高耐受草甘膦的EPSP合酶及其编码序列
技术领域
本发明涉及一种新型高耐受草甘膦的EPSP合酶(5-烯醇式丙酮莽草酸-3-磷酸合酶),以及编码该合酶的核苷酸序列。
背景技术
草甘膦(glyphosate)为Monsanto公司产品Roundup
中的主要活性成分,该除草剂是一种广谱灭生性、内吸传导型优秀除草剂,是全世界使用量最大的除草剂品种之一。但是,该除草剂也是一种非选择性除草剂,对农作物同样有着杀死作用。为在农业生产中使用草甘膦,须培育出具有草甘膦抗性或降解性质农作物。
草甘膦抑制植物莽草酸代谢过程中5-烯醇式丙酮莽草酸-3-磷酸合酶(EPSP)活性,进而阻断芳香族氨基酸的生物合成而使植物死亡(S.R.Padgette et al.,in Herbicide-Resistent Crops:Agricultural,Environmental,Economic,Regulatory,and TechnicalAspects,S.O.Duke,Ed.(CRC Press,Boca Raton,FL,1996),pp.53-84),当前全球商业化种植的所有草甘膦抗性转基因作物均为针对EPSP所设计,是目前商业化转基因抗草甘膦作物的唯一作用机制。应用化学诱变细菌产生的aroA突变体,抗药性机理研究确证了aroA基因是草甘膦作用靶标EPSP合酶的编码基因。美国Mosanto和Calegene等公司在EPSP合酶的编码基因aroA及其抗草甘膦转基因植物等方面已申请了100余份专利,获得转基因抗草甘膦大豆、玉米、油菜、甜菜和棉花等作物系列品种,其中大豆等多种转基因作物已进入商品化生产。
目前尚未见到在核苷酸水平与已报道的EPSP合酶编码基因(aroA)同源性较低的抗草甘膦的EPSP合酶。
发明内容
本发明的目的是发现并人工合成新型高耐受草甘膦的EPSP合酶以及编码该合酶的核苷酸序列,并将该序列转入植物中,培育新型的高耐受草甘膦的转基因植物。
本发明首次发现了一种新型高耐受草甘膦的EPSP合酶,如SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列,以及编码该合酶的核苷酸序列,如SEQ ID NO:2或SEQ ID NO:3所示。经序列结构分析和序列比较分析(见图3),显示该EPSP合酶属于I型EPSP合酶。
本发明采集草甘膦极端污染环境中土壤样品,用免培养方法从中分离群落水平总DNA,构建群落水平总DNA粘粒文库,并筛选草甘膦抗性转化子;将转化子点于含20mM草甘膦的M9固体培养基上筛选抗性转化子。本发明还进行了草甘膦耐受实验,结果表明上述转化子具有非常强的草甘膦耐受活性。
本发明还进行了高耐受草甘膦的DNA片段的全核苷酸序列测定。分析结果表明,插入的片段大小为3151bp,其中包含了一个1335bp的阅读框,其序列如SEQ ID NO:2所示,它包含的核苷酸序列全长为1335个碱基,其开放读框位于885-2220位,编码全长为445个氨基酸的EPSP合酶(如SEQ ID NO:1所示)。
本发明对上述高耐受草甘膦的EPSP合酶基因进行了人工合成,其序列如SEQ ID NO:3所示。将人工合成的5′和3′端酶切位点为BamHI和HindIII位点EPSP基因,用于表达高耐受草甘膦的EPSP合酶以及构建相应的基因植物表达载体。将上述人工合成的EPSP基因,用BamHI和HindIII酶切后,连入相同酶切的载体pET28a得到重组质粒pETGR-79并将其转化大肠杆菌BL21(DE3)(Promega公司)。
本发明还进行了EPSP的酶活测定和动力学参数的测定,酶活性为10.477U/mg。Ki/Km为2.16。根据动力学参数可知,GR-79 EPSP不仅具有较高的草甘膦抗性,而且还保持着与PEP较强的亲和性,这些特性将为用于转基因作物的培育提供可能。
本发明构建了高耐受草甘膦的EPSP合酶基因植物表达载体,利用叶盘法转化构建抗草甘膦的转基因烟草,经草甘膦抗性梯度实验证明,转基因植物能在含20mM草甘膦的培养基上良好生长。
本发明还提供了一种重组载体,它包含SEQ ID NO:2所述的DNA。本发明用上述重组载体转化宿主细胞,这些宿主包括原核细胞,也包括真核细胞。
