WO2021024943A1 - 細胞培養用足場材及び細胞培養用容器 - Google Patents

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WO2021024943A1
WO2021024943A1 PCT/JP2020/029452 JP2020029452W WO2021024943A1 WO 2021024943 A1 WO2021024943 A1 WO 2021024943A1 JP 2020029452 W JP2020029452 W JP 2020029452W WO 2021024943 A1 WO2021024943 A1 WO 2021024943A1
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WO
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convex portion
cell culture
synthetic resin
scaffold material
meth
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PCT/JP2020/029452
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English (en)
French (fr)
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悠平 新井
延彦 乾
聡 羽根田
博貴 井口
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積水化学工業株式会社
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Publication date
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/12—Well or multiwell plates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/20—Material Coatings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14—Scaffolds; Matrices

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture scaffold material used for culturing cells.
  • the present invention also relates to a cell culture container using the cell culture scaffold material.
  • hESC human embryonic stem cells
  • hiPSC human induced pluripotent stem cells
  • hPSC human pluripotent stem cells
  • differentiated cells derived from them are applied to drug discovery and regenerative medicine. Is expected. In order to achieve such an application, it is necessary to culture and proliferate pluripotent stem cells and differentiated cells safely and with good reproducibility.
  • stem cells can form a cell mass called spheroid by aggregating and adhering a population of stem cells.
  • Spheroids are thought to be able to be cultivated or maintained in a state closer to their three-dimensional structure in vivo, and it is known that they exhibit superior properties as compared to ordinary planar adhesive culture. In fact, spheroids are used for anti-cancer drug screening using cancer cells.
  • Patent Document 1 in a culture substrate in which a plurality of microwells are formed on one culture surface, the movement of spheroids from the microwells is suppressed without making the depth of the microwells too deep.
  • a cell culture substrate capable of forming spheroids of uniform size is disclosed.
  • the cell culture substrate described in Patent Document 1 has a problem that the cell culture efficiency is low because the culture surface is a low cell adhesion surface (a surface on which cells do not adhere or are difficult to adhere). Further, there is also a problem that the cell mass is easily peeled off from the culture surface due to vibration such as medium exchange, and it is difficult to control the shape and size of the cell mass.
  • An object of the present invention is to provide a scaffold material for cell culture and a container for cell culture, which can easily and efficiently form a cell mass.
  • the cell culture scaffold material according to the present invention includes a base material and a convex portion formed by patterning the base material in a dot shape or a line shape, and the convex portion contains a synthetic resin.
  • the synthetic resin contains at least a polyvinyl alcohol derivative or a poly (meth) acrylic resin, the convex portion has cell adhesion, and the convex portion is an average of portions located at the center of the convex portion in a plan view.
  • the height is 10 nm or more and 10 ⁇ m or less.
  • the ratio of the amount of protein adsorbed to the portion of the convex portion where the convex portion is not provided is determined. 2 or more.
  • the convex portion is formed by patterning the convex portion in a dot shape on the base material, and the convex portion has an average bottom area of 0. .005Mm 2 or more and 5 mm 2 or less.
  • the convex portion has a wall portion at a peripheral portion.
  • the elastic modulus of the convex portion at the center position of the convex portion in a plan view at 25 ° C. measured by the nanoindentation method is 1 GPa or more. Is.
  • the synthetic resin contains Bronsted basic groups in a constituent unit of 0.2 mol% or more and 20 mol% or less.
  • the water swelling rate of the convex portion is 50% or less.
  • the convex portion has a peptide portion on the surface.
  • the cell culture container according to the present invention includes a cell culture scaffold material configured according to the present invention in at least a part of the cell culture area.
  • a scaffold material for cell culture and a container for cell culture which can easily and efficiently form a cell mass.
  • FIG. 1 is a schematic plan view showing a scaffold material for cell culture according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2A is a schematic plan view showing an enlarged periphery of a convex portion having a wall portion on the peripheral edge portion
  • FIG. 2B is an enlarged view of the periphery of the convex portion having a wall portion on the peripheral edge portion.
  • FIG. 3 is a schematic front sectional view showing a cell culture container according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 4 is a photograph showing the pattern of the convex portion in the scaffold material for cell culture prepared in Example 1.
  • FIG. 5 is a photograph showing the pattern of the convex portion in the scaffold material for cell culture prepared in Example 2.
  • FIG. 6 is a photomicrograph of cells seeded in the cell culture container prepared in Example 1.
  • FIG. 7 is a photomicrograph after culturing cells for 5 days in the cell culture container prepared in Example 1.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention is a scaffold material (scaffold) including a base material and convex portions formed by patterning in a dot shape or a line shape on the base material.
  • the convex portion contains a synthetic resin, and the synthetic resin contains at least a polyvinyl alcohol derivative or a poly (meth) acrylic resin.
  • the convex portion has cell adhesion.
  • the average height of the convex portion located at the center of the convex portion in a plan view is 10 nm or more and 10 ⁇ m or less.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention has the above-mentioned structure, it is possible to easily and efficiently form a cell mass.
  • the present inventors have focused on the convex portion having cell adhesion, and in particular, by setting the average height of the convex portion at a specific position to 10 nm or more and 10 ⁇ m or less, a cell mass can be easily and efficiently formed. Found to get.
  • the seeded cells gather on the convex portion to form a cell mass.
  • a cell mass can be formed along the shape of the convex portion. Therefore, by controlling the size and shape of the convex portion, the shape and size of the cell mass can be easily controlled.
  • cells can be seeded in both the convex portion and the portion where the convex portion is not provided.
  • cells seeded in a portion not provided with a convex portion only cells having good migration ability can be aggregated on the convex portion. Therefore, only high-quality cells can be selected, and a high-quality cell mass can be efficiently obtained. Further, since it is not necessary to selectively seed the cells only in the convex portion, the cell mass can be easily and efficiently formed.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention it is possible to easily and efficiently form a high-quality cell mass, and it is possible to easily control the shape and size of the cell mass.
  • the operability is good, the cost is low, the variation between lots is small, and the safety is excellent as compared with the scaffolding material using the natural polymer material. ing.
  • FIG. 1 a schematic plan view as an example of a scaffold material for cell culture having convex portions formed by patterning in a dot shape will be described.
  • the cell culture scaffold material 1 shown in FIG. 1 includes a base material 2 and a plurality of convex portions 3 provided on the base material 2.
  • the plurality of convex portions 3 contain a synthetic resin and have cell adhesion. Further, on the base material 2, a portion 4 having no convex portion is also provided. In the present embodiment, the number of cells adhering to the plurality of convex portions 3 is larger than that of the portion 4 in which the convex portions are not provided.
  • the convex portion 3 is formed by patterning in a dot shape.
  • the planar shape of the convex portion 3 is substantially circular.
  • the convex portion 3 has an average height of 10 nm or more and 10 ⁇ m or less in a portion located at the center of the convex portion 3 in a plan view.
  • the cell culture scaffold material 1 it is possible to easily and efficiently form a high-quality cell mass, and the shape and size of the cell mass can be easily controlled.
  • the planar shape of the convex portion is substantially circular, but the planar shape of the convex portion may be substantially rectangular or substantially triangular, and is not particularly limited. Further, a part or all of the plurality of convex portions may be formed by connecting adjacent dots.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention includes a convex portion arranged on a substrate.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention includes a base material and a dot-shaped convex portion or a line-shaped convex portion provided on the base material.
  • the convex portion is configured by being patterned in a dot shape or a line shape on the base material.
  • the convex portion may be formed by patterning in a dot shape on the base material, may be formed by patterning in a line shape on the base material, and may be formed in a dot shape on the base material. It may be configured by patterning in a line shape.
  • the convex portion is formed by patterning in a dot shape.
  • the cell culture scaffold material preferably includes at least convex portions formed by patterning in a dot shape.
  • the number of convex parts may be singular or plural.
  • the number of convex portions can be, for example, 1 to 1500.
  • the number of convex portions is preferably 1 or more, more preferably 5 or more, still more preferably 10 or more, preferably 1500 or less.
  • the number is more preferably 1000 or less, still more preferably 500 or less.
  • the number of the convex portions is equal to or greater than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, a high-quality cell mass can be formed more easily and efficiently, and the shape and size of the cell mass can be controlled more easily. can do.
  • the number of convex portions may be one or two or more.
  • the convex portion has an average height of 10 nm or more and 10 ⁇ m or less in a portion located at the center of the convex portion in a plan view.
  • the average height of the portion located at the center of the convex portion is preferably 50 nm or more, more preferably 100 nm or more, preferably 5 ⁇ m or less, more preferably 2 ⁇ m or less, still more preferably 1 ⁇ m or less. Is.
  • the average height is within the above range, a high-quality cell mass can be formed more easily and efficiently, and the shape and size of the cell mass can be controlled more easily.
  • the height of the convex portion located at the center of the convex portion in a plan view can be measured by a hybrid laser microscope or the like.
  • the average height of the convex portion of the portion located at the center of the convex portion in the plan view is the average value of the height of the convex portion at the central position of the convex portion in the plan view.
  • the average height of the convex portion of the portion located at the center of the convex portion in the plan view is the average height from the surface (upper surface) of the base material to the central position of the convex portion in the plan view.
  • the average height is the average height at the center position of the planar shape when the dot-shaped convex portion is viewed in a plan view when the convex portion is dot-shaped.
  • the position of the center of the convex portion in the plan view means the center of the circle or the ellipse.
  • the planar shape of the dot-shaped convex portion in a plan view is a shape such as a polygon
  • the position at the center of the convex portion in the plan view means the center of gravity of the polygon or the like.
  • the average height is the average height at the center position of the line width of the line-shaped convex portion when the convex portion is line-shaped.
  • the average height is the center of the convex portion in a plan view. It means the height at the position.
  • the convex portions are convex portions formed by patterning the convex portions in a dot shape and the number of the convex portions is less than 10, the average height is the center of these convex portions in a plan view. It means the average value of the height at the position.
  • the average height is any 10 convex portions in a plan view. Means the average height at the center of. Further, when the convex portion is a convex portion formed by patterning in a line shape, the average height is the average value of the heights at the center of the line widths of any 10 points separated from each other by 10 ⁇ m or more. Means.
  • the central position does not have to be the completely central position, and may be separated from the central position within the range of measurement error, or may be a substantially central position.
  • the average bottom area of the convex portions is preferably 0.005 mm 2 or more, more preferably 0.02 mm 2 or more, still more preferably 0.1 mm 2.
  • the above is preferably 5 mm 2 or less, more preferably 3 mm 2 or less, and further preferably 1.5 mm 2 or less. In this case, a high-quality cell mass can be formed more easily and efficiently, and the shape and size of the cell mass can be controlled more easily.
  • the average bottom area of the convex portion means the bottom area of the convex portion when the number of convex portions is one.
  • the average bottom area of the convex portions means the average value of the bottom areas of these convex portions when the number of convex portions is less than 10.
  • the average bottom area of the convex portions means the average value of the bottom areas of any 10 convex portions when the number of convex portions is 10 or more.
  • the convex portion may be formed by patterning in a line shape.
  • the convex portion may be configured to be linear, polygonal, or curved, or may be configured to be circular or spiral.
  • the average line width of the convex portions is preferably 50 ⁇ m or more, more preferably 100 ⁇ m or more, preferably 1.5 mm or less, more preferably 0.5 mm. It is as follows. In this case, a high-quality cell mass can be formed more easily and efficiently, and the shape and size of the cell mass can be controlled more easily.
  • the convex part has cell adhesion.
  • the "convex portion having cell adhesion” means that the number of cells adhering to each unit area of the convex portion is larger than that of the portion not provided with the convex portion. Therefore, it is preferable that the convex portion has higher cell adhesion than the base material.
  • the ratio of the amount of protein adsorbed to the portion of the convex portion where the convex portion is not provided is preferably 1.5 or more, more preferably 2 or more, preferably 2. Is 15 or less, more preferably 10 or less.
  • the cell adhesion of the convex portion can be further enhanced, and the cell mass can be formed more easily and efficiently.
  • the amount of protein adsorbed can be measured by, for example, the following method.
  • FITC-labeled bovine serum albumin (manufactured by Cosmo Bio Co., Ltd.) 0.1 mg / mL was cast on the cell culture scaffold, and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour. Wash and dry in an oven at 45 ° C. for 1 hour.
  • 1 ⁇ L of FITC-labeled bovine serum albumin of 0.005 mg / mL, 0.02 mg / mL, and 0.05 mg / mL was dispensed on a polystyrene substrate, respectively, and the mixture was placed in an oven at 45 ° C. Dry for 1 hour.
  • the scaffold material for cell culture is photographed using a fluorescence microscope, and the fluorescence intensity of the convex portion and the fluorescence intensity of the portion where the convex portion is not provided are determined.
  • the linear approximation of the fluorescence intensity obtained using the polystyrene substrate for the calibration curve is converted into the amount of protein adsorbed.
  • the ratio of the amount of protein adsorbed can be increased by increasing the content of cationic functional groups such as amino groups and anionic functional groups such as carboxyl groups in the synthetic resin contained in the convex portion.
  • the elastic modulus of the convex portion at the center position of the convex portion in a plan view as measured by the nanoindentation method is preferably 1 GPa or more, more preferably 2 GPa or more, preferably 8 GPa or less, and more. It is preferably 6 GPa or less.
