CN102037127A - 多核苷酸及其编码的多肽和用于在表达所述多核苷酸、多肽的植物中用所述多核苷酸、多肽提高非生物胁迫耐受性和/或生物量和/或产量的方法 - Google Patents
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Abstract
提供提高植物对非生物胁迫的耐受性和/或提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的方法。所述方法通过在植物内表达编码多肽的外源多核苷酸来实现,其中所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。还提供可用于提高植物对非生物胁迫的耐受性和/或提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的多核苷酸、核酸构建体、多肽及表达所述多核苷酸、多肽的转基因植物。
Description
发明领域和背景
本发明在其某些实施方案中涉及分离的多肽和多核苷酸,更特别涉及但并非仅涉及用于用所述多肽和多核苷酸提高植物对非生物胁迫的耐受性、植物生长、生物量、活力和/或产量的方法。
非生物胁迫(ABS;也称为“环境胁迫”)条件例如咸度、干旱、洪涝、亚适温和有毒化学污染,对农作物产生相当大的损害。大部分植物进化出保护自身应对这些条件的策略。然而,如果胁迫条件的严重程度和持续时间太过,则对植物发育、生长和产量的影响是深远的。此外,大部分农作物极易受ABS影响,因此对于商业农作物产量而言,最佳生长条件成为必要。持续暴露在胁迫之中引起植物代谢的严重改变,这种改变最终导致细胞死亡并因此减产。因此,尽管进行了广泛的研究并采取了强烈的保护农作物的措施,由于非生物胁迫条件而引起的损失仍以每年数十亿美元计。
干旱是一种渐进现象,其涉及反常的干旱天气时期,此期持续之长足以产生严重的水失衡,例如农作物损坏及水供应短缺。在严重情况下,干旱可持续多年,对农业和水供应产生毁灭性影响。由于急剧增长的人口和长期缺乏可用淡水,干旱不仅是农业上与气候有关的头等问题,而且一直也列为主要自然灾害之一,其不仅引起经济损失(例如1988年的美国干旱损失超过四百亿美元),而且还引起人的生命丧失,例如1984-1985非洲之角的干旱引起的饥荒饿死了750,000人。此外,干旱与对各种疾病的易感性增加有关。
对于大部分农作物来说,世界上的陆地都太干旱了。另外,过度使用可用水导致增加丧失农业上可用的陆地(沙漠化),土壤中盐积聚增长增加了土壤中可用水的丢失。
咸度,即高盐水平,影响五分之一公顷浇灌土地。这种情形预期只能更糟,将进一步降低可耕地的可用性和农作物生产,因为排在前五种的粮食作物(即小麦、玉米、水稻、马铃薯和大豆)没有一种能耐受过量的盐。盐对植物的有害影响起因于导致渗压胁迫(与干旱胁迫相似)的缺水和过量钠离子对关键生化过程的影响二者。和冰冻及干旱的情况一样,高盐也导致水分亏缺;高盐的存在使得植物根难于从其环境中吸取水分。因此,土壤咸度是决定植物能否茁壮成长的更为重要的变量之一。在世界的很多地方,相当大的陆地面积由于天然的土壤高盐而不能耕种。因此,用于农业生产的土壤的盐化在主要依赖农业的地区是显著且越来越严重的问题,这一情况由于过度耕种、施肥过多及通常因气候变化和日益增加的人口需求而引起的缺水而更加恶化。在植物生活周期的早期耐受盐尤其重要,因为土壤表面的蒸发引起水向上移动并在种植种子的上部土壤层积聚盐。另一方面,发芽通常发生在高于全体土壤层中平均盐水平的盐浓度下。
很多农作物的发芽对温度敏感。在热条件下可提高发芽的基因可用于在季节晚期或在热带气候种植的植物。另外,当蒸腾作用不足以应对热胁迫时,暴露于过度热量中的幼苗及成熟植株可能经历热休克,这可在多种器官中出现,包括叶和尤其是果实。热还损伤包括细胞器和细胞骨架在内的细胞结构,并削弱膜的功能。热休克可引起总蛋白质合成降低,其伴随热休克蛋白例如伴侣蛋白(chaperone)的表达,这些蛋白参与热变性蛋白的再折叠。
热胁迫通常伴随低可用水条件。热本身被认为是与水分亏缺条件互相影响的胁迫,并增加水分亏缺条件引起的有害作用。水蒸发需求随日间温度增加表现出接近指数增加,并可导致蒸腾率高及植物水势低。高温对花粉的损伤几乎总是与干旱胁迫一起发生,很少在水条件良好的情况下发生。混合胁迫可以新的方式改变植物代谢;因此,理解不同胁迫间的相互作用对于开发通过遗传操作提高胁迫耐受性的策略很重要。
过分寒冷的条件(例如低温但在冻结温度之上)影响热带来源的农作物,例如大豆、水稻、玉米和棉花。典型的低温冷害包括萎蔫、坏死、黄萎或离子从细胞膜渗漏。寒冷敏感性的基础机制尚未完全理解,但很可能涉及膜饱和水平及其它生理缺陷。例如,光合作用的光抑制(由于高光强导致的光合作用中断)通常在凉寒的夏末/秋天的夜晚之后的清澈空气条件下发生。另外,寒冷可通过延迟玉米成熟而导致产量损失及产物质量低劣。
水分亏缺是很多植物胁迫的常见组成部分。当整个植物的蒸腾率超过水摄入时,在植物细胞中发生水分亏缺。除干旱外,还有其它胁迫(例如咸度和低温)使得细胞脱水。
盐胁迫和干旱胁迫的信号转导由离子及渗透稳态信号传导途径组成。盐胁迫的离子方面经由SOS途径转导信号,在该途径中钙应答性SOS3-SOS2蛋白激酶复合物控制离子转运蛋白例如SOS1的表达及活性。盐胁迫的渗透组分涉及与干旱和/或冷胁迫应答重叠的复杂的植物反应。
干旱、寒冷和盐胁迫应答的常见方面[综述于Xiong和Zhu(2002)Plant Cell Environ.25:131-139]包括:(a)在信号传导事件早期细胞质钙水平瞬时变化[Knight,(2000)Int.Rev.Cytol.195:269-324;Sanders等(1999)Plant Cell 11:691-706];(b)经由促分裂原活化的和/或钙依赖性蛋白激酶(CDPK)及蛋白磷酸酶的信号转换[Merlot等(2001)Plant J.25:295-303;Tahtiharju和Palva(2001)Plant J.26:461-470];(c)因响应胁迫而提高的脱落酸水平触发了一个亚组的应答;(d)作为信号分子的肌醇磷酸(至少对于一个亚组的胁迫应答性转录变化而言[Xiong等(2001)Genes Dev.15:1971-1984];(e)磷脂酶活化,进而产生一批不同的第二信使分子,其中某些信使分子可能调控胁迫应答性激酶的活性[例如磷脂酶D;Frank等(2000)Plant Cell 12:111-124];(f)诱导胚胎发育晚期丰富蛋白(LEA)型基因,所述基因包括CRT/DRE应答性COR/RD基因;(g)抗氧化剂及相容的渗压剂(osmolyte)(例如脯氨酸和可溶性糖)的水平提高[Hasegawa等(2000)Annu.Rev.Plant Mol.Plant Physiol.51:463-499)];和(h)积聚活性氧物质,例如超氧化物、过氧化氢和羟基自由基。
渗压胁迫以多个步骤调节脱落酸生物合成。ABA依赖性及非ABA依赖性的渗压胁迫信号转导首先都改变组成型表达的转录因子,这导致早期应答转录激活蛋白表达,然后所述激活蛋白激活下游胁迫耐受性效应基因。
提高对寒冷或盐胁迫的耐受性的几种基因还可改进干旱胁迫保护,这些基因包括例如转录因子AtCBF/DREB1、OsCDPK7(Saijo等2000,Plant J.23:319-327)或AVP1(液泡焦磷酸酶-质子泵,Gaxiola等2001,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98:11444-11449)。
开发耐受胁迫的植物是有可能解决或调停至少某些这类问题的策略。然而,用于开发对ABS表现耐受性的植物新品系的传统的植物育种策略效率相对低,因为它们冗长耗时且不能预测结果。此外,用于胁迫耐受性的种质资源有限以及远缘植物种间杂交中的不相容性是在常规育种中遇到的重要的问题。另外,导致ABS耐受性的细胞过程本质上很复杂,涉及多种细胞适应机制和众多代谢途径。
本领域业已阐述目标为赋予转基因作物非生物胁迫耐受性的遗传工程的成就。Apse和Blumwald(Curr Opin Biotechnol.13:146-150,2002)、Quesada等(Plant Physiol.130:951-963,2002)、等(Nature 379:683-684,1996)、Xu等(Plant Physiol 110:249-257,1996)、Pilon-Smits和Ebskamp(Plant Physiol 107:125-130,1995)和Tarczynski等(Science 259:508-510,1993)的研究皆尝试产生胁迫耐受性植物。
另外,一些美国专利和专利申请也阐述与胁迫耐受性有关的多核苷酸及其在产生胁迫耐受植物中的应用。美国专利第5,296,462号和第5,356,816号阐述了用拟南芥(Arabidopsis thaliana)中编码涉及冷适应的蛋白质的多核苷酸转化植物,以提高耐寒性。
美国专利第6,670,528号阐述了用编码结合胁迫应答元件的多肽的多核苷酸转化植物,以提高非生物胁迫耐受性。
美国专利第6,720,477号阐述了用编码能够提高转化植物非生物胁迫耐受性的信号转导胁迫相关蛋白的多核苷酸转化植物。
美国申请顺序号09/938842和10/342224阐述了非生物胁迫相关基因及其用于赋予植物对非生物胁迫的耐受性的应用。
美国申请顺序号10/231035阐述了在植物中过表达钼辅因子硫化酶,以提高非生物胁迫耐受性。
Evogene Ltd.的WO2004/104162教导了多核苷酸序列及应用所述多核苷酸序列提高植物对非生物胁迫的耐受性和/或提高植物的生物量的方法。
Evogene Ltd.的WO2007/020638教导了多核苷酸序列及应用所述多核苷酸序列提高植物对非生物胁迫的耐受性和/或提高植物的生物量、活力和/或产量的方法。
Evogene Ltd.的WO2007/049275教导了用于提高植物对非生物胁迫的耐受性和/或用于提高植物的生物量、活力和/或产量的分离的多肽、编码所述多肽的多核苷酸。
另外的背景技术包括美国专利申请第20060183137A1 A1号和第20030056249A1号。
发明概述
本发明某些实施方案方面提供提高植物对非生物胁迫的耐受性的方法,所述方法包括在植物内表达外源多核苷酸,藉此提高植物对非生物胁迫的耐受性,其中所述外源多核苷酸编码包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列的多肽:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供提高植物对非生物胁迫的耐受性的方法,所述方法包括在植物内表达外源多核苷酸,藉此提高植物对非生物胁迫的耐受性,其中所述外源多核苷酸编码包含选自以下氨基酸序列的多肽:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的方法,所述方法包括在植物内表达外源多核苷酸,藉此提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量,其中所述外源多核苷酸编码包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列的多肽:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的方法,所述方法包括在植物内表达外源多核苷酸,藉此提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量,其中所述外源多核苷酸编码包含选自以下的氨基酸序列的多肽:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供分离的多核苷酸,所述多核苷酸包含与选自以下的核酸序列至少有90%同一性的核酸序列:SEQ IDNO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
本发明某些实施方案方面提供分离的多核苷酸,所述多核苷酸包含选自以下的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
本发明某些实施方案方面提供核酸构建体,所述核酸构建体包含所述分离的多核苷酸和用于指导所述核酸序列转录的启动子。
本发明某些实施方案方面提供分离的多肽,所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供分离的多肽,所述多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供植物细胞,所述植物细胞包含外源多肽,所述外源多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供植物细胞,所述植物细胞包含外源多肽,所述多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本发明某些实施方案方面提供植物细胞,所述植物细胞包含外源多核苷酸,所述外源多核苷酸包含与选自以下的核酸序列至少90%同源的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
本发明某些实施方案方面提供植物细胞,所述植物细胞包含外源多核苷酸,所述多核苷酸包含选自以下的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
根据本发明某些实施方案,所述核酸序列选自:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
根据本发明某些实施方案,所述多核苷酸选自:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
根据本发明某些实施方案,所述氨基酸序列选自SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
根据本发明某些实施方案,所述多肽选自SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
根据本发明某些实施方案,所述植物细胞形成植物的部分。
根据本发明某些实施方案,所述非生物胁迫选自咸度、干旱、脱水、低温、高温、重金属毒性、缺氧(anaerobiosis)、营养缺乏、营养过剩、大气污染和UV辐射。
根据本发明某些实施方案,所述方法进一步包括培养在非生物胁迫下表达外源多核苷酸的植物。
除非另外定义,否则本文所用的所有技术和/或科学术语具有与本发明所属领域普通技术人员通常理解的一样的含义。尽管在实施或试验本发明实施方案中可使用与本文所述相似或等同的方法及材料,但下面阐述例示性方法和/或材料。在有冲突的情况下,将以本专利说明书(包括定义)为准。另外,所述材料、方法和实施例仅为阐明性的,并非必定为限制性的。
附图简述
本文通过举例并参考附图阐述了本发明的某些实施方案。现在特别详细地提及附图,要强调的是所示细节仅作为实例,用于说明性地论述本发明的实施方案。在该方面,说明书并结合附图使得本领域技术人员明白本发明实施方案可如何实施。
在附图中:
图1示意性阐明用于表达本发明分离的多核苷酸序列的pGI二元质粒。RB-T-DNA的右边界;LB-T-DNA的左边界;H-HindIII限制酶;X-XbaI限制酶;B-BamHI限制酶;S-SalI限制酶;Sm-SmaI限制酶;R-I-EcoRI限制酶;Sc-SacI/SstI/Ecl136II;(数字)-碱基对长度;NOS pro=胭脂氨酸合酶启动子;NPT-II=新霉素(neomycin)磷酸转移酶基因;NOS ter=胭脂氨酸合酶终止子;Poly-A信号(聚腺苷酸化信号);GUSintron-GUS报告基因(编码序列和内含子)。将本发明分离的多核苷酸序列克隆到载体,同时取代GUSintron报告基因。
图2a-b为描述显现在透明的琼脂板中生长的植物根发育的图像。不同的转基因在透明琼脂板中生长17天,在第7天开始每2天给琼脂板照相。图2a-在琼脂板上12天后所摄的植物照片图像。图2b-根分析图象,其中所测量的根长由红色箭头表示。
发明详述
本发明在其某些实施方案中涉及分离的多肽和编码所述多肽的多核苷酸,更特别涉及但并非仅涉及用所述多肽和多核苷酸提高对非生物胁迫的耐受性、植物的生长率、产量、生物量和/或活力的方法。
在详细阐明至少一个本发明实施方案之前,应该理解,本发明在其应用方面不一定限制在以下说明所提出的或通过实施例所例证的详细资料。本发明可以是其它实施方案,或可以通过多种方式来实行或实施。
在实施本发明时,本发明人业已鉴定了新的多肽及多核苷酸,它们可用于提高对非生物胁迫的耐受性并改进植物的生长率、生物量、产量和/或活力。
因此,如以下实施例部分所示,本发明人采用生物信息学方法并鉴定了可提高对非生物胁迫的耐受性及改进生长、生物量、产量和活力的多核苷酸及多肽(对于多核苷酸为SEQ ID NO:1-200及1653;对于多肽为SEQ ID NO:201-391及1655;实施例1表1),所述生物信息学方法联合来自拟南芥、水稻和其它公开获得的植物基因组数据库、表达序列标签(EST)、蛋白质和途径数据库及具有数字表达谱(digitalexpression profile)(“电子RNA印迹”)的QTL信息的序列聚类(clustering)及拼接(assembly)。通过比对直向同源物序列和数字表达谱,鉴定了来自单子叶物种的推定的ABST直向同源物(对多核苷酸为SEQ IDNO:392-960、1656-1659;对多肽为SEQ ID NO:961-1529、1660-1663;实施例1表2)。如以下实施例部分中表3及表4进一步阐述,克隆了代表性的多核苷酸(多核苷酸SEQ ID NO:1530、1538、1532、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1561、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543和1668)。制备了具有优化核酸序列的另外的多核苷酸(多核苷酸SEQ ID NO:1531、1539、1533、1550、1558、1562、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551和1545)。如以下实施例部分中的进一步阐述,产生了外源表达所述已克隆的和/或优化的本发明多核苷酸的转基因植物。如表5-76所述,当这些植物在渗压胁迫(在25%PEG存在下)、氮缺乏(在0.75mM氮存在下)或常规条件下生长时,表现出幼苗重量、根覆盖、根长和相对生长率的增加。另外,如表77-188所示,当外源性表达本发明多核苷酸的植物在咸度胁迫或正常条件下生长时,表现出叶丛面积(rosette area)、叶丛直径(rosette diameter)、叶平均面积、以上所述的相对生长率、植物生物量、植物种子产量、种子千粒重和收获指数的增加。总之,这些结果提示本发明新的多核苷酸及多肽用于提高非生物胁迫的耐受性及增加植物的生长率、生物量、活力和/或产量的用途。
因此,本发明一方面提供提高非生物胁迫耐受性、植物的生长率、生物量、产量和/或活力的方法。所述方法通过在植物内表达外源多核苷酸来实现,所述外源多核苷酸编码包含与选自以下的氨基酸序列至少60%同源的氨基酸序列的多肽:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
本文所用短语“非生物胁迫”指对植物代谢、生长、繁殖和/或生存力的任何不利作用。因此,非生物胁迫可由亚适环境生长条件诱导,所述条件例如咸度、脱水、水分亏缺、干旱、漫灌、冷冻、低温或高温(例如寒冷或过热)、有毒化学污染、重金属毒性、缺氧、营养缺乏、营养过剩、大气污染或UV辐射。非生物胁迫的含义论述于背景章节中。
本文所用短语“非生物胁迫耐受性”指植物耐受非生物胁迫而在代谢、生长、生产力和/或生存力方面不经受实质改变的能力。
本文所用短语“植物生物量”指植物在生长季节产生的组织的量(以风干或干燥组织的克数来测量),它还能决定或影响植物产量或单位生长面积产量。
本文所用短语“植物产量”指每一植物或每一生长季节产生或收获的组织的量(以重量、体积或尺寸来测量)或数量(数字)。因此,增加产量能影响人们可从在某一生长面积和/或生长时间的植物获得的经济利益。
本文所用短语“植物活力”指在特定时间植物产生的组织的量(以重量来测量)。因此,增加活力可决定或影响植物产量或每个生长时间或生长面积的产量。
本文所用术语“增加”指与天然植物[即未用本发明生物分子(多核苷酸或多肽)改良的植物,例如在同样生长条件下生长的同样物种的非转化植物]比较,在植物非生物胁迫耐受性、生长、生物量、产量和/或活力方面增加至少约2%、至少约3%、至少约4%、至少约5%、至少约10%、至少约15%、至少约20%、至少约30%、至少约40%、至少约50%、至少约60%、至少约70%、至少约80%或更多。
本文所用短语“外源多核苷酸”指自然状态下不可在所述植物中表达或者需要在所述植物中过表达的异源核酸序列。可以以稳定或瞬时方式将外源多核苷酸引入到植物中,以便产生核糖核酸(RNA)分子和/或多肽分子。应该注意,外源多核苷酸可包含与所述植物的内源核酸序列相同或部分同源的核酸序列。
如所述,本发明外源多核苷酸编码多肽,所述多肽具有与选自SEQID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663的氨基酸序列具有以下同源性的氨基酸序列:至少约60%、至少约65%、至少约70%、至少约75%、至少约80%、至少约81%、至少约82%、至少约83%、至少约84%、至少约85%、至少约86%、至少约87%、至少约88%、至少约89%、至少约90%、至少约91%、至少约92%、至少约93%、至少约94%、至少约95%、至少约96%、至少约97%、至少约98%、至少约99%或更多例如100%。
可用任何同源性比较软件来测定同源性(例如同源性百分比),所述软件包括例如:当从多肽序列开始时例如通过用缺省参数的美国生物技术信息中心(NCBI)的BlastP或TBLASTN软件;或例如通过用缺省参数的tBLASTX算法(可由NCBI获得),其在蛋白质序列数据库中比较核苷酸查询序列(两条链)的六种读框概念翻译产物。
同源序列包括直向同源序列和旁系同源序列两种序列。术语“旁系同源”涉及在物种的基因组内的基因复制,产生平行进化同源基因。术语“直向同源”涉及在不同生物体内因祖先亲缘关系产生的同源基因。
在单子叶植物种中鉴定直向同源物的一个选择是实施交互blast搜索(reciprocal blast search)。这可通过涉及在任何序列数据库(例如公开获得的NCBI数据库,可在此处找到:http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov)中搜索(blasting)目的序列的第一次blast来进行。如果搜索水稻的直向同源物,则在例如可从NCBI得到的来自水稻日本晴(Oryza sativaNipponbare)的28,469全长cDNA克隆中搜索目的序列。可筛选blast结果。然后在目的序列所来源的生物体序列中搜索(第二次blast)经筛选的结果或未经筛选的结果的全长序列。然后比较第一次blast和第二blast的结果。当在第一次blast中产生最高分值(最佳击中(best hit))的序列在第二次blast中鉴定出作为最佳击中的所述查询序列(初始目的序列)时,则鉴定出直向同源物。用同样推理来发现旁系同源物(与同一生物体中的基因同源)。在大序列家族情况下,可使用ClustalW程序(http://WWW.ebi.ac.uk/Tools/clustalw2/index.html),接着用帮助显现聚类的邻接进化树(neighbor-joining tree)(http://en.wikipedia.org/wiki/Neighbor-joining)。
根据本发明某些实施方案,外源多核苷酸编码由SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529、1660-1662或1663所示的氨基酸序列组成的多肽。
根据本发明某些实施方案,外源多核苷酸包含与选自以下的核酸序列有至少约60%、至少约65%、至少约70%、至少约75%、至少约80%、至少约81%、至少约82%、至少约83%、至少约84%、至少约85%、至少约86%、至少约87%、至少约88%、至少约89%、至少约90%、至少约91%、至少约92%、至少约93%、至少约93%、至少约94%、至少约95%、至少约96%、至少约97%、至少约98%、至少约99%、例如100%同一性的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
可用任何同源性比较软件测定同一性(例如同源性百分比),所述软件包括例如通过用缺省参数的美国生物技术信息中心(NCBI)的BlastN软件。
根据本发明某些实施方案,外源多核苷酸为与选自以下的多核苷酸有至少约60%、至少约65%、至少约70%、至少约75%、至少约80%、至少约81%、至少约82%、至少约83%、至少约84%、至少约85%、至少约86%、至少约87%、至少约88%、至少约89%、至少约90%、至少约91%、至少约92%、至少约93%、至少约93%、至少约94%、至少约95%、至少约96%、至少约97%、至少约98%、至少约99%、例如100%同一性的多核苷酸:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
根据本发明某些实施方案,外源多核苷酸由SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1658或1659所示。
本文所用术语“多核苷酸”指单链或双链核酸序列,其以RNA序列、互补多核苷酸序列(cDNA)、基因组多核苷酸序列和/或复合多核苷酸序列(例如以上多核苷酸序列的组合)的形式分离及提供。
本文所用短语“互补多核苷酸序列”指用逆转录酶或任何其它依赖RNA的DNA聚合酶从信使RNA逆转录而产生的序列。所述序列可随后在体内或在体外用依赖DNA的DNA聚合酶扩增。
本文所用短语“基因组多核苷酸序列”指源自染色体(从染色体鉴定或分离)的序列,因此其代表染色体的一个连续部分。
本文所用短语“复合多核苷酸序列”指至少部分为互补序列及至少部分为基因组序列的序列。复合序列可包括编码本发明多肽所需的某些外显子序列以及插入其间的某些内含子序列。内含子序列可为任何来源,包括其它基因,通常包括保守剪切信号序列。所述内含子序列可进一步包括顺式作用表达调控元件。
可优化编码本发明多肽的核酸序列以用于表达。在SEQ ID NO:1531中提供优化核酸序列的非限制性实例,其编码包含SEQ ID NO:201所示氨基酸序列的多肽。这种序列修饰的实例包括但不限于:改变G/C含量,以便更接近通常在目的植物物种中发现的含量;除去在所述植物物种中发现的非典型的密码子,通常称为密码子优化。
短语“密码子优化”指选择在接近目的植物内的密码子用法的结构基因或其片段内使用的合适的DNA核苷酸。因此,优化的基因或核酸序列指其中天然或天然存在的基因的核苷酸序列已被修饰以便在所述植物内使用统计上优选或统计上偏爱的密码子的基因。通常在DNA水平检查核苷酸序列,并用任何合适的程序确定经优化用于在该植物物种中表达的编码区,所述合适程序例如如在Sardana等(1996,PlantCell Reports 15:677-681)中所述。在该方法中,可通过首先发现天然基因的每一密码子相对于高表达植物基因的密码子的用法的平方比例偏差(squared proportional deviation),接着计算平均方差来计算密码子用法标准偏差(密码子使用偏爱的量度)。所用公式为:1SDCU=n=1N[(Xn-Yn)/Yn]2/N,其中Xn指高表达植物基因中密码子n的使用频率,其中Yn为目的基因中密码子n的使用频率,N指目的基因中密码子的总数。用Murray等的数据(1989,Nuc Acids Res.17:477-498)汇编了来自双子叶植物的高表达基因的密码子用法表。
根据特定植物细胞类型的优选密码子用法优化核酸序列的一种方法基于直接使用密码子优化表,而不实施任何额外的统计计算,密码子优化表例如通过日本的NIAS(National Institute of AgrobiologicaSiences)DNA库在密码子用法数据库中在线提供的那些密码子优化表(http://WWW.kazusa.or.jp/codon/)。密码子用法数据库含有用于多种不同物种的密码子用法表,每一密码子用法表基于Genbank中所存在的数据经统计学上确定。
可通过使用上述表来确定特定物种(例如水稻)中对每种氨基酸最优选或最偏爱的密码子,对编码目的蛋白的天然核苷酸序列针于该特定植物物种进行密码子优化。这可通过用相应的密码子(对于氨基酸在统计学上更偏爱)取代在特定物种基因组中可具有低统计学发生概率的密码子来实现。然而,可挑选一个或更多个较低偏爱的密码子来删除现有的限制位点,以在潜在有用的接点制造新的限制位点(用以加入信号肽或终止盒的5′和3′端,或可用于切割及将区段剪接在一起以形成正确的全长序列的内部位点),或以消除可能负面影响mRNA稳定性或表达的核苷酸序列。
在任何修饰之前,天然存在的编码核苷酸序列可以已经含有多个对应于特定植物物种中的统计学偏爱密码子的密码子。因此,天然核苷酸序列的密码子优化可包括:确定在天然核苷酸序列内对于特定植物哪些密码子不是统计学偏爱的密码子,并根据特定植物的密码子用法表修改这些密码子以产生密码子优化的衍生物。经修饰的核苷酸序列可全部或部分地根据植物密码子用法进行优化,前提为经修饰的核苷酸序列所编码的蛋白质以比由相应的天然存在的或天然的基因所编码的蛋白质更高的水平产生。通过改变密码子用法构建合成基因阐述于例如PCT专利申请93/07278中。
因此,本发明包括上文所述核酸序列、其片段、可与其杂交的序列、与其同源的序列、具有不同密码子用法的编码相似多肽的序列、特征为突变的改变的序列,所述突变例如缺失、插入或置换一个或更多个核苷酸,可为天然存在的或人工诱导的突变,可为随机或定向方式突变。
本发明提供分离的多肽,所述多肽具有与选自SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663的氨基酸序列有以下同源性的氨基酸序列:至少约60%、至少约65%、至少约70%、至少约75%、至少约80%、至少约81%、至少约82%、至少约83%、至少约84%、至少约85%、至少约86%、至少约87%、至少约88%、至少约89%、至少约90%、至少约91%、至少约92%、至少约93%、至少约93%、至少约94%、至少约95%、至少约96%、至少约97%、至少约98%、至少约99%或更高,例如为100%。
根据本发明某些实施方案,所述多肽由SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1662或1663所示。
本发明还包括上述多肽的片段及具有突变的多肽,所述突变例如缺失、插入或置换一个或更多个氨基酸,为天然存在的或人工诱导的突变,为随机或定向方式的突变。
本文所用术语“植物”包括整株植物、所述植物的祖先及后代和植物部分,包括种子、苗(shoot)、茎、根(包括块茎)和植物细胞、组织和器官。植物可呈任何形式,包括悬浮培养物、胚、分生组织区、愈伤组织、叶、配子体、孢子体、花粉和小孢子。在本发明方法中尤其有用的植物包括属于绿色植物(Viridiplantae)超科(superfamily)的所有植物,尤其是单子叶植物和双子叶植物,包括选自包含以下植物名单的豆科牧草(fodder or forage legume)、观赏植物、粮食作物、乔木或灌木:金合欢属(Acacia spp.)、槭属(Acer spp.)、猕猴桃属(Actinidia spp.)、七叶树属(Aesculus spp.)、澳大利亚贝壳杉(Agathis australis)、合欢(Albizia amara)、兰屿笔筒树(Alsophila tricolor)、须芒草属(Andropogonspp.)、落花生属(Arachis spp)、槟榔(Areca catechu)、Astelia fragrans、鹰嘴紫云英(Astragalus cicer)、多小叶红苏木(Baikiaea plurijuga)、桦木属(Betula spp.)、芸苔属(Brassica spp.)、木榄(Bruguiera gymnorrhiza)、伯克苏木(Burkea africana)、紫铆(Butea frondosa)、Cadaba farinosa、朱缨花属(Calliandra spp)、大叶茶(Camellia sinensis)、美人蕉(Cannaindica)、辣椒属(Capsicum spp.)、决明属(Cassia spp.)、距瓣豆(Centroemapubescens)、Chacoomeles spp.、肉桂(Cinnamomum cassia)、小果咖啡(Coffea arabica)、可乐豆木(Colophospermum mopane)、变异小冠花(Coronillia varia)、Cotoneaster serotina、山楂属(Crataegus spp.)、黄瓜属(Cucumis spp.)、柏木属(Cupressus spp.)、白粉桫椤蕨类(Cyatheadealbata)、榅桲(Cydonia oblonga)、日本柳杉(Cryptomeria japonica)、香茅属(Cymbopogon spp.)、白粉桫椤蛛(Cynthea dealbata)、榅桲(Cydoniaoblonga)、Dalbergia monetaria、大叶骨碎补(Davallia divaricata)、山马蝗属(Desmodium spp.)、粗糙蚌壳蕨(Dicksonia squarosa)、Dibeteropogonamplectens、油麻藤属(Dioclea spp.)、镰扁豆属(Dolichos spp.)、Dorycnium rectum、金字塔稗(Echinochloa pyramidalis)、Ehraffia spp.、龙爪稷(Eleusine coracana)、画眉草属(Eragrestis spp.)、刺桐属(Erythrinaspp.)、桉属(Eucalypfus spp.)、Euclea schimperi、Eulalia vi/losa、荞麦属(Pagopyrum spp.)、费约果(Feijoa sellowlana)、草莓属(Fragaria spp.)、千斤拔属(Flemingia spp.)、Freycinetia banksli、老鹳草(Geraniumthunbergii)、银杏(GinAgo biloba)、野黄豆(Glycine javanica)、Gliricidiaspp.、陆地棉(Gossypium hirsutum)、银桦属(Grevillea spp.)、非洲红木(Guibourtia coleosperma)、岩黄芪属(Hedysarum spp.)、Hemaffhiaaltissima、Heteropogon contoffus、大麦(Hordeum vulgare)、红苞茅(Hyparrhenia rujfa)、小连翘(Hypericum erectum)、Hypeffhelia dissolute、Indigo incamata、鸢尾属(Iris spp.)、Leptarrhena pyrolifolia、胡枝子属(Lespediza spp.)、莴苣属(Lettuca spp.)、银合欢(Leucaena leucocephala)、Loudetia simplex、Lotonus bainesli、百脉根属(Lotus spp.)、大结豆(Macrotyloma axillare)、苹果属(Malus spp.)、木薯(Manihot esculenta)、紫花苜蓿(Medicago saliva)、水杉(Metasequoia glyptostroboides)、大蕉(Musa sapientum)、烟草属(Nicotianum spp.)、驴食豆属(Onobrychisspp.)、鸟足豆属(Ornithopus spp.)、稻属(Oryza spp.)、非洲双翼豆(Peltophorum africanum)、狼尾草属(Pennisetum spp.)、鳄梨(Perseagratissima)、碧冬茄属(Petunia spp.)、菜豆属(Phaseolus spp.)、针葵(Phoenix canariensis)、新西兰剑麻(Phormium cookianum)、石楠属(Photinia spp.)、白云杉(Picea glauca)、松属(Pinus spp.)、豌豆(Pisumsativam),新西兰罗汉松(Podocarpus totara)、Pogonarthria fleckii、Pogonaffhria squarrosa、杨属(Populus spp.)、牧豆树(Prosopis cineraria)、花旗松(Pseudotsuga menziesii)、Pterolobium stellatum、西洋梨(Pyruscommunis)、栎属(Quercus spp.)、厚叶石斑木(Rhaphiolepsis umbellata)、美味棒花棕(Rhopalostylis sapida)、纳塔尔盐肤木(Rhus natalensis)、欧洲醋栗(Ribes grossularia)、醋栗属(Ribes spp.)、洋槐(Robiniapseudoacacia)、蔷薇属(Rosa spp.)、悬钩子属(Rubus spp.)、柳属(Salixspp.)、红裂稃草(Schyzachyrium sanguineum)、金松(Sciadopitysvefficillata)、北美红杉(Sequoia sempervirens)、北美巨杉(Sequoiadendrongiganteum)、两色蜀黍(Sorghum bicolor)、菠菜属(Spinacia spp.)、Sporobolus fimbriatus、Stiburus alopecuroides、矮笔花豆(Stylosanthoshumilis)、葫芦茶属(Tadehagi spp.)、落羽松(Taxodium distichum)、阿拉伯黄背草(Themeda triandra)、车轴草属(Trifolium spp.)、小麦属(Triticumspp.)、异叶铁杉(Tsuga heterophylla)、越桔属(Vaccinium spp.)、野豌豆属(Vicia spp.)、葡萄(Vitis vinifera)、锥穗沃森花(Watsonia pyramidata)、马蹄莲(Zantedeschia aethiopica)、玉米(Zea mays)、苋属植物、洋蓟(Artichoke)、芦笋、青花椰菜、孢子甘蓝(Brussels sprouts)、卷心菜、油菜、胡萝卜、花椰菜、芹菜、羽衣甘蓝(collard greens)、亚麻、球茎甘蓝、小扁豆、芸苔、黄秋葵、洋葱、马铃薯、水稻、大豆、稻秆(straw)、甜菜、甘蔗、向日葵、番茄、squash tea、玉米、小麦、大麦、黑麦、燕麦、花生、豌豆、小扁豆和紫花苜蓿、棉花、油菜籽、油菜、胡椒、向日葵、烟草、茄子、桉树、树、观赏植物、多年生草和饲草作物。或者,藻类及其它非绿色植物可用于本发明方法。
根据本发明某些实施方案,本发明方法所用的植物为农作物,例如水稻、玉米、小麦、大麦、花生、马铃薯、芝麻、橄榄树、棕榈油、香蕉、大豆、向日葵、油菜(canola)、甘蔗、紫花苜蓿、黍、豆科(leguminosae)(菜豆、豌豆)、亚麻、羽扇豆、油菜籽、烟草、白杨(popular)和棉花。
通过用外源多核苷酸转化一种或更多种植物细胞,接着从转化细胞产生成熟植株,并在适于在该成熟植株内表达该外源多核苷酸的条件下栽培该成熟植株,来实现在植物内表达本发明外源多核苷酸。
根据本发明某些实施方案,通过将核酸构建体导入植物细胞中来实现转化,所述核酸构建体包括本发明某些实施方案的外源多核苷酸和至少一个能够指导外源多核苷酸在植物细胞内转录的启动子。下文提供合适转化方法的更详细资料。
本文所用术语“启动子”指位于基因转录启动位点上游的DNA区,RNA聚合酶结合该区以启动RNA转录。启动子控制基因表达的位置(例如在植物的哪一部分)和/或时间(例如在生物体的哪一阶段或何种条件)。
本发明核酸构建体可使用任何合适的启动子序列。根据本发明某些实施方案,启动子为组成型启动子、组织特异性或非生物胁迫诱导型启动子。