本发明还提供了一种利用转基因技术将SEQ ID NO:2转化入植物的方法,以提高植物对草甘膦抗性,其步骤如下:
(1)将SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2所示序列可操作地连于植物表达调控序列,形成植物表达载体;
(2)将步骤(1)中的表达载体转入植物细胞;
(3)经筛选获得转化细胞并最终再生转基因植株及其后代,包括植物种子及植物组织。
上述“可操作地连于”表示如下情况:即线性DNA序列的某些部分能够影响同一线性DNA序列其他部分的活性。例如,如果信号肽DNA作为前体表达并参与多肽的分泌,那么信号肽(分泌前导序列)DNA就是可操作地连于多肽DNA;如果启动子控制序列的转录,那么它是可操作地连于编码序列;如果核糖体结合位点被置于能使其翻译的位置时,那么它是可操作地连于编码序列。一般,“可操作地连于”意味着相邻,而对于分泌前导序列则意味着在阅读框中相邻。
上述载体可选用本领域已知的各种载体,如市售的载体,包括质粒,粘粒等。
在本发明中,EPSP合酶编码基因指编码具有SEQ ID NO:1蛋白活性的多肽的核苷酸序列及其简并序列。该简并序列是指所述序列中有一个或多个密码子被编码相同氨基酸的简并密码子所取代后而产生的序列。由于密码子的简并性,所以与SEQID NO:2同源性低至约89%的简并序列也能编码出SEQ ID NO:2所述的序列。该术语还包括能在中度严谨条件下,更佳的在高度严谨条件下与SEQ ID NO:2核苷酸序列杂交的核苷酸序列。该术语还包括与SEQ ID NO:2中的核苷酸序列的同源性至少89%,较佳地至少80%,更佳地至少90%,最佳地至少95%的核苷酸序列。
该术语还包括能编码具有与天然的SEQ ID NO:1相同功能的蛋白的SEQ ID NO:2中开放阅读框序列的变异形式。这些变异形式包括(但并不限于):若干个(通常为1-90个,较佳地1-60个,更佳地1-20个,最佳地1-10个)核苷酸的缺失、插入和/或取代,以及在5’和/或3’端添加数个(通常为60个以内,较佳地为30个以内,更佳地为10个以内,最佳地为5个以内)核苷酸。
在本发明中,SEQ ID NO:1蛋白还包括具有与SEQ ID NO:1的相同功能的变异形式。这些变异形式包括但并不限于若干个(通常为1-50个,较佳地1-30个,更佳地1-20个,最佳地1-10个)氨基酸的缺失、插入和/或取代,以及在C末端和/或N末端添加一个或数个(通常为20个以内,较佳地为10个以内,更佳地为5个以内)氨基酸。例如,在所述蛋白中,用性能相近或相似的氨基酸进行取代时,通常不会改变蛋白质的功能。又比如,在C末端和/或N末端添加一个或数个氨基酸通常也不会改变蛋白质的功能。该术语还包括SEQ ID NO:1蛋白的活性片段和活性衍生物。
所述多肽的变异形式包括:同源序列、EPSP合酶保守性变异多肽、等位变异体、天然突变体、诱导突变体、在高或低的严谨条件下能与SEQ ID NO:2杂交的DNA所编码的蛋白、以及利用SEQ ID NO:1多肽的抗血清获得的多肽或蛋白。
上述“EPSP合酶保守性变异多肽”指与SEQ ID NO:1的氨基酸序列相比,有至多10个,较佳地至多8个,更佳地至多5个,最佳地至多3个氨基酸被性质相似或相近的氨基酸所替换而形成多肽。这些保守性变异多肽可以根据表1进行氨基酸替换而产生。
表1氨基酸替换表
最初的残基 |
代表性的取代 |
优选的取代 |
Ala (A) |
Val;Leu;Ile |
Val |
Arg (R) |
Lys;Gln;Asn |
Lys |
Asn (N) |
Gln;His;Lys;Arg |
Gln |
Asp (D) |
Glu |
Glu |
Cys (C) |
Ser |
Ser |
Gln (Q) |
Asn |
Asn |
Glu (E) |
Asp |
Asp |
Gly (G) |
Pro;Ala |
Ala |
His (H) |
Asn;Gln;Lys;Arg |
Arg |
Ile (I) |
Leu;Val;Met;Ala;Phe |
Leu |
Leu (L) |
Ile;Val;Met;Ala;Phe |
Ile |
