CN102154133B - 不对称还原制备(r)-1,3-丁二醇的方法及菌株 - Google Patents

不对称还原制备(r)-1,3-丁二醇的方法及菌株 Download PDF

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本发明提供了一株产羰基还原酶新菌株——克鲁斯假丝酵母(Candida krusei)ZJB 09162,及其在催化不对称还原4-羟基-2-丁酮制备(R)-1,3-丁二醇中的应用。该菌株保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国,武汉,武汉大学,430072,保藏编号CCTCC No:M2010335,保藏日期:2010年12月6日。本发明的有益效果主要体现在:提供了一种产4-羟基-2-丁酮羰基还原酶的新菌种,通过该菌种可制备高光学纯度的(R)-1,3-丁二醇,转化率>90%,光学纯度>99%;使用本发明的不对称还原工艺,反应条件温和,节能,环保,更重要的是显著提高了过程的原子经济性,具有很好的工业应用前景。

Description

不对称还原制备(R)-1,3-丁二醇的方法及菌株
(一)技术领域
本发明涉及一株产羰基还原酶新菌株——克鲁斯假丝酵母(Candidakrusei)ZJB 09162,及其在催化不对称还原4-羟基-2-丁酮制备(R)-1,3-丁二醇中的应用。
(二)背景技术
(R)-1,3-丁二醇,又可记作(R)-1,3-BDO(结构见式(I)),是一种无色粘稠状,带甜味液体,能与水、乙醇、丙酮、丁酮等混溶。(R)-1,3-丁二醇是一种具有广泛用途的重要手性砌块,如在医药领域用于合成碳青霉烯类抗生素母核氮杂环丁酮,在农药领域用于合成杀虫剂和信息激素,同时它也是合成一大类香料的重要中间体。因此,开展(R)-1,3-丁二醇合成研究具有重要的实际应用价值。
Figure BDA0000045695940000011
(R)-1,3-丁二醇的化学合成主要有两条工艺,一是以L-苏氨酸为起始原料,在KBr存在下先亚硝化脱氨,再经甲酯化、氢解脱溴和还原等4步反应制备(R)-1,3-丁二醇。该工艺原料成本高,有毒有害原辅料用量大,收率低(仅为64%)(Synth Commun,1991,21(22):2295-2300)。二是以4-羟基-2-丁酮为底物,经钌基催化剂Ru-BINAP一步不对称加氢还原(US,4981992,1991),但该催化剂制备成本高,且回收利用困难,难以实现规模化生产。
生物转化法制备光学纯手性化合物具有反应条件温和,产物单一,立体选择性、区域选择性和化学选择性高等优点,代表着绿色化学的发展方向,已成为制备手性化合物的经典方法。生物催化合成手性化合物有以下两种途径:一是利用微生物或酶对外消旋混合物中某一个异构体具有高度的立体选择性,而对另一个异构体不起催化作用(或作用很小),从而实现对映体分离,拆分为两个具有光学活性的对映体;二是从潜手性醛或酮等羰基化合物前体出发,通过不对称催化反应得到光学活性化合物。
目前国际上生物法制备(R)-1,3-丁二醇的报道主要来自日本大赛璐化学工业株式会社,公开了Candia parapsilosis、Candia utilis、Candidaarborea、Kluvermyces lactis、Issatchenkia scutalata、Rhodococcuserythropolis等多种能够催化(R,S)-1,3-丁二醇手性拆分或4-羟基-2-丁酮不对称还原制备(R)-1,3-丁二醇的微生物(J Mol Catal B:Enzyme,2001,11:513-521,Biosci Biotech Biochem,1993,57(2):348-349,JP 03236795,WO 9207082)。Yamamoto等进一步将Candia parapsilosis IFO 1396仲醇脱氢酶基因在E.coli JM109中重组表达,以该重组菌为生物催化剂拆分外消旋1,3-丁二醇,产物(R)-1,3-丁二醇光学纯度95%,转化率48.4%(Biosci Biotechnol Biochem,2002,66(4):925-927)。该工艺具有一定的工业化应用价值,但产物的光学纯度有待提高。Eguchi等采用固定化SP382脂肪酶(Candida sp.)催化双酰化反应动力学拆分(R,S)-1,3-丁二醇,经一次拆分后光学纯度达到85%以上,将该产物化学水解为二醇后,再次进行双酰化拆分,光学纯度达到98%以上(Biotech Lett,15(9):955-960)。该工艺需经2次酰化和1次水解反应,步骤繁琐,且需要酰基化供体,原子经济性低。