合适的组成型启动子包括例如:CaMV 35S启动子(SEQ IDNO:1546;Odell等,Nature 313:810-812,1985);拟南芥At6669启动子(SEQ ID NO:1652;参见PCT公开号WO04081173A2);玉米Ubi 1(Christensen等,Plant Sol.Biol.18:675-689,1992);水稻肌动蛋白(McElroy等,Plant Cell 2:163-171,1990);pEMU(Last等,Theor.Appl.Genet.81:581-588、1991);CaMV 19S(Nilsson等,Physiol.Plant100:456-462,1997);GOS2(de Pater等,Plant J Nov;2(6):837-44,1992);遍在蛋白(Christensen等,Plant Mol.Biol.18:675-689,1992);水稻亲环蛋白(Bucholz等,Plant Mol.Biol.25(5):837-43,1994);玉米H3组蛋白(Lepetit等,Mol.Gen.Genet.231:276-285,1992);肌动蛋白2(An等,Plant J.10(1);107-121,1996);组成型根尖CT2启动子(SEQ IDNO:1535;也参见PCT申请号IL/2005/000627)和合成Super MAS(Ni等,The Plant Journal 7:661-76,1995)。其它组成型启动子包括在如下专利中所述的组成型启动子:美国专利第5,659,026号;第5,608,149号;第5.608,144号;第5,604,121号;第5.569,597号;第5.466,785号;第5,399,680号;第5,268,463号和第5,608,142号。
合适的组织特异性启动子包括但不限于:叶特异性启动子[例如如下所述:Yamamoto等,Plant J.12:255-265,1997;Kwon等,Plant Physiol.105:357-67,1994;Yamamoto等,Plant Cell Physiol.35:773-778,1994;Gotor等,Plant J.3:509-18,1993;Orozco等,Plant Mol.Biol.23:1129-1138,1993;和Matsuoka等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA90:9586-9590,1993]、种子优先启动子[例如来自种子特异性基因(Simon,等,Plant Mol.Biol.5.191,1985;Scofield,等,J.Biol.Chem.262:12202,1987;Baszczynski,等,Plant Mol.Biol.14:633,1990)、巴西坚果白蛋白(Pearson等,Plant Mol.Biol.18:235-245,1992)、豆球蛋白(Ellis等,Plant Mol.Biol.10:203-214,1988)、谷蛋白(水稻)(Takaiwa等,Mol.Gen.Genet.208:15-22,1986;Takaiwa等,FEBS Letts.221:43-47,1987)、玉米醇溶蛋白(Matzke等,Plant Mol.Biol,143).323-32 1990)、napA(Stalberg等,Planta 199:515-519,1996)、小麦SPA(Albani等,PlantCell,9:171-184,1997)、向日葵油质蛋白(Cummins等,Plant Mol.Biol.19:873-876,1992)]、胚乳特异性启动子[例如小麦LMW和HMW、麦谷蛋白-1(Mol Gen Genet 216:81-90,1989;NAR 17:461-2)、小麦a、b和g麦醇溶蛋白(EMBO3:1409-15、1984)、大麦ltrl启动子、大麦B1、C、D大麦醇溶蛋白(Theor Appl Gen 98:1253-62,1999;Plant J 4:343-55,1993;Mol Gen Genet 250:750-60,1996)、大麦DOF(Mena等,The PlantJournal,116(1):53-62,1998)、Biz2(EP99106056.7)、合成启动子(Vicente-Carbajosa等,Plant J.13:629-640,1998)、水稻谷醇溶蛋白NRP33、水稻球蛋白Glb-1(Wu等,Plant Cell Physiology 39(8)885-889,1998)、水稻α球蛋白REB/OHP-1(Nakase等,Plant Mol.Biol.33:513-S22,1997)、水稻ADP葡萄糖PP(Trans Res 6:157-68,1997)、玉米ESR基因家族(Plant J 12:235-46,1997)、高粱γ-醇溶蛋白(PMB32:1029-35,1996)]、胚特异性启动子[例如水稻OSH1(Sato等,Proc.Nati.Acad.Sci.USA,93:8117-8122)、KNOX(Postma-Haarsma等,PlantMol.Biol.39:257-71,1999)、水稻油质蛋白(Wu等,J.Biochem.,123:386,1998)]和花特异性启动子[例如AtPRP4、chalene合酶(chsA)(Van derMeer等,Plant Mol.Biol.15,95-109,1990)、LAT52(Twell等,Mol.GenGenet.217:240-245;1989)、apetala-3]。
合适的非生物胁迫诱导型启动子包括但不限于:盐诱导型启动子,例如RD29A(Yamaguchi-Shinozalei等,Mol.Gen.Genet.236:331-340,1993);干旱诱导型启动子,例如玉米rab17基因启动子(Pla等,Plant Mol.Biol.21:259-266,1993)、玉米rab28基因启动子(Busk等,Plant J.11:1285-1295,1997)和玉米Ivr2基因启动子(Pelleschi等,Plant Mol.Biol.39:373-380,1999);热诱导型启动子,例如来自番茄的热番茄hsp80-启动子(美国专利第5,187,267)。
本发明某些实施方案的核酸构建体可进一步包括合适的选择标记和/或复制起点。根据本发明某些实施方案,所用核酸构建体为穿梭载体,该载体既可在大肠杆菌(E.coli)(其中构建体包含合适的选择标记和复制起点)内繁殖又可在细胞中与繁殖兼容。本发明构建体可例如为质粒、杆粒、噬菌粒、粘粒、噬菌体、病毒或人工染色体。
可利用本发明某些实施方案的核酸构建体稳定或瞬时转化植物细胞。在稳定转化中,外源多核苷酸被整合到植物基因组,由此其代表稳定并能遗传的性状。在瞬时转化中,外源多核苷酸由转化的细胞表达,但其未整合到基因组中,因此其代表瞬时性状。
有多种将外源基因导入到单子叶和双子叶植物两类植物的方法(Potrykus,I.,Annu.Rev.Plant.Physiol.,Plant.Mol.Biol.(1991)42:205-225;Shimamoto等,Nature(1989)338:274-276)。
使外源DNA稳定整合到植物基因组DNA的主要方法包括两个主要途径:
(i)农杆菌介导基因转移:Klee等(1987)Annu.Rev.Plant Physiol.38:467-486;Klee和Rogers,Cell Culture and Somatic Cell Genetics ofPlants,第6卷,Molecular Biology of Plant Nuclear Genes(植物细胞核基因的分子生物学),Schell,J.和Vasil,L.K.编辑,Academic Publishers,San Diego,Calif.(1989),第2-25页;Gatenby,载于Plant Biotechnology中,Kung,S.和Arntzen,C.J.编辑,Butterworth Publishers,Boston,Mass.(1989),第93-112页。
(ii)直接DNA吸收:Paszkowski等,Cell Culture and Somatic CellGenetics of Plants,第6卷,Molecular Biology of Plant Nuclear Genes(植物细胞核基因的分子生物学),Schell,J.和Vasil,L.K.编辑,AcademicPublishers,San Diego,Calif.(1989),第52-68页;包括用于直接将DNA吸收到原生质体的方法,Toriyama,K.等(1988)Bio/Technology6:1072-1074。由短暂电击植物细胞诱导的DNA吸收:Zhang等,PlantCell Rep.(1988)7:379-384;Fromm等,Nature(1986)319:791-793。通过微粒轰击将DNA注入植物细胞或组织:Klein等Bio/Technology(1988)6:559-563;McCabe等Bio/Technology(1988)6:923-926;Sanford,Physiol.Plant.(1990)79:206-209;通过使用微吸管系统:Neuhaus等,Theor.Appl.Genet.(1987)75:30-36;Neuhaus和Spangenberg,Physiol.Plant.(1990)79:213-217;玻璃纤维或碳化硅晶须转化细胞培养物、胚或愈伤组织,美国专利第5,464,765号;或通过让DNA与萌发中的花粉一起直接孵育:DeWet等,载于Experimental Manipulation of OvuleTissue,Chapman,G.P.和Mantell,S.H.和Daniels,W.Longman编辑,London,(1985),第197-209页;和Ohta,Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1986)83:715-719。
农杆菌系统包括使用含有限定DNA区段的质粒载体,将DNA区段整合到植物基因组DNA中。植物组织的接种方法视植物物种及农杆菌递送系统而变化。广泛使用的方法是叶盘法(leaf disc procedure),可用提供启动全株分化的优良来源的任何组织外植体来实施该方法。参见例如Horsch等,Plant Molecular Biology Manual A5,Kluwer AcademicPublishers,Dordrecht(1988),第1-9页。补充方法采用与真空渗透组合的农杆菌递送系统。农杆菌系统在制备转基因双子叶植物中尤其可行。
有多种直接将DNA转移到植物细胞中的方法。在电穿孔中,原生质体短暂暴露在强电场中。在微注射中,用极细的微吸管直接将DNA机械注射到细胞中。在微粒轰击中,让DNA吸附到微弹(microprojectile)(例如硫酸镁晶体或钨粒)上,让微弹物理上加速进入细胞或植物组织中。
在稳定转化后,使植物繁殖。使植物繁殖最常用的方法是播种。然而,由于在农作物中缺乏一致性的杂合性,种子繁殖再生具有缺陷,因为种子是由植物根据孟德尔定律支配的遗传变异产生的。基本上每粒种子在遗传上都不同,每一粒种子都以其特有的性状生长。因此,优选产生转化植物,使得再生的植物具有同一的性状及亲本转基因植物的特性。为此,优选通过微繁殖再生转化的植物,微繁殖为转化植株提供快速一致的繁殖。
微繁殖是使从所挑选的亲本植株或栽培变种切离的单块组织生长为新一代植株的方法。该方法使得可大量繁殖具有表达融合蛋白的优选组织的植株。产生的这种新生代植株在遗传上同一并具有初始植株的所有特性。微繁殖使得可在短期内大量生产品质植物原料,并在保存初始转基因或转化植株的特性的情况下为所选栽培品种提供快速繁殖。克隆植物的优点是繁殖植物的速度以及所产生植物的品质和均一性。
微繁殖是多阶段的过程,在不同阶段之间需要改变培养基或生长条件。因此,微繁殖过程涉及四个基本阶段:第一阶段,培养初始组织;第二阶段,扩增组织培养物;第三阶段,分化并形成植株;和第四阶段,温室培养及壮苗。在第一阶段即培养初始组织期间,建立组织培养物并保证无污染。在第二阶段期间,扩增组织培养物直到产生足以满足生产目标的组织样品数量。在第三阶段期间,将在第二阶段培养的组织样品分开并培养为单独的小植株。在第四阶段,将转化的小植株转移到温室以进行壮苗,在此处植物逐渐增加对光的耐受性以便能在自然环境中生长。
根据本发明某些实施方案,通过瞬时转化叶细胞、分生组织细胞或全植株来产生转基因植物。
可通过上述任何直接DNA转移方法或通过使用改良的植物病毒的病毒感染来实现瞬时转化。
业已显示可用于转化植物宿主的病毒包括CaMV、烟草花叶病毒(TMV)、雀麦草花叶病毒(BMV)和菜豆普通花叶病毒(BV或BCMV)。用植物病毒转化植物阐述于如下:美国专利第4,855,237号(菜豆金色花叶病毒;BGV)、EP-A 67,553(TMV)、日本公开申请第63-14693号(TMV)、EPA 194,809(BV)、EPA 278,667(BV);和Gluzman,Y.等,Communications in Molecular Biology:Viral Vectors,Cold Spring HarborLaboratory,New York,第172-189页(1988)。用于在很多宿主(包括植物)中表达外源DNA的假病毒粒子阐述于WO 87/06261中。
根据本发明某些实施方案,用于瞬时转化的病毒无毒性,因此不会导致诸如以下的严重症状:降低生长率、形成花叶、环斑、卷叶、黄化、条斑、痘等、肿瘤形成及凹斑(pitting)。合适的无毒力病毒可为天然存在的无毒力病毒或人工减毒病毒。可用在本领域众所周知的方法实现病毒减毒,这些方法包括但不限于亚致死加热、化学处理、或通过定向诱变技术实现病毒减毒,这些技术例如由以下文献阐述:例如Kurihara和Watanabe(Molecular Plant Pathology 4:259-269,2003)、Gal-on等(1992)、Atreya等(1992)和Huet等(1994)。
合适的病毒毒株可从诸如美国典型培养物保藏中心(ATCC)等可用来源获得,或通过从感染的植物分离得到。可通过本领域众所周知的技术从感染的植物组织分离病毒,所述技术例如由Foster和Tatlor编辑的“Plant Virology Protocols:From Virus Isolation totransgenicResistance(Methods in Molecular Biology(Humana Pr),第81卷)”,Humana Press,1998阐述的技术。简言之,将被认为含有高浓度合适的病毒的感染植物的组织(优选嫩叶和花瓣)在缓冲溶液(例如磷酸盐缓冲溶液)中碾磨,以得到可用于随后接种的病毒感染的树液。
用于在植物中导入并表达非病毒外源多核苷酸序列的植物RNA病毒的构建在以上参考文献以及以下参考文献中得到论证:Dawson,W.O.等,Virology(1989)172:285-292;Takamatsu等,EMBO J.(1987)6:307-311;French等,Science(1986)231:1294-1297;Takamatsu等,FEBS Letters(1990)269:73-76;和美国专利第5,316,931号。
当病毒为DNA病毒时,可对病毒本身进行适当的修饰。或者,可首先将病毒克隆到细菌质粒以便于构建所期需的含外源DNA的病毒载体。然后可将病毒从该质粒切离。若病毒为DNA病毒,则可将细菌的复制起点连接到病毒DNA上,然后通过细菌来复制。该DNA的转录和翻译将产生给病毒DNA包上衣壳的衣壳蛋白。若病毒为RNA病毒,则病毒通常作为cDNA来克隆并被插入到质粒。然后使用该质粒来进行所有的构建。然后通过转录质粒的病毒序列并翻译病毒基因以产生给病毒RNA包上衣壳的衣壳蛋白来生产RNA病毒。
在一个实施方案中提供植物病毒多核苷酸,其中从病毒多核苷酸除去天然衣壳蛋白编码序列,插入了非天然植物病毒衣壳蛋白编码序列和非天然启动子,优选非天然衣壳蛋白编码序列的亚基因组启动子,其能够在植物宿主中表达,对重组植物病毒多核苷酸进行包装并确保重组植物病毒多核苷酸能系统性感染宿主。或者,可通过在其内插入非天然多核苷酸序列来使衣壳蛋白基因失活,以便产生蛋白质。重组植物病毒多核苷酸可含有一个或更多个另外的非天然亚基因组启动子。每一非天然亚基因组启动子皆能够在植物宿主中转录或表达邻近基因或多核苷酸序列,且不能彼此重组及不能与天然亚基因组启动子重组。如果包括不止一个多核苷酸序列,则可将非天然(外源)多核苷酸序列插入到天然植物病毒亚基因组启动子或天然和非天然植物病毒亚基因组启动子的邻近。非天然多核苷酸序列在亚基因组启动子控制下在宿主植物中转录或表达,产生所期需的产物。
在第二实施方案中,除了将天然衣壳蛋白编码序列置于所述非天然衣壳蛋白亚基因组启动子之一的邻近而不用非天然衣壳蛋白编码序列外,如第一实施方案一样提供重组植物病毒多核苷酸。
在第三实施方案中,提供重组植物病毒多核苷酸,其中天然衣壳蛋白基因邻近其亚基因组启动子,且将一个或更多个非天然亚基因组启动子插入到该病毒多核苷酸中。所插入的非天然亚基因组启动子能够在植物宿主中转录或表达邻近基因,并且不会彼此重组及不会与天然亚基因组启动子重组。可将非天然多核苷酸序列插入非天然亚基因组植物病毒启动子的邻近,以便所述序列在亚基因组启动子调控下在宿主植物中转录或表达,以产生所期需产物。
在第四实施方案中,除了用非天然衣壳蛋白编码序列取代所述天然衣壳蛋白编码序列外,如第三实施方案一样提供重组植物病毒多核苷酸。
用重组植物病毒多核苷酸编码的衣壳蛋白给病毒载体包衣壳,以产生重组植物病毒。用重组植物病毒多核苷酸或重组植物病毒感染适当的宿主植物。重组植物病毒多核苷酸能够在宿主中复制,在宿主中进行系统传播并在宿主中转录或表达所述外源基因(外源多核苷酸),产生所期需蛋白质。
在以下文献中可找到用于将病毒接种给植物的技术:Foster和Tatlor编辑的“Plant Virology Protocols:From Virus Isolation totransgenic Resistance(Methods in Molecular Biology(Humana Pr),第81卷)”,Humana Press,1998;Maramorosh和Koprowski编辑的“Methodsin Virology”7卷,Academic Press,New York 1967-1984;Hill,S.A.“Methods in Plant Virology”,Blackwell,Oxford,1984;Walkey,D.G.A.“Applied Plant Virology”,Wiley,New York,1985;和Kado和Agrawa编辑的“Principles and Techniques in Plant Virology”,VanNostrand-Reinhold,New York。
除上述外,还可将本发明多核苷酸导入到叶绿体基因组中,藉此能够进行叶绿体表达。
用于将外源多核苷酸序列导入到叶绿体基因组的技术已知。该技术涉及以下程序。首先,化学处理植物细胞以便将每个细胞的叶绿体数目减少到约1个。然后,经由微粒轰击将外源多核苷酸导入细胞,目的是将至少一个外源多核苷酸分子导入到叶绿体。选择外源多核苷酸以便其能经由同源重组整合到叶绿体基因组,这易于由叶绿体固有的酶来实现。为此,外源多核苷酸除目的基因外还包括至少一个源自叶绿体基因组的多核苷酸序列段。另外,外源多核苷酸包括选择标记,该标记通过后续选择程序起作用,以确定在所述选择后叶绿体基因组的全部或基本上全部拷贝都包括外源多核苷酸。关于该技术的进一步详细资料在美国专利第4,945,050号和第5,693,507号中找到,它们在此引作参考。由此,可由叶绿体的蛋白质表达系统产生多肽,并将多肽整合到叶绿体内膜中。
由于在植物中非生物胁迫耐受性、生长、生物量、产量和/或活力可涉及以加性或协同方式作用的多个基因(参见例如Quesda等,PlantPhysiol.130:951-063,2002),因而本发明还设想在单个宿主植物中表达多种外源多核苷酸,藉此达到对非生物胁迫耐受性、生长、生物量、产量和/或活力的良好作用效果。
可通过将多个核酸构建体共同导入到单个植物细胞而实现在单个宿主植物中表达多种外源多核苷酸,其中每一构建体包括不同的外源多核苷酸。然后可以用上文所述方法让转化的细胞再生为成熟植株。
或者,可通过将包括多种不同外源多核苷酸的单个核酸构建体共同导入到单个植物细胞,来实现在单个宿主植物中表达多种外源多核苷酸。所述构建体可设计为具有能转录多顺反子信使RNA(包括所有不同的外源多核苷酸序列)的单个启动子序列。为了使得能共同翻译由多顺反子信使RNA编码的不同多肽,可经由内部核糖体进入位点(IRES)序列使所述多核苷酸序列相互连接,IRES促进位于IRES序列下游的多核苷酸序列的翻译。在这种情况下,上述编码不同多肽的已转录多顺反子RNA分子,将从加帽5′端和多顺反子RNA分子的两个内部IRES序列开始翻译,藉此在细胞内产生所有不同的多肽。或者,所述构建体可包括若干各自连接不同外源多核苷酸序列的启动子序列。
用包括多种不同外源多核苷酸的构建体转化的植物细胞可用上文所述方法再生为成熟植株。
或者,可通过将不同的核酸构建体(包括不同的外源多核苷酸)导入到多个植株来实现表达多种外源多核苷酸。然后让再生的转化植株杂交,用常规植物育种技术在得到的后代中选择优越的非生物胁迫耐受性、生长、生物量、产量和/或活力性状。
根据本发明某些实施方案,表达一种或更多种外源多核苷酸的植物在正常条件下生长。
根据本发明某些实施方案,所述方法进一步包括让表达一种或更多种外源多核苷酸的植物在非生物胁迫下生长。
因此,本发明包括外源性表达(如上述)本发明一种或更多种多核苷酸和/或一种或更多种多肽的植物。一旦在植物细胞或整个植物中表达,就可通过本领域众所周知的方法测定所述外源多核苷酸所编码的多肽的水平,这些方法例如活性测定、用能够特异性结合所述多肽的抗体的蛋白质印迹、酶联免疫吸附测定(ELISA)、放射免疫测定(RIA)、免疫组织化学、免疫细胞化学、免疫荧光等。
在植物中测定从外源多核苷酸转录的RNA的水平的方法在本领域众所周知,包括例如RNA印迹分析、逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)分析(包括定量、半定量或实时RT-PCR)和RNA-原位杂交。
上述多核苷酸和多肽可以以安全及有成本效益的方式用于各种各样的经济植物。
可用已知方法测定转基因(编码所述多肽的外源多核苷酸)对非生物胁迫耐受性、生长、生物量、产量和/或活力的作用。
非生物胁迫耐受性-让转化的(即表达所述转基因)和非转化的(野生型)植株暴露在非生物胁迫条件下,例如脱水、亚适温(低温、高温)、营养缺乏、营养过剩、盐胁迫条件、渗压胁迫、重金属毒性、缺氧、大气污染和UV辐射。
耐盐性测定-预期对高盐浓度耐受的转基因植物在高盐中表现出更好的发芽、幼苗活力或生长。用多种方法可实现盐胁迫,例如通过用高渗溶液浇灌植物,通过在高渗生长溶液(例如加盐的Hoagland溶液)中水培植物,或通过在高渗生长培养基[例如加盐的50%Murashige-Skoog培养基(MS培养基)]中培养植物。因为不同植物的耐盐性变化相当大,所以灌溉用水、生长溶液或生长培养基中的盐浓度可根据具体的植物栽培变种或品种的特定特性来调整,以便对植物的生理和/或形态造成轻度或中度影响(对于适当浓度的指导方针参见Bernstein和Kafkafi的Root Growth Under Salinity Stress(在咸度胁迫下的根生长),载于:Plant Roots,The Hidden Half,第3版,Waisel Y,EshelA和Kafkafi U.(编者)Marcel Dekker Inc.,New York,2002及其中的参考文献)。
例如,可如下进行耐盐性试验:用渐增氯化钠浓度(例如50mM、100mM、200mM、400mM NaCl)在不同的发育阶段从底部和上方浇灌植物,以确保盐均匀分散。在暴露于胁迫条件后,频繁监测植物直到在野生型植株中出现实质的(substantial)生理和/或形态影响。因此,在对照植株和转基因植株之间比较外部表型外貌、萎蔫程度及达到成熟和产生后代的综合效果。所测量的耐受性定量参数包括但不限于:平均湿重和干重、生长率、叶大小、叶覆盖面(总叶面积)、所产生的种子重量、平均种子大小和每株植株产生的种子数。将未表现出实质的生理和/或形态影响或表现出比野生型植株更高生物量的转化植株鉴定为非生物胁迫耐受植株。
渗透耐受性试验-进行渗压胁迫测定(包括氯化钠和PEG测定),以确定渗压胁迫表型是否为氯化钠特异性的,或者是否为一般性渗压胁迫相关表型。耐受渗压胁迫的植物可能对对干旱和/或冷冻更耐受。对于盐胁迫和渗压胁迫实验,培养基补充有例如50mM、100mM、200mM NaCl或15%、20%或25%PEG。也参见以下实施例部分的实施例6和7。
耐旱性测定/渗压剂测定-进行耐旱性测定以鉴定赋予植物在急性脱水后更好存活力的基因。为了分析转基因植物是否更耐旱,可通过在培养基中的非离子渗压剂山梨醇产生渗压胁迫。在将对照植株和转基因植株转移到含有500mM山梨醇的植物琼脂板后,于该板中发芽并生长4天。该处理引起生长延迟,然后通过测量植物重量(湿重及干重)、产量并通过以开花时间来测量的生长率来比较对照植株和转基因植株二者。
相反地,用过表达上面详述的多核苷酸的植物进行基于土壤的干旱筛选。让来自对照拟南芥植物或过表达本发明多肽的其它转基因植物的种子发芽,并转移到盆中。终止浇灌并将盆置于吸水纸上以增加土壤干燥速率后,获得干旱胁迫。当大部分对照植物开始出现严重萎蔫时,将转基因植物和对照植物彼此比较。在达到相当大部分对照植物表现出严重萎蔫后,重新给植物浇水。用以下两个标准中的每一个与对照进行比较对植物分级:对干旱条件的耐受性和重浇水后的恢复(存活)。
冷胁迫耐受性-分析冷胁迫的一种方法如下。将成熟(25日龄)的植株转移到4℃室内1或2周,给予必要的光照(constitutive light)。随后将植株移回到温室。2周后,通过测量植物重量(湿重及干重)并通过以开花时间、植株大小、产量等测量的生长率,在对照和转基因植物之间比较导致生长延迟及其它表现的寒冷期损伤。
热胁迫耐受性-测量热胁迫耐受性的一种方法是使植株暴露在高于34℃的温度一段时间。在将植株转移回到22℃恢复后检查植物耐受性,5天后相对于内部对照(非转基因植株)或未暴露于冷胁迫或热胁迫的植株进行评估。
发芽试验-发芽试验比较来自转基因植株的能够完成发芽过程的种子百分率与来自对照植株的以同样方式处理的种子的百分率。正常条件被认为是例如在每日22小时光照2小时黑暗周期下于22℃孵育。在种植后4天及14天之间评估发芽和幼苗活力。基础培养基为50%MS培养基(Murashige和Skoog,1962 Plant Physiology 15,473-497)。
也在并不适宜的条件下检查发芽,所述不适宜的条件例如寒冷(在低于10℃而不是22℃的温度孵育)、或用含有高浓度渗压剂例如山梨醇(以50mM、100mM、200mM、300mM、500mM及至多1000mM的浓度)的种子抑制溶液、或应用渐增浓度的盐(50mM、100mM、200mM、300mM、500mM NaCl)。
转基因对植物的生长、生物量、产量和/或活力的作用-可通过生长参数的增加来计算植物活力,生长参数例如单位时间内的叶面积、纤维长度、叶丛直径、植物鲜重等等。
可用生长中植株的数字分析来测量生长率。例如,可每3天捕获在试验区温室中生长的植株的图像,可通过数字分析计算叶丛面积。可用取样天数之间的叶丛面积之差除以取样天数之差来计算叶丛面积生长。
可通过将8-16株植物的全部种子收集在一起,用分析天平为其称重,并用总重量除以植株数,来测量种子产量。可用同样方式计算单位生长面积的种子,同时考虑给予单个植株的生长面积。可通过提高每株植物的种子产量和/或通过提高给定面积内能够生长的植株数,来实现增加单位生长面积的种子产量。
可通过测量8-16株植物所产生及收获的干种子的量(重量或大小)或数量,并除以植株数,来评估每株植物的种子产量。
可通过测量单位时间所产生的植物生物量、叶丛面积、叶大小或根长来评估生长率(可以以每天叶面积cm2来度量)。
可用纤维照相测量纤维长度。用纤维照相系统按照“上半部平均”长度计算长度。上半部平均长度(UHM)是纤维长度分布中较长的一半的平均长度。纤维照相以特定百分数的跨度距离测量长度(http://WWW.cottoninc.com/Classificationofcotton/?Pg=4#Length)。
因此,本发明具有很高的农业价值,用于促进商业上所需农作物的产量(例如生长器官的生物量,例如杨木;或繁殖器官,例如种子数量或种子生物量)。
本文所用术语“约”指±10%。
术语“包含”、“含有”、“包括”、“具有”及其动名词变化意指“包括但不限于”。
术语“由......组成”意指“包括但限于”。
术语“基本上由......组成”意指所述组合物、方法或结构可包括另外的成分、步骤和/或部分,只要所述另外的成分、步骤和/或部分不显著改变所要求保护的组合物、方法或结构的基本的及新的特性。
除非上下文另有明确规定,否则本文所用单数形式“一个”、“一种”和“该”或“所述”包括复数形式。例如,术语“一种化合物”或“至少一种化合物”可包括多种化合物,包括其混合物。
本发明各种实施方案在本申请中可以以范围方式提出。应该理解,范围方式的说明仅为了方便和简洁,不应该理解为对本发明范围的硬性限制。因此,应该认为范围说明具体揭示了所有可能的亚范围以及在该范围内的单个数值。例如,应该认为诸如1-6的范围说明具体揭示了诸如1-3、1-4、1-5、2-4、2-6、3-6等亚范围以及诸如1、2、3、4、5和6的在该范围内的单个数值。不管范围有多宽都适用这种解释。
无论本文何时指定数字范围,其都意指包括在指定范围内任何引用的数(分数或整数)。短语“介于(指定的第一个数和指定的第二个数)之间的范围”与“从(指定的第一个数)到(指定的第二个数)的范围”在本文中可互换使用,意指包括第一个和第二个指定的数及其间的所有分数和整数。
本文所用术语“方法”指用于完成给定任务的方式、手段、技术和程序,包括但不限于化学、药理学、生物学、生物化学及医药学领域从业人员已知的方式、手段、技术和程序,或易于由这些方式、手段、技术和程序中开发的方式、手段、技术和程序。
应该理解,为了清楚起见而在分开的实施方案上下文中阐述的本发明的某些特征,也可在单一实施方案中组合提供。相反地,为了简洁而在单一实施方案上下文中阐述的本发明的各种特征,也可分开提供,或以任何合适的亚组合或在本发明所述任何其它实施方案中合适地提供。除非实施方案没有这些元件就不能操作,否则不能认为在各个实施方案上下文中所述的某些特征为那些实施方案的必不可少的特征。
上文所述的本发明各种实施方案及方面和在以下权利要求章节中要求保护的内容在以下实施例中找到实验支持。
实施例
现在提及以下实施例,它们与上述说明一起以非限制性方式说明本发明某些实施方案。
通常本文所用术语和本发明中利用的实验室程序包括分子技术、生化技术、微生物学技术和重组DNA技术。所述技术在文献中有全面的解释。参见例如:“Molecular Cloning:A laboratory Manual”Sambrook等,(1989);“Current Protocols in Molecular Biology”,第I-III卷,Ausubel,R.M.编辑(1994);Ausubel等,“Current Protocols in Molecular Biology”,John Wiley和Sons,Baltimore,Maryland(1989);Perbal,“A PracticalGuide to Molecular Cloning”,John Wiley & Sons,New York(1988);Watson等,“Recombinant DNA”,Scientific American Books,New York;Birren等(编辑)“Genome Analysis:A Laboratory Manual Series”,第1-4卷,Cold Spring Harbor Laboratory Press,New York(1998);在美国专利第4,666,828号、第4,683,202号、第4,801,531号、第5,192,659号和第5,272,057号中提出的方法;“Cell Biology:A Laboratory Handbook”,第I-III卷,Cellis,J.E.编辑(1994);“Current Protocols in Immunology”第I-III卷,Coligan J.E.编辑(1994);Stites等(编辑),“Basic and ClinicalImmunology”(第8版),Appleton & Lange,Norwalk,CT(1994);Mishell和Shiigi(编辑),“Selected Methods in Cellular Immunology”,W.H.Freeman和Co.,New York(1980);在专利和科学文献中广泛阐述的可用的免疫测定,参见例如美国专利第3,791,932号、第3,839,153号、第3,850,752号、第3,850,578号、第3,853,987号、第3,867,517号、第3,879,262号、第3,901,654号、第3,935,074号、第3,984,533号、第3,996,345号、第4,034,074号、第4,098,876号、第4,879,219号、第5,011,771号和第5,281,521号;“Oligonucleotide Synthesis”Gait,M.J.编辑(1984);“Nucleic Acid Hybridization”Hames,B.D.和Higgins S.J.,编辑(1985);“Transcription and Translation”Hames,B.D.和Higgins S.J.,编辑(1984);“Animal Cell Culture”Freshney,R.I.编辑(1986);“Immobilized Cells and Enzymes”IRL Press,(1986);“A Practical Guideto Molecular Cloning”Perbal,B.,(1984)和“Methods in Enzymology”,第1-317卷,Academic Press;“PCR Protocols:A Guide To Methods AndApplications”,Academic Press,San Diego,CA(1990);Marshak等,“Strategies for Protein Purification and Characterization-A LaboratoryCourse Manual”CSHL Press(1996);它们所有的都如同在本文中全文提出一样在此用作参考。其它一般的参考文献在本文中到处提供。相信其中的程序在本领域众所周知,为了读者方便才提供。其中含有的所有信息在此引作参考。
实施例1
鉴定推定的非生物胁迫耐受性和或产量/生物量增加基因
本发明人如下鉴定了提高非生物胁迫耐受性(ABST)和/或生长率/产量/生物量/活力的基因。如在转让给本受让人的先前在WO2004/104162中所述的方法在体内验证了所述基因。本文所用的所有核苷酸序列数据集皆来源于可公开获得的数据库。将来自50种不同物种(主要是植物物种)的序列数据引入到单一的综合数据库中。也加入了关于基因表达、蛋白质注释、酶和途径的其它信息。所用的主要数据库包括:
●基因组
○拟南芥基因组[TAIR基因组第6版(http://WWW.arabidopsis.org/)]
○水稻基因组[IRGSP build 4.0(http://rgp.dna.affrc.go.jp/IRGSP/)]
○白杨[来自JGI的毛果杨(Populus trichocarpa)版本1.1(assemblyrelease v1.0)(http://WWW.genome.jgi-psf.org/)]
○短柄草属(Brachypodium)[JGI 4x assemblyhttp://WWW.brachpodium.org)]
○大豆[DOE-JGI SCP,Glyma0版本(http://WWW.phytozome.net/)]
○葡萄[NCBI WGS assembly ftp://ftp.ncbi.nih.gov/genbank/wgs/)]
○蓖麻(Castobean)[TIGR/J Craig Venter Institute 4x assembyhttp://msc.jcvi.org/rcommunis
○高粱[DOE-JGI SCP,Sbi版本1 http://WWW.phytozome.net/)]
●从以下取得表达的EST和mRNA序列
○GeneBank版本154、157、160、161、164和165(http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov/dbEST/)
○RefSeq(http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov/RefSeq/)
○TAIR(http://WWW.arabidopsis.org/)
●蛋白质和途径数据库
○Uniprot(http://WWW.expasy.uniprot.org/)
○AraCyc(http://WWW.arabidopsis.org/biocyc/index.jsp)
○酶(http://expasy.org/enzyme/)
●从以下下载微阵列数据集
○GEO(http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov/geo/)
○TAIR(http://WWW.arabidopsis.org/)
○Evogene专有的棉花纤维微阵列数据
●QTL信息
○Gramene(http://WWW.gramene.org/qtl/)
进行数据库拼接(Database Assembly)以建立广泛、丰富、可靠地注释并易于分析的数据库,该数据库包含可公开获得的基因组mRNA、EST DNA序列、来自各种农作物的数据以及基因表达、蛋白质注释和途径数据QTL及其它相关信息。
数据库拼接由基因精制、构造、注释及分析工具的工具盒组成,其使得能够构建用于每一基因发现计划的定制数据库。基因精制和构建工具使得能够可靠地检测剪接变体及反义转录物,产生对单一基因各种潜在的表型结果的了解。并承认用于分析人类基因组的CompugenLTD的“LEADS”平台的能力已被确证,并被科学委员会承认(“Widespread Antisense Transcription(普遍的反义转录)”,Yelin,等(2003)Nature Biotechnology 21,379-85;“Splicing of Alu Sequences(Alu序列的剪接)”,Lev-Maor,等(2003)Science 300(5623),1288-91),也已证明在植物基因组学中最为有效。
EST聚类(clustering)和基因拼接-为了拟南芥和水稻基因的聚类和拼接,采用“基因组LEADS”版本。该工具使得可以最准确将基因组上的EST及mRNA序列聚类,并预测基因结构以及可变剪接事件和反义转录。
对于不能获得全基因组序列数据的生物体,应用“表达的LEADS”以及TIGR(http://WWW.tigr.org/)聚类软件。比较这两个聚类工具的结果,在由这两个工具预测的簇显著不同的情况下,提出并考虑两个版本。
基因注释-如下注释预测的基因及蛋白质:
●在所有的植物UniProt(http://WWW.expasy.uniprot.org/)序列中实施Blast搜索(http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov.library.vu.edu.au/BLAST/)。
●将具有缺省统计的Frame-Finder(http://WWW.ebi.ac.uk/~guy/estate/)计算用于预测每一转录物的蛋白质序列。
●由InterPro(http://WWW.ebi.ac.uk/interpro/)分析预测的蛋白质。
●使用从AraCyc和酶(ENZYME)数据库Blast搜索蛋白质来对AraCyc途径的预测转录物作图。
●在所有其它生物体数据库中用tblastx算法(http://WWW.ncbi.nlm.nih.gov.library.vu.edu.au/BLAST/)比较每一转录物,以验证预测的蛋白质序列的准确性并用于有效检测直向同源物。
基因表达谱-开发了少数数据来源用于基因表达谱分析,即微阵列数据和数字表达谱(参见以下)。根据基因表达谱,进行了相关性分析以鉴定在不同发育阶段和环境条件下共同调控的基因。
从TAIR和NCBI GEO站点下载可公开获得的微阵列数据集,对其重新标准化并整合到数据库中。对于鉴定对ABST重要的基因,表达谱分析是最重要的资源数据之一。此外,当来自不同农作物的同源物基因响应ABST时,将该等基因标记为“对改进ABST具有高度预测性”。