  • the elastic modulus of the convex portion is within the above range, the cell adhesion of the convex portion can be further enhanced, and the cell mass can be formed more easily and efficiently.
  • the elastic modulus can be measured using, for example, a nanoindenter (Hysitron, Triboinder, manufactured by Bruker).
  • a nanoindenter Hexitron, Triboinder, manufactured by Bruker.
  • a Berkovich (triangular pyramidal type) indenter having a tip diameter R of 100 nm can be used, and a single indentation measurement can be performed at 25 ° C. in the atmosphere.
  • the pushing depth can be 50 nm.
  • the central position does not have to be the completely central position, and may be separated from the central position within the range of measurement error, or may be a substantially central position.
  • the surface elastic modulus increases, for example, the molecular weight of the synthetic resin contained in the convex portion, increases the degree of cross-linking of the synthetic resin contained in the convex portion, and introduces a crystalline molecular structure into the synthetic resin contained in the convex portion. It can be increased by a method such as.
  • the water swelling rate of the convex portion is preferably 50% or less, more preferably 40% or less.
  • the cell adhesion of the convex portion can be further enhanced, and the cell mass can be formed more easily and efficiently.
  • the lower limit of the water swelling rate is not particularly limited, but may be, for example, 0.5%.
  • the water swelling rate can be measured, for example, as follows.
  • the water swelling rate can be reduced by increasing the hydrophobic functional groups of the synthetic resin contained in the convex portion, lowering the number average molecular weight, or the like.
  • the convex portion preferably has a wall portion on the peripheral edge portion.
  • a high-quality cell mass can be formed more easily and efficiently, and the shape and size of the cell mass can be controlled more easily.
  • the wall portion is a part of the convex portion. Therefore, when the convex portion has a wall portion, the bottom area and line width of the convex portion described above are the bottom area and line width of the convex portion including the wall portion.
  • FIG. 2A is a schematic plan view showing an enlarged periphery of a convex portion having a wall portion on the peripheral edge portion
  • FIG. 2B is an enlarged view of the periphery of the convex portion having a wall portion on the peripheral edge portion. It is a schematic front sectional view shown by.
  • FIG. 2B is a cross-sectional view taken along the line II in FIG. 2A. In FIG. 2, one convex portion is enlarged and shown.
  • the convex portion 3A is arranged on the surface of the base material 2A.
  • the convex portion 3A has a wall portion 31A on the peripheral edge portion.
  • the convex portion 3A has a wall portion 31A and a portion that does not have the wall portion 31A.
  • the convex portion 3A has a circular shape in a plan view. The central position of the convex portion 3A in the plan view is the center of the circle.
  • the upper surface of the convex portion 3A is formed by the upper surface of the wall portion 31A and the upper surface of the portion having no wall portion 31A.
  • the height Hb of the wall portion 31A is higher than the height of the portion without the wall portion 31A.
  • the height Hb of the wall portion 31A is higher than the height Ha of the convex portion 3A at the central position of the convex portion 3A in a plan view.
  • the height Hb of the wall portion is the height of the convex portion at the central position in the width direction of the wall portion in a plan view, and is the height of the convex portion at the central position in the thickness direction of the wall portion.
  • the height Hb of the wall portion is the distance from the surface (upper surface) of the base material 2A to the central position in the width direction of the upper surface of the wall portion 31A.
  • the convex portion 3A has a wall portion 31A having a thickness Tb.
  • the thickness Tb of the wall portion corresponds to the width of the wall portion in a plan view.
  • the wall portion 31A and the portion having no wall portion 31A are formed of the same material.
  • the portion having no wall portion 31A is surrounded by the wall portion 31A.
  • the average height of the wall portion is preferably 100 nm or more, more preferably 300 nm or more, preferably 50 ⁇ m or less, and more preferably 20 ⁇ m or less.
  • the average height of the wall portion is equal to or higher than the above lower limit and lower than the above upper limit, it is possible to form a high-quality cell mass more easily and efficiently, and further easily change the shape and size of the cell mass. Can be controlled.
  • the average thickness of the wall portion is preferably 50 nm or more, more preferably 100 nm or more, preferably 5 ⁇ m or less, and more preferably 1 ⁇ m or less.
  • the average thickness of the wall portion is equal to or greater than the above lower limit and equal to or less than the above upper limit, it is possible to form a high-quality cell mass more easily and efficiently, and further easily change the shape and size of the cell mass. Can be controlled.
  • the average height of the wall portion is preferably higher than the average height of the convex portion of the portion located at the center of the convex portion in a plan view.
  • the ratio of the average height of the wall to the average height of the convex part located in the center of the convex part in the plan view (average height of the wall part / convex part of the part located in the center of the convex part in the plan view)
  • the average height) is preferably 2 or more, more preferably 4 or more, preferably 100 or less, and more preferably 50 or less.
  • the average height of the wall portion and the average thickness of the wall portion mean the height of the wall portion and the thickness of the wall portion in the convex portion when the number of the convex portions having the wall portion is one, respectively.
  • the average height of the wall portion and the average thickness of the wall portion are the average values of the height of the wall portion and the thickness of the wall portion in these convex portions when the number of the convex portions having the wall portion is less than 10.
  • the average height of the wall portion and the average thickness of the wall portion are the height of the wall portion and the thickness of the wall portion in any 10 convex portions when the number of convex portions having the wall portion is 10 or more. Means the average value.
  • the method for forming the wall portion is not particularly limited, and examples thereof include a method by transfer molding using a mold, a method by precision machine cutting, and a method by chemical etching.
  • a solution containing a synthetic resin for forming a convex portion is prepared.
  • microdroplets of the solution are placed on the substrate to gradually volatilize the solvent.
  • a convex portion having a wall portion on the peripheral portion is formed on the base material.
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture of the present invention contains a synthetic resin (hereinafter, may be referred to as synthetic resin X).
  • the synthetic resin X is a synthetic resin contained in the convex portion.
  • a "structural unit” means a repeating unit of a monomer constituting a synthetic resin.
  • the synthetic resin has a graft chain, it contains a repeating unit of the monomers constituting the graft chain.
  • the synthetic resin X preferably contains a Bronsted basic group in a constituent unit in an amount of 0.2 mol% or more, more preferably 2 mol% or more, and preferably 30 mol% or less. It is more preferably contained in an amount of mol% or less, and further preferably contained in an amount of 15 mol% or less. In this case, the effect of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the Bronsted basic group and the like will be described later.
  • Synthetic resin X contains at least a polyvinyl alcohol derivative or a poly (meth) acrylic resin.
  • the synthetic resin X contains a polyvinyl alcohol derivative or a poly (meth) acrylic resin, the adhesiveness to cells can be enhanced, and the swelling of the cell culture scaffold material in the liquid medium is further suppressed.
  • the synthetic resin X may contain a polyvinyl alcohol derivative, a poly (meth) acrylic resin, or both a polyvinyl alcohol derivative and a poly (meth) acrylic resin.
  • the polyvinyl alcohol derivative and the poly (meth) acrylic resin only one kind may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • the polyvinyl alcohol derivative is preferably a synthetic resin having a polyvinyl acetal skeleton.
  • the poly (meth) acrylic resin is preferably a synthetic resin having a poly (meth) acrylic acid ester skeleton.
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture preferably contains a synthetic resin having a polyvinyl acetal skeleton.
  • the synthetic resin X preferably contains a synthetic resin having a polyvinyl acetal skeleton.
  • polyvinyl acetal resin X synthetic resin having a polyvinyl acetal skeleton
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has an acetal group, an acetyl group, and a hydroxyl group in the side chain. However, the polyvinyl acetal resin X does not have to have, for example, an acetyl group. For example, the polyvinyl acetal resin X does not have to have an acetyl group by binding all of the acetyl groups of the polyvinyl acetal resin X with a linker described later.
  • the aldehyde used for acetalizing polyvinyl alcohol to obtain the polyvinyl acetal resin X is not particularly limited.
  • Examples of the aldehyde include aldehydes having 1 to 10 carbon atoms.
  • the aldehyde may have a chain aliphatic group, a cyclic aliphatic group or an aromatic group.
  • the aldehyde may be a chain aldehyde or a cyclic aldehyde.
  • aldehydes examples include formaldehyde, acetaldehyde, propionaldehyde, butylaldehyde, pentanal, hexanal, heptanal, octanal, nonanal, decanal, achlorine, benzaldehyde, cinnamaldehyde, perylaldehyde, formylpyridine, formylimidazole, formylpyrrole, formylpiperidin, formyl.
  • Triazole formyltetrazole, formylindole, formylisoindole, formylpurine, formylbenzoimidazole, formylbenzotriazole, formylquinoline, formylisoquinolin, formylquinoxalin, formylcinnoline, formylpteridine, formylfuran, formyloxolane, formyloxane, Examples thereof include formylthiophene, formylthiolan, formyltian, formyladenine, formylguanine, formylcitosine, formyltimine, and formyluracil. Only one kind of the above aldehyde may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • the aldehyde is preferably formaldehyde, acetaldehyde, propionaldehyde, butyraldehyde, or pentanal, and more preferably butyraldehyde. Therefore, the polyvinyl acetal skeleton is preferably a polyvinyl butyral skeleton.
  • the polyvinyl acetal resin X is preferably a synthetic resin having a polyvinyl butyral skeleton, and more preferably a polyvinyl butyral resin.
  • a vinyl compound may be copolymerized with the polyvinyl acetal resin X. That is, the polyvinyl acetal resin X may be a copolymer of a structural unit of the polyvinyl acetal resin and a vinyl compound. In the present invention, the polyvinyl acetal resin copolymerized with the vinyl compound is also referred to as a polyvinyl acetal resin.
  • the vinyl compound may be a polymer having a structural unit having a vinyl group.
  • the above-mentioned copolymer may be a block copolymer of a polyvinyl acetal resin and a vinyl compound, or may be a graft copolymer obtained by grafting a vinyl compound on the polyvinyl acetal resin.
  • the copolymer is preferably a graft copolymer.
  • the above copolymer can be synthesized, for example, by the following methods (1) to (3).
  • vinyl compound examples include ethylene, allylamine, vinylpyrrolidone, vinylimidazole, maleic anhydride, maleimide, itaconic acid, (meth) acrylic acid, vinylamine and (meth) acrylic acid ester. Only one kind of these vinyl compounds may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has a Bronsted basic group or a Bronsted acidic group, and more preferably has a Bronsted basic group. That is, it is preferable that a part of the polyvinyl acetal resin X is modified with a Bronsted basic group or a Bronsted acidic group, and a part of the polyvinyl acetal resin X is modified with a Bronsted basic group. preferable.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has a Bronsted basic group or a Bronsted acidic group in part, and more preferably has a Bronsted basic group. In that case, the cell adhesion can be further enhanced. In that case, a monomer having a Bronsted basic group or a Bronsted acidic group may be copolymerized, or may be graft-copolymerized.
  • the degree of modification of the Bronsted basic group is preferably 0.2 mol% or more, more preferably 2 mol% or more, preferably 30 mol% or less, more preferably 20 mol% or less, still more preferably 15 mol%. It is as follows. If the degree of denaturation by the Bronsted basic group is within the above-mentioned specific range, the cell adhesion can be further enhanced.
  • Bronsted basic group is a general term for functional groups that can receive hydrogen ion H + from other substances.
  • the blended basic group include amine-based basic groups such as a substituent having an imine structure, a substituent having an imide structure, a substituent having an amine structure, and a substituent having an amide structure.
  • the blended basic group is not particularly limited, but is limited to a hydroxyamino group, a urea group, a conjugated amine-based functional group such as guanidine or biganide, piperazine, piperidine, pyrrolidine, 1,4-diazabicyclo [2.2.2] octane.
  • Heterocyclic amino functional groups such as quinoline, isoquinolin, quinazoline, quinoxalin, cinnoline, pteridine, carbazole, aclysine, adenine, guanine, cytosine, timine, uracil, melamine, cyclic pyrrol functional groups such as porphyrin, chlorin, choline and Examples thereof include derivatives thereof.
  • Examples of the blended acidic group include a carboxyl group, a sulfonic acid group, a maleic acid group, a sulfinic acid group, a sulfenic acid group, a phosphoric acid group, a phosphonic acid group, and salts thereof.
  • the Bronsted acidic group is preferably a carboxyl group.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has a structural unit having an imine structure, a structural unit having an imide structure, a structural unit having an amine structure, or a structural unit having an amide structure. In this case, it may have only one of these structural units, or it may have two or more.
  • the polyvinyl acetal resin X may have a structural unit having an imine structure.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has an imine structure in the side chain.
  • the polyvinyl acetal resin X may have a structural unit having an imide structure.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has an imino group in the side chain.
  • the imino group may be directly bonded to the carbon atom constituting the main chain of the polyvinyl acetal resin X, or may be bonded to the main chain via a linking group such as an alkylene group.
  • the polyvinyl acetal resin X may have a structural unit having an amine structure.
  • the amine group in the above amine structure may be a primary amine group, a secondary amine group, a tertiary amine group, or a quaternary amine group. Good.
  • the structural unit having an amine structure may be a structural unit having an amide structure.
  • the polyvinyl acetal resin X preferably has an amine structure or an amide structure in the side chain.