综上所述,与化学合成工艺相比,生物催化法合成(R)-1,3-丁二醇具有显著的优势,显示出广阔的应用前景。但是生物拆分工艺也存在诸如原料利用率低(50%以上的1,3-丁二醇无法利用),及已报道的拆分用醇脱氢酶立体选择性不高等缺陷,导致总收率低,产物光学纯度难以达到药物合成的高要求(e.e.>99%)。
(三)发明内容
本发明的目的是提供一株能够高立体选择性地催化不对称还原反应的产羰基还原酶菌株,以及一种利用该羰基还原酶催化4-羟基-2-丁酮不对称还原生成高光学纯度(R)-1,3-丁二醇的方法,以克服现有技术存在的上述缺陷。
本发明采用的技术方案是:
一株产羰基还原酶菌株——克鲁斯假丝酵母(Candida krusei)ZJB09162,保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国,武汉,武汉大学,430072,保藏编号CCTCC No:M 2010335,保藏日期:2010年12月6日。
该菌株是本申请发明人从来自全国各地的200多份土壤样品中,经初筛、复筛及分离纯化而得到一株能够高效不对称还原4-羟基-2-丁酮制备(R)-1,3-丁二醇的新菌株。根据它的生理生化特性,鉴定为Candida krusei。
该菌株的主要特征如下:
菌落形态:于30℃在豆芽汁培养基平板培养40h,菌落呈圆形,直径5-8毫米,表面隆起为凸镜状,乳白色,边缘整齐,光滑。
细胞形态:呈椭圆形棒状,芽殖,细胞大小3.0~5.0μm×6.0~20.0μm,假菌丝呈树枝状。
生理生化特性:阳性项目:D-葡萄糖和N-乙酰-葡萄糖胺能利用;阴性项目:D-麦芽糖、侧金盏花醇、D-纤维二糖、乳糖、甲基-D-葡萄糖苷、蔗糖、D-海藻糖、肌醇、2-酮基葡萄糖、阿拉伯糖、D-半乳糖、甘油、D-木糖、D-松三糖、D-棉籽糖、D-山梨醇、木糖醇利用。耐5~10%(w/v)的氯化钠溶液。
该菌株18S rDNA扩增产物的实际长度为472bp,序列如下:
ctgcaggtcgacgatttccgtaggtgaacctgcggaaggatcattactgtgatttaacatcttccacacgtgcgtgagcgcaagcaaaacacgaaaaaactgtagtacgagagtcaaaacaaaccaaaaaacaaaactttcaacaacggatctcttggttctcgcatcgatgaagagcgcagcgaaatgcgatacctagtgtgaattgcagccatcgtgaatcatcgagttcttgaacgcacattgcgccctctggtattccggagggcatgcctgtttgagcgtcgtttccttcttgcttgcgagcagaaatgggggggccctggcattggggccgctctgaaaagaaacgttgcgggcgaagcgaactatgagtaggacgcttggccgccgaacttaatacataagctcgacctcaaatcaggtaggaatacccgctgaacttaagcatatcaataagcggaggaaatct。
本发明还涉及所述克鲁斯假丝酵母ZJB 09162在不对称还原4-羟基-2-丁酮制备(R)-1,3-丁二醇中的应用。
具体的,所述应用为:以4-羟基-2-丁酮为底物,以克鲁斯假丝酵母ZJB 09162经培养获得的含酶菌体细胞为催化剂,在20~45℃下,于pH6.0~9.0的缓冲液中进行不对称加氢还原反应8~36h,反应结束后反应液经分离纯化得到所述(R)-1,3-丁二醇。所述催化剂可以是克鲁斯假丝酵母ZJB 09162经培养后离心收集的湿菌体或冷冻干燥的菌体,也可以是菌体经破碎后,通过无机盐、有机溶剂或聚合物进行沉淀所得的粗酶。
为提高反应转化率,所述缓冲液中还可添加20~100g/L缓冲液的辅助底物,所述辅助底物为下列之一:①葡萄糖、②乳糖、③蔗糖、④木糖、⑤果糖、⑥麦芽糖、⑦异丙醇、⑧乙醇、⑨丙三醇。
本发明反应可在常规适用于酵母细胞的缓冲液中进行,具体的所述缓冲液可为下列之一:pH 6.0~6.6的柠檬酸缓冲液、pH 6.5~7.8的磷酸盐缓冲液或pH 7.4~9.0的Tris-HCl缓冲液。