根据包括在包含所述簇(cluster)的序列记录中的所有关键词,汇集了每一簇的数字基因表达谱概述。数字基因表达也称为电子RNA印迹,是展示基于形成簇的EST序列的虚拟表达谱的工具。该工具可提供在植物解剖学(基因在什么组织/器官中表达)、发育阶段(可找到基因的发育阶段)和处理概述(提供在其中基因表达的生理条件,例如干旱、寒冷、病原体感染等)方面的簇的表达谱。既然EST在不同簇中随机分布,那么数字基因表达提供阐述具有总共N个EST的簇含有来自某一文库集的X个EST的可能性的概率值。对该概率的计算要考虑:a)簇中的EST数,b)所牵涉的相关文库中的EST数,c)代表该物种的可用的总EST数。因此,具有低概率值的簇高度富集了来自表明特化(specialized)表达的目的文库组的EST。
最近已将直向同源性和旁系同源性的概念应用到全基因组比较规模的功能表征和分类。直向同源物和旁系同源物构成两种主要的同源物类型:前者通过特化从共同祖先进化而来,而后者通过复制事件互有关联。假定起因于远古复制事件的旁系同源物很可能在功能上趋异,而真正的直向同源物更有可能随进化时间一直保留同样的功能。
为了进一步研究和鉴定来自单子叶物种的推定的ABST直向同源物基因,整合了两种计算方法:
(i)用于直向同源物序列比对的方法-基于跨越多个真核生物分类群构建的直向同源物群,用Markov簇算法的改良法对推定的直向同源物和旁系同源物进行分群。在系统发生图(Phylogram,假定为估计的基因系统发生的分支图(树))中进一步组编这些推定的直向同源物。
(ii)用于产生基因表达谱的方法“数字表达(Digital Expression)”-本发明人在注释序列方面也已进行了大量工作。分析了表达数据,并用习惯术语固定词汇(例如实验处理)对EST文库分类。通过对EST在簇中的频率及EST在数据库中的丰度进行比较,在统计学上分析了来自聚类到基因中的所有EST的注释,使得可构建该基因的数字式及图表式的表达谱,这被称作“数字表达”。
使用这两个互补方法的基本原理基于真正的直向同源物很可能随进化时间一直保留同样的功能这种假设。对于两个同源基因之间的功能相似性、序列水平的相似性(在蛋白质结构域中相同的氨基酸)和表达谱的相似性,这两种方法(序列和表达模式)提供了两套不同的说明。
总之,鉴定了在植物中过表达时对ABST有重大影响的110种基因。将所鉴定的ABST基因、其经过组织的(curated)多核苷酸和多肽序列以及其按照Genebank数据库更新的序列(updated sequence)概述于下表1中。
表1
已鉴别的ABST基因
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
1 | MAB1 | MAB1.0.rice|gb154|BM421111_T1 | 水稻(rice) | 201 | ||
2 | MAB1.1.rice|gb157.2|BM421111_T1 | 水稻 | 202 | 针对gb157.2生产更新的(updated toproductiongb157.2) | 针对gb157.2生产更新的 |
3 | MAB2 | MAB2.0.rice|gb154|AU225547_T1 | 水稻 | 未预测蛋白质 | ||
4 | MAB2.1.rice|gb157.2|AU225547_T1 | 水稻 | 针对gb157.2生产更新的 | |||
5 | MAB3 | MAB3.0.rice|gb154|BE039995_T1 | 水稻 | 203 | ||
6 | MAB3.1.rice|gb157.2|BE039995_T1 | 水稻 | 204 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
7 | MAB4 | MAB4.0.rice|gb154|BI812277_T1 | 水稻 | 205 | ||
8 | MAB4.7.rice|gb157.2|BI812277_CT1 | 水稻 | 经过审核 | |||
9 | MAB5 | MAB5.0.rice|gb154|CB624106_T1 | 水稻 | 206 | ||
10 | MAB6 | MAB6.0.arabidopsis|gb154|Z47404_T1 | 拟南芥(arabidopsis) | 207 | ||
11 | MAB7 | MAB7.0.arabidopsis|6|AT5G47560.1 | 拟南芥 | 208 | ||
12 | MAB7.1.arabidopsis|gb165|AT5G47560_T1 | 拟南芥 | 209 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
13 | MAB8 | MAB8.0.rice|gb154|BU672931_T1 | 水稻 | 210 |
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
14 | MAB8.7.rice|gb154|BU672931_T1 | 水稻 | 生物信息学和经过组织的DNA | |||
15 | MAB9 | MAB9.0.arabidopsis|gb154|BE844934_T1 | 拟南芥 | 211 | ||
16 | MAB10 | MAB10.0.arabidopsis|gb154|Z27056_T1 | 拟南芥 | 212 | ||
17 | MAB11 | MAB11.0.arabidopsis|gb154|Z34014_T1 | 拟南芥 | 213 | ||
18 | MAB11.1.arabidopsis|gb165|AT5G52300_T1 | 拟南芥 | 214 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
19 | MAB12 | MAB12.0.arabidopsis|gb154|ATLTIL40_T1 | 拟南芥 | 215 | ||
20 | MAB12.1.arabidopsis|gb165|AT5G52310_T1 | 拟南芥 | 216 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
21 | MAB13 | MAB13.0.arabidopsis|6|AT2G38760.1 | 拟南芥 | 217 | ||
22 | MAB13.1.arabidopsis|gb165|AT2G38760_T1 | 拟南芥 | 218 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 |
23 | MAB14 | MAB14.0.rice|gb154|AB042259_T1 | 水稻 | 219 | ||
24 | MAB14.1.rice|gb157.2|AB042259_T1 | 水稻 | 220 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
25 | MAB15 | MAB15.0.sorghum|gb154|AI724695_T1 | 高粱(sorghum) | 221 | ||
26 | MAB16 | MAB16.0.rice|gb154|BI795172_T1 | 水稻 | 222 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
27 | MAB16.1.rice|gb157.2|BI795172_T1 | 水稻 | 223 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
28 | MAB17 | MAB17.0.soybean|gb154|BE821839_T1 | 大豆(soybean) | 224 | ||
29 | MAB18 | MAB18.0.barley|gb154|BF625971_T1 | 大麦(barley) | 225 | ||
226 | 蛋白质生物信息学和经过组织的蛋白质 | |||||
30 | MAB19 | MAB19.0.sorghum|gb154|AW563861_T1 | 高粱 | 227 |
31 | MAB19.1.sorghum|gb161.xeno|AW563861_T1 | 高粱 | 228 | 针对gb161.xeno生产更新的 | 针对gb161.xeno生产更新的 | |
32 | MAB20 | MAB20.0.arabidopsis|gb154|T04691_T1 | 拟南芥 | 229 | ||
33 | MAB20.1.arabidopsis|gb165|AT1G61890_T1 | 拟南芥 | 230 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
34 | MAB21 | MAB21.0.rice|gb154|BE230053_T1 | 水稻 | 231 | ||
35 | MAB21.1.rice|gb157.2|BE230053_T1 | 水稻 | 232 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
36 | MAB22 | MAB22.0.tomato|gb154|BG791299_T1 | 番茄(tomato) | 233 | ||
234 | 经过审核 | |||||
37 | MAB23 | MAB23.0.rice|gb154|BI305810_T1 | 水稻 | 235 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
38 | MAB24 | MAB24.0.rice|gb154|BI808273_T1 | 水稻 | 236 | ||
39 | MAB24.7.rice|gb157.2|BI808273_CT1 | 水稻 | 经过审核 |
40 | MAB25 | MAB25.0.arabidopsis|6|AT1G27760.1 | 拟南芥 | 237 | ||
41 | MAB25.1.arabidopsis|gb165|AT1G27760_T1 | 拟南芥 | 238 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
42 | MAB26 | MAB26.0.rice|gb154|AW155625_T1 | 水稻 | 239 | ||
43 | MAB26.7.rice|gb157.2|BI305400_CT1 | 水稻 | 经过审核 | |||
44 | MAB27 | MAB27.0.arabidopsis|gb154|AY045660_T1 | 拟南芥 | 240 | ||
45 | MAB27.7.arabidopsis|gb165|AT5G24120_CT1 | 拟南芥 | 经过审核 | |||
46 | MAB28 | MAB28.0.rice|gb154|BI795108_T1 | 水稻 | 241 | ||
47 | MAB28.7.rice|gb157.2|BI795108_CT1 | 水稻 | 经过审核 | |||
48 | MAB29 | MAB29.0.arabidopsis|gb154|AU239137_T2 | 拟南芥 | 242 | ||
49 | MAB29.1.arabidopsis|gb165|AT2G25600_T1 | 拟南芥 | 243 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
50 | MAB30 | MAB30.0.arabidopsis|gb154|AY062542_T1 | 拟南芥 | 244 | ||
51 | MAB30.7.arabidopsis|gb165|AT1G70300_CT1 | 拟南芥 | 经过审核 |
52 | MAB31 | MAB31.0.soybean|gb154|BI968709_T1 | 大豆 | 245 | ||
53 | MAB31.7.soybean|gb162|BI968709_CT1 | 大豆 | 246 | 经过审核 | 经过审核 | |
54 | MAB32 | MAB32.0.rice|gb154|AF039532_T1 | 水稻 | 247 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
55 | MAB33 | MAB33.0.MAIZE|gb154|AI615215_T1 | 玉米(maize) | 248 | ||
56 | MAB33.1.MAIZE|gb164|AI615215_T1 | 玉米 | 249 | 针对gb164生产更新的 | ||
57 | MAB34 | MAB34.0.barley|gb154|TG_BF625450_T1 | 大麦 | 250 | ||
58 | MAB34.1.barley|gb157.2|BF625450_T1 | 大麦 | 251 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
59 | MAB35 | MAB35.0.arabidopsis|gb154|AA651513_T1 | 拟南芥 | 252 | ||
60 | MAB35.1.arabidopsis|gb165|AT2G16890_T1 | 拟南芥 | 253 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 |
61 | MAB36 | MAB36.0.arabidopsis|gb154|AU239340_T1 | 拟南芥 | 254 | ||
62 | MAB36.1.arabidopsis|gb165|AT4G27570_T1 | 拟南芥 | 255 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
63 | MAB37 | MAB37.0.tomato|gb154|BG125939_T1 | 番茄 | 256 | ||
64 | MAB37.7.tomato|gb164|BG125939_CT1 | 番茄 | 经过审核 | |||
65 | MAB38 | MAB38.0.wheat|gb154|BE492836_T1 | 小麦(wheat) | 257 | ||
66 | MAB38.7.wheat|gb164|BE492836_CT1 | 小麦 | 258 | 经过审核 | 经过审核 | |
67 | MAB39 | MAB39.0.barley|gb154|AL500200_T1 | 大麦 | 259 | ||
68 | MAB39.1.barley|gb157.2|AL500200_T1 | 大麦 | 260 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
69 | MAB40 | MAB40.0.rice|gb154|AA754628_T1 | 水稻 | 261 | ||
70 | MAB40.7.rice|gb157.2|AA754628_CT1 | 水稻 | 经过审核 |
71 | MAB41 | MAB41.0.tomato|gb154|AI489494_T1 | 番茄 | 262 | ||
72 | MAB41.7.tomato|gb164|AI489494_CT1 | 番茄 | 经过审核 | |||
73 | MAB42 | MAB42.0.sorghum|gb154|BE595950_T1 | 高粱 | 263 | ||
74 | MAB42.7.sorghum|gb161.xeno|AI881418_CT1 | 高粱 | 264 | 经过审核 | 经过审核 | |
75 | MAB43 | MAB43.0.arabidopsis|gb154|BE662945_T1 | 拟南芥 | 265 | ||
76 | MAB43.1.arabidopsis|gb165|AT5G26920_T1 | 拟南芥 | 266 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
77 | MAB44 | MAB44.0.arabidopsis|gb154|H36025_T1 | 拟南芥 | 267 | ||
78 | MAB44.1.arabidopsis|gb165|AT1G67360_T1 | 拟南芥 | 268 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
79 | MAB45 | MAB45.0.wheat|gb154|TG_BQ172359_T1 | 小麦 | 269 | ||
80 | MAB45.1.wheat|gb164|BQ172359_T1 | 小麦 | 270 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
81 | MAB46 | MAB46.0.arabidopsis|gb154|AA389812_T1 | 拟南芥 | 271 |
82 | MAB47 | MAB47.0.sorghum|gb154|AW672286_T1 | 高粱 | 272 | ||
83 | MAB47.7.sorghum|gb161.xeno|AI948276_CT1 | 高粱 | 273 | 经过审核 | 经过审核 | |
84 | MAB48 | MAB48.0.rice|gb154|BI802161_T1 | 水稻 | 274 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
85 | MAB48.7.rice|gb157.2|AU092454_CT1 | 水稻 | 275 | 经过审核 | 经过审核 | |
86 | MAB49 | MAB49.0.MAIZE|gb154|TG_AI621810_T1 | 玉米 | 276 | ||
87 | MAB49.7.MAIZE|gb164|AI621810C_T1 | 玉米 | 经过审核 | |||
88 | MAB50 | MAB50.0.arabidopsis|gb154|W43146_T1 | 拟南芥 | 277 | ||
89 | MAB50.1.arabidopsis|gb165|AT5G48570_T1 | 拟南芥 | 278 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
90 | MAB91 | MAB91.0.arabidopsis|gb154|AU236480_T1 | 拟南芥 | 279 | ||
280 | 经过审核 | |||||
91 | MAB96 | MAB96.0.arabidopsis|gb154|Z27256_T1 | 拟南芥 | 281 |
92 | MAB96.7.arabidopsis|gb165|AT5G03800_CT1 | 拟南芥 | 282 | 经过审核 | 经过审核 | |
93 | MAB99 | MAB99.0.tomato|gb154|BG735056_T1 | 番茄 | 283 | ||
94 | MAB100 | MAB100.0.arabidopsis|gb154|Z37259_T1 | 拟南芥 | 284 | ||
95 | MAB100.1.arabidopsis|gb165|AT1G01470_T1 | 拟南芥 | 285 | 针对gb165生产更新的 | 针对gb165生产更新的 | |
96 | MAB104 | MAB104.0.rice|gb154|BE039215_T1 | 水稻 | 286 | ||
97 | MAB104.1.rice|gb157.2|BE039215_T1 | 水稻 | 287 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
98 | MAB121 | MAB121.0.sugarcane|gb157|CA079500_T1 | 甘蔗(sugarcane) | 288 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
99 | MAB121.1.sugarcane|gb157.2|CA079500_T1 | 甘蔗 | 289 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
100 | MAB122 | MAB122.0.MAIZE|gb154|AI901344_T9 | 玉米 | 290 |
101 | MAB123 | MAB123.0.barley|gb157|BF626638_T1 | 大麦 | 291 | ||
102 | MAB123.1.barley|gb157.2|BF626638_T1 | 大麦 | 292 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
103 | MAB124 | MAB124.0.sugarcane|gb157|CA284042_T1 | 甘蔗 | 293 | ||
104 | MAB124.1.sugarcane|gb157.2|CA284042_T1 | 甘蔗 | 294 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
105 | MAB125 | MAB125.0.rice|gb157|CF957213_T1 | 水稻 | 295 | ||
106 | MAB125.1.rice|gb157.2|CF957213_T1 | 水稻 | 296 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
107 | MAB126 | MAB126.0.grape|gb157|BQ797309_T1 | 葡萄(grape) | 297 | ||
108 | MAB126.1.grape|gb160|BQ797309_T1 | 葡萄 | 298 | 更新后产生gb160 | 更新后产生gb160 | |
109 | MAB127 | MAB127.0.grape|gb157|CB971532_T1 | 葡萄 | 299 | ||
110 | MAB127.1.grape|gb160|CB971532_T1 | 葡萄 | 300 | 更新后产生gb160 | 更新后产生gb160 | |
111 | MAB128 | MAB128.0.sugarcane|gb157|CA142162_T1 | 甘蔗 | 301 |
112 | MAB128.1.sugarcane|gb157.2|CA142162_T1 | 甘蔗 | 302 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
113 | MAB129 | MAB129.0.tomato|gb157|AI486106_T1 | 番茄 | 303 | ||
114 | MAB129.1.tomato|gb164|AI486106_T1 | 番茄 | 304 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
115 | MAB130 | MAB130.0.canola|gb157|CD829694_T1 | 油菜(canola) | 305 | ||
116 | MAB131 | MAB131.0.tomato|gb157|AW928843_T1 | 番茄 | 306 | ||
117 | MAB131.1.tomato|gb164|AW928843_T1 | 番茄 | 307 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
118 | MAB132 | MAB132.0.barley|gb157|BF621624_T1 | 大麦 | 308 | ||
119 | MAB133 | MAB133.0.barley|gb157|BE411546_T1 | 大麦 | 309 | ||
120 | MAB133.1.barley|gb157.2|BE411546_T1 | 大麦 | 310 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 |
121 | MAB134 | MAB134.0.barley|gb157|BE437407_T1 | 大麦 | 311 | ||
312 | 蛋白质生物信息学和经过组织的蛋白质 | |||||
122 | MAB135 | MAB135.0.lotus|gb157|AI967693_T1 | 莲(lotus) | 313 | ||
123 | MAB135.1.lotus|gb157.2|AI967693_T1 | 莲 | 314 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
124 | MAB136 | MAB136.0.rice|gb157|AK058573_T1 | 水稻 | 315 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
125 | MAB136.1.rice|gb157.2|AK058573_T1 | 水稻 | 316 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
126 | MAB137 | MAB137.0.barley|gb157|AL508624_T1 | 大麦 | 317 | 来自临时专利 | |
127 | MAB137.1.barley|gb157.2|AL508624_T1 | 大麦 | 318 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
128 | MAB138 | MAB138.0.potato|gb157|BI177281_T1 | 马铃薯(potato) | 319 | 来自临时专利 |
129 | MAB138.1.potato|gb157.2|BI177281_T1 | 马铃薯 | 320 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
130 | MAB139 | MAB139.0.cotton|gb157.2|AI727826_T1 | 棉花(cotton) | 321 | 来自临时专利 | |
131 | MAB139.1.cotton|gb164|AI727826_T1 | 棉花 | 322 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
132 | MAB140 | MAB140.0.barley|gb157|BI778498_T1 | 大麦 | 323 | 来自临时专利 | |
133 | MAB140.1.barley|gb157.2|BI778498_T1 | 大麦 | 324 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
134 | MAB141 | MAB141.0.barley|gb157|BE421008_T1 | 大麦 | 325 | 来自临时专利 | |
135 | MAB142 | MAB142.0.cotton|gb157.2|AI055631_T2 | 棉花 | 326 | 来自临时专利 | |
136 | MAB142.0.cotton|gb157.2|AI055631_T1 | 棉花 | 327 | 来自临时专利 | ||
137 | MAB142.1.cotton|gb164|AW187041_T1 | 棉花 | 328 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
138 | MAB143 | MAB143.0.tomato|gb157|AI487157_T1 | 番茄 | 329 | 来自临时专利 | |
139 | MAB143.1.tomato|gb164|AI487157_T1 | 番茄 | 330 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
140 | MAB144 | MAB144.0.grape|gb157|CA814960_T1 | 葡萄 | 331 | 来自临时专利 | |
141 | MAB144.1.grape|gb160|CA814960_T1 | 葡萄 | 332 | 更新后产生gb160 | 更新后产生gb160 | |
142 | MAB145 | MAB145.0.barley|gb157|BE413365_T1 | 大麦 | 333 | 来自临时专利 | |
143 | MAB146 | MAB146.0.tomato|gb157|AI773927_T1 | 番茄 | 334 | 来自临时专利 | |
144 | MAB146.1.tomato|gb164|AI773927_T1 | 番茄 | 335 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
145 | MAB147 | MAB147.0.tobacco|gb157|EB446189_T1 | 烟草(tabacco) | 336 | ||
146 | MAB147.1.tobacco|gb162|EB446189_T1 | 烟草 | 337 | 针对gb162生产更新的 | 针对gb162生产更新的 | |
147 | MAB148 | MAB148.0.medicago|gb157|AW256654_T1 | 苜蓿(medicago) | 338 | ||
148 | MAB148.1.medicago|gb157.2|AW256654_T1 | 苜蓿 | 339 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 |
149 | MAB150 | MAB150.0.canola|gb157|CD818831_T1 | 油菜 | 340 | ||
150 | MAB150.1.canola|gb161|CD818831_T1 | 油菜 | 341 | 更新后产生gb161 | 更新后产生gb161 | |
151 | MAB151 | MAB151.0.potato|gb157|BQ513540_T1 | 马铃薯 | 342 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
152 | MAB151.1.potato|gb157.2|BQ513540_T1 | 马铃薯 | 343 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
153 | MAB152 | MAB152.0.grape|gb157|BQ798655_T1 | 葡萄 | 344 | ||
154 | MAB152.1.grape|gb160|BQ798655_T1 | 葡萄 | 345 | 更新后产生gb160 | 更新后产生gb160 | |
155 | MAB153 | MAB153.0.sugarcane|gb157|BQ533857_T1 | 甘蔗 | 346 | ||
156 | MAB153.1.sugarcane|gb157.2|BQ533857_T1 | 甘蔗 | 347 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
157 | MAB154 | MAB154.0.sugarcane|gb157|BQ537570_T3 | 甘蔗 | 348 | ||
158 | MAB154.0.sugarcane|gb157|BQ537570_T2 | 甘蔗 | 349 |
159 | MAB154.0.sugarcane|gb157|BQ537570_T1 | 甘蔗 | 350 | |||
160 | MAB154.1.sugarcane|gb157.2|BQ537570_T1 | 甘蔗 | 351 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
161 | MAB155 | MAB155.0.sorghum|gb157|AW676730_T1 | 高粱 | 352 | ||
162 | MAB155.1.sorghum|gb161.xeno|AW676730_T1 | 高粱 | 353 | 针对gb161.xeno生产更新的 | 针对gb161.xeno生产更新的 | |
163 | MAB156 | MAB156.0.tobacco|gb157|AB117525_T1 | 烟草 | 354 | ||
164 | MAB156.1.tobacco|gb162|AB117525_T1 | 烟草 | 355 | 针对gb162生产更新的 | 针对gb162生产更新的 | |
165 | MAB157 | MAB157.0.sugarcane|gb157|BQ533820_T2 | 甘蔗 | 356 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
166 | MAB157.0.sugarcane|gb157|BQ533820_T1 | 甘蔗 | 357 | |||
167 | MAB157.1.sugarcane|gb157.2|BQ533820_T1 | 甘蔗 | 358 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 |
168 | MAB158 | MAB158.0.cotton|gb157.2|AI054450_T1 | 棉花 | 359 | ||
169 | MAB159 | MAB159.0.canola|gb157|CD818468_T1 | 油菜 | 360 | ||
170 | MAB160 | MAB160.0.barley|gb157|BF622450_T1 | 大麦 | 361 | ||
171 | MAB161 | MAB161.0.poplar|gb157|BU896597_T1 | 白杨(poplar) | 362 | ||
172 | MAB161.1.poplar|gb157.2|BU896597_T1 | 白杨 | 363 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
173 | MAB162 | MAB162.0.sugarcane|gb157|BU102611_T1 | 甘蔗 | 364 | ||
174 | MAB162.1.sugarcane|gb157.2|BU102611_T1 | 甘蔗 | 365 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
175 | MAB163 | MAB163.0.barley|gb157|AL501813_T1 | 大麦 | 366 | ||
176 | MAB163.1.barley|gb157.2|AL501813_T1 | 大麦 | 367 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
177 | MAB164 | MAB164.0.barley|gb157|BF253543_T1 | 大麦 | 368 | ||
178 | MAB164.1.barley|gb157.2|BF253543_T1 | 大麦 | 369 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 |
179 | MAB165 | MAB165.0.grape|gb157|BQ793123_T1 | 葡萄 | 370 | ||
180 | MAB166 | MAB166.0.poplar|gb157|CV228694_T1 | 白杨 | 371 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
181 | MAB166.1.poplar|gb157.2|CV228694_T1 | 白杨 | 372 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
182 | MAB167 | MAB167.0.canola|gb157|CX278043_T1 | 油菜 | 373 | ||
183 | MAB167.1.canola|gb161|CX278043_T1 | 油菜 | 374 | 更新后产生gb161 | 更新后产生gb161 | |
184 | MAB168 | MAB168.0.grape|gb157|BG273815_T1 | 葡萄 | 375 | ||
185 | MAB168.1.grape|gb160|BG273815_T1 | 葡萄 | 376 | 更新后产生gb160 | 更新后产生gb160 | |
186 | MAB169 | MAB169.0.cotton|gb157.2|COTLEA14B_T1 | 棉花 | 377 | ||
187 | MAB169.1.cotton|gb164|COTLEA14B_T1 | 棉花 | 378 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
188 | MAB170 | MAB170.0.barley|gb157|BE412505_T1 | 大麦 | 379 |
189 | MAB170.1.barley|gb157.2|BE412505_T1 | 大麦 | 380 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
190 | MAB171 | MAB171.0.sugarcane|gb157|CA123631_T1 | 甘蔗 | 381 | ||
191 | MAB171.1.sugarcane|gb157.2|CA123631_T1 | 甘蔗 | 382 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
192 | MAB172 | MAB172.0.sugarcane|gb157|BQ478980_T1 | 甘蔗 | 383 | ||
193 | MAB172.0.sugarcane|gb157|BQ478980_T2 | 甘蔗 | 384 | |||
194 | MAB173 | MAB173.0.barley|gb157|BY836652_T1 | 大麦 | 385 | ||
SEQIDNO:多核苷酸 | 基因名称 | 簇名称 | 生物体 | SEQIDNO:多肽 | 多核苷酸说明 | 多肽说明 |
195 | MAB173.1.barley|gb157.2|BY836652_T1 | 大麦 | 386 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 | |
196 | MAB174 | MAB174.0.barley|gb157|BG342904_T1 | 大麦 | 387 | ||
197 | MAB174.1.barley|gb157.2|BG342904_T1 | 大麦 | 388 | 针对gb157.2生产更新的 | 针对gb157.2生产更新的 |
198 | MAB175 | MAB175.0.tomato|gb157|BG126606_T1 | 番茄 | 389 | ||
199 | MAB175.0.tomato|gb157|BG126606_T2 | 番茄 | 390 | |||
200 | MAB175.1.tomato|gb164|BG126606_T1 | 番茄 | 391 | 针对gb164生产更新的 | 针对gb164生产更新的 | |
1653 | MAB66 | MAB66.0.tomato|gb164|BG124832_CT1 | 番茄 | 1651 |
表1.
业已用BLAST软件使用BlastX算法,从数据库中鉴定了与所鉴定的ABST基因具有显著同源性的多核苷酸和多肽。查询核苷酸序列为SEQ ID NO:1、3、5、7、9、10、11、13、15、16、17、19、21、23、25、26、28、29、30、32、34、36、37、38、40、42、44、46、48、50、52、54、55、57、59、61、63、65、67、69、71、73、75、77、79、81、82、84、86、88、90、91、93、94、96、98、100、101、103、105、107、109、111、113、115、116、118、119、121、122、124、126、128、130、132、134、135、138、140、142、143、145、147、149、151、153、155、157、161、163、165、168、169、170、171、173、175、177、179、180、182、184、186、188、190、192、194、196、198和1653,所鉴定的ABST同源物提供在下表2中。
