CN101152192B - 1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖在制备抗肿瘤药物中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖在制备抗肿瘤药物中的应用,具体是指所述的吡喃葡萄糖在制备肿瘤细胞生长的抑制剂和肿瘤细胞凋亡的诱导剂中的应用。本发明还提供了一种抗肿瘤药物,该药物含有5~20%的1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖。
Description
技术领域
本发明涉及医药领域,具体涉及1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖的新用途。
背景技术
1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖是从蛇菰科(Balanophoraceae)植物日本蛇菰(Balanophora japonica Makino)的地上部分的甲醇提取物中分离出来的一种化合物,其化学式如式I所示。该化合物是一种黄色无结晶粉末。(Caffeoyl,Coumaroyl,Galloyl,and Hexahydroxydiphenoyl Glucoses from Balanophora japonica.Zhi-Hong JIANG,YokoHIROSE,et.Chem.Pharm.Bull.49(7)887-892(2001)Chem.),未见这类化合物的药理活性、用途、药剂及其他的报道。
发明内容
本发明的目的是提供1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖在制药中的新用途。
实际上,本发明涉及1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖在制备抗肿瘤药物中的应用。
本发明所述的应用是利用1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖抑制肿瘤细胞生长、诱导肿瘤细胞凋亡,来达到抗肿瘤目的的,因此,本发明所述的化合物在制备抗肿瘤药物中的应用,具体是指所述的吡喃葡萄糖在制备肿瘤细胞生长的抑制剂和肿瘤细胞凋亡的诱导剂中的应用。
本发明所述的抗肿瘤药物,该药物由1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖和医学上可接受的辅料或载体组成;其中1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖的有效用量为5~20%。
下面将通过实验来证明本发明的具有的技术效果。
1、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对人肺癌细胞株A549增殖的影响
1)实验方法
(1)A549细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,96孔培养板每孔接种190μl,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后,每孔加入10μl的CCK-8(cell counting kit8)试剂,37℃,5%CO2及饱和湿度条件下继续培养1.5小时。
用酶标仪测定在波长为450nm处的吸光度值(OD),650nm作为参考波长,细胞生长抑制率按公式:抑制率=(对照孔OD值-实验孔OD值)/对照孔OD值)×100%计算。
2)实验结果:
表2本发明化合物对A549细胞增殖的影响
分组 | 抑制率(%) |
阳性对照组 | 47.50 |
本发明实验组5 | 9.52 |
本发明实验组4 | 13.34 |
本发明实验组3 | 29.61 |
本发明实验组2 | 40.52 |
本发明实验组1 | 51.67 |
结果如表2所示,1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能有效抑制A549细胞增殖,其抑制率随剂量加大而递增下面将采用人肝癌细胞株HepG2为模型进行1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖的抗肿瘤活性检测。
2、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对HepG2细胞增殖的影响
1)实验方法
(1)HepG2细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,96孔培养板每孔接种190μl,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后,每孔加入10μl的CCK-8(cell counting kit8)试剂,37℃,5%CO2及饱和湿度条件下继续培养1.5小时。
用酶标仪测定在波长为450nm处的吸光度值(OD),650nm作为参考波长,细胞生长抑制率按公式:抑制率=(对照孔OD值-实验孔OD值)/对照孔OD值)×100%计算。
2)实验结果:
表1本发明化合物对HepG2细胞增殖的影响
分组 | 抑制率(%) |
阳性对照组 | 65 |
本发明实验组5 | 14.52 |
本发明实验组4 | 32.09 |
本发明实验组3 | 47.98 |
本发明实验组2 | 60.66 |
本发明实验组1 | 69.91 |
结果如表1所示,1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能有效抑制HepG2细胞增殖,其抑制率随剂量加大而递增。
3、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对人结肠癌细胞株SW480增殖的影响。
1)实验方法
(1)SW480细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,96孔培养板每孔接种190μl,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后,每孔加入10μl的CCK-8(cell counting kit8)试剂,37℃,5%CO2及饱和湿度条件下继续培养1.5小时。
用酶标仪测定在波长为450nm处的吸光度值(OD),650nm作为参考波长,细胞生长抑制率按公式:抑制率=(对照孔OD值-实验孔OD值)/对照孔OD值)×100%计算。
2)实验结果:
表3本发明化合物对SW480细胞增殖的影响
分组 | 抑制率(%) |
阳性对照组 | 82.48 |
本发明实验组5 | 21.73 |
本发明实验组4 | 36.43 |
本发明实验组3 | 44.28 |
本发明实验组2 | 55.21 |
本发明实验组1 | 69.54 |