Lys (K) |
Arg;Gln;Asn |
Arg |
Met (M) |
Leu;Phe;Ile |
Leu |
最初的残基 |
代表性的取代 |
优选的取代 |
Phe (F) |
Leu;Val;Ile;Ala;Tyr |
Leu |
Pro (P) |
Ala |
Ala |
Ser (S) |
Thr |
Thr |
Thr (T) |
Ser |
Ser |
Trp (W) |
Tyr;Phe |
Tyr |
Tyr (Y) |
Trp;Phe;Thr;Ser |
Phe |
Val (V) |
Ile;Leu;Met;Phe;Ala |
Leu |
附图说明
图1是GR-79克隆草甘膦抗性分析图,图中:GR-79-ER菌株是土壤总DNA部分酶切后与载体pACYC184连接后转化入EPSP合酶缺陷型大肠杆菌ER2799菌株(NEB公司)后获得的草甘膦抗性菌株。
CP4-ER菌株是将来源于Agrobacterium sp.cp4的EPSP合酶基因与载体pACYC184连接后转化入EPSP合酶缺陷型大肠杆菌ER2799菌株(NEB公司)后获得的草甘膦抗性菌株。本图中作为阳性对照。
pACYC184-ER是含有pACYC184质粒(NEB公司)的EPSP合酶缺陷型大肠杆菌ER2799菌株。本实验中作为阴性对照。
本图是将三株菌株分别接入到含有0,20,50,80,100,120,150,200,250,300mM草甘膦浓度的限制性培养基M9中,经过37℃、36h的摇床培养后,测定菌液在OD600时的吸光度值,所绘制而成。
图中可见菌株GR-79-ER在含有250mM浓度的草甘膦的限制性培养基中能够生长,说明该菌株草甘膦抗性能达250mM。说明质粒上携带的外源片段能够对缺陷型菌株ER2799进行功能互补。而阴性对照菌株不能在限制性培养基中生长,不能对缺陷型菌株进行功能互补。阳性对照菌株草甘膦抗性达200mM。
图2是GR-79的EPSP合酶在不同时间的蛋白表达。
GR-79菌株中的EPSP合酶基因与pET28a载体连接后转入BL21中,在IPTG的诱导下进行蛋白表达,取样时间分别间隔一小时。样品经过煮沸后经SDS-PAGE电泳分离。结果显示该菌株在4小时的蛋白表达量就已经达较高程度。表达的蛋白为可溶性蛋白。大小约45kD。
图3是GR-79氨基酸序列与报道的Class I和Class II典型类型的氨基酸序列的比较。
比较结果显示GR-79的氨基酸序列属于Class I类型的EPSP合酶。并且GR-79的EPSP合酶是一种具有草甘膦抗性的I型酶。
具体实施方式
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于举例说明本发明的方法,而不用于限制本发明的范围。凡未注明具体实验条件的,均为按照本领域技术人员熟知的常规条件。
实施例1 高耐受草甘膦的DNA片段克隆
1、草甘膦极端污染环境中土壤样品的采集
从被50%左右草甘膦污染达十年以上的土壤中(河北某化工有限公司草甘膦生产工厂开放式分装点)采集土壤样品。
2、采用免培养方法从草甘膦极端污染土壤样品中分离群落水平总DNA
称取草甘膦污染土壤样品2克,加入0.6g细玻璃珠(d<0.11mm),4000转/分振荡2次。加入300μl 2%SDS+12%苯酚Tris缓冲液(pH8.0)溶液冰上1小时,加入等量苯酚Tris缓冲液,pH8.0(约700ml),充分混匀,经4℃,13,000rpm离心5分钟。上层溶液加入0.1倍体积的3M NaAc pH5.2,混匀后加入0.6倍体积异丙醇混匀。DNA沉淀溶于200μl1xTE(粗DNA)。称100mg氯化铯置于一个新的1.5ml Epp.离心管中,加入100μl粗DNA轻轻混匀,室温黑暗条件下静置1-3小时。室温,13,000rpm,离心20分钟。上清液中加入400μl无菌去离子水和300μl异丙醇,室温静置30分钟。室温,13,000rpm,离心20分钟。沉淀溶于100μl 1xTE和40μl 8M醋酸钾(KAc),室温静置15分钟。4℃,13,000rpm离心15分钟。上清液加入0.6倍体积异丙醇混匀。室温静置30分钟。室温,15,000rpm离心20分钟。DNA沉淀溶于100μl 1xTE。