所述缓冲液中底物初始浓度为5~30g/L,含酶菌体细胞添加量可为10~50g/L(以湿重计)。
具体的,所述含酶菌体细胞由如下方法获得:将克鲁斯假丝酵母ZJB09162接种至发酵培养基,在25~43℃、100~300rpm下培养24~72h,得到发酵液离心分离,即得到所述含酶菌体细胞;所述发酵培养基终浓度组成如下:葡萄糖10~60g/L,酵母膏10~50g/L,MgSO40.2~1.5g/L,(NH4)2HPO40.5~3.5g/L,KH2PO40.5~3.5g/L,溶剂为水,pH 5.5~8.5。
本发明的有益效果主要体现在:提供了一种产4-羟基-2-丁酮羰基还原酶的新菌种,通过该菌种可制备高光学纯度的(R)-1,3-丁二醇,转化率>90%,光学纯度>99%;使用本发明的不对称还原工艺,反应条件温和,节能,环保,更重要的是显著提高了过程的原子经济性,具有很好的工业应用前景。
(四)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围并不仅限于此:
实施例1:克鲁斯假丝酵母CCTCC M 2010335的发酵培养
发酵培养基:葡萄糖10g/L,酵母膏10g/L,MgSO40.2g/L,(NH4)2HPO40.5g/L,KH2PO40.2g/L,溶剂为水,pH 5.5。121℃高温灭菌20min。灭菌后冷却,接种。250ml摇瓶装液量30%,接种一环克鲁斯假丝酵母CCTCC M 2010335,于25℃,300rpm振荡培养24h;培养结束后发酵液离心并用生理盐水洗涤两次,收集湿菌体细胞,菌体湿重达8.5g/L。
实施例2:克鲁斯假丝酵母CCTCC M 2010335的发酵培养
发酵培养基:葡萄糖60g/L,酵母膏50g/L,MgSO41.5g/L,(NH4)2HPO43.5g/L,KH2PO43.5g/L,pH 8.5g/L。121℃高温灭菌20min。灭菌后冷却,接种。250ml摇瓶装液量30%,接种一环克鲁斯假丝酵母CCTCC M 2010335,于43℃,100rpm振荡培养72h;培养结束后发酵液离心并用生理盐水洗涤两次,收集湿菌体细胞,菌体湿重达18g/L。
实施例3:(R)-1,3-丁二醇的生产
取实施例1获得的湿菌体15g,悬浮于pH 6.0的100mM柠檬酸-柠檬酸钠缓冲液(500ml),加入4-羟基-2-丁酮2.5g,葡萄糖10g;在20℃的水浴中转化8h,离心去除菌体;上清液旋转蒸发并用食盐水饱和,经等体积乙酸乙酯萃取,产物(R)-1,3-丁二醇的光学纯度>99%,转化率82%。
产物的对映体过量值(ee)和底物的转化率采用气相色谱法分析,具体如下:取转化液1ml离心,上清液加入氯化钠饱和后,用800μl乙酸乙酯萃取,得到的乙酸乙酯层用无水硫酸钠处理后进样分析。分析条件如下:日本岛津GC-14C气相色谱仪,GC-solution色谱工作站;瑞士BGB-175毛细管色谱柱;载气为高纯氦气,柱流量1.5ml/min;进样量1μl,分流比40∶1;检测器及进样口温度均为220℃;柱温100℃,以2℃/min程序升温至132℃。
实施例4:(R)-1,3-丁二醇的生产
取实施例2获得的湿菌体10g,悬浮于pH 7.0的50mM磷酸盐缓冲液(500ml),加入4-羟基-2-丁酮9g,异丙醇15ml;在30℃的水浴中转化12h,离心去除菌体;上清液旋转蒸发并用食盐水饱和,经等体积乙酸乙酯萃取,产物(R)-1,3-丁二醇的光学纯度>99%,转化率93%(分析方法同实施例1)。
实施例5:(R)-1,3-丁二醇的生产
取实施例2获得的湿菌体6g,悬浮于pH 7.3的50mM磷酸盐缓冲液(500ml),加入4-羟基-2-丁酮14g,木糖50g;在40℃的水浴中转化36h,离心去除菌体;上清液旋转蒸发并用食盐水饱和,经等体积乙酸乙酯萃取,产物(R)-1,3-丁二醇的光学纯度>99%,转化率95%(分析方法同实施例1)。
实施例6:(R)-1,3-丁二醇的生产
取实施例1获得的湿菌体8g,悬浮于pH 9.0的50mM磷酸盐缓冲液(500ml),加入4-羟基-2-丁酮15g,果糖21g;在35℃的水浴中转化48h,离心去除菌体;上清液旋转蒸发并用食盐水饱和,经等体积乙酸乙酯萃取,产物(R)-1,3-丁二醇的光学纯度>99%,转化率90%(分析方法同实施例1)。
                         SEQUENCE LISTING
 
