CN101957345A - 一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法 - Google Patents

一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法 Download PDF

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CN101957345A CN201010118350XA CN201010118350A CN101957345A CN 101957345 A CN101957345 A CN 101957345A CN 201010118350X A CN201010118350X A CN 201010118350XA CN 201010118350 A CN201010118350 A CN 201010118350A CN 101957345 A CN101957345 A CN 101957345A
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陈鉴东
余国珍
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Zhejiang Jingxin Pharmaceutical Co Ltd
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Zhejiang Jingxin Pharmaceutical Co Ltd
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Abstract

本发明提供了美洲大蠊提取物中活性成份(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,KFX-4的检测方法。采用HPLC色谱法,以十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;以甲醇或乙腈-水(0-50∶100-50V/V)为流动相,流速0.2-2.0ml/min;检测波长为210nm-400nm中的一个或几个波长或二极管阵列检测器,进样量:5-50μl,理论板数按KFX-4峰计算应不低于4000,且与相邻杂质峰的分离度均大于1.5进行色谱分析,以峰面积外标法计算KFX-4含量。本发明为中药康复新液提供有效的质量控制方法,对于提高产品质量和药物的安全性有较大的实用价值。

Description

一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法
技术领域
本发明涉及药物检测方法,具体涉及中药康复新液主要活性成分美洲大蠊提取物的检测方法,尤其涉及一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法。
背景技术
中药康复新液是本申请人已上市多年的产品,主要成分为美洲大蠊提取物。功能主治为通利血脉,养阴生肌。内服:用于瘀血阴滞,胃痛出血,胃、十二指肠溃疡;以及阴虚肺痨,肺结核的辅助治疗。外用于金疮、外伤、溃疡烧伤、褥疮之创面。
有关美洲大蠊中的药效活性成分报道较少,其主要的化学成分为信息素类及氨基酸和各种昆虫神经肽类,此外还有蜚蠊酸、蜚蠊酮、蟑螂油、过敏原成分、各种酶、细胞色素A、B、C、甲壳素、烟酸及微量元素等,有明确药效活性化学成分的报道也比较少。
康复新液的临床疗效明确,但因所含成分复杂,真正的活性物质基础不够明确,现行质量标准中仅收录性状、鉴别(氨基酸和嘧啶碱的鉴别)、pH值及总氨基酸含量等,并以此作为主要质控指标。由于含量测定项仅有总氨基酸,不能真正控制康复新液的质量。随着对药品质量的要求不断提高,对康复新液进一步深入研究,找到能真正体现其活性的物质基础,提高其质量标准具有重要的意义。
为此,本发明人从分子水平基础上阐明康复新液的药效活性成分,经过艰苦努力,从康复新液中成功地分离到了一种具有显著的抗炎、促进肉芽组织增生、创伤愈合等活性作用的化合物单体成分(化学名:(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,简称:KFX-4),专利申请号:200910200557.9。
目前,对于美洲大蠊提取物及康复新液的质量标准中只有总氨基酸的质量控制,与其药效没有直接的关系,而本发明人对KFX-4的药效试验表明具有显著的抗炎、促进肉芽组织增生、创伤愈合等活性作用,与其适应症一致。康复新液中KFX-4的质控检测方法未见文献报道,且因其含量较低,杂质干扰非常严重,常规检测方法难以实施,存在困难。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于研究康复新液的药效活性成分(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,简称:KFX-4的含量,设计更好控制该产品质量的方法。
本发明提供了一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法。具体提供了美洲大蠊提取物中的活性成份(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,KFX-4的检测方法。
