发明详述和其优选实施例
如标题所示,本发明涉及用于鉴定和定量包含特异靶序列(TS)的核酸(NA)的探针。与传统方法相比,本发明可以用于均相探测,即不必除去未杂交探针即可检测TS的存在。与已知的均相探针方法相比,本发明至少有下述之一的优点:高灵敏度、高准确性、和快速检测。
本发明是由相连的序列识别单元(SRE)和报告基团(RG)构成的探针(图1)。
以前基于SRE-RG理念的探针存在高背景信号的问题。当RG为荧光原(fluorefore),游离探针具有显著的背景发光,且与TS杂交后荧光强度增加中等(不到4倍,EP0710668A2;Ishiguro等,Nucl.Acids Res.24,4992,1996)。强的背景信号主要由于RG折回到SRE并与之相互作用引起的(图2)。以前探针存在这种问题的原因在于它们具有基于NA的SRE,其序列结构未经优化以最小化来自RG的信号。由于RG是对NA有亲合性的分子(必须如此,否则它不会杂交后与TS结合),故在任何NA类探针中RG有很大倾向折回与SRE相互作用,除非采取预防措施。对RG为阳离子的探针,这是一个特别重要的问题,事实上所有以前这类探针均如此(EP0710668;US 5157032;Ishiguro等,Nucl.Acids Res.24,4992,1996),因为RG与NA静电相吸。
上述问题对所有NA-RG探针普遍存在,无论它们的荧光性质如何。当通过稳定状态或时间分辨方式(time resolved fashion)中的吸收或发光(荧光、磷光)变化,或NMR响应、氧化还原电位,电导率、反应性等的变化测量时,它可能是电磁辐射的相互作用。在所有情况下,基于具有未优化序列的NA探针都遭遇RG的折回结合,并具有不必要的背景信号。
本发明描述了SRE-RG探针,其RG折回至SRE产生背景信号的问题被最小化了。本发明也描述了如何优化探针序列和探测方法以改进探针可观察的性质的变化。最后,还描述了一种与TS结合时显示比相应的NA-RG探针信号更强的SRE-RG探针。
序列识别单元
本发明探针特征为,SRE单元具有能最小化与RG的相互作用的结构,或者与RG相互作用后使RG信号特征变化的最小结构(化学结构或序列结构或两者共有)。SRE可以为在与RG附着的末端有特异碱基的NA,或者SRE与NA化学和/或结构不同。它可以是一种与天然NA不同的核酸类似物(NAA)(此处与寡核苷酸类似物等同),但通过核苷酸碱基间专属配对识别它们。它也可以是与特异于NA;s的序列结合的肽(图3),它可以是肽和NAA的组合,在合适设计中,它也可以是肽和NA的组合。它还可以是与NA序列特异结合的有机合成分子。
在优选的实施方案中,SRE是NAA。对NAA,我们指线型聚合物,其由含核苷酸碱基的单元构成,但由于具有修饰或替换的磷酸二酯骨架、或者具有修饰或替换的糖配基、或者具有不同立体化学而与天然NA不同,但是通过形成碱基对与NA序列特异性相互作用。NAA必须与NA足够不同以至它与RG发生本质上不同的相互作用。因此,NA衍生物(即一个或几个氢原子由其他基团取代后得到的NA),例如目前可以用市售寡核苷酸合成器合成的那些,预计达不到足够的不同。
当SRE完全由NAA构成单元(building block)构成,可以期望最小化折回结合。然而设计出的RG不能折回与NA段(step)相互作用的NA/NAA混合聚合物也会有效。例如,在主要包含NA段的混合聚合物中可以有策略地安排NAA段以阻断RG折回。事实上,如果NAA安置在NAA/NA共聚物的末端,一个合适选择的NAA段可以充分阻断RG的折回。以下的NAA类探针我们也指具有基于混合聚合物的SRE的探针,该混合聚合物具有至少一个NAA段,且RG与NAA段连接。
所有SRE中的NAA段必须不一样。SRE也可以是NAA、NAA和NA的混合聚合物、以及也可以是NAA衍生物(NAA的一个或几个氢原子被取代)的混合聚合物。
现有许多可以使用的NAA,由于它们在反义治疗和反基因(antigene)治疗的非相关领域具有潜在的应用,新型NAA正快速得到发展(Nielsen,Annu.Rev.Biophys.Biophys.Biomol.Struct.(生物物理与生物分子结构年度综述),24,167,1995;De Mesmaeker等,Current Opinion in Structural Biology(结构生物学新观点),5,343,1995)。NAA的实例是具有修饰的磷酸二酯键(硫代磷酸酯、甲基磷酸酯、硼酸磷酸酯(branophosphate)、氨基磷酸酯、硒基磷酸酯(phosphoroselenoate)、磷酸三酯等)的那些,具有非天然糖部分(均-DNA、带有碳环环系统的那些、二环-DNA等)的那些,磷酸二酯类似物(烷烃、醚类、硫醚、胺类、酮类、甲基乙缩醛、硫甲基乙缩醛、酰胺、氨基甲酸酯、脲、羟胺、氨基磺酸酯、硫酰胺、甘氨酰胺、砜等),具有完全替换骨架(二环核糖乙缩醛类似物、吗啉衍生物、肽核酸(PNA))的那些,具有2’,5’连接的寡核苷酸的那些,和具有α-核苷酸异头物的那些。
通常NAA在化学上与NA不同,从而结构和静电引力(至少电荷分布)与NA不同,因此可能与感兴趣的用作RG的化合物不同地作用。图4中以化合物BO为例。BO自身基本上不发光,与NA结合时变得强烈发光。在SRE-RG探针中有用的RG应不与SRE以产生发光的方式相互作用。如图4中看到的,在存在不带电的NAA、PNA和甲基磷酸盐时BO具有明显较低的发光。存在硫代磷酸酯时它具有与单链NA大致相同的发光。这说明在探针中用NAA取代NA可以减小来自RG的信号。但也说明不是任何NAA都可以。最有效的NAA还依赖RG是什么。例如,如果RG是阳离子,例如BO,不带电的和阳离子的NAA预计最为有效。通常,由于RG不能对NA亲和力太低(它必须在杂交时结合),总有RG对其亲和力较低的NAA。如果NAA用作探针的SRE,该探针将产生比相应NA-RG探针低的背景信号。