<110>  浙江工业大学
 
<120>  不对称还原制备(R)-1,3-丁二醇的方法及菌株
 
<130> 
 
<160>  1    
 
<170>  PatentIn version 3.4
 
<210>  1
<211>  472
<212>  DNA
<213>  Candida krusei
 
<400>  1
ctgcaggtcg acgatttccg taggtgaacc tgcggaagga tcattactgt gatttaacat     60
 
cttccacacg tgcgtgagcg caagcaaaac acgaaaaaac tgtagtacga gagtcaaaac    120
 
aaaccaaaaa acaaaacttt caacaacgga tctcttggtt ctcgcatcga tgaagagcgc    180
 
agcgaaatgc gatacctagt gtgaattgca gccatcgtga atcatcgagt tcttgaacgc    240
 
acattgcgcc ctctggtatt ccggagggca tgcctgtttg agcgtcgttt ccttcttgct    300
 
tgcgagcaga aatggggggg ccctggcatt ggggccgctc tgaaaagaaa cgttgcgggc    360
 
gaagcgaact atgagtagga cgcttggccg ccgaacttaa tacataagct cgacctcaaa    420
 
tcaggtagga atacccgctg aacttaagca tatcaataag cggaggaaat ct            472
  

Claims (7)

1.一株产羰基还原酶菌株——克鲁斯假丝酵母(Candida krusei)ZJB 09162,保藏于中国典型培养物保藏中心,地址:中国,武汉,武汉大学,430072,保藏编号CCTCC No:M 2010335,保藏日期:2010年12月6日。
2.如权利要求1所述的克鲁斯假丝酵母ZJB 09162在不对称还原4-羟基-2-丁酮制备(R)-1,3-丁二醇中的应用。
3.如权利要求2所述的应用,其特征在于所述应用为:以4-羟基-2-丁酮为底物,以克鲁斯假丝酵母ZJB 09162经培养获得的含酶菌体细胞为催化剂,在20~45℃下,于pH 6.0~9.0的缓冲液中进行不对称加氢还原反应8~36h,反应结束后反应液经分离纯化得到所述(R)-1,3-丁二醇。
4.如权利要求3所述的应用,其特征在于所述缓冲液中还添加有20~100g/L缓冲液的辅助底物,所述辅助底物为下列之一:①葡萄糖、②乳糖、③蔗糖、④木糖、⑤果糖、⑥麦芽糖、⑦异丙醇、⑧乙醇、⑨丙三醇。
5.如权利要求3所述的应用,其特征在于所述缓冲液为下列之一:pH6.0~6.6的柠檬酸缓冲液、pH 6.5~7.8的磷酸盐缓冲液或pH 7.4~9.0的Tris-HCl缓冲液。
6.如权利要求3所述的应用,其特征在于所述缓冲液中底物初始浓度为5~30g/L。
7.如权利要求3所述的应用,其特征在于所述含酶菌体细胞由如下方法获得:将克鲁斯假丝酵母ZJB 09162接种至发酵培养基,在25~43℃、100~300rpm下培养24~72h,得到发酵液离心分离,即得到所述含酶菌体细胞;所述发酵培养基终浓度组成如下:葡萄糖10~60g/L,酵母膏10~50g/L,MgSO40.2~1.5g/L,(NH4)2HPO40.5~3.5g/L,KH2PO40.5~3.5g/L,溶剂为水,pH 5.5~8.5。
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