  • the amine structure or the amide structure may be directly bonded to the carbon atom constituting the main chain of the polyvinyl acetal resin X, or may be bonded to the main chain via a linking group such as an alkylene group.
  • the content of structural units having an imine structure, the content of structural units having an imide structure, the content of structural units having an amine structure, and the content of structural units having an amide structure are 1 H-NMR (nuclear magnetism). It can be measured by the resonance spectrum).
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture of the present invention preferably contains a synthetic resin having a poly (meth) acrylic acid ester skeleton.
  • the synthetic resin X preferably contains a synthetic resin having a polyvinyl acetal skeleton.
  • synthetic resin having a poly (meth) acrylic acid ester skeleton may be referred to as "poly (meth) acrylic acid ester resin X”.
  • the poly (meth) acrylic acid ester resin X is a resin having a poly (meth) acrylic acid ester skeleton.
  • the poly (meth) acrylic acid ester resin X can be obtained by polymerizing the (meth) acrylic acid ester or by copolymerizing the (meth) acrylic acid ester with another monomer.
  • (meth) acrylic acid ester examples include (meth) acrylic acid alkyl ester, (meth) acrylic acid cyclic alkyl ester, (meth) acrylic acid aryl ester, (meth) acrylamide, (meth) acrylic acid polyethylene glycol, and ( Meta) Phosphorylcholine acrylate and the like can be mentioned.
  • Examples of the (meth) acrylic acid alkyl ester include methyl (meth) acrylate, ethyl (meth) acrylate, n-propyl (meth) acrylate, isopropyl (meth) acrylate, n-butyl (meth) acrylate, and isobutyl (meth) acrylate.
  • t-butyl (meth) acrylate n-octyl (meth) acrylate, isooctyl (meth) acrylate, 2-ethylhexyl (meth) acrylate, nonyl (meth) acrylate, isononyl (meth) acrylate, decyl (meth) acrylate, isodecyl ( Examples thereof include meth) acrylate, lauryl (meth) acrylate, stearyl (meth) acrylate, and isotetradecyl (meth) acrylate.
  • the (meth) acrylic acid alkyl ester may be substituted with a substituent such as an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms and a tetrahydrofurfuryl group.
  • a substituent such as an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms and a tetrahydrofurfuryl group.
  • examples of such (meth) acrylic acid alkyl esters include methoxyethyl acrylate and tetrahydrofurfuryl acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid cyclic alkyl ester include cyclohexyl (meth) acrylate and isobornyl (meth) acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid aryl ester include phenyl (meth) acrylate and benzyl (meth) acrylate.
  • Examples of (meth) acrylamides include (meth) acrylamide, N-isopropyl (meth) acrylamide, N-tert-butyl (meth) acrylamide, N, N'-dimethyl (meth) acrylamide, and (3- (meth) acrylamide propyl).
  • Trimethylammonium chloride 4- (meth) acryloylmorpholine, 3- (meth) acryloyl-2-oxazolidinone, N- [3- (dimethylamino) propyl] (meth) acrylamide, N- (2-hydroxyethyl) (meth) ) Acrylamide, N-methylol (meth) acrylamide, 6- (meth) acrylamide hexane acid and the like.
  • polyethylene glycols (meth) acrylate examples include methoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-diethylene glycol (meth) acrylate, and ethoxy-.
  • Diethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-diethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-triethylene glycol (meth) acrylate and the like can be mentioned. Be done.
  • Examples of phosphorylcholine (meth) acrylate include 2- (meth) acryloyloxyethyl phosphorylcholine.
  • a vinyl compound is preferably used as another monomer copolymerized with the (meth) acrylic acid ester.
  • the vinyl compound include ethylene, allylamine, vinylpyrrolidone, maleic anhydride, maleimide, itaconic acid, (meth) acrylic acid, vinylamine, and (meth) acrylic acid ester. Only one kind of vinyl compound may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • (meth) acrylic means “acrylic” or “methacryl”
  • (meth) acrylate means “acrylate” or “methacrylate”.
  • the poly (meth) acrylic acid ester resin X preferably has a Bronsted basic group or a Bronsted acidic group in part.
  • the blended basic group may be present in a part of the poly (meth) acrylic acid ester resin X, and in that case, the monomer having the blended basic group may be copolymerized, and the graft may be co-polymerized. It may be polymerized.
  • the degree of modification of the Bronsted basic group is preferably 0.2 mol% or more, more preferably 2 mol% or more, preferably 30 mol% or less, more preferably 20 mol% or less, still more preferably 15 mol%. It is as follows. If the degree of denaturation by the Bronsted basic group is within the above-mentioned specific range, the adhesion of cells can be further enhanced.
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture of the present invention preferably contains a synthetic resin having a peptide portion.
  • the synthetic resin X preferably contains a synthetic resin having a peptide portion.
  • a synthetic resin having a peptide portion can be obtained by reacting a synthetic resin, a linker, and a peptide.
  • the synthetic resin having a peptide portion is preferably a peptide-containing polyvinyl acetal resin having a polyvinyl acetal resin portion, a linker portion, and a peptide portion, and a peptide having a polyvinyl butyral resin portion, a linker portion, and a peptide portion. More preferably, it is a containing polyvinyl butyral resin.
  • the synthetic resin having the polyvinyl acetal skeleton is preferably a peptide-containing polyvinyl acetal resin, and more preferably a peptide-containing polyvinyl butyral resin.
  • the synthetic resin having a peptide portion only one kind may be used, or two or more kinds may be used in combination.
  • the peptide portion is preferably composed of 3 or more amino acids, more preferably composed of 4 or more amino acids, further preferably composed of 5 or more amino acids, and 10 or less. It is preferably composed of amino acids, and more preferably composed of 6 or less amino acids.
  • the number of amino acids constituting the peptide portion is not less than the above lower limit and not more than the above upper limit, the adhesiveness to the cells after seeding can be further enhanced, and the cell proliferation rate can be further enhanced.
  • the peptide portion preferably has a cell-adhesive amino acid sequence.
  • the cell adhesion amino acid sequence refers to an amino acid sequence whose cell adhesion activity has been confirmed by the phage display method, the Sepharose beads method, or the plate coating method.
  • the phage display method for example, the method described in "The Journal of Cell Biology, Volume 130, Number 5, September 1995 1189-1196" can be used.
  • the Sepharose beads method for example, the method described in "Protein Nucleic Acid Enzyme Vol.45 No.15 (2000) 2477” can be used.
  • the plate coating method for example, the method described in "Protein Nucleic Acid Enzyme Vol. 45 No. 15 (2000) 2477” can be used.
  • cell-adhesive amino acid sequence examples include an RGD sequence (Arg-Gly-Asp), a YIGSR sequence (Tyr-Ile-Gly-Ser-Arg), and a PDSGR sequence (Pro-Asp-Ser-Gly-Arg).
  • HAV sequence His-Ala-Val
  • ADT sequence Alignment sequence
  • QAV sequence Gln-Ala-Val
  • LDV sequence Leu-Asp-Val
  • IDS sequence Ile-Asp-Ser
  • REDV sequence Arg-Glu-Asp-Val
  • IDAPS sequence Ile-Asp-Ala-Pro-Ser
  • KQAGDV sequence Lys-Gln-Ala-Gly-Asp-Val
  • TDE sequence Thr-Asp- Glu
  • the peptide portion may have only one type of the cell-adhesive amino acid sequence, or may have two or more types.
  • the cell-adherent amino acid sequence preferably has at least one of the cell-adherent amino acid sequences described above, and more preferably has at least an RGD sequence, a YIGSR sequence, or a PDSGR sequence, and the following formula (1) It is more preferable to have at least the RGD sequence represented by).
  • the adhesiveness to the cells after seeding can be further enhanced, and the cell proliferation rate can be further enhanced.
  • X represents Gly, Ala, Val, Ser, Thr, Phe, Met, Pro, or Asn.
  • the peptide portion may be linear or may have a cyclic peptide skeleton.
  • the cyclic peptide skeleton is a cyclic skeleton composed of a plurality of amino acids. From the viewpoint of more effectively exerting the effects of the present invention, the cyclic peptide skeleton is preferably composed of 4 or more amino acids, preferably 5 or more amino acids, and 10 or less. It is preferably composed of the amino acids of.
  • the content of the peptide portion is preferably 0.1 mol% or more, more preferably 1 mol% or more, still more preferably 5 mol% or more, and particularly preferably 10 mol% or more. ..
  • the content of the peptide portion is preferably 60 mol% or less, more preferably 50 mol% or less, still more preferably 35 mol% or less, and particularly preferably 25 mol% or less.
  • the content rate (mol%) of the peptide portion is the amount of substance of the peptide portion with respect to the total amount of substance of each structural unit constituting the synthetic resin having the peptide portion.
  • the content of the peptide portion can be measured by FT-IR or LC-MS.
  • the synthetic resin portion and the peptide portion are bonded via a linker. That is, the synthetic resin having a peptide portion is preferably a synthetic resin having a peptide portion and a linker portion. Only one type of the linker may be used, or two or more types may be used in combination.
  • the linker is preferably a compound having a functional group capable of condensing with the carboxyl group or amino group of the peptide.
  • the functional group capable of condensing with the carboxyl group or amino group of the peptide include a carboxyl group, a thiol group and an amino group.
  • the linker is preferably a compound having a carboxyl group.
  • the linker the vinyl compound described above can also be used.
  • Examples of the linker having a carboxyl group include (meth) acrylic acid and acrylamide containing a carboxyl group.
  • a carboxylic acid (carboxylic acid monomer) having a polymerizable unsaturated group as the linker having a carboxyl group, the carboxylic acid monomer can be polymerized by graft polymerization when the linker and the synthetic resin are reacted. Therefore, the number of carboxyl groups that can be reacted with the peptide can be increased.
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture may contain a polymer other than the synthetic resin described above.
  • the polymer include polyvinylpyrrolidone, polystyrene, ethylene / vinyl acetate copolymer, polyolefin resin, polyether resin, polyvinyl alcohol resin, polyester, epoxy resin, polyamide resin, polyimide resin, polyurethane resin, polycarbonate resin and the like.
  • the scaffold material for cell culture of the present invention comprises a base material.
  • a part of the surface of the base material constitutes a part where no convex portion is provided. Therefore, it is preferable that the base material is made of a material having a smaller number of cells adhering to each unit area than the convex portion.
  • Examples of the material of the base material include resin, metal and inorganic materials.
  • Examples of the resin include polystyrene, polyethylene, polypropylene, polycarbonate, polyester, polyisoprene, cycloolefin polymer, polyimide, polyamide, polyamideimide, (meth) acrylic resin, epoxy resin, silicone and the like.
  • Examples of the metal include stainless steel, copper, iron, nickel, aluminum, titanium, gold, silver, platinum and the like.
  • Examples of the inorganic material include silicon oxide (glass), aluminum oxide, titanium oxide, zirconium oxide, iron oxide, silicon nitride and the like.
  • the convex portion of the scaffold material for cell culture according to the present invention contains the synthetic resin X.
  • the content of the synthetic resin X is preferably 90% by weight or more in 100% by weight of the convex portion of the scaffold material for cell culture. It is more preferably 95% by weight or more, further preferably 97.5% by weight or more, particularly preferably 99% by weight or more, and most preferably 100% by weight (total amount). Therefore, it is most preferable that the convex portion of the scaffolding material for cell culture is the synthetic resin X.
  • the content of the synthetic resin X is at least the above lower limit, the effect of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the content of the polyvinyl alcohol derivative in 100% by weight of the synthetic resin X is preferably 90% by weight or more, more preferably 95% by weight or more, still more preferably. It is 97.5% by weight or more, particularly preferably 99% by weight or more, and most preferably 100% by weight (total amount). Therefore, the synthetic resin X contained in the convex portion is most preferably a polyvinyl alcohol derivative.
  • the content of the polyvinyl alcohol derivative is at least the above lower limit, the effect of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the content of the poly (meth) acrylic resin in 100% by weight of the synthetic resin X is preferably 90% by weight or more, more preferably 95% by weight. % Or more, more preferably 97.5% by weight or more, particularly preferably 99% by weight or more, and most preferably 100% by weight (total amount). Therefore, the synthetic resin X contained in the convex portion is most preferably a poly (meth) acrylic resin.
  • the content of the poly (meth) acrylic resin is at least the above lower limit, the effect of the present invention can be exhibited even more effectively.
  • the convex portion of the cell culture scaffold material may contain a component other than the synthetic resin X.
  • the components other than the synthetic resin X include polysaccharides, celluloses, synthetic peptides and the like.
  • the content of the component in 100% by weight of the convex portion of the scaffold material for cell culture is preferably 10% by weight or less, more preferably 5% by weight or less, still more preferably 2.5% by weight or less, and particularly preferably 1. It is 0% by weight or less, most preferably 0% by weight (not contained). Therefore, it is most preferable that the convex portion of the scaffold material for cell culture does not contain any component other than the synthetic resin X.
  • the cell culture scaffold material preferably does not contain animal-derived raw materials. By not containing animal-derived raw materials, it is possible to provide a scaffold material for cell culture that is highly safe and has little variation in quality during production.
  • substantially free of animal-derived raw materials means that the animal-derived raw materials in the cell culture scaffold material are 3% by weight or less.