由于静电斥力,阴离子小分子通常不与NA结合,而带正电的分子对NA有较强的亲和力。因此用作RG的感兴趣的大多数分子是阳离子,偶尔为电中性,很少为阴离子。因此不带电的NAA,例如PNA、甲基磷酸酯、吗啉衍生物、和一些磷酸二酯类似物用作本发明的SRE引起特别关注,因为它们不会静电吸引阳离子RG,并应该显示比基于NA的SRE更小的折回结合。带一些正电荷的NAA也受到关注,例如通过一些残基修饰,或通过添加带正电的取代基引入正电荷的中性NAA。不带电的NAA和阳离子NAA的共聚物也是感兴趣的。当然,由于它们与NA的非特异静电相互作用,正电荷将减小探针的特异性。因此NAA中正电荷的数目不应太高。
性质最优的NAA之一是基于N-(2-氨基乙基)甘氨酸单元的PNA。这就是在说到特异PNA时,我们想到的是PNA。它与核酸的复合物与双链NA非常不同(Eriksson和Nielsen,Nature Struct.Biol.(天然生物学结构),3,410,1996),PNA双链体也是如此(H.Rasmussen等,天然生物学结构,4,98-101,1997)。双链PNA形成右手螺旋和左手螺旋,而PNA∶DNA和双链DNA仅形成右手螺旋,双链PNA的每个回转(turn)有18个碱基对,PNA∶DNA具有13个碱基对而双链DNA具有10个碱基对,双链PNA的碱基扭曲为19.8°,PNA∶DNA的为28°,双链DNA的为34°。因此,与单链NA以特别方式相互作用的化合物预计与单链PNA的作用方式显著不同,同样,与双链NA以特别方式相互作用的化合物与PNA∶NA杂交物作用也不同。因此,选择的对NA具有高亲和力的化合物,期望对PNA有低亲和力,此种情况也适用于大多数其它NAA(图4)。如果化合物用作探针的RG,它应该显示低的折回结合(back binding),因此,如果探针的SRE是NAA而不是NA,则显示较低的背景信号。
当NAA用作探针的SRE时,还有其它优于NA的地方。因为NAA是非天然的,故它们对酶有抗性,因此NAA探针可以用于细胞提取物和其它具有酶活性的样品。NAA类探针还可以与TS形成比NA类探针更稳定的杂交体,允许在较高温度下探测。
NAA类探针杂交后也可以获得比NA类探针更高的信号。与单链TS杂交后RG可以和靠近TS的单链NA区结合,或可以与SRE和TS之间形成的双链区结合(图3A)。如果SRE为NAA,双链NA可以通过双重杂交提供给RG(图6)。因此,NAA类探针中RG通常可以和与NA类探针类型相同的NA-结构结合。然而,使用NAA类探针时,RG也可以与NAA/NA杂交体结合,这可能具有不同的结构,其中RG获得更强的信号。我们已经发现PNA即为此种情况(图18)。产生更强信号的原因尚不清楚,但可能是由于不带电的PNA与NA形成比双链NA更刚性的双链体引起的,该双链体更有效地限制了结合的RG的内部运动,从而增强了荧光信号。如果这种假设是正确的,许多其它NAA预计有相似的作用。
本发明的另一个实施方案中,SRE为蛋白质或肽。它们在化学上也与核酸非常不同,可以与NA序列特异结合。目前仅知道一些序列特异核酸结合蛋白质,但是已经发展了一些方法来设计专属识别TS的肽(Choo等,Nuture(自然),372,642,1994)。RG可以容易地附着于蛋白质和多肽。(实施例10)。
本发明的又一个实施方案中SRE是结合肽的NAA,RG或者与肽或者与NAA连接。这种结构有两个优点:通过NAA识别任意序列的能力和RG与肽的最小的相互作用。肽和PNA的结合引起特别关注,因为可以通过相同的固相化学合成和基本上可以容易地合成任意一种共聚物。例如,为促进溶解性和/或排斥带电RG,可以使用带电氨基酸引入电荷(实施例2)。
本发明的再一个实施方案中,SRE为肽-NA缀合物(conjugate),而RG附着到所述肽上。所述肽必须设计为阻止RG与NA的相互作用。单一大体积的或带合适电荷(即与RG同样的电荷)的氨基酸可能足够,但通常需要较多的氨基酸残基。
另一个实施方案中,SRE为NA,在其被RG附着的末端的碱基是那些对RG具有最低亲和力和/或以最小影响RG信号特征的方式相互作用的碱基。
报告基团
RG是当与SRE连接并与TS结合时发送容易检测信号的分子。这个信号应比无TS存在时与SRE连接的RG的任何信号明显强烈。因为结构不同的NAA数量非常大,就有很多机会寻找到一个不会相互作用,或以不像天然NA一样引起RG可观察特征改变的方式相互作用的NAA。因此,与NA结合时可观察性质改变的所有化合物都可以用作RG,并在本发明的探针中与合适SRE结合。本发明通过与NA结合时光谱性质改变的RG进行说明,测量该光谱性质的改变为总荧光强度的改变。在一些例子中,探针结合时荧光信号增强。当然,这不是对本发明的限制。也可以使用带有与TS结合时信号性质减弱的RG的探针。
用作RG的化合物应该对NA有足够亲和力,以使得它们在杂交状态结合,但该亲和力不能太高,因为它可能导致探针与NA的非特异相互作用。大多数配体对NA的亲和力依赖于离子组成和溶液温度(Record等,J.Mol.Biol.(分子生物学杂志),107,145,1976),并可以被调整到中等,常常超过几个数量级(图12)。为了适合用作本发明的RG,在室温和100mM离子强度下该化合物对NA的亲和力应该在0.1到108M-1(-1<logK<8)之间。
因为发光检测灵敏度很高,故与NA结合后荧光增加的化合物适于用作RG。与NA结合后发光量子产率应增加至少10倍,优选至少在50倍,更优选至少500倍。已经知道了许多这种化合物。有最大荧光增加的化合物之一是噻唑橙(thiazole orange)(超过5000倍,Rye等,Nucl.Acids Res.11,2801,1992)。
化合物在溶液中应该为游离的,即不存在NAs时有非常低的发光,否则会增加背景信号。游离化合物的发光量子产率应少于0.05,优选少于0.01,更优选少于0.001。