采用Wizard spin column clean-up分离试剂盒纯化DNA样品。纯化DNA溶于总体积为100μl的10mM Tris-EDTA(pH8.0)缓冲液中。
3、群落水平总DNA粘粒文库的构建
土壤细菌DNA用Sau3AI在10μl反应体系进行部分酶切试切,Sau3AI酶按1∶100稀释,37℃,分别酶切10min,20min,30min,40min,50min,60min后加入10×loading buffer1μl终止反应,电泳检测最适酶切反应时间。而后选择相同的体系酶切30min进行大量酶切。经琼脂糖凝胶电泳后切胶回收2~6kb DNA片段备用。质粒载体pACYC184(NEB公司)用BamHI完全酶切后用SAP碱性磷酸脂酶进行末端去磷酸化,以减少载体自连。上述回收后的土壤细菌DNA(200ng)和末端去磷酸化的质粒载体pACYC184(150ng)用2U的T4 ligase在4℃下连接16h。
上述连接产物转入E.coli ER2799(NEB公司)电击感受态细胞,涂布LB+Cmr。然后将LB板上生长的克隆影印到M9+Cmr+50mM草甘膦的平板,37℃培养48h。将平板上生长的菌经LB平板划线培养后,将这些菌落再接种到含不同草甘膦浓度的M9平板上(100,150mM草甘膦)。将这些重组菌中的质粒抽提后重新转化ER2799后涂布M9+Cmr平板验证(ER2799+pACYC184为对照),同时进行重组质粒酶切验证。
4、筛选草甘膦抗性转化子
将转染细菌涂布含Cm(氯霉素)、的LB平板上,37℃培养20h后,约有5000个菌落生长,将这些菌落影印到含Cmr和50mM草甘膦的M9平板上培养48h后,有三个菌落生长。将这三个菌落接种到含100mM、150mM的草甘膦的M9平板上培养,发现只有1个克隆能在含150mM的草甘膦的M9平板上生长,其所含的质粒被命名为pACYCGR-79。从该克隆抽提的质粒pACYCGR-79转入大肠杆菌ER2799(NEB公司)或大肠杆菌JM109(Promega公司)中,将转化子用无菌牙签点于含20mM草甘膦的M9固体培养基上检验抗性,结果证明这个克隆所产生的转化子均具有抗草甘膦特性,表明抗草甘膦特性确实是由于转入pACYCGR-79引起的。
5、草甘膦耐受实验
将大肠杆菌ER2799(含携带有新克隆的pACYCGR-79质粒)接种到含0~200mm草甘膦的M9液体培养基(Cmr)中,经过37℃、36h的摇床培养后,测定培养物的OD600。同时以无插入片段的质粒的大肠杆菌ER2799为阴性对照。
结果:将ER2799(携带pACYCGR-79质粒)接种到含0~300mM草甘膦的M9液体培养基(Cmr)中,经过37℃、36h的摇床培养后,发现阴性对照在M9中几乎不能生长;而ER2799(pACYCGR-79)在含有250mM草甘膦的M9液体培养基中还能生长(见图1)。
这一结果说明pACYCGR-79上携带的外源片段具有非常强的草甘膦耐受活性。而带有CP4质粒阳性对照菌只能在200mM的液体培养基中生长。
实施例2高耐受草甘膦的DNA片段的序列分析及其EPSP合酶功能验证
1、高耐受草甘膦的DNA片段的序列分析
对实施例1中所亚克隆的高耐受草甘膦DNA片段进行全核苷酸序列测定。分析结果表明,插入的片段大小为3151bp,其中包含了一个1335bp的阅读框,其序列如序列1所示,它包含的多核苷酸序列全长为1335个碱基,其开放读框位于885-2220位,编码全长为445个氨基酸的EPSP合酶。
将所亚克隆的高耐受草甘膦编码序列与已报道的EPSP合酶编码基因(aroA)比较,在核苷酸水平同源性较低。
氨基酸序列同源性分析结果表明,GR-79氨基酸序列与已报道的典型的I型EPSP合酶的氨基酸同源率均高于该酶与II型EPSP合酶的氨基酸序列的同源率,并且GR79氨基酸序列中不含有II型酶中典型的保守氨基酸区段,而含有的保守氨基酸区段类似于I型酶。说明GR-79 EPSP属于I类EPSP。GR-79 EPSP与典型的I型和II型EPSP合酶的系统发育比较结果,如图3所示。
实施例3高耐受草甘膦的EPSP合酶基因的人工合成
