AT333437B - Verfahren zur herstellung von phosphatidkomplexen mit erhohtem phosphatidylathanolamingehalt aus tierischem material - Google Patents
Verfahren zur herstellung von phosphatidkomplexen mit erhohtem phosphatidylathanolamingehalt aus tierischem materialInfo
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Description
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Die Phosphatidkomplexe der einzelnen tierischen Organe weisen eine für das jeweilige Organ spezifische Zusammensetzung auf, sowohl im Verhältnis der einzelnen Phosphatide zueinander als auch im Fettsäuremuster. Durch geeignete Extraktionsmethoden gelingt es, die Gesamtlipide unverändert zu isolieren, aus welchen dann die Phosphatide in ihrer nativen Zusammensetzung gewonnen werden können.
Ziel der Erfindung ist es, Phosphatidkomplexe herzustellen, deren Gehalt an Phosphatidyläthanolamin
EMI1.1
Methoden beschrieben, die man in vier Gruppen einteilen kann : a) Fällung der Phosphatide mit Aoeton aus einer Äther- oder Petrolätherlösung des Gesamtextrak- tes. b) Trennung der Phosphatide von den andern Lipiden durch Dialyse. e) Auftrennung des Lipidgemisches durch Verteilung zwischen nicht miteinander mischbaren Lösungs- mitteln. d) Chromatographische Verfahren.
Die Gruppe d) hat in den letzten Jahren die weiteste Verbreitung erfahren ; auch die der Erfindung zu- grundeliegende Methode gehört dazu.
In der Lipidchemie ist vor allem die Säulenchromatographie über Kieselgel für präparative Trennungen von Bedeutung ; für die analytische Charakterisierung eines Extraktes zieht man hauptsächlich dünnschichtchromatographische Verfahren heran. Daneben wird in geringerem Ausmass auch die Papierchromatographie angewendet. In letzter Zeit wurde von Loev und Goodman ein chromatographisches Verfahren-die Trocken- säulenchromatographie-entwickelt (vgl. Chemistry and Industry [1967], S. 2026 bis 2032), das die Vorteile der Säulen- und Dünnschichtchromatographie in sich vereinigt : Arbeiten im präparativen Massstab, geringer Lösungsmittel- und Zeitbedarf.
Im gegenständlichen Falle wurde nun eine Methode gefunden, die es ermöglicht, mittels der Trocken- säulenchromatographie an einer vorbehandelten Kieselgelsäule aus einem Gesamtlipidextrakt zuerst die Neutralfette und Glyceride abzutrennen und danach ein Phosphatidgemisch mit einem erhöhten Gehalt an Phosphatidyläthanolamin zu isolieren.
Das erfindungsgemässe Verfahren ist somit dadurch gekennzeichnet, dass man einen Gesamtlipidextrakt mittels der Trockensäulenchromatographie in einem zweistufigen Verfahren eluiert, wobei in der ersten Stufe an einer, mit einem Lösungsmittelgemisch für die zweite Stufe vorbehandelten Kieselgelsäule mittels eines mindestens dichlorierten niederen aliphatischen Kohlenwasserstoffes die Neutralfette und Glyceride abgetrennt werden, wonach in der zweiten Stufe mit einer solchen Menge eines Gemisches aus mindestens dichloriertem niederen aliphatischen Kohlenwasserstoff, einwertigem niederaliphatischem Alkohol und Wasser behandelt wird, dass die Phosphatide mit einem gegenüber dem nativen Komplex erhöhten Gehalt an Phosphatidyläthanolamin isoliert werden.
Das für die Isolierung der Phosphatide angewendete Verfahren und insbesondere dessen zweite Stufe bietet wesentliche Vorteile gegenüber den in der Literatur beschriebenen Arbeitsweisen. Nach den bekannten Methoden werden die Phosphatide an Kieselgel durch steigende Mengen Methanol oder eines andern stark po- laren Lösungsmittels in Chloroform fraktioniert. Man kann dafür entweder einzelne, aufeinander folgende, in ihrer Zusammensetzung stufenweise voneinander verschiedene Gemische der beiden Komponenten wählen,
EMI1.2
"gradient elution" bedienen.telgemisch in der zweiten Verfahrensstufe können Methanol oder Äthanol eingesetzt werden. Die qualitative und quantitative Zusammensetzung des Lösungsmittelgemisches kann im Rahmen der Erfindung variiert werden, was an Hand der tieferstehenden Beispiele demonstriert wird.