化合物应在UV/VIS区有效吸光。最大吸收时的摩尔吸光系数应至少为1000M-1cm-1,优选至少为10,000M-1cm-1,更优选至少为50,000M-1cm-1。
包括环或多环结构的化合物通常观察到上述性质,其中至少两个且通常不超过5个为芳香环,并且可以被连接。环可以是碳环或具有1-2个N原子的杂环。这些系统中的其它常见杂原子为氧和硫。环可以用其它基团取代包括:通常有1-4个碳原子的烷基,通常有1-4个碳原子的含氧基团如羟基、烷氧基和羧酯基,通常有0-6个碳原子的氨基基团如单取代和双取代的氨基基团(通常为单烷基氨基和双烷基氨基),含硫基团,通常有1-4个碳原子的烷硫基,氰基,通常有1-7个碳原子的非氧代羰基(non-oxo-carbonylgroup)例如羧基及其衍生物(通常为羧酰胺和羧烷基),通常有1-4个碳原子的氧羰基和酰基,通常原子数为9-35的卤素等。
更感兴趣的化合物是那些包含由一个键连接的两个芳族系统,包含与芳族系统缀合的例如乙烯基、磷酸基、氨基、酰胺、羰基和羧酸酯,从而具有一定刚性的化合物。这些化合物游离在溶液中通常有较低的发光,围绕该键旋转导致激发态无辐射失活。当与核酸结合(通常通过插入或通过结合于小沟(minor groove))时,由于在结合位点被固定在不能围绕连接键转动的平面构型中,它们获得增强的荧光。粘性溶液也限制转动,使得具有合适性质的化合物可以检测。(Carlsson等,J.Phys.Chem.(物理化学杂志),98,10313,1994)。
更为感兴趣的是不对称花青染料(F.M.Hamer,Heterocyclic Compounds(杂环化合物),18卷,‘花青染料和相关化合物’,1964,Wiley和Sons),例如US4883867;US5312921;US5321130;US5401847;US5410030;US5436134;US5486616所描述的那样,特别是具有下列结构的那些:
其中R1为氢或至多6个碳原子的与氮原子非共轭的烷基,其可以由极性残基例如羟基、烷氧基、羰基和氨基取代。X为氧、硫(或硒)、N-R5(其中R5是氢或低级烷基),或CR6R7(其中R6和R7是氢或烷基)。这些例子中第一个环系统分别为苯并噁唑、苯并噻唑、苯并咪唑和二氢吲哚。另一个芳族系统可以是单芳环或双芳环,通常为喹啉或吡啶。侧基R2、R3和R4,可以相同,为氢、低级烷基、芳基(aryles),或者R2和R4或R3和R4成对地与两个环原子结合构成5元或6元芳环,所述芳环可以包含0-2个杂原子例如氧、硫和N-R8,其中R8为烷基。连接两个芳族系统的次甲基键的n为0、1、或2。这会影响环系统之间的共轭距离和程度,因此也影响了吸收波长和发射波长(Griffith,‘Colour and constitution of organic molecules(有机分子的颜色和组成)’,Academic press,1976)。Y为HC=CH,其位置由指数A和B给出,A和B为0或1,如果A=0则B=1,反之亦然。当A=0和B=1时,我们指:
当A=1以及B=0时,我们指:
和
和
其中R1,R2和n同上所述,R9和R10为与氮原子非共轭连接的烷基,其可以由极性残基例如羟基、烷氧基、羧基和氨基取代。
染料的均或杂二聚体也可以用于本发明。
用已建立的方法可以合成这些化合物(Sprague,US2268234,1942;Brooker等,Houbenweyl methoden der organischen chemie,band V/1d,1972;Lee等,Cytometry(血细胞记数),7,508,1986;Lee和Mize,EP0410806,1989)。它们在与核酸结合后发光的大幅度增强是公知的(Lee和Chen,EP 0226272),并用于检测网状细胞(Lee和Chen,US专利4883867),用于检测血液中的寄生虫(Lee和Mize,US专利4937198),用于电泳中核酸染色(Quesada等,生物技术,10,616,1991;Methies和Huang,自然,359,167,1992)和用于毛细管电泳中核酸的超灵敏感检测(Schwartz和Uhlfelder,Anal.Chem.(分析化学),64,1737,1992)。这些用聚阳离子链取代的化合物(Glazer和Benson,US专利5312921;Yue等,US专利5321130),作为杂或均二聚体的这些化合物(Yue和Haugland,US专利5410030)是核酸染色的最常用染料。
本发明特别感兴趣的是我们发明(实施例5)的不对称染料,它有一个不是共轭体系部分的羧酸基,可以由固相多肽合成领域公知的偶联剂激活。这种
Novabiochem 97/98Catal8类目和肽合成手册)’例如PNA。
下的化学结构:
它们已经被合成,带有通过液相(实施例3)或固相(实施例5)化学方法与各种SRE附着的各种侧链(实施例1)。
我们注意到它们的氧类似物(即除了氧原子代替硫原子其余均一样的化合物),最有可能还有具有非常类似的性质的硒类似物。
不对称花青染料的亲和力和发光特征依赖于与它们相互作用的NA的碱基序列(图12)。它们以非常高的亲和力与双链DNA结合,更可能是通过插入(Jacobsen等,Nucl.Acids Res.23,753,1995;Hansen等,Nucl.AcidsRes.24,859,1996)。它们与单链聚嘌呤结合较差(<10倍),对单链聚嘧啶结合力更差(约100倍)。染料的荧光特征还依赖于碱基序列。当它们与双链DNA和聚嘌呤结合时比它们与聚嘧啶结合时荧光约增强10倍。也观察到结合染料吸收性质的差异。很明显结合于NA的不对称花青染料的性质很大程度依赖于与它们相互作用的碱基。
