CN101899495A - 一株不对称性还原4-羟基-2-丁酮为光学纯(r)-1,3-丁二醇酵母菌株的选育 - Google Patents

一株不对称性还原4-羟基-2-丁酮为光学纯(r)-1,3-丁二醇酵母菌株的选育 Download PDF

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(R)-1,3-BDO是一种重要的化工原料,例如它可以用于合成旋光性化合物氮杂环丁酮,其是青霉烯抗生素、信息激素、香料和杀虫剂合成的中间体原料。以本实验室筛选并保藏的菌株作为出发菌株,本发明在国内首次筛选到一株能以4-羟基-2-丁酮为底物合成光学纯(R)-1,3-丁二醇酵母菌,命名为Pichia jadinii HB61,产物(R)-1,3-BDO的生成率达到70%以上,e.e.值达100%,本发明为以4H2B为底物微生物法工业化生产光学纯(R)-1,3-BDO奠定基础。

Description

一株不对称性还原4-羟基-2-丁酮为光学纯(R)-1,3-丁二醇酵母菌株的选育 
技术领域
不对称性还原4-羟基-2-丁酮为光学纯(R)-1,3-丁二醇,属于生物催化技术领域。 
背景技术
(R)-1,3-丁二醇,英文名为1,3-butanediol,简写为(R)-1,3-BDO,无臭,略有苦甜味,无色粘稠液体,熔点-77℃,沸点207.5℃,溶于水、丙酮,几乎不溶于脂肪族烃、苯、四氯化碳等。 
(R)-1,3-BDO是一种重要的化工原料,例如它可以用于合成光学性化合物氮杂环丁酮,其是青霉烯抗生素、信息激素、香料和杀虫剂合成的中间体原料。(R)-1,3-BDO可以通过化学合成法和微生物法生产法两种,化学合成法最主要是日本Daicel化工公司的研究者开发出一种制取外消旋1,3-BDO并副产丁醇及醋酸丁酯的方法。他们是将乙醛缩合制得3-羟基丁醛,然后用具有高加氢活性的Raney Ni催化剂进行加氢处理,或者将碱性条件下缩合的反应液转入酸性的加氢系统进行处理,最后,将加氢得到的反应混合液进行蒸馏,蒸出丁醇后,再蒸馏余液,得粗制外消旋1,3-BDO,再用臭氧处理外消旋1,3-BDO,得到外消旋1,3-BDO精品,随后用手性拆分剂,分别得到(R)-1,3-BDO和(S)-1,3-BDO。但化学法合成(R)-1,3-丁二醇设备投资大,技术难度高,产品分离纯化困难,且对环境不友好。目前,微生物法生产1,3-BDO在国外已有相关报道,自然界中的微生物能将4-羟基-2-丁酮(4H2B)转化为(R)-1,3-丁二醇,或通过手性拆分将外消旋1,3-BDO转化为光学纯的(R)-1,3-BDO或(S)-1,3-BDO。微生物法生产(R)-1,3-BDO较之化学生产法具有反应条件温和、原料利用率高、产品纯度高及工艺简单、易于控制等优点,从长远发展和环境保护角度来看,微生物法显得更有生命力,因此越来越得到广大研究者的青睐。国内相关研究起步较晚,微生物法生产(R)-1,3-BDO的方法还未见报道,同时,国内市场上的供应的1,3-BDO基本上是从国外进口的。因此,获得能以4H2B为底物高产(R)-1,3-BDO的菌株,成为微生物法转化生产(R)-1,3-BDO的关键。 
本研究以4H2B为底物,筛选得到可以将4H2B为转化为(R)-1,3-BDO(e.e.100%)的菌株1株,命名为Pichia jadinii HB61,该工作为进一步建立一种以4H2B为底物绿色、高效合成(R)-1,3-BDO奠定基础。 
发明内容
(1)本发明的目的:筛选到能以4H2B为底物通过生物催化生产光学纯(R)-1,3-丁二醇(e.e.100%)的酵母,并对其形态与生理生化特征进行鉴定,将该菌命名为Pichiajadinii HB01,该菌可以将4H2B为转化为光学纯(R)-1,3-BDO(e.e.100%),并对产物进行定性定量鉴定,该工作为进一步建立一种以4H2B为底物绿色、高效合成光学纯(R)-1,3-BDO奠定基础。 
(2)本发明的技术方案:一种通过微生物不对称还原4H2B为光学纯(R)-1,3-BDO的方法,是在不对称性还原合成光学纯(R)-1,3-BDO的反应体系中,体系pH为7.0,以本实验室筛选并保藏的菌株为转化菌株,加入4H2B和葡萄糖,控制温度30℃,摇床转化28h,通过气相色谱定性定量检测转化液中物质成分,筛选出能不对称还原4H2B为光学纯(R)-1,3-BDO的菌株。本发明成功筛选到一株能不对称还原4H2B为光学纯(R)-1,3-BDO(e.e.100%)的菌株,通过18S rDNA鉴定,将其命名为Pichia jadinii HB61,已于2009年5月7日保藏于武汉大学中国典型培养物保藏中心,保藏编号为:CCTCC M209103。