根据已完成的含1335bp编码区的核苷酸序列,首先分8个区段分别根据正链和副链序列,分别合成出长度约150-200bp、具有粘性末端的单链寡核苷酸片段。将正链和副链各一一对应的8个互补的单链寡核苷酸片段分别退火,形成8个带有粘性末端的双链寡核苷酸片段。混合双链寡核苷酸片段,经T4 DNA连接酶催化组装成一个完整的EPSP合酶基因。该合成的DNA片段含有SEQ ID NO:2中1-335位的核苷酸序列,并且合成基因的上下游两端含BamHI和HindIII位点。如SEQ ID NO:2所示。
将上述人工合成的5′和3′端酶切位点为BamHI和HindIII位点EPSP基因,用于表达高耐受草甘膦的EPSP合酶以及构建相应的基因植物表达载体。
实施例4高耐受草甘膦的EPSP表达
上述人工合成的5′和3′端酶切位点为BamHI和HindIII位点EPSP基因,用BamHI和HindIII酶切后,连入相同酶切的载体pET28a(NEB公司)得到重组质粒pETGR-79并将其转化大肠杆菌BL21(DE3)(Promega公司)。将转化子先在LB+Kmr培养基中37℃,200rpm培养至OD600值约0.5,加入IPTG(终浓度为0.75mmol/L)后转入37℃诱导蛋白表达,SDS-PAGE电泳检测。
经SDS-PAGE电泳检测,含有pETGR-79的大肠杆菌BL21(DE3)(Promega公司)在37℃经IPTG诱导4h后表达量即达到最高值。目的蛋白为可溶性蛋白;大小约45kD,与预测值相符(见图2)。
实施例5EPSP的酶活测定和动力学参数的测定
1、测定方法
无机磷标准曲线:10mM无机磷标准液按1∶10稀释,分别取0、1、2、3…20μl于1.5mlEppendorf离心管中,加入milli-Q纯水至100μl混匀,加入MAT溶液0.8ml混匀,计时三分钟后加入34%SC溶液100μl迅速混匀,室温静置20min后测定OD660值。重复三次。以无机磷浓度为横坐标,OD660值为纵坐标作图得到无机磷标准曲线。
1)酶活测定:酶粗提物蛋白定量采用考马斯亮蓝G-250染色法(Bradford,1976)。在冰上于1.5ml Eppendorf离心管中加入以下溶液:10mM PEP溶液2μl,10mM S3P溶液2μl,0.5M HEPES溶液2μl,1mM(NH4)6MO7O24·4H2O溶液2μl和milli-Q纯水12μl混匀,于28℃温浴5min后各管样品间隔2S加入1μl粗酶液并计时,2min后再间隔2S依次加入200μl MAT溶液,显色3min后再间隔2S依次加入20μl 34%SC溶液迅速混匀,室温显色20min后测定OD660值。对照除不加酶液外,其余同样品管。样品管与对照管的OD660值相减后,对照无机磷标准曲线即可求得反应释放出的无机磷摩尔量,再除以反应时间和酶蛋白量就得到该酶的酶活力(U/mg)。
2)半抑制剂量(IC50)测定:上述反应液中添加0、10-3、10-2、10-1、1、10、100、500mM草甘膦,所得酶比活力数据以草甘膦浓度为X轴,采用对数坐标,以反应速度V(U/mg)为Y轴作图。
3)Km(PEP)测定:将S3P溶液浓度恒定于1mM,在不同PEP浓度(0.05、0.067、0.1、0.2、0.5、1.0mM)下按上述反应体系测定酶反应速度,所测数值按V-v/[S](Eadic-Hofstee)法作图。
Ki(glyphosate)测定:在不同草甘膦浓度(0、10、50、100μM)下测定PEP浓度为66.7、100、200、500μM时EPSP的酶反应速度。采用双对数作图,得到1/V-1/[S]直线,再将各直线的斜率作为纵坐标,草甘膦浓度作为横坐标得到一条新的直线,该直线与X轴的交点即为Ki(glyphosate)值。
2、结果
GR-79 EPSP的酶活性为10.477U/mg,GR-79 EPSP测定如表2所示:
表2 GR-79 EPSP的动力学参数
动力学参数 |
测定值 |
IC<sub>50</sub>(glyphosate;mM) |
12.65±0.012 |
K<sub>m</sub>(PEP;mM) |
0.0792±0.032 |
动力学参数 |
测定值 |