连接于双链NA的分子,因此也最有可能与单链NA和NAA结合的分子,主要与1-3个最外的碱基相互作用(Ciepek等,J.Biomol.Struct.Dyn.(生物分子结构动力学杂志),5,361,1987)。因此可以通过选择最靠近其与RG附着的末端的碱基可以最小化NA类探针和NAA类探针的背景信号。这些碱基那些RG对其具有最小亲和力和/或RG与其以最小影响RG信号性质的方式相互作用的碱基。
当基于NA或NAA的SRE的末端碱基为..CT-RG或..TT-RG(图19)时,对于不对称花青染料可以获得非常低的背景发光。
其它RG的情况非常不同。例如,小沟粘合剂(minor groove binder)4’-6,二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)与至少三个连续A:T碱基对区域结合时有强烈发光,但与任何其它序列结合时发光明显较低(Jansen等,J.Amer.Chem.Soc.(美国化学协会杂志),115,10527,1993)。因此,基于DAPI作SRE的探针应设计为不含有容易和染料结合的一连串三个A:T碱基对。
SRE和RG的结合
SRE和RG的连接必须有合适的反应基团。许多组合都是可行的。巯基(thiol),例如半胱氨酸中的巯基,可以连接于其它巯基和烷基化基团,例如碘代乙酰胺,各种顺丁烯二酰亚胺,丙烯酸衍生物等。氨基,例如肽中和PNA中的氨基末端和碱性氨基酸残基,可以和异硫氰酸酯、酰亚胺酯(例如琥珀酰亚胺酯和邻苯二甲酰亚胺酯)、和磺酰卤、乙二醛、醛和酮反应。羧酸,例如肽和酸性氨基酸残基中的羧基末端,可以和胺,肼衍生物等反应。这些偶联反应本领域已经熟知,并被描述在,例如,新生物化学97/98目录和肽合成手册和Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals(荧光探针和化合物研究手册)(第六版,分子探针公司,Richard Haugland编辑)。
构建染料衍生物时重要的是共轭系统不被影响,因为这可能破坏它的光谱特征。通常这意味着反应基团应该被至少一个非共轭单键与芳族系统隔开。对上述花青化合物,反应基团可以安排在任何有R基团处,只要它被至少一个sp3-杂化碳与芳族系统隔开。当然,RG衍生物不具有干扰偶联反应的侧链或其它取代基也很重要。
SRE和RG的结合通过两种不同的方法说明;其一基于溶液化学,其二基于固相化学(实施例1)。
RG和SRE在水溶液中的结合用不对称花青染料的琥珀酰亚胺酯和有氨基基团的SRE作例子。实施例4中,TO的琥珀酰亚胺酯(实施例3中合成)附着于PNA,实施例10中BO的琥珀酰亚胺酯附着于蛋白质。溶液方法非常普通,并且通过使用合适的衍生物可以基本上用于任何RG对任何SRE的附着。
RG和SRE的固相结合用我们研究出的不对称花青染料的新型羧酸衍生物(实施例5)附着于有氨基基团的SRE作例子。实施例6中TO的羧酸衍生物被附着于这类PNA的固定的SRE,实施例7中不同的TO的羧酸衍生物被附着于固定的SRE连接基缀合物。固相方法尤其对这类肽和PNA的SRE感兴趣,因为染料可以通过与氨基酸残基和PNA碱基同样的程序附着,可以用市售的肽合成器合成完全的探针。
连接基
连接基的主要功能是保持单元以不会阻碍杂交后RG和TS之间的相互作用的方式结合在一起。连接基可以简单,例如化学单键,但是也可以复杂,包含例如官能团。它也可以设计来阻碍SRE和RG之间的相互作用。我们基于模型研究的结果显示这可以通过使用短的和/或刚性的连接基,和含大基团的连接基实现。如果RG带电,可以将同种电荷引入连接基以便抑制折回结合。
许多连接基可以通过将SRE与合适的RG衍生物连接而构建(实施例1)。连接它们之前,用附加单元附着于SRE或RG可以构建更复杂的连接基(实施例7)。
可以通过设计连接基适度调整探针对NA的亲和力。连接基中的负电荷会降低对NA的亲和力,而正电荷会产生更稳定的杂交体。如果在较高温度下进行探测,则后者更为感兴趣。也可以将极性基团引入连接基以增加探针的溶解性。也可以构建具有几个RG附着于其上的反应基团的连接基。这种连接基也可以有分支。
肽连接基在与基于不对称花青染料的RG连接中引起特别关注,因为当附着于肽链时它们有非常低的发光(图16)。因为PNA由肽化学合成,它能容易地通过任一端的氨基酸进行扩展。事实上,我们使用的许多PNA具有一个或两个赖氨酸附着于RG的相反末端以增加探针的溶解性(实施例2)。氨基酸还可以引入PNA单元之间。基本上任何种类的肽连接基都可以被构建。刚性连接基可以做成α-螺旋形式,可以引入电荷,和也可以具有官能度。当然,具有羧酸侧链的其它基团也可以通过固相多肽合成而插入连接基(实施例7)。
肽连接基也可以用于将RG附着于基于NA的SRE。如果设计适当,肽连接基可以阻碍RG与NA-碱基的相互作用。
探测方法和设计方案
单链NA可以使用具有结合单链TS的SRE的探针进行探测(图3A和C)。SRE通常为NAA(实施例2),但也可以为肽、肽-NAA缀合物、NA-NAA混合聚合物、或设计的NA-肽缀合体。TS的大小可以改变,依赖于被探测的系统。例如,为确定不含或仅含一些其它NA的样品(即,例如PCR反应产物)中特异NA的数量,探针可以短至5-6个碱基,条件是形成稳定的杂交体和具有足够的序列特异性。另一方面,当在含过量其它NA,例如存在抗基因组DNA的外源NA的样品中探测特异NA的存在时,TS必须较长。识别15-40个碱基的探针在大多数情况下都有效,15-20个碱基的长度对大多数人类样品都可能有效。
当探测长链NA片段(例如细菌或病毒基因组)的存在,或探测质粒,特别是插入物的存在时,可以针对所有可能对该NA特异(unique)的大量片段设计探针。例如,500个碱基长的NA片段具有500-20+1=481个,片段为20个碱基长度,其中所有片段可能对该NA都是特异的。从特异性的观点,探针可以设计为识别任何这些片段。当使用NAA和NA类探针时,应该选择杂交状态末端最靠近RG的TS,该TS的一个或多个碱基和那些RG对其有最低亲和力和/或在其存在下RG获得最低信号的碱基互补。对基于不对称花青染料的RG,例如TO和BO,TS应该以..AA或..GA结尾。如果TS靠近在杂交状态接近RG的位点,或者和探针产生在杂交状态接近RG的位点,也是有利的,RG对该位点有高的亲和力,与它结合时获得强信号(图20)。同样的方法可以用于优化对特异突变敏感的探针的信号响应(图21)。
