WO2022054510A1

WO2022054510A1 - 検体液の濃縮方法、及び、検体液の検査方法

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Publication number: WO2022054510A1
Application number: PCT/JP2021/030117
Authority: WO
Inventors: 裕康石井; 淳哉吉田; 吉宏油屋
Original assignee: 富士フイルム株式会社
Priority date: 2020-09-11
Filing date: 2021-08-18
Publication date: 2022-03-17
Also published as: US20230228748A1; EP4212876A4; JPWO2022054510A1; CN116171378A; EP4212876A1

Abstract

所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができる検体液の濃縮方法、及び、上記検体液の濃縮方法を用いた検体液の検査方法を提供する。粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーに、高分子を含む水溶液である検体液を注入する検体液注入工程と、シリンダーに注入された検体液に含まれる水がシリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されてシリンダー中に検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する吸水工程と、検体液濃縮物に検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液よりも少ない液を添加する液添加工程と、シリンダーに、シリンダーに挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンを挿入することでピストンの先端部の孔を通して検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す取り出し工程とをこの順に備える、検体液の濃縮方法。

Description

検体液の濃縮方法、及び、検体液の検査方法

　本発明は、検体液の濃縮方法、及び、検体液の検査方法に関する。

　従来、抗原等の高分子を含む水溶液（以下、「検体液」とも言う）を高吸水性ポリマーによって濃縮する技術が知られている（例えば、特許文献１）。

特開平４－３５５３３９号公報

　このようななか、本発明者らが特許文献１等を参考にして高吸水性ポリマーを用いた検体液の濃縮方法について検討したところ、検体液の濃縮液（検体液濃縮液）の濃縮倍率を制御することが難しいことが明らかになった。濃縮倍率が制御されていない検体液濃縮液を用いて検査を行った場合、検体液同士の検査結果に比較障害が生じるため問題である。

　そこで、本発明は、上記実情を鑑みて、所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができる検体液の濃縮方法、及び、上記検体液の濃縮方法を用いた検体液の検査方法を提供することを目的とする。

　本発明者らは、上記課題について鋭意検討した結果、高吸水性ポリマーが収納されたシリンダーに検体液を注入し、検体液中の水が高吸水性ポリマーによってほぼ完全に吸収させて検体液の濃縮物を生成されてから、これに液を添加して、孔の空いたピストンを用いて液を取り出すことで、上記課題が解決できることを見出し、本発明に至った。
　すなわち、本発明者らは、以下の構成により上記課題が解決できることを見出した。

（１）　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーに、高分子を含む水溶液である検体液を注入する、検体液注入工程と、
　上記シリンダーに注入された検体液に含まれる水が上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、上記シリンダー中に上記検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する、吸水工程と、
　上記検体液濃縮物に、上記検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液よりも少ない液を添加する、液添加工程と、
　上記シリンダーに、上記シリンダーに挿入可能なピストンであって上記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンを挿入することで、上記ピストンの先端部の孔を通して上記検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す、
取り出し工程とをこの順に備える、検体液の濃縮方法。
（２）　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに注入された検体液の一部を上記液添加工程で添加される液として上記シリンダー中に保持する工程であり、
　上記吸水工程が、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記液添加工程で添加される液として保持された検体液以外の検体液に含まれる水が上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、上記シリンダー中に上記検体液濃縮物が生成する工程であり、
　上記液添加工程が、上記検体液濃縮物に上記液添加工程で添加される液として保持された検体液を添加する工程である、上記（１）に記載の検体液の濃縮方法。
（３）　上記シリンダーが底部に上記液添加工程で添加される液を保持するための液保持部を有し、上記高吸水性ポリマーが上記液保持部の上に上記液保持部に接して上記シリンダーに収容され、
　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに注入された検体液の一部を上記液添加工程で添加される液として上記液保持部に保持する工程である、上記（２）に記載の検体液の濃縮方法。
（４）　上記液保持部が、上記シリンダーの底部と、上記シリンダーの内周面に上記シリンダーの長手方向に移動可能に設置された隔壁とによって囲まれた部分であり、上記隔壁が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい孔を有し、
　上記液添加工程が、上記隔壁を上記シリンダーの底面まで移動させて、上記液保持部に保持された検体液を上記隔壁の孔を通して上記隔壁の上に導入することで、上記検体液濃縮物に上記液保持部に保持された検体液を添加する工程である、上記（３）に記載の検体液の濃縮方法。
（５）　上記液保持部が、上記シリンダーの底部に収容された多孔質の樹脂が有する孔によって形成された部分であり、上記樹脂が有する孔が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さく、
　上記液添加工程が、上記樹脂を圧潰させて、上記液保持部に保持された検体液を上記樹脂の孔を通して上記樹脂の上に導入することで、上記検体液濃縮物に上記液保持部に保持された検体液を添加する工程である、上記（３）に記載の検体液の濃縮方法。
（６）　上記多孔質の樹脂がスポンジである、上記（５）に記載の検体液の濃縮方法。
（７）　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに上記ピストンを挿入して、上記ピストンの先端部を上記シリンダーに注入された検体液の液面よりも低く上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーよりも高い位置に固定することで、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記ピストンの先端部の上に存在する検体液を上記液添加工程で添加される液として上記シリンダー中に保持する工程であり、
　上記液添加工程が、上記ピストンを引き上げて、上記ピストンの先端部の上に存在する検体液を上記ピストンの先端部の孔を通して上記ピストンの先端部の下に導入することで、上記検体液濃縮物に上記ピストンの先端部の上に存在する検体液を添加する工程である、上記（２）に記載の検体液の濃縮方法。
（８）　上記取り出し工程において、更に、上記取り出された検体液濃縮液を、上記検体液濃縮液を回収するための回収口を有する蓋を用いて回収する、上記（１）～（７）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（９）　上記高吸水性ポリマーの吸水速度が、高吸水性ポリマー１ｇ当たり０．０１ｇ／分以上４０ｇ／分以下である、上記（１）～（８）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１０）　上記高吸水性ポリマーの粒子径が、５ｍｍ以下である、上記（１）～（９）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１１）　上記高吸水性ポリマーの膨潤率が、０．２ｇ／ｇ超８００ｇ／ｇ未満である、上記（１）～（１０）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１２）　上記検体液が、生体液中に含まれる高分子を含む水溶液である、上記（１）～（１１）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１３）　上記シリンダーが、更に、上記生体液中に含まれる高分子と特異的に結合する結合物質を含む、上記（１２）に記載の検体液の濃縮方法。
（１４）　上記結合物質が、金属粒子との複合体として、上記シリンダーに含まれる、上記（１３）に記載の検体液の濃縮方法。
（１５）　上記生体液中に含まれる高分子が抗原であり、上記結合物質が上記抗原に対する抗体である、上記（１３）又は（１４）に記載の検体液の濃縮方法。
（１６）　上記シリンダーが、更に、カゼイン及びトリシンからなる群より選択される少なくとも１種を含む、上記（１）～（１５）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１７）　上記検体液が、尿である、上記（１）～（１６）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法。
（１８）　高分子を含む水溶液である検体液中の高分子を検出する、検体液の検査方法であって、
　上記（１）～（１７）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法を用いて、上記検体液濃縮液を得る、濃縮工程と、
　得られた上記検体液濃縮液中の高分子を検出する、検出工程とをこの順に備える、検体液の検査方法。
（１９）　上記検体液が、抗原を含み得る水溶液であり、
　上記濃縮工程が、上記（１）～（１７）のいずれかに記載の検体液の濃縮方法を用いて、上記抗原を含み得る水溶液を濃縮して、抗原濃縮液を得る工程であり、
　上記検出工程が、抗原抗体反応を用いたイムノクロマトグラフィーによって上記抗原濃縮液中の抗原を検出する工程である、上記（１８）に記載の検体液の検査方法。
（２０）　上記検出工程が、上記抗原濃縮液中の抗原の情報を増幅する増幅工程を備える、上記（１９）に記載の検査方法。
（２１）　上記増幅工程が、銀増幅工程である、上記（２０）に記載の検査方法。

　以下に示すように、本発明によれば、所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができる検体液の濃縮方法、及び、上記検体液の濃縮方法を用いた検体液の検査方法を提供することができる。

本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち最初の状態を示すものである。本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち検体液注入工程を示すものである。本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち吸水工程を示すものである。本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち抽出液添加工程を示すものである。本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち取り出し工程を示すものである。態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち最初の状態を示すものである。態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち検体液注入工程を示すものである。態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち吸水工程を示すものである。態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち抽出液添加工程を示すものである。態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち取り出し工程を示すものである。態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち最初の状態を示すものである。態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち検体液注入工程を示すものである。態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち吸水工程を示すものである。態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち抽出液添加工程を示すものである。態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図のうち取り出し工程を示すものである。態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図のうち最初の状態を示すものである。態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図のうち検体液注入工程を示すものである。態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図のうち吸水工程を示すものである。態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図のうち抽出液添加工程を示すものである。態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図のうち取り出し工程を示すものである。本発明の濃縮デバイスの一態様の模式的断面図である。態様Ａ１の一態様の模式的断面図である。態様Ａ２の一態様の模式的断面図である。態様Ｂの一態様の模式的断面図である。濃縮デバイス２０１～２０４の一部の斜視図である。濃縮デバイス２０４の一部の斜視図である。本発明の検査方法の検出工程で使用される不溶性担体の一態様の模式図である。イムノクロマトグラフキットの一実施形態の態様を示す斜視図である。イムノクロマトグラフキットの一実施形態の態様を示す分解概略斜視図である。検査用ストリップ、第１および第２のポットの位置関係を示す模式側面図である。図１２に示すイムノクロマトグラフキットの上部ケースに設けられている第１の凸状変形部の斜視図である。図１５に示す第１の凸状変形部の変形前後におけるＶ－Ｖ’線切断部端面図ある。図１２に示すイムノクロマトグラフキットの上部ケースに設けられている第２の凸状変形部の斜視図である。図１７に示す第２の凸状変形部の変形前後におけるＶＩＩ－ＶＩＩ’線切断部端面図である。設計変更例の凸状変形部の変形前後における切断部端面図である。

　以下に、本発明の検体液の濃縮方法、及び、本発明の検体液の検査方法について説明する。
　なお、本明細書において「～」を用いて表される数値範囲は、「～」の前後に記載される数値を下限値及び上限値として含む範囲を意味する。
　また、本明細書において各成分は、１種を単独で用いても、２種以上を併用して用いてもよい。ここで、各成分について２種以上を併用する場合、その成分について含有量とは、特段の断りが無い限り、合計の含有量を指す。
　また、本明細書において、本発明の検体液の濃縮方法において、所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができること、及び、得られる検体液濃縮液の濃度の均一性が高いこと、並びに、本発明の検体液の検査方法において、検出感度が高いこと、及び、Ｓ／Ｎ比（信号／ノイズ比）が高いことを、本発明の効果等が優れる、とも言う。

［１］検体液の濃縮方法
　本発明の検体液の濃縮方法（以下、「本発明の濃縮方法」とも言う）は、
　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーに、高分子を含む水溶液である検体液を注入する、検体液注入工程と、
　上記シリンダーに注入された検体液に含まれる水が上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、上記シリンダー中に上記検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する、吸水工程と、
　上記検体液濃縮物に、上記検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液よりも少ない液（以下、「抽出液」とも言う）を添加する、液添加工程（以下、「抽出液添加工程」とも言う）と、
　上記シリンダーに、上記シリンダーに挿入可能なピストンであって上記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンを挿入することで、上記ピストンの先端部の孔を通して上記検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す、取り出し工程とをこの順に備える、検体液の濃縮方法である。

　最初に図面を用いて本発明の濃縮方法について説明する。

　図１（図１Ａ～図１Ｅ）は、本発明の濃縮方法の一態様を工程順に示す模式的断面図である。

　まず、検体液注入工程において、粒子状の高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１１（図１Ａ）に開口部２１６から検体液２４０を注入する（図１Ｂ）。

　その後、吸水工程において、検体液２４０に含まれる水が高吸水性ポリマー２３０によって吸収されて、シリンダー２１１中に検体液２４０の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成する（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となる）（図１Ｃ）。

　次いで、抽出液添加工程において、検体液注入工程でシリンダー２１１に注入された検体液よりも少ない抽出液２５０を添加する（図１Ｄ）。

　そして、取り出し工程において、シリンダー２１１に、開口部２１６から、シリンダー２１１に挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径（膨潤した高吸水性ポリマー２３２の粒子径）よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備えるピストン２２０を挿入することで、ピストン２２０の先端部２２１の孔２２２を通して検体液２４０の濃縮液である検体液濃縮液２４８を取り出す（図１Ｅ）。

　以下、各工程について説明する。

［検体液注入工程］
　上述のとおり、検体液注入工程は、粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーに、高分子を含む水溶液である検体液を注入する工程である。

〔シリンダー〕
　上記シリンダーの形状は特に制限されないが、円筒状であることが好ましい。
　上記シリンダーは、通常、長手方向の一方の端は閉じられ（底面）、他方の端は開放されている（開口部）。

　上記シリンダーの材質は特に制限されないが、射出成型可能で安価で大量に生産できることから、熱可塑性樹脂であることが好ましい。ある程度の硬度を有することから、具体的には、ポリプロピレン、アクリル、ポリアセタール、ポリアミド、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ポリカーボネート、ポリスチレン、ポリフェニレンサルファイド、ポリブチレンテレフタレート、ポリ塩化ビニル、ＡＢＳ樹脂（アクリロニトリル－ブタジエン－スチレン共重合樹脂）、ＡＳ樹脂（アクリロニトリル－スチレン共重合樹脂）が好ましい。

〔粒子状の高吸水性ポリマー〕
　上記シリンダーに収容される粒子状の高吸水性ポリマー（ｓｕｐｅｒａｂｓｏｒｂｅｎｔ　ｐｏｌｙｍｅｒ：ＳＡＰ）は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、ポリアクリル酸系、ポリアクリルアミド系、セルロース系、又は、ポリエチレンオキシド系のポリマーであることが好ましい。

＜膨潤率＞
　上記高吸水性ポリマーの膨潤率は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、０．２ｇ／ｇ超８００ｇ／ｇ未満であることが好ましく、１．０ｇ／ｇ以上６００ｇ／ｇ以下であることがより好ましく、１０ｇ／ｇ以上５００ｇ／ｇ以下であることがさらに好ましく、２０ｇ／ｇ以上１００ｇ／ｇ以下であることが特に好ましい。
　ここで、膨潤率とは、「高吸水性ポリマー１ｇが保持する水の質量（ｇ）」として定義される値である。

（膨潤率の測定方法）
　２５℃５％ＲＨ（相対湿度）で１０日間保管した高吸水性ポリマーの質量を測定し、その後すぐに、多量の蒸留水の中に浸漬させる。１２０分後、高吸水性ポリマーを取り出し、表面の水を除去して、再度質量を測定し、以下の計算式を用いて膨潤率を測定する。
{（吸水後の質量（ｇ）－吸水前の初期質量（ｇ））／吸水前の初期質量（ｇ）}

　膨潤率を上述した特定の範囲に調整する方法は特に制限されないが、ポリマーの種類を変更する、ポリマーの分子量を変更する、架橋度を変更する、粒子径を変更する等の方法が挙げられる。

＜吸水速度＞
　上記高吸水性ポリマーの吸水速度は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、高吸水性ポリマー１ｇ当たり０．０１ｇ／分以上４０ｇ／分以下であることが好ましく、高吸水性ポリマー１ｇ当たり０．０２ｇ／分以上４０ｇ／分以下であることがより好ましい。

　上記吸水速度は以下のように測定する。
　２５℃５％ＲＨ（相対湿度）で１０日間保管した高吸水性ポリマーの質量を測定し（重量Ｍ_０、単位ｇ）、その後すぐに、多量の蒸留水の中に浸漬させる。１０分後、高吸水性ポリマーを取り出し、表面の水を除去して、質量を測定する（質量Ｍ_１０）。質量測定後ただちに、多量の蒸留水の中に再び浸漬させる。１０分後、高吸水性ポリマーを取り出し、表面の水を除去して、再度質量を測定する（質量Ｍ_２０）。質量Ｍ_２０の測定後ただちに、多量の蒸留水の中に再び浸漬させる。１０分後、高吸水性ポリマーを取り出し、表面の水を除去して、再度重量を測定する（質量Ｍ_３０）。

　以下のように吸水量を定義する。
１０分間の吸水量：　ΔＭ１０　＝　（Ｍ_１０－Ｍ_０）／Ｍ_０２０分間の吸水量：　ΔＭ２０　＝　（Ｍ_２０－Ｍ_０）／Ｍ_０３０分間の吸水量：　ΔＭ３０　＝　（Ｍ_３０－Ｍ_０）／Ｍ_０
　上記のように定義した吸水量を用いて、以下のように吸水速度を求める。
　横軸時間（ｘ＝１０，２０，３０；単位　分）と縦軸吸水量（ｙ＝ΔＭ１０、ΔＭ２０、ΔＭ３０；単位　ｇ水／ｇポリマー量）としてＸ－Ｙ平面に３点をプロットし、最小二乗法を用いた時間に対する吸水量の直線近似式の傾きを、単位時間（分）あたりの吸水速度とする。