Die allgemeine Anwendungsmöglichkeit des Verfahrens auf Gesamtlipidextrakte tierischen Ursprungs wird nachfolgend, ohne die Erfindung hierauf zu beschränken, an Hand von Extrakten aus vier verschiedenen tierischen Organen näher beschrieben. Natürlich können auch Lipidextrakte aus anderem tierischen Material, wie Gehirn, Nebennierenrinde, Schilddrüse, Ovarien usw., dem erfindungsgemässen Verfahren unterworfen werden.
Für die Wahl der Ansatzmenge an Gesamtlipidextrakt besteht keine spezielle Einschränkung ; es genügt also, auf die allgemein für chromatographische Methoden geltenden Bedingungen, wie Grösse der Säule und
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Elutionsgeschwindigkeit, Bedacht zu nehmen.
Die praktische Durchführung des erfindungsgemässen Verfahrens kann zweckmässig in folgender Weise vorgenommen werden.
EMI2.1
stimmten Lösungsmittelgemisch, vorteilhaft in einem Verhältnis von etwa 0, 5 bis 2 ml Lösungsmittel auf
5 g Kieselgel, versetzt, gut durchgemischt und etwa 1 h in einem verschlossenen Gefäss stehen gelassen.
Darauf wird das so vorbehandelte Kieselgel in ein passendes Chromatographierohr gleichmässig eingefüllt. Das Verhältnis von Durchmesser zu Höhe der Kieselgelsäule soll etwa 1 : 10 betragen. Während des Füllens ist der Ablaufhahn geöffnet ; am Boden des Rohres befindet sich ein Wattepfropfen. Ein Teil des vorbehandelten Kieselgels (z. B. 5 bis 10% der Gesamtmenge) wird für die im Folgenden beschriebene Aufbringung des Lipidextraktes zurückbehalten.
Der Gesamtlipidextrakt wird, gegebenenfalls nach einer Vorreinigung, in chloriertem Kohlenwasserstoff, z. B. 1 g Extrakt in 2 ml Chloroform, gelöst und mit dem Rest des vorbehandelten Kieselgels versetzt und gut durchgemischt, wobei ein Verhältnis von 1 g Lipide zu 1 bis 2 g vorbehandeltem Kieselgel günstig ist. Aus dem so erhaltenen Gemisch wird das Lösungsmittel im Stickstoffstrom bei Raumtemperatur oder bei 400 C Wasserbadtemperatur entfernt, so dass eine krümelige Masse, bestehend aus Kieselgel und Lipiden, entsteht. Diese Masse wird nun auf die vorbereitete Säule gebracht und leicht zusammengedrückt. Als Abschluss wird noch 1 bis 2 cm hoch gewaschener Seesand in die Säule gefüllt.
Mit reinem chloriertem Kohlenwasserstoff (z. B. Chloroform) werden die Neutralfette und Glyceride heruntergewaschen, während die Phosphatide am Start bleiben. Die Lösungsmittelmenge wird auf das Kieselgel bezogen, sie beträgt z. B. je 10 g Kieselgel etwa 60 bis 75 ml ; die Elutionsgeschwindigkeit wird vorteilhaft mit 2, 5 bis 10 ml/min gewählt.
Nach Trockenlaufen der Säule wird das für die zweite Verfahrensstufe dienende Lösungsmittelgemisch (z. B. Chloroform-Methanol-Wasser) für die Fraktionierung der Phosphatide aufgebracht. Die Durchflussgeschwindigkeit wird zweckmässig so eingestellt, dass die Lösungsmittelfront nach 1 bis 1, 5 h das untere Säulenende erreicht hat. Die bis zu diesem Zeitpunkt gesammelte Flüssigkeitsmenge ist noch ein Teil der 1. Fraktion, also der reine chlorierte Kohlenwasserstoff, und wird mit dem Hauptanteil vereinigt. Bei Fortsetzung der Elution werden nun die Phosphatide entsprechend ihrer chromatographischen Auftrennung an der Säule gewonnen. Die Durchflussgeschwindigkeit beträgt hiebei vorteilhaft etwa 1 bis 3 ml/min. Der erste Teil des so erhaltenen, noch farblosen Eluates stellt eine Zwischenfraktion (Fraktion 2) dar, die einen Teil von Cardiolipin enthält.
Die Hauptmenge des Eluates (Fraktion 3), die mit beginnender leichter Gelfärbung abgenommen wird, enthält das gewünschte Phosphatidgemisch mit erhöhtem Phosphatidyläthanolgehalt.