双链NA可以在一定条件下探测,例如高温和低离子强度,此条件下它的链可以分开,使用具有SRE的探针,其与NA比其与互补NA形成更稳定的杂交体。这种SRE为,例如,一些不带电荷和阳离子NAA。
天然双链NA可以用带NAA的探针探测,该NAA形成序列特异三链体或序列特异D-环作为SRE,或者与双链NA结合的蛋白质或肽作为SRE(实施例10),或者蛋白质/肽-NAA/NA缀合物。
单链NA也可以通过本发明的探针(基于NAA、肽/蛋白质、肽-NAA缀合物或肽-缀合物)和与TS紧密靠近区(close lying region)互补的寡核苷酸同时杂交而进行探测,从而寡核苷酸形成RG可与其结合的双链体(实施例9)。
双链DNA也可以用识别TS的两条链的两个互补探针探测。这一方法阻碍了复性(renaturation),并会产生较大的信号响应。
也可以在探针固定于固体支持物时探测,优选地通过在RG相反端和SRE连接进行固定。这一方法易于自动化,并且固定的探针甚至可以再生。
也可以使用探测NA固定的样品,像许多传统方法那样。本发明的探针具有除去非杂交探针的清洗步骤不再关键的优点。
探针可以用两个可以是不同的RG构建,它们结合的可观察性质在杂交后改变。探针可以设计为有两个芘的NA类探针,如Yamana描述的那样(Nucl.Acids Res.11(2-4),383,1992),或者具有一个荧光团和一个猝灭剂,通过分子内(Morrison,EPA 87300195.2)或分子间(Tyagi,WO 9513399)的相互作用猝灭荧光。本发明的探针具有形成更稳定的复合物(允许在双链NA解链温度以上进行探测)和抗核酸酶的优点。特别感兴趣的探针是一个RG为与NA结合时荧光大幅度增加的荧光基团,例如不对称花青染料,另一个RG为猝灭剂。这种设计中,猝灭剂会猝灭游离探针的任何残存荧光,进一步促进了杂交后荧光增强。
也可以在减小游离探针残存荧光的第三种成分存在下进行探测。该第三种成分可以是猝灭剂,即,猝灭游离探针RG荧光的分子。猝灭剂可以游离在溶液中,也可以如上所述附着于SRE,或者它也可以附着于与部分SRE互补的另一个NA或NAA。该NA/NAA-猝灭剂与游离探针的结合方式应使猝灭剂靠近RG。如果仅部分互补,探针将对TS有较高的亲和力,TS存在时探针将与NA/NAA-猝灭剂分解(dissociate)。第三种成分也可以为与RG结合并将其与SRE的折回结合位点隔断的试剂。不同的试剂可能用不同的RG最为有效。例如,杯芳烃对TO有很高亲和力,可以用于减小SRE-TO探针的背景发光(实施例12)。
通过将它们与具有可分辨光谱响应的RG构建,本发明还可以用于同步检测和定量一样品中几种不同NA的存在。例如,它们可以发射不同波长的光。
本发明还可以通过荧光原位杂交(FISH)用于定位染色体中的序列。本发明的探针优于传统探针之处在于来自非杂交探针的背景信号显著较低。特别关注的是配备有多个RG的探针,例如,附着于分支连接基的RG,和附着于其它SRE成分,例如,NAA的主链、糖部分和核苷酸碱基的RG。
杂交的检测
探针与TS的结合可以用结合时改变的、探针的任何可观察的性质监测。由于荧光强度可以用相对便宜的设备以高灵敏度测量,因此通常选择的方法是荧光检测。然而,也可以监测其它可观察性质的改变。荧光寿命的改变、荧光偏振性的改变,以及吸收、NMR响应、导电率等的改变也可以被测量。
NAA-RG类探针与普通的NA-RG类探针的比较
本发明的探针与普通探针比较具有的优点是通过将本发明的一个NAA-RG探针与具有相同序列和相同RG的NA-RG探针比较得到最好证明。应注意用这种方法我们仅比较与序列无关的结构特征。为了比较,我们用PNA作为NAA,TO作为RG。这意味着NA-RG探针基本上与Linn等描述的那些探针一致(EP 0710668A2;US 5597696),与Ishiguro等描述的那些探针非常相似(Nucl.Acids Res.24,4992,1996),后者使用的染料噁唑黄,YO在所有基本方面与噻唑橙最多相当。
从下面的实施例14得到:
·PNA类探针比NA类探针的背景信号低。
·PNA类探针与TS杂交时比NA类探针获得更高的信号。
·PNA类探针比NA类探针的信号响应增强明显更大。
另外,PNA类探针比NA类探针有下列优势:
·PNA类探针可以比NA类探针在更高温度下使用,因为它们与TS形成更稳定的复合物。例如,PP8-GCT-TO探针甚至在45℃下信号增加35倍(实施例11),该温度下相应的NA类探针不会形成双链体。
·PNA类探针基本上可以用于任何离子强度,而NA类探针的探测对离子强度非常敏感。事实上,实施例14的对比是在500mM NaCl条件下进行,以便稳定与TS结合的NA-RG探针。
·PNA-探针抗核酸酶。
·PNA,而不是NA可以在一定条件下插入双链DNA,与DNA的一条链通过D-环构型形成三链体(Nielsen等,科学,254,1497,1991)。
实施例
实施例1.RG的合成。
染料 |
R<sub>1</sub> |
附着方式 |
探针中的应用 |
TO-1-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>1</sub>-COOH |
固相 |
- |
TO-2-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>2</sub>-COOH |
固相 |
PP16-GTC-Tob,PP16-GTC-TOc |