  • the animal-derived raw material in the cell culture scaffold material is preferably 1% by weight or less, and most preferably 0% by weight. That is, it is most preferable that the scaffold material for cell culture of the present invention does not contain any animal-derived raw materials.
  • the animal-derived raw material in the convex portion is preferably 3% by weight or less, more preferably 1% by weight or less, and most preferably 0% by weight. preferable. That is, it is most preferable that the convex portion of the scaffold material for cell culture does not contain any animal-derived raw materials.
  • the cell culture scaffold material according to the present invention is used for culturing cells.
  • the cell culture scaffold material according to the present invention is used as a scaffold for the cells when culturing the cells.
  • Examples of the above cells include animal cells such as humans, mice, rats, pigs, cows and monkeys.
  • Examples of the cells include somatic cells and the like, and examples thereof include stem cells, progenitor cells and mature cells.
  • the somatic cells may be cancer cells.
  • stem cells examples include mesenchymal stem cells (MSCs), iPS cells, ES cells, Muse cells, embryonic cancer cells, embryonic reproductive stem cells, and mGS cells.
  • Examples of the mature cells include nerve cells, cardiomyocytes, retinal cells, hepatocytes and the like.
  • FIG. 3 is a schematic front sectional view showing a cell culture container according to an embodiment of the present invention.
  • the cell culture container 11 includes a container body 12.
  • the bottom of the container body 12 is used as the base material 2 of the cell culture scaffolding material 1. Therefore, the convex portion 3 is provided on the surface 12a of the container body 12.
  • the cells can be cultured in a plane by adding a liquid medium to the cell culture container 11 and seeding the cells on the surface of the cell culture scaffold material 1.
  • the container body may be provided with a second container body such as a cover glass on the bottom surface of the first container body.
  • the first container body and the second container body may be separable.
  • at least a part of the second container body may be the base material of the scaffold material for cell culture.
  • a conventionally known container body can be used as the container body.
  • the shape and size of the container body are not particularly limited.
  • Examples of the container body include a cell culture plate having one or more wells (holes), a cell culture flask, and the like.
  • the number of wells in the plate is not particularly limited.
  • the number of wells is not particularly limited, and examples thereof include 2, 4, 6, 12, 24, 48, 96, and 384.
  • the shape of the well is not particularly limited, and examples thereof include a perfect circle, an ellipse, a triangle, a square, a rectangle, and a pentagon.
  • the shape of the bottom surface of the well is not particularly limited, and examples thereof include a flat bottom and a round bottom.
  • the material of the container body is not particularly limited, and examples thereof include resin, metal, and inorganic materials.
  • the resin include polystyrene, polyethylene, polypropylene, polycarbonate, polyester, polyisoprene, cycloolefin polymer, polyimide, polyamide, polyamideimide, (meth) acrylic resin, epoxy resin, silicone and the like.
  • the metal include stainless steel, copper, iron, nickel, aluminum, titanium, gold, silver, platinum and the like.
  • the inorganic material include silicon oxide (glass), aluminum oxide, titanium oxide, zirconium oxide, iron oxide, silicon nitride and the like. In this case, since the base material of the scaffold material for cell culture also becomes a part of the container body, the same material as the material constituting the container body can be used.
  • the following synthetic resins X1 to X9 were synthesized as raw materials for the scaffold material for cell culture.
  • the content of structural units in the obtained synthetic resin was measured by 1 H-NMR (nuclear magnetic resonance spectrum) after dissolving the synthetic resin in DMSO-D6 (dimethylsulfoxide).
  • n-butyraldehyde was added to precipitate a white particulate polyvinyl butyral resin.
  • 35% by weight hydrochloric acid was added so that the hydrochloric acid concentration became 1.8% by weight, and then the mixture was heated to 50 ° C. and maintained at 50 ° C. for 2 hours. Then, the solution was cooled and neutralized, and then the polyvinyl butyral resin was washed with water and dried to obtain a synthetic resin X1 which is a polyvinyl butyral resin.
  • the obtained polyvinyl butyral resin (synthetic resin X1) had an average degree of polymerization of 800, a hydroxyl group amount of 20 mol%, an amine group amount of 1 mol%, an acetylation degree of 1 mol%, and an acetalization degree (butyralization degree) of 78 mol%. there were.
  • ⁇ Synthetic resin X2> A polyvinyl butyral resin was obtained in the same manner as the synthetic resin X1 except that a polyvinyl alcohol having an average degree of polymerization of 300 and a saponification degree of 99 mol% was used instead of the amine-modified polyvinyl alcohol. 20 parts by weight of the obtained polyvinyl butyral resin was dissolved in 80 parts by weight of tetrahydrofuran (THF), and 2 parts by weight of dimethylaminoacrylamide was added.
  • THF tetrahydrofuran
  • Irgacure184 manufactured by IGM Resins BV was dissolved as an initiator and irradiated with UV for 20 minutes in a UV polymerization tester to obtain a synthetic resin X2 having the configuration shown in Table 1. ..
  • Synthetic resin X3 A polyvinyl butyral resin (synthetic resin X3) having the constitution shown in Table 1 was obtained in the same manner as the synthetic resin X2 except that the amount of dimethylaminoacrylamide added was changed from 2 parts by weight to 8 parts by weight.
  • Table 1 shows the same as that of the synthetic resin X2, except that polyvinyl alcohol having an average degree of polymerization of 250 and a saponification degree of 99 mol% was used, and 10 parts by weight of diethylaminoacrylamide was used instead of dimethylaminoacrylamide.
  • a polyvinyl acetal resin (polyvinyl butyral resin) was obtained in the same manner as the synthetic resin X1 except that a polyvinyl alcohol having an average degree of polymerization of 250 and a saponification degree of 98 mol% was used instead of the amine-modified polyvinyl alcohol.
  • linker 90 parts by weight of the obtained polyvinyl acetal resin and 15 parts by weight of acrylic acid (linker) are dissolved in 300 parts by weight of THF and reacted in the presence of a photoradical polymerization initiator for 20 minutes under ultraviolet irradiation to obtain a polyvinyl acetal resin.
  • a linker was introduced by graft-copolymerizing with acrylic acid.
  • Peptide formation As a peptide, a linear peptide having an amino acid sequence of Gly-Arg-Gly-Asp-Ser (five amino acid residues, described as GRGDS in the table) was prepared. 10 parts by weight of this peptide and 10 parts by weight of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (condensing agent) were added to 80 parts by weight of methanol containing neither calcium nor magnesium, and the peptide was added. A containing solution was prepared.
  • Cyclic peptide having an amino acid sequence of Arg-Gly-Asp-Phe-Lys (5 amino acid residues, forming a cyclic skeleton by binding Arg and Lys, Phe is D form, in the table c-RGDfK Description) was prepared. 10 parts by weight of this peptide and 10 parts by weight of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (condensing agent) were added to 80 parts by weight of methanol containing neither calcium nor magnesium, and the peptide was added. A containing solution was prepared.
  • Poly (meth) acrylic acid ester resin (synthetic resin) by irradiating the coated material with light having a wavelength of 365 nm at an integrated light intensity of 2000 mJ / cm 2 using the UV conveyor device "ECS301G1" manufactured by Eye Graphics Co., Ltd. at 25 ° C. X9) was obtained.
  • Example 1 to 13 and Comparative Examples 1 to 2 In Examples 1, 2, 8 to 10 and Comparative Example 2, synthetic resin X1 was used. In Examples 3 to 7, synthetic resins X2 to X6 were used, respectively. In Examples 11 to 13, synthetic resins X7 to 9 were used, respectively.
  • each synthetic resin was dissolved in butanol at a concentration of 5 wt%.
  • the obtained solution was patterned in dots or lines on a polystyrene dish having a diameter of 35 mm using a dispenser, and then dried in an oven at 45 ° C. for 6 hours with a cell culture scaffold having a plurality of protrusions.
  • a cell culture container having a bottom was prepared.
  • a dot-shaped pattern was prepared.
  • Dot-shaped patterns were similarly produced in Examples 3 to 7.
  • a spiral pattern was prepared as a line-shaped pattern.
  • each synthetic resin was dissolved in butanol at a concentration of 0.5 wt%.
  • the obtained solution was patterned in dots on a polystyrene dish having a diameter of 35 mm using a dispenser, then allowed to stand at room temperature for 30 minutes, dried in an oven at 45 ° C. for 6 hours, and cells having a plurality of protrusions.
  • a cell culture container having a bottom made of a culture scaffold material was prepared.
  • a convex portion having a wall portion on the peripheral edge portion was obtained.
  • Comparative Example 1 the polystyrene dish itself was used as a cell culture container.
  • Comparative Example 2 the synthetic resin X1 was dissolved in butanol at a concentration of 5 wt%. The obtained 40 ⁇ L was cast into a polystyrene dish and dried in an oven at 45 ° C. for 6 hours to form a flat film.
  • the average bottom area of the convex portions is the average value of the bottom areas of any 10 convex portions.
  • the average line width of the convex portion is an average value of the line widths of any 10 points separated from each other by 10 ⁇ m or more.
  • the average height of the convex portion of the portion located at the center of the convex portion in the plan view is the average height of the convex portion at the central position of any 10 convex portions in the plan view when the convex portion is dot-shaped. It is the average value of the heights, and is the average value of the heights of the convex portions at the central positions of the line widths of 10 points separated from each other by 10 ⁇ m or more when the convex portions are line-shaped.
  • the average height of the wall portion is the average value of the height of the wall portion of any 10 convex portions.
  • Ratio of protein adsorption amount For each cell culture container, 40 ⁇ L of FITC-labeled bovine serum albumin (manufactured by Cosmo Bio Co., Ltd.) was cast in 40 ⁇ L, allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour, and then the polystyrene dish was washed with pure water. It was dried in an oven at 45 ° C. for 1 hour. In addition, 1 ⁇ L of FITC-labeled bovine serum albumin of 0.005 mg / mL, 0.02 mg / mL, and 0.05 mg / mL was dispensed into a polystyrene dish for calibration of the amount of adsorbed protein, and 1 in an oven at 45 ° C.
  • Each cell culture vessel was immersed in water at 25 ° C. for 24 hours.
  • the cell culture container was allowed to stand on a Kim towel for 10 minutes with the opening of the cell culture container after immersion facing down, and water adhering to the cell culture container was removed.
  • the weight of the polystyrene dish was subtracted from the weight of the cell culture container before immersion to obtain the weight of the sample before immersion.
  • the weight of the polystyrene dish was subtracted from the weight of the cell culture vessel after immersion to obtain the weight of the sample after immersion.
  • the water swelling rate (sample weight after immersion-sample weight before immersion) / (sample weight before immersion) ⁇ 100 (%) was calculated.
  • the weight of the polystyrene dish itself does not change before and after immersion.
  • TeSR E8 medium manufactured by STEM CELL
  • ROCK-Inhibitor Y27632
  • phosphate buffered saline 1 mL was added to the obtained cell culture vessel and allowed to stand in an incubator at 37 ° C. for 1 hour, and then the phosphate buffered saline was removed from the cell culture vessel.
  • Colonies of h-iPS cells 253G1 in a confluent state were placed on a dish having a diameter of 35 mm, 1 mL of 0.5 mM ethylenediamine / phosphate buffer solution was added, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 2 minutes. After removing the ethylenediamine / phosphate buffer solution, pipetting with 1 mL of TeSR E8 medium was carried out to obtain a cell mass crushed to a size of 50 ⁇ m to 200 ⁇ m. The resulting cell mass (cell number 0.2 ⁇ 10 5 cells) were clamped seeded into a container for said cell culture.
  • the cell culture vessel after cell culture was observed using a hybrid microscope, and the uniformity of the cell mass formed on the scaffold material was evaluated.
  • the cell adhesion was evaluated by observing the presence or absence of cell mass adhesion with a phase-contrast microscope.
  • FIG. 6 is a diagram showing a micrograph when cells are seeded in the cell culture container prepared in Example 1.
  • FIG. 7 is a diagram showing a micrograph after culturing cells for 5 days in the cell culture container prepared in Example 1.
  • Example 1 it can be seen that the cell mass corresponding to the scaffold pattern can be easily and efficiently formed. Similarly, the observations of Examples 2 to 13 were also carried out, and it was confirmed that the cell mass corresponding to the scaffold pattern could be easily and efficiently formed.