结果如表3所示,1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能有效抑制SW480细胞增殖,其抑制率随剂量加大而递增。
4、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对人大肠癌细胞株LoVo细胞增殖的影响
1)实验方法
(1)LoVo细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,96孔培养板每孔接种190μl,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后,每孔加入10μl的CCK-8(cell counting kit8)试剂,37℃,5%CO2及饱和湿度条件下继续培养1.5小时。
用酶标仪测定在波长为450nm处的吸光度值(OD),650nm作为参考波长,细胞生长抑制率按公式:抑制率=(对照孔OD值-实验孔OD值)/对照孔OD值)×100%计算。
2)实验结果:
表4本发明化合物对LoVo细胞增殖的影响
分组 | 抑制率(%) |
阳性对照组 | 88.24 |
本发明实验组5 | 16.31 |
本发明实验组4 | 29.61 |
本发明实验组3 | 42.53 |
本发明实验组2 | 62.16 |
本发明实验组1 | 75.91 |
结果如表4所示,1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能有效抑制LoVo细胞增殖,其抑制率随剂量加大而递增。
5、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对人大肠癌细胞株MGC-803细胞增殖的影响
1)实验方法
(1)MGC-803细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,96孔培养板每孔接种190μl,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后,每孔加入10μl的CCK-8(cell counting kit8)试剂,37℃,5%CO2及饱和湿度条件下继续培养1.5小时。
用酶标仪测定在波长为450nm处的吸光度值(OD),650nm作为参考波长,细胞生长抑制率按公式:抑制率=(对照孔OD值-实验孔OD值)/对照孔OD值)×100%计算。
2)实验结果:
表5本发明化合物对MGC-803细胞增殖的影响
分组 | 抑制率(%) |
阳性对照组 | 72.15 |
本发明实验组5 | 15.64 |
本发明实验组4 | 26.75 |
本发明实验组3 | 39.32 |
本发明实验组2 | 53.24 |
本发明实验组1 | 65.12 |
结果如表5所示,1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能有效抑制MGC-803细胞增殖,其抑制率随剂量加大而递增。
6、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对HepG2细胞凋亡的影响
1)实验方法
(1)HepG2细胞培养生长至指数生长期时,即以0.25%胰蛋白酶消化,1000×g离心3min,细胞沉淀以10%FBS的DMEM培养基调整至6×104个/ml,6孔培养板每孔接种1.9ml,置于37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养24小时。
(2)每组设5个复孔,每孔中加入10μl表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)或1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,上述条件下继续培养48小时。
根据所加入的药物将实验分为6组:
阳性对照组:加入EGCG,终浓度为200μM。
本发明实验组1:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为3.75μg/ml。
本发明实验组2:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为7.5μg/ml。
本发明实验组3:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为15μg/ml。
本发明实验组4:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为30μg/ml。
本发明实验组5:加入1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖,终浓度为60μg/ml。
(3)细胞培养48小时后收集细胞后,PBS洗2次细胞,1000rpm,4℃离心,10min。
(4)将1×106个/m1细胞重悬于缓冲液中。
(5)取500ul细胞悬液加入试管中。
(6)加入5ul annexin v-FITC,10ul碘化丙啶入试管中。
(7)避光,室温10min。
(8)上机检测。
2)实验结果
表6 1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对HepG2细胞凋亡的影响
组别 | 坏死率(%) | 凋亡率(%) |
空白对照组 | 9.11 | 12.2 |
阳性对照组 | 14.15 | 39.49 |
本发明实验组1 | 5.77 | 14.27 |
本发明实验组2 | 6.2 | 12.2 |
本发明实验组3 | 5.96 | 9.96 |
本发明实验组4 | 6.5 | 13.36 |
本发明实验组5 | 21.27 | 59.57 |
结果如表6所示,当1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖的最终终浓度为60ug/ml时,HepG2细胞得凋亡率高达50%以上,可见1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能诱导肿瘤细胞凋亡。
7、1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖对HepG2细胞周期的影响
1)实验方法
(1)收集实验6各组48小时后的HepG2细胞沉淀用PBS洗涤2次,细胞沉淀用70%在-20℃欲冷的乙醇固定,置于4℃冰箱保存24h。(细胞沉淀用1ml PBS吹散,再加3ml无水乙醇)
(2)固定后的细胞再次用含1%新生牛血清的PBS洗涤2次,弃上清。
(3)加入0.4ml PBS和RNase A至终终浓度50ug/ml,37℃水浴孵育1h。
(4)加入碘化丙啶至终终浓度50ug/ml,摇匀,4℃避光1h。
将细胞经100目尼龙网过滤至流式细胞仪测定各处理组细胞DNA含量,计算细胞周期百分比。
2)实验结果