Beispiel l : Netzhauptlipide
1 g Gesamtlipidextrakt aus Schweinenetzhäuten
40 g Kieselgel für die Trockensäulenchromatographie
EMI2.2
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CHOIS
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> n <SEP> CHCIs-#N3 <SEP> OH-Hz <SEP> 0 <SEP> 75 <SEP> : <SEP> 22 <SEP> : <SEP> 3
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 265 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 14 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 25 <SEP> ml <SEP>
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 234 <SEP> mg <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 23, <SEP> 4% <SEP>
<tb>
Analysenwerte für die isolierten Phosphatide :
Der Phosphatidyläthanolamingehalt beträgt im nativen Phosphatidkomplex etwa 30% ; in dem als Fraktion 3 isolierten Komplex 50 bis 60%.
Ebenso ist eine Erhöhung des Gehaltes an Dokosahexaensíl. ure (C22 : 6) zu verzeichnen. Ursprünglich ist diese mit etwa 10% in den Fettsäuren der Glycerophosphatide vertreten, nach der Anreicherung von Phosphatidyläthanolamin sind 16 bis 21% nachweisbar. Der Gehalt an Arachidonsäure (C20 : 4) stieg von 8 auf 10% an.
Beispiel 2 : Netzhauptlipide
10 g Gesamtlipidextrakt aus Schweinenetzhäuten
200 g Kieselgel für die Trockensäulenchromatographie
EMI2.3
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CHCIs
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> II <SEP> CHCl3-CH3-OH-H2 <SEP> 0 <SEP> 65 <SEP> : <SEP> 25 <SEP> : <SEP> 4
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 1560 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 13 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 84 <SEP> ml <SEP>
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 2, <SEP> 0 <SEP> g <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 20% <SEP>
<tb>
Analyse : Die gefundenen Werte entsprachen jenen von Beispiel l.
<Desc/Clms Page number 3>
Beispiel 3 : Herzlipide
20 g Gesamtlipidextrakt aus Kälberherzen 200 g Kieselgel für die Trockensäulenehromatographie
EMI3.1
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CHClg
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> n <SEP> CHClg-CHg <SEP> OH-H2 <SEP> 0 <SEP> 65 <SEP> : <SEP> 25 <SEP> : <SEP> 4
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 1530 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 22 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 74 <SEP> ml
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 4, <SEP> 16 <SEP> g <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 20, <SEP> 8% <SEP>
<tb>
Analysenwerte für die isolierten Phosphatide :
Der Phosphatidyläthanolamingehalt beträgt 55% gegenüber 25% im nativen Phosphatidkomplex. Die Arachidonsäuremenge ist von 10 auf 22% angestiegen.
Bei diesem Organ muss im Hinblick auf die spätere therapeutische Verwendung des Phosphatidpräparates ein Teil des Cardiolipins abgetrennt werden ; dies ist in Fraktion 2 enthalten.
Beispiel 4 : Lipide aus Nierenrinde
1 g Gesamtlipidextrakt aus Nierenrinde, Schwein
40 g Kieselgel für die Trockensäulenehromatographie
EMI3.2
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CCl4
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> II <SEP> CCl4-C2H5OH-H2O <SEP> 65 <SEP> :65:4
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 210 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 50 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 250 <SEP> ml
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 326 <SEP> mg <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 33% <SEP>
<tb>
EMI3.3
ten.
Beispiel 5 : Testeslipide
1 g Gesamtlipidextrakt aus Kälbertests
40 g Kieselgel für die Trockensäulenchromatographie
EMI3.4
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CC14
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> n <SEP> CCl4 <SEP> - <SEP> CHgOH-H2O <SEP> 26 <SEP> : <SEP> 39 <SEP> : <SEP> 3
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 263 <SEP> ml <SEP>
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 42 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 80 <SEP> ml
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 406 <SEP> mg <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 40% <SEP>
<tb>
Analysenwerte:Der Phosphatidyläthanolamingehalt steigt von 21 auf 60%. Der Anteil der beiden Fettsäuren C20 : 4 und C22 : 6 erhöht sich von 12 auf 14 bzw. von 6 auf 8%.
Beispiel 6 : Netzhautlipide
1 g Gesamtextrakt aus Schweinenetzhäuten
40 g Kieselgel für die Trockensäulenchromatographie
EMI3.5
<tb>
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> I <SEP> CH2 <SEP> Cl2
<tb> Lösungsmittel <SEP> für <SEP> Stufe <SEP> II <SEP> CH2 <SEP> Cl2-CH3OH-H2O <SEP> 25:25: <SEP> 2
<tb> Fraktion <SEP> 1 <SEP> 202 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 2 <SEP> 50 <SEP> ml
<tb> Fraktion <SEP> 3 <SEP> 100 <SEP> ml <SEP>
<tb> Ausbeute <SEP> (Fraktion <SEP> 3) <SEP> 351 <SEP> mg <SEP> Phosphatide, <SEP> d. <SEP> s. <SEP> 35% <SEP>
<tb>
Analysenwerte : Die ermittelten Werte entsprechen Beispiel 1.