  • Dispersity is less than 0.001 B ... Dispersity is 0.001 or more and less than 0.002 C . Dispersity is 0.002 or more and less than 0.003 D ... Dispersity is 0.003 or more

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Abstract

容易にかつ効率よく細胞塊を形成させることができる、細胞培養用足場材を提供する。　本発明に係る細胞培養用足場材は、基材と、前記基材上にドット状又はライン状にパターニングされることにより構成された凸部とを備え、前記凸部は、合成樹脂を含み、前記合成樹脂は、少なくともポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含み、前記凸部は、細胞接着性を有し、平面視において前記凸部の中央に位置する部分の前記凸部の平均高さが１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である。

Description

細胞培養用足場材及び細胞培養用容器
　本発明は、細胞を培養するために用いられる細胞培養用足場材に関する。また、本発明は、上記細胞培養用足場材を用いた細胞培養用容器に関する。
　近年、細胞医薬や幹細胞を用いた次世代医療が注目を集めている。なかでも、ヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ）や、ヒト人工多能性幹細胞（ｈｉＰＳＣ）などのヒト多能性幹細胞（ｈＰＳＣ）、あるいはそれらから誘導される分化細胞は、創薬や再生医療への応用が期待されている。このような応用を果たすには、多能性幹細胞や、分化細胞を安全に、かつ再現性よく培養し、増殖させることが必要となる。
　これらの幹細胞は、幹細胞の集団が凝集・接着することによって、スフェロイドとよばれる細胞塊を形成することができる。スフェロイドは、生体内での三次元構造により近い状態で培養または維持できると考えられており、それが通常の平面接着培養と比べ優れた特性を示すことが知られている。実際に、がん細胞を用いた抗がん剤スクリーニング等にスフェロイドが利用されている。
　例えば、下記の特許文献１では、１つの培養面に複数のマイクロウェルが形成された培養基材において、マイクロウェルの深さを深くしすぎることなく、マイクロウェルからのスフェロイドの移動を抑制し、均一な大きさのスフェロイドを形成することができる細胞培養基材が開示されている。
国際公開第２０１８／１２３６６３号公報
　しかしながら、特許文献１に記載の細胞培養基材は、培養面が細胞低接着面（細胞が接着しない又は接着しづらい面）となっていることから、細胞の培養効率が低いという課題がある。また、培地交換等の振動により培養面から細胞塊が剥がれやすく、細胞塊の形状や大きさを制御することが難しいという課題もある。
　本発明の目的は、容易にかつ効率よく細胞塊を形成させることができる、細胞培養用足場材及び細胞培養用容器を提供することにある。
　本発明に係る細胞培養用足場材は、基材と、前記基材上にドット状又はライン状にパターニングされることにより構成された凸部とを備え、前記凸部は、合成樹脂を含み、前記合成樹脂は、少なくともポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含み、前記凸部は、細胞接着性を有し、前記凸部は、平面視において前記凸部の中央に位置する部分の平均高さが１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である。
　本発明に係る細胞培養用足場材のある特定の局面では、前記凸部の前記凸部が設けられていない部分に対するタンパク吸着量の比（凸部／凸部が設けられていない部分）が、２以上である。
　本発明に係る細胞培養用足場材の他の特定の局面では、前記凸部は、前記基材上にドット状にパターニングされることにより構成されており、前記凸部は、平均底面積が０．００５ｍｍ２以上、５ｍｍ２以下である。
　本発明に係る細胞培養用足場材のさらに他の特定の局面では、前記凸部は、周縁部に壁部を有する。
　本発明に係る細胞培養用足場材のさらに他の特定の局面では、ナノインデンテーション法により測定した、平面視において前記凸部の中央の位置での前記凸部の２５℃における弾性率が１ＧＰａ以上である。
　本発明に係る細胞培養用足場材のさらに特定の局面では、前記合成樹脂は、構成単位中にブレンステッド塩基性基を０．２モル％以上、２０モル％以下で含む。
　本発明に係る細胞培養用足場材のさらに特定の局面では、前記凸部の水膨潤率が５０％以下である。
　本発明に係る細胞培養用足場材のさらに特定の局面では、前記凸部は、表面にペプチド部を有する。
　本発明に係る細胞培養用容器は、細胞の培養領域の少なくとも一部に本発明に従って構成される細胞培養用足場材を備える。
　本発明によれば、容易にかつ効率よく細胞塊を形成させることができる、細胞培養用足場材及び細胞培養用容器を提供することができる。
図１は、本発明の一実施形態に係る細胞培養用足場材を示す模式的平面図である。 図２（ａ）は、周縁部に壁部を有する凸部の周辺を拡大して示す模式的平面図であり、図２（ｂ）は、周縁部に壁部を有する凸部の周辺を拡大して示す模式的正面断面図である。 図３は、本発明の一実施形態に係る細胞培養用容器を示す模式的正面断面図である。 図４は、実施例１で作製した細胞培養用足場材における凸部のパターンを示す写真である。 図５は、実施例２で作製した細胞培養用足場材における凸部のパターンを示す写真である。 図６は、実施例１で作製した細胞培養用容器に細胞を播種したときの顕微鏡写真である。 図７は、実施例１で作製した細胞培養用容器で細胞を５日間培養した後の顕微鏡写真である。
　以下、図面を参照しつつ、本発明の具体的な実施形態を説明することにより、本発明を明らかにする。
　本発明の細胞培養用足場材は、基材と、上記基材上にドット状又はライン状にパターニングされることにより構成された凸部とを備える足場材（ｓｃａｆｆｏｌｄ）である。本発明の細胞培養用足場材では、上記凸部は、合成樹脂を含み、該合成樹脂は、少なくともポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含む。本発明の細胞培養用足場材では、上記凸部は、細胞接着性を有する。本発明の細胞培養用足場材では、上記凸部は、平面視において上記凸部の中央に位置する部分の平均高さが１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である。
　本発明の細胞培養用足場材は、上記の構成を備えるので、容易にかつ効率よく細胞塊を形成させることができる。
　従来の微細加工技術によりパターン化された凹部に設けられた細胞培養空間では、細胞の培養効率が低く、容易にかつ効率よく細胞塊を形成させることが難しいという問題がある。
　本発明者らは、細胞接着性を有する凸部に着目し、特に凸部の特定の位置での平均高さを１０ｎｍ以上、１０μｍ以下とすることにより、容易にかつ効率よく細胞塊が形成し得ることを見出した。
　具体的に、本発明の細胞培養用足場材では、播種された細胞が凸部の上に集合し、細胞塊が形成される。この際、凸部の形状に沿って、細胞塊を形成させることができる。従って、凸部の大きさや形状を制御することにより、細胞塊の形状や大きさを容易に制御することができる。
　また、本発明の細胞培養用足場材では、凸部と凸部が設けられていない部分との双方に細胞を播種することができる。特に、凸部が設けられていない部分に播種された細胞については、遊走性のよい細胞だけを、凸部の上に集合させることができる。そのため、品質のよい細胞だけを選別することができ、品質のよい細胞塊を効率よく得ることができる。また、凸部のみに選択的に細胞を播種しなくてもよいことから、容易にかつ効率よく細胞塊を形成することができる。
　従って、本発明の細胞培養用足場材によれば、容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさを容易に制御することができる。
　また、本発明においては、合成樹脂を用いることができるので、天然高分子材料を用いた足場材と比べて、操作性がよく、安価であり、ロット間のばらつきが小さく、かつ安全性に優れている。
　以下、図１を参照して、ドット状にパターニングされることにより構成されている凸部を備える、細胞培養用足場材の一例としての模式的平面図について説明する。
　図１に示す細胞培養用足場材１は、基材２と、基材２上に設けられた複数の凸部３とを備える。複数の凸部３は、合成樹脂を含み、かつ細胞接着性を有している。また、基材２上においては、凸部が設けられていない部分４も設けられている。なお、本実施形態において、凸部が設けられていない部分４と比較して、複数の凸部３は単位面積当たりに接着する細胞数が多くなっている。
　また、細胞培養用足場材１において、凸部３は、ドット状にパターニングされることにより構成されている。凸部３の平面形状は、略円状である。また、凸部３は、平面視において凸部３の中央に位置する部分の平均高さが、１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である。
　よって、細胞培養用足場材１では、容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさを容易に制御することができる。
　なお、上記実施形態では、凸部の平面形状が略円状であったが、凸部の平面形状は略矩形状や略三角形状であってもよく、特に限定されない。また、複数の凸部のうちの一部又は全部が、隣り合うドットが連なることにより構成されていてもよい。
　以下、本発明の細胞培養用足場材の詳細を更に説明する。
　［凸部］
　本発明の細胞培養用足場材は、基材上に配置された凸部を備える。本発明の細胞培養用足場材は、基材と、上記基材上に設けられたドット状の凸部又はライン状の凸部とを備える。上記凸部は、基材上にドット状又はライン状にパターニングされることにより構成されている。凸部が基材上にドット状又はライン状に配置されていることにより、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。上記凸部は、基材上にドット状にパターニングされることにより構成されていてもよく、基材上にライン状にパターニングされることにより構成されていてもよく、基材上にドット状とライン状とにパターニングされることにより構成されていてもよい。
　細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御する観点からは、凸部は、ドット状にパターニングされることにより構成されていることが好ましい。上記細胞培養用足場材は、ドット状にパターニングされることにより構成されている凸部を少なくとも備えることが好ましい。
　凸部の数は、単数であってもよいし、複数であってもよい。凸部の数は、例えば、１個～１５００個とすることができる。凸部がドット状にパターニングされることにより構成されている場合に、凸部の数は、好ましくは１個以上、より好ましくは５個以上、更に好ましくは１０個以上、好ましくは１５００個以下、より好ましくは１０００個以下、更に好ましくは５００個以下である。上記凸部の数が上記下限以上及び上記上限以下であると、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。凸部がライン状にパターニングされることにより構成されている場合に、凸部の数は、１個であってもよく、２個以上であってもよい。
　上記凸部は、平面視において上記凸部の中央に位置する部分の平均高さが、１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である。上記凸部は、平面視において上記凸部の中央に位置する部分の平均高さが、好ましくは５０ｎｍ以上、より好ましくは１００ｎｍ以上、好ましくは５μｍ以下、より好ましくは２μｍ以下、さらに好ましくは１μｍ以下である。上記平均高さが上記範囲内にある場合、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の高さは、ハイブリッドレーザーマイクロスコープ等により測定することができる。平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さは、平面視において凸部の中央の位置での凸部の高さの平均値である。平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さとは、基材の表面（上面）から、平面視において凸部の中央の位置までの平均高さである。上記平均高さは、該凸部がドット状である場合に、ドット状である凸部を平面視したときの平面形状の中央の位置における平均高さである。ドット状である凸部を平面視したときの平面形状が円形状又は楕円形状である場合には、平面視において凸部の中央の位置とは、該円又は該楕円の中心を意味する。ドット状である凸部を平面視したときの平面形状が多角形状等の形状である場合には、平面視において凸部の中央の位置とは、該多角形等の重心を意味する。上記平均高さは、該凸部がライン状である場合に、ライン状である凸部の線幅の中央の位置における平均高さである。なお、凸部がドット状にパターニングされることにより構成された凸部であり、かつ該凸部の数が１個である場合は、上記平均高さは、平面視において該凸部の中央の位置での高さを意味する。凸部がドット状にパターニングされることにより構成された凸部であり、かつ該凸部の数が１０個未満である場合は、上記平均高さは、平面視においてこれらの凸部の中央の位置での高さの平均値を意味する。凸部がドット状にパターニングされることにより構成された凸部であり、かつ該凸部の数が１０個以上である場合は、上記平均高さは、平面視において任意の１０個の凸部の中央の位置での高さの平均値を意味する。また、凸部がライン状にパターニングされることにより構成された凸部である場合は、上記平均高さは、互いに１０μｍ以上離れた任意の１０箇所の線幅の中央での高さの平均値を意味する。なお、中央の位置は、完全に中央の位置でなくてもよく、測定誤差の範囲内で中央の位置から離れていてもよく、略中央の位置であってもよい。
　凸部がドット状にパターニングされることにより構成されている場合は、凸部の平均底面積が、好ましくは０．００５ｍｍ２以上、より好ましくは０．０２ｍｍ２以上、さらに好ましくは０．１ｍｍ２以上であり、好ましくは５ｍｍ２以下、より好ましくは３ｍｍ２以下、さらに好ましくは１．５ｍｍ２以下である。この場合、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　凸部の平均底面積は、凸部の数が１個である場合は、該凸部の底面積を意味する。凸部の平均底面積は、凸部の数が１０個未満である場合は、これらの凸部の底面積の平均値を意味する。凸部の平均底面積は、凸部の数が１０個以上である場合は、任意の１０個の凸部の底面積の平均値を意味する。
　また、凸部は、ライン状にパターニングされることにより構成されていてもよい。この場合、凸部は、直線状、折れ線状又は曲線状になるように構成されていてもよく、円状、又は渦巻き状となるように構成されていてもよい。