表7 1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP- -D-吡喃葡萄糖对HepG2细胞周期的影响
G0G1期(%) | G2M期(%) | S期(%) | |
空白对照 | 72.58 | 9.34 | 18.08 |
阳性对照 | 52.88 | 15.9 | 31.22 |
本发明实验组5 | 50.42 | 13.89 | 35.69 |
本发明实验组4 | 62.74 | 9.48 | 27.79 |
本发明实验组3 | 69.32 | 9.07 | 21.62 |
本发明实验组2 | 71.53 | 9.86 | 18.61 |
本发明实验组1 | 71.21 | 10.72 | 18.06 |
结果如表7所示,经1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖处理后,HepG2细胞G0G1期的细胞增加,证明1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖能阻止细胞的分裂增殖。
8、本发明化合物对荷S180小鼠肿瘤大小的影响
1、将S180瘤源小鼠于传代接种后10天在无菌条件下从腹腔抽出瘤液,用无菌生理盐水调整瘤细胞数至5×106个/ml。
2、取21只小鼠(18-22g/只),分别接种步骤1所得的瘤液0.2ml于右大腿皮下后被随机分为以下5组
(1)本发明化合物低剂量组:给予1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖治疗,5.0mg/kg;
(2)本发明化合物中剂量组:给予1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖治疗,10.0mg/kg;
(3)本发明化合物高剂量组组:给予1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖治疗,20.0mg/kg;
(4)阳性对照组:给予表没食子儿茶素没食子酸酯(Epigallocatechin-3-gallate,EGCG)治疗,20mg/kg;
(5)空白对照组:生理盐水灌胃。
接种次日同时灌胃给药,给药量0.2ml,每日给药一次,连续10天,停药次日称重,解剖后剥离皮下瘤体,称瘤重。按下式计算抑瘤率(%)=(对照组平均瘤重-给药组平均瘤重)/对照组平均瘤重×100%。
表8本发明化合物对荷S180小鼠肿瘤大小的影响
组别 | 剂量 | 瘤质量(g) | 抑瘤率(%) |
空白 | 0 | 1.28±0.11 | |
EGCG | 20mg/kg | 0.65±0.16 | 49.22 |
本发明化合物低剂量组 | 5.0mg/kg | 0.98±0.09 | 23.44 |
本发明化合物中剂量组 | 10.0mg/kg | 0.80±0.13 | 37.50 |
本发明化合物高剂量组 | 20.0mg/kg | 0.62±0.18 | 51.56 |
结果如表8所示,本发明化合物对荷S180小鼠肿瘤的抑制作用随剂量增加而增大,其抑制肿瘤的效果与EGCG相当。
具体实施方式
例1
【制剂处方】
1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖 20g
微晶纤维素 48g
可溶性淀粉 30g
滑石粉 2g
共制1000片,每片含该化合物100mg。
【制备方法】
称取该化合物20g,加可溶性淀粉稀释成50g,混匀,再称取微晶纤维素48g,用95%乙醇制软材,过筛制粒,低温50℃干燥,整粒,加入滑石粉2g,混匀,压片(每0.1g),质检、包装,即得。
【用法用量】
每次2-3片,每日3次。
【适用人群】
适用各种肿瘤患者。
例2:
【制剂处方】
1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖 10g
微晶纤维素 48g
可溶性淀粉 40g
滑石粉 2g
共制1000片,每片含该化合物100mg。
【制备方法】
称取该化合物10g,加可溶性淀粉稀释成50g,混匀,再称取微晶纤维素48g,用95%乙醇制软材,过筛制粒,低温50℃干燥,整粒,加入滑石粉2g,混匀,压片(每0.1g),质检、包装,即得。
【用法用量】
每次2-3片,每日3次。
【适用人群】
适用各种肿瘤患者。
例3:
【制剂处方】
1,3-二-O-没食子酰基1-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖 5g
微晶纤维素 48g
可溶性淀粉 45g
滑石粉 2g
共制1000片,每片含该化合物100mg。
【制备方法】
称取该化合物5g,加可溶性淀粉稀释成50g,混匀,再称取微晶纤维素48g,用95%乙醇制软材,过筛制粒,低温50℃干燥,整粒,加入滑石粉2g,混匀,压片(每0.1g),质检、包装,即得。
【用法用量】
每次2-3片,每日3次。
【适用人群】
适用各种肿瘤患者。
Claims (4)
1.3-二-O-没食子酰基-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖在制备抗肿瘤药物中的应用,所述的肿瘤是肺癌、结肠癌、大肠癌、肝癌和腹水癌。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于所述的药物是抑制肿瘤细胞生长的抑制剂。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于所述的药物是诱导肿瘤细胞凋亡的诱导剂。
4.权利要求1、2或3所述的抗肿瘤药物,该药物由1,3-二-O-没食子酰基-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖和医学上可接受的辅料或载体组成;其中1,3-二-O-没食子酰基-4,6-(S)-HHDP-β-D-吡喃葡萄糖的有效用量为5~20%。
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Zhi Hong Jiang, Yoko Hirose, Hiromi Iwata.Caffeoyl, Coumaroyl, Galloyl, andHexahydrodiphenoylGlucosefrom Balanophora japonica.Chem. Pharm. Bull49 7.2001,49(7),887-892. |
Zhi Hong Jiang, Yoko Hirose, Hiromi Iwata.Caffeoyl, Coumaroyl, Galloyl, andHexahydrodiphenoylGlucosefrom Balanophora japonica.Chem. Pharm. Bull49 7.2001,49(7),887-892. * |
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