＜粒子径＞
　上記高吸水性ポリマーの粒子径は、本発明の効果等がより優れる理由から、１０ｍｍ以下であることが好ましく、８ｍｍ以下であることがより好ましく、５ｍｍ以下であることがさらに好ましい。上記高吸水性ポリマーの粒子径の下限は、本発明の効果等がより優れる理由から、０．０１ｍｍ以上であることが好ましく、０．１ｍｍ以上であることがより好ましく、１ｍｍ以上であることがさらに好ましい。
　ここで、上記粒子径は、光学顕微鏡により５０個の粒子状のポリマーの直径を測定し、その算術平均値として求めることができる。

〔生体液中に含まれる高分子と特異的に結合する結合物質〕
　上記シリンダーは、本発明の効果等がより優れる理由から、更に、後述する検体液中の生体液中に含まれる高分子と特異的に結合する結合物質を含むのが好ましい。上記シリンダーが上記結合物質を含む場合、例えば、検体液の濃縮と同時に抗原抗体反応が進行し、検体液中の抗原と標識抗体との複合体が濃縮された状態で形成され、検出感度の向上に繋がる。
　上記結合物質としては、例えば、後述する第１の結合物質（特に抗体）が挙げられる。すなわち、本発明において、本発明の効果等がより優れる理由から、上記生体液中に含まれる高分子が抗原であり、上記結合物質が抗体であるのが好ましい。
　上記結合物質は、本発明の効果等がより優れる理由から、標識物質との複合体として、上記シリンダーに含まれるのが好ましい。
　上記複合体としては、例えば、標識抗体が挙げられる。
　ここで、標識抗体とは、検出が可能な標識物質が結合した抗体のことであり、標識物質とは、例えば、検出が可能な物質であり、直接、検出が可能な物質、例えば、色、蛍光、光等の電磁波を生じ得る物質、あるいは、色、蛍光、光等の電磁波を散乱し得る物質であり、更には、発光前駆体や発色前駆体と相互作用することで発光体あるいは発色体を形成する酵素等、を含む物質あるいは状態である。
　上記標識抗体は、本発明の効果等がより優れる理由から、可視光などの電磁波の照射により鮮やかな色調を呈する金属粒子で修飾された抗体であることが好ましい。上記金属粒子は、本発明の効果等がより優れる理由から、金粒子であることがより好ましい。上記標識抗体は、本発明の効果等がより優れる理由から、金粒子で標識された抗体、即ち、抗体で修飾された金粒子（後述する修飾金粒子）であることが好ましい。
　上記標識抗体は、抗体で修飾された金コロイド粒子である修飾金コロイド粒子が保持されたパッド（金コロイド保持パッド）として、上記シリンダーに含まれていてもよい。

〔カゼイン、トリシン〕
　上記シリンダーは、本発明の効果等がより優れる理由から、更に、カゼイン及びトリシンからなる群より選択される少なくとも１種を含むのが好ましく、カゼイン及びトリシンの両方を含むのがより好ましい。
　カゼインは偽陽性を抑制する働きがあると考えられる。また、尿など検体液のｐＨが酸性よりである場合、偽陽性が発生し易いところ、トリシンはｐＨを中性～アルカリ性に調整して偽陽性を抑制する働きがあると考えられる。

〔抽出液保持部〕
　上記シリンダーは、本発明の効果等がより優れる理由から、後述する好適な態様に示されるように、底部に後述する抽出液を保持するための液保持部（以下、「抽出液保持部」とも言う）を有するのが好ましい。上記抽出液保持部については後述する。

〔検体液〕
　上記検体液は、高分子を含む水溶液である。なかでも、生体液中に含まれる高分子を含む水溶液であることが好ましい。
　上記検体液の具体例としては、動物（特にヒト）の体液（例えば、血液、血清、血漿、髄液、涙液、汗、尿、膿、鼻水、又は喀痰）、うがい液等を挙げることができる。この中で、高分子としての抗原が含まれる検体として、血清、血漿、尿、鼻水であることが好ましく、本発明の効果等がより優れる理由から、尿であることが特に好ましい。

＜生体液中に含まれる高分子＞
　上記生体液中に含まれる高分子（特に抗原）としては、例えば、主として疾病の判断に有用な高分子であり、生体液中から検出される、菌、細菌（例えば、結核菌、結核菌に含まれるリポアラビノマンナン（ＬＡＭ））、バクテリア、ウイルス（例えば、インフルエンザウイルス）や、それらの核タンパク質等が挙げられる。なお、ＬＡＭは、結核における主要な抗原であり、細胞膜および細胞壁の主要構成成分である糖脂質である。
　上記生体液中に含まれる高分子は、本発明の効果等がより優れる理由から、抗原であることが好ましく、ウイルス（特に、インフルエンザウイルス）又はＬＡＭであることがより好ましく、ＬＡＭであることがさらに好ましい。
　生体液中に含まれる高分子の分子量は、本発明の効果等がより優れる理由から、１０００以上であることが好ましく、２０００以上であることがより好ましい。分子量は、疾病の判断に有用な高分子であって構造式が既知の高分子である場合には構造式から計算される理論値を用いることができる。また、構造式が確定していない場合には、電気泳動法を用いて分子量が既知の物質との比較により算出する方法や、液体クロマトグラフィー質量分析法（ＬＣ－ＭＳ）により求めることが可能である。

＜検体液の前処理＞
　上記検体液は、検体液をそのままで、又は、抗原を適当な抽出用溶媒を用いて抽出して得られる液の形で、更には、抽出して得られる液を適当な希釈剤で希釈して得られる希釈液の形、若しくは抽出して得られる液を適当な方法で濃縮した形で、用いることができる。
　上記抽出用溶媒としては、通常の免疫学的分析法で用いられる溶媒（例えば、水、生理食塩液、又は緩衝液等）、あるいは、かかる溶媒で希釈することにより直接抗原抗体反応を実施することができる水混和性有機溶媒を用いることもできる。

〔検体液に対する高吸水性ポリマーの割合〕
　上記検体液に対する上記高吸水性ポリマーの割合は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、検体液１ｍＬに対して、０．０１～１００ｇであることが好ましく、０．１～５０ｇであることがより好ましい。

［吸水工程］
　上述のとおり、吸水工程は、上述した検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液に含まれる水が上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、上記シリンダー中に上記検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する工程である。
　吸水工程では、通常、検体液中の水が高吸水性ポリマーによってほぼ完全に吸収されるまで静置する。

〔検体液濃縮物〕
　上述のとおり、吸水工程では、シリンダー中に検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する。
　検体液と高吸水性ポリマーとを混合した場合、検体液中の水は高吸水性ポリマーに取り込まれるのに対して、検体液中の高分子（例えば、抗原）は、ある程度の流体力学半径を有するため、高吸水性ポリマーの表面の網目構造がふるい効果を生み出し、高吸水性ポリマーに取り込まれ難い。結果として、検体液中の高分子（例えば、抗原）が濃縮される。
　検体液濃縮物は、通常、高吸水性ポリマーの近傍に、高分子の析出物、又は、微量の残液に溶解した高分子の高濃度溶液として存在する。

［抽出液添加工程］
　上述のとおり、抽出液添加工程は、上述した吸水工程で生成した検体液濃縮物に、上述した検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液よりも少ない抽出液を添加する工程である。
　抽出液は、吸水工程で生成した検体液濃縮物を抽出する（取り出す）役目を有する。
　抽出液を添加する方法は特に制限されず、例えば、シリンダーの開口部から入れる方法、スポイト等を用いてシリンダーの底部に送液する方法等が挙げられる。

〔抽出液〕
　上記抽出液は特に制限されないが、必要に応じて緩衝剤や界面活性剤、その他添加物により機能を持たせることもできる。上記抽出液は、本発明の効果等がより優れる理由から、緩衝液であることが好ましく、ＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒｅｄ　ｓａｌｔｓ）であることがより好ましい。
　また、後述する好適な態様に示されるように、検体液の一部を抽出液と使用するのでもよい。

　上記抽出液の量は、検体液を濃縮する観点から、シリンダーに注入される検体液の量よりも少ない。なお、後述する好適な態様に示されるように検体液の一部を抽出液として使用した場合、抽出液の量はシリンダーに注入される検体液の量よりも必然的に少なくなる。
　シリンダーに注入される検体液の量に対する抽出液の量の割合（抽出液／検体液）は体積比で１００％未満であればよいが、本発明の効果等がより優れる理由から、３０％以下であることが好ましく、２０％以下であることがより好ましく、０．０１％以上１０％以下であることがさらに好ましい。

［取り出し工程］
　上述のとおり、取り出し工程は、上述した吸水工程後のシリンダーに、上記シリンダーに挿入可能なピストンであって上述した高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンを挿入することで、上記ピストンの先端部の孔を通して上述した検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す工程である。
　取り出し工程では、シリンダーにピストンを挿入し、孔を有する先端部を高吸水性ポリマーに対して押し込む。このとき、抽出液が高吸水性ポリマーの間隙をくまなく移動しながら上方に集まるため、このときの撹拌効果によって、均一な検体液濃縮液が得られる。

〔ピストン〕
　上記ピストンはシリンダーに挿入可能なピストンであって上述した高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンである。

　上記ピストンの材質は特に制限されず、その好適な態様は上述したシリンダーと同じである。

　上述のとおり、ピストンの先端部は上述した高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する。なお、高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径は、５０個の粒子状のポリマーの直径を測定し、その算術平均値として求めることができる。
　上記先端部の孔の径は、本発明の効果等がより優れる理由から、高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径の１／２以下であることが好ましく、１／５以下であることがより好ましく、１／１０以下であることがさらに好ましい。
　上記先端部の孔の径は、本発明の効果等がより優れる理由から、高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さいことが好ましい。
　上記先端部の孔の径は、本発明の効果等がより優れる理由から、０．０１～５ｍｍであることが好ましく、０．１～２ｍｍであることがより好ましい。
　上記先端部が有する孔の数は特に制限されないが、１０～１００であることが好ましく、２０～５０であることがより好ましい。
　上記先端部の面積に対する上記先端部の孔の総面積の割合は、本発明の効果等がより優れる理由から、５％以上であることが好ましく、１０％以上であることがより好ましく、１５％以上であることがさらに好ましい。

〔検体液濃縮液〕
　上述のとおり、取り出し工程では、検体液濃縮液が得られる。検体液濃縮液の量はおよそ抽出液の量である。すなわち、検体液濃縮液の濃縮倍率はおよそ検体液／抽出液となる。そのため、検体液と抽出液の量を一定にすることで所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができる。

〔回収口を有する蓋〕
　上記取り出し工程においては、本発明の効果等がより優れる理由から、更に、上述のとおり取り出された検体液濃縮液を、検体液濃縮液を回収するための回収口を有する蓋を用いて回収するのが好ましい。
　上記蓋の具体的な態様としては、例えば、後述する実施例１で使用されるような蓋（図９）が挙げられる。

［好適な態様］
　本発明の濃縮方法の好適な態様としては、上述した本発明の濃縮方法において、
　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに注入された検体液の一部を上記抽出液として上記シリンダー中に保持する工程であり、
　上記吸水工程が、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記抽出液として保持された検体液以外の検体液に含まれる水が上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、上記シリンダー中に上記検体液濃縮物が生成する工程であり、
　上記抽出液添加工程が、上記検体液濃縮物に上記抽出液として保持された検体液を添加することで上記検体液濃縮液を得る工程である、態様が挙げられる。

　上記好適な態様では、検体液の一部を抽出液として使用するため、別途抽出液を用意する必要がなく、ユーザビリティを向上させることができる。

　また、上記好適な態様の具体的な態様としては、例えば、以下の２つの態様（好適な態様Ａ、好適な態様Ｂ）が挙げられる。

（１）好適な態様Ａ
　好適な態様Ａは、上記好適な態様において、
　上記シリンダーが底部に上記抽出液を保持するための抽出液保持部を有し、上記高吸水性ポリマーが上記抽出液保持部の上に上記抽出液保持部に接して上記シリンダーに収容され、
　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに注入された検体液の一部を上記抽出液として上記抽出液保持部に保持する工程である、態様である。

　好適な態様Ａの具体的な態様としては、例えば、後述する態様Ａ１～Ａ２が挙げられる。

（２）好適な態様Ｂ（態様Ｂ）
　態様Ｂは、上記好適な態様において、
　上記検体液注入工程が、上記シリンダーに上記検体液を注入するとともに、上記シリンダーに上記ピストンを挿入して、上記ピストンを上記シリンダーに注入された検体液の液面よりも低く上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーよりも高い位置に固定することで、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記ピストンの上に存在する検体液を上記抽出液として上記シリンダー中に保持する工程であり、
　上記抽出液添加工程が、上記ピストンを引き上げて、上記ピストンの上に存在する検体液を上記ピストンの孔を通して上記ピストンの下に導入することで、上記検体液濃縮物に上記ピストンの上に存在する検体液を添加する工程である、態様である。

〔態様Ａ１〕
　態様Ａ１は、上述した好適な態様Ａにおいて、
　上記抽出液保持部が、上記シリンダーの底部と、上記シリンダーの内周面に上記シリンダーの長手方向に移動可能に設置された隔壁とによって囲まれた部分であり、上記隔壁が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい孔を有し、
　上記抽出液添加工程が、上記隔壁を上記シリンダーの底面まで移動させて、上記抽出液保持部に保持された検体液を上記隔壁の孔を通して上記隔壁の上に導入することで、上記検体液濃縮物に上記抽出液保持部に保持された検体液を添加する工程である、態様である。

　図面を用いて態様Ａ１について説明する。
　図２（図２Ａ～図２Ｅ）は、態様Ａ１の一態様を工程順に示す模式的断面図である。

　まず、検体液注入工程において、粒子状の高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１２（図２Ａ）に開口部２１６から検体液２４０を注入する（図２Ｂ）。
　ここで、シリンダー２１２は、シリンダー２１２の内周面にシリンダー２１２の長手方向に移動可能に設置された隔壁２６０を有する。また、上記隔壁２６０は、高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい孔２６２を有する。また、上記高吸水性ポリマー２３０は、隔壁２６０の上に隔壁２６０に接してシリンダー２１２に収容されている。
　上述のとおりシリンダー２１２に検体液２４０を注入した場合、検体液２４０の一部は隔壁２６０の孔２６２を通って、隔壁２６０の下に導入される。そして、後述する吸水工程においては、検体液２４０のうち隔壁２６０の上に存在する検体液２４２に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収され、検体液２４０のうち隔壁２６０の下に存在する検体液２４１に含まれる水は高吸水性ポリマー２３０によって吸収されない。
　すなわち、検体液注入工程は、シリンダー２１２に検体液２４０を注入するとともに、シリンダー２１２に注入された検体液の一部（検体液２４１）を後述する抽出液添加工程で添加される抽出液として、シリンダー２１２の底部２１７と、隔壁２６０とによって囲まれた部分（抽出液保持部）に保持する工程となる。

　その後、吸水工程において、検体液２４０のうち隔壁２６０の上に存在する検体液２４２（検体液２４０のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収されて、シリンダー２１１中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成する（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となる）（図２Ｃ）。

　次いで、抽出液添加工程において、隔壁２６０をシリンダー２１２の底面２１８まで移動させて、抽出液保持部に保持された検体液２４１を隔壁２６０の孔２６２を通して隔壁２６０の上に導入することで、検体液濃縮物２４６に抽出液保持部に保持された検体液２４１を添加する（図２Ｄ）。なお、図２Ｄでは、シリンダー２１２に、開口部２１６から、後述する取り出し工程で使用されるピストン２２０を挿入することで、高吸水性ポリマー２３２を押し下げて隔壁２６０をシリンダー２１２の底面２１８まで移動させているが、隔壁２６０を移動させる方法はこれに限られず、例えば、隔壁２６０が移動する機構をピストン２２０と独立に設けてもよい。また、隔壁２６０を移動させる代わりに、底面２１８をシリンダー２１２の長手方向に移動可能なものとし、底面２１８を隔壁２６０まで移動させて、抽出液保持部に保持された検体液２４１を隔壁２６０の孔２６２を通して隔壁２６０の上に導入することで、検体液濃縮物２４６に抽出液保持部に保持された検体液２４１を添加するのでもよい。

　そして、取り出し工程において、シリンダー２１２に、シリンダー２１２に挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径（膨潤した高吸水性ポリマー２３２の粒子径）よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備えるピストン２２０を挿入することで、ピストン２２０の先端部２２１の孔２２２を通して検体液２４０の濃縮液である検体液濃縮液２４８を取り出す（図２Ｅ）。

＜隔壁＞
　上述のとおり、上記態様Ａ１では、シリンダーは隔壁を備える。
　上記隔壁の材質は特に制限されず、その好適な態様は上述したシリンダーと同じである。

　上述のとおり、上記隔壁は上述した高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい孔を有する。そのため、高吸水性ポリマーは隔壁の下に落ちない。
　上記隔壁の孔の径は、本発明の効果等がより優れる理由から、高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径の２／３以下であることが好ましい。
　上記隔壁の孔の径は、本発明の効果等がより優れる理由から、０．０５～５ｍｍであることが好ましく、０．１～３ｍｍであることがより好ましく、０．２～２ｍｍであることがさらに好ましい。
　上記先端部が有する上記隔壁の孔の数は特に制限されないが、１０～１００であることが好ましく、２０～５０であることがより好ましい。
　上記隔壁の面積に対する上記隔壁の孔の総面積の割合は、本発明の効果等がより優れる理由から、５％以上であることが好ましく、１０％以上であることがより好ましく、１５％以上であることがさらに好ましい。