表2
ABST基因同源物
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
392 | apple|gb157.3|CN444532_T1 | 苹果(apple) | 961 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 85 |
393 | apple|gb157.3|CN445371_T1 | 苹果 | 962 | Seq376.MAB168.15.grape | 87 |
394 | apple|gb157.3|CN878026_T1 | 苹果 | 963 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 80 |
395 | apple|gb157.3|CK900582_T1 | 苹果 | 964 | Seq321.MAB139.15.cotton | 85 |
396 | apple|gb157.3|CN888579_T2 | 苹果 | 965 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
397 | apple|gb157.3|CN888579_T3 | 苹果 | 966 | Seq256.MAB37.15.tomato | 81 |
398 | apple|gb157.3|CO066535_T1 | 苹果 | 967 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
399 | apple|gb157.3|CN888579_T1 | 苹果 | 968 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
400 | apple|gb157.3|CN496860_T1 | 苹果 | 969 | Seq321.MAB139.15.cotton | 81 |
401 | apricot|gb157.2|BQQ134642_T1 | 杏(apricot) | 970 | Seq329.MAB143.15.tomato | 82 |
402 | apricot|gb157.2|CB822088_T1 | 杏 | 971 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
403 | aquilegia|gb157.3|DR915383_T1 | 耧斗菜(aquilegia) | 972 | Seq321.MAB139.15.cotton | 83 |
404 | aquilegia|gb157.3|DR913600_T1 | 耧斗菜 | 973 | Seq344.MAB152.15.grape | 83 |
405 | aquilegia|gb157.3|DR920101_T1 | 耧斗菜 | 974 | Seq370.MAB165.15.grape | 87 |
406 | aquilegia|gb157.3|DT727583_T1 | 耧斗菜 | 975 | Seq311.MAB134.15.barley | 80 |
407 | aquilegia|gb157.3|DR918523_T1 | 耧斗菜 | 976 | Seq376.MAB168.15.grape | 82 |
408 | arabidopsis|gb165|AT1G67890_T2 | 拟南芥 | 977 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
409 | arabidopsis|gb165|AT1G78070_T2 | 拟南芥 | 978 | Seq207.MAB6.15.arabidopsis | 97 |
410 | arabidopsis|gb165|AT1G52890_T3 | 拟南芥 | 979 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 85 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
411 | arabidopsis|gb165|AT3G06620_T1 | 拟南芥 | 980 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 80 |
412 | arabidopsis|gb165|AT1G67890_T1 | 拟南芥 | 981 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
413 | arabidopsis|gb165|AT5G14860_T1 | 拟南芥 | 982 | Seq341.MAB150.15.canola | 80 |
414 | arabidopsis|gb165|AT5G49470_T2 | 拟南芥 | 983 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 81 |
415 | arabidopsis|gb165|AT5G49470_T1 | 拟南芥 | 984 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 81 |
416 | arabidopsis|gb165|AT3G24170_T1 | 拟南芥 | 985 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
417 | arabidopsis|gb165|AT1G11670_T1 | 拟南芥 | 986 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 84 |
418 | arabidopsis|gb165|AT3G25230_T1 | 拟南芥 | 987 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
419 | arabidopsis|gb165|AT4G32500_T2 | 拟南芥 | 988 | Seq242.MAB29.15.arabidopsis | 81 |
420 | arabidopsis|gb165|AT5G06760_T1 | 拟南芥 | 989 | Seq373.MAB167.15.canola | 84 |
421 | arabidopsis|gb165|AT4G27410_T3 | 拟南芥 | 990 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 94 |
422 | arabidopsis|gb165|AT4G27560_T1 | 拟南芥 | 991 | Seq254.MAB36.15.arabidopsis | 94 |
423 | artemisia|gb164|EY047508_T1 | 蒿(artemisia) | 992 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
424 | artemisia|gb164|EY060376_T1 | 蒿 | 993 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
425 | artemisia|gb164|EY089381_T1 | 蒿 | 994 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
426 | artemisia|gb164|EY042537_T1 | 篙 | 995 | Seq349.MAB154.15.sugarcane | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
427 | b_juncea|gb164|EVGN00102008310737_T1 | 芥菜(b_juncea) | 996 | Seq360.MAB159.15.canola | 97 |
428 | b_juncea|gb164|EVGN08486004170336_T1 | 芥菜 | 997 | Seq373.MAB167.15.canola | 94 |
429 | b_juncea|gb164|EVGN00429914360666_T1 | 芥菜 | 998 | Seq370.MAB165.15.grape | 83 |
430 | b_juncea|gb164|EVGN00258430752139P1_T1 | 芥菜 | 999 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
431 | b_juncea|gb164|EVGN01568909822952_T1 | 芥菜 | 1000 | Seq373.MAB167.15.canola | 98 |
432 | b_oleracea|gb161|DY029719_T1 | 甘蓝(b_oleracea) | 1001 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
433 | b_oleracea|gb161|AM385106_T1 | 甘蓝 | 1002 | Seq360.MAB159.15.canola | 96 |
434 | b_oleracea|gb161|AM387179_T1 | 甘蓝 | 1003 | Seq360.MAB159.15.canola | 91 |
435 | b_oleracea|gb161|AM061306_T1 | 甘蓝 | 1004 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 86 |
436 | b_oleracea|gb 161|AB125639_T1 | 甘蓝 | 1005 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
437 | b_rapa|gb162|EE523634_T1 | 芜菁(b_rapa) | 1006 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 92 |
438 | b_rapa|gb162|EX024909_T1 | 芜菁 | 1007 | Seq217.MAB13.15.arabidopsis | 83 |
439 | b_rapa|gb162|EX070158_T2 | 芜菁 | 1008 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 95 |
440 | b_rapa|gb162|CA992067_T1 | 芜菁 | 1009 | Seq360.MAB159.15.canola | 94 |
441 | b_rapa|gb162|EE520623_T1 | 芜菁 | 1010 | Seq280.MAB91.10.arabidopsis | 89 |
442 | b_rapa|gb162|CV545896_T1 | 芜菁 | 1011 | Seq208.MAB7.15.arabidopsis | 88 |
443 | b_rapa|gb162|CO749564_T1 | 芜菁 | 1012 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
444 | b_rapa|gb162|CV434105_T1 | 芜菁 | 1013 | Seq217.MAB13.15.arabidopsis | 83 |
445 | b_rapa|gb162|AF008441_T1 | 芜菁 | 1014 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
446 | b_rapa|gb162|EX070158_T1 | 芜菁 | 1015 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 86 |
447 | b_rapa|gb162|EX088727_T1 | 芜菁 | 1016 | Seq271.MAB46.15.arabidopsis | 93 |
448 | b_rapa|gb162|BG544469_T1 | 芜菁 | 1017 | Seq360.MAB159.15.canola | 82 |
449 | b_rapa|gb162|DN962625_T1 | 芜菁 | 1018 | Seq237.MAB25.15.arabidopsis | 85 |
450 | b_rapa|gb162|CV544672_T1 | 芜菁 | 1019 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 88 |
451 | barley|gb157.2|BI947678_T1 | 大麦 | 1020 | Seq368.MAB164.15.barley | 92 |
452 | barley|gb157.2|AV835424_T1 | 大麦 | 1021 | Seq257.MAB38.15.wheat | 97 |
453 | barley|gb157.2|BE455969_T1 | 大麦 | 1022 | Seq290.MAB122.15.maize | 84 |
454 | barley|gb157.2|BE519575_T2 | 大麦 | 1023 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 81 |
455 | barley|gb157.2|BF625959_T1 | 大麦 | 1024 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 83 |
456 | barley|gb157.2|BQ461470_T1 | 大麦 | 1025 | Seq356.MAB157.15.sugarcane | 82 |
457 | basilicum|gb157.3|DY333033_T1 | 小冠薰(basilicum) | 1026 | Seq256.MAB37.15.tomato | 87 |
458 | bean|gb164|CB542809_T1 | 菜豆(bean) | 1027 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
459 | bean|gb164|CV529652_T1 | 菜豆 | 1028 | Seq370.MAB165.15.grape | 83 |
460 | bean|gb164|CB543453_T1 | 菜豆 | 1029 | Seq368.MAB164.15.barley | 80 |
461 | bean|gb164|CV535253_T1 | 菜豆 | 1030 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
462 | beet|gb162|BQ592516_T1 | 甜菜(beet) | 1031 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
463 | beet|gb162|BQ488223_T1 | 甜菜 | 1032 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 88 |
464 | beet|gb162|BQ583768_T1 | 甜菜 | 1033 | Seq385.MAB173.15.barley | 85 |
465 | beet|gb162|BQ591963_T1 | 甜菜 | 1034 | Seq368.MAB164.15.barley | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
466 | brachypodium|gb161.xeno|BE519575_T1 | 短柄草(brachypodium) | 1035 | Seq356.MAB157.15.sugarcane | 85 |
467 | brachypodium|gb161.xeno|BG368321_T1 | 短柄草 | 1036 | Seq247.MAB32.15.rice | 81 |
468 | brachypodium|gb161.xeno|BE400652_T1 | 短柄草 | 1037 | Seq368.MAB164.15.barley | 95 |
469 | brachypodium|gb161.xeno|AL502884_T1 | 短柄草 | 1038 | Seq210.MAB8.15.rice | 82 |
470 | brachypodium|gb161.xeno|BY836652_T1 | 短柄草 | 1039 | Seq385.MAB173.15.barley | 90 |
471 | brachypodium|gb161.xeno|BE414917_T1 | 短柄草 | 1040 | Seq309.MAB133.15.barley | 93 |
472 | brachypodium|gb161.xeno|BF202085_T1 | 短柄草 | 1041 | Seq291.MAB123.15.barley | 83 |
473 | brachypodium|gb161.xeno|BE406378_T1 | 短柄草 | 1042 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
474 | brachypodium|gb161.xeno|BE517562_T1 | 短柄草 | 1043 | Seq366.MAB163.15.barley | 85 |
475 | brachypodium|gb161.xeno|BE420294_T1 | 短柄草 | 1044 | Seq290.MAB122.15.maize | 85 |
476 | brachypodium|gb161.xeno|BG369416_T1 | 短柄草 | 1045 | Seq270.MAB45.15.wheat | 89 |
477 | brachypodium|gb161.xeno|BE406039_T2 | 短柄草 | 1046 | Seq241.MAB28.15.rice | 93 |
478 | brachypodium|gb161.xeno|BE418087_T1 | 短柄草 | 1047 | Seq325.MAB141.15.barley | 86 |
479 | brachypodium|gb161.xeno|BE470780_T1 | 短柄草 | 1048 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 81 |
480 | brachypodium|gb161.xeno|AV835424_T1 | 短柄草 | 1049 | Seq257.MAB38.15.wheat | 93 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
481 | brachypodium|gb161.xeno|BE398656_T1 | 短柄草 | 1050 | Seq308.MAB132.15.barley | 93 |
482 | brachypodium|gb161.xeno|BE437407_T1 | 短柄草 | 1051 | Seq311.MAB134.15.barley | 98 |
483 | brachypodium|gb161.xeno|BE406039_T3 | 短柄草 | 1052 | Seq333.MAB145.15.barley | 81 |
484 | brachypodium|gb161.xeno|BE490408_T1 | 短柄草 | 1053 | Seq264.MAB42.10.sorghum | 80 |
485 | brachypodium|gb161.xeno|BE403745_T1 | 短柄草 | 1054 | Seq379.MAB170.15.barley | 92 |
486 | brachypodium|gb161.xeno|BE490591_T1 | 短柄草 | 1055 | Seq366.MAB163.15.barley | 87 |
487 | brachypodium|gb161.xeno|BQ461470_T2 | 短柄草 | 1056 | Seq356.MAB157.15.sugarcane | 85 |
488 | brachypodium|gb161.xeno|BE517562_T2 | 短柄草 | 1057 | Seq366.MAB163.15.barley | 83 |
489 | brachypodium|gb161.xeno|BE413341_T1 | 短柄草 | 1058 | Seq336.MAB147.15.tobacco | 80 |
490 | brachypodium|gb161.xeno|BE515529_T1 | 短柄草 | 1059 | Seq259.MAB39.15.barley | 96 |
491 | brachypodium|gb161.xeno|DV471778_T1 | 短柄草 | 1060 | Seq348.MAB154.15.sugarcane | 83 |
492 | canola|gb161|EL587045_T1 | 油菜 | 1061 | Seq277.MAB50.15.arabidopsis | 87 |
493 | canola|gb161|CX279297_T1 | 油菜 | 1062 | Seq280.MAB91.10.arabidopsis | 85 |
494 | canola|gb161|CD815143_T1 | 油菜 | 1063 | Seq222.MAB16.15.rice | 80 |
495 | canola|gb161|CD831036_T1 | 油菜 | 1064 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 86 |
496 | canola|gb161|EE466962_T1 | 油菜 | 1065 | Seq360.MAB159.15.canola | 83 |
497 | canola|gb161|CN726580_T1 | 油菜 | 1066 | Seq305.MAB130.15.canola | 89 |
498 | canola|gb161|CD829644_T1 | 油菜 | 1067 | Seq373.MAB167.15.canola | 86 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
499 | canola|gb161|AY245887_T1 | 油菜 | 1068 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 87 |
500 | canola|gb161|EE411591_T1 | 油菜 | 1069 | Seq207.MAB6.15.arabidopsis | 88 |
501 | canola|gb161|DY020345_T1 | 油菜 | 1070 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 92 |
502 | canola|gb161|CD820718_T1 | 油菜 | 1071 | Seq360.MAB159.15.canola | 95 |
503 | canola|gb161|CX189134_T1 | 油菜 | 1072 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 81 |
504 | canola|gb161|EG021120_T1 | 油菜 | 1073 | Seq360.MAB159.15.canola | 83 |
505 | canola|gb161|ES906182_T1 | 油菜 | 1074 | Seq244.MAB30.15.arabidopsis | 92 |
506 | canola|gb161|ES911977_T1 | 油菜 | 1075 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 88 |
507 | canola|gb161|CD814410_T1 | 油菜 | 1076 | Seq217.MAB13.15.arabidopsis | 81 |
508 | canola|gb161|ES904177_T1 | 油菜 | 1077 | Seq208.MAB7.15.arabidopsis | 87 |
509 | canola|gb161|CD813775_T1 | 油菜 | 1078 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
510 | canola|gb161|CD824419_T1 | 油菜 | 1079 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 94 |
511 | canola|gb161|CD825454_T1 | 油菜 | 1080 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 90 |
512 | canola|gb161|CD834184_T1 | 油菜 | 1081 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 88 |
513 | canola|gb161|EE469078_T1 | 油菜 | 1082 | Seq370.MAB165.15.grape | 83 |
514 | canola|gb161|GFXAJ535111X1_T1 | 油菜 | 1083 | Seq305.MAB130.15.canola | 99 |
515 | canola|gb161|EE448267_T1 | 油菜 | 1084 | Seq222.MAB16.15.rice | 80 |
516 | canola|gb161|CX193415_T1 | 油菜 | 1085 | Seq237.MAB25.15.arabidopsis | 85 |
517 | canola|gb161|CD813278_T1 | 油菜 | 1086 | Seq375.MAB168.15.grape | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
518 | castorbean|gb160|MDL28401M000077_T1 | 蓖麻(castorbean) | 1087 | Seq370.MAB165.15.grape | 86 |
519 | castorbean|gb160|EE258294_T1 | 蓖麻 | 1088 | Seq256.MAB37.15.tomato | 87 |
520 | castorbean|gb160|MDL28066M000021_T1 | 蓖麻 | 1089 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
521 | castorbean|gb160|AM267339_T1 | 蓖麻 | 1090 | Seq222.MAB16.15.rice | 80 |
522 | castorbean|gb160|EG659656_T1 | 蓖麻 | 1091 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
523 | castorbean|gb160|EG656754_T1 | 蓖麻 | 1092 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 82 |
524 | castorbean|gb160|EE259826_T1 | 蓖麻 | 1093 | Seq362.MAB161.15.poplar | 83 |
525 | castorbean|gb160|EG659299_T1 | 蓖麻 | 1094 | Seq300.MAB 127.15.grape | 81 |
526 | castorbean|gb160|EE259565_T1 | 蓖麻 | 1095 | Seq276.MAB49.15.maize | 80 |
527 | castorbean|gb160|EE255133_T1 | 蓖麻 | 1096 | Seq321.MAB139.15.cotton | 84 |
528 | castorbean|gb160|MDL29822M003364_T1 | 蓖麻 | 1097 | Seq336.MAB147.15.tobacco | 82 |
529 | castorbean|gb160|EG661241_T1 | 蓖麻 | 1098 | Seq371.MAB166.15.poplar | 85 |
530 | centaurea|gb161|EH713943_T1 | 矢车菊(centaurea) | 1099 | Seq321.MAB139.15.cotton | 82 |
531 | centaurea|gb161|EH724589_T1 | 矢车菊 | 1100 | Seq256.MAB37.15.tomato | 84 |
532 | centaurea|gb161|EH717520_T1 | 矢车菊 | 1101 | Seq329.MAB143.15.tomato | 80 |
533 | centaurea|gb161|EH711566_T1 | 矢车菊 | 1102 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
534 | centaurea|gb161|EH713337_T1 | 矢车菊 | 1103 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
535 | centaurea|gb161|EH713628_T1 | 矢车菊 | 1104 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
536 | centaurea|gb161|EH738263_T1 | 矢车菊 | 1105 | Seq385.MAB173.15.barley | 80 |
537 | centaurea|gb161|EH727723_T1 | 矢车菊 | 1106 | Seq256.MAB37.15.tomato | 84 |
538 | cichorium|gb161|DT212291_T1 | 菊苣(cichorium) | 1107 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
539 | cichorium|gb161|DT211081_T1 | 菊苣 | 1108 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
540 | cichorium|gb161|EH692437_T1 | 菊苣 | 1109 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
541 | cichorium|gb161|DT212218_T1 | 菊苣 | 1110 | Seq256.MAB37.15.tomato | 89 |
542 | citrus|gb157.2|CB290836_T1 | 柑橘(citrus) | 1111 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
543 | citrus|gb157.2|BQ624861_T1 | 柑橘 | 1112 | Seq276.MAB49.15.maize | 82 |
544 | citrus|gb157.2|BQ624727_T1 | 柑橘 | 1113 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
545 | citrus|gb157.2|CB290836_T2 | 柑橘 | 1114 | Seq376.MAB168.15.grape | 86 |
546 | citrus|gb157.2|CX672218_T2 | 柑橘 | 1115 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 83 |
547 | citrus|gb157.2|CF504250_T1 | 柑橘 | 1116 | Seq222.MAB16.15.rice | 82 |
548 | citrus|gb157.2|CK933948_T1 | 柑橘 | 1117 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
549 | clover|gb162|BB926896_T1 | 三叶草(clover) | 1118 | Seq256.MAB37.15.tomato | 82 |
550 | clover|gb162|BB904696_T1 | 三叶草 | 1119 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 84 |
551 | coffea|gb157.2|DV676382_T1 | 咖啡(coffea) | 1120 | Seq256.MAB37.15.tomato | 91 |
552 | coffea|gb157.2|DV688680_T1 | 咖啡 | 1121 | Seq332.MAB144.15.grape | 83 |
553 | coffea|gb157.2|DQ124044_T1 | 咖啡 | 1122 | Seq303.MAB129.15.tomato | 80 |
554 | cotton|gb164|BF268276_T1 | 棉花 | 1123 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
555 | cotton|gb164|CO113031_T1 | 棉花 | 1124 | Seq319.MAB138.15.potato | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
556 | cotton|gb164|AI730186_T1 | 棉花 | 1125 | Seq256.MAB37.15.tomato | 81 |
557 | cotton|gb_164|CO103100_T1 | 棉花 | 1126 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
558 | cotton|gb164|BE051970_T1 | 棉花 | 1127 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
559 | cotton|gb164|AI725698_T1 | 棉花 | 1128 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
560 | cotton|gb164|AI728290_T1 | 棉花 | 1129 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
561 | cotton|gb164|AI055482_T1 | 棉花 | 1130 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
562 | cotton|gb164|ES794517_T1 | 棉花 | 1131 | Seq327.MAB142.15.cotton | 81 |
563 | cotton|gb164|BF268276_T2 | 棉花 | 1132 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
564 | cotton|gb164|CO109448_T1 | 棉花 | 1133 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
565 | cotton|gb164|DT459182_T1 | 棉花 | 1134 | Seq375.MAB168.15.grape | 84 |
566 | cotton|gb164|BG441162_T1 | 棉花 | 1135 | Seq256.MAB37.15.tomato | 85 |
567 | cowpea|gb165|FF390508_T1 | 豇豆(cowpea) | 1136 | Seq256.MAB37.15.tomato | 84 |
568 | cowpea|gb165|FF390203_T1 | 豇豆 | 1137 | Seq259.MAB39.15.barley | 86 |
569 | cowpea|gb165|DQ267475_T1 | 豇豆 | 1138 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
570 | cowpea|gb165|FF382851_T1 | 豇豆 | 1139 | Seq224.MAB17.15.soybean | 89 |
571 | cowpea|gb165|FF394009_T1 | 豇豆 | 1140 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
572 | dandelion|gb161|DQ160099_T1 | 蒲公英(dandelion) | 1141 | Seq376.MAB168.15.grape | 82 |
573 | dandelion|gb161|DY823013_T1 | 蒲公英 | 1142 | Seq256.MAB37.15.tomato | 82 |
574 | dandelion|gb161|DY820394_T2 | 蒲公英 | 1143 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
575 | dandelion|gb161|DY813450_T2 | 蒲公英 | 1144 | Seq256.MAB37.15.tomato | 85 |
576 | dandelion|gb161|DY820394_T1 | 蒲公英 | 1145 | Seq256.MAB37.15.tomato | 87 |
577 | fescue|gb161|DT687914_T1 | 牛毛草(fescue) | 1146 | Seq290.MAB122.15.maize | 93 |
578 | fescue|gb161|DT702477_T1 | 牛毛草 | 1147 | Seq291.MAB123.15.barley | 87 |
579 | fescue|gb161|DT705881_T1 | 牛毛草 | 1148 | Seq311.MAB134.15.barley | 96 |
580 | fescue|gb161|DT682501_T1 | 牛毛草 | 1149 | Seq321.MAB139.15.cotton | 82 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
581 | fescue|gb161|DT699000_T1 | 牛毛草 | 1150 | Seq309.MAB133.15.barley | 90 |
