
洗涤液:含115mmol/LNaCl、15mmol/L柠檬酸钠、1.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、1.5mmol/L CaCl2,pH值6.6,其余为注射用水。
洗脱液:含800mmol/LNaCl、20mmol/L柠檬酸钠、1.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、2mmol/L CaCl2,pH值6.6,其余为注射用水。
透析液:含10mmol/L柠檬酸钠、1.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、1mmol/L CaCl2,pH值6.6,其余为注射用水。
实施例二:
基本要求与实施例一相同。
一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,包括如下工艺:以含肝素3-10IU/ml的注射用水作为肝素钠溶液溶解冷沉淀,经PEG沉淀后取上清液,离心过滤,24-26℃S/D灭活,DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡、吸附、洗涤、洗脱,分子膜超滤,配制、除菌分装,冻干、轧盖,99.5-100.5℃干热灭活;具体工艺如下:
一、取符合药典要求的血浆冷沉淀:室温融解1-2小时,处理成1.5-2.5cm的小块,湿法粉碎;
二、冷沉淀溶解:将冷沉淀置于5-6倍体积的肝素钠溶解液中,搅拌1小时,然后用1mol/LHCl调pH至6.5-7.5,继续搅拌20分钟,静置1小时;
三、PEG沉淀:取上清液,加入PEG至溶液中PEG终浓度为4.5%,搅拌30分钟,使充分反应;
四、离心过滤:离心温度控制在20℃以下,离心速度14000rmp/min,上清液澄清过滤;
五、S/D灭活:取超滤液,加入S/D溶液,使TNBP和Tween80终浓度分别为0.3%和1%,24-26℃保温6小时;
六、DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡:用平衡液平衡DEAE Sepharose Fast Flow凝胶至流出液pH值为6.5-7.5;
七、吸附:将S/D后溶液上柱,吸附45-60分钟,使人凝血因子Ⅷ充分吸附在DEAE Sepharose Fast Flow凝胶上;
八、洗涤:用1-2倍柱体积洗涤液洗涤层析柱8次以上;
九、洗脱:用1-2倍柱体积洗脱液洗脱2次,收集洗脱液;
十、DEAE Sepharose Fast Flow层析柱再生:先用1-2倍柱体积1.0-1.5mol/LNaCl再生液洗涤DEAE Sepharose Fast Flow层析柱2-4次,其次用1-2倍柱体积注射用水洗涤2-4次,再用3-4个柱体积0.5mol/LNaOH洗涤层析柱,然后用2-3个柱体积0.2mol/LNaOH洗涤层析柱,最后用0.2mol/LNaOH保存;
十一、超滤:用十万分子量膜的超滤器超滤预浓缩至洗脱液一半,然后用透析液对半超滤至浓缩液电导率u≦15ms/cm;
十二、配液、除菌分装:检测浓缩液效价,依据检测结果进行配制、除菌分装;
十三、冻干:
①制品常温进柜;
②隔板10分钟从常温降至0℃,保持30分钟;
③隔板30分钟从0℃降到-40℃,在-40℃保持1-2小时;
④开真空泵到真空达到0.3mbar稳定;
⑤1小时隔板升温到-33℃,保持1小时;
⑥5小时隔板升温到0℃,保持30小时;
⑦2小时隔板升温到10℃,保持6小时;
⑧2小时隔板升温到35℃,保持6小时;
⑨1小时使真空到0.05mbar,保持1小时,真空压塞;
十四、出柜、轧盖;
十五、干热病毒灭活:99.5-100.5℃水浴干热灭活30分钟。
主要试剂配制中,
平衡液:含115mmol/LNaCl、25mmol/L柠檬酸钠、4.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、2.5mmol/L CaCl2,pH值7.4,其余为注射用水。
洗涤液:含135mmol/LNaCl、25mmol/L柠檬酸钠、3.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、2.5mmol/L CaCl2,pH值7.4,其余为注射用水。
洗脱液:含1000mmol/LNaCl、40mmol/L柠檬酸钠、3.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、4mmol/L CaCl2,pH值7.4,其余为注射用水。
透析液:含15mmol/L柠檬酸钠、3.0%盐酸精氨酸和/或甘氨酸、1.5mmol/L CaCl2,pH值7.4,其余为注射用水。
其余试剂的配制与与实施例一相同。
Claims (8)
1.一种冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,包括如下工艺:以含肝素3-10IU/ml的注射用水作为肝素钠溶液溶解冷沉淀,经PEG沉淀后取上清液,离心过滤,24-26℃S/D灭活,DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡、吸附、洗涤、洗脱,分子膜超滤,配制、除菌分装,冻干、轧盖,99.5-100.5℃干热灭活;其特征是PEG沉淀时,在冷沉淀溶解后的上清液中加入PEG至溶液中PEG终浓度为2.5-4.5%。
2.根据权利要求1所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是DEAE Sepharose Fast Flow层析柱平衡时,用平衡液平衡层析柱至流出液pH值为6.5-7.5,平衡液中含80-115mmol/LNaCl、15-25mmol/L柠檬酸钠、1.0-4.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1.5-2.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
3.根据权利要求1所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是洗涤时,用1-2倍柱体积洗涤液洗涤层析柱8次以上,洗涤液中含115-135mmol/LNaCl、15-25mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1.5-2.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
4.根据权利要求1所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是洗脱时,用1-2倍柱体积洗脱液洗脱2次,洗脱液中含800-1000mmol/LNaCl、20-40mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、2-4mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
5.根据权利要求1所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是超滤时,用十万分子量膜的超滤器超滤预浓缩至洗脱液一半,然后用透析液对半超滤至浓缩液电导率u≦15ms/cm,透析液中含10-15mmol/L柠檬酸钠、1.0-3.0%甘氨酸和/或盐酸精氨酸、1-1.5mmol/L CaCl2,pH值6.5-7.5,其余为注射用水。
6.根据权利要求1所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是洗脱后的DEAE Sepharose Fast Flow层析柱可再生后使用,其方法是:先用1-2倍柱体积1.0-1.5mol/LNaCl再生液洗涤DEAE Sepharose Fast Flow层析柱2-4次,其次用1-2倍柱体积注射用水洗涤2-4次,再用3-4个柱体积0.5mol/LNaOH洗涤层析柱,然后用2-3个柱体积0.2mol/LNaOH洗涤层析柱,最后用0.2mol/LNaOH保存。
7.根据权利要求1-6所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是用DEAE Sepharose Fast Flow层析柱对FⅧ吸附分离方法,可以适用于任何一种常规方法,包括普通柱层析方法和搅拌柱层析方法。
8.根据权利要求1-6所述的冻干人凝血因子Ⅷ的制备方法,其特征是DEAE Sepharose Fast Flow层析柱还可以是DEAE 650M凝胶层析柱或DEAE SepharoseTSK650M凝胶层析柱。
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何广发: "《冻干人凝血因子Ⅷ制剂的S/D处理及其理化分析", 《中国生物制品学杂志》, vol. 14, no. 1, 31 January 2001 (2001-01-31), pages 44 - 47 * |
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