有关康复新液及美洲大蠊提取物中活性成份KFX-4的检测方法未见文献报道,且因其含量较低,杂质干扰非常严重,常规检测方法难以实施。本发明人经多次研究,试用了多种分离富集KFX-4的方法,选用多种树脂和固相萃取柱,并试用了多种洗脱液和色谱分离条件,最终建立了康复新液中KFX-4的检测方法。
本发明采用HPLC色谱法,包括下列步骤:
(1)色谱条件与系统:以十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;以甲醇或乙腈-水(0-50∶100-50V/V)为流动相,流速0.2-2.0ml/min;检测波长为210nm-400nm中的一个或几个波长或二极管阵列检测器,进样量:5-50μl,理论板数按(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷峰计算应不低于4000,且与相邻杂质峰的分离度均大于1.5;
(2)对照品溶液的制备:取KFX-4对照品(京新药业提取精制,制备方法见专利,申请号:200910200557.9)适量,精密称定,加甲醇或乙腈的5-50%水溶液,制成每ml含2-100μg(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷的溶液,即得;
(3)美洲大蠊提取物供试品溶液的制备取美洲大蠊提取物1g,精密称定,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,加热或超声使溶解,定容,离心,取离心清液1-5ml,过固相萃取小柱或聚苯乙烯型吸附树脂,用水1-5ml洗涤两次,弃去,用甲醇或乙腈或其中任一的5-50%水溶液2ml洗脱或梯度洗脱,合并洗脱液,置水浴蒸干,残渣用甲醇或乙腈的5-50%水溶液溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心,上清液作为供试品溶液;
(4)分别取上述溶液进行色谱分析,以峰面积外标法计算(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷含量(参照中华人民共和国药典2005年版二部附录V D)。
本发明方法可用于中药康复新液的质量控制,检测其中的KFX-4含量,有效控制药品质量。
具体方法为:康复新液供试品溶液的制备:精密量取康复新液10ml,经10000rpm,离心10min,取上清液过固相萃取小柱或聚苯乙烯型吸附树脂,用1-5ml水洗涤,弃去洗涤液,再用0.01-0.5mol/L氢氧化钠溶液1-5ml洗涤,弃去洗涤液;最后用甲醇或乙腈或其中任一的5-50%水溶液1-5ml洗脱或梯度洗脱,收集洗脱液,作为供试品溶液,分别取上述溶液按上述方法进行色谱分析,以峰面积外标法计算KFX-4含量。
本发明方法所述固相萃取柱为反相聚合物固相萃取柱,包括ODS或HLB或Strata X固相萃取柱的任一种;所述聚苯乙烯型吸附树脂,包括D101、MN200、HPD100、HPD400、HPD450、AB-8、D4020、S-8,HZ806或HP-20的任一种。
本发明提供了美洲大蠊提取物中活性成份(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷,KFX-4的检测方法,为中药康复新液提供有效的质量控制方法,对于提高产品质量和药物的安全性有较大的实用价值。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明作进一步说明。
美洲大蠊提取物批号:T09070101、T09070102、T09070103、T09070104、T09070201、T09070202、T09060103、T09060104、T09060201、T090104。
康复新液批号:090602、090608、090609、090709、090805、090807、091101、091103、091201、081003、071004、071003。
以上美洲大蠊提取物和康复新液样品均由内蒙古京新药业有限公司提供,供下列实施例使用。
实施例1
美洲大蠊提取物制备:(以下检测用的各批号美洲大蠊提取物均按此法制备)
取干燥美洲大蠊1kg,置提取罐罐内,加入90%的乙醇溶液,于60℃温浸三次,每次12小时,第一次用乙醇为美洲大蠊的八倍量;第二次为六倍量;第三次四倍量。合并温浸液,过滤浓缩,回收乙醇至无醇味。所得浓缩液加纯化水为美洲大蠊的1-2倍量。静置24小时以上,分离并弃去沉淀、油层,水溶液过滤,减压浓缩至相对密度1.15-1.20(70℃),即得。
实施例2
取T09070101批号美洲大蠊提取物1g,精密称定,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,超声溶解,定容至10ml。离心,取离心清液1ml,过Strata X固相萃取小柱,用水洗涤两次,每次2ml,弃去,用20%甲醇,30%甲醇,50%甲醇各2ml依次洗脱,合并洗脱液,置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心,取上清液进行色谱分析[色谱分析条件:以十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;以甲醇-水(20∶80)V/V为流动相,流速0.8ml/min;检测波长为265nm,进样量:5μl,以峰面积外标法计算KFX-4的含量]。结果测得KFX-4含量为0.485mg/g。