　凸部がライン状にパターニングされることにより構成されている場合は、凸部の平均線幅が、好ましくは５０μｍ以上、より好ましくは１００μｍ以上、好ましくは１．５ｍｍ以下、より好ましくは０．５ｍｍ以下である。この場合、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　凸部は、細胞接着性を有する。本発明において、「細胞接着性を有する凸部」とは、凸部が設けられていない部分と比較して、凸部の単位面積当たりに接着する細胞数が多いことを意味する。したがって、凸部は、基材よりも細胞接着性が高いことが好ましい。
　本発明において、凸部の凸部が設けられていない部分に対するタンパク吸着量の比（凸部／凸部が設けられていない部分）は、好ましくは１．５以上、より好ましくは２以上、好ましくは１５以下、より好ましくは１０以下である。この場合、凸部の細胞接着性をより一層高めることができ、より一層容易にかつ効率よく細胞塊を形成することができる。
　上記タンパク吸着量は、例えば、以下の方法により測定することができる。
　細胞培養用足場材に対し、ＦＩＴＣ標識されたウシ血清アルブミン（コスモ・バイオ社製）０．１ｍｇ／ｍＬを４０μＬキャストし３７℃で１時間静置した後、細胞培養用足場材を純水で洗浄し、４５℃のオーブン内で１時間乾燥する。また、吸着タンパク量の検量用として、ポリスチレン基材にそれぞれ０．００５ｍｇ／ｍＬ、０．０２ｍｇ／ｍＬ、０．０５ｍｇ／ｍＬのＦＩＴＣ標識されたウシ血清アルブミンを１μＬディスペンスし、４５℃のオーブン内で１時間乾燥する。細胞培養用足場材を蛍光顕微鏡を用いて撮影し、凸部の蛍光強度と凸部が設けられていない部分の蛍光強度とを求める。検量線用のポリスチレン基材を用いて得られた蛍光強度の直線近似値からタンパク吸着量に換算する。
　なお、タンパク吸着量の比は、凸部に含まれる合成樹脂において、アミノ基等のカチオン性官能基や、カルボキシル基等のアニオン性官能基の含有量を増やすことにより、高めることができる。
　本発明において、ナノインデンテーション法により測定した、平面視において凸部の中央の位置での凸部の２５℃における弾性率は、好ましくは１ＧＰａ以上、より好ましくは２ＧＰａ以上、好ましくは８ＧＰａ以下、より好ましくは６ＧＰａ以下である。凸部の弾性率が上記範囲内にある場合、凸部の細胞接着性をより一層高めることができ、より一層容易にかつ効率よく細胞塊を形成することができる。
　上記弾性率（表面弾性率）は、例えば、ナノインデンター（Ｈｙｓｉｔｒｏｎ，　Ｔｒｉｂｏｉｎｄｅｎｔｅｒ、ブルカー社製）を用いて測定することができる。圧子として、先端径Ｒ数１００ｎｍのＢｅｒｋｏｖｉｃｈ（三角錐型）圧子を用い、大気下、２５℃にて単一押し込み測定をして測定することができる。その押し込み深さは５０ｎｍとすることができる。なお、中央の位置は、完全に中央の位置でなくてもよく、測定誤差の範囲内で中央の位置から離れていてもよく、略中央の位置であってもよい。
　上記表面弾性率は、例えば、凸部に含まれる合成樹脂の分子量を大きくする、凸部に含まれる合成樹脂の架橋度を高める、凸部に含まれる合成樹脂に結晶性の分子構造を導入する等の方法により、大きくすることができる。
　本発明において、凸部の水膨潤率は、好ましくは５０％以下、より好ましくは４０％以下である。この場合、凸部の細胞接着性をより一層高めることができ、より一層容易にかつ効率よく細胞塊を形成することができる。なお、水膨潤率の下限値は特に限定されないが、例えば、０．５％とすることができる。また、水膨潤率は、例えば、以下のようにして測定することができる。
　基材及び細胞培養用足場材をそれぞれ用意し、各重量を測定する。細胞培養用足場材の重量から基材の重量を差し引いて、「浸漬前のサンプル重量」とする。また、基材及び細胞培養用足場材をそれぞれ、２５℃の水に２４時間浸漬する。浸漬後、基材及び細胞培養用足場材に付着している水を除去し、各重量を測定する。浸漬後の細胞培養用足場材の重量から浸漬後の基材の重量を差し引いて、「浸漬後のサンプル重量」とする。水膨潤率＝（浸漬後のサンプル重量－浸漬前のサンプル重量）／（浸漬前のサンプル重量）×１００（％）を算出する。
　上記水膨潤率は、例えば、凸部に含まれる合成樹脂の疎水性官能基を増やすこと、数平均分子量を下げること等により、小さくできる。
　凸部は、周縁部に壁部を有することが好ましい。この場合には、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。なお、壁部は凸部の一部である。したがって、凸部が壁部を有する場合には、上述した凸部の底面積及び線幅等は、壁部を含む凸部の底面積及び線幅等である。
　図２（ａ）は、周縁部に壁部を有する凸部の周辺を拡大して示す模式的平面図であり、図２（ｂ）は、周縁部に壁部を有する凸部の周辺を拡大して示す模式的正面断面図である。図２（ｂ）は、図２（ａ）中のＩ－Ｉ線に沿う断面図である。図２では、１個の凸部部分が拡大して示されている。
　図２では、基材２Ａの表面上に、凸部３Ａが配置されている。凸部３Ａは、周縁部に壁部３１Ａを有する。凸部３Ａは、壁部３１Ａと、壁部３１Ａを有さない部分とを有する。凸部３Ａは、平面視において、円状である。平面視において凸部３Ａの中央の位置は、該円の中心である。壁部３１Ａの上面と、壁部３１Ａを有さない部分の上面とにより、凸部３Ａの上面が構成されている。壁部３１Ａの高さＨｂは、壁部３１Ａを有さない部分の高さよりも高い。壁部３１Ａの高さＨｂは、平面視において凸部３Ａの中央の位置での凸部３Ａの高さＨａよりも高い。壁部の高さＨｂは、平面視における壁部の幅方向の中央の位置での凸部の高さであり、壁部の厚み方向の中央の位置での凸部の高さである。壁部の高さＨｂは、基材２Ａの表面（上面）から、壁部３１Ａの上面の幅方向の中央の位置までの距離である。凸部３Ａは、厚みＴｂの壁部３１Ａを有する。壁部の厚みＴｂは、平面視における壁部の幅に相当する。壁部３１Ａと、壁部３１Ａを有さない部分とは同一の材料により形成されている。壁部３１Ａを有さない部分は、壁部３１Ａに囲まれている。
　壁部の平均高さは、好ましくは１００ｎｍ以上、より好ましくは３００ｎｍ以上、好ましくは５０μｍ以下、より好ましくは２０μｍ以下である。壁部の平均高さが上記下限以上及び上記上限以下であると、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　壁部の平均厚みは、好ましくは５０ｎｍ以上、より好ましくは１００ｎｍ以上、好ましくは５μｍ以下、より好ましくは１μｍ以下である。上記壁部の平均厚みが上記下限以上及び上記上限以下であると、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　壁部の平均高さは、平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さよりも高いことが好ましい。壁部の平均高さの、平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さに対する比（壁部の平均高さ／平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さ）は、好ましくは２以上、より好ましくは４以上、好ましくは１００以下、より好ましくは５０以下である。上記比が上記下限以上及び上記上限以下であると、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　壁部の平均高さ及び壁部の平均厚みはそれぞれ、壁部を有する凸部の数が１個である場合は、該凸部における壁部の高さ及び壁部の厚みを意味する。壁部の平均高さ及び壁部の平均厚みは、壁部を有する凸部の数が１０個未満である場合は、これらの凸部における壁部の高さ及び壁部の厚みの平均値を意味する。壁部の平均高さ及び壁部の平均厚みは、壁部を有する凸部の数が１０個以上である場合は、任意の１０個の凸部における壁部の高さ及び壁部の厚みの平均値を意味する。
　壁部の形成方法としては、特に限定されないが、例えば、モールドを用いた転写成形による方法、精密機械切削による方法、ケミカルエッチングによる方法等が挙げられる。
　壁部を有する凸部の簡易的な製造方法としては、例えば、次のような方法が挙げられる。まず、凸部を形成するための合成樹脂を含む溶液を準備する。次に、上記溶液の微小液滴を基材の上に配置し、溶媒を徐々に揮発させる。合成樹脂を低濃度で含有する溶液の微小液滴を徐々に乾燥させると、周縁部に壁部を有する凸部が基材上に形成される。
　（合成樹脂）
　本発明の細胞培養用足場材の凸部は、合成樹脂（以下、合成樹脂Ｘと記載することがある）を含む。合成樹脂Ｘは、凸部に含まれる合成樹脂である。なお、本明細書において、「構造単位」とは、合成樹脂を構成するモノマーの繰り返し単位をいう。なお、合成樹脂がグラフト鎖を有する場合は、そのグラフト鎖を構成するモノマーの繰り返し単位を含む。
　合成樹脂Ｘは、構成単位中にブレンステッド塩基性基を、０．２モル％以上で含むことが好ましく、２モル％以上で含むことがより好ましく、３０モル％以下で含むことが好ましく、２０モル％以下で含むことがより好ましく、１５モル％以下で含むことがさらに好ましい。この場合には、本発明の効果をより一層効果的に発揮することができる。なお、ブレンステッド塩基性基等については、後述する。
　合成樹脂Ｘは、少なくともポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含む。合成樹脂Ｘが、ポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含むことにより、細胞との接着性を高めることができ、また、液体培地中において細胞培養用足場材の膨潤がより抑えられる。合成樹脂Ｘは、ポリビニルアルコール誘導体を含んでいてもよく、ポリ（メタ）アクリル樹脂を含んでいてもよく、ポリビニルアルコール誘導体とポリ（メタ）アクリル樹脂との双方を含んでいてもよい。上記ポリビニルアルコール誘導体及びポリ（メタ）アクリル樹脂は、それぞれ１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記ポリビニルアルコール誘導体は、ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂であることが好ましい。上記ポリ（メタ）アクリル樹脂は、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する合成樹脂であることが好ましい。
　＜ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂＞
　細胞培養用足場材の凸部は、ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂を含むことが好ましい。上記合成樹脂Ｘは、ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂を含むことが好ましい。
　本明細書において、「ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂」を、「ポリビニルアセタール樹脂Ｘ」と記載することがある。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、側鎖にアセタール基と、アセチル基と、水酸基とを有することが好ましい。ただし、ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、例えば、アセチル基を有しなくてもよい。例えば、ポリビニルアセタール樹脂Ｘのアセチル基の全てが、後述するリンカーと結合することによって、ポリビニルアセタール樹脂Ｘがアセチル基を有していなくてもよい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘを合成する際には、ポリビニルアルコールをアルデヒドによりアセタール化する工程を少なくとも備える。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘを得るためのポリビニルアルコールのアセタール化に用いられるアルデヒドは、特に限定されない。アルデヒドとしては、例えば、炭素数が１～１０のアルデヒドが挙げられる。アルデヒドは、鎖状脂肪族基、環状脂肪族基又は芳香族基を有していてもよい。アルデヒドは、鎖状アルデヒドであってもよく、環状アルデヒドであってもよい。
　上記アルデヒドとしては、ホルムアルデヒド、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ブチルアルデヒド、ペンタナール、ヘキサナール、ヘプタナール、オクタナール、ノナナール、デカナール、アクロレイン、ベンズアルデヒド、シンナムアルデヒド、ペリルアルデヒド、ホルミルピリジン、ホルミルイミダゾール、ホルミルピロール、ホルミルピペリジン、ホルミルトリアゾール、ホルミルテトラゾール、ホルミルインドール、ホルミルイソインドール、ホルミルプリン、ホルミルベンゾイミダゾール、ホルミルベンゾトリアゾール、ホルミルキノリン、ホルミルイソキノリン、ホルミルキノキサリン、ホルミルシンノリン、ホルミルプテリジン、ホルミルフラン、ホルミルオキソラン、ホルミルオキサン、ホルミルチオフェン、ホルミルチオラン、ホルミルチアン、ホルミルアデニン、ホルミルグアニン、ホルミルシトシン、ホルミルチミン、及びホルミルウラシル等が挙げられる。上記アルデヒドは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　アルデヒドは、ホルムアルデヒド、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ブチルアルデヒド、又はペンタナールであることが好ましく、ブチルアルデヒドであることがより好ましい。したがって、ポリビニルアセタール骨格は、ポリビニルブチラール骨格であることが好ましい。ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、ポリビニルブチラール骨格を有する合成樹脂であることが好ましく、ポリビニルブチラール樹脂であることがより好ましい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘには、ビニル化合物が共重合されていてもよい。すなわち、ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、ポリビニルアセタール樹脂の構造単位とビニル化合物との共重合体であってもよい。本発明では、ビニル化合物と共重合したポリビニルアセタール樹脂も、ポリビニルアセタール樹脂というものとする。
　ビニル化合物は、ビニル基（Ｈ２Ｃ＝ＣＨ－）を有する化合物である。ビニル化合物は、ビニル基を有する構造単位を有する重合体であってもよい。
　上記共重合体は、ポリビニルアセタール樹脂とビニル化合物とのブロック共重合体であってもよく、ポリビニルアセタール樹脂にビニル化合物がグラフトしたグラフト共重合体であってもよい。上記共重合体は、グラフト共重合体であることが好ましい。
　上記共重合体は、例えば、以下の（１）～（３）の方法により合成することができる。（１）ビニル化合物が共重合されたポリビニルアルコールを用いてポリビニルアセタール樹脂を合成する方法。（２）ポリビニルアルコールと、ビニル化合物が共重合されたポリビニルアルコールとを用いてポリビニルアセタール樹脂を合成する方法。（３）グラフト共重合させる前のポリビニルアセタール樹脂にビニル化合物をグラフト共重合させる方法。