K<sub>i</sub>(glyphosate;mM) |
0.171±0.002 |
K<sub>i</sub>/K<sub>m</sub> |
2.16 |
根据GR-79 EPSP的动力学参数可知,GR-79 EPSP不仅具有较高的草甘膦抗性,而且还保持着与PEP较强的亲和性,这些特性将为将GR-79 EPSP用于转基因作物的培育提供可能。
实施例6高耐受草甘膦的EPSP合酶基因植物表达载体的构建
高耐受草甘膦的EPSP合酶基因植物表达载体构建的具体方法如下:
A.pBI121(ClonTech公司)和pCAMBIA2301(ClonTech公司)用HindIII和EcoRI双酶切,将pBI121带有p35S-GUS-Nos-ter的片段连入pCAMBIA2301,形成中间载体p35S-2301-GUS;
B.用XbaI和SacI双切p35S-2301-GUS和上述人工合成的EPSP基因,用EPSP置换p35S-2301-GUS相应酶切位点的GUS,从而获得高耐受草甘膦的EPSP合酶基因植物表达载体。再将其转入农杆菌中,用于转化模式植物烟草。
实施例7利用叶盘法转化构建抗草甘膦的转基因烟草
(1)用无菌牙签挑取YPE选择平板上的实施例5中制备的阳性克隆,接种于2MLYPE液体(Smr,Kanr),28℃,200rpm振荡培养24-36小时;
(2)室温下4,000g离心10分钟;
(3)弃上清,菌体用1/2MS液体培养基悬浮,稀释到原体积的5-20倍,使菌体的OD600在0.5左右;
(4)取生长两周左右的烟草的无菌叶片,去掉其主叶脉,将其剪成约1cm2见方的小叶片;
(5)将叶片放入制备好的菌液中,浸泡2-5分钟,在无菌滤纸上吸干菌液;把经浸染的叶片放于MS培养基上,28℃暗培养48小时;
(6)将叶片转到愈伤培养基(MS+6-BA 1.0mg/l+NAA 0.1mg/l+Kan 50mg/l+羧苄青霉素250mg/l)上,25-28℃光照下培养,7-15天可见愈伤组织的形成;
(7)约20天后可见分化芽长出,待芽长大后,切下,置于生根培养基(1/2MS+NAA0.5mg/l+Kan 25mg/l)上进行生根培养,2-7天左右生根;
(8)待根系发达后,将植株取出,用无菌水洗净附着着的固体培养基,移入土壤中,刚开始几天用玻璃罩罩几天,待植株健壮后再取下玻璃罩,转移至在含10mM的草甘膦的固体培养基中筛选草甘膦抗性的植株。
(9)抗性植株经Southern、Northern杂交以及Westhern blot验证为转基因的抗性植株。
(10)在温室中经草甘膦抗性梯度实验证明,转基因植物能在含20mM草甘膦的培养基上良好生长。
序列表
<110>中国农业科学院生物技术研究所
<120>高耐受草甘膦的EPSP合酶及其编码序列
<130>07-13
<160>2
<170>PatentIn version 3.3
<210>1
<211>445
<212>PRT
<213>未知
<400>1
Met Ser His Ser Thr Ser Arg Ser Pro Trp Ser Lys Ala Thr Glu Tyr
1 5 10 15
His Glu Ala Leu Val Thr Pro Thr Ser Asn Lys Ile Asn Gly Glu Ile
20 25 30
Phe Val Pro Gly Ser Lys Ser Tyr Thr Asn Arg Ala Leu Ile Ile Ala
35 40 45
Ala Leu Ala Glu Gly Thr Ser Thr Leu Lys Gly Ile Leu Lys Ser Asp
50 55 60
Asp Ser Tyr Trp Cys Ile Asp Ala Leu Arg Arg Leu Gly Ile Lys Ile
65 70 75 80
Glu Val Ala Glu Glu Thr Val Thr Ile His Gly Cys Gly Gly Lys Trp
85 90 95
Pro Val Gln Ser Ala Glu Leu Phe Ile Gly Ala Ala Gly Thr Ile Ala
100 105 110