实施例3
取T09070101批号美洲大蠊提取物约1g,精密称定,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,加热或超声使溶解,定容。离心,取离心清液1ml,过ODS(十八烷基硅烷健合硅胶)固相萃取小柱,用水洗涤两次,每次2ml,弃去,用20%甲醇,30%甲醇,50%甲醇各2ml依次洗脱,合并洗脱液,置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心,取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为0.483mg/g。
实施例4
取T09070101批号美洲大蠊提取物约1g,精密称定,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,加热或超声使溶解,定容。离心,取离心清液1ml,过HLB固相萃取小柱,用水洗涤两次,每次2ml,弃去,用20%甲醇,30%甲醇,50%甲醇各2ml依次洗脱,合并洗脱液,置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心,取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为0.478mg/g。
实施例5
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过D101大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.09μg/ml。
实施例6
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过MN200大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.16μg/ml。
实施例7
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过HPD100大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.14μg/ml。
实施例8
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过HPD400大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.08g/ml。
实施例9
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过HPD450大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.12μg/ml。
实施例10
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过AB-8大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.10μg/ml。
实施例11
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过D4020大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例2)。结果测得KFX-4含量为2.13μg/ml。
实施例12
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过S-8大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.08μg/ml。
实施例13
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过HZ806大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.12μg/ml。
实施例14
精密移取090807批康复新液10ml,10000rpm,离心10min,取离心清夜过HP-20大孔树脂柱(1g,内径15mm),用水,5%乙醇各10ml洗涤,洗涤液弃去,继续用50%乙醇50ml洗脱,洗脱液置水浴蒸干,残渣用50%甲醇溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心。取上清液进行色谱分析(方法同实施例1)。结果测得KFX-4含量为2.10μg/ml。
实施例15本发明检测方法的条件选择试验
1.检测波长的选择:
二极管阵列检测器全波长扫描,显示最大吸收波长两个为220nm和265nm,由于220nm接近紫外末端吸收,故选择265nm为检测波长。
2.流动相的选择:
洗脱方式一:梯度洗脱。
流动相A:0.2%冰乙酸的水溶液
流动相B:0.2%冰乙酸的的乙腈溶液
  时间(分钟)   流动相A(%)   流动相B(%)
  0   100   0
  5   100   0
  20   80   20
  35   5   95
洗脱方式二:等度洗脱。
流动相为甲醇-水(20∶80)V/V,流速为0.8ml/min