**WARNUNG** Ende DESC Feld kannt Anfang CLMS uberlappen**.
Claims (1)
- PATENTANSPRÜCHE : 1. Verfahren zur Herstellung von Phosphatidkomplexen mit erhöhtem Phosphatidyläthanolamingehalt aus EMI3.6 Material, dadurch gekennzeichnet, dass man einen Gesamtlipidextrakt mittels der Trok-kensäulenchromatographie in einem zweistufigen Verfahren eluiert, wobei in der ersten Stufe an einer, mit einem Losungsmittelgemisch für die zweite Stufe vorbehandelten Kieselgelsäule mittels eines mindestens di- <Desc/Clms Page number 4> chlorierten niederen aliphatischen Kohlenwasserstoffes die Neutralfette und Glyceride abgetrennt werden, wonach in der zweiten Stufe mit einer solchen Menge eines Gemisches aus mindestens dichloriertem niederem aliphatischemKohlenwasserstoff, einwertigem niederaliphatischem Alkohol und Wasser behandelt wird,dass Phosphatide mit einem gegenüber dem nativen Komplex erhöhten Gehalt an Phosphatidyläthanolamin isoliert werden.2. Verfahren nach Anspruch l, dadurch gekennzeichnet, dass als mindestens dichlorierter Kohlenwasserstoff für die Behandlung in der ersten bzw. zweiten Trennstufe Dichlormethan, Chloroform oder Tetrachlormethan eingesetzt wird. EMI4.1 dadurch gekennzeichnet, dassalseinwertigerniederali-phatischer Alkohol Methanol oder Äthanol eingesetzt wird.4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass die Vorbehandlung des Kieselgels durch Vermischen mit dem für die zweite Trennstufe dienenden Lösungsmittelgemisch in einem Verhältnis von etwa 0, 5 bis 2 ml Lösungsmittel auf 5 g Kieselgel und mindestens einstündige Stehenlassen vorgenommen wird.5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass der Gesamtlipidextrakt in dem mindestens dichloriertenKohlenwasserstoff gelöst, mit einem kleinen Anteil von vorbehandeltem Kieselgel vermischt, vom Lösungsmittel befreit und als krümelartige Masse auf die vorbereitete Säule aufgebracht wird.6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass die Elution mit dem mindestens dichlorierten Kohlenwasserstoff in der ersten Verfahrensstufe mit einer Geschwindigkeit von 2, 5 bis 10 ml/min vorgenommen wird.7. Verfahren nach einem der Ansprüche l bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass die Elution mit dem Lösungsmittelgemisch in der zweiten Verfahrensstufe mit einer Geschwindigkeit von 1 bis 3 ml/min vorgenommen wird.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| AT97474*#A AT333437B (de) | 1974-02-07 | 1974-02-07 | Verfahren zur herstellung von phosphatidkomplexen mit erhohtem phosphatidylathanolamingehalt aus tierischem material |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| AT97474*#A AT333437B (de) | 1974-02-07 | 1974-02-07 | Verfahren zur herstellung von phosphatidkomplexen mit erhohtem phosphatidylathanolamingehalt aus tierischem material |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ATA97474A ATA97474A (de) | 1976-03-15 |
| AT333437B true AT333437B (de) | 1976-11-25 |
Family
ID=3504063
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| AT97474*#A AT333437B (de) | 1974-02-07 | 1974-02-07 | Verfahren zur herstellung von phosphatidkomplexen mit erhohtem phosphatidylathanolamingehalt aus tierischem material |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| AT (1) | AT333437B (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2399251A1 (fr) * | 1977-08-04 | 1979-03-02 | Aesculapius Lab Chim Farma | Procede d'extraction pour la preparation de phospholipides a usage therapeutique a partir d'organes d'animaux |
| US5434183A (en) * | 1991-05-30 | 1995-07-18 | Pharmacia Ab | Phospholipids containing omega-3-fatty acids |
-
1974
- 1974-02-07 AT AT97474*#A patent/AT333437B/de not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2399251A1 (fr) * | 1977-08-04 | 1979-03-02 | Aesculapius Lab Chim Farma | Procede d'extraction pour la preparation de phospholipides a usage therapeutique a partir d'organes d'animaux |
| US5434183A (en) * | 1991-05-30 | 1995-07-18 | Pharmacia Ab | Phospholipids containing omega-3-fatty acids |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ATA97474A (de) | 1976-03-15 |
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