Arg Phe Leu Pro Gly Ala Leu Ala Val Ala Gln Gln Gly Glu Trp Ile
115 120 125
Val Asp Gly Val Pro Gln Leu Arg Glu Arg Pro Leu Lys Pro Leu Val
130 135 140
Asp Ala Leu Thr Gln Leu Gly Gly Arg Ile Glu Tyr Leu Thr Glu His
145 150 155 160
Pro Gly Leu Pro Leu Arg Val Lys Gly Ala Gly Leu Ser Gly Gln His
165 170 175
Val Arg Val Pro Gly Asn Val Ser Ser Gln Phe Leu Ser Gly Leu Leu
180 185 190
Ile Ala Ser Pro Tyr Ala Ser Glu Ala Val Ser Ile Glu Val Ile Asn
195 200 205
Gly Leu Val Gln Pro Ser Tyr Ile Ala Ile Thr Ile Gln Leu Met Arg
210 215 220
Glu Phe Gly Ala Lys Val Glu His Asn Glu Asp Tyr Ser Leu Phe Lys
225 230 235 240
Val Tyr Pro Thr Gly Tyr Gln Gly Arg Asp Thr Ile Leu Glu Ala Asp
245 250 255
Ala Ser Thr Ala Cys Tyr Phe Leu Ser Leu Ala Ala Leu Thr Gly Gly
260 265 270
Thr Ile Gln Val Lys Asn Val Gly Tyr His Ser Tyr Gln Pro Asp Ala
275 280 285
Arg Phe Ile Asp Val Leu Glu Gln Met Gly Cys Glu Val Ile Lys Asn
290 295 300
Glu Ser Phe Leu Glu Val Thr Gly Pro Thr Arg Leu Lys Gly Gly Phe
305 310 315 320
Glu Val Asp Met Lys Pro Met Ser Asp Gln Ala Leu Thr Ile Gly Ala
325 330 335
Leu Ala Pro Phe Ala Asp Ala Pro Ile Arg Val Thr Asn Val Ala His
340 345 350
Ile Arg Ala His Glu Ser Asp Arg Ile Ala Val Ile Cys Ser Ser Leu
355 360 365
Gln Gln Met Gly Val Gln Val Glu Glu Arg Glu Asp Gly Phe Thr Ile
370 375 380
Tyr Pro Gly Gln Pro Val Gly Thr Thr Leu Asn Pro His Asp Asp His
385 390 395 400
Arg Asn Ala Met Val Phe Gly Leu Leu Gly Val Lys Val Pro His Ile
405 410 415
Arg Ile Val Asp Pro Gly Cys Val Ser Lys Thr Cys Pro Ala Tyr Phe
420 425 430
Glu Glu Leu Gln Lys Phe Gly Ile His Val Glu Tyr Asn
435 440 445
<210>2
<211>1335
<212>DNA
<213>未知
<400>2
atgtcacatt ctacctctag gtccccatgg tccaaggcta ctgagtacca tgaggcactt 60
gtaacaccaa cctcgaacaa gattaacggt gaaatatttg tacctggctc aaagagctat 120