两种洗脱方法,KFX-4与前后峰均完全分离且峰纯度大于990,分离度均符合要求。表明流动相适应良好。质控标准中选用洗脱方式二作为色谱条件。
3.专属性试验
取美洲大蠊提取物按测定法检测,显示KFX-4的吸收峰在DAD峰纯度检测中,峰纯度大于990。表明此法有较强的专属性。
4.定量限
稀释KFX-4对照品溶液,使液相色谱图中显示的KFX-4峰的信噪比约等于10∶1,结果此时KFX-4浓度为0.618μg/ml。
5.线形与范围
配制KFX-4对照品溶液贮备液,稀释至不同浓度,注入HPLC,记录色谱图,以KFX-4对照品的峰面积(Y)和KFX-4浓度(X)为X轴进行线性回归,得回归方程:y=11.498x-0.883r=0.99998。
表1:线性与范围检测结果
  KFX-4的量(μg/ml)   0.618   1.844   3.688   9.220   18.44   27.66   46.10   92.2
  峰面积   7.7   20.5   42.38   106.04   211.66   311.01   528.60   1060.15
由上述结果可知在0.618-9.28μg/ml范围内,线性关系良好,可采用外标一点法计算含量。
6.仪器精密度
取浓度21.74μg/ml的KFX-4对照品溶液,连续进样6次,进样量5μl,记录峰面积,计算相对标准偏差RSD(%)。结果表明仪器精密度良好,见表2。
表2 仪器精密度考察结果
  编号  1   2   3   4   5   6   平均值   RSD%
  峰面积  244   243   243   245   245   243   244   0.3
7.重复性试验
取T090104批美洲大蠊提取物,按测定法测定6次,结果如下表。
表3 美洲大蠊提取物中KFX-4含量测定重复性试验
  序号   美洲大蠊提取物含量(mg/g)
  1   0.244
2 0.243
  3   0.246
  4   0.245
  5   0.245
  6   0.247
  平均含量(mg/g)   0.245
  RSD(%)   0.6
结果表明本法重复性良好
取090807批康复新液,按测定法测定6次,结果如下表。
表4 康复新液中KFX-4含量测定重复性试验
  序号   KFX-4含量(μg/ml)
  1   2.03
  2   2.19
  3   2.14
  4   2.06
  5   2.12
  6   2.07
  平均含量   2.10
  RSD(%)   2.7
结论,结果表明本法重复性良好。
8.中间精密度考察
在不同天、不同分析人员、不同的液相系统,使用同一根色谱柱,制备6份样品溶液进行测定,计算每份溶液的含量,结果表明本品中间精密度良好。
表5 美洲大蠊提取物中KFX-4含量测定中间精密度试验
序号   美洲大蠊提取物重复性(mg/g)   美洲大蠊提取物中间精密度(mg/g)
  1   0.244   0.241
  2   0.243   0.240
  3   0.246   0.253
  4   0.245   0.258
5 0.245 0.250
  6   0.247   0.253
  平均含量(mg/g)   0.245   0.249
Figure GSA00000051704800131
表6 康复新液中KFX-4含量测定中间精密度试验
Figure GSA00000051704800132
结果表明本法精密度良好。
9.溶液稳定性:分别取美洲大蠊提取物与康复新液的样品溶液,在不同时间进行HPLC测定,记录峰面积,表明溶液在136小时内稳定。
表7 KFX-4在流动相溶液中的稳定性
  时间(小时)   0   2.5   7.5   13.5   26   38   136   平均   RSD(%)
  美洲大蠊提取物 140 141 137 139 138 143 143 140 1.4
  康复新液   196   202   200   197   197   200   202   199   1.1
结果表明溶液在136小时内稳定。
10.准确度:采用加样回收率试验
精密称定批次为T090104的美洲大蠊提取物约1g,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,加热使溶解,定容到刻度,摇匀,10000rpm,离心10min,精密量取0.5ml离心清夜分别加入加样对照品溶液(19.6μg/ml)0.5ml、0.6ml、0.7ml,每个浓度三份,共9份,按测定法制成样品溶液,进行色谱分析,记录峰面积并计算回收率。结果表明,该法回收率良好。
表8:美洲大蠊提取物中KFX-4含量回收率检测结果
Figure GSA00000051704800141
Figure GSA00000051704800151
精密移取090807批康复新液离心清液5ml,分别加入加样对照品溶液(19.6μg/ml)0.4ml、0.5ml、0.6ml,每个浓度三份,共9份,按测定法制成样品溶液,进行色谱分析,记录峰面积并计算回收率。
表9 康复新液中KFX-4含量回收率检测结果
Figure GSA00000051704800152
结果表明,该法回收率良好。
11.方法的耐用性
11.1流速影响:在色谱条件中,改变流速为0.7ml/min或0.9ml/min,其他条件不变,按方法检测样品溶液,并与正常检测的数据进行对比。