　ビニル化合物としては、エチレン、アリルアミン、ビニルピロリドン、ビニルイミダゾール、無水マレイン酸、マレイミド、イタコン酸、（メタ）アクリル酸、ビニルアミン及、又は（メタ）アクリル酸エステル等が挙げられる。これらのビニル化合物は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　細胞の接着性をより一層高める観点からは、ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、ブレンステッド塩基性基又はブレンステッド酸性基を有することが好ましく、ブレンステッド塩基性基を有することがより好ましい。すなわち、ポリビニルアセタール樹脂Ｘの一部がブレンステッド塩基性基又はブレンステッド酸性基により変性されていることが好ましく、ポリビニルアセタール樹脂Ｘの一部がブレンステッド塩基性基で変性されていることがより好ましい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、一部にブレンステッド塩基性基又はブレンステッド酸性基を有することが好ましく、ブレンステッド塩基性基を有することがより好ましい。その場合には、細胞の接着性をより一層高めることができる。その場合、ブレンステッド塩基性基又はブレンステッド酸性基を有するモノマーが共重合されていてもよく、グラフト共重合されていてもよい。上記ブレンステッド塩基性基における変性度は、好ましくは、０．２モル％以上、より好ましくは２モル％以上、好ましくは３０モル％以下、より好ましくは２０モル％以下、更に好ましくは１５モル％以下である。ブレンステッド塩基性基による変性度が上記特定の範囲内であれば、細胞の接着性をより一層高めることができる。
　ブレンステッド塩基性基は、水素イオンＨ＋を他の物質から受け取ることができる官能基の総称である。上記ブレンステッド塩基性基としては、イミン構造を有する置換基、イミド構造を有する置換基、アミン構造を有する置換基、及びアミド構造を有する置換基等のアミン系塩基性基が挙げられる。ブレンステッド塩基性基としては、特に限定されないが、ヒドロキシアミノ基、ウレア基、グアニジン、ビグアニド等の共役アミン系官能基、ピペラジン、ピペリジン、ピロリジン、１，４－ジアザビシクロ［２．２．２］オクタン、ヘキサメチレンテトラアミン、モルホリン、ピリジン、ピリダジン、ピリミジン、ピラジン、ピロール、アザトロピリデン、ピリドン、イミダゾール、ベンゾイミダゾール、ベンゾトリアゾール、ピラゾール、オキサゾール、イミダゾリン、トリアゾール、チアゾール、チアジン、テトラゾール、インドール、イソインドール、プリン、キノリン、イソキノリン、キナゾリン、キノキサリン、シンノリン、プテリジン、カルバゾール、アクリジン、アデニン、グアニン、シトシン、チミン、ウラシル、メラミン等のヘテロ環アミノ系官能基、ポルフィリン、クロリン、コリン等の環状ピロール系官能基およびそれらの誘導体等が挙げられる。
　ブレンステッド酸性基としては、カルボキシル基、スルホン酸基、マレイン酸基、スルフィン酸基、スルフェン酸基、リン酸基、ホスホン酸基、又はこれらの塩等が挙げられる。ブレンステッド酸性基は、カルボキシル基であることが好ましい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、イミン構造を有する構造単位、イミド構造を有する構造単位、アミン構造を有する構造単位、又はアミド構造を有する構造単位を有することが好ましい。この場合、これらの構造単位のうちの１種のみを有していてもよく、２種以上を有していてもよい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、イミン構造を有する構造単位を有していてもよい。イミン構造とは、Ｃ＝Ｎ結合を有する構造をいう。特に、ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、イミン構造を側鎖に有することが好ましい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、イミド構造を有する構造単位を有していてもよい。イミド構造を有する構造単位は、イミノ基（＝ＮＨ）を有する構造単位であることが好ましい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、イミノ基を側鎖に有することが好ましい。この場合、イミノ基は、ポリビニルアセタール樹脂Ｘの主鎖を構成する炭素原子に直接結合していてもよく、アルキレン基等の連結基を介して主鎖に結合していてもよい。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、アミン構造を有する構造単位を有していてもよい。上記アミン構造におけるアミン基は、第一級アミン基であってもよく、第二級アミン基であってもよく、第三級アミン基であってもよく、第四級アミン基であってもよい。
　アミン構造を有する構造単位は、アミド構造を有する構造単位であってもよい。上記アミド構造とは、－Ｃ（＝Ｏ）－ＮＨ－を有する構造をいう。
　ポリビニルアセタール樹脂Ｘは、アミン構造又はアミド構造を側鎖に有することが好ましい。この場合、アミン構造又はアミド構造は、ポリビニルアセタール樹脂Ｘの主鎖を構成する炭素原子に直接結合していてもよく、アルキレン基等の連結基を介して主鎖に結合していてもよい。
　なお、イミン構造を有する構造単位の含有率、イミド構造を有する構造単位の含有率、アミン構造を有する構造単位の含有率、アミド構造を有する構造単位の含有率は、１Ｈ－ＮＭＲ（核磁気共鳴スペクトル）により測定することができる。
　＜ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する合成樹脂＞
　本発明の細胞培養用足場材の凸部は、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する合成樹脂を含むことが好ましい。上記合成樹脂Ｘは、ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂を含むことが好ましい。
　本明細書において、「ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する合成樹脂」を、「ポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂Ｘ」と記載することがある。
　従って、ポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂Ｘは、ポリ（メタ）アクリル酸エステル骨格を有する樹脂である。
　ポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂Ｘは、（メタ）アクリル酸エステルの重合により、あるいは、（メタ）アクリル酸エステルと、他のモノマーとの共重合により得られる。
　（メタ）アクリル酸エステルとしては、（メタ）アクリル酸アルキルエステル、（メタ）アクリル酸環状アルキルエステル、（メタ）アクリル酸アリールエステル、（メタ）アクリルアミド類、（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類、（メタ）アクリル酸ホスホリルコリン等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸アルキルエステルとしては、メチル（メタ）アクリレート、エチル（メタ）アクリレート、ｎ－プロピル（メタ）アクリレート、イソプロピル（メタ）アクリレート、ｎ－ブチル（メタ）アクリレート、イソブチル（メタ）アクリレート、ｔ－ブチル（メタ）アクリレート、ｎ－オクチル（メタ）アクリレート、イソオクチル（メタ）アクリレート、２－エチルヘキシル（メタ）アクリレート、ノニル（メタ）アクリレート、イソノニル（メタ）アクリレート、デシル（メタ）アクリレート、イソデシル（メタ）アクリレート、ラウリル（メタ）アクリレート、ステアリル（メタ）アクリレート、及びイソテトラデシル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　なお、（メタ）アクリル酸アルキルエステルは、炭素数１～３のアルコキシ基及びテトラヒドロフルフリル基等の置換基で置換されていてもよい。このような（メタ）アクリル酸アルキルエステルの例としては、メトキシエチルアクリレート、テトラヒドロフルフリルアクリレート等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸環状アルキルエステルとしては、シクロヘキシル（メタ）アクリレート、及びイソボルニル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸アリールエステルとしては、フェニル（メタ）アクリレート、及びベンジル（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　（メタ）アクリルアミド類としては、（メタ）アクリルアミド、Ｎ－イソプロピル（メタ）アクリルアミド、Ｎ－ｔｅｒｔ－ブチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ’－ジメチル（メタ）アクリルアミド、(３－（メタ）アクリルアミドプロピル)トリメチルアンモニウムクロリド、４－（メタ）アクリロイルモルホリン、３－（メタ）アクリロイル－２－オキサゾリジノン、Ｎ－[３－(ジメチルアミノ)プロピル]（メタ）アクリルアミド、Ｎ－(２－ヒドロキシエチル)（メタ）アクリルアミド、Ｎ－メチロール（メタ）アクリルアミド、及び６－（メタ）アクリルアミドヘキサン酸等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類としては、例えば、メトキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ－ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ－ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ－トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、エトキシ－トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、及びヒドロキシ－トリエチレングルコール（メタ）アクリレート等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンとしては、２－（メタ）アクリロイルオキシエチルホスホリルコリン等が挙げられる。
　（メタ）アクリル酸エステルと共重合される他のモノマーとしては、ビニル化合物が好適に用いられる。ビニル化合物としては、エチレン、アリルアミン、ビニルピロリドン、無水マレイン酸、マレイミド、イタコン酸、（メタ）アクリル酸、ビニルアミン、又は（メタ）アクリル酸エステル等が挙げられる。ビニル化合物は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　なお、本明細書において、「（メタ）アクリル」とは、「アクリル」又は「メタクリル」を意味し、「（メタ）アクリレート」とは、「アクリレート」又は「メタクリレート」を意味する。
　上記ポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂Ｘは、ポリビニルアセタール樹脂Ｘと同様に、一部にブレンステッド塩基性基、またはブレンステッド酸性基を有することが好ましい。その場合には、細胞の接着性をより一層高めることができる。このブレンステッド塩基性基は、ポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂Ｘの一部に有されていればよく、その場合、ブレンステッド塩基性基を有するモノマーが共重合されていてもよく、グラフト共重合されていてもよい。上記ブレンステッド塩基性基における変性度は、好ましくは、０．２モル％以上、より好ましくは２モル％以上、好ましくは３０モル％以下、より好ましくは２０モル％以下、更に好ましくは１５モル％以下である。ブレンステッド塩基性基による変性度が上記特定の範囲内であれば、細胞の接着性より一層高めることができる。
　＜ペプチド部を有する合成樹脂＞
　本発明の細胞培養用足場材の凸部は、ペプチド部を有する合成樹脂を含むことが好ましい。上記合成樹脂Ｘは、ペプチド部を有する合成樹脂を含むことが好ましい。ペプチド部を有する合成樹脂を細胞培養用足場材の凸部の材料として用いることにより、表面にペプチド部を有する凸部を得ることができる。すなわち、凸部は、表面にペプチド部を有することが好ましい。この場合には、播種後の細胞との接着性をより一層高めることができ、細胞の増殖率をより一層高めることができる。また、この場合には、より一層容易にかつ効率よく品質のよい細胞塊を形成させることができ、しかも細胞塊の形状や大きさをより一層容易に制御することができる。
　ペプチド部を有する合成樹脂は、合成樹脂と、リンカーと、ペプチドとを反応させて得ることができる。ペプチド部を有する合成樹脂は、ポリビニルアセタール樹脂部と、リンカー部と、ペプチド部とを有するペプチド含有ポリビニルアセタール樹脂であることが好ましく、ポリビニルブチラール樹脂部と、リンカー部と、ペプチド部とを有するペプチド含有ポリビニルブチラール樹脂であることがより好ましい。したがって、上記ポリビニルアセタール骨格を有する合成樹脂（ポリビニルアセタール樹脂Ｘ）は、ペプチド含有ポリビニルアセタール樹脂であることが好ましく、ペプチド含有ポリビニルブチラール樹脂であることがより好ましい。ペプチド部を有する合成樹脂は、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記ペプチド部は、３個以上のアミノ酸により構成されることが好ましく、４個以上のアミノ酸により構成されることがより好ましく、５個以上のアミノ酸により構成されることが更に好ましく、１０個以下のアミノ酸により構成されることが好ましく、６個以下のアミノ酸により構成されることがより好ましい。上記ペプチド部を構成するアミノ酸の個数が上記下限以上及び上記上限以下であると、播種後の細胞との接着性をより一層高めることができ、細胞の増殖率をより一層高めることができる。
　上記ペプチド部は、細胞接着性のアミノ酸配列を有することが好ましい。なお、細胞接着性のアミノ酸配列とは、ファージディスプレイ法、セファローズビーズ法、又はプレートコート法によって細胞接着活性が確認されているアミノ酸配列をいう。上記ファージディスプレイ法としては、例えば、「The Journal of Cell Biology, Volume 130, Number 5, September 1995 1189-1196」に記載の方法を用いることができる。上記セファローズビーズ法としては、例えば「蛋白質　核酸　酵素　Ｖｏｌ．４５　Ｎｏ．１５　（２０００）　２４７７」に記載の方法を用いることができる。上記プレートコート法としては、例えば「蛋白質　核酸　酵素　Ｖｏｌ．４５　Ｎｏ．１５　（２０００）　２４７７」に記載の方法を用いることができる。