主要试剂: 
(R)-1,3-BDO,(S)-1,3-BDO,(R,S)-1,3-BDO  购自美国Sigma-Aldrich公司 
(R)-1,3-BDO,(S)-1,3-BDO和(R,S)-1,3-BDO分析方法的确定: 
(R)-1,3-BDO,(S)-1,3-BDO和(R,S)-1,3-BDO标样在supelco β-120手性柱上通过气相色谱进行分析,(R)-1,3-BDO的保留时间为16.73min,(S)-1,3-BDO的保留时间为16.98min。所有气相色谱仪为varian 3900,手性柱supelco β-120(250×2.5mm)。 
确定具体色谱条件为:手性柱supelco β-120(250×2.5mm);柱温:140℃;进样口温度250℃,进样量为0.5μL;检测器温度300℃。 
产物光学纯度通过对映体过量值(%e.e.)来评价。 
(R)-1,3-BDO  %e.e.=[(SR-SS)/(SR+SS)] 
产率yield=(Cp/Cs0)×100% 
SR:反应后(S)-对映体的峰面积;SS:反应后(R)-对映体的峰面积;Cp:反应后(R)-对映体的摩尔浓度;Cs0:反应前底物4H2B的初始浓度。 
目的菌株的筛选:以本实验室筛选并保藏的菌株作为供试菌株,将出发菌株在斜面培养基上活化后,接种于装有100mL种子培养基的500mL的三角瓶中,振荡培养28h,离心收集菌体,用生理盐水洗涤菌体一次后,用5ml 0.1mol/L的磷酸钾(pH 7.0)缓冲液悬浮菌体,加入0.05g 4H2B,然后置于30℃、200r/min条件下振荡培养28h。收集转化液,离心,取上清液以备检测;取2ml上清液,用2ml乙酸乙酯进行萃取,用气相色谱法(GC)检测乙酸乙酯萃取液中产物(R)-1,3-BDO含量。 
目的菌株的鉴定:采用18S rDNA测序,将该序列与美国国家生物信息中心(NCBI)收录的DNA序列进行比对,结果表明其与Pichia jadinii strain DC 3343的18S rDNA序列相似性最高,为99.8%,为Pichia jadinii的一个亚种,将其命名为:Pichia jadiniiHB61。 
产物的定性检测:采用气质联用(GC-MS)来鉴定产物中是否含有1,3-BDO。分别测定1,3-BDO标样GC-MS图谱,转化液用乙酸乙酯萃取后的GC-MS图谱,并进行图谱分析,确定转化液中是否含有1,3-BDO,随后用手性柱检测转化液中产物1,3-BDO的光学纯度。 
产物的定量检测:用气相色谱法(GC)检测转化液中产物1,3-BDO的生成量与底物4H2B的残留量。 
(3)本发明的有益效果: 
以本实验室筛选并保藏的菌株作为供试菌株,将出发菌株在斜面培养基上活化后,接种于装有100mL种子培养基的500mL的三角瓶中,振荡培养28h,离心收集菌体,用生理盐水洗涤菌体一次后,用5ml 0.1mol/L的磷酸钾(pH 7.0)缓冲液悬浮菌体,加入0.05g 4H2B,然后置于30℃、200r/min条件下振荡培养28h。收集转化液,离心, 取上清液以备检测;取2ml上清液,用2ml乙酸乙酯进行萃取,用气相色谱法(GC)检测乙酸乙酯萃取液中产物(R)-1,3-BDO合成情况。国内市场上的供应的(R)-1,3-BDO基本上是从国外进口的,本发明为以4H2B为底物微生物法工业化生产(R)-1,3-BDO奠定基础。 
将较廉价底物4H2B转化成具有附加价值较高的用于合成光学性化合物氮杂环丁酮,其是青霉烯抗生素、信息激素、香料和杀虫剂合成的中间体原料(R)-1,3-BDO;同时用微生物法生产(R)-1,3-BDO,其较之化学生产法具有反应条件温和、原料利用率高、产品纯度高及工艺简单、易于控制等优点,同时有利于环境保护,易于推广应用。 
附图说明
图1  1,3-BDO标准品GC-MS图谱 
图2  图1中6.23min处解图结果 
图3  (R)-1,3-BDO标准品手性柱GC图谱 
图4  (S)-1,3-BDO标准品手性柱GC图谱 
图5  4-羟基-2-丁酮标样填充柱GC图谱 
图6  (R)-1,3-BDO标准品填充柱GC图谱 