accaatcgag ctctaatcat tgctgcttta gcagagggga cttctacact taagggaata 180
ttaaagagtg atgattccta ctggtgtatt gatgccttaa ggaggcttgg cattaagatc 240
gaggttgccg aagagacggt caccattcat ggctgtggag gaaaatggcc agttcaatct 300
gcagagcttt ttattggggc tgcaggtacc attgcccgct tccttccagg agccttagct 360
gttgcccagc aaggggagtg gatcgtagat ggggttccac aactgcgaga aagaccatta 420
aaacctttag tggatgcctt aactcagctt ggtggtagaa tagagtatct gactgagcat 480
ccgggtctgc ctttacgagt aaagggggca ggtctaagtg gacagcatgt aagggtgcca 540
ggaaatgtct ctagccaatt tttaagtggt ttattaatcg ccagtcctta tgcctcagaa 600
gctgtcagca ttgaggtaat caatggactc gttcaaccgt cttacattgc cattacgatt 660
cagttaatga gagaatttgg tgccaaagtg gagcataatg aggattacag tctctttaag 720
gtttacccta ctggatacca aggtcgtgat accatacttg aggcagatgc ttcaacagcc 780
tgctattttc tatccttagc agcgttaact ggaggtacca tccaggtgaa gaatgttggc 840
tatcattcgt atcagccaga tgctcgtttc attgatgtgt tagagcaaat gggctgtgaa 900
gtgattaaga atgagtcatt cctagaggtt acaggcccaa cccgattaaa gggtggcttc 960
gaggtggata tgaagcctat gtctgaccaa gcgttgacca taggcgcatt agctcctttt 1020
gcagatgcac cgattcgggt aaccaatgtc gctcacatta gggctcatga gtcagaccgg 1080
atagctgtta tttgttcctc gttacagcag atgggagttc aggtagagga gagagaggat 1140
ggctttacta tctatccagg tcagccagtg ggtacaacgc ttaatcctca tgatgatcat 1200
cgtaatgcaa tggtattcgg tttacttgga gtaaaagtac cacatattag aatagtcgat 1260
ccgggttgtg tatctaagac ctgcccagcc tattttgaag agctgcagaa gtttggaata 1320
catgtggagt ataat 1335
<210>3
<211>1335
<212>DNA
<213>人工序列
<400>3
atgtcacatt ctacctctag gtccccatgg tccaaggcta ctgagtacca tgaggccctt 60
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gaggttgccg aggagaccgt gaccattcat ggctgcggag gaaagtggcc agttcaatct 300
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ccgggttgcg tgtctaagac ctgcccagcc tacttcgaag agctccagaa gttcggaatc 1320
catgtggagt acaac 1335