582 | fescue|gb161|DT706685_T1 | 牛毛草 | 1151 | Seq259.MAB39.15.barley | 96 |
583 | fescue|gb161|DT698326_T1 | 牛毛草 | 1152 | Seq368.MAB164.15.barley | 95 |
584 | fescue|gb161|DT677453_T1 | 牛毛草 | 1153 | Seq379.MAB170.15.barley | 95 |
585 | fescue|gb161|DT674734_T1 | 牛毛草 | 1154 | Seq333.MAB145.15.barley | 88 |
586 | ginger|gb164|DY377113_T1 | 姜(ginger) | 1155 | Seq223.MAB16.15.rice | 81 |
587 | grape|gb160|BQ792651_T1 | 葡萄 | 1156 | Seq222.MAB16.15.rice | 84 |
588 | grape|gb160|BQ793581_T1 | 葡萄 | 1157 | Seq371.MAB166.15.poplar | 80 |
589 | iceplant|gb164|BM658279_T1 | 冰叶日中花(iceplant) | 1158 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
590 | iceplant|gb164|BE034140_T1 | 冰叶日中花 | 1159 | Seq303.MAB129.15.tomato | 81 |
591 | ipomoea|gb157.2|AU224303_T1 | 番薯(ipomoea) | 1160 | Seq256.MAB37.15.tomato | 91 |
592 | ipomoea|gb157.2|AU224807_T1 | 番薯 | 1161 | Seq385.MAB173.15.barley | 80 |
593 | ipomoea|gb157.2|CJ758382_T1 | 番薯 | 1162 | Seq371.MAB166.15.poplar | 83 |
594 | lettuce|gb157.2|DW048067_T1 | 莴苣(lettuce) | 1163 | Seq256.MAB37.15.tomato | 87 |
595 | lettuce|gb157.2|DW046482_T1 | 莴苣 | 1164 | Seq256.MAB37.15.tomato | 85 |
596 | lettuce|gb157.2|DW062524_T1 | 莴苣 | 1165 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
597 | lettuce|gb157.2|DW048641_T1 | 莴苣 | 1166 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
598 | lettuce|gb157.2|DW055618_T1 | 莴苣 | 1167 | Seq371.MAB166.15.poplar | 80 |
599 | lettuce|gb157.2|DY961700_T2 | 莴苣 | 1168 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 83 |
600 | lettuce|gb157.2|DW075962_T1 | 莴苣 | 1169 | Seq256.MAB37.15.tomato | 87 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
601 | lettuce|gb157.2|DW047202_T1 | 莴苣 | 1170 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
602 | lotus|gb157.2|BF177835_T1 | 莲 | 1171 | Seq256.MAB37.15.tomato | 90 |
603 | lotus|gb157.2|BW601503_T1 | 莲 | 1172 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 84 |
604 | maize|gb164|T15319_T2 | 玉米 | 1173 | Seq276.MAB49.15.maize | 96 |
605 | maize|gb164|AI649734_T1 | 玉米 | 1174 | Seq264.MAB42.10.sorghum | 90 |
606 | maize|gb164|BE638692_T1 | 玉米 | 1175 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 88 |
607 | maize|gb164|AW498283_T1 | 玉米 | 1176 | Seq210.MAB8.15.rice | 80 |
608 | maize|gb164|AI622375_T1 | 玉米 | 1177 | Seq309.MAB133.15.barley | 90 |
609 | maize|gb164|BQ034409_T1 | 玉米 | 1178 | Seq290.MAB122.15.maize | 100 |
610 | maize|gb164|EC895235_T1 | 玉米 | 1179 | Seq210.MAB8.15.rice | 86 |
611 | maize|gb164|AI947795_T2 | 玉米 | 1180 | Seq325.MAB141.15.barley | 80 |
612 | maize|gb164|AI947974_T1 | 玉米 | 1181 | Seq227.MAB19.15.sorghum | 93 |
613 | maize|gb164|AI619086_T1 | 玉米 | 1182 | Seq346.MAB153.15.sugarcane | 95 |
614 | maize|gb164|AA143925_T1 | 玉米 | 1183 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 94 |
615 | maize|gb164|AW179463_T1 | 玉米 | 1184 | Seq321.MAB139.15.cotton | 82 |
616 | maize|gb164|BE051802_T1 | 玉米 | 1185 | Seq231.MAB21.15.rice | 89 |
617 | maize|gb164|AI942091_T1 | 玉米 | 1186 | Seq309.MAB133.15.barley | 89 |
618 | maize|gb164|AI944064_T1 | 玉米 | 1187 | Seq383.MAB172.15.sugarcane | 96 |
619 | maize|gb164|T15319_T1 | 玉米 | 1188 | Seq276.MAB49.15.maize | 96 |
620 | maize|gb164|AI782993_T1 | 玉米 | 1189 | Seq241.MAB28.15.rice | 82 |
621 | maize|gb164|T26945_T1 | 玉米 | 1190 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
622 | maize|gb164|AI941749_T1 | 玉米 | 1191 | Seq269.MAB45.15.wheat | 91 |
623 | maize|gb164|AI891255_T1 | 玉米 | 1192 | Seq311.MAB134.15.barley | 95 |
624 | maize|gb164|CD975046_T1 | 玉米 | 1193 | Seq203.MAB3.15.rice | 88 |
625 | maize|gb164|AW360563_T1 | 玉米 | 1194 | Seq241.MAB28.15.rice | 81 |
626 | maize|gb164|AI901860_T1 | 玉米 | 1195 | Seq259.MAB39.15.barley | 85 |
627 | maize|gb164|AI948098_T1 | 玉米 | 1196 | Seq381.MAB171.15.sugarcane | 95 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
628 | maize|gb164|AI444730_T1 | 玉米 | 1197 | Seq241.MAB28.15.rice | 83 |
629 | maize|gb164|AW216308_T1 | 玉米 | 1198 | Seq288.MAB121.15.sugarcane | 89 |
630 | maize|gb164|BM268089_T1 | 玉米 | 1199 | Seq381.MAB171.15.sugarcane | 92 |
631 | maize|gb164|A1438597_T1 | 玉米 | 1200 | Seq352.MAB155.15.sorghum | 91 |
632 | maize|gb164|AW927739_T1 | 玉米 | 1201 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 97 |
633 | maize|gb164|AI891255_T2 | 玉米 | 1202 | Seq311.MAB134.15.barley | 95 |
634 | maize|gb164|AI920760_T1 | 玉米 | 1203 | Seq286.MAB104.15.rice | 89 |
635 | medicago|gb157.2|AI974487_T1 | 苜蓿 | 1204 | Seq370.MAB165.15.grape | 87 |
636 | medicago|gb157.2|BE325770_T1 | 苜蓿 | 1205 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
637 | medicago|gb157.2|AW685603_T1 | 苜蓿 | 1206 | Seq376.MAB168.15.grape | 82 |
638 | medicago|gb157.2|AL368329_T1 | 苜蓿 | 1207 | Seq311.MAB134.15.barley | 80 |
639 | medicago|gb157.2|AW688497_T1 | 苜蓿 | 1208 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
640 | medicago|gb157.2|AL377093_T1 | 苜蓿 | 1209 | Seq224.MAB17.15.soybean | 80 |
641 | medicago|gb157.2|AI974241_T1 | 苜蓿 | 1210 | Seq334.MAB146.15.tomato | 83 |
642 | medicago|gb157.2|BF632135_T1 | 苜蓿 | 1211 | Seq344.MAB152.15.grape | 85 |
643 | melon|gb165|DV633691_T1 | 瓜(melon) | 1212 | Seq376.MAB168.15.grape | 80 |
644 | melon|gb165|DV632564_T1 | 瓜 | 1213 | Seq368.MAB164.15.barley | 80 |
645 | melon|gb165|DV633584_T1 | 瓜 | 1214 | Seq344.MAB152.15.grape | 86 |
646 | melon|gb165|AM714958_T1 | 瓜 | 1215 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
647 | nicotiana_benthamiana|gb162|EH364164_T1 | nicotiana_benthamiana | 1216 | Seq256.MAB37.15.tomato | 95 |
648 | oat|gb164|CN816769_T1 | 燕麦(oat) | 1217 | Seq368.MAB164.15.barley | 94 |
649 | oat|gb164|BE439108_T1 | 燕麦 | 1218 | Seq312.MAB134.10.barley | 85 |
650 | onion|gb162|CF437899_T1 | 洋葱(onion) | 1219 | Seq256.MAB37.15.tomato | 81 |
651 | onion|gb162|CF437716_T1 | 洋葱 | 1220 | Seq276.MAB49.15.maize | 82 |
652 | onion|gb162|CF439314_T1 | 洋葱 | 1221 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
653 | papaya|gb165|EX245596_T1 | 番木瓜(papaya) | 1222 | Seq370.MAB165.15.grape | 88 |
654 | papaya|gb165|EX299345_T1 | 番木瓜 | 1223 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 82 |
655 | papaya|gb165|EX248971_T1 | 番木瓜 | 1224 | Seq362.MAB161.15.poplar | 86 |
656 | papaya|gb165|EX227965_T1 | 番木瓜 | 1225 | Seq332.MAB144.15.grape | 83 |
657 | papaya|gb165|EX264060_T1 | 番木瓜 | 1226 | Seq376.MAB168.15.grape | 89 |
658 | papaya|gb165|EX291966_T1 | 番木瓜 | 1227 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
659 | peach|gb157.2|BU039922_T1 | 桃(peach) | 1228 | Seq300.MAB127.15.grape | 82 |
660 | peach|gb157.2|BU039373_T1 | 桃 | 1229 | Seq370.MAB165.15.grape | 83 |
661 | peach|gb157.2|AJ631618_T1 | 桃 | 1230 | Seq276.MAB49.15.maize | 80 |
662 | peach|gb157.2|BU040470_T1 | 桃 | 1231 | Seq376.MAB168.15.grape | 89 |
663 | peach|gb157.2|BU039381_T1 | 桃 | 1232 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
664 | peanut|gb161|ES754023_T1 | 花生 | 1233 | Seq332.MAB144.15.grape | 80 |
665 | peanut|gb161|EH043199_T1 | 花生 | 1234 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
666 | pepper|gb157.2|BM063531_T1 | 胡椒(pepper) | 1235 | Seq256.MAB37.15.tomato | 96 |
667 | pepper|gb157.2|BM062846_T1 | 胡椒 | 1236 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 82 |
668 | pepper|gb157.2|BM061776_T1 | 胡椒 | 1237 | Seq329.MAB143.15.tomato | 90 |
669 | pepper|gb157.2|BM064151_T1 | 胡椒 | 1238 | Seq306.MAB131.15.tomato | 88 |
670 | pepper|gb157.2|BM061313_T1 | 胡椒 | 1239 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 86 |
671 | pepper|gb157.2|BI480604_T1 | 胡椒 | 1240 | Seq276.MAB49.15.maize | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
672 | periwinkle|gb164|EG559012_T1 | 玉黍螺(periwinkle) | 1241 | Seq259.MAB39.15.barley | 80 |
673 | petunia|gb157.2|CV292753_T1 | 矮牵牛(petunia) | 1242 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
674 | petunia|gb157.2|CV298220_T1 | 矮牵牛 | 1243 | Seq283.MAB99.15.tomato | 81 |
675 | pine|gb157.2|DR088714_T1 | 松树(pine) | 1244 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 80 |
676 | pine|gb157.2|AW290504_T1 | 松树 | 1245 | Seq344.MAB152.15.grape | 82 |
677 | pineapple|gb157.2|CO731309_T1 | 菠萝(pineapple) | 1246 | Seq222.MAB16.15.rice | 83 |
678 | pineapple|gb157.2|DT336648_T1 | 菠萝 | 1247 | Seq376.MAB168.15.grape | 81 |
679 | pineapple|gb157.2|CO731994_T1 | 菠萝 | 1248 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
680 | poplar|gb157.2|AI162293_T1 | 白杨 | 1249 | Seq298.MAB126.15.grape | 82 |
681 | poplar|gb157.2|AI165439_T1 | 白杨 | 1250 | Seq298.MAB126.15.grape | 80 |
682 | poplar|gb157.2|AI162293_T3 | 白杨 | 1251 | Seq298.MAB126.15.grape | 80 |
683 | poplar|gb157.2|BI120274_T3 | 白杨 | 1252 | Seq256.MAB37.15.tomato | 81 |
684 | poplar|gb157.2|BI120274_T2 | 白杨 | 1253 | Seq344.MAB152.15.grape | 89 |
685 | poplar|gb157.2|BF299457_T1 | 白杨 | 1254 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
686 | poplar|gb157.2|BI120274_T1 | 白杨 | 1255 | Seq344.MAB152.15.grape | 86 |
687 | poplar|gb157.2|BI122516_T1 | 白杨 | 1256 | Seq362.MAB161.15.poplar | 90 |
688 | poplar|gb157.2|BU821689_T1 | 白杨 | 1257 | Seq321.MAB139.15.cotton | 81 |
689 | poplar|gb157.2|AI166955_T1 | 白杨 | 1258 | Seq344.MAB152.15.grape | 87 |
690 | poplar|gb157.2|BI069450_T1 | 白杨 | 1259 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
691 | potato|gb157.2|BG594910_T1 | 马铃薯 | 1260 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
692 | potato|gb157.2|AJ487418_T1 | 马铃薯 | 1261 | Seq321.MAB139.15.cotton | 82 |
693 | potato|gb157.2|BQ516076_T2 | 马铃薯 | 1262 | Seq389.MAB175.15.tomato | 97 |
694 | potato|gb157.2|BE921143_T1 | 马铃薯 | 1263 | Seq349.MAB154.15.sugarcane | 80 |
695 | potato|gb157.2|BG592541_T1 | 马铃薯 | 1264 | Seq256.MAB37.15.tomato | 90 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
696 | potato|gb157.2|BF052848_T1 | 马铃薯 | 1265 | Seq321.MAB139.15.cotton | 81 |
697 | potato|gb157.2|BF460150_T1 | 马铃薯 | 1266 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
698 | potato|gb157.2|BG097985_T1 | 马铃薯 | 1267 | Seq303.MAB129.15.tomato | 91 |
699 | potato|gb157.2|BE923564_T1 | 马铃薯 | 1268 | Seq342.MAB151.15.potato | 90 |
700 | potato|gb157.2|X86021_T1 | 马铃薯 | 1269 | Seq334.MAB146.15.tomato | 97 |
701 | potato|gb157.2|BG594768_T1 | 马铃薯 | 1270 | Seq329.MAB143.15.tomato | 97 |
702 | potato|gb157.2|BF154203_T1 | 马铃薯 | 1271 | Seq256.MAB37.15.tomato | 98 |
703 | potato|gb157.2|BE344306_T1 | 马铃薯 | 1272 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 82 |
704 | potato|gb157.2|BF460309_T1 | 马铃薯 | 1273 | Seq329.MAB143.15.tomato | 98 |
705 | potato|gb157.2|BQ516076_T1 | 马铃薯 | 1274 | Seq390.MAB175.15.tomato | 96 |
706 | potato|gb157.2|BI176616_T1 | 马铃薯 | 1275 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
707 | potato|gb157.2|BQ117692_T1 | 马铃薯 | 1276 | Seq354.MAB156.15.tobacco | 86 |
708 | potato|gb157.2|AJ487418_T2 | 马铃薯 | 1277 | Seq321.MAB139.15.cotton | 81 |
709 | potato|gb157.2|BG351229_T1 | 马铃薯 | 1278 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 81 |
710 | potato|gb157.2|AJ487418_T3 | 马铃薯 | 1279 | Seq321.MAB139.15.cotton | 84 |
711 | potato|gb157.2|BF154154_T1 | 马铃薯 | 1280 | Seq256.MAB37.15.tomato | 99 |
712 | radish|gb164|EY895633_T1 | 萝卜(radish) | 1281 | Seq373.MAB167.15.canola | 93 |
713 | radish|gb164|EX772944_T1 | 萝卜 | 1282 | Seq356.MAB157.15.sugarcane | 83 |
714 | radish|gb164|EW725846_T1 | 萝卜 | 1283 | Seq237.MAB25.15.arabidopsis | 84 |
715 | radish|gb164|EV527306_T1 | 萝卜 | 1284 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 94 |
716 | radish|gb164|EV565850_T1 | 萝卜 | 1285 | Seq277.MAB50.15.arabidopsis | 90 |
717 | radish|gb164|EX772722_T1 | 萝卜 | 1286 | Seq360.MAB159.15.canola | 88 |
718 | radish|gb164|EX775718_T1 | 萝卜 | 1287 | Seq376.MAB168.15.grape | 81 |
719 | radish|gb164|EV535278_T1 | 萝卜 | 1288 | Seq360.MAB159.15.canola | 81 |
720 | radish|gb164|EV565334_T1 | 萝卜 | 1289 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 91 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
721 | radish|gb164|EV528083_T1 | 萝卜 | 1290 | Seq252.MAB35.15.arabidopsis | 80 |
722 | radish|gb164|T25168_T1 | 萝卜 | 1291 | Seq376.MAB 168.15.grape | 80 |
723 | radish|gb164|EV544010_T1 | 萝卜 | 1292 | Seq229.MAB20.15.arabidopsis | 91 |
724 | radish|gb164|EW713752_T1 | 萝卜 | 1293 | Seq373.MAB167.15.canola | 86 |
725 | radish|gb164|EV568565_T1 | 萝卜 | 1294 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 88 |
726 | radish|gb164|EV543867_T1 | 萝卜 | 1295 | Seq373.MAB167.15.canola | 88 |
727 | radish|gb164|EX770974_T1 | 萝卜 | 1296 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 85 |
728 | radish|gb164|EV566819_T1 | 萝卜 | 1297 | Seq217.MAB13.15.arabidopsis | 81 |
729 | rice|gb157.2|NM001059403_T1 | 水稻 | 1298 | Seq261.MAB40.15.rice | 84 |
730 | rice|gb157.2|C28755_T1 | 水稻 | 1299 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
731 | rice|gb157.2|AA750806_T1 | 水稻 | 1300 | Seq290.MAB122.15.maize | 83 |
732 | rice|gb157.2|AA751345_T1 | 水稻 | 1301 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
733 | rice|gb157.2|BE040195_T6 | 水稻 | 1302 | Seq346.MAB153.15.sugarcane | 95 |
734 | rice|gb157.2|BI118752_T1 | 水稻 | 1303 | Seq276.MAB49.15.maize | 94 |
735 | rice|gb157.2|AW070148_T1 | 水稻 | 1304 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 87 |
736 | rice|gb157.2|AW069929_T1 | 水稻 | 1305 | Seq309.MAB133.15.barley | 93 |
737 | rice|gb157.2|AW070094_T1 | 水稻 | 1306 | Seq274.MAB48.15.rice | 83 |
738 | rice|gb157.2|AA753115_T4 | 水稻 | 1307 | Seq259.MAB39.15.barley | 90 |
739 | rice|gb157.2|BI795037_T4 | 水稻 | 1308 | Seq385.MAB173.15.barley | 100 |
740 | rice|gb157.2|AU092454_T1 | 水稻 | 1309 | Seq274.MAB48.15.rice | 100 |
741 | rice|gb157.2|AA753115_T3 | 水稻 | 1310 | Seq259.MAB39.15.barley | 91 |
742 | rice|gb157.2|BE040195_T1 | 水稻 | 1311 | Seq346.MAB153.15.sugarcane | 91 |
743 | rice|gb157.2|CB624284_T1 | 水稻 | 1312 | Seq264.MAB42.10.sorghum | 82 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
744 | rice|gb157.2|AU030125_T3 | 水稻 | 1313 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 88 |
745 | rice|gb157.2|AU164313_T1 | 水稻 | 1314 | Seq270.MAB45.15.wheat | 84 |
746 | rice|gb157.2|BI799463_T1 | 水稻 | 1315 | Seq221.MAB15.15.soraghum | 85 |
747 | rice|gb157.2|AW070094_T3 | 水稻 | 1316 | Seq274.MAB48.15.rice | 80 |
748 | rice|gb157.2|AA753115_T1 | 水稻 | 1317 | Seq259.MAB39.15.barley | 91 |
749 | rice|gb157.2|AU093322_T2 | 水稻 | 1318 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 85 |
750 | rice|gb157.2|AU030125_T1 | 水稻 | 1319 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
751 | rice|gb157.2|AA752703_T1 | 水稻 | 1320 | Seq295.MAB125.15.rice | 88 |
752 | rice|gb157.2|NM001067464_T1 | 水稻 | 1321 | Seq205.MAB4.15.rice | 93 |
753 | rice|gb157.2|NM001052309_T1 | 水稻 | 1322 | Seq295.MAB125.15.rice | 91 |
754 | rice|gb157.2|CA763128_T2 | 水稻 | 1323 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
755 | rice|gb157.2|AW070148_T2 | 水稻 | 1324 | Seq348.MAB154.15.sugarcane | 87 |
756 | rice|gb157.2|AU093322_T1 | 水稻 | 1325 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 86 |
757 | rice|gb157.2|AA753115_T5 | 水稻 | 1326 | Seq259.MAB39.15.barley | 94 |
758 | rice|gb157.2|AU030125_T4 | 水稻 | 1327 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
759 | rye|gb164|BF429408_T1 | 黑麦(rye) | 1328 | Seq309.MAB133.15.barley | 97 |
760 | rye|gb164|BE494847_T1 | 黑麦 | 1329 | Seq368.MAB164.15.barley | 97 |
761 | safflower|gb162|EL373402_T1 | 红花(safflower) | 1330 | Seq376.MAB168.15.grape | 81 |
762 | safflower|gb162|EL374175_T1 | 红花 | 1331 | Seq259.MAB39.15.barley | 83 |
763 | safflower|gb162|EL377332_T1 | 红花 | 1332 | Seq385.MAB173.15.barley | 81 |
764 | safflower|gb162|EL373487_T1 | 红花 | 1333 | Seq263.MAB42.15.sorghum | 80 |
765 | safflower|gb162|EL374095_T1 | 红花 | 1334 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
766 | safflower|gb162|EL382051_T1 | 红花 | 1335 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
767 | safflower|gb162|EL409148_T1 | 红花 | 1336 | Seq385.MAB173.15.barley | 80 |
768 | sorghum|gb161.xeno|AW224927_T1 | 高粱 | 1337 | Seq288.MAB121.15.sugarcane | 94 |
769 | sorghum|gb161.xeno|T26945_T2 | 高粱 | 1338 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
770 | sorghum|gb161.xeno|AI932179_T3 | 高粱 | 1339 | Seq286.MAB104.15.rice | 91 |
771 | sorghum|gb161.xeno|T15319_T1 | 高粱 | 1340 | Seq276.MAB49.15.maize | 97 |
772 | sorghum|gb161.xeno|A1615215_T1 | 高粱 | 1341 | Seq248.MAB33.15.maize | 92 |
773 | sorghum|gb161.xeno|BG102066_T2 | 高粱 | 1342 | Seq290.MAB122.15.maize | 90 |
774 | sorghum|gb161.xeno|AW672419_T2 | 高粱 | 1343 | Seq276.MAB49.15.maize | 97 |
775 | sorghum|gb161.xeno|AW672419_T3 | 高粱 | 1344 | Seq276.MAB49.15.maize | 95 |
776 | sorghum|gb161.xeno|AI901860_T1 | 高粱 | 1345 | Seq259.MAB39.15.barley | 84 |
777 | sorghum|gb161.xeno|AI621995_T3 | 高粱 | 1346 | Seq384.MAB172.15.sugarcane | 97 |
778 | sorghum|gb161.xeno|AI881418_T2 | 高粱 | 1347 | Seq264.MAB42.10.sorghum | 100 |
779 | sorghum|gb161.xeno|AI891255_T1 | 高粱 | 1348 | Seq311.MAB134.15.barley | 95 |
780 | sorghum|gb161.xeno|AI782993_T1 | 高粱 | 1349 | Seq241.MAB28.15.rice | 84 |
781 | sorghum|gb161.xeno|AI724629_T1 | 高粱 | 1350 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 99 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
782 | sorghum|gb161.xeno|AA143925_T1 | 高粱 | 1351 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 100 |
783 | sorghum|gb161.xeno|AI621995_T2 | 高粱 | 1352 | Seq383.MAB172.15.sugarcane | 99 |
784 | sorghum|gb161.xeno|T26945_T1 | 高粱 | 1353 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
785 | sorghum|gb161.xeno|AW179463_T1 | 高粱 | 1354 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
786 | sorghum|gb161.xeno|ZMU90944_T2 | 高粱 | 1355 | Seq367.MAB163.15.barley | 80 |
787 | sorghum|gb161.xeno|T15319_T2 | 高粱 | 1356 | Seq276.MAB49.15.maize | 95 |
788 | sorghum|gb161.xeno|AI621995_T1 | 高粱 | 1357 | Seq383.MAB172.15.sugarcane | 99 |
789 | sorghum|gb161.xeno|AI932179_T1 | 高粱 | 1358 | Seq286.MAB104.15.rice | 90 |