图7  P.jadinii以4H2B为底物28h转化液的GC-MS图谱 
图8  图7中6.22min处解图结果 
图9  P.jadinii以4H2B为底物28h转化液的手性柱GC图谱 
图10 P.jadinii以4H2B为底物28h转化液加入少量标准品(R)-1,3-BDO的手性柱GC图谱 
图11 P.jadinii以4H2B为底物28h转化液加入少量标准品(S)-1,3-BDO的手性柱GC图谱 
图12 P.jadinii以4H2B为底物28h转化液填充柱GC图谱 
具体实施方法 
实施例1:菌株的筛选: 
将出发菌株划线于YEPD培养基上(酵母膏10g/L,蛋白胨20g/L,葡萄糖20g/L,琼脂20g/L,pH 6.0,0.8MPa灭菌15min。)培养28h后,挑取单菌落接种于装有100mL种子培养基(酵母膏10g/L,蛋白胨10g/L,葡萄糖20g/L,0.8MPa灭菌15min)的500mL摇瓶中,30℃培养28h; 
用50ml的离心管收集培养28h后的菌液,离心后收集菌体,用生理盐水洗涤菌体一次后,用5ml 0.1mol/L的磷酸钾(pH 7.0)缓冲液悬浮菌体,加入0.05g 4H2B,然后置于30℃、200r/min条件下振荡培养28h;收集转化液,离心,取上清液以备检测。 
实施例2:1,3-BDO定性检测: 
取2ml上清液,用2ml乙酸乙酯进行萃取,然后采用气质联用(GC-MS)来鉴定萃取液中是否含有1,3-BDO。气质联用检测条件:采用的色谱柱温控程序为:首先在50℃下保温1min,然后以6℃/min的升温速率升至90℃并保持10min,最后以20℃/min 的升温速率升至230℃。进样口温度为240℃,进样量为1μL,载气为高纯氮气,载气流量1.0mL/min; 
TraceMS质谱条件:EI+轰击源,全扫描方式,扫描质量范围为30~500amu,发射电流为200μA,电子能量为70eV,质谱检测谱库为NIST98谱库; 
标准品1,3-丁二醇标准品GC-MS图谱及解图结果如图1和图2所示,菌株转化液GC-MS图谱如图7和图8所示。 
实施例3:(R)-1,3-丁二醇光学纯度检测: 
用气相色谱法(GC)检测乙酸乙酯萃取液中产物1,3-BDO的光学纯度。气相色谱法检测条件如下:varian 3900型气相色谱仪,色谱柱温控程序为:首先在80℃下保温2min,然后以2.5℃/min的升温速率升至140℃并保持10min。进样口温度250℃,进样量为0.5μL,载气为高纯氢气,载气流量1.5mL/min;检测器温度300℃。 
(R)-1,3-BDO标准品和(S)-1,3-BDO标准品手性柱GC图谱如图3和图4所示,P.jadinii以4H2B为底物28h转化液的手性柱GC图谱如图9、图10和图11所示; 
实施例4:菌株的合成(R)-1,3-丁二醇能力检测: 
将实施例1获得的转化液液中1,3-丁二醇及4-羟基-2-丁酮的含量采用气相色谱测定。安捷伦1490型气相色谱仪,2m不锈钢柱( 
Figure G2009100328509D00041
3mm),国产高分子微球GDX-401(110目)为固定相。柱温:225℃,进样温度:230℃,检测温度:240℃,氮气作为载气,使用氢火焰检测器,进样5μL,4-羟基-2-丁酮保留时间为1.8min,1,3-丁二醇的保留时间为5.6min,用外标法计算转化液中4-羟基-2-丁酮和1,3-丁二醇的含量。 
(R)-1,3-BDO标准品填充柱GC图谱如图6所示,P.jadinii以4H2B为底物28h转化液填充柱GC图谱如图12所示; 
筛选到的一株酵母转化28h后,转化液中4-羟基-2-丁酮残留量为2.4g/L左右,1,3-丁二醇含量为7.6g/L左右,经过手性色谱柱检测,该产物为(R)-1,3-BDO。以上实验结果表明本发明在国内首次成功筛选到以4H2B为底物产光学纯(R)-1,3-丁二醇酵母菌。产物(R)-1,3-BDO的生成率达到70%以上,e.e.值100%。 

Claims (4)

1.一株不对称性还原4-羟基-2-丁酮(4H2B)为光学纯(R)-1,3-丁二醇酵母菌株的选育,其特征是以本实验室筛选和保藏的菌株作为供试菌株,以4H2B为底物微生物法生产(R)-1,3-丁二醇,将筛选得到的1株酵母菌株Pichia jadinii HB61,该菌能以4H2B为底物进行生物转化,得到光学纯(R)-1,3-丁二醇(e.e.100%);
(1)菌株的筛选:
菌种筛选培养:以本实验室筛选和保藏的菌株作为供试菌株,将出发菌株划线于YPD培养基上(酵母膏10g/L,蛋白胨20g/L,葡萄糖20g/L,琼脂20g/L,pH 6.0,0.8MPa灭菌15min。)培养28h后,挑取单菌落接种于装有100mL种子培养基(酵母膏10g/L,蛋白胨10g/L,葡萄糖20g/L,0.8M/Pa灭菌15min)的500mL摇瓶中,30℃培养28h;
生物转化:用50ml的离心管收集培养28h后的菌液,离心后收集菌体,用生理盐水洗涤菌体一次后,用5ml 0.1mol/L的磷酸钾(pH 7.0)缓冲液悬浮菌体,加入0.6g葡萄糖,预培养10min后,再加入0.05g 4H2B,然后置于30℃、220r/min条件下振荡培养28h。收集转化液,离心,取上清液以备检测;
(2)1,3-BDO定性检测:
取2ml上清液,用2ml乙酸乙酯进行萃取,然后采用气质联用(GC-MS)鉴定萃取液中是否含有1,3-BDO。气质联用检测条件:采用的色谱柱温控程序为:首先在50℃下保温1min,然后以6℃/min的升温速率升至90℃并保持10min,最后以20℃/min的升温速率升至230℃。进样口温度为240℃,进样量为1μL,载气为高纯氮气,载气流量1.0mL/min,检测器温度为240℃;
TraeeMS质谱条件:EI+轰击源,全扫描方式,扫描质量范围为30~500amu,发射电流为200μA,电子能量为70eV,质谱检测谱库为NIRT98谱库;
(3)(R)-1,3-丁二醇光学纯度检测:
用气相色谱法(GC)检测乙酸乙酯萃取液中产物1,3-BDO的光学纯度。气相色谱法检测条件如下:varian 3900型气相色谱仪,色谱柱温控程序为:首先在80℃下保温2min,然后以2.5℃/min的升温速率升至140℃并保持10min。进样口温度250℃,进样量为0.5μL,载气为高纯氢气,载气流量1.5mL/min;检测器温度300℃;
(4)菌株鉴定
提取出发菌株的基因组DNA
以出发菌株的基因组DNA为模板,使用酵母菌18S rDNA的通用引物进行扩增
P1:5’-ACCGGAATTC GCCTGAGAAACGGCTACC-3’
P2:5’-ACCGGAATTC GGCAGGGACGTAATCAAC-3’
PCR方法如下:50μL反应体系中加入:10mol/L的引物P1和P2各0.5μL,2mmol/L的dNTP 5μL,10×ExTaq Buffer 5V,5U/μL 的ExTaq DNA聚合酶0.5μL,模板1μg,加双蒸水补齐50μL;PCR条件为:95℃变性5min,56℃退火90S,72℃延伸2min,94℃变性1min,循环30次;
用胶回收试剂盒纯化PCR扩增产物,电泳验证;连接到pMD18-T载体,转化E.coli JM109。 经Amp抗性筛选,获得阳性克隆。18S rDNA测序由上海生工生物科技有限公司完成,将测序结果在NCBI中与数据库已有序列进行比较分析。
2.根据权利要求1所述的酵母菌株的18S rDNA分析,该酵母菌株分类名称为:Pichiajadinii,将其命名为Pichia jadinii HB61。
3.根据权利要求2所述的酵母菌株,其特征是将酵母接种于100mL种子培养基(蛋白胨g/L,酵母膏g/L,葡萄糖g/L)的500mL的三角瓶中,30℃,150r/min,培养28h后,离心收集菌体,用生理盐水洗涤菌体一次后,用5ml 0.1mol/L的磷酸钾(pH 7.0)缓冲液悬浮菌体,加入0.05g 4H2B,然后置于30℃、220r/min条件下振荡培养28h。收集转化液,离心,取上清液以备检测;上清液用于对产物进行定性定量检测,测得1,3-丁二醇的含量为7.6g/L。
4.根据权利要求3所述的酵母菌株转化过程,其特征是取2ml上清液,用2ml乙酸乙酯进行萃取,用气相色谱法(GC)检测乙酸乙酯萃取液中产物1,3-BDO的光学纯度。气相色谱法检测条件如下:varian 3900型气相色谱仪,色谱柱温控程序为:首先在80℃下保温2min,然后以2.5℃/min的升温速率升至140℃并保持10min。进样口温度250℃,进样量为0.5μL,载气为高纯氢气,载气流量1.5mL/min;检测器温度300℃;乙酸乙酯萃取液中测得(R)-1,3-丁二醇的e.e.值为100%。 
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