〔態様Ａ２〕
　態様Ａ２は、上述した好適な態様Ａにおいて、
　上記抽出液保持部が、上記シリンダーの底部に収容された多孔質の樹脂が有する孔によって形成された部分であり、上記樹脂が有する孔が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さく、
　上記抽出液添加工程が、上記樹脂を圧潰させて、上記抽出液保持部に保持された検体液を上記樹脂の孔を通して上記樹脂の上に導入することで、上記検体液濃縮物に上記抽出液保持部に保持された検体液を添加する工程である、態様である。

　図面を用いて態様Ａ２について説明する。
　図３（図３Ａ～図３Ｅ）は、態様Ａ２の一態様を工程順に示す模式的断面図である。

　まず、検体液注入工程において、粒子状の高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１３（図３Ａ）に開口部２１６から検体液を注入する（図３Ｂ）。
　ここで、シリンダー２１３の底部２１７には多孔質の合成樹脂２７０が収容されている。合成樹脂２７０の有する孔（図示せず）は、高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい。また、高吸水性ポリマー２３０は、合成樹脂２７０の上に合成樹脂２７０に接してシリンダー２１３に収容されている。
　上述のとおりシリンダー２１３に検体液を注入した場合、検体液の一部は合成樹脂２７０の孔に導入される（合成樹脂２７０は、検体液の一部である検体液２４１（図示せず）が孔に導入された合成樹脂２７２となる）。そして、後述する吸水工程においては、検体液のうち合成樹脂２７０の上に存在する検体液２４２に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収され、検体液のうち合成樹脂２７０の孔に存在する検体液２４１に含まれる水は高吸水性ポリマー２３０によって吸収されない。
　すなわち、検体液注入工程は、シリンダー２１３に検体液を注入するとともに、シリンダー２１３に注入された検体液の一部（検体液２４１）を後述する抽出液添加工程で添加される抽出液として、シリンダー２１３の底部２１７に収容された多孔質の合成樹脂２７０が有する孔（抽出液保持部）に保持する工程となる。

　その後、吸水工程において、検体液のうち合成樹脂２７０の上に存在する検体液２４２（検体液のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収されて、シリンダー２１３中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成する（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となる）（図３Ｃ）。

　次いで、抽出液添加工程において、合成樹脂２７０を圧潰させて、抽出液保持部に保持された検体液２４１を合成樹脂２７０の孔を通して合成樹脂２７０の上に導入することで、検体液濃縮物２４６に抽出液保持部に保持された検体液２４１を添加する（図３Ｄ）。
なお、図３Ｄでは、シリンダー２１３に、開口部２１６から、後述する取り出し工程で使用されるピストン２２０を挿入することで、高吸水性ポリマー２３２を押し下げて合成樹脂２７０を圧潰させているが、合成樹脂２７０を圧潰させる方法はこれに限られず、例えば、合成樹脂２７０を圧潰させる機構をピストン２２０と独立に設けてもよい。

　そして、取り出し工程において、シリンダー２１３に、シリンダー２１３に挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径（膨潤した高吸水性ポリマー２３２の粒子径）よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備えるピストン２２０を挿入することで、ピストン２２０の先端部２２１の孔２２２を通して検体液の濃縮液である検体液濃縮液２４８を取り出す（図３Ｅ）。

＜樹脂＞
　上述のとおり、上記態様Ａ２において、シリンダーは多孔質の樹脂を備える。
　上記樹脂としては、自然界に存在する樹脂や、合成樹脂のいずれの使用も可能であるが、成形の容易さや大量に安価に生産可能な観点から合成樹脂である態様が好ましい。
　上記合成樹脂の材質は特に制限されないが、その具体例としては、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）が挙げられる。
　上記樹脂は、本発明の効果等がより優れる理由から、スポンジであることが好ましい。

　上記樹脂の孔は、上述した高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい。そのため、高吸水性ポリマーは樹脂の中に入らない。
　上記樹脂の空隙率（空隙の体積／空隙を含めた樹脂の体積）は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、５０％以上であることが好ましく、７０％以上９９％以下であることがより好ましく、７０％以上９８％以下であることがさらに好ましい。

〔態様Ｂ〕
　図面を用いて態様Ｂについて説明する。
　図４（図４Ａ～図４Ｅ）は、態様Ｂの一態様を工程順に示す模式的断面図である。

　まず、検体液注入工程において、粒子状の高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１４（図４Ａ）に開口部２１６から検体液２４０を注入するとともに、シリンダー２１４に、シリンダー２１４に挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備えるピストン２２４を挿入して、ピストン２２４の先端部２２１をシリンダー２１４に注入された検体液２４０の液面２４４よりも低くシリンダー２１４に収容された高吸水性ポリマー２３０よりも高い位置（以下、「位置Ａ」とも言う）に固定する（図４Ｂ）。なお、シリンダー２１４とピストン２２４は、ピストン２２４の先端部２２１を、高吸水性ポリマー２３０の吸水膨張に伴い圧力に抗して、位置Ａに固定する、ピストン位置固定機構（図示せず）を備える。
　上述のとおりシリンダー２１４に検体液２４０を注入するとともに、シリンダー２１４にピストン２２４を挿入して、ピストン２２４の先端部２２１を位置Ａに固定した場合、検体液の一部はピストン２２４の先端部２２１の孔２２２を通って、ピストン２２４の先端部２２１の上に導入される。そして、後述する吸水工程においては、検体液２４０のうちピストン２２４の先端部２２１の下に存在する検体液２４２に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収され、検体液２４０のうちピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１に含まれる水は高吸水性ポリマーによって吸収されない。
　すなわち、検体液注入工程は、シリンダー２１４にピストン２２４を挿入して、ピストン２２４の先端部２２１を位置Ａに固定することで、シリンダー２１４に注入された検体液２４０のうちピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１を後述する抽出液添加工程で添加される抽出液として保持する工程となる。

　その後、吸水工程において、検体液２４０のうちピストン２２４の先端部２２１の下に存在する検体液２４２（検体液２４０のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によって吸収されて、シリンダー２１４中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成する（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となる）（図４Ｃ）。

　次いで、抽出液添加工程において、ピストン２２４を引き上げて、ピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１をピストン２２４の先端部２２１の孔２２２を通してピストン２２４の先端部２２１の下に導入することで、検体液濃縮物２４６にピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１を添加する（図４Ｄ）。

　そして、取り出し工程において、シリンダー２１４に、ピストン２２４を挿入することで、ピストン２２４の先端部２２１の孔２２２を通して検体液２４０の濃縮液である検体液濃縮液２４８を取り出す（図４Ｅ）。

＜ピストン位置固定機構＞
　上述のとおり、上記態様Ｂにおいて、上記シリンダーと上記ピストンは、上記ピストンの先端部を、上述した高吸水性ポリマーの吸水膨張に伴い圧力に抗して、上述した位置Ａに固定する、ピストン位置固定機構を備える。
　上記ピストン位置固定機構は特に制限されないが、例えば、後述する実施例４（図１０）に示されるような、シリンダーが切り欠きを備え、ピストンが突起を備え、ピストンをシリンダーに挿入し、ピストンの突起をシリンダーの切り欠きに引っ掛けることで、ピストンの先端部を、高吸水性ポリマーの吸水膨張に伴う圧力に抗して、位置Ａに固定することができるものが挙げられる。

［２］濃縮デバイス
　次に、上述した本発明の濃縮方法で用いられる濃縮デバイス（以下、「本発明の濃縮デバイス」とも言う）について説明する。

　本発明の濃縮デバイスは、
　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーと、上記シリンダーに挿入可能なピストンとを備える、高分子を含む水溶液である検体液を濃縮するための濃縮デバイスであって、
　上記ピストンが上記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する濃縮デバイスである。

　最初に図面を用いて本発明の濃縮デバイスについて説明する。

　図５は、本発明の濃縮デバイスの一態様の模式的断面図である。
　図５に示されるように、濃縮デバイス２０１は、高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１１と、上記シリンダー２１１に挿入可能なピストン２２０とを備える。上記ピストン２２０は、上記高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備える。

［好適な態様］
　本発明の濃縮デバイスの具体的な態様としては、例えば、以下の２つの態様（好適な態様Ａ、好適な態様Ｂ）が挙げられる。

（１）好適な態様Ａ
　好適な態様Ａは、
　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーと、上記シリンダーに挿入可能なピストンとを備える、高分子を含む水溶液である検体液を濃縮するための濃縮デバイスであって、
　上記シリンダーが、底部に、上記シリンダーに注入された検体液の一部を抽出液として保持するための抽出液保持部を有し、上記抽出液保持部の容積が上記シリンダーに注入される検体液のうち上記抽出液保持部に保持される検体液以外の検体液の体積よりも小さく、
　上記高吸水性ポリマーが、上記抽出液保持部の上に上記抽出液保持部に接して上記シリンダーに収容され、
　上記ピストンが、上記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有し、
　上記高吸水性ポリマーが、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記抽出液保持部に保持された検体液以外の検体液に含まれる水を吸収し、上記シリンダー中に上記検体液の濃縮物である検体液濃縮物を生成し、
　上記抽出液保持部に保持された検体液が、上記検体液濃縮物に添加されることで、上記検体液の濃縮液である検体液濃縮液を生成し、
　上記ピストンが、上記シリンダーに挿入されることで、上記ピストンの孔から上記検体液濃縮液を取り出す、濃縮デバイスである。

　上記好適な態様Ａの具体的な態様としては、例えば、後述する態様Ａ１～Ａ２が挙げられる。

（２）好適な態様Ｂ（態様Ｂ）
　態様Ｂは、
　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーと、上記シリンダーに挿入可能なピストンとを備える、高分子を含む水溶液である検体液を濃縮するための濃縮デバイスであって、
　上記ピストンが、上記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備え、
　上記ピストンの先端部を上記シリンダーに注入された検体液の液面よりも低く上記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーよりも高い位置に固定することで、上記ピストンの先端部の上部に注入された検体液の一部を抽出液として保持するための抽出液保持部を有し、
　上記抽出液保持部の容積が上記シリンダーに注入される検体液のうち上記抽出液保持部に保持される検体液以外の検体液の体積よりも小さく、上記高吸水性ポリマーが上記抽出液保持部の下に上記ピストンを介して上記シリンダーに収容され、
　上記シリンダーと上記ピストンが、上記ピストンの先端部を、上記高吸水性ポリマーの吸水膨張に伴う圧力に抗して、上記位置に固定する、ピストン位置固定機構を備え、
　上記高吸水性ポリマーが、上記シリンダーに注入された検体液のうち上記抽出液保持部に保持された検体液以外の検体液に含まれる水を吸収し、上記シリンダー中に上記検体液の濃縮物である検体液濃縮物を生成し、
　上記ピストン位置固定機構を解除し上記ピストンを引き上げて、上記ピストンの先端部の上に存在する抽出液を上記ピストンの先端部の孔を通して上記ピストンの先端部の下に導入することで、上記検体液濃縮物に上記ピストンの上に存在する検体液を添加し、
　上記ピストンが、上記シリンダーに再び引き下げることで、上記ピストンの先端部の孔から上記検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す、濃縮デバイスである。

〔態様Ａ１〕
　態様Ａ１は、上述した好適な態様Ａにおいて、
　上記抽出液保持部が、上記シリンダーの底部と、上記シリンダーの内周面に上記シリンダーの長手方向に移動可能に設置された隔壁とによって囲まれた部分であり、上記隔壁が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい孔を有し、
　上記隔壁が、上記シリンダーの底面まで移動されることで、上記抽出液保持部に保持された検体液を上記隔壁の孔を通して上記隔壁の上に導入し、
　上記隔壁の上に導入された検体液が、上記検体液濃縮物に添加される、態様である。

　図面を用いて態様Ａ１について説明する。
　図６は、態様Ａ１の一態様の模式的断面図である。
　図６に示されるように、濃縮デバイス２０２は、高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１２と、上記シリンダー２１２に挿入可能なピストン２２０とを備える。上記ピストン２２０は、上記高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備える。
　ここで、シリンダー２１２は、シリンダー２１２の内周面にシリンダー２１２の長手方向に移動可能に設置された隔壁２６０を有する。また、上記隔壁２６０は、高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい孔２６２を有する。また、上記高吸水性ポリマー２３０は、隔壁２６０の上に隔壁２６０に接してシリンダー２１２に収容されている。
　本発明の濃縮方法の態様Ａ１で述べたとおり、シリンダー２１２の底部２１７と隔壁２６０とによって囲まれた部分は抽出液保持部となる。

〔態様Ａ２〕
　態様Ａ２は、上述した好適な態様Ａにおいて、
　上記抽出液保持部が、上記シリンダーの底部に収容された多孔質の樹脂が有する孔によって形成された部分であり、上記樹脂が有する孔が上記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さく、
　上記樹脂が、圧潰されることで、上記抽出液保持部に保持された検体液を上記樹脂の孔を通して上記樹脂の上に導入し、
　上記樹脂の上に導入された検体液が、上記検体液濃縮物に添加される、態様である。

　図面を用いて態様Ａ２について説明する。
　図７は、態様Ａ２の一態様の模式的断面図である。
　図７に示されるように、濃縮デバイス２０３は、高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１３と、上記シリンダー２１３に挿入可能なピストン２２０とを備える。上記ピストン２２０は、上記高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備える。
　ここで、上記シリンダー２１３の底部２１７には多孔質の合成樹脂２７０が収容されている。また、上記合成樹脂２７０が有する孔（図示せず）は高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい。また、上記高吸水性ポリマー２３０は、合成樹脂２７０の上に合成樹脂２７０に接してシリンダー２１３に収容されている。
　本発明の濃縮方法の態様Ａ２で述べたとおり、合成樹脂２７０が有する孔は抽出液保持部となる。

〔態様Ｂ〕
　図面を用いて態様Ｂについて説明する。
　図８は、態様Ｂの一態様の模式的断面図である。
　図８に示されるように、濃縮デバイス２０４は、高吸水性ポリマー２３０が収容されたシリンダー２１４と、上記シリンダー２１４に挿入可能なピストン２２４とを備える。上記ピストン２２４は、上記高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２を有する先端部２２１を備える。シリンダー２１４とピストン２２４は、ピストン２２４の先端部２２１を、高吸水性ポリマー２３０の吸水膨張に伴い圧力に抗して、位置Ａに固定する、ピストン位置固定機構（図示せず）を備える。

［回収口を有する蓋］
　本発明の濃縮デバイスは、本発明の効果等がより優れる理由から、更に、上述した検体液濃縮液を回収するための回収口を有する蓋を備えるのが好ましい。
　上記蓋の具体的な態様としては、例えば、後述する実施例１で使用されるような蓋（図９）が挙げられる。

［３］本発明の検体液の検査方法
　本発明の検体液の検査方法（以下、「本発明の検査方法」とも言う）は、
　高分子を含む水溶液である検体液中の高分子を検出する、検体液の検査方法であって、
　上述した本発明の検体液の濃縮方法（上述した本発明の濃縮方法）を用いて、上記検体液濃縮液を得る、濃縮工程と、
　得られた上記検体液濃縮液中の高分子を検出する、検出工程とをこの順に備える、検査方法である。

　本発明の検査方法では、上述した本発明の濃縮方法で得られた検体液濃縮液を用いて高分子の検出を行うため、高い検出感度が得られる。

［濃縮工程］
　本発明の濃縮方法を用いて検体液濃縮液を得る方法については上述のとおりである。

［検出工程］
　検出工程は、検体液濃縮液中の高分子を検出する工程である。
　検出工程は、本発明の効果等がより優れる理由から、抗原抗体反応を用いる方法であることが好ましく、そのような方法としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、固相酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、放射線免疫測定法（ＲＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、ウエスタンブロット法、イムノクロマトグラフィー等が挙げられる。なかでも、本発明の効果等がより優れる理由から、イムノクロマトグラフィーが好ましい。

［好適な態様］
　本発明の検査方法は、本発明の効果等がより優れる理由から、
　上記検体液が、抗原（高分子）を含み得る水溶液であり、
　上記濃縮工程が、上述した本発明の濃縮方法を用いて、上記抗原を含み得る水溶液を濃縮して、抗原濃縮液（検体液濃縮液）を得る工程であり、
　上記検出工程が、抗原抗体反応を用いたイムノクロマトグラフィーによって上記抗原濃縮液中の抗原を検出する工程である、検査方法であるのが好ましい。

　ここで、上記検出工程は、本発明の効果等がより優れる理由から、
　上記抗原濃縮液中の抗原と、上記抗原と結合し得る第１の結合物質で修飾された金粒子である修飾金粒子との複合体である金粒子複合体を形成させた状態で、上記抗原と結合し得る第２の結合物質が固定化された反応部位を有する不溶性担体に展開する、展開工程と、
　上記不溶性担体の反応部位において、上記金粒子複合体を捕捉する、捕捉工程とを備えるのが好ましい。
　上記検出工程は、本発明の効果等がより優れる理由から、
　さらに、上記捕捉工程で捕捉された金粒子複合体を銀増幅する、銀増幅工程を備えるのが好ましい。
　ここで、本発明の効果等がより優れる理由から、上記第１の結合物質及び上記第２の結合物質の少なくとも一方はモノクローナル抗体であることが好ましく、上記第１の結合物質及び上記第２の結合物質の両方がモノクローナル抗体であることがより好ましい。