TO-5-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>5</sub>-COOH |
固相 |
PP11-TT-TO,PP8-GCT-TO,PP5-GCT-TO,PP15-TGT-TO,PP16-GTC-TOa |
TO-10-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>10</sub>-COOH |
固相 |
- |
TO-1-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>1</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
- |
TO-2-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>2</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
- |
TO-5-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>5</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
PP10-CTT-TO,PD8-GCT-TO,PD10-CTT-TO |
BO-1-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>1</sub>-COOH |
固相 |
- |
BO-2-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>2</sub>-COOH |
固相 |
- |
BO-10-O |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>10</sub>-COOH |
固相 |
PP15-TGT-BO |
BO-1-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>1</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
- |
BO-2-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>2</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
- |
BO-10-S |
--(CH<sub>2</sub>)<sub>10</sub>-CO-O-C<sub>4</sub>O<sub>2</sub>NH<sub>4</sub> |
溶液 |
PP10-CTT-BO,PP15-GAT-BO,EcoRI |
R1是包含反应基团的侧链,通过该反应基团RG附着于SRE
实施例2.合成的探针。
1(H)代表游离氨基和(NH2)代表末端的羧酰胺。
2刚性连接基。
3从Scandinavian Gene Sythesis购买的带有氨基连接基的寡脱氧核苷酸。TO的琥珀酰亚胺酯附着其上,探针用实施例4中的PNA类探针一样的程序纯化,除了TFA用0.1M的TEAA(乙酸三乙基铵)代替,pH 7.0。
实施例3.噻唑橙的琥珀酰亚胺酯(TO-5-S)的合成
合成包括四步。
N-甲基-2-甲基苯并噻唑鎓对-甲苯磺酸盐(I,图7)
对甲苯甲磺酸盐(3.5g,18.8mole)缓慢地加入在乙醇(10ml)中的2.1g(14.0mole)2-甲基苯并噻唑。混合物回流三小时,然后室温搅拌15小时。蒸发溶剂,产物在甲醇/丙酮中重结晶。
产率:4.2g,12.6mmol,91%。
N-(羧戊基)喹啉溴化物(II,图7)
将喹啉(5.2g,40mmol)和6-溴-正己酸(6-bromo-hexanicacid)(7.8g,40mmol)加入30ml乙腈中。混合物在氮气流下回流三小时,然后室温搅拌15小时。加入50ml丙酮并进一步搅拌溶液1小时。过滤收集白色沉淀,用丙酮(2*10ml)洗涤并干燥。
产率:8.4g,26mmol,65%。
N-羧戊基-4-[(3-甲基-2(3H)-苯并噻唑亚基)甲基]-喹啉碘化物(III,图7)
通过在KOH(0.8g,15mmol)III存在下于乙醇(20ml)中缩合(回流45分钟)I(1.6g,5mmol)和II(4.8g,15mmol)而合成III。冷却至室温后用30%KI(水溶液)沉淀出产物。过滤沉淀物,用丙酮洗涤,并在甲醇中重结晶。
产率:1.0g,2mmol,40%。
III的N-羟基琥珀酰亚胺酯(TO-5-S)(图7)
III(0.5g,1mmol)和羟基琥珀酰亚胺酯(0.11g,1mmol)溶解于25ml(无水)二甲氧乙烷(dimetoxyethane)。二环己基碳二亚胺(0.23g,1.1mmol)加入该冷溶液。溶液在0℃搅拌20小时,过滤除去脲。滤液浓缩样品在甲醇中重结晶。
产率:0.4g,0.65mmol,65%。
实施例4.PNA探针(PP10-CTT-TO)的溶液合成及其表征
38nmol连接有氨基基团的PNA(序列‘TTTTCTTCTT-CO-(CH2)5-NH2’)溶解于10μl H2O和31μl 500mM的Na3BO3缓冲液,并加入10μl二噁烷。加入两等份2μl的140nmol TO-5-S(在DMSO中)开始反应(中间搅拌5分钟),之后反应混合物在37℃放置4小时。冷却至25℃后加入10μl的乙腈。产物用HPLC纯化,使用反相C-18柱(Waters,对称C183.9×150mm),梯度体系(LKB2249),在260nm监测吸收(LKB2151)。使用的梯度是含有0.01-0.1%v/v三氟乙酸的乙腈和水的混合物。流速为1ml/min,梯度为95-60%H2O,20min,60-0%H2O,5min。探针和过量TO-5-S被很好地分离。含探针的级分用液氮凝固,冷冻干燥15小时以除去溶剂和三氟乙酸。得到的疏松的类红色物质溶解于去离子水。将探针与TS杂交,导致显示其相互作用的RG的吸收大幅度改变(图9)。