790 | sorghum|gb161.xeno|AI621995_T4 | 高粱 | 1359 | Seq383.MAB172.15.sugarcane | 99 |
791 | sorghum|gb161.xeno|ZMU90944_T3 | 高粱 | 1360 | Seq367.MAB163.15.barley | 80 |
792 | sorghum|gb161.xeno|AI665229_T2 | 高粱 | 1361 | Seq346.MAB153.15.sugarcane | 96 |
793 | sorghum|gb161.xeno|AI939836_T1 | 高粱 | 1362 | Seq309.MAB133.15.barley | 92 |
794 | sorghum|gb161.xeno|BI099068_T1 | 高粱 | 1363 | Seq270.MAB45.15.wheat | 83 |
795 | sorghum|gb161.xeno|AI665229_T1 | 高粱 | 1364 | Seq346.MAB153.15.sugarcane | 96 |
796 | sorghum|gb161.xeno|AW672419_T1 | 高粱 | 1365 | Seq276.MAB49.15.maize | 97 |
797 | sorghum|gb161.xeno|AW498283_T1 | 高粱 | 1366 | Seq210.MAB8.15.rice | 83 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
798 | sorghum|gb161.xeno|AW923775_T1 | 高粱 | 1367 | Seq231.MAB21.15.rice | 88 |
799 | sorghum|gb161.xeno|T15319_T3 | 高粱 | 1368 | Seq276.MAB49.15.maize | 85 |
800 | soybean|gb162|BG839539_T1 | 大豆 | 1369 | Seq368.MAB164.15.barley | 80 |
801 | soybean|gb162|CA783290_T1 | 大豆 | 1370 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
802 | soybean|gb162|BU551043_T1 | 大豆 | 1371 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
803 | soybean|gb162|EV282184_T1 | 大豆 | 1372 | Seq371.MAB166.15.poplar | 82 |
804 | soybean|gb162|BI967468_T1 | 大豆 | 1373 | Seq368.MAB164.15.barley | 80 |
805 | soybean|gb162|BI321879_T1 | 大豆 | 1374 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
806 | soybean|gb162|AW132704_T1 | 大豆 | 1375 | Seq256.MAB37.15.tomato | 90 |
807 | soybean|gb162|BU764498_T1 | 大豆 | 1376 | Seq256.MAB37.15.tomato | 86 |
808 | soybean|gb162|CA953156_T1 | 大豆 | 1377 | Seq298.MAB126.15.grape | 80 |
809 | soybean|gb162|CF922618_T1 | 大豆 | 1378 | Seq259.MAB39.15.barley | 84 |
810 | soybean|gb162|BU544425_T1 | 大豆 | 1379 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 81 |
811 | soybean|gb162|BU765332_T1 | 大豆 | 1380 | Seq233.MAB22.15.tomato | 80 |
812 | soybean|gb162|CA936077_T1 | 大豆 | 1381 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
813 | soybean|gb162|BE823013_T1 | 大豆 | 1382 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
814 | soybean|gb162|CD417415_T1 | 大豆 | 1383 | Seq370.MAB165.15.grape | 85 |
815 | soybean|gb162|BE660691_T1 | 大豆 | 1384 | Seq362.MAB161.15.poplar | 81 |
816 | soybean|gb162|CD395628_T1 | 大豆 | 1385 | Seq370.MAB165.15.grape | 82 |
817 | soybean|gb162|BU549206_T2 | 大豆 | 1386 | Seq259.MAB39.15.barley | 80 |
818 | soybean|gb162|AW351120_T1 | 大豆 | 1387 | Seq298.MAB126.15.grape | 82 |
819 | soybean|gb162|AW132704_T2 | 大豆 | 1388 | Seq256.MAB37.15.tomato | 90 |
820 | soybean|gb162|BE584244_T1 | 大豆 | 1389 | Seq256.MAB37.15.tomato | 91 |
821 | spruce|gb162|CO234968_T1 | 云杉(spruce) | 1390 | Seq344.MAB152.15.grape | 83 |
822 | spurge|gb161|DV146052_T1 | 大戟(spurge) | 1391 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 81 |
823 | spurge|gb161|DV127024_T1 | 大戟 | 1392 | Seq344.MAB152.15.grape | 83 |
824 | spurge|gb161|DV124157_T1 | 大戟 | 1393 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
825 | strawberry|gb164|EX683450_T1 | 草莓(strawberry) | 1394 | Seq348.MAB154.15.sugarcane | 81 |
826 | strawberry|gb164|EX683265_T1 | 草莓 | 1395 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
827 | strawberry|gb164|DY675409_T1 | 草莓 | 1396 | Seq256.MAB37.15.tomato | 81 |
828 | sugarcane|gb157.2|CA115287_T1 | 甘蔗 | 1397 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 88 |
829 | sugarcane|gb157.2|CA216001_T1 | 甘蔗 | 1398 | Seq259.MAB39.15.barley | 85 |
830 | sugarcane|gb157.2|CA072819_T1 | 甘蔗 | 1399 | Seq241.MAB28.15.rice | 83 |
831 | sugarcane|gb157.2|CA125036_T1 | 甘蔗 | 1400 | Seq291.MAB123.15.barley | 82 |
832 | sugarcane|gb157.2|CA071646_T1 | 甘蔗 | 1401 | Seq286.MAB104.15.rice | 90 |
833 | sugarcane|gb157.2|CA117936_T2 | 甘蔗 | 1402 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 93 |
834 | sugarcane|gb157.2|BQ537163_T1 | 甘蔗 | 1403 | Seq276.MAB49.15.maize | 96 |
835 | sugarcane|gb157.2|CA074253_T1 | 甘蔗 | 1404 | Seq241.MAB28.15.rice | 83 |
836 | sugarcane|gb157.2|CA102030_T1 | 甘蔗 | 1405 | Seq385.MAB173.15.barley | 85 |
837 | sugarcane|gb157.2|CA068084_T1 | 甘蔗 | 1406 | Seq366.MAB163.15.barley | 80 |
838 | sugarcane|gb157.2|CA233048_T1 | 甘蔗 | 1407 | Seq290.MAB122.15.maize | 80 |
839 | sugarcane|gb157.2|CA090429_T1 | 甘蔗 | 1408 | Seq288.MAB121.15.sugarcane | 95 |
840 | sugarcane|gb157.2|CA095299_T1 | 甘蔗 | 1409 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
841 | sugarcane|gb157.2|BQ533298_T1 | 甘蔗 | 1410 | Seq311.MAB134.15.barley | 95 |
842 | sugarcane|gb157.2|CA107649_T1 | 甘蔗 | 1411 | Seq248.MAB33.15.maize | 90 |
843 | sugarcane|gb157.2|BQ536274_T1 | 甘蔗 | 1412 | Seq231.MAB21.15.rice | 88 |
844 | sugarcane|gb157.2|CA117936_T1 | 甘蔗 | 1413 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 94 |
845 | sugarcane|gb157.2|BQ533234_T1 | 甘蔗 | 1414 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 99 |
846 | sugarcane|gb157.2|CA072307_T1 | 甘蔗 | 1415 | Seq309.MAB133.15.barley | 93 |
847 | sugarcane|gb157.2|CA073476_T1 | 甘蔗 | 1416 | Seq290.MAB122.15.maize | 91 |
848 | sugarcane|gb157.2|CA065809_T1 | 甘蔗 | 1417 | Seq366.MAB163.15.barley | 80 |
849 | sugarcane|gb157.2|CA072307_T2 | 甘蔗 | 1418 | Seq309.MAB133.15.barley | 93 |
850 | sunflower|gb162|DY909111_T1 | 向日葵 | 1419 | Seq336.MAB147.15.tobacco | 83 |
851 | sunflower|gb162|DY941035_T1 | 向日葵 | 1420 | Seq376.MAB168.15.grape | 82 |
852 | sunflower|gb162|CD857487_T1 | 向日葵 | 1421 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
853 | sunflower|gb162|DY942252_T1 | 向日葵 | 1422 | Seq311.MAB134.15.barley | 80 |
854 | sunflower|gb162|CD850784_T1 | 向日葵 | 1423 | Seq256.MAB37.15.tomato | 83 |
855 | sunflower|gb162|BQ968872_T1 | 向日葵 | 1424 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 83 |
856 | sunflower|gb162|EE616266_T1 | 向日葵 | 1425 | Seq256.MAB37.15.tomato | 84 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
857 | sunflower|gb162|EE641694_T1 | 向日葵 | 1426 | Seq256.MAB37.15.tomato | 84 |
858 | sunflower|gb162|DY924220_T1 | 向日葵 | 1427 | Seq259.MAB39.15.barley | 81 |
859 | sunflower|gb162|DY910907_T1 | 向日葵 | 1428 | Seq370.MAB165.15.grape | 80 |
860 | sunflower|gb162|AY029172_T1 | 向日葵 | 1429 | Seq321.MAB139.15.cotton | 81 |
861 | sunflower|gb162|DY909077_T1 | 向日葵 | 1430 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
862 | sunflower|gb162|DY921635_T1 | 向日葵 | 1431 | Seq376.MAB168.15.grape | 83 |
863 | sunflower|gb162|DY913894_T1 | 向日葵 | 1432 | Seq256.MAB37.15.tomato | 82 |
864 | switchgrass|gb165|FE608718_T1 | 柳枝稷(switchgrass) | 1433 | Seq370.MAB165.15.grape | 81 |
865 | switchgrass|gb165|FE624581_T1 | 柳枝稷 | 1434 | Seq333.MAB145.15.barley | 87 |
866 | switchgrass|gb165|FE604798_T1 | 柳枝稷 | 1435 | Seq269.MAB45.15.wheat | 90 |
867 | switchgrass|gb165|DN151012_T1 | 柳枝稷 | 1436 | Seq309.MAB133.15.barley | 90 |
868 | switchgrass|gb165|FE619903_T1 | 柳枝稷 | 1437 | Seq383.MAB172.15.sugarcane | 95 |
869 | switchgrass|gb165|DN144676_T1 | 柳枝稷 | 1438 | Seq385.MAB173.15.barley | 87 |
870 | switchgrass|gb165|FE609872_T1 | 柳枝稷 | 1439 | Seq228.MAB19.15.sorghum | 89 |
871 | switchgrass|gb165|FE617860_T1 | 柳枝稷 | 1440 | Seq381.MAB171.15.sugarcane | 88 |
872 | switchgrass|gb165|DN145750_T1 | 柳枝稷 | 1441 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 95 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
873 | switchgrass|gb165|FE597811__T1 | 柳枝稷 | 1442 | Seq248.MAB33.15.maize | 83 |
874 | switchgrass|gb165|FE647199__T1 | 柳枝稷 | 1443 | Seq381.MAB171.15.sugarcane | 90 |
875 | switchgrass|gb165|DN145034_T1 | 柳枝稷 | 1444 | Seq276.MAB49.15.maize | 95 |
876 | switchgrass|gb165|FE617335_T1 | 柳枝稷 | 1445 | Seq286.MAB104.15.rice | 91 |
877 | switchgrass|gb165|FE597809_T1 | 柳枝稷 | 1446 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 95 |
878 | switchgrass|gb165|FE597811_T2 | 柳枝稷 | 1447 | Seq248.MAB33.15.maize | 85 |
879 | switchgrass|gb165|FE635691_T1 | 柳枝稷 | 1448 | Seq311.MAB134.15.barley | 95 |
880 | switchgrass|gb165|FE653022_T1 | 柳枝稷 | 1449 | Seq385.MAB173.15.barley | 83 |
881 | switchgrass|gb165|DN144793_T1 | 柳枝稷 | 1450 | Seq259.MAB39.15.barley | 90 |
882 | switchgrass|gb165|FE641674_T1 | 柳枝稷 | 1451 | Seq309.MAB133.15.barley | 89 |
883 | thellungiella|gb157.2|DN775606_T1 | 盐芥(thellungiella) | 1452 | Seq212.MAB10.15.arabidopsis | 82 |
884 | thellungiella|gb157.2|DN773228_T1 | 盐芥 | 1453 | Seq211.MAB9.15.arabidopsis | 98 |
885 | thellungiella|gb157.2|DN772771_T1 | 盐芥 | 1454 | Seq208.MAB7.15.arabidopsis | 89 |
886 | thellungiella|gb157.2|DN774422_T1 | 盐芥 | 1455 | Seq360.MAB159.15.canola | 83 |
887 | thellungiella|gb157.2|DN774140_T1 | 盐芥 | 1456 | Seq284.MAB100.15.arabidopsis | 86 |
888 | tobacco|gb162|DW003503_T1 | 烟草 | 1457 | Seq329.MAB143.15.tomato | 93 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
889 | tobacco|gb162|BP532373_T1 | 烟草 | 1458 | Seq357.MAB157.15.sugarcane | 82 |
890 | tobacco|gb162|CN949739_T1 | 烟草 | 1459 | Seq370.MAB165.15.grape | 84 |
891 | tobacco|gb162|BQ843111_T1 | 烟草 | 1460 | Seq319.MAB138.15.potato | 90 |
892 | tobacco|gb162|EB683054_T1 | 烟草 | 1461 | Seq307.MAB131.15.tomato | 89 |
893 | tobacco|gb162|EB428197_T1 | 烟草 | 1462 | Seq222.MAB16.15.rice | 80 |
894 | tobacco|gb162|EB445060_T1 | 烟草 | 1463 | Seq283.MAB99.15.tomato | 90 |
895 | tobacco|gb162|EB447202_T1 | 烟草 | 1464 | Seq390.MAB175.15.tomato | 88 |
896 | tobacco|gb162|DW001113_T1 | 烟草 | 1465 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
897 | tobacco|gb162|EH623692_T1 | 烟草 | 1466 | Seq303.MAB129.15.tomato | 85 |
898 | tomato|gb164|BG127210_T1 | 番茄 | 1467 | Seq342.MAB151.15.potato | 82 |
899 | tomato|gb164|BG128089_T2 | 番茄 | 1468 | Seq222.MAB16.15.rice | 80 |
900 | tomato|gb164|AW219181_T1 | 番茄 | 1469 | Seq256.MAB37.15.tomato | 90 |
901 | tomato|gb164|BG127288_T1 | 番茄 | 1470 | Seq370.MAB165.15.grape | 83 |
902 | tomato|gb164|BG133509_T1 | 番茄 | 1471 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
903 | tomato|gb164|BG131241_T1 | 番茄 | 1472 | Seq309.MAB133.15.barley | 80 |
904 | tomato|gb164|BG129621_T1 | 番茄 | 1473 | Seq350.MAB154.15.sugarcane | 80 |
905 | tomato|gb164|AI779004_T1 | 番茄 | 1474 | Seq309.MAB133.15.barley | 81 |
906 | tomato|gb164|BG129572_T1 | 番茄 | 1475 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
907 | tomato|gb164|BG135408_T1 | 番茄 | 1476 | Seq319.MAB138.15.potato | 98 |
908 | triphysaria|gb164|DR173028_T1 | 直果草(triphysaria) | 1477 | Seq329.MAB143.15.tomato | 81 |
909 | triphysaria|gb164|BM357524_T2 | 直果草 | 1478 | Seq283.MAB99.15.tomato | 85 |
910 | triphysaria|gb164|EY133838_T1 | 直果草 | 1479 | Seq311.MAB134.15.barley | 80 |
911 | triphysaria|gb164|BM357406_T1 | 直果草 | 1480 | Seq329.MAB143.15.tomato | 83 |
912 | triphysaria|gb164|BM357011_T1 | 直果草 | 1481 | Seq259.MAB39.15.barley | 80 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
913 | triphysaria|gb164|BM357524_T1 | 直果草 | 1482 | Seq376.MAB168.15.grape | 85 |
914 | triphysaria|gb164|EY137290_T1 | 直果草 | 1483 | Seq256.MAB37.15.tomato | 88 |
915 | wheat|gb164|CA484259_T1 | 小麦 | 1484 | Seq241.MAB28.15.rice | 84 |
916 | wheat|gb164|BE606422_T1 | 小麦 | 1485 | Seq379.MAB170.15.barley | 96 |
917 | wheat|gb164|BE406378_T1 | 小麦 | 1486 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
918 | wheat|gb164|BE470780_T1 | 小麦 | 1487 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 84 |
919 | wheat|gb164|BE418087_T1 | 小麦 | 1488 | Seq325.MAB141.15.barley | 95 |
920 | wheat|gb164|BQ294643_T1 | 小麦 | 1489 | Seq269.MAB45.15.wheat | 94 |
921 | wheat|gb164|BE415314_T1 | 小麦 | 1490 | Seq250.MAB34.15.barley | 82 |
922 | wheat|gb164|AL822647_T1 | 小麦 | 1491 | Seq259.MAB39.15.barley | 98 |
923 | wheat|gb164|BE406667_T1 | 小麦 | 1492 | Seq250.MAB34.15.barley | 89 |
924 | wheat|gb164|BF475039_T1 | 小麦 | 1493 | Seq221.MAB15.15.sorghum | 83 |
925 | wheat|gb164|CK196180_T1 | 小麦 | 1494 | Seq323.MAB140.15.barley | 80 |
926 | wheat|gb164|BE403745_T1 | 小麦 | 1495 | Seq379.MAB170.15.barley | 97 |
927 | wheat|gb164|BQ620260_T1 | 小麦 | 1496 | Seq311.MAB134.15.barley | 100 |
928 | wheat|gb164|BM138204_T1 | 小麦 | 1497 | Seq333.MAB145.15.barley | 91 |
929 | wheat|gb164|BE401114_T1 | 小麦 | 1498 | Seq291.MAB123.15.barley | 94 |
930 | wheat|gb164|BE498161_T1 | 小麦 | 1499 | Seq388.MAB174.15.barley | 93 |
931 | wheat|gb164|BQ744502_T1 | 小麦 | 1500 | Seq250.MAB34.15.barley | 85 |
932 | wheat|gb164|BE415172_T1 | 小麦 | 1501 | Seq366.MAB163.15.barley | 94 |
933 | wheat|gb164|CD490875_T1 | 小麦 | 1502 | Seq276.MAB49.15.maize | 97 |
934 | wheat|gb164|CA625741_T1 | 小麦 | 1503 | Seq309.MAB133.15.barley | 87 |
935 | wheat|gb164|BE443720_T1 | 小麦 | 1504 | Seq318.MAB137.15.barley | 94 |
936 | wheat|gb164|BE420294_T1 | 小麦 | 1505 | Seq290.MAB122.15.maize | 84 |
937 | wheat|gb164|BE516581_T1 | 小麦 | 1506 | Seq387.MAB174.15.barley | 95 |
938 | wheat|gb164|BE406039_T1 | 小麦 | 1507 | Seq333.MAB145.15.barley | 90 |
939 | wheat|gb164|BM136483_T1 | 小麦 | 1508 | Seq333.MAB145.15.barley | 92 |
940 | wheat|gb164|BE425976_T1 | 小麦 | 1509 | Seq250.MAB34.15.barley | 81 |
941 | wheat|gb164|CN011148_T1 | 小麦 | 1510 | Seq270.MAB45.15.wheat | 84 |
多核苷酸SEQIDNO: | 簇名称 | 生物体 | 多肽SEQIDNO: | 由多核苷酸SEQ ID NO.编码的多肽的同源物 | %总同一性 |
942 | wheat|gb164|BE419039_T1 | 小麦 | 1511 | Seq250.MAB34.15.barley | 80 |
943 | wheat|gb164|CA603413_T1 | 小麦 | 1512 | Seq323.MAB140.15.barley | 85 |
944 | wheat|gb164|CA743309_T1 | 小麦 | 1513 | Seq321.MAB139.15.cotton | 80 |
945 | wheat|gb164|BG262336_T1 | 小麦 | 1514 | Seq366.MAB163.15.barley | 94 |
946 | wheat|gb164|CD881765_T1 | 小麦 | 1515 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
947 | wheat|gb164|BE352629_T1 | 小麦 | 1516 | Seq291.MAB123.15.barley | 96 |
948 | wheat|gb164|BE398656_T1 | 小麦 | 1517 | Seq308.MAB132.15.barley | 97 |
949 | wheat|gb164|BE403195_T1 | 小麦 | 1518 | Seq291.MAB123.15.barley | 94 |
950 | wheat|gb164|BE488904_T1 | 小麦 | 1519 | Seq367.MAB163.15.barley | 91 |
951 | wheat|gb164|BE492528_T1 | 小麦 | 1520 | Seq311.MAB134.15.barley | 100 |
952 | wheat|gb164|BE427383_T1 | 小麦 | 1521 | Seq219.MAB14.15.rice | 80 |
953 | wheat|gb164|CA646957_T1 | 小麦 | 1522 | Seq250.MAB34.15.barley | 89 |
954 | wheat|gb164|BE443720_T2 | 小麦 | 1523 | Seq318.MAB137.15.barley | 92 |
955 | wheat|gb164|BE490408_T1 | 小麦 | 1524 | Seq264.MAB42.10.sorghum | 81 |
956 | wheat|gb164|BE420295_T1 | 小麦 | 1525 | Seq379.MAB170.15.barley | 96 |
957 | wheat|gb164|AL825998_T1 | 小麦 | 1526 | Seq308.MAB132.15.barley | 97 |
958 | wheat|gb164|CA693465_T1 | 小麦 | 1527 | Seq308.MAB132.15.barley | 97 |
959 | wheat|gb164|BE585772_T1 | 小麦 | 1528 | Seq366.MAB163.15.barley | 95 |
960 | wheat|gb164|CA613914_T1 | 小麦 | 1529 | Seq356.MAB157.15.sugarcane | 84 |
1656 | >tomato|gb164|BG129621_T1 | 番茄 | 1660 | Seq1649.MAB66.tomato | 82 |
1657 | potato|gb157.2|BE921143_T1 | 马铃薯 | 1661 | Seq1649.MAB66.tomato | 82 |
1658 | pepper|gb157.2|BM061807_T1 | 胡椒 | 1662 | Seq1649.MAB66.tomato | 80 |
1659 | >triphysaria|gb164|BM357011_T1 | 直果草 | 1663 | Seq1649.MAB66.tomato | 80 |
表2:*-同源性以比对序列的%同一性来计算。查询序列为多核苷酸序列SEQ ID NO:1、3、5、7、9、10、11、13、15、16、17、19、21、23、25、26、28、29、30、32、34、36、37、38、40、42、44、46、48、50、52、54、55、57、59、61、63、65、67、69、71、73、75、77、79、81、82、84、86、88、90、91、93、94、96、98、100、101、103、105、107、109、111、113、115、116、118、119、121、122、124、126、128、130、132、134、135、138、140、142、143、145、147、149、151、153、155、157、161、163、165、168、169、170、171、173、175、177、179、180、182、184、186、188、190、192、194、196、198和1649,主题序列(subject sequence)为基于与查询核苷酸序列的预测的翻译序列的同一性高于80%的数据库中鉴定的蛋白质序列。所示为同源多肽及编码所述多肽的多核苷酸。
实施例2
产生推定的ABST基因
通过GeneArt(http://WWW.geneart.com/)合成ABST基因的若干DNA序列。经由电脑模拟设计合成的DNA,其基于ABST基因的编码的氨基酸序列,并使用从植物转录组(transcriptome)计算的密码子用法表(所述用法表实例可以在可在线获得的密码子用法数据库中找到http://WWW.kazusa.or.jp/codon/)。以不向编码的氨基酸序列中引入入变化同时使用优选用于在双子叶植物(主要是番茄和拟南芥)和单子叶植物(例如玉米)中表达的密码子的方式设计优化的编码序列。当在靶标作物中过表达基因时,与原始序列比较在序列中每20个核苷酸碱基对导入至少一个沉默突变,以避免可能的沉默。为了优化序列,加入以下限制酶位点-5′端的SalI、XbaI、BamHI、SmaI和3′端的SacI。将由厂商(GeneArt,Gmbh)合成的序列克隆到pCR-Script质粒中。
实施例3
基因克隆和产生用于植物表达的二元载体
为了验证所选基因在改进ABST和产量中的作用,在植物中如下过表达所述基因。
克隆策略
将从实施例1所提供的基因中挑选的基因克隆入用于产生转基因植物的二元载体。为了克隆,鉴定了全长可读框(ORF)。通过比较来自其它植物物种的已知蛋白的若干翻译算法结果,分析了EST簇和某些情况下的mRNA序列,以鉴定整个可读框。
为了克隆全长cDNA,对从在正常条件下或营养缺乏条件下生长的叶、根或其它植物组织提取的总RNA进行逆转录(RT),接着是聚合酶链式反应(PCR;RT-PCR)。用为本领域技术人员所熟知的在别处阐述的标准方案(Sambrook J.,E.F.Fritsch和T.Maniatis.1989.MolecularCloning.A Laboratory Manual.(分子克隆:实验室手册),第2版,ColdSpring Harbor Laboratory Press,New York.)进行总RNA提取、cDNA生产和PCR扩增。用PCR纯化试剂盒(Qiagen)纯化PCR产物。
通常制备2套引物用于经由巢式PCR扩增每一基因(意指第一次用外部引物扩增基因,然后用所产生的PCR产物作为模板用于第二次PCR反应,此时使用内部引物对)。或者,在第一次和第二次PCR反应中都使用内部引物中的一个或2个来扩增基因(意指对于一个基因仅设计2-3个引物)。为了便于进一步克隆cDNA,将8-12个bp延伸加入到每一内部引物的5′端。引物延伸包括核酸内切酶限制位点。用两个参数来选择限制位点:(a)限制位点不存在于cDNA序列中;和(b)将限制位点设计在正向和反向引物中,以便经消化的cDNA以有义方向插入到转化用的二元载体中。在下表3中提供了用于克隆ABST基因的引物。
表3
来自cDNA文库或基因组DNA的已克隆的ABST基因及用于克隆的引物
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB1 | 1530 | 201 | EcoRV | MAB1 EF EcoRVAAGATATCAGACCAGAGGAGAAGACTCGATC(SEQ ID NO:1567)MAB1 NF EcoRVAAGATATCAGACTCCGTTCGGAGAAAAGG(SEQ ID NO:1568)MAB1 ER EcoRV ATGATATCTGAAGAACATCGCC TTGTCATC(SEQ ID NO:1569)MAB1 NR EcoRVAAGATATCACCTTGTCATCGGATCATCTCC(SEQ ID NO:1570) |
MAB1_GA(经优化用于在玉米及大豆(G.Max)中表达) | 1531 | 合成的产物(来自pGA14_MAB1_GA) |
MAB14 | 1538 | 219 | EcoRV | MAB14 EF EcoRVATGATATCCAACGAATGAAGACTAGTAGCTG(SEQ ID NO:1571)MAB14 NF EcoRVATGATATCCCAGATGGAATCCTGCCCT(SEQ ID NO:1572)MAB14 ER EcoRVATGATATCGTGTCAATGAAGGGAACGTGC(SEQ ID NO:1573)MAB14 NR EcoRVATGATATCGCAAATGGATTCAGATATTCTG(SEQ ID NO:1574) |
MAB14_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1539 | 合成的产物(来自pGA14_MAB14_GA) | ||
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB10 | 1532 | 212 | SalI、XbaI | MAB 10F Sal-GCAGTCGACAACTCACAGTTCCAAACACACA(SEQ ID NO:1575)MAB 10 Ext R Xba -GGTCTAGAATGTAAATGTCTTCGTATTAGGC(SEQ ID NO:1576)MAB 10 NR Xba-CCTCTAGAATCACCCGAAATAACTAGTGTC(SEQ ID NO:1577) |
MAB10_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1533 | 合成的产物(来自pGA18_MAB10_GA) | ||
MAB25 | 1549 | 237 | PstI、SmaI | MAB25 EF PstI-AACTGCAGCCATCGTCGTAATCCTTCTAGC(SEQ ID NO:1578)MAB25 NF PstI-AACTGCAGTAATCATGGGGAGGAAATCTC(SEQ ID NO:1579)MAB25 ER SmaI-GGGTGACAATTCCGAGTCTCAGC(SEQ ID NO:1580)MAB25 NR SmaI-TCCCGGGCAATTGGTCAATGGCACTC(SEQ ID NO:1581) |