　なお、検体液中には、塩等の夾雑物が含まれる場合がある。例えば、検体液が尿である場合、尿素等の低分子成分の夾雑物が含まれる。本発明者らの検討から、生体液中に含まれる高分子と一緒にこれらの夾雑物が濃縮された場合、抗原抗体反応が阻害され、検出感度が低下してしまう場合があることが知見されている。すなわち、濃縮による検出感度の向上効果が十分に得られない場合があることが分かっている。
　そのため、上述した濃縮工程で用いられる上述した本発明の濃縮デバイスにおいて、高吸水性ポリマーの膨潤率は夾雑物等を十分に吸収可能とする上述した好適な範囲であることが好ましい。上記範囲であると、これらの夾雑物は水と一緒に高吸水性ポリマーに取り込まれ、上述したような検出感度の低下は生じ難く、結果として、生体液中に含まれる高分子に対して極めて高い検出感度が達成されるものと考えられる。

　以下、上記好適な態様（以下、「本発明の方法」とも言う）が備える各工程について説明する。

〔展開工程〕
　展開工程は、上述した濃縮工程で得られた抗原濃縮液中の抗原と、上記抗原と結合し得る第１の結合物質で修飾された金粒子である修飾金粒子との複合体である金粒子複合体を形成させた状態で、上記抗原と結合し得る第２の結合物質が固定化された反応部位を有する不溶性担体に展開する工程である。

＜金粒子複合体＞
　上述のとおり、展開工程では、まず、上述した濃縮工程で得られた抗原濃縮液中の抗原と、上記抗原と結合し得る第１の結合物質で修飾された金粒子である修飾金粒子との複合体である金粒子複合体を形成させる。なお、検体液の濃縮と同時に検体液中の抗原と標識抗体との複合体を形成している場合には、抗原濃縮液をそのまま不溶性担体に展開するだけでもよい。

（修飾金粒子）
　修飾金粒子は、上記抗原と結合し得る第１の結合物質で修飾された金粒子である。

（１）金粒子
　金粒子は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、金コロイド粒子であることが好ましい。
　金粒子は、本発明の方法が後述する銀増幅工程を備える場合、銀増幅工程において銀イオンを還元する触媒として働く。

　上記金粒子の粒子径は、本発明の効果等がより優れる理由から、５００ｎｍ以下であることが好ましく、３００ｎｍ以下であることがより好ましく、２００ｎｍ以下であることがさらに好ましく、１００ｎｍ以下であることが特に好ましい。
　上記金粒子の粒子径の下限は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、１ｎｍ以上であることが好ましく、２ｎｍ以上であることがより好ましく、５ｎｍ以上であることがさらに好ましい。

　なお、粒子径は、市販の粒度分布計等で計測することができる。粒度分布の測定法としては、光学顕微鏡法、共焦点レーザー顕微鏡法、電子顕微鏡法、原子間力顕微鏡法、静的光散乱法、レーザー回折法、動的光散乱法、遠心沈降法、電気パルス計測法、クロマトグラフィー法、超音波減衰法等が知られており、それぞれの原理に対応した装置が市販されている。粒子径の測定方法としては、粒子径範囲および測定の容易さから、動的光散乱法を好ましく用いることができる。動的光散乱を用いた市販の測定装置としては、ナノトラックＵＰＡ（日機装（株））、動的光散乱式粒径分布測定装置ＬＢ－５５０（（株）堀場製作所）、濃厚系粒径アナライザーＦＰＡＲ－１０００（大塚電子（株））等が挙げられ、本発明においては、２５℃の測定温度で測定したメジアン径（ｄ＝５０）の値として求める。

（２）第１の結合物質
　第１の結合物質は上記抗原と結合し得るものであれば特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、タンパク質であることが好ましく、抗体（例えば、ポリクローナル抗体、あるいはモノクローナル抗体）であることがより好ましく、モノクローナル抗体であることがより高い検出感度を実現する観点でさらに好ましい。
　上記抗体は特に制限されないが、例えば、抗原によって免疫された動物の血清から調製する抗血清や、抗血清から精製された免疫グロブリン画分を用いることが可能であり、また、抗原によって免疫された動物の脾臓細胞を用いる細胞融合によって得られるモノクローナル抗体、あるいは、それらの断片［例えば、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、又はＦｖ］を用いることができる。これらの抗体の調製は、常法により行うことができる。

　抗原がインフルエンザウイルスである場合の、第１の結合物質の一例としては、市販の抗体が使用でき、例えば、抗インフルエンザＡ型モノクローナル抗体（Ａｎｔｉ－Ｉｎｆｌｕｅｎｚａ　Ａ　ＳＰＴＮ－５　７３０７、Ｍｅｄｉｘ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ社）や、抗インフルエンザＡ型モノクローナル抗体（Ｂｉｏｓ　Ｐａｃｉｆｉｃ社製、クローンナンバー：Ａ６００１００４４Ｐ）が挙げることができる。
　また、抗原がＬＡＭである場合の、第１の結合物質の一例としては、国際公開２０１７／１３９１５３号に記載のＡ１９４－０１抗体が挙げられる。Ａ１９４－０１抗体に関する国際公開２０１７／１３９１５３号に記載の内容はすべて本明細書の開示の一部として本明細書中に援用される。
　抗原がＬＡＭである場合の、第１の結合物質の別の一例としては、国際公開２０１３／１２９６３４号の段落番号［００８０］においてＭｏＡｂ１として記載される配列を有する抗体を挙げることができる。ＭｏＡｂ１抗体に関する国際公開２０１３／１２９６３４号に記載の内容はすべて本明細書の開示の一部として本明細書中に援用される。

（３）修飾金粒子の製造方法
　上記修飾金粒子を製造する方法は特に制限されず、公知の方法を用いることができる。例えば、金とＳＨ基とが化学結合することを利用し、抗体にＳＨ基を導入後、金粒子と接近するときにＳＨ結合が開裂してＡｕ表面上に生成するＡｕ－Ｓ結合で固定化させる等の化学的な結合方法が挙げられる。

＜不溶性担体＞
　上記不溶性担体（多孔性担体）は、上記抗原と結合し得る第２の結合物質が固定化された反応部位（テストライン）を有する不溶性担体である。不溶性担体は、抗原の種類に合わせて複数のテストラインを有していてもよい（例えば、インフルエンザＡ型ウイルス用のテストラインとインフルエンザＢ型用のテストライン）。また、不溶性担体は、上記金粒子複合体の展開を確認するために、テストラインより下流側にコントロールラインを有していてもよい。また、後述する銀増幅工程において還元剤液を用いる場合には、還元剤液を検出するために、テストラインより下流側に発色試薬固定化ラインを有していてもよい。
　上記不溶性担体の具体的な態様としては、例えば、図１１に示されるような、上流側から、金コロイド保持パッド３０１、テストライン３０２、コントロールライン３０３、発色試薬固定化ライン３０４を有するニトロセルロースメンブレン３００が挙げられる。ここで、金コロイド保持パッド３０１は第１の結合物質で修飾された金粒子（修飾金粒子）を保持するパッドであり、テストライン３０２は第２の結合物質が固定化されたラインであり、コントロールライン３０３は展開を確認するためのラインであり、発色試薬固定化ライン３０４は後述する還元剤液を検出するためのラインである。ここで上流側、下流側とは、金粒子複合体が展開する際、上流側から下流側に向けて展開することを意図した記載を意味する。
　上記不溶性担体（又はこれを有するイムノクロマトグラフキット）のより具体的な態様としては、例えば、特許第５７２８４５３号公報に記載の不溶性担体及びイムノクロマトグラフキットが挙げられ、不溶性担体及びイムノクロマトグラフキットに関する特許第５７２８４５３号公報に記載の内容はすべて本明細書の開示の一部として本明細書中に援用される。

（不溶性担体）
　不溶性担体は、多孔性担体が好ましい。特に、本発明の効果等がより優れる理由から、ニトロセルロース膜（ニトロセルロースメンブレン）、セルロース膜、アセチルセルロース膜、ポリスルホン膜、ポリエーテルスルホン膜、ナイロン膜、ガラス繊維、不織布、布、または糸等が好ましく、ニトロセルロース膜がより好ましい。

（第２の結合物質）
　第２の結合物質は上記抗原と結合し得るものであれば特に制限されない。
　第２の結合物質の具体例及び好適な態様は、例えば、上述した第１の結合物質に記載した具体例及び好適な態様と同じものが挙げられる。第２の結合物質は、上述した第１の結合物質と同じであっても異なってもよいが、本発明の効果等がより優れる理由から、異なる物質である態様が好ましい。
　また、第１の結合物質及び第２の結合物質が抗体である場合、第１の結合物質である抗体と第２の結合物質である抗体は、本発明の効果等がより優れる理由から、異なる態様が好ましい。
　また、第１の結合物質及び第２の結合物質が抗体である場合、第１の結合物質のエピトープ（第１の結合物質が認識する抗原の一部）と第２の結合物質のエピトープ（第２の結合物質が認識する抗原の一部）は、本発明の効果等がより優れる理由から、異なる態様が好ましい。抗体のエピトープが異なることは、例えば、ＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－Ｌｉｎｋｅｄ　Ｉｍｍｕｎｏ　Ｓｏｒｂｅｎｔ　Ａｓｓａｙ）によって確認することができる。

＜展開＞
　金粒子複合体を形成させた状態でテストラインを有する不溶性担体に展開する方法は特に制限されないが、例えば、上述した図１１に示されるようなニトロセルロースメンブレン３００（又はこれを有するイムノクロマトグラフキット）を準備して、上述した濃縮工程で得られた抗原濃縮液を金コロイド保持パッドに滴下し、図１１に示されるように上流側から下流側に毛細管現象を利用して移動させる方法等が挙げられる。

〔捕捉工程〕
　捕捉工程は、上記不溶性担体の反応部位において、上記金粒子複合体を捕捉する工程である。
　上述のとおり、不溶性担体の反応部位には抗原と結合し得る第２の結合物質が固定化されているため、上記展開工程で不溶性担体に展開された金粒子複合体（抗原と修飾金粒子との複合体）は、不溶性担体の反応部位（テストライン）で捕捉される。
　捕捉された金粒子複合体は金粒子の表面プラズモン等により着色するため、視認できる。また、画像解析装置等を用いて、捕捉された複合体の濃度を見積もることもできる。このようにして、試料中の抗原を検出することができる。
　なお、試料が抗原を含まない場合には上記金粒子複合体が形成されないため、不溶性担体の反応部位で捕捉されず、着色しない。

〔銀増幅工程〕
　銀増幅工程は、上記捕捉工程で捕捉された金粒子複合体を銀増幅する工程である。
　銀増幅工程は、上記捕捉工程後の不溶性担体に銀イオンを付与することで、不溶性担体の反応部位で捕捉された金粒子複合体に大きな銀粒子を形成する工程である。より詳細には、上記金粒子複合体の金粒子を触媒として銀イオンが還元され、銀粒子（例えば、直径１０μｍ以上）が形成される工程である。
　これにより、捕捉された金粒子複合体の検出感度が著しく向上する。
　なお、展開工程とともに銀増幅工程を行ってもよく、銀増幅工程が展開工程を兼ねていてもよい。

＜好適な態様＞
　上記捕捉工程後の不溶性担体に銀イオンを付与する方法は特に制限されないが、本発明の効果等がより優れる理由から、下記還元剤液及び下記銀増幅液を使用する方法が好ましい。
　また、還元剤液及び銀増幅液に加えて、特異的な結合反応以外で不溶性担体に残存している複合体を洗浄するために洗浄液を使用してもよい。上記還元液は洗浄液を兼ねていてもよい。

（還元剤液）
　上記還元剤液は、銀イオンを還元し得る還元剤を含有する。銀イオンを還元し得る還元剤は、銀イオンを銀に還元することができれば、無機・有機のいかなる材料、またはその混合物でも用いることができる。無機還元剤としては、Ｆｅ^２＋、Ｖ^２＋、Ｔｉ^３＋、などの金属イオンで原子価の変化し得る還元性金属塩、還元性金属錯塩を好ましく挙げることができる。無機還元剤を用いる際には、酸化されたイオンを錯形成するか還元して、除去するか無害化する必要がある。例えば、Ｆｅ^２＋を還元剤として用いる系では、クエン酸やエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を用いて酸化物であるＦｅ^３＋の錯体を形成し、無害化することができる。本発明ではこのような無機還元剤を用いることが好ましく、本発明のより好ましい態様としては、Ｆｅ^２＋の金属塩を還元剤として用いることが好ましい。

　なお、湿式のハロゲン化銀写真感光材料に用いられる現像主薬（例えばメチル没食子酸塩、ヒドロキノン、置換ヒドロキノン、３－ピラゾリドン類、ｐ－アミノフェノール類、ｐ－フェニレンジアミン類、ヒンダードフェノール類、アミドキシム類、アジン類、カテコール類、ピロガロール類、アスコルビン酸（またはその誘導体）、およびロイコ色素類）、および本分野での技術に熟練しているものにとって明らかなその他の材料、例えば米国特許第６，０２０，１１７号に記載されている材料も還元剤として用いることができる。

　還元剤としては、アスコルビン酸還元剤も好ましい。有用なアスコルビン酸還元剤は、アスコルビン酸とその類縁体、異性体とその誘導体を含み、例えば、Ｄ－またはＬ－アスコルビン酸とその糖誘導体（例えばγ－ラクトアスコルビン酸、グルコアスコルビン酸、フコアスコルビン酸、グルコヘプトアスコルビン酸、マルトアスコルビン酸）、アスコルビン酸のナトリウム塩、アスコルビン酸のカリウム塩、イソアスコルビン酸（又はＬ－エリスロアスコルビン酸）、その塩（例えばアルカリ金属塩、アンモニウム塩又は当技術分野において知られている塩）、エンジオールタイプのアスコルビン酸、エナミノールタイプのアスコルビン酸、チオエノ－ルタイプのアスコルビン酸等を好ましく挙げることができ、特にはＤ、ＬまたはＤ，Ｌ－アスコルビン酸（そして、そのアルカリ金属塩）若しくはイソアスコルビン酸（またはそのアルカリ金属塩）が好ましく、ナトリウム塩が好ましい塩である。必要に応じてこれらの還元剤の混合物を用いることができる。

　還元剤液は、本発明の効果等がより優れる理由から、展開工程における展開方向と還元剤液の展開方向との間の角度が０度～１５０度になるように流すのが好ましく、展開工程における展開方向と還元剤液の展開方向との間の角度が０度～１３５度になるように流すのがより好ましい。
　なお、展開工程における展開方向と還元剤液の展開方向との間の角度を調節する方法としては、例えば、特開２００９－１５０８６９号公報の実施例に記載の方法等が挙げられる。

（銀増幅液）
　上記銀増幅液は、銀イオンを含む化合物を含有する液である。銀イオンを含む化合物としては、例えば、有機銀塩、無機銀塩、もしくは銀錯体を用いることができる。好ましくは、水などの溶媒に対して溶解度の高い銀イオン含有化合物である、硝酸銀、酢酸銀、乳酸銀、酪酸銀、チオ硫酸銀などが挙げられる。特に好ましくは硝酸銀である。銀錯体としては、水酸基やスルホン基など水溶性基を有する配位子に配位された銀錯体が好ましく、ヒドロキシチオエーテル銀等が挙げられる。

　有機銀塩、無機銀塩、もしくは銀錯体は、銀として銀増幅液に０．００１ｍｏｌ／Ｌ～５ｍｏｌ／Ｌ、好ましくは０．００５ｍｏｌ／Ｌ～３ｍｏｌ／Ｌ、更には０．０１ｍｏｌ／Ｌ～１ｍｏｌ／Ｌの濃度で含有されることが好ましい。

　銀増幅液の助剤としては、緩衝剤、防腐剤、例えば酸化防止剤または有機安定剤、速度調節剤等が挙げられる。緩衝剤としては、例えば、酢酸、クエン酸、水酸化ナトリウムまたはこれらの塩のうちの一つ、又はトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンを用いた緩衝剤、その他一般的化学実験に用いられる緩衝剤を用いることができる。これら緩衝剤を適宜用いて、その増幅溶液に最適なｐＨに調整することができる。また、カブリ防止剤としてアルキルアミンを助剤として用いることができ、特に好ましくはドデシルアミンである。またこれら助剤の溶解性向上のため、界面活性剤を用いることができ、特に好ましくはＣ_９Ｈ_１９－Ｃ_６Ｈ_４－Ｏ－（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）_５０Ｈである。

　銀増幅液は、本発明の効果等がより優れる理由から、上述した展開工程と逆方向から流すのが好ましく、展開工程における展開方向と還元剤液の展開方向との間の角度が４５度～１８０度になるように流すのがより好ましい。
　なお、展開工程における展開方向と銀増幅液の展開方向との間の角度を調節する方法としては、例えば、特開２００９－１５０８６９号公報の実施例に記載の方法等が挙げられる。

［４］検査キット
　本発明の検査キットは、
　高分子を含む水溶液である検体液中の高分子を検出するための検査キットであって、
　上述した本発明の濃縮デバイスと、
　上述した本発明の濃縮方法を用いて得られた検体液濃縮液中の高分子を検出する検出デバイスと、
　を備える、検査キットである。