实施例5.BO-2-O(R1=CH2CH2COOH)的合成
合成包括以下三步:
对甲苯甲磺酸盐(35g,18.8mmol)和2-甲基硫代苯并噻唑(2.5g,14.0mmol)回流5小时.产物(I)在甲醇/丙酮中重结晶(图14a)。
产率:4.8g,13.1mmol,94%。
4-甲基吡啶(3.7g,40mmol)和3-溴丙酸(6.1g,40mmol)回流5小时。产物(II)在甲醇/丙酮中重结晶(图14b)。
产率:6.9g,28mmol,70%。
通过在Et3N(2.0g,20mmol)存在下于CH2Cl2(10ml)中缩合(室温过夜)I(1.8g,5mmol)和II(1.2g,5mmol)而合成N-羧乙基-4-[(3-甲基-2(3H)-苯并噻唑亚基)甲基]吡啶碘化物。用30%的KI(aq)(15ml)沉淀产物,过滤,并在甲醇/水中重结晶。
产率:0.70g,2.1mmol,43%。
实施例6.探针PP15-TGT-TO的固相合成、切割(cleavage)和纯化。
将PNA取代浓度为0.15mmol/g的20mg树脂溶涨于DCM中过夜。PNA序列为Re-Lys-Lys-ATCAACACTGCATG-NH-Boc,其中‘Re’为树脂,Boc为氨基末端保护基团叔丁氧基羧酸基。固相合成在配备有抽水装置(water suction)和氮气搅拌的玻璃漏斗中进行。清洗和反应物溶液部分为1ml,偶联步骤中为0.3ml。通过加入含5%m-甲酚的三氟乙酸(TFA)并搅拌4分钟除去Boc。该程序进行三次,之后树脂用三份DCM∶DMF(1∶1)洗涤,再用吡啶洗两次。游离氨基用Kaiser检测法检测。PNA单体Boc-胸腺嘧啶(9.8mg,18*10-6mol)溶解于0.3ml含2-(1H-苯并三唑-1-基)-1,1,3,3-四甲基脲六氟磷酸盐(HBTU,0.15mM,18*10-6mol)的DFM中。约一分钟后加入二异丙基乙胺,DIEA(6.3μl,3.4*10-5mol),将混合物转移至树脂,并使偶联反应进行30分钟。反应结束时Kaiser检测法检测无游离氨基。未反应单体过滤除去,树脂用DMF清洗两次。用DMF中的乙酐和colidin(1∶1∶8)将任何保留的氨基进行封端两分钟。然后用DMF清洗树脂三次,加入含5%哌啶的DMF搅拌四分钟。最后树脂用DCM∶DMF(1∶1)清洗三次,并用DCM清洗三次。
然后用和胸腺嘧啶一样的方法将TO-5-O(R1=CH2CH2CH2CH2CH2COOH,9.6mg,18*10-6mol)偶联于Re-Lys-Lys-ATCAACACTGCATGT-NH-Boc,不同的是偶联反应进行45分钟。反应过程中树脂珠变红,Kaiser检测法检测显示无游离氨基。
将干燥树脂置于Eppendorf过滤管,用TFA(0.25ml)洗涤。Lys-Lys-ATCAACACTGCATGT-TO从树脂上切割下来,加入三氟甲磺酸(TFMSA)∶TFA∶m-甲酚∶苯硫基甲烷(2∶6∶1∶1,0.25ml)脱保护一小时。然后通过离心分离(6000rpm)从树脂上除去混合物并转移到检测管。重复切割一次,最后用TFA(0.25ml)清洗树脂。用氮气流蒸发除去合并的切割部分的一半溶剂。然后,冰冷的二乙醚(5ml)加入检测管,沉淀得到白色结晶。试管在6000rpm离心,除去上清液。探针(PP15-TGT-TO)用四份乙醚清洗,最后溶解于0.2ml水中。加水后探针变红。
如实施例4所述用反相HPLC纯化探针,并通过MALDI-TOF MS表征(图15)。
实施例7.固相合成、切割和纯化探针PP16-GTC-10C(带刚性连接基的探针)。
将PNA取代浓度为0.15mmol/g的20mg树脂在THF中溶涨三小时,然后用DCM清洗。PNA序列为Re-Lys-ATCAACACTGCATGT-NH-Boc,首先如实施例6所述将胞嘧啶偶合其上,接着如下述偶合刚性连接基。
将Boc-保护的N-羧甲基哌嗪(3.3mg 13.5×10-6mol)溶解于DMF(0.5ml)中,然后加入HBTU(5.1mg,13.5×10-6mol)和DIEA(4.8μl,2.75×10-5mol)。然后将混合物加入氨基末端脱保护的序列。偶联进行30min,之后Kaiser检测法检测无游离氨基。过滤除去未反应单体,并用DMF洗涤树脂两次。使用在DMF中的乙酸酐和colidin(1∶1∶8)对任何保留的氨基进行封端处理两分钟。用DMF洗涤树脂三次,然后和含5%哌啶的DMF一起搅拌四分钟。树脂最后用DCM∶DMF(1∶1)洗涤三次及用DCM洗涤三次。如实施例6所述从刚性连接基中除去Boc,Kaiser检测法检测到仲胺的存在。TO-2-O(R1=CH2CH2COOH,6.6mg,13.5×10-6mol)溶解于DMF(0.5ml)中并加入HBTU(5.1mg,13.5×10-6mol)和DIEA(4.8μl,2.75×10-5mol)。然后将混合物加入树脂。偶联反应进行45min,树脂变红。如实施例6所述进行封端和洗涤。然后如实施例6所述对探针进行切割和脱保护。
探针(PP16-GTC-Toc)如实施例4所述用反相HPLC纯化,通过MALDI-TOF MS表征。
实施例8.用图3A所示方案通过探针PP10-CTT-TO探测单链DNA。
首先测定探针PP10-CTT-TO的背景发光。然后加入过量不影响发光的非互补单链DNA(5’-TCCTTCATTCGCTTC-3’),然后加入包含TS(5’-AGCGGTCGACAGAAGAAGAAAA-3’)的单链DNA。这导致发光即刻增强(图8)。样品包含1.4μM的探针,5mM硼酸盐缓冲液(pH8.5)和50mMNaCl。探测温度为50℃。