MAB25_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1550 | 合成的产物(来自pGA14_MAB25_GA) | ||
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB134 | 1665 | 311 | SalI、XbaI | MAB134 EF SalI-AATGTCGACTCTCGTCTTGCTCCCAGAG(SEQ ID NO:1582)MAB134 NF SalI-AATGTCGACCGACACCCTTCTCCTCCTC(SEQ ID NO:1583)MAB134 ER XbaI-TTTCTAGAATCATATTCCAACATCCACTTC(SEQ ID NO:1584)MAB134 NR XbaI-TTTCTAGACTGCTATGTTCCACTGACTACAC(SEQ ID NO:1585) |
MAB99 | 1566 | 283 | SalI、SacI | MAB99 NF SalI-AAAGTCGACCAGTTAATTCTCCGTTGTCTACTC(SEQ IDNO:1586)MAB99 NR SacI-TGAGCTCCTGCTTGAAACTTGCTGCTAG(SEQ ID NO:1587) |
MAB36 | 1554 | 254 | SalI、XbaI | MAB 36 F Sal-GGAGTCGACACAGAAATGGGTGGTTTGAAG(SEQ ID NO:1588)MAB 36 Ext R Xba-CCTCTAGAAATGATCACTCACTGCAACTTAG(SEQ ID NO:1589)MAB 36 NR Xba-CCTCTAGACACTCACTGCAACTTAGAAACATC(SEQ ID NO:1590) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB7 | 1563 | 208 | SalI、XbaI | MAB 7 Ex F Sal-AACGTCGACGCTCATTTCTCTTCTTCTTTGG(SEQ ID NO:1591)MAB 7 NF Sal-GACGTCGACTCTTCTTTGGTTCTTACATTTCTC(SEQ IDNO:1592)MAB 7 Ex R Xba-TCTCTAGAGCAAGACGTTATAAACCATGC(SEQ ID NO:1593)MAB 7 NR Xba-TCTCTAGAAGAAGACACGCTGGACAATG(SEQ ID NO:1594) |
MAB44 | 1557 | 267 | SalI、SacI | MAB 44 NF salAAGGTCGACCATAAAGAACAGTGACAGGCG(SEQ ID NO:1595)MAB 44 NR ScAGAGCTCCACGTAGTACATTTTCACAGCAC(SEQ ID NO:1596) |
MAB44_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1558 | 合成的产物(来自pCR4Blunt-topO_MAB44_GA) |
MAB6 | 1561 | 207 | SalI、XbaI | MAB 6- Ex F Sal-ACCGTCGACCCTTCTCCAATTTCGTAAGC(SEQ ID NO:1597)MAB 6 NF Sal-ACCGTCGACTTCGTAAGCTCAAAGATTTCG(SEQ ID NO:1598)MAB 6 - Ext R XbaI-CCTCTAGAACGACTTTTAATCCCTCCAAC(SEQ ID NO:1599)MAB 6- NR XbaI-CCTCTAGACTCCAACAGCCACTACAACC(SEQ ID NO:1600) |
MAB6_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1562 | 合成的产物(来自pGA15_MAB6_GA) | ||
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB9 | 1564 | 211 | EcoRV | MAB9_F_EcoRVAAGATATCGGTTGCTGAGGAA TCGAAGTAG(SEQ ID NO:1601)MAB9_ER_EcoRVTTGATATCGAGCCAAGTCACAA GGAGTTTAC(SEQ ID NO:1602)MAB9_NR_EcoRVTTGATATCCTCCGAGTGTCGCA GTAAGC(SEQ ID NO:1603) |
MAB9_GA(经优化用于在玉米和黄淮夏大豆中表达) | 1565 | 合成的产物(来自pGA15_MAB9_GA) |
MAB100 | 1534 | 284 | SalI、XbaI | MAB100 EF SalI-AATGTCGACCCAAGTTAAACTTCATATCATACAC(SEQ IDNO:1604)MAB100 NF SalI-AATGTCGACGAAGAGTTATTATGGCGAGCT(SEQ ID NO:1605)MAB100 ER XbaI-AATGTCGACCCAAGTTAAACTTCATATCATACAC(SEQ IDNO:1606)MAB100 NR XbaI-AATCTAGACAAACCCAACTTATTACATTACG(SEQ ID NO:1607) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB13 | 1536 | 217 | SacI、SalI | MAB13 F SalI新AATGTCGACCTCGAAAATGGCCACCATTAG(SEQ ID NO:1608)MAB 13 ExR ScCGAGCTCCAAAAATGCAAGAATCAAGAG(SEQ ID NO:1609)MAB 13 F SalAAGGTCGACTTCTCTCCAAAATGGCCAC(SEQ ID NO:1610)MAB 13 NR ScTGAGCTCTGCAAGAATCAAGAGAAATTTG(SEQ ID NO:1611) |
MAB32 | 1552 | 247 | EcoRV | MAB32 F EcoRV-AAGATATCCTCCACTTGTTGTTCAATTCCC(SEQ ID NO:1612)MAB32 ER EcoRV-ATGATATCGATCTGAACAGCAGTAAGTAAGCC(SEQ IDNO:1613)MAB32 NR EcoRV-ATGATATCTAAGAAGAACAAGACATGGATCG(SEQ ID NO:1614) |
MAB35 | 1553 | 252 | SmaI | MAB35 F-CGTGAGAACTAAGAAACACCC(SEQ ID NO:1615)MAB35 ER SmaI-TCCCGGGACATCTTTTCAACTAAACCAAGAC(SEQ ID NO:1616)MAB35 NR SmaI-TCCCGGGCTAAACCAAGACTTACACAAGACG(SEQ ID NO:1617) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB146 | 1666 | 334 | SalI、XbaI | MAB146 F Sal-ATTGTCGACAGAGTTATGGGAGATAATAGAGGA(SEQ IDNO:1618)MAB146 ER Xba-ATTCTAGACTCATTCTGAGCTTTACATGTTC(SEQ ID NO:1619)MAB146 NR Xba-TTTCTAGATTGGTTTACACCTCAACTCACTAC(SEQ ID NO:1620) |
MAB2 | 1547 | 非编码 | SalI、XbaI | MAB2 F SalIAATGTCGACAACAAATGATCCTTCAGGCAGTTAAAG(SEQ IDNO:1621)MAB2 R XbaTTTCTAGATATTAAAACTTAGATTCGGGATCAG(SEQ IDNO:1622) |
MAB20 | 1548 | 229 | PstI、SmaI | MAB20 EF pstI-AACTGCAGGATCATCACTTCTCAGATTTCG(SEQ ID NO:1623)MAB20 NF PstI-AACTGCAGAAAAATGAATTCAGAATCGCTAG(SEQ ID NO:1624)MAB20 ER SmaI-AACTGCAGGATCATCACTTCTCAGATTTCG(SEQ ID NO:1625)MAB20 NR SmaI-TCCCGGGCAATCTGACCTCAAAACTCCC(SEQ ID NO:1626) |
MAB43 | 1556 | 265 | PstI、SmaI | MAB43 NF PstIAACTGCAGGATCAATGAAGATTCGGAACAG(SEQ ID NO:1627)MAB43 ER SmaITCCCGGGTACAACAAGAAACCTCTGATTC(SEQ ID NO:1628)MAB43 NR SmaITCCCGGGCCTGTGCCACAGCTATACTTAC(SEQ ID NO:1629) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB46 | 1559 | 271 | SalI、SacI | MAB 46 ExF Sal-GAAGTCGACATCCGTAGTTTCAGTTTCGTCC(SEQ ID NO:1630)MAB 46 NF Sal-GAAGTCGACCTTGTCTGTTCCAGATGAAATTG(SEQ ID NO:1631)MAB46 ExR Sc-TGAGCTCCTCTATCGACGTCCGGATTC(SEQ ID NO:1632)MAB 46 NR Sc-TGAGCTCCGTCCGGATTCATAAACAAC(SEQ ID NO:1633) |
MAB50 | 1560 | 277 | SmaI | MAB 50 ExF SalGGAGTCGACCATCGGGACACATCTTTAGG(SEQ ID NO:1634)MAB50 NFCATCTTTAGGCTCAAGGATTC(SEQ ID NO:1635)MAB50 ExR SacTGAGCTCGATCCTCGTTTATTACAAGTCTG(SEQ ID NO:1636)MAB50 NR SmaTCCCGGGCACACCAAGATTGATTACAAAGAG(SEQ ID NO:1637) |
MAB66 | 1654 | 1655 | SalI、XbaI | MAB66 F Sal-AATGTCGACGATTGGAGATAGGCAGGCA(SEQ ID NO:1638)MAB66 ER Xba-TTTCTAGAGGTAGCCAAAGCTGACACTC(SEQ ID NO:1639)MAB66 NR Xba-AATCTAGAGAGGCATATGCACTTCTTATCG(SEQ ID NO:1640) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB4 | 1555 | 205 | EcoRV | MAB4 EF EcoRV-AAGATATCCAGGACGGGTTCTCGATCAG(SEQ ID NO:1641)MAB4 NF EcoRV-AAGATATCCAGCGAACACGTCTACGATG(SEQ ID NO:1642)MAB4 ER EcoRV-ATGATATCGCACGAGTTCAACTCAGCTG(SEQ ID NO:1643)MAB4 NR EcoRV-ATGATATCGAACTGCTTGAGATGTAACAGCT(SEQ ID NO:1644) |
MAB15_GA(经优化用于在拟南芥和玉米中表达) | 1541 | 221 | XbaI、SacI | 合成的产物(来自pGA4_MAB15) |
MAB15a_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1667 | 合成的产物(来自pGA18_MAB15a_GA) | ||
MAB15_GA_original(未经优化的原始序列) | 1540 | 合成的产物(来自pGA14_MAB15_(EVO220)-original) | ||
MAB17_GA(经优化用于在拟南芥和玉米中表达) | 1542 | 224 | XbaI、SacI | 合成的产物(来自pGA4_MAB17) |
MAB17a_GA(经优化用于在玉米中表达) | 1544 | 合成的产物(来自pCR4Blunt-topO_MAB17a_GA) | ||
MAB17_GA_original(未经优化的原始序列) | 1543 | 合成的产物(pGA14_MAB17_(EVO222)-original) |
基因Id | 多核苷酸已克隆的基因的SEQ ID NO. | 多肽所编码多肽的SEQ IDNO. | 用于克隆的限制酶 | 用于扩增的引物(SEQ ID NO:) |
MAB137_GA(经优化用于在玉米拟南芥和番茄中表达) | 1537 | 317 | XbaI、SacI | 合成的产物(来自pGA15_MAB137) |
MAB3_GA(经优化用于在玉米拟南芥和番茄中表达) | 1551 | 203 | XbaI、SacI | 合成的产物(来自pCR4Blunt-Topo_MAB3) |
MAB3_GA_original(未经优化的原始序列) | 1668 | 合成的产物(来自pGA14_MAB3_(EVO235)-original) | ||
MAB18_GA(经优化用于在拟南芥和玉米中表达) | 1545 | 225 | XbaI、SacI | 合成的产物(来自pGA4_MAB18) |
对照基因:GUI | 1664 |
表3.通过基因Id编号和多核苷酸SEQ ID NO.呈提了已克隆的ABST基因及对照基因,还呈提了用于克隆所述ABST基因的引物和限制酶。
根据引物中的位点设计(表3)用限制性核酸内切酶(Roche,Switzerland)消化PCR产物。将每一种经消化的PCR产物插入到源自pBlue-script KS质粒载体(pBlue-script KS质粒载体,http://WWW.stratagene.com/manuals/212205.pdf)的高拷贝载体中。在源自pBlue-script KS质粒载体的高拷贝载体(pGN)情况下,将PCR产物插入到该高拷贝质粒的源自pBI 101.3二元载体的NOS终止子(GenBank登录号U12640,4417-4693位核苷酸)(SEQ ID NO:1651)的上游,见下表4。在其它情况下(pKSJ_6669a),At6669启动子(SEQ IDNO:1652)已经被克隆到pBlue-script KS中,因此将所述基因导入该启动子的下游(下表4)。
用ABI 377测序仪(Applied Biosystems)对所插入的基因进行了序列测定。在某些情况下,在证实了所克隆基因的序列后,通过用合适的限制性核酸内切酶消化将伴随有NOS终止子的克隆的cDNA导入到含有At6669启动子的二元载体pGI。在其它情况下,将伴随有At6669启动子的克隆的cDNA导入到pGI载体(其已经不含At6669启动子)。在任何情况下,在插入片段之后接上单拷贝的NOS终止子(SEQ IDNO:1651)。用T4DNA连接酶(Roche,Switzerland)连接经消化的产物和线性化的质粒载体。
表4
在高拷贝质粒中从cDNA文库或基因组DNA克隆的基因
基因名称 | 高拷贝质粒 | 扩增来源 |
MAB1 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB1 | Gene Art | |
MAB10 | Gene Art | |
MAB10 | pGN | RNA |
MAB14 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB14 | Gene Art | |
MAB15 | pGN | Gene Art(3种质粒) |
MAB17 | pGN | Gene Art(3种质粒) |
MAB 137 | pGN | Gene Art |
MAB25 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB25 | Gene Art | |
MAB3 | pGN | Gene Art(2种质粒) |
MAB44 | pGN | RNA |
MAB44 | Gene Art | |
MAB6 | pGN | RNA |
MAB6 | Gene Art | |
MAB9 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB9 | Gene Art | |
MAB100 | pGN | RNA |
MAB13 | pGN | RNA |
MAB134 | pGN | RNA |
MAB18 | pGN | Gene Art |
MAB2 | pGN | RNA |
MAB20 | pKSJ_6669 | RNA |
基因名称 | 高拷贝质粒 | 扩增来源 |
MAB146 | pGN | RNA |
MAB32 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB35 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB36 | pGN | RNA |
MAB43 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB46 | pGN | RNA |
MAB50 | pKSJ_6669 | RNA |
MAB7 | pGN | RNA |
MAB99 | pGN | RNA |
MAB66 | pGN | RNA |
MAB4 | pKSJ_6669 | RNA |
表4
通过将源自pGL3基础质粒载体的合成聚-(A)信号序列(Promega,GenBank登录号U47295;4658-4811位核苷酸)插入到二元载体pBI101.3(Clontech,GenBank登录号U12640)的HindIII限制位点来构建pPI质粒载体。pGI(图1)与pPI相似,但在主骨架中的初始基因是GUS-Intron而不是GUS。
通过用限制酶HindIII和SalI或BamHI(Roche),接着是DNA连接,将At6669拟南芥启动子序列(由SEQ ID NO:1652所示)插入到pPI二元载体中的已克隆基因的上游,二元质粒如上所述从阳性大肠杆菌菌落提取。
通过PCR用引物鉴定阳性菌落,其中所述引物设计为跨越二元载体中导入的启动子(At6669)及克隆的基因。在所有情况下,正向PCR引物为SEQ ID NO:1650(来自At6669启动子)所示的引物,反向引物(源自特定的已克隆基因)如下:对于MAB1,反向引物为SEQ IDNO:1570;对于MAB14,反向引物为SEQ ID NO:1574;对于MAB10,反向引物为SEQ ID NO:1577;对于MAB25,反向引物为SEQ IDNO:1581;对于MAB134,反向引物为SEQ ID NO:1585;对于MAB99,反向引物为SEQ ID NO:1587;对于MAB36,反向引物为SEQ IDNO:1590;对于MAB7,反向引物为SEQ ID NO:1594;对于MAB44,反向引物为SEQ ID NO:1596;对于MAB4,反向引物为SEQ IDNO:1600;对于MAB9,反向引物为SEQ ID NO:1603(MAB9);对于MAB100,反向引物为SEQ ID NO:1606;对于MAB13,反向引物为SEQ ID NO:1611;对于MAB32,反向引物为SEQ ID NO:1614;对于MAB35,反向引物为SEQ ID NO:1617;对于MAB146,反向引物为SEQ ID NO:1620;对于MAB2,反向引物为SEQ ID NO:1622;对于MAB20,反向引物为SEQ ID NO:1626;对于MAB43,反向引物为SEQID NO:1629;对于MAB46,反向引物为SEQ ID NO:1633;对于MAB50,反向引物为SEQ ID NO:1637;对于MAB66,反向引物为SEQ IDNO:1640;对于MAB4,反向引物为SEQ ID NO:1644;对于MAB15合成基因,反向引物为SEQ ID NO:1645;对于MAB17合成基因,反向引物为SEQ ID NO:1646;对于MAB18合成基因,反向引物为SEQID NO:1647;对于MAB137合成基因,反向引物为SEQ ID NO:1648;而对于MAB3合成基因,反向引物为SEQ ID NO:1649,它们都设计为跨越二元载体中所导入的启动子和基因。
从商业供应商(Gene Art,GmbH)定制某些克隆的多核苷酸的合成序列(例如MAB14,核苷酸SEQ ID NO:23,其编码蛋白SEQ IDNO:219)。为了优化编码序列,使用从植物转录组计算的密码子用法表(所述表的实例可以在可在线获得的密码子用法数据库中找到,http://WWW.kazusa.for.jp/codon/)。以在所编码的氨基酸序列中不导入变化同时使用优选用于在双子叶植物(主要是番茄和拟南芥)和单子叶植物(例如玉米)中表达的密码子的方式设计优化的编码序列。所述优化的序列支持更好的翻译速率,因此提高蛋白质表达水平。部分序列作为原始序列定制。在优化/非优化的序列侧翼加入另外的独特限制酶位点,以使在二元载体中更容易克隆基因。
所用启动子:拟南芥At6669启动子(SEQ ID NO:1652;其为Evogene Ltd.的WO04081173中的SEQ ID NO:61)。
所克隆的cDNA序列在SEQ ID NO:1530-1534、1536-1545、1547-1566、1654、1665、1666、1667和1668中提供。扩增的cDNA序列的蛋白质翻译准确匹配初始生物信息预测的蛋白质序列。克隆的多核苷酸的预测多肽序列在SEQ ID NO:201、212、284、213、217、317、219、221、224、225、226、227、229、237、203、247、252、205、265、267、271、277、207、208、211、283、1655、311、334和254中提供。
实施例4
用荷有推定的ABST基因的二元载体转化根癌农杆菌细胞
将以上实施例3所述的每一种二元载体用于转化农杆菌细胞。用具有代替ABST基因的GUS/荧光素酶报告基因(位于At6669启动子下游)的另外两种二元构建体作为阴性对照。
通过电穿孔将所述二元载体导入到根癌农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens)GV301或LB4404感受态细胞(约109个细胞/mL)中。用MicroPulser电穿孔仪(Biorad)、0.2cm的电穿孔池(Biorad)和EC-2电穿孔程序(Biorad)进行电穿孔。将经处理的细胞于28℃在LB液体培养基培养3小时,然后于28℃铺板于补充有庆大霉素(gentamycin)(50mg/L;对于农杆菌菌株GV301)或链霉素(streptomycin)(300mg/L;对于农杆菌菌株LB4404)和卡那霉素(kanamycin)(50mg/L)的LB琼脂上48小时。用上述(实施例3)关于鉴定阳性二元载体克隆的引物,通过PCR对在选择培养基上生长的农杆菌菌落进行分析。分离所得到的PCR产物,如上面实施例3所述进行测序,以验证正确的ABST序列被正确地导入到农杆菌细胞中。
实施例5
用推定的ABST基因转化拟南芥植株
用微作改良的由Clough和Bent(10)及由Desfeux等(11)所述的花浸(Floral Dip)法转化拟南芥哥伦比亚植株(T0代植株)。简言之,将T0代植株播种在填充基于湿泥炭的生长混合物的250ml的盆中。用铝箔和塑料圆顶覆盖盆,在4℃保持3-4天,然后去掉覆盖物,在16/8小时光照/黑暗周期下于18-24℃在生长室中孵育。在开花期前6天准备T0代植株用于转化。
如以上实施例4所述产生携带二元构建体的农杆菌单菌落。让所述菌落在补充有卡那霉素(50mg/L)和庆大霉素(50mg/L)的LB培养基中培养。让培养物在剧烈震荡下于28℃孵育48小时,然后以4000rpm离心5分钟。将包含农杆菌细胞的沉淀重新悬浮在含有以下物质的转化培养基中:半强度(2.15g/L)Murashige-Skoog(Duchefa);0.044μM苄氨基嘌呤(Sigma);112μg/L B5 Gambourg维生素(Sigma);5%蔗糖;和0.2ml/L Silwet L-77(OSI Specialists,CT),双蒸水,pH 5.7。
通过让各植株反转置于农杆菌悬浮液中以使地上植物组织浸没3-5秒来实施T0代植株的转化。将各个已接种的T0代植株立即置于塑料盘中,然后用透明的塑料圆顶覆盖以保持湿度,于室温在黑暗中保持18小时,以促进感染和转化。然后去掉转化的(转基因)植株的覆盖物,并将植株转移到温室用于恢复和成熟。让转基因的T0代植株在温室中生长3-5周,直到长角果(silique)成为棕色并变干。从植株收获种子并保持在室温中直到播种。
为了产生荷有所述基因的T1和T2代转基因植物,如下对收集自转基因T0代植株的种子进行表面消毒:沉浸在70%乙醇1分钟,接着沉浸在5%次氯酸钠和0.05%triton中5分钟。在无菌蒸馏水中彻底洗涤经表面消毒的种子,然后置于含有半强度Murashige-Skoog(Duchefa)、2%蔗糖、0.8%植物琼脂、50mM卡那霉素和200mM羧苄青霉素(carbenicylin)(Duchefa)的培养板中。让培养板在4℃孵育48小时,然后转移到25℃生长室中再孵育1周。将有活力的T1代拟南芥植株转移到新鲜培养板中再孵育1周。孵育后将T1代植株从培养板中移出,栽种到含有生长混合混合物的250ml盆中。使该转基因植株在温室中生长至成熟。在与用于培养和生长T1代植株的同样的条件下,让从T1代植株收获的种子培养并生长至成熟,作为T2代植株。
实施例6
在组织培养测定中的改进的ABST
测定1:在组织培养条件下在渗压胁迫(PEG)下的植物生长-渗压胁迫(PEG)-条件与在干旱期间发现的高渗透性相似(例如25%PEG8000)。干旱的一个结果是在根周围区域诱导渗压胁迫;因此,在很多科学研究中,PEG用来模拟干旱。
将经表面消毒的种子播种在卡那霉素存在下的(仅用于选择转基因植物)基础培养基[50%Murashige-Skoog培养基(MS),补充0.8%植物琼脂作为固化剂]中。播种后将板转移到4℃2-3天进行层积催芽,然后在每日12小时光照12小时黑暗的周期中于25℃生长7-10天。在该时间点将随机选择的幼苗谨慎转移到含25%PEG的0.5MS培养基或正常条件(0.5MS培养基)的板中。每块板含有同一事件的5株幼苗,每一事件有3-4块不同的板(重复)。对于本发明的每一种多核苷酸,分析来自每一构建体的至少四个独立的转化事件。将表达本发明多核苷酸的植株与在相同的启动子调控下表达uidA报告基因(GUSIntron-GUI)的作为对照的模拟转基因植物的平均测量比较。
数码成像-使用实验室图像采集系统捕获在方形琼脂平板中播种的小植株的图像,该图像采集系统由附有55mm焦距的镜头(CanonEF-S系列)的反射式数码相机(Canon EOS 300D)组成,相机安放在再现设备(Kaiser RS)上,再现设备包括4个光单元(4x150瓦的灯泡),并位于暗室中。
在第0天开始直到第14天,每7天重复图像捕获过程。使用附有24mm焦距镜头(Canon EF系列)、置于定制的铁座上的同样的相机捕获图像。
使用图像分析系统,该系统由个人台式电脑(Intel P43.0GHz处理器)和公共领域程序-ImageJ 1.37(基于Java的图像处理程序,其在美国国立卫生研究院开发,可在互联网上于http://rsbweb.nih.gov/处免费获得)组成。以6百万像素(3072x2048像素)的分辨率捕获图像,并以低压缩的JPEG(联合图像专家组标准)格式存储。接下来,将被分析的数据保存为文本文档并用JMP统计分析软件(SAS institute)处理。
幼苗分析-用数字分析来计算幼苗数据,包括叶面积、根覆盖和根长。
按照以下公式I计算相对生长率(RGR)。
公式I:
相对生长面积率=(Δ面积/Δt)*(1/面积t0)
Δt为当前分析图像的日子减去初始日期(t-t0)。因此,相对生长面积率以1/天为单位,长度生长率以1/天为单位。
在实验结束时,从培养基中移出小植株并称重测定植株的鲜重。通过比较每一对连续相片之间的叶面积、根长和根覆盖来测定相对生长率,并将结果用于确定被导入的基因在渗压胁迫下以及在最佳条件下对植物活力的影响。同样地,通过与对照植株(GUI)比较植株鲜重来测定被导入的基因在渗压胁迫下以及在最佳条件下对生物量积聚的影响。
统计学分析-为了鉴定更好的基因及构建体,在独立转化事件的结果中评估基因的总的影响(基因作用)和每一测试事件(最佳事件(bestevent))。应用学生t检验,用p<0.05或p<0.1的显著性。使用JMP统计软件包(5.2.1版本,SAS Institute Inc.,Cary,NC,USA)。
实验结果
针对多种所期需的性状,对本发明多核苷酸序列进行了分析。
表5-6描述了在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同,且A表明P<0.05水平的显著性差异,A*表明P<0.1水平的显著性差异。
表5:显示在25%PEG下改进叶面积的基因
表5:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表6:显示在25%PEG下改进叶面积的基因
表6:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表7-9描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表7
表7:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表8
表8:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表9
表9:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表10-11描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表10
表10:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表11
表11:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表12-13描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表12
表12:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表13
表13:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表14-18描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表14
表14:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表15
表15:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性差异为P<0.05,A*意指显著性差异为P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表16
表16:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表17
表17:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表18
表18:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表19-21描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表19
表19:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表20
表20:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表21
表21:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表22-23描述在25%PEG条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的植物鲜重分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表22
表22:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表23
表23:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表24-27描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表24
表24:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指显著性不同为P<0.05。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表25
表25:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表26
表26:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表27
表27:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表28-31描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表28
表28:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表29
表29:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表30
表30:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表31
表31:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表32-33描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表32
表32:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表33
表33:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表34-36描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表34
表34:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表35
表35:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表36
表36:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表37-41描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表37
表37:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表38
表38:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表39
表39:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表40
表40:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表41
表41:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表42-46描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表42
表42:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表43
表43:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表44
表44:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表45
表45:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表46
表46:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表47-48描述在正常条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的植物鲜重分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表47
表47:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表48
表48:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
测定2:在组织培养条件下在氮缺乏时的植物生长-本发明人业已发现NUE(氮利用效率)测定适宜用于评估ABST候选基因,因为NUE缺乏使得根延长,增加根覆盖,使得可以检测植物在干旱条件下产生更好根系的潜力。另外,文献(Wesley等,2002 Journal of ExperimentBotany,第53卷,第366期,第13-25页)中指出NUE和耐旱性的生物学机制有关联。
将经表面消毒的种子播种到在卡那霉素存在下(仅用于选择转基因植物)的基础培养基[补充0.8%植物琼脂作为固化剂的50%Murashige-Skoog培养基(MS)]中。播种后将板转移到4℃2-3天进行层积催芽,然后于25℃在每日12小时光照12小时黑暗的周期中生长7-10天。在该时间点,将随机挑选的幼苗小心转移到具有以下氮限制条件的板中:0.5MS培养基,其中联合的氮浓度(NH4NO3和KNO3)为0.75mM(氮缺乏条件),或转移到具有以下正常氮条件的板中:0.5MS培养基,其中联合的氮浓度(NH4NO3和KNO3)为3mM(正常氮浓度)。同时进行所有组织培养实验(NUE、PEG及正常)。在正常条件下生长的NUE结果与PEG的结果是一样的,其在测定1中提供。每块板含有同一事件的5株幼苗,每一事件有3-4块不同的板(重复)。对于每一种本发明多核苷酸,至少分析来自每一构建体的四个独立转化事件。将表达本发明多核苷酸的植株与在同一实验中所用的对照植株(GUI-在同一启动子调控下荷有GUS基因)的平均测量值比较。
数码成像和统计学分析-如以上测定1所述测量并分析参数。
实验结果-针对多种所期需的性状,对本发明多核苷酸序列进行了分析。
表49-53描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表49
表49:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表50
表50:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表51
表51:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表52
表52:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表53