［濃縮デバイス］
　本発明の濃縮デバイスについては上述のとおりである。

［検出デバイス］
　上記検出デバイスは、本発明の効果等がより優れる理由から、イムノクロマトグラフであることが好ましい。

　上記検出デバイスは、本発明の効果等がより優れる理由から、
　生体液中に含まれる高分子を検出するための検査領域を有する不溶性担体を含む検査用ストリップと、上記検査領域における検査信号を増幅するための第１の増幅液及び第２の増幅液がそれぞれ封入された第１のポット及び第２のポットと、上記検査用ストリップ、上記第１のポット及び上記第２のポットを内包するハウジングケースとを備える、検出デバイスであるのが好ましい。

〔好適な態様〕
　上記検出デバイスは、本発明の効果等がより優れる理由から、
　試料液（検体液）中の被検物質（生体液中に含まれる高分子）を検出するイムノクロマトグラフキットであって、
　試料液を展開させる、被検物質の検査領域を有する不溶性担体を含む検査用ストリップと、
　検査領域における検出信号を増幅するための、第１の増幅液および第２の増幅液がそれぞれ封入された、シート部材を備えた一面を有する第１のポットおよび第２のポットと、
　検査用ストリップ、第１のポットおよび第２のポットを内包するハウジングケースとを備え、
　ハウジングケースが、検査用ストリップが配置される収容部を備えた下部ケースと、下部ケースと周縁で接合された上部ケースと、上部ケースと下部ケースとの間に配置された中間部材とを備えてなり、
　中間部材が、第１のポットのシート部材を破断する破断部を、第１のポットのシート部材に面して備え、
　上部ケースが、第１のポットに対向する部分に、外部から押圧力が加えられることにより、第１のポット側に変形して、第１のポットのシート部材を中間部材の破断部により破断する第１の凸状変形部と、第２のポットに対向する部分に、外部から押圧力を加えることにより、第２のポット側に変形して第２のポットのシート部材を破断する第２の凸状変形部とを備えてなるイムノクロマトグラフキット（以下、「本発明のイムノクロマトグラフキット」又は単に「イムノクロマトグラフキット」とも言う）であることが好ましい。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、第１の凸状変形部が、押圧力が加えられることにより、第１のポットを、シート部材が中間部材の破断部により破断される位置まで移動させるものであることが好ましい。
　このとき、上部ケースが、第１の凸状変形部に押圧力を加えた際に第１のポットに当接して移動させる、第１のポット側に向かって立設された２つの突起部を備えることが好ましい。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、第１の凸状変形部が中央対称な山型形状を有していることが好ましい。
　また、このとき、２つの突起部が、山型形状の頂上に対して対称に配置されていることが好ましい。
　また、２つの突起部が、山型形状の頂上を挟む斜面に互いに独立して形成されていることも好ましい。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、第１の凸状変形部が上述の２つの突起部を備えているとき、この２つの突起部が、第１のポットの当接面の中央に対して対称に配置されていることが好ましい。
　また、２つの突起部が、第１のポットの当接面の中央から端部までの距離の半分よりも端部側に配置されていることが好ましい。

　なお、本明細書において凸状変形部は、イムノクロマトグラフキットの外部から見た場合に凸状であることを意味する、また、山型形状も同様に、外部から見て山型であることを意味する。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、第１の凸状変形部が上述の２つの突起部を備えているとき、この２つの突起部のそれぞれの先端が第１のポットに当接し、徐々に端部側に変位しつつ第１のポットを移動させるように構成することができる。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、第１の凸状変形部を構成する材質の曲げ弾性率が５０ＭＰａ～３５０ＭＰａであることが好ましい。
　また、上部ケースを構成する材質の曲げ弾性率が５０ＭＰａ～３５０ＭＰａであり、下部ケースを構成する材質の曲げ弾性率が５００ＭＰａ～９００ＭＰａであることが好ましい。

　本発明のイムノクロマトグラフキットにおいては、上部ケースが、射出成形により第１の凸状変形部および第２の凸状変形部を一体的に形成されてなるものであることが好ましい。

　本発明のイムノクロマトグラフキットは、上部ケースが、第１のポットに対向する部分に、外部から押圧力が加えられることにより、第１のポット側に変形して、第１のポットのシート部材を中間部材の破断部により破断する第１の凸状変形部と、第２のポットに対向する部分に、外部から押圧力を加えることにより、第２のポット側に変形して第２のポットのシート部材を破断する第２の凸状変形部とを備え、２つの凸状変形部にヒトが指等で押圧力を加えることで、変形させて、ポットのシート部材を破断させることができ、増幅液を検査用ストリップに供給することができるため、電源を要する専用の分析装置がなくても、増幅反応を正常に行うことができる。従って本発明のイムノクロマトグラフキットは専用の分析装置を備えていない、あるいは分析装置が使用できない非常時、災害時等において特に有用である。

　以下、本発明のイムノクロマトグラフキットの実施形態について図面を用いて説明するが、本発明のイムノクロマトグラフキットはこれに限られるものではない。なお、視認しやすくするため、図面中の各構成要素の縮尺等は実際のものとは適宜変化させてある。

　図１２は、本発明の実施形態にかかるイムノクロマトグラフキット１００の概略斜視図であり、図１３は、図１２のイムノクロマトグラフキット１００の分解概略斜視図である。
　図１２および図１３に示すように、本実施形態のイムノクロマトグラフキット１００は、試料液を展開させる、被検物質の検査領域を有する不溶性担体２（多孔性担体２）を含む検査用ストリップ１と、検査領域における検出信号を増幅するための、第１の増幅液４１および第２の増幅液４６がそれぞれ封入された、シート部材を備えた一面を有する第１のポット４０および第２のポット４５とがハウジングケース９に内包されてなる。ハウジングケース９は、検査用ストリップ１が配置される収容部２１を備えた下部ケース２０と、下部ケース２０と周縁で接合された上部ケース１０と、上部ケース１０と下部ケース２０との間に配置された中間部材３０とを備えてなる。なお、イムノクロマトグラフキット１００を説明するに当たっては、上部ケース１０側を上、下部ケース２０側を下と定義する。

　中間部材３０は、第１のポット４０を受容し、第１の増幅液４１を不溶性担体２上に滴下させるための増幅液充填孔を底面に備えたポット収容部３２を有している。また、ポット収容部３２内の第１のポット４０のシート部材４３に面する位置にシート部材４３を破断する突起状の破断部３４が設けられている。本例においては、ポット収容部３２の上方に第１のポット４０が、そのシート部材４３を有する面が下面となるように配置されており、そのシート部材４３に対向するポット収容部３２の底面に破断部３４が設けられている（図１４参照）。
　また中間部材３０のポット収容部３２の底面の下流側に延在する流路形成部３５を備えている。流路形成部３５は、検査領域Ｌ_１、確認領域Ｌ_２および増幅指標領域Ｌ_３の上方位置に一致して配置され、これらの領域Ｌ_１～Ｌ_３を視認可能とするために透明な材料で形成されている。

　上部ケース１０は、第１のポット４０に対向する部分に、外部から押圧力が加えられることにより、第１のポット４０側に変形してその第１のポット４０のシート部材４３を中間部材３０の破断部３４により破断させる第１の凸状変形部１２を備えている。また、上部ケース１０は、第２のポット４５に対向する部分に、外部から押圧力を加えることにより、第２のポット４５側に変形して第２のポット４５のシート部材４８を破断する第２の凸状変形部１４を備えている。
　また、上部ケース１０には、試料液滴下用開孔１６が設けられており、この開孔１６から検査用ストリップ１の標識保持パッド３上に試料液が滴下される。開孔１６と標識保持パッド３との位置が一致するように、標識保持パッド３の位置を調整することで、標識保持パッド３上に確実に試料液を点着することが可能となる。また、上部ケース１０は、中間部材３０の流路形成部３５に対応する位置に３つの領域Ｌ_１～Ｌ_３を視認するための観察窓１８を備えている。

　下部ケース２０には、検査用ストリップ１が配置される収容部として、不溶性担体２が載置される不溶性担体収容部２１およびその下流側に吸収パッド６が載置される吸収パッド収容部２２が設けられている。また、不溶性担体収容部２１の上流側には第２のポット４５が収容される第２のポット収容部２４が設けられている。

　図１４は、検査用ストリップ１、中間部材３０および２つのポット４０、４５の位置関係を示す模式的断面図である。検査用ストリップ１は、図１４に示すように、試料液を展開させる不溶性担体２と、不溶性担体２上に固定された被検物質に結合可能な第１の物質で修飾された標識物質を含む標識保持パッド３と、不溶性担体２の一端に接触して配置された第２の増幅液４６を不溶性担体２に送液する送液用パッド４と、不溶性担体２の他端に接触して配置された吸収パッド６とを備えている。不溶性担体２はバック粘着シート７上に固定されて支持されている。そして、不溶性担体２は、標識保持パッド３と吸収パッド６との間に、被検物質に結合する第２の物質を含む検査領域Ｌ_１、第１の物質に結合可能な物質を含む確認領域Ｌ_２、第２の増幅液と反応する物質を含む増幅指標領域Ｌ_３を標識保持パッド３側から順に有する。

　なお、本明細書において検査領域Ｌ_１、確認領域Ｌ_２および増幅指標領域Ｌ_３が形成されてなる不溶性担体２をクロマトグラフ担体と称する場合がある。また、本明細書においては、図１４に記載のように送液用パッド４側を上流、吸収パッド６側を下流として定義する。

　中間部材３０は検査用ストリップ１の下流端側の上部に位置されており、第１のポット４０はシート部材４３を下にして、中間部材３０のポット収容部３２中に配置されている。第２のポット４５はシート部材４８を上にして、下部ケース２０の検査用ストリップ１の上流端の下方に収容されている。

　図１４に示されているように、中間部材３０の流路形成部３５の裏面３６と、検査用ストリップ１の不溶性担体２との間には、隙間（クリアランス）Ｄが形成される。この隙間Ｄは０．０１ｍｍ～１ｍｍの範囲にあることが好ましい。０．０１ｍｍ以上であれば増幅液等を充分浸潤させることができ、１ｍｍ以下であれば毛細管力が発揮され、第１の増幅液４１により不溶性担体２と中間部材３０の隙間を均一に満たすことが可能である。

　第１の増幅液４１が封入された第１のポット４０は、例えば樹脂材料から構成された一面に開口を有する容器４２に第１の増幅液４１が充填され、その容器４２の開口が破断可能なシート部材４３により覆われ封止されている。
　第２の増幅液４６が封入された第２のポット４５も同様に、例えば樹脂材料から構成された一面に開口を有する容器４７に第２の増幅液４６が充填され、その容器４７の開口が破断可能なシート部材４８により覆われ封止されている。
　第１のポット４０および第２のポット４５における破断可能なシート部材４３、４８としては、アルミ箔やアルミラミシートなどのラミネートフィルムが好適に使用される。ここで、破断とは、破れた後に再生しない状態をいう。

　上部ケースの２か所の凸状変形部１２、１４について詳細に説明する。
　図１５は、第１の凸状変形部１２を示す斜視図であり、図１６は図１５のＶ－Ｖ’線切断端面図であって、図１６のＡは第１の凸状変形部１２の変形前、図１６のＢは変形後を表し、第１のポット４０との位置関係を示す図である。

　第１の凸状変形部１２は、押圧力が加えられることにより、第１のポット４０を、シート部材４３が中間部材３０の破断部３４により破断される位置まで移動させるものである。具体的には、第１の凸状変形部１２は、指等により押下することによって、下方に押し込むことができるように構成されており、第１の凸状変形部１２を下に凸となるように（外部からみると凹部状に）変形させることによって、中間部材３０のポット収容部３２内の破断部３４により第１のポット４０のシート部材４３が破断される位置まで、第１のポット４０を破断部３４に向けて移動させる。これにより、破断部３４が第１のポット４０のシート部材４３を突き破り、第１の増幅液４１を外部に供給することが可能となる。中間部材３０のポット収容部３２の底面に設けられている増幅液充填孔から不溶性担体２の上部に第１の増幅液４１が滴下されて不溶性担体上の検査領域Ｌ_１、確認領域Ｌ_２および増幅指標領域Ｌ_３に第１の増幅液４１を供給することが可能となる。なお、この際、増幅液充填孔から不溶性担体２の上部に滴下された第１の増幅液４１は、中間部材３０と不溶性担体２との隙間に充填されていき、隙間を通って検査領域Ｌ_１、確認領域Ｌ_２および増幅指標領域Ｌ_３の上方に供給されて、徐々に不溶性担体２に浸透する。

　図１６に示すように、第１の凸状変形部１２は、第１のポット４０に対向する位置に第１のポット４０側に向かって立設された２つの突起部１２ｂを備えている。第１の凸状変形部１２に押圧力が加えられて変形する際に、この２つの突起部１２ｂが第１のポット４０に当接して第１のポット４０を移動させるように構成されている。
　第１の凸状変形部１２は、中央対称な山型形状を有しており、２つの突起部１２ｂが、山型形状の頂上１２ａに対して対称に配置されており、頂上１２ａを挟む斜面１２ｃの下方（裏面）に互いに独立して形成されている。

　また、図１６のＡに示すように、第１の凸状変形部１２は、変形前において、２つの突起部１２ｂが第１のポット４０の当接面の中央に対して対称な位置となるように上部ケース１０に形成されている。そして、中間部材３０の破断部３４が図１６中に破線で示すように、第１のポット４０のシート部材４３の下方に位置している。第１の凸状変形部１２に押圧力が付与されて変形する際には、２つの突起部１２ｂが、２つの突起部１２ｂのそれぞれの先端が第１のポット４０に当接し、徐々に端部側に変位しつつ第１のポット４０を移動させる。そして、図１６のＢに示すように、凸状変形部１２の変形後には、２つの突起部１２ｂの間隔が拡がり、２つの突起部１２ｂの先端は、互いに第１のポット４０の当接面の中央から端部までの距離の半分よりも端部側に位置することとなる。本実施形態においては、２つの突起部１２ｂが独立して設けられて、その突起部１２ｂの間（頂上１２ａ裏面）に隙間を有しており、凸状変形部１２が柔軟な素材で形成されていることにより、２つの突起部１２ｂ間を大きく拡げつつ、第１のポット４０を押下させている。

　突起部１２ｂの形状や配置は上記形態に限らず、例えば、変形前において、２つの突起部１２ｂが、第１のポット４０の当接面の中央から端部までの距離の半分よりも端部側となる位置に設けられていてもよい。

　第１のポット４０を移動させる第１の凸状変形部１２としては、突起部１２ｂが２本あることにより、第１のポット４０を２か所で均等に押すことができるので、第１のポット４０を平行に移動させることができる。
　第１の凸状変形部１２は指等で押すことにより、容易に変形し、第１の凸状変形部１２は下に凸状（凹部状）になる。この押圧後には凹部状が戻らず、第１のポット４０を押し付けた状態を維持できる構成となっていることが好ましい。第１の凸状変形部１２は頂上１２ａを押圧するように構成されているが、山型形状の斜面を押さえることによっても、凸状変形部１２の弾性により同様に変形可能である。

　図１７は、第２の凸状変形部１４を示す斜視図であり、図１８は図１７のＶＩＩ－ＶＩＩ’線切断端面図であって、図１８のＡは第２の凸状変形部１４の変形前、図１８のＢは変形後を表し、第２のポット４５との位置関係を併せて示す図である。
　第２の凸状変形部１４は、押圧力が加えられることにより、第２のポット４５のシート部材４８を破断させるものである。図１８のＡに示すように、第２の凸状変形部１４は、第２のポット４５に対向する位置に第２のポット４５に向かって立設された１本の突起部１４ｂを備えている。また、第２のポット４５との間に検査用ストリップ１の送液用パッド４が配置されている。第２の凸状変形部１４に押圧力が加えられて第２のポット４５側に凸、すなわち、外部から見て凹部状に変形し、図１８のＢに示すように、突起部１４ｂが送液用パッド４の表面に当接して、第２のポット４５のシート部材４８を突き破り、送液用パッド４を第２のポット４５中に押し込む。この第２の凸状変形部１４は、図１８に示すように、上下流方向に沿った断面において、やや上流側に頂上１４ａを有する山型形状を有しており、変形時には、突起部１４ｂが下流側に向かって傾いてシート部材４８を突き破るように構成されている。

　この操作により、送液用パッド４が第２のポット４５中の増幅液４６に浸漬され、第２の増幅液４６が毛細管現象により送液用パッド４内を浸透して不溶性担体２に供給可能となる。
　第２の凸状変形部１４も、指等で押すことにより、容易に変形して凹部状となる。この押圧後には凹部状が戻らず、送液用パッド４を第２のポット４５中に押し込んだ状態を維持できる構成となっていることが好ましい。

　本発明は、電源につながった装置を使用せずに、第１および第２の凸状変形部を変形させて増幅液を供給し高感度な分析を実現するもので、一つの態様として、人が手で変形させる態様が想定される。従って、増幅液が誤って外部に漏れない設計とすることが好ましく、上部ケース１０に設けられている第１および第２の凸状変形部１２、１４は、上部ケース１０の他の部分と隙間なく一体的に形成されていることが好ましい。凸状変形部１２、１４は伸縮可能な材質で作製されていて上部ケース１０の他の部分と密閉された状態で接合されていることが好ましい。上部ケース１０の第１および第２の凸状変形部１２、１４とそれ以外の部分とを個別に作製した後、互いに接合したものであってもよいが、第１および第２の凸状変形部１２、１４を上部ケース１０の一部として、射出成形により、途中に接合箇所がない連続的な１つの部材として一体的に成形されていることが好ましい。