实施例9.用图6所示方案通过探针PP10-CTT-TO探测单链DNA。
具有序列5’-AGCGGTCGACAGAAGAAGAAAA-3’的单链DNA加入到含探针PP10-CTT-TO和与单链DNA的两个紧密靠近部分互补的寡聚物5’-GTCGACCGCT-3’的样品中。这导致荧光增强45倍(图10)。实验在50℃,5mM硼酸盐缓冲液(pH8.5),离子强度为500mM的条件下进行。
图11进一步表征该探测的混合物。测量260nm时吸收随温度的变化,表明在约65℃时寡聚物分解,这由第一个转折点反映,PNA类探针在约85℃分解,这由第二个转折点反映。这种不同反映PNA∶NA杂交体比双链NA稳定性较高。
游离探针和杂交探针的荧光都随温度降低。前者可能由于高温下残基折回结合程度减小,而后者由于NA双链体中碱基的热振动增强,引起RG的内部灵活性增加,从而具有较低的荧光。杂交后荧光增强用这些信号的比例表示,最大值在约62℃处。
杂交探针的荧光在约75℃时落入背景水平,该温度低于PNA∶NA双链体的熔化温度,但处于基本上无寡聚物结合的温度。这支持了在杂交状态染料与NA∶NA双链体区结合的假设(实施例6)。
实施例10.蛋白质-RG探针的构建。
探针用限制性酶EcoRI构建,其特异识别双链NA中的序列5’-GAATTC-3’/3’-CTTAAG-5’,和BO。将溶解于DMSO的200nmol BO琥珀酰亚胺酯加到1ml含100nmol EcoRI(来自Life Technology(生命工程公司))的20mM磷酸缓冲液(pH8.0)中。搅拌下逐渐加入BO溶液以避免蛋白质被DMSO变性。将混合物在4℃于暗处搅拌15小时,最后在4℃用10K的微浓缩器从游离染料中分离探针。图16显示了游离EcoRI探针、存在含EcoRI识别位点的双链DNA的探针、和缺乏该位点的双链DNA的荧光光谱,此处DNA聚合物为聚(dAdT)∶聚(dAdT)。可以看到EcoRI探针特异识别含TS的双链DNA。作为参考还显示了存在相同DNA时游离染料的荧光光谱。
实施例11.SRE-RG探针的荧光增强。
代码 |
条件 |
模式 |
杂交后荧光增加 |
|
NAA类探针 |
|
|
PP10-CTT-TO |
5mM硼酸缓冲液pH8.5,500mM NaCl,50℃ |
6 |
45 |
PP10-CTT-TO |
5mM硼酸缓冲液pH8.5,500mM NaCl,50℃ |
3A |
20 |
PP10-CTT-TO |
5mM硼酸缓冲液pH8.5,500mM NaCl,50℃ |
3A |
20 |
PP10-CTT-BO |
10mM硼酸缓冲液pH8.5,25℃ |
3A |
8 |
PP10-CTT-BO |
10mM硼酸缓冲液pH8.5,45℃ |
3A |
9 |
PP5-GCT-TO |
10mM硼酸缓冲液pH8.5,20℃ |
3A |
20 |
PP11-TT-TO |
10mM硼酸缓冲液pH8.5,45℃ |
3A |
10 |
PP8-GCT-TO |
10mM硼酸缓冲液pH8.5,45℃ |
3A |
35 |
PP8-GCT-TO |
20mM硼酸缓冲液,500mM NaCl,pH8.5,20℃ |
3A |
30 |
PP8-GCT-TO |
10mM磷酸缓冲液pH7.5,25℃ |
3A |
27 |
|
蛋白质类探针 |
|
|
EcoRI |
10mM磷酸缓冲液pH7.5,25℃ |
3D |
50 |
实施例12.量子产率的确定。
游离或杂交探针PP8-GCT-TO相对于荧光素的荧光量子产率。将PP8-GCT-TO溶解于10mM磷酸缓冲液(pH7.5),探针浓度为0.8μM。在Varian Cary 4上测定吸收度,在spex fluorolog t2上测定荧光。所有测定都用相同的1cm的比色皿进行。在470nm激发样品,记录480-700nm之间的光谱,每nm记录五个数据点。确定相对二价阴离子荧光素的0.1M NaOH溶液(假定量子产率为0.93)的荧光产量(ΦF)。量子产率用以下公式计算:
其中F(v)为波长v时的荧光发射强度,Aλex为激发波长的吸收。用单链DNA 5’-ATC GAC GAG AGA ATA TCA以1∶1的比率杂交。结果概述如下。
样品 |
Φ<sub>F</sub> |
Φ<sub>F</sub>(H)/Φ<sub>F</sub>(F)<sup>*</sup> |
在25℃,游离的PP8-GCT-TO |
0.0066 |
|
在25℃,PP8-GCT-TO和等量互补单链DNA混合 |
0.16 |
24 |
上述样品加热至80℃5分钟,然后冷却至25℃ |
0.18 |
27 |
*杂交后荧光量子产率增加。注意量子产率的增加不一对与荧光强度的增加相同,因为游离探针和杂交探针的吸收不同。
实施例13.背景信号的减弱。
探针PP15-GAT-BO的背景荧光信号在加入杯芳烃后减小(图17),杯芳烃很可能使RG与SRE分离。探针PP15-GAT-BO的浓度为1μM,温度为15℃,使用10mM Tris缓冲液(pH7.5)。
实施例14.NAA-RG与NA-RG探针的比较。
探针PNA-TO(PP8-GCT-TO)和探针NA-TO(PP8-GCT-TO)用相同的序列和可比较的连接基合成。测定了三种温度下游离探针和与含TS的NA杂交探针的荧光(图18)。所有情况中,游离PNA类探针的荧光低于NA类探针的荧光,杂交PNA类探针的荧光高于杂交NA类探针的荧光。
实施例15.目测检测。
直接观察探针和TS之间的杂交。图13显示了两根聚丙烯管用宽通带紫外灯照射,并从侧面照相(用ASA 200胶片,无滤波器)。两根管均含3μ1样品和3.5×10-10mol探针。左边的样品还包含过量5倍的非互补NA,而右边的发光样品包含互补NA。使用与实施例12相同的寡聚物。条件为10mM硼酸盐缓冲液(pH8.5),不含盐,温度30℃。