表10 流速对美洲大蠊提取物中KFX-4含量检测影响(T090104)
Figure GSA00000051704800161
表11 流速对康复新液中KFX-4含量检测影响(090807)
Figure GSA00000051704800162
11.2柱温的影响:在色谱条件中,改变柱温为25℃或35℃,其他条件不变,按方法检测样品溶液,并与正常检测的数据进行对比。
表12 柱温对美洲大蠊提取物中KFX-4含量检测影响(T090104)
Figure GSA00000051704800171
表13 柱温对康复新液中KFX-4含量检测影响(090807)
11.3不同液相系统及不同厂家的色谱柱的影响:在色谱条件中,选择不同厂牌的色谱柱,其他条件不变,按方法检测样品溶液,并与正常检测的数据进行对比。
表14 不同厂家的色谱柱对美洲大蠊提取物中KFX-4含量检测影响(T090104)
Figure GSA00000051704800182
  总平均值(mg/g)   0.248
  总RSD(%)   3.0
表15 不同厂家的色谱柱对康复新液中KFX-4含量检测影响(090807)
Figure GSA00000051704800191
11.4流动相比例调整:在色谱条件中,改变流动相比例为甲醇∶水=18∶82或22∶78 V/V,其他条件不变,按方法检测样品溶液,并与正常检测的数据进行对比。
表16 不同流动相比例对美洲大蠊提取物中KFX-4含量检测影响(T090104)
表17 不同流动相比例对康复新液中KFX-4含量检测影响(090807)
以上数据表明:本法耐用性良好。

Claims (5)

1.一种美洲大蠊提取物中活性成份KFX-4的检测方法,其特征在于该方法包括下列步骤:
(1)色谱条件与系统:以十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;以甲醇或乙腈-水0-50∶100-50V/V为流动相,流速0.2-2.0ml/min;检测波长为210nm-400nm中的一个或几个波长或二极管阵列检测器,进样量:5-50μl,理论板数按KFX-4峰计算应不低于4000,且与相邻杂质峰的分离度均大于1.5;
(2)对照品溶液的制备:取KFX-4对照品适量,精密称定,加甲醇或乙腈的5-50%水溶液,制成每ml含2-100μg KFX-4的溶液,即得;
(3)美洲大蠊提取物供试品溶液的制备取美洲大蠊提取物约1g,精密称定,置10ml量瓶内,加水约5-7ml,加热或超声使溶解,加水定容,离心,取离心清液1-5ml,过固相萃取小柱或聚苯乙烯型吸附树脂,用水1-5ml洗涤两次,弃去,用甲醇或乙腈的5-50%水溶液2ml洗脱或梯度洗脱,合并洗脱液,置水浴蒸干,残渣用甲醇或乙腈的5-50%水溶液溶解并定量转移到1ml或2ml量瓶,离心,上清液作为供试品溶液;
(4)分别取上述溶液进行色谱分析,以峰面积外标法计算KFX-4含量。
2.根据权利要求1所述一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法,其特征在于所述活性成份为(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。
3.根据权利要求1所述一种美洲大蠊提取物中活性成份的检测方法,其特征在于所述方法用于检测中药康复新液中的(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷含量。
4.根据权利要求4所述的方法,其特征在于所述检测中药康复新液中的(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷含量包括下列步骤:
(1)色谱条件与系统:以十八烷基硅烷键合硅胶为填充剂;以甲醇或乙腈-水0-50∶100-50V/V为流动相,流速0.2-2.0ml/min;检测波长为210nm-400nm中的一个或几个波长或二极管阵列检测器,进样量:5-50μl,理论板数按KFX-4峰计算应不低于4000,且与相邻杂质峰的分离度均大于1.5;
(2)对照品溶液的制备:取KFX-4对照品适量,精密称定,加甲醇或乙腈的5-50%水溶液,制成每ml含2-100μg(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷的溶液,即得;
(3)康复新液供试品溶液的制备:精密量取康复新液10ml,经10000rpm,离心10min,取上清液过固相萃取小柱或聚苯乙烯型吸附树脂,用1-5ml水洗涤,弃去洗涤液,再用0.01-0.5mol/L氢氧化钠溶液1-5ml洗涤,弃去洗涤液;最后用甲醇或乙腈的5-50%水溶液1-5ml洗脱或梯度洗脱,收集洗脱液,作为供试品溶液;
(4)分别取上述溶液进行色谱分析,以峰面积外标法计算(3R)-3-甲基-7-羟甲基-8-羟基-3,4-二氢异香豆素-6-O-β-D-吡喃葡萄糖苷含量。
5.根据权利要求1或4所述的检测方法,其特征在于所述固相萃取柱为反相聚合物固相萃取柱,包括ODS或HLB或Strata X固相萃取柱的任一种;所述聚苯乙烯型吸附树脂,包括D101、MN200、HPD100、HPD400、HPD450、AB-8、D4020、S-8,HZ806或HP-20的任一种。
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