　第１および第２の凸状変形部１２、１４はヒトの指等で容易に変形させることができる程度の柔軟性を有するものであることが必要である。凸状変形部１２、１４を構成する材質の曲げ弾性率は、５０ＭＰａ以上３５０ＭＰａ以下が好ましく、７０ＭＰａ以上１５０ＭＰａ以下がより好ましい。

　また、上部ケース１０と下部ケース２０とを組み合わせる際に嵌め合うだけの場合には、隙間から液が漏れだすことがあるため、上部ケース１０と下部ケース２０の嵌合部についても、密閉状態で接着されていることが好ましい。
　上部ケース１０と下部ケース２０との接着方法としては、超音波溶着法を用いることが好ましい。一般的に超音波溶着は溶着する部材が同素材でなければ溶着しづらいことが知られており、上部ケース／下部ケースの組み合わせは、ポリエチレン／ポリエチレン、ポリプロピレン／ポリプロピレンあるいはＡＢＳ（アクリロニトリル－ブタジエン－スチレン共重合体）／ＡＢＳが良い。

　一方で、凸状変形部１２、１４を上部ケース１０に一体的に成形する場合には、上部ケース１０を構成する材質が柔軟性を有するものであることを要する。他方、下部ケース２０は検査用ストリップ１や第２のポット４５を固定するために剛直であることが好ましい。具体的には、上部ケース１０を構成する材質の曲げ弾性率は５０ＭＰａ以上３５０ＭＰａ以下であることが好ましく、７０ＭＰａ以上１５０ＭＰａ以下であることがより好ましい。下部ケース２０を構成する材質の曲げ弾性率は５００ＭＰａ以上９００ＭＰａが好ましく、６５０ＭＰａ以上７５０ＭＰａ以下が特に好ましい。

　なお、曲げ弾性率は、ＩＳＯ１７８規格の測定方法に従い、温度２０℃の環境において、以下のように式（１）より算出した値とする。
　曲げ弾性率を測定する材質について、幅ｂ（ｍｍ）、厚さｈ（ｍｍ）の板状の試験片を作成し、支点間距離をＬ（ｍｍ）とした２つの支点で試験片を支える。支点間の中心にＦ（Ｎ）の荷重をかけ、荷重をかけた方向へのたわみ量（ｍｍ）を測定する。横軸にたわみＳ（ｍｍ）、縦軸に荷重Ｆ（Ｎ）とした、たわみ－荷重曲線を作成する。この曲線の原点での接線を求め、その傾き（荷重の変化量ΔＦ（Ｎ）、たわみの変化量ΔＳ（ｍｍ）とした場合、（ΔＦ／ΔＳ））を算出し、以下の式を用いて曲げ弾性率Ｅ（ＭＰａ）が算出できる。
　　曲げ弾性率Ｅ＝（Ｌ^３／（４ｂｈ^３））×（ΔＦ／ΔＳ）　　　式（１）

　従って、上部ケース／下部ケースの組み合わせは、軟化剤入りポリプロピレン／ポリプロピレンの組み合わせがもっとも好ましい。ここで、軟化剤入りポリプロピレンに使用する軟化剤はオレフィン系エラストマーが好ましく、ポリプロピレンに対するオレフィン系エラストマーの濃度は２０質量％以上６０質量％以下が好ましく、４０質量％以上５５質量％以下が特に好ましい。具体的な軟化剤としては、住友化学（株）社製のタフセレン（登録商標）が挙げられる。

　なお、本発明のイムノクロマトグラフキットは、２つ以上の凸状変形部を有していればよく、検査ストリップに対して供給すべき溶液が３種以上ある場合には、それに応じて凸状変形部も３つ以上備えていてもよい。

　不溶性担体（多孔性担体）２としては、例えば、ニトロセルロースメンブレンなどを使用することができる。また、不溶性担体２が固定されるバック粘着シート７とは、不溶性担体２が貼り付けられる面が粘着面であるシート状基材である。

　標識保持パッド３は、不溶性担体２の長手方向中央部に固定されている。標識物質は、例えば、直径５０ｎｍの金コロイド（ＥＭ．ＧＣ５０、ＢＢＩ社製）を用いることが可能である。標識物質の表面は、被検物質と結合する物質で修飾することにより、被検物質との結合体を形成することが可能である。
　標識物質は上記に限るものではなく、通常のクロマトグラフ法に用いることができる金属硫化物、免疫凝集反応に用いられる着色粒子などを使用することができ、特には、金属コロイドが好ましい。金属コロイドとしては、金コロイド、銀コロイド、白金コロイド、鉄コロイド、水酸化アルミニウムコロイド、およびこれらの複合コロイドなどが挙げられ、特に、適当な粒径において、金コロイドは赤色、銀コロイドは黄色を示す点でこのましく、その中でも金コロイドが最も好ましい。
　滴下する試料液が、予め、標識物質の表面にある被検物質と結合する物質と、試料液中の被験物質と結合させる工程を得て調製されている場合には、標識保持パッド３は標識物質を含有しない態様であることが好ましい。この場合は、標識保持パッド３は、標識物質を含む試料液を滴下する位置を示すパッドとして機能する。

　なお、検査用ストリップ１は、上部ケース１０の試料液滴下用開孔１６と標識保持パッド３の位置が一致するように位置されている。

　検査領域Ｌ_１は、被検物質に結合する第２の物質を含み、被検物質と結合した標識物質が被検物質を介して補足される標識物質補足領域である。例えば、インフルエンザＡ型ウイルスあるいはそのバイオマーカーを被検物質として検出したい場合には、例えば、抗インフルエンザＡ型モノクローナル抗体（Ａｎｔｉ－Ｉｎｆｌｕｅｎｚａ　Ａ　ＳＰＴＮ－５　７３０７、Ｍｅｄｉｘ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ社製）が物理吸着によりライン状に固定化されている抗体固定化ラインにより検査領域Ｌ_１を構成する態様が好ましい。
　この検査領域Ｌ_１に被検物質と第１の物質を介して標識物質が結合した複合体が到達すると第２の物質と被検物質が特異的に結合し、被検物質と第１の物質を介して標識物質が補足されることとなる。一方、被検物質との複合体を構成していない標識物質は、検査領域Ｌ_１に補足されることなく通過する。

　確認領域Ｌ_２は、第１の物質に結合可能な物質を含み、標識保持パッド３から試料液と共に不溶性担体２中を展開され、検査領域Ｌ_１を通過した標識物質が第１の物質を介して補足され、試料液の展開の完了を確認するための領域である。例えば、インフルエンザＡ型ウイルスあるいはそのバイオマーカーを被検物質として検出したい場合には、例えば、抗マウスＩｇＧ抗体（抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）、ウサギＦ（ａｂ’）２、品番５６６－７０６２１、富士フイルム和光純薬（株）社製）が物理吸着によりライン状に固定化されている態様が好ましい。

　増幅指標領域Ｌ_３は、第２の増幅液４６と反応する物質を含み、第２の増幅液４６と反応して発色もしくは色が変化することにより、第２の増幅液４６がその領域まで展開されたことを示し、第１の増幅液４１の滴下のタイミングの指標となる領域である。例えば、第２の増幅液として、硝酸鉄水溶液とクエン酸（富士フイルム和光純薬（株）社製、０３８－０６９２５）の混合水溶液を使用する場合には、ブロモクレゾールグリーン（富士フイルム和光純薬（株）社製）がライン状に固定化された発色試薬固定化ラインにより増幅指標領域Ｌ_３を構成する態様が好ましい。このとき第２の増幅液４６が増幅指標領域Ｌ_３に到達すると、領域Ｌ_３は緑色からオレンジ色へと変化する。この変色は、検査領域Ｌ_１および確認領域Ｌ_２が第２の増幅液４６により十分に満たされたことの指標として捕えることができる。

　金属コロイドなどの金属系標識物質のシグナルを増幅させる方法としては、標識物質に銀イオンおよび銀イオンのための還元剤を接触させ、還元剤によって銀イオンを還元して銀粒子を生成させ、その銀粒子が標識物質を核として標識物質上に沈着することにより標識物質によるシグナルを増幅させる方法（以下において、銀増幅）を用いることが好ましい。
　銀増幅を実現させるために、第１の増幅液４１として銀イオンを含む溶液を、第２の増幅液４６として銀イオンのための還元剤を含む還元剤液を用いればよい。

（第１の増幅液）
　第１の増幅液４１として用いられる銀イオンを含む溶液としては、溶媒中に銀イオン含有化合物が溶解されているものが好ましい。銀イオン含有化合物としては有機銀塩、無機銀塩、もしくは銀錯体を用いることができる。好ましくは、無機銀塩もしくは銀錯体である。無機銀塩としては、水などの溶媒に対して溶解度の高い銀イオン含有化合物を使用することが可能であり、硝酸銀、酢酸銀、乳酸銀、酪酸銀、チオ硫酸銀などが挙げられる。特に好ましくは硝酸銀である。銀錯体としては、水酸基やスルホン基など水溶性基を有する配位子に配位された銀錯体が好ましく、ヒドロキシチオエーテル銀などが挙げられる。

（第２の増幅液）
　第２の増幅液４６として用いられる銀イオンを還元し得る還元剤を含有する還元剤液中に用いられる還元剤としては、銀イオンを銀に還元することができるものであれば、無機・有機のいかなる材料、またはその混合物でも用いることができる。無機還元剤としては、Ｆｅ^２＋、Ｖ^２＋あるいはＴｉ^３＋などの金属イオンで原子価の変化し得る還元性金属塩、還元性金属錯塩を好ましく挙げることができる。無機還元剤を用いる際には、酸化されたイオンを錯形成するか還元して、除去するか無害化する必要がある。例えば、Ｆｅ^２＋を還元剤として用いる系では、クエン酸やＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸）を用いて酸化物であるＦｅ^３＋の錯体を形成し、無害化することができる。本系ではこのような無機還元剤を用いることが好ましく、より好ましくはＦｅ^２＋の金属塩が好ましい。

　なお、湿式のハロゲン化銀写真感光材料に用いられる現像主薬（例えばメチル没食子酸塩、ヒドロキノン、置換ヒドロキノン、３－ピラゾリドン類、ｐ－アミノフェノール類、ｐ－フェニレンジアミン類、ヒンダードフェノール類、アミドキシム類、アジン類、カテコール類、ピロガロール類、アスコルビン酸（またはその誘導体）、およびロイコ色素類）、および本分野の当業者にとって明らかなその他の材料、例えば米国特許第６，０２０，１１７号に記載されている材料も用いることができる。

　還元剤としては、アスコルビン酸還元剤も好ましい。有用なアスコルビン酸還元剤は、アスコルビン酸と類似物、異性体とその誘導体を含み、例えば、Ｄ－またはＬ－アスコルビン酸とその糖誘導体（例えばγ－ラクトアスコルビン酸、グルコアスコルビン酸、フコアスコルビン酸、グルコヘプトアスコルビン酸、マルトアスコルビン酸）、アスコルビン酸のナトリウム塩、アスコルビン酸のカリウム塩、イソアスコルビン酸（またはＬ－エリスロアスコルビン酸）、その塩（例えばアルカリ金属塩、アンモニウム塩または当技術分野において知られている塩）、エンジオールタイプのアスコルビン酸、エナミノールタイプのアスコルビン酸、チオエノ－ルタイプのアスコルビン酸等を好ましく挙げることができ、特にはＤ、ＬまたはＤ，Ｌ－アスコルビン酸（そして、そのアルカリ金属塩）若しくはイソアスコルビン酸（またはそのアルカリ金属塩）が好ましく、ナトリウム塩が好ましい塩である。必要に応じてこれらの還元剤の混合物を用いることができる。

　なお、本実施形態において、第１の凸状変形部１２は、第１のポット４０を中間部材３０に設けられている破断部３４に向けて移動させるものとしたが、第１の凸状変形部１２は、その変形に伴い、第１のポット４０のシート部材４３を破断部３４により破断させることができる構成であればよい。

　第１のポット４０のシート部材４３が破断されて第１のポット４０から流出する第１の増幅液４１をポット収容部３２の底面の増幅液充填孔から不溶性担体２上に滴下させることができる構成であれば、第１のポット４０および第１のポット４０を収容するポット収容部３２の構成も本実施形態の構成に限らない。

　また、第１の凸状変形部の突起部は２つ以上あることが、第１のポット４０を傾けず平行に移動させることができ、好ましい。ただし、第１の凸状部材は上記実施形態の第２の凸状変形部と同様の形状の突起部が１つの形態であっても構わない。第２の凸状部変形部と同一形状の凸状変形部を第１のポット４０を移動させる第１の凸状変形部としても用いてもよい。

　図１９は、第２の凸状変形部と同一形状の凸状変形部１１４を、第１のポット４０を移動させるために使用する場合の形態を示す図１８と同様の切断端面図である。
　図１９のＡに示すように、変形前において、凸状変形部１１４の突起部１１４ｂの下方に第１のポット４０が位置するように配置される。また、第１のポット４０の下方には中間部材３０の破断部３４が位置している。凸状変形部１１４の頂上１１４ａを押下することにより突起部１１４ｂが第１のポット４０の上面に押しあたり、第１のポット４０を押し下げる。それにより第１のポット４０のシート部材４３を破断部３４が突き破り、第１のポット４０に封入されていた第１の増幅液４１が第１のポットから流出して検査用ストリップ１に供給される。
　このように、凸状変形部１１４に設けられている突起部が１つであってもポットを移動させることができる。

　なお、本発明のイムノクロマトグラフキットには、検体の抽出を補助する補助薬品などを含む検体抽出液を内包するポットや検体希釈液を内包するポット、キットの保存を助ける乾燥剤や脱酸素剤、取扱い説明書などの添付文書、および、綿棒などの検体採取器具などの検査に必要な器材一式もしくはその一部を含んでも良い。

　本発明のイムノクロマトグラフキットを用いれば、専用の分析装置などを用いることなく、このキット単体で精度よく検査を行うことができる。

＜イムノクロマトグラフ検査方法＞
　上記イムノクロマトグラフキット１００を用いたイムノクロマトグラフ検査方法について簡単に説明する。
　試料液滴下用開孔１６から試料液を標識保持パッド３上に滴下する。試料液中に被検物質が含まれている場合には、標識保持パッド３において、被検物質と第１の物質が結合することにより、第１の物質を介する被検物質と標識物質との複合体が形成され、この複合体が試料液と共に吸収パッド６の吸引力により毛細管現象で吸収パッド６側に向かって展開される。予め試料液中の被検物質と標識物質との複合体が形成されている場合には、標識保持パッド３には標識物質を含有しない態様が好ましく、予め形成された複合体が吸収パッド６側に向かって展開される。この試料液を滴下すると同時もしくはその後、第２の凸状変形部１４を押下し、送液用パッド４を変位させて第２のポット４５のシート部材４８を破断させ、送液用パッド４を第２の増幅液４６に浸して第２の増幅液４６を不溶性担体２に送液する。なお、第２の凸状変形部１４を押下するタイミングは試料液の滴下時から３０秒以内とすることが好ましく試料液の滴下の直後が特に好ましい。

　検査領域Ｌ_１に到達した複合体は、検査領域Ｌ_１の第２の物質と結合し捕捉される。また、被検物質と結合していない第１の物質は検査領域Ｌ_１を通過して確認領域Ｌ_２に到達し、確認領域Ｌ_２の第１の物質と結合する物質と結合し捕捉される。

　第２の増幅液４６は検査領域Ｌ_１、確認領域Ｌ_２を経て増幅指標領域Ｌ_３へ到達する。このとき、増幅指標領域Ｌ_３が変色することにより、第２の増幅液４６の増幅指標領域Ｌ_３への到達を視覚的に認識することができる。増幅指標領域Ｌ_３の変色を確認後、第１の凸状変形部１２を押下して第１の増幅液４１を不溶性担体２上に供給する。

　第１の増幅液４１を不溶性担体２に供給してから反応終了を待ち、観察窓１８から、検査領域Ｌ_１および確認領域Ｌ_２の発色を確認する。検査領域Ｌ_１の発色により被検物質の有無およびその濃度の高低を確認することが可能であり、確認領域Ｌ_２の発色により被検物質を測定する検査が成功したかどうかを確認することができる。検査領域Ｌ_１および確認領域Ｌ_２における発色は標識のシグナルを増幅して得られたものであり、高感度な検査を実現することができる。

　以下、実施例により、本発明についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。

［検体液の調製］
　健常人の尿検体（ＢｉｏｒｅｃｌａｍａｔｉｏｎＩＶＴ社）をプールした尿検体に、結核菌より抽出されたリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）（０２２４９－６１、ナカライテスク社）（抗原）を添加し、表１に記載のＬＡＭ濃度の検体液を調製した。