表53:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表54-57描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表54
表54:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表55
表55:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表56
表56:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表57
表57:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表58-61描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表58
表58:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEO ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表59
表59:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表60
表60:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表61
表61:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表62-64描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶面积RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表62
表62:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表63
表63:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表64
表64:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表65-69描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖RGR分析。各表代表独立的实验,每一基显著不同。
表62
表62:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表63
表63:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表64
表64:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表65-69描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根覆盖RGR分析。各表代表独立的实验,每一基
表68
表68:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表69
表69:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表70-74描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的根长RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表70
表70:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表71
表71:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表72
表72:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表73
表73:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表74
表74:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(CUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表75-76描述在氮缺乏条件下在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的植物鲜重分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表75
表75:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表76
表76:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
实施例7
在温室测定中改进的ABST
ABS耐受性:在温室条件下于高盐浓度时的产量和植物生长率-本测定跟踪在温室中生长的植物的叶丛面积生长以及在高咸度灌溉时的种子产量。种子在育苗条件下播种在仅补充选择剂(卡那霉素)及Hoagland溶液的琼脂培养基中。然后将T2代转基因幼苗移植到用泥炭及珍珠岩填充的1.7盘中。用自来水浇灌(从盘底部提供)这些蔓生的植物(trail)。用盐溶液(40-80mM NaCl和5mM CaCl2)浇灌一半植株以诱导咸度胁迫(胁迫条件)。另一半植株继续用自来水浇灌(正常条件)。所有植株都在温室中生长直到植株到达成熟种子阶段,然后收获(地上部分的组织)并称重(立即或在50℃烘箱中干燥24小时后)。通过用含有40-80mM NaCl的溶液浇灌达到高咸度条件(“ABS”生长条件),并与常规生长条件比较。
分析植株的总体大小、生长率、种子产量和种子千粒重、干物质和收获指数(HI-种子产量/干物质)。比较在同样条件下并行生长的转基因植株与对照植株。将在同样启动子调控下表达uidA报告基因(GUSIntron-GUI)的模拟转基因植株用作对照。
以随机网巢样地分布设计实验。通过用含有40-80mM NaCl的溶液浇灌达到高咸度条件(“ABS”生长条件)。
数码成像-使用实验室图像采集系统捕获小植株图像,该图像采集系统由附有55mm焦距的镜头(Canon EF-S系列)的反射式数码相机(Canon EOS 300D)组成,相机安放在再现设备(Kaiser RS)上,再现设备包括4个光单元(4x150瓦的灯泡)。
在播种后第1天开始直到第10天每2-3天重复图像捕获过程。附有24mm焦距镜头(Canon EF系列)、置于定制的铁座上的同样的相机用于捕获播种在环境受控的温室中的白盆内播种的较大的植株的图像(如图2a-b所见)。所述盆为方形,包括1.7升的盘。在该捕获过程中,将盘放置在铁座下面,同时避免直接日光和投下的阴影。每2-3天重复该过程,至多10天。
使用图像分析系统,该系统由个人台式电脑(Intel P43.0GHz处理器)和公共领域程序-ImageJ 1.37(基于Java的图像处理程序,其在美国国立卫生研究院开发,可在互联网上于http://rsbweb.nih.gov/处免费获得)组成。以6百万像素(3072x2048像素)的分辨率捕获图像,并以低压缩的JPEG(联合图像专家组标准)格式存储。接下来,将被分析的数据保存为文本文档并用JMP统计分析软件(SAS institute)处理。
营养生长参数分析-用数字分析对叶数据进行计算,包括叶平均面积、叶丛直径和叶丛面积。按照实施例6所述的公式I计算叶丛参数的相对生长率(RGR)。植物在播种的第80天收获,在干燥室中于30℃干燥。将每个小区(plot)的生物量和种子重量分开,测量,并除以植株的数目。干重=在干燥室中于30℃干燥后地上营养性部分(排除根)的总重量;每株植物的种子产量=每株植物的种子总重量(gr)。
如下测定种子千粒重:将种子分散在玻璃盘中并照相。称量每一样品,然后用数字分析,计算每一样品中的种子数量。用公式II计算种子千粒重:
公式II
种子千粒重=样品中的种子数量/样品的重量X1000
收获指数-用公式III计算收获指数。
公式III:
收获指数=平均每株植物的种子产量/平均干重
在其T2代中验证各个构建体。将在同样启动子调控下表达uidA报告基因(GUI)的转基因植株用作对照。
统计学分析-为了鉴定赋予对非生物胁迫耐受性显著改进或扩大根系构造的基因,将从转基因植株获得的结果与从对照植株获得的结果进行比较。为了鉴定更好的基因及构建体,单独地分析来自所测试的独立转化事件的结果。另外,还考虑从测试特定构建体的所有独立转化事件中获得的结果来分析基因和构建体。为了与对照比较分析基因,应用学生t检验,用p<0.05或p<0.1的显著性。使用JMP统计软件包(5.2.1版本,SAS Institute Inc.,Cary,NC,USA)。
实验结果
针对多种所期需的性状,对本发明的多核苷酸序列进行。
表77-86描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表77
表77:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表78
表78:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表79
表79:LSM =最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表80
表80:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表81
表78:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表82
表82:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表83
表83:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
中提供。
表80
表80:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表81
表78:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表82
表82:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表83
表83:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表87
表87:LSM=最小二乘万均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表88
表88:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表89
表89:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表90
表90:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表91
表91:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表92
表92:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表93
表93:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表94
表94:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表95
表95:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表96
表96:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表97-105描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表97
表97:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表98
表98:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表99
表99:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表100
表100:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表101
表101:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表102
表102:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表103
表103:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表104
表104:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表105
表105:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表106-111描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表106
表106:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表107
表107:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表108
表108:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表109
表109:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表110
表110:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表111
A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表112-118描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛直径RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表112
表112:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表113
表113:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表114
表114:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表115
表115:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表116
表116:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表117
表117:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表118
表118:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表119-121描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表119
表119:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表120
表120:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表121
表121:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表122描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表122
表122:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表123描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的小区(plot)干重(DW)分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表123
表123:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表124-126描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的种子千粒重分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表124
表124:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表125
表125:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表126
表126:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表127-129描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的每株植物的种子产量分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表127
表127:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表128
表128:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表129
表129:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表130描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的收获指数分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表130
表130:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表131-140描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表131
表131:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表132
表132:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表133
表133:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表134
表134:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表135
表135:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表136
表136:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表137
表137:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表138
表138:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表139
表139:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表140
表140:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表141-148描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛直径分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表141
表141:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ IDNO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表142
表142:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表143
表143:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表144
表144:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表145
表145:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表146
表146:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表147
表147:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表148
表148:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表149-157描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表149
表149:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表150
表150:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表151
表151:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表152
表152:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表153
表153:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表154
表154:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表155
表155:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表156
表156:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表157
表157:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表158-166描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表158
表158:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表159
表159:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表160
表160:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表161
表161:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表162
表162:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表163
表163:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表164
表164:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表165
表165:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表166
表166:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表167-175描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶丛直径RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表167
表167:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表168
表168:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表169
表169:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表170
表170:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表171
表171:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表172
表172:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表173
表173:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表174
表174:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表175
表175:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表176-178描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表176
表176:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较.在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表177
表177:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较.在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表178
表178:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较.在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表179-180描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的叶平均面积[cm2]RGR分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表179
表179:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表180
表180:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表181-182描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的小区干重(DW)分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表181
表181:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表182
表182:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表183-185描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的种子千粒重分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表183
表183:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表184
表184:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表185
表185:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表186-187描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的每株植物的种子产量分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表186
表186:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表187
表187:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
表188描述在6669启动子调控下过表达本发明多核苷酸的植株中的收获指数分析。各表代表独立的实验,每一基因用4个独立的事件。与所述对照的字母(A、B)不相同的基因与对照显著不同。
表188
表188:LSM=最小二乘方均值;%改进=与对照(GUI)比较;A意指有显著差异,P<0.05;A*意指有显著性差异,P<0.1。在植物中外源表达的克隆的基因的SEQ ID NO.(根据基因Id)在上表3中提供。
实施例8
用推定的ABST基因转化番茄M82植株
为了转化番茄,先用次氯酸钠3%+2-3滴Tween 20(聚山梨醇酯20)对番茄M82种子消毒。用无菌蒸馏水洗涤种子3次。然后让种子在25℃黑暗生长室中在全强度Nitsch培养基中萌发8天。然后将小植株切割为2-4cm的茎,将其插入到填充了30-40ml的MS液体培养基的10-cm的培养皿中。然后切下子叶用作外植体,随后转移到10-cm培养皿中含100μM乙酰丁香酮的KCMS固化培养基。用根癌农杆菌(A.tumefascience)接种外植体30-50分钟。让外植体共同培养24小时,转移到包括卡那霉素作为选择培养基的再生培养基中。然后将抗性再生小植株转移到生根培养基中10-14天,直到出现根。
实施例9
M82番茄转化植株的生长和表型表征
实验程序
产生转基因番茄植物-如以上实施例8所述转化植物。转化后让T1M82番茄植株生长直到植物座果。让T2代种子参加实验以评估非生物胁迫耐受性。
实验结果
测定1-在常规和缺水方案下的番茄田间试验-将番茄田间试验设计为与标准农场相似的单一水源滴灌(OSDI,one source drippingirrigation)系统。因为以相对均一的方式施加缺水条件,所以使得可测量干旱对小型植物群体的影响。OSDI法是基于并排水源喷灌系统(linesource sprinklers irrigation system)(Hanks等1976 Soil Sci.Soc Am.J.40,第426-429页)进行某些明显改进发展而来。采用滴灌代替喷洒浇灌。为了形成均一的深层湿层(至少60cm深),并且不是通常由滴灌形成的洋葱头形,使用低压补偿滴灌系统(low pressure compensatingdripping irrigation system)。该系统使得可在相对长的时间范围内供应少量的水。在以色列雷霍沃特(Rehovot)附近的敞地(网房(net-house))的轻质土中进行干旱胁迫田间试验。每一基因评估4-5个事件,将无效分离群(null segregating population)用作阴性对照。在开始3周期间,所有植株都在正常浇灌条件下在育苗场中生长。在该时期后,根据商业性栽培方案移植植株,在植株之间保持30cm的距离,达到整体密度为每1000平方米2,600株植物(商业性栽培中的推荐密度)。将每一植株移植到水滴头(water dripper)附近,并进一步接受两种不同的处理:
最佳(100%):最佳浇灌条件(100%)。每2天进行浇灌作为推荐的标准水供应。推荐的标准水供应是由当地商业性栽培者按照标准方案施用的量。
严重胁迫(50%):每天一次施用50%的最佳水浇灌量(在与施用常规浇灌相同的时间)。
按照当地标准方案施用所有肥料。对于所有通过浇灌系统的处理而言,按照推荐的同样地施用氮肥。每行193cm宽,含有两条滴灌线,形成每平方米6个滴头的覆盖面。对每种处理实施单独的浇灌对照。实验的构成为四个随机的区组设计(block design),每个小区8株植物。当植物花期开始时,对于3个移植启动不同的水方案仅4周。用张力计(用于测定土壤水势Ψm,允许评估胁迫严重程度)记录土壤中水的可用性。
测定2-番茄盐浴实验-将转基因番茄种子播种在含有生长除氮培养基(growth denitrified media)的盘中。幼苗在育苗条件下发芽。所用实验模型为3个随机分布的区组,在每个区组中播种每一事件的10株植物。在第一片真叶阶段,将盘转移到含有300mM NaCl的生长溶液的不同的“池”中。对于正常处理,施用全Hoagland溶液。每一基因评估5个事件,同时将无效分离群用作阴性对照。实验进行8周,其中测量诸如叶绿素含量(以SPAD单位测量)、植物生物量(FW和DW)等参数。
尽管结合本发明的具体实施方案阐述了本发明,但很显然,很多备选、修改及改变对本领域技术人员显而易见。因此,意欲包括落入所附权利要求书精神和宽范围的所有的这种备选、修改及改变。
在本说明书中提及的所有出版物、专利和专利申请在此以其整体引作本说明书的参考,其引用程度如同每一单个出版物、专利或专利申请被明确并个别地指出在此引作参考一样。另外,在本申请中任何参考文献的引用或证明不应该理解为承认所述参考文献可用作本发明的现有技术。对于所用部分的标题的范围,不应该理解为必要的限制。
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Claims (20)
1.提高植物对非生物胁迫的耐受性的方法,所述方法包括在所述植物内表达编码多肽的外源多核苷酸,藉此提高所述植物对非生物胁迫的耐受性,其中所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
2.提高植物对非生物胁迫的耐受性的方法,所述方法包括在所述植物内表达编码多肽的外源多核苷酸,藉此提高所述植物对非生物胁迫的耐受性,其中所述多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ IDNO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663,藉此提高植物对非生物胁迫的耐受性。
3.提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的方法,所述方法包括在所述植物内表达编码多肽的外源多核苷酸,藉此提高所述植物的生物量、生长率、活力和/或产量,其中所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
4.提高植物的生物量、生长率、活力和/或产量的方法,所述方法包括在所述植物内表达编码多肽的外源多核苷酸,藉此提高所述植物的生物量、生长率、活力和/或产量,其中所述多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
5.分离的多核苷酸,所述多核苷酸包含与选自以下的核酸序列有至少90%同一性的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
6.分离的多核苷酸,所述多核苷酸包含选自以下的核酸序列:SEQID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
7.核酸构建体,所述核酸构建体包含权利要求5或6的分离的多核苷酸和用于指导所述核酸序列转录的启动子。
8.分离的多肽,所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
9.分离的多肽,所述多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ IDNO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
10.植物细胞,所述植物细胞包含外源多肽,所述多肽包含与选自以下的氨基酸序列至少90%同源的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
11.植物细胞,所述植物细胞包含外源多肽,所述外源多肽包含选自以下的氨基酸序列:SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
12.植物细胞,所述植物细胞包含外源多核苷酸,所述外源多核苷酸包含与选自以下的核酸序列至少90%同源的核酸序列:SEQ IDNO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
13.植物细胞,所述植物细胞包含外源多核苷酸,所述外源多核苷酸包含选自以下的核酸序列:SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
14.权利要求1、2、3或4的方法、权利要求5的分离的多核苷酸、权利要求7的核酸构建体或权利要求12的植物细胞12,其中所述核酸序列选自SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
15.权利要求1、2、3或4的方法、权利要求5或6的分离的多核苷酸、权利要求7的核酸构建体或权利要求12或13的植物细胞,其中所述多核苷酸选自SEQ ID NO:1530、1561、1532、1531、1562、1533、1538、1549、1665、1566、1554、1563、1557、1564、1534、1536、1552、1553、1666、1547、1548、1556、1559、1560、1654、1555、1540、1543、1668、1539、1550、1558、1565、1541、1667、1542、1544、1537、1551、1545、1-200、1653、392-960和1656-1659。
16.权利要求1或3的方法、权利要求8的分离的多肽或权利要求10的植物细胞,其中所述氨基酸序列选自SEQ ID NO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
17.权利要求1、2、3或4的方法、权利要求8或9的分离的多肽或权利要求10或11的植物细胞,其中所述多肽选自SEQ IDNO:201、207、212、202-206、208-211、213-391、1655、961-1529和1660-1663。
18.权利要求10、11、12或13的植物细胞,其中所述植物细胞形成植物的部分。
19.权利要求1或2的方法,其中所述非生物胁迫选自成度、干旱、脱水、低温、高温、重金属毒性、缺氧、营养缺乏、营养过剩、大气污染和UV辐射。
20.权利要求1或2的方法,所述方法进一步包括让表达所述外源多核苷酸的植物在所述非生物胁迫下生长。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
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C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20110427 |