［抗リポアラビノマンナン（ＬＡＭ）モノクローナル抗体修飾金コロイド保持パッドの作製］
　金コロイド粒子（粒子径：５０ｎｍ）を含有する溶液（品番：ＥＭ．ＧＣ５０、ＢＢＩ社製）９ｍＬに５０ｍｍｏｌ／ＬのＫＨ_２ＰＯ_４バッファー（ｐＨ８．０）を１ｍＬ加えることでｐＨを調整した。ｐＨが調整された上記溶液に、２０μｇ／ｍＬの抗ＬＡＭモノクローナル抗体含有溶液１ｍＬを加えて１０分間攪拌した。その後、１０分間静置した後に、１質量％のポリエチレングリコール（ＰＥＧ（ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ　ｇｌｙｃｏｌ）；重量平均分子量（Ｍｗ：２００００、品番：１６８－１１２８５、富士フイルム和光純薬（株）社製）含有水溶液を５５０μＬ加えて１０分間攪拌し、続いて１０質量％牛血清アルブミン（ＢＳＡ（Ｂｏｖｉｎｅ　ｓｅｒｕｍ　ａｌｂｕｍｉｎ）；ＦｒａｃｔｉｏｎＶ、品番：Ａ－７９０６、ＳＩＧＭＡ社製）の水溶液を１．１ｍＬ加えて１０分間攪拌した。この溶液を遠心分離装置（ｈｉｍａｃＣＦ１６ＲＸ、日立（株）社製）を用いて、８０００×ｇ、４℃の条件で３０分間遠心分離した。容器の底に１ｍＬを残して上澄み液を取り除き、超音波洗浄機により容器の底に残った１ｍＬ液中に含まれる金コロイド粒子を再分散した。この後、２０ｍＬの金コロイド保存液（２０ｍｍｏｌ／Ｌ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（トリス塩酸）バッファー（ｐＨ８．２）、０．０５％ＰＥＧ（Ｍｗ．２００００）、１５０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ、１％ＢＳＡ）に分散し、再び同じ遠心分離装置を用いて同様の条件で遠心分離を行い、上澄み液を取り除き、超音波分散後、金コロイド保存液に分散し、抗ＬＡＭモノクローナル抗体で修飾された金コロイド粒子（粒子径：５０ｎｍ）である修飾金コロイド粒子（標識抗体）の溶液を得た。得られた溶液をＴｒｉｓ－ＨＣｌバッファー（ｐＨ８．２）の濃度が２０ｍｍｏｌ／Ｌ、ＰＥＧ（Ｍｗ．２００００）の濃度が０．０５質量％、スクロースの濃度が５質量％、そして光路長１０ｍｍとしたときの金コロイドの５２０ｎｍの光学濃度が０．１となるように水で抽出したのち、５ｍｍ×３０ｃｍのグラスファイバーパッド（Ｍｅｒｃｋ社ＧＦＤＸ２０３０００）１枚あたり１ｍＬずつ均一に塗布したのち、１５時間真空乾燥機で乾燥させ、パッドを裁断する事で、抗ＬＡＭモノクローナル抗体で修飾された金コロイド粒子である修飾金コロイド粒子（標識抗体）が保持されたパッド（金コロイド保持パッド）（５ｍｍ×４ｍｍ）を得た。

［イムノクロマトグラフキットの作製］
　以下のとおり、イムノクロマトグラフキットを作製した。

〔クロマトグラフ担体の作製〕
　多孔性担体として、６０ｍｍ×３００ｍｍに切断したニトロセルロースメンブレン（プラスチックの裏打ちあり、ＨｉＦｌｏｗ　Ｐｌｕｓ　ＨＦ１３５（キャピラリーフローレート＝１３５秒／ｃｍ、ミリポア社製）を用い、このメンブレン上に以下のような方法により、検査領域、確認領域および増幅指標領域を形成してクロマトグラフ担体を作製した。
　ニトロセルロースメンブレンの６０ｍｍの短辺のうちの下流側から１５ｍｍの位置に、１．５ｍｇ／ｍＬとなるように調製した抗ＬＡＭ抗体溶液をライン状に塗布し検査領域とした。さらに６０ｍｍの短辺のうちの下流側から１１ｍｍの位置に、０．５ｍｇ／ｍＬとなるように調製した抗ヒトＩｇＧ抗体（抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）、ウサギＦ（ａｂ’）２、品番３０９－００６－００３、富士フイルム和光純薬（株）社製）溶液をライン状に塗布し確認領域とした。さらに６０ｍｍの短辺のうちの下流側から９ｍｍの位置に、３０ｍｍｏｌ／Ｌに調製したブロモクレゾールグリーン（富士フイルム和光純薬（株）社製）をライン状に塗布し増幅指標領域とした。それぞれの塗布の後にニトロセルロースメンブレンを、温風式乾燥機で５０℃、３０分間乾燥した。乾燥が終了した後、ブロッキング液（０．５質量％カゼイン（乳由来、品番０３０－０１５０５、富士フイルム和光純薬（株）社製）を含有する５０ｍｍｏｌ／Ｌのホウ酸バッファー（ｐＨ８．５））５００ｍＬを入れたバットに、上記のように乾燥したニトロースメンブレンを浸漬させてそのまま３０分間静置した。その後、ニトロセルロースメンブレンを取り出して、別のバットに準備した洗浄・安定化液（０．５質量％スクロースおよび０．０５質量％コール酸ナトリウムを含む５０ｍｍｏｌ／Ｌ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．５）バッファー）５００ｍＬ中にニトロセルロースメンブレンを浸し、そのまま３０分間静置した。その後、ニトロセルロースメンブレンを液から取り出し、２５℃の環境で２４時間乾燥させた。
　抗ＬＡＭ抗体を固定化した部分が、被検物質に結合する第２の物質を含む検査領域、抗マウスＩｇＧ抗体を固定化した部分が、第１の物質に結合可能な物質を含む確認領域、ブロモクレゾールグリーンを固定した部分が、下記に記載の第２のポットに封入する増幅液（還元剤溶液）と反応する物質を含む増幅指標領域にそれぞれ相当する。

〔検査用ストリップの作製〕
　バック粘着シート（６０ｍｍ×３００ｍｍ（Ａｄｈｅｓｉｖｅｓ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ社製））に、上述のとおり作製したクロマトグラフ担体を貼り付けた。次に、クロマトグラフ担体の短辺のうちの下流側から２６ｍｍの位置に幅３ｍｍの両面テープ（日東電工）を固定した。その後、両面テープの下流端と８ｍｍ×３００ｍｍに切ったグラスファイバーパッド（ＧｌａｓｓＦｉｂｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ　Ｐａｄ、ミリポア社製）の下流端が重なるようにして金コロイドを保持していない裁断前のパッド（５ｍｍ×３０ｃｍ）をクロマトグラフ担体に固定した。送液用パッド（２５ｍｍ×３００ｍｍに切ったグラスファイバーパッド（Ｇｌａｓｓ　Ｆｉｂｅｒ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ　Ｐａｄ、ミリポア社製））をクロマトグラフ担体の上流側に、送液用パッドとクロマトグラフ担体が７ｍｍ重なるように貼り付けた。こうして作製した部材を、３００ｍｍの長辺と垂直な方向に対して平行に、幅が５ｍｍとなるようにギロチン式カッター（ＣＭ４０００、ニップンテクノクラスタ社製）で切断し、６０本の検査用ストリップ（但し、吸収パッドを含まない。）を作製した。

〔第２のポットに封入する増幅液（還元剤溶液）の作製〕
　水２９０ｇに、硝酸鉄（ＩＩＩ）九水和物（富士フイルム和光純薬（株）社製、０９５－００９９５）を水に溶解して作製した１ｍｏｌ／Ｌの硝酸鉄水溶液２３．６ｍＬ、クエン酸（富士フイルム和光純薬（株）社製、０３８－０６９２５）１３．１ｇを溶解させた。全て溶解したら、スターラーで攪拌しながら硝酸（１０重量％）溶液を３６ｍＬ加え、硫酸アンモニウム鉄（ＩＩ）六水和物（富士フイルム和光純薬（株）社製、０９１－００８５５）を６０．８ｇ加えた。このように調製した溶液を第２のポットに封入する第２の増幅液である還元剤溶液とした。

〔第１のポットに封入する増幅液（銀イオン溶液）の作製〕
　水６６ｇに、硝酸銀溶液８ｍＬ（１０ｇの硝酸銀を含む）と１ｍｏｌ／Ｌの硝酸鉄水溶液２４ｍＬを加えた。さらに、この溶液と、硝酸（１０重量％）５．９ｍＬ、ドデシルアミン（富士フイルム和光純薬（株）社製、１２３－００２４６）０．１ｇ、界面活性剤Ｃ_１２Ｈ_２５－Ｃ_６Ｈ_４－Ｏ－（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）_５０Ｈ　０．１ｇをあらかじめ４７．６ｇの水に溶解した溶液を混合し、これを第１のポットに封入する第１の増幅液である銀イオン溶液とした。

〔吸収パッドの作製〕
　１２ｍｍ×１０ｍｍに切ったグラスファイバーパッド（ガラス濾紙、アドバンテック社製）を６０枚準備し、吸収パッドとした。

〔イムノクロマトグラフキットの部品の作製〕
　図１２～図１４に示すようなイムノクロマトグラフキット１００を構成する下部ケース２０、上部ケース１０、中間部材３０、および第１のポット４０、第２のポット４５を、ポリプロピレンを材料として射出成形によりそれぞれ作製した。上部ケースは住友化学（株）社製オレフィン系エラストマーであるタフセレン（登録商標）を５０質量％含有するポリプロピレンを材料として射出成形により作製した。なお、上部ケース１０は、２つの変形可能な部位（第１の凸状変形部と第２の凸状変形部と）を備え、この２つの変形部は上部ケース１０と分離する部分はなく、すべての境界部で上部ケース１０の一部として射出成形で作製した。
　なお、実施例の上部ケースは、図１２および図１３に示す第１の凸状変形部１２が２本の突起部を有し、第２の凸状変形部１４が１本の突起部を有する構成とした。

〔イムノクロマトグラフキットの作製〕
　下部ケース２０、上述のとおり作製した検査用ストリップ１と上述のとおり作製した吸収パッド６を、図１２～図１４に示すように固定した。次に、第１のポット４０、第２のポット４５に、それぞれ、上述のとおり作製した第１のポット４０に封入する第１の増幅液４１、第２のポット４５に封入する第２の増幅液４６を充填し、シート部材４８としてのアルミ箔で第２のポット４５を、シート部材４３としてのアルミ箔で第１のポット４０をそれぞれ封止し、図１２～図１４に示すように、第２のポット４５を、シート部材４８を上にして下部ケース２０に、第１のポット４０を、シート部材４３を下にして中間部材３０に装着した。そして、上部ケース１０と下部ケース２０とを外周同士が接触するように嵌め合わせた状態で、上部ケースと下部ケースとの接触部を超音波溶着により接合させた。このとき、溶着部位は密閉状態で均一にすべての部位で溶着されていることを確認した。このようにしてイムノクロマトグラフキットを作製した。

［実施例１］

〔濃縮デバイスの作製〕
　図５及び図９に示されるような濃縮デバイス２０１を作製した。なお、図９は、濃縮デバイス２０１の一部（上部）の斜視図である。実施例１の濃縮デバイス２０１は、図９に示されるように、回収口２８２を有する蓋２８０を備える。

　具体的には、シリンダー２１１（内径１２ｍｍ、深さ６０ｍｍ、円筒形、上部に外ねじを備える）に、０．２質量％カゼイン（０３０－０１５０５、富士フイルム和光純薬（株）社製）、２質量％Ｔｗｅｅｎ４０（Ｔ２５３１、東京化成工業（株）社製）を含む８００ｍｍｏｌ／Ｌ　Ｔｒｉｃｉｎｅ緩衝液（ｐＨ８．５）（３４７－０２８４４、富士フイルム和光純薬（株）社製）を調製し、５０μＬ添加し、２５℃１０％Ｒｈ（相対湿度）以下の環境で３日間乾燥させた後、２４時間減圧乾燥することで固体状態にして乾燥試薬を作製した。さらに、金コロイド保持パッド（５ｍｍ×４ｍｍ）１枚及び高吸水性ポリマー２３０（後述する高吸水性ポリマー）を７００ｍｇ添加した。
　また、シリンダー２１１に挿入可能なピストンであって高吸水性ポリマー２３０の吸水後の粒子径よりも小さい孔２２２（孔径１ｍｍ、孔数２４）を有する先端部２２１を備えるピストン２２０、及び、回収口２８２を有するソフトチューブ２８１を備える蓋２８０（内ねじを備える）を準備し、シリンダー２１１と結合して、濃縮デバイス２０１を完成させた。

＜高吸水性ポリマー＞
　市販の高吸水性ポリマー粒子（Ｍ２　Ｐｏｌｙｍｅｒ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ　Ｉｎｃ．社製；ＳＡＰ　Ｓｐｈｅｒｅ　２．５ｍｍ）を７００ｍｇ分粒して、実施例等で使用される高吸水性ポリマー２３０とした。高吸水性ポリマー２３０の粒子径は２．５ｍｍであり、膨潤率は１３ｇ／ｇであり、吸水速度は０．５ｇ／分であった。

〔検体液の濃縮〕
　得られた濃縮デバイス２０１を用いて、図１に示されるように、上述した検体液を濃縮した。

＜検体液注入工程＞
　まず濃縮デバイス２０１から蓋２８０及びピストン２２０を取り外した。そして、シリンダー２１１に開口部２１６から上述した検体液を４．５ｍＬ注入し、攪拌した（図１Ｂ）。

＜吸水工程＞
　その後、濃縮デバイス２０１を６０分間静置した。この間、検体液２４０に含まれる水が高吸水性ポリマー２３０によってほぼ完全に吸収されて、検体液２４０の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成した（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となった）（図１Ｃ）。なお、上述のとおりシリンダー２１１には金コロイド保持パッドが含まれるため、濃縮と同時に抗原抗体反応が進行し、検体液に含まれるＬＡＭとシリンダーに含まれる抗ＬＡＭモノクローナル抗体で修飾された金コロイド粒子である修飾金コロイド粒子（標識抗体）との複合体である金粒子複合体が形成された。すなわち、得られた検体液濃縮物２４６において、ＬＡＭは修飾金コロイド粒子（標識抗体）との複合体である金粒子複合体を形成している。

＜抽出液添加工程＞
　次いで、検体液濃縮物２４６に抽出液２５０（ＰＢＳ（－）富士フイルム和光純薬株式会社製　１６６－２３５５５）４００μＬを添加した（図１Ｄ）。

＜取り出し工程＞
　そして、シリンダー２１１に開口部２１６からピストン２２０を挿入し、ピストン２２０の上から蓋２８０を締めた。蓋２８０をねじ締めすることでピストン２２０が押し下がり、ピストン２２０の先端部２２１の孔２２２を通して検体液の濃縮液である検体液濃縮液２４８を得た（図１Ｅ）。濃縮デバイス２０１を反転し、得られた検体液濃縮液２４８をソフトチューブ２８１に移動させ、ソフトチューブ２８１を押すことで回収口２８２から検体液濃縮液２４８を取り出した。なお、上述のとおり、吸水工程で得られた検体液濃縮物２４６と同様、検体液濃縮液２４８において、ＬＡＭは金粒子複合体を形成している。

〔ＬＡＭの検出〕
　得られた検体液濃縮液２４８（２４μＬ）を、上述のとおり作製したイムノクロマトグラフキットに滴下した。滴下直後に、第２の凸状変形部１４を押下することで、第２のポット４５に封入した第２の増幅液４６を封止しているシート部材４８であるアルミ箔を破り、第２のポット４５の中に送液用パッド４を浸すことにより、毛細管現象を利用して第２の増幅液４６を多孔性担体２に供給した。
　増幅指標領域Ｌ_３が緑からオレンジに変色した後、第１の凸状変形部１２を押下して第１のポット４０を中間部材３０のポット収容部３２の破断部３４に向けて移動させることにより、第１のポット４０を封止しているシート部材４３であるアルミ箔を破断部３４により押し破り、第１の増幅液４１である銀イオン溶液を中間部材３０の開口部から多孔性担体２に供給して、銀増幅反応を行った。銀増幅反応は数十秒で完了する。
　銀増幅反応終了後、目視にて着色を確認した。結果を表１に示す。
　＋：着色がある
　－：着色がない

［実施例２］

〔濃縮デバイスの作製〕
　図６及び図９に示されるような濃縮デバイス２０２を作製した。なお、実施例２の濃縮デバイス２０２は、シリンダー２１１がシリンダー２１２である点以外、実施例１の濃縮デバイス２０１と同じである。

　具体的には、シリンダー２１１の代わりにシリンダー２１２（内径１２ｍｍ、深さ６０ｍｍ、円筒形、上部に外ねじを備える）を用いた点以外は、実施例１と同様の手順に従って濃縮デバイス（濃縮デバイス２０２）を作製した。
　ここで、シリンダー２１２は、底面２１８から３．５ｍｍの位置に、シリンダーの内周面にシリンダー２１２の長手方向に移動可能に設置された隔壁２６０を有する。隔壁２６０は高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい孔２６２（孔径１ｍｍ、孔数２４）を有する。底部２１７と隔壁２６０とによって囲まれた部分（４００μＬ）は上述した抽出液保持部に相当する。隔壁２６０はシリンダー２１２の底面から３．５ｍｍの位置の内周面に形成された突起（図示せず）によって位置決めされているが、上部から押力が加わることで突起を乗り越えて抽出液保持部に侵入することが可能である。
　なお、図６に示されるように、濃縮デバイス２０２において、高吸水性ポリマー２３０は、隔壁２６０の上に隔壁２６０に接してシリンダー２１２に収容されている。

〔検体液の濃縮〕
　得られた濃縮デバイス２０２を用いて、図２に示されるように、上述した検体液を濃縮した。

＜検体液注入工程＞
　まず濃縮デバイス２０２から蓋２８０及びピストン２２０を取り外した。そして、シリンダー２１２に開口部２１６上述した検体液を４．５ｍＬ注入し、攪拌した。このとき、検体液の一部（検体液２４１：４００μＬ）は隔壁２６０の孔２６２を通って、隔壁２６０の下に導入された（図２Ｂ）。

＜吸水工程＞
　その後、濃縮デバイス２０２を６０分間静置した。この間、検体液２４０のうち隔壁２６０の上に存在する検体液２４２（検体液２４０のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によってほぼ完全に吸収されて、シリンダー２１２中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成した（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となった）（図２Ｃ）。なお、実施例１と同様に、得られた検体液濃縮物２４６において、ＬＡＭは修飾金コロイド粒子（標識抗体）との複合体である金粒子複合体を形成している。

＜抽出液添加工程＞
　次いで、シリンダー２１２に開口部２１６からピストン２２０を挿入し、高吸水性ポリマー２３２を押し下げることで、隔壁２６０をシリンダー２１２の底面２１８まで移動させて、抽出液保持部に保持された検体液２４１を隔壁２６０の孔２６２を通して隔壁２６０の上に導入した。このようにして、検体液濃縮物２４６に抽出液保持部に保持された検体液２４１を添加した（図２Ｄ）。

＜取り出し工程＞
　そして、実施例１と同様の手順に従って、検体液濃縮液２４８を取り出した。

〔ＬＡＭの検出〕
　得られた検体液濃縮液２４８（２４μＬ）について、実施例１と同様の手順に従って、ＬＡＭの検出を行った。結果を表１に示す。

［実施例３］

〔濃縮デバイスの作製〕
　図７及び図９に示されるような濃縮デバイス２０３を作製した。なお、実施例３の濃縮デバイス２０３は、シリンダー２１１がシリンダー２１３である点以外、実施例１の濃縮デバイス２０１と同じである。

　具体的には、シリンダー２１１の代わりにシリンダー２１３（内径１２ｍｍ、深さ６０ｍｍ、円筒形、上部に外ねじを備える）を用いた点以外は、実施例１と同様の手順に従って濃縮デバイス（濃縮デバイス２０３）を作製した。
　ここで、シリンダー２１３の底部２１７（底面２１８から４ｍｍ）には多孔質の合成樹脂２７０（ＰＶＡ（ポリビニルアルコール）製のスポンジ）（空隙率９０％）が収容されている。合成樹脂２７０の有する孔（図示せず）は、高吸水性ポリマー２３０の吸水前の粒子径よりも小さい。合成樹脂２７０が有する孔は上述した抽出液保持部に相当する。
　なお、図７に示されるように、濃縮デバイス２０３において、高吸水性ポリマー２３０は、合成樹脂２７０の上に合成樹脂２７０に接してシリンダー２１３に収容されている。

〔検体液の濃縮〕
　得られた濃縮デバイス２０３を用いて、図３に示されるように、上述した検体液を濃縮した。

＜検体液注入工程＞
　まず濃縮デバイス２０３から蓋２８０及びピストン２２０を取り外した。そして、シリンダー２１３に開口部２１６から上述した検体液を４．５ｍＬ注入し、攪拌した。このとき、検体液の一部（検体液２４１：４００μＬ）は合成樹脂２７０の孔に導入された（合成樹脂２７０は、検体液２４０の一部である検体液２４１が孔に導入された合成樹脂２７２となった）（図３Ｂ）。

＜吸水工程＞
　その後、濃縮デバイス２０３を６０分間静置した。この間、検体液２４０のうち合成樹脂２７０の上に存在する検体液２４２（検体液２４０のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によってほぼ完全に吸収されて、シリンダー２１３中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成した（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となった）（図３Ｃ）。なお、実施例１と同様に、得られた検体液濃縮物２４６において、ＬＡＭは修飾金コロイド粒子（標識抗体）との複合体である金粒子複合体を形成している。

＜抽出液添加工程＞
　次いで、シリンダー２１３に開口部２１６からピストン２２０を挿入し、高吸水性ポリマー２３２を押し下げることで、合成樹脂２７０を圧潰させて、抽出液保持部に保持された検体液２４１を合成樹脂２７０の孔を通して合成樹脂２７０の上に導入した。このようにして、検体液濃縮物２４６に抽出液保持部に保持された検体液２４１を添加した（図３Ｄ）。

［実施例４］

〔濃縮デバイスの作製〕
　図８及び図９～１０に示されるような濃縮デバイス２０４を作製した。なお、実施例４の濃縮デバイス２０４は、シリンダー２１１がシリンダー２１４である点、及び、ピストン２２０がピストン２２４である点以外、実施例１の濃縮デバイス２０１と同じである。

　具体的には、シリンダー２１１の代わりにシリンダー２１４（内径１２ｍｍ、深さ６０ｍｍ、円筒形、上部に外ねじを備える）を用いた点、及び、ピストン２２０の代わりにピストン２２４を用いた点以外は、実施例１と同様の手順に従って濃縮デバイス（濃縮デバイス２０４）を作製した。
　ここで、シリンダー２１４及びピストン２２４は、ピストン２２４の先端部２２１を、高吸水性ポリマー２３０の吸水膨張に伴う圧力に抗して、上述した位置Ａ（具体的には、後述する検体液注入工程においてシリンダー２１４に注入される検体液２４０の液面２４４から３．５ｍｍ低い位置）に固定するピストン位置固定機構を備える。
　より具体的には、図１０に示されるように、シリンダー２１４は切り欠き２１５を備え、ピストン２２４は突起２２３を備える。ピストン２２４をシリンダー２１４に挿入し、ピストン２２４の突起２２３をシリンダー２１４の切り欠き２１５に引っ掛けることで、ピストン２２４の先端部２２１を、高吸水性ポリマー２３０の吸水膨張に伴う圧力に抗して、位置Ａに固定することができる。

〔検体液の濃縮〕
　得られた濃縮デバイス２０４を用いて、図４に示されるように、上述した検体液を濃縮した。

＜検体液注入工程＞
　まず濃縮デバイス２０４から蓋２８０及びピストン２２０を取り外した。そして、シリンダー２１４に開口部２１６から上述した検体液を４．５ｍＬ注入し、攪拌するとともに、シリンダー２１４にピストン２２４を挿入して、ピストン２２４の突起２２３をシリンダー２１４の切り欠き２１５に引っ掛けることで、ピストン２２４の先端部２２１を上述した位置Ａに固定した。このとき、検体液の一部（検体液２４１：４００μＬ）はピストン２２４の先端部２２１の孔２２２を通って、ピストン２２４の先端部２２１の上に導入された（図４Ｂ）。

＜吸水工程＞
　その後、濃縮デバイス２０４を６０分間静置した。この間、検体液２４０のうちピストン２２４の先端部２２１の下に存在する検体液２４２（検体液２４０のうち抽出液として保持された検体液２４１以外の検体液２４２）に含まれた水のみが高吸水性ポリマー２３０によってほぼ完全に吸収されて、シリンダー２１４中に検体液２４２の濃縮物である検体液濃縮物２４６が生成した（高吸水性ポリマー２３０は膨潤した高吸水性ポリマー２３２となった）（図４Ｃ）。なお、実施例１と同様に、得られた検体液濃縮物２４６において、ＬＡＭは修飾金コロイド粒子（標識抗体）との複合体である金粒子複合体を形成している。

＜抽出液添加工程＞
　次いで、ピストン２２４を引き上げて、ピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１をピストン２２４の先端部２２１の孔２２２を通してピストン２２４の先端部２２１の下に導入することで、検体液濃縮物２４６にピストン２２４の先端部２２１の上に存在する検体液２４１を添加した（図４Ｄ）。

［実施例５］
　シリンダー２１１に高吸水性ポリマー２３０を３００ｍｇ添加した点以外は、実施例１と同様の手順に従って、濃縮デバイス２０１を作製した。
　得られた濃縮デバイス２０１を用いた点以外は、実施例１と同様の手順に従って、検体濃縮液を取り出し、ＬＡＭの検出を行った。結果を表１に示す。

［比較例１］
　シリンダー２１１に高吸水性ポリマー２３０を添加しなかった点以外は、実施例１と同様の手順に従って、濃縮デバイス（比較デバイス１）を作製した。
　得られた比較デバイス１を用いた点以外は、実施例１と同様の手順に従って、検体液の濃縮を行ったところ、濃縮されずに検体液そのものが取り出された。そして、取り出された検体液について、実施例１と同様の手順に従って、ＬＡＭの検出を行った。結果を表１に示す。

［比較例２］
　実施例１と同様に、検体液注入工程、吸水工程、及び、抽出液添加工程を行った。その後、ピストン２２０を用いずに、シリンダー２１１を傾けて検体液濃縮液を取り出そうとしたところ、検体液濃縮液を取り出すことができなかった。

［比較例３］
　実施例１と同様に、検体液注入工程、及び、吸水工程を行った。その後、抽出液を添加せずに、実施例１と同様に取り出し工程を行ったところ、検体液濃縮液（検体液濃縮物）を取り出すことができなかった。

　本発明の濃縮方法である実施例１～５の方法を用いた場合、所望の濃縮倍率の検体液濃縮液を得ることができた。一方、高吸水性ポリマーを用いなかった比較例１は、検体液を濃縮することができなかった。また、所定のピストンを用いなかった比較例２は、検体液濃縮液を取り出すことができなかった。また、抽出液を添加しなかった比較例３も、検体液濃縮液（検体液濃縮物）を取り出すことができなかった。

１　検査用ストリップ
２　不溶性担体（多孔性担体）
３　標識保持パッド（グラスファイバーパッド）
４　送液用パッド
６　吸収パッド
７　バック粘着シート
９　ハウジングケース
１０　上部ケース
１２　第１の凸状変形部
１２ａ　第１の凸状変形部の頂上
１２ｂ　第１の凸状変形部の突起部
１２ｃ　第１の凸状変形部の斜面
１４　第２の凸状変形部
１４ａ　第２の凸状変形部の頂上
１４ｂ　第２の凸状変形部の突起部
１６　試料液滴下用開孔
１８　観察窓
２０　下部ケース
２１　不溶性担体収容部（多孔性担体収容部）
２２　吸収パッド収容部
２４　第２のポット収容部
３０　中間部材
３２　第１のポット収容部
３４　破断部
３５　流路形成部
３６　流路形成部３５の裏面
４０　１の増幅液用の第１のポット
４１　第１の増幅液
４２　ポット容器
４３　シート部材
４５　第２の増幅液用の第２のポット
４６　第２の増幅液
４７　ポット容器
４８　シート部材
１００　イムノクロマトグラフキット
１１４　凸状変形部
１１４ａ　凸状変形部１１４の頂上
１１４ｂ　凸状変形部１１４の突起部
２０１、２０２、２０３、２０４　濃縮デバイス
２１１、２１２、２１３、２１４　シリンダー
２１５　切り欠き
２１６　開口部
２１７　底部
２１８　底面
２２０、２２４　ピストン
２２１　先端部
２２２　先端部の孔
２２３　突起
２３０　高吸水性ポリマー（吸水前の高吸水性ポリマー）
２３２　高吸水性ポリマー（吸水後の高級水性ポリマー）（膨潤した高吸水性ポリマー）２４０、２４１、２４２　検体液
２４４　検体液の液面
２４６　検体液濃縮物
２４８　検体液濃縮液
２５０　抽出液
２６０　隔壁
２６２　隔壁の孔
２７０　合成樹脂
２７２　検体液が孔に導入された合成樹脂
２８０　回収口を有する蓋
２８１　ソフトチューブ
２８２　回収口
３００　ニトロセルロースメンブレン
３０１　金コロイド保持パッド
３０２　テストライン
３０３　コントロールライン
３０４　発色試薬固定化ライン

Claims

　粒子状の高吸水性ポリマーが収容されたシリンダーに、高分子を含む水溶液である検体液を注入する、検体液注入工程と、
　前記シリンダーに注入された検体液に含まれる水が前記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、前記シリンダー中に前記検体液の濃縮物である検体液濃縮物が生成する、吸水工程と、
　前記検体液濃縮物に、前記検体液注入工程でシリンダーに注入された検体液よりも少ない液を添加する、液添加工程と、
　前記シリンダーに、前記シリンダーに挿入可能なピストンであって前記高吸水性ポリマーの吸水後の粒子径よりも小さい孔を有する先端部を備えるピストンを挿入することで、前記ピストンの先端部の孔を通して前記検体液の濃縮液である検体液濃縮液を取り出す、取り出し工程とをこの順に備える、検体液の濃縮方法。
　前記検体液注入工程が、前記シリンダーに前記検体液を注入するとともに、前記シリンダーに注入された検体液の一部を前記液添加工程で添加される液として前記シリンダー中に保持する工程であり、
　前記吸水工程が、前記シリンダーに注入された検体液のうち前記液添加工程で添加される液として保持された検体液以外の検体液に含まれる水が前記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーによって吸収されて、前記シリンダー中に前記検体液濃縮物が生成する工程であり、
　前記液添加工程が、前記検体液濃縮物に前記液添加工程で添加される液として保持された検体液を添加する工程である、請求項１に記載の検体液の濃縮方法。
　前記シリンダーが底部に前記液添加工程で添加される液を保持するための液保持部を有し、前記高吸水性ポリマーが前記液保持部の上に前記液保持部に接して前記シリンダーに収容され、
　前記検体液注入工程が、前記シリンダーに前記検体液を注入するとともに、前記シリンダーに注入された検体液の一部を前記液添加工程で添加される液として前記液保持部に保持する工程である、請求項２に記載の検体液の濃縮方法。
　前記液保持部が、前記シリンダーの底部と、前記シリンダーの内周面に前記シリンダーの長手方向に移動可能に設置された隔壁とによって囲まれた部分であり、前記隔壁が前記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さい孔を有し、
　前記液添加工程が、前記隔壁を前記シリンダーの底面まで移動させて、前記液保持部に保持された検体液を前記隔壁の孔を通して前記隔壁の上に導入することで、前記検体液濃縮物に前記液保持部に保持された検体液を添加する工程である、請求項３に記載の検体液の濃縮方法。
　前記液保持部が、前記シリンダーの底部に収容された多孔質の樹脂が有する孔によって形成された部分であり、前記樹脂が有する孔が前記高吸水性ポリマーの吸水前の粒子径よりも小さく、
　前記液添加工程が、前記樹脂を圧潰させて、前記液保持部に保持された検体液を前記樹脂の孔を通して前記樹脂の上に導入することで、前記検体液濃縮物に前記液保持部に保持された検体液を添加する工程である、請求項３に記載の検体液の濃縮方法。
　前記多孔質の樹脂がスポンジである、請求項５に記載の検体液の濃縮方法。
　前記検体液注入工程が、前記シリンダーに前記検体液を注入するとともに、前記シリンダーに前記ピストンを挿入して、前記ピストンの先端部を前記シリンダーに注入された検体液の液面よりも低く前記シリンダーに収容された高吸水性ポリマーよりも高い位置に固定することで、前記シリンダーに注入された検体液のうち前記ピストンの先端部の上に存在する検体液を前記液添加工程で添加される液として前記シリンダー中に保持する工程であり、
　前記液添加工程が、前記ピストンを引き上げて、前記ピストンの先端部の上に存在する検体液を前記ピストンの先端部の孔を通して前記ピストンの先端部の下に導入することで、前記検体液濃縮物に前記ピストンの先端部の上に存在する検体液を添加する工程である、請求項２に記載の検体液の濃縮方法。
　前記取り出し工程において、更に、前記取り出された検体液濃縮液を、前記検体液濃縮液を回収するための回収口を有する蓋を用いて回収する、請求項１～７のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記高吸水性ポリマーの吸水速度が、高吸水性ポリマー１ｇ当たり０．０１ｇ／分以上４０ｇ／分以下である、請求項１～８のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記高吸水性ポリマーの粒子径が、５ｍｍ以下である、請求項１～９のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記高吸水性ポリマーの膨潤率が、０．２ｇ／ｇ超８００ｇ／ｇ未満である、請求項１～１０のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記検体液が、生体液中に含まれる高分子を含む水溶液である、請求項１～１１のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記シリンダーが、更に、前記生体液中に含まれる高分子と特異的に結合する結合物質を含む、請求項１２に記載の検体液の濃縮方法。
　前記結合物質が、金属粒子との複合体として、前記シリンダーに含まれる、請求項１３に記載の検体液の濃縮方法。
　前記生体液中に含まれる高分子が抗原であり、前記結合物質が前記抗原に対する抗体である、請求項１３又は１４に記載の検体液の濃縮方法。
　前記シリンダーが、更に、カゼイン及びトリシンからなる群より選択される少なくとも１種を含む、請求項１～１５のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　前記検体液が、尿である、請求項１～１６のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法。
　高分子を含む水溶液である検体液中の高分子を検出する、検体液の検査方法であって、　請求項１～１７のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法を用いて、前記検体液濃縮液
を得る、濃縮工程と、
　得られた前記検体液濃縮液中の高分子を検出する、検出工程とをこの順に備える、検体液の検査方法。
　前記検体液が、抗原を含み得る水溶液であり、
　前記濃縮工程が、請求項１～１７のいずれか１項に記載の検体液の濃縮方法を用いて、前記抗原を含み得る水溶液を濃縮して、抗原濃縮液を得る工程であり、
　前記検出工程が、抗原抗体反応を用いたイムノクロマトグラフィーによって前記抗原濃縮液中の抗原を検出する工程である、請求項１８に記載の検体液の検査方法。
　前記検出工程が、前記抗原濃縮液中の抗原の情報を増幅する増幅工程を備える、請求項１９に記載の検査方法。
　前記増幅工程が、銀増幅工程である、請求項２０に記載の検査方法。