　上記細胞接着性のアミノ酸配列としては、例えば、ＲＧＤ配列（Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ）、ＹＩＧＳＲ配列（Ｔｙｒ－Ｉｌｅ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ａｒｇ）、ＰＤＳＧＲ配列（Ｐｒｏ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ）、ＨＡＶ配列（Ｈｉｓ－Ａｌａ－Ｖａｌ）、ＡＤＴ配列（Ａｌａ－Ａｓｐ－Ｔｈｒ）、ＱＡＶ配列（Ｇｌｎ－Ａｌａ－Ｖａｌ）、ＬＤＶ配列（Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、ＩＤＳ配列（Ｉｌｅ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ）、ＲＥＤＶ配列（Ａｒｇ－Ｇｌｕ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、ＩＤＡＰＳ配列（Ｉｌｅ－Ａｓｐ－Ａｌａ－Ｐｒｏ－Ｓｅｒ）、ＫＱＡＧＤＶ配列（Ｌｙｓ－Ｇｌｎ－Ａｌａ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ）、及びＴＤＥ配列（Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｇｌｕ）等が挙げられる。また、上記細胞接着性のアミノ酸配列としては、「病態生理、第９巻　第７号、５２７～５３５頁、１９９０年」、及び「大阪府立母子医療センター雑誌、第８巻　第１号、５８～６６頁、１９９２年」に記載されている配列等も挙げられる。上記ペプチド部は、上記細胞接着性のアミノ酸配列を１種のみ有していてもよく、２種以上を有してもよい。
　上記細胞接着性のアミノ酸配列は、上述した細胞接着性のアミノ酸配列の内の少なくともいずれかを有することが好ましく、ＲＧＤ配列、ＹＩＧＳＲ配列、又はＰＤＳＧＲ配列を少なくとも有することがより好ましく、下記式（１）で表されるＲＧＤ配列を少なくとも有することが更に好ましい。この場合には、播種後の細胞との接着性をより一層高め、細胞の増殖率をより一層高めることができる。
　Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｘ　　　・・・式（１）
　上記式（１）中、Ｘは、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｐｈｅ、Ｍｅｔ、Ｐｒｏ、又はＡｓｎを表す。
　上記ペプチド部は、直鎖状であってもよく、環状ペプチド骨格を有していてもよい。上記環状ペプチド骨格とは、複数個のアミノ酸より構成された環状骨格である。本発明の効果を一層効果的に発揮させる観点からは、上記環状ペプチド骨格は、４個以上のアミノ酸により構成されることが好ましく、５個以上のアミノ酸により構成されることが好ましく、１０個以下のアミノ酸により構成されることが好ましい。
　ペプチド部を有する合成樹脂において、上記ペプチド部の含有率は、好ましくは０．１モル％以上、より好ましくは１モル％以上、さらに好ましくは５モル％以上、特に好ましくは１０モル％以上である。ペプチド部を有する合成樹脂において、上記ペプチド部の含有率は、好ましくは６０モル％以下、より好ましくは５０モル％以下、さらに好ましくは３５モル％以下、特に好ましくは２５モル％以下である。上記ペプチド部の含有率が上記下限以上であると、相分離構造をより一層容易に形成することができる。上記ペプチド部の含有率が上記下限以上であると、播種後の細胞との接着性をより一層高めることができ、細胞の増殖率をより一層高めることができる。また、上記ペプチド部の含有率が上記上限以下であると、製造コストを抑えることができる。なお、上記ペプチド部の含有率（モル％）は、ペプチド部を有する合成樹脂を構成する各構造単位の物質量の総和に対する上記ペプチド部の物質量である。
　上記ペプチド部の含有率は、ＦＴ－ＩＲ又はＬＣ－ＭＳにより測定することができる。
　ペプチド部を有する合成樹脂において、合成樹脂部分とペプチド部とは、リンカーを介して結合していることが好ましい。すなわち、ペプチド部を有する合成樹脂は、ペプチド部とリンカー部とを有する合成樹脂であることが好ましい。上記リンカーは、１種のみが用いられてもよく、２種以上が併用されてもよい。
　上記リンカーは、上記ペプチドのカルボキシル基又はアミノ基と縮合可能な官能基を有する化合物であることが好ましい。上記ペプチドのカルボキシル基又はアミノ基と縮合可能な官能基としては、カルボキシル基、チオール基及びアミノ基等が挙げられる。ペプチドと良好に反応させる観点からは、上記リンカーは、カルボキシル基を有する化合物であることが好ましい。上記リンカーとして、上述したビニル化合物を用いることもできる。
　上記カルボキシル基を有するリンカーとしては、（メタ）アクリル酸及びカルボキシル基含有アクリルアミド等が挙げられる。上記カルボキシル基を有するリンカーとして重合性不飽和基を有するカルボン酸（カルボン酸モノマー）を用いることにより、リンカーと合成樹脂とを反応させる際に、グラフト重合により該カルボン酸モノマーを重合させることができるため、ペプチドと反応させることができるカルボキシル基の個数を増やすことができる。
　＜その他の樹脂＞
　細胞培養用足場材の凸部は、上述した合成樹脂以外のポリマーを含んでいてもよい。該ポリマーとしては、ポリビニルピロリドン、ポリスチレン、エチレン・酢酸ビニル共重合体、ポリオレフィン樹脂、ポリエーテル樹脂、ポリビニルアルコール樹脂、ポリエステル、エポキシ樹脂、ポリアミド樹脂、ポリイミド樹脂、ポリウレタン樹脂、ポリカーボネート樹脂等が挙げられる。
　［基材］
　本発明の細胞培養用足場材は、基材を備える。基材の表面の一部は、凸部が設けられていない部分を構成する。従って、基材は凸部よりも単位面積当たりに接着する細胞数が少ない材料により構成されていることが好ましい。
　基材の材料としては、樹脂、金属及び無機材料が挙げられる。上記樹脂としては、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリイソプレン、シクロオレフィンポリマー、ポリイミド、ポリアミド、ポリアミドイミド、（メタ）アクリル樹脂、エポキシ樹脂、シリコーン等が挙げられる。上記金属としては、ステンレス、銅、鉄、ニッケル、アルミ、チタン、金、銀、白金等が挙げられる。上記無機材料としては、酸化ケイ素（ガラス）、酸化アルミ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化鉄、窒化ケイ素等が挙げられる。
　［細胞培養用足場材の他の詳細］
　本発明に係る細胞培養用足場材の凸部は、上記合成樹脂Ｘを含む。本発明の効果を効果的に発揮させる観点及び生産性を高める観点からは、上記細胞培養用足場材の凸部１００重量％中、上記合成樹脂Ｘの含有量は、好ましくは９０重量％以上、より好ましくは９５重量％以上、更に好ましくは９７．５重量％以上、特に好ましくは９９重量％以上、最も好ましくは１００重量％（全量）である。したがって、上記細胞培養用足場材の凸部は、上記合成樹脂Ｘであることが最も好ましい。上記合成樹脂Ｘの含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。
　凸部に含まれる合成樹脂Ｘがポリビニルアルコール誘導体を含む場合に、合成樹脂Ｘ１００重量％中、ポリビニルアルコール誘導体の含有量は、好ましくは９０重量％以上、より好ましくは９５重量％以上、更に好ましくは９７．５重量％以上、特に好ましくは９９重量％以上、最も好ましくは１００重量％（全量）である。したがって、凸部に含まれる合成樹脂Ｘは、ポリビニルアルコール誘導体であることが最も好ましい。上記ポリビニルアルコール誘導体の含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。
　凸部に含まれる合成樹脂Ｘがポリ（メタ）アクリル樹脂を含む場合に、合成樹脂Ｘ１００重量％中、ポリ（メタ）アクリル樹脂の含有量は、好ましくは９０重量％以上、より好ましくは９５重量％以上、更に好ましくは９７．５重量％以上、特に好ましくは９９重量％以上、最も好ましくは１００重量％（全量）である。したがって、凸部に含まれる合成樹脂Ｘは、ポリ（メタ）アクリル樹脂であることが最も好ましい。上記ポリ（メタ）アクリル樹脂の含有量が上記下限以上であると、本発明の効果をより一層効果的に発揮させることができる。
　上記細胞培養用足場材の凸部は、上記合成樹脂Ｘ以外の成分を含んでいてもよい。上記合成樹脂Ｘ以外の成分としては、多糖類、セルロース、合成ペプチド等が挙げられる。
　本発明の効果を効果的に発揮させる観点から、上記合成樹脂Ｘ以外の成分の含有量は少ないほどよい。上記細胞培養用足場材の凸部１００重量％中、該成分の含有量は、好ましくは１０重量％以下、より好ましくは５重量％以下、更に好ましくは２．５重量％以下、特に好ましくは１重量％以下、最も好ましくは０重量％（未含有）である。したがって、細胞培養用足場材の凸部は、合成樹脂Ｘ以外の成分を含まないことが最も好ましい。
　上記細胞培養用足場材は、動物由来の原料を含まないことが好ましい。動物由来の原料を含まないことにより、安全性が高く、かつ、製造時に品質のばらつきが少ない細胞培養用足場材を提供することができる。なお、「動物由来の原料を実質的に含まない」とは、細胞培養用足場材中における動物由来の原料が、３重量％以下であることをいう。上記細胞培養用足場材は、細胞培養用足場材中における動物由来の原料が、１重量％以下であることが好ましく、０重量％であることが最も好ましい。すなわち、本発明の細胞培養用足場材は、動物由来の原料を全く含まないことが最も好ましい。
　上記細胞培養用足場材の凸部は、凸部中における動物由来の原料が、３重量％以下であることが好ましく、１重量％以下であることがより好ましく、０重量％であることが最も好ましい。すなわち、細胞培養用足場材の凸部は、動物由来の原料を全く含まないことが最も好ましい。
　（細胞培養用足場材を用いた細胞培養）
　本発明に係る細胞培養用足場材は、細胞を培養するために用いられる。本発明に係る細胞培養用足場材は、細胞を培養する際の該細胞の足場として用いられる。
　上記細胞としては、ヒト、マウス、ラット、ブタ、ウシ及びサル等の動物細胞が挙げられる。また、上記細胞としては、体細胞等が挙げられ、例えば、幹細胞、前駆細胞及び成熟細胞等が挙げられる。上記体細胞は、癌細胞であってもよい。
　上記幹細胞としては、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）、ｉＰＳ細胞、ＥＳ細胞、Ｍｕｓｅ細胞、胚性がん細胞、胚性生殖幹細胞、及びｍＧＳ細胞等が挙げられる。
　上記成熟細胞としては、神経細胞、心筋細胞、網膜細胞及び肝細胞等が挙げられる。
　［細胞培養用容器］
　本発明は、細胞の培養領域の少なくとも一部に上記細胞培養用足場材を備える、細胞培養用容器にも関する。図３は、本発明の一実施形態に係る細胞培養用容器を示す模式的正面断面図である。
　細胞培養用容器１１は、容器本体１２を備える。容器本体１２の底部が細胞培養用足場材１の基材２とされている。従って、凸部３は、容器本体１２の表面１２ａ上に設けられている。
　細胞培養用容器１１に液体培地を添加し、また、細胞を細胞培養用足場材１の表面に播種することで、細胞を平面培養することができる。
　なお、容器本体は、第１の容器本体の底面上にカバーガラス等の第２の容器本体を備えていてもよい。第１の容器本体と第２の容器本体とは分離可能であってもよい。この場合、第２の容器本体の少なくとも一部が上記細胞培養用足場材の基材であってもよい。
　上記容器本体として、従来公知の容器本体（容器）を用いることができる。上記容器本体の形状および大きさは特に限定されない。
　上記容器本体としては、１個又は複数個のウェル（穴）を備える細胞培養用プレート、及び細胞培養用フラスコ等が挙げられる。上記プレートのウェル数は特に限定されない。該ウェル数としては、特に限定されないが、例えば、２、４、６、１２、２４、４８、９６、３８４等が挙げられる。上記ウェルの形状としては、特に限定されないが、真円、楕円、三角形、正方形、長方形、五角形等が挙げられる。上記ウェル底面の形状としては、特に限定されないが、平底、丸底等が挙げられる。
　上記容器本体の材質は特に限定されないが、樹脂、金属及び無機材料が挙げられる。上記樹脂としては、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリイソプレン、シクロオレフィンポリマー、ポリイミド、ポリアミド、ポリアミドイミド、（メタ）アクリル樹脂、エポキシ樹脂、シリコーン等が挙げられる。上記金属としては、ステンレス、銅、鉄、ニッケル、アルミ、チタン、金、銀、白金等が挙げられる。上記無機材料としては、酸化ケイ素（ガラス）、酸化アルミ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化鉄、窒化ケイ素等が挙げられる。なお、この場合、細胞培養用足場材の基材も容器本体の一部となるため、容器本体を構成する材料と同じ材料を用いることができる。
　次に、本発明の具体的な実施例及び比較例を挙げることにより本発明を明らかにする。なお、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
　細胞培養用足場材の原料として、以下の合成樹脂Ｘ１～Ｘ９を合成した。なお、得られた合成樹脂における構造単位の含有率は、合成樹脂をＤＭＳＯ－Ｄ６(ジメチルスルホキサイド)に溶解した後、１Ｈ－ＮＭＲ（核磁気共鳴スペクトル）により測定した。
　＜合成樹脂Ｘ１＞
　攪拌装置を備えた反応機に、イオン交換水２７００ｍＬ、平均重合度８００、アミン変性度１モル％、鹸化度９９モル％のアミン変性ポリビニルアルコールを３００重量部投入し、攪拌しながら加熱溶解し、溶液を得た。得られた溶液に、触媒として、塩酸濃度が０．２重量％となるように３５重量％塩酸を添加した。次いで、温度を１５℃に調整し、攪拌しながらｎ－ブチルアルデヒド２２重量部を添加した。次いで、ｎ－ブチルアルデヒド１４８重量部を添加し、白色粒子状のポリビニルブチラール樹脂を析出させた。析出してから１５分後に、塩酸濃度が１．８重量％となるように３５重量％塩酸を添加した後、５０℃に加熱し、５０℃で２時間保持した。次いで、溶液を冷却し、中和した後、ポリビニルブチラール樹脂を水洗し、乾燥させて、ポリビニルブチラール樹脂である合成樹脂Ｘ１を得た。
　得られたポリビニルブチラール樹脂（合成樹脂Ｘ１）は、平均重合度８００、水酸基量２０モル％、アミン基量１モル％、アセチル化度１モル％、アセタール化度（ブチラール化度）７８モル％であった。
　＜合成樹脂Ｘ２＞
　アミン変性ポリビニルアルコールに代えて平均重合度３００、鹸化度９９モル％のポリビニルアルコールを用いたこと以外は合成樹脂Ｘ１と同様にして、ポリビニルブチラール樹脂を得た。得られたポリビニルブチラール樹脂２０重量部をテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）８０重量部に溶解させ、ジメチルアミノアクリルアミドを２重量部添加した。次いで、開始剤としてＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＩＧＭ　Ｒｅｓｉｎｓ　Ｂ．Ｖ．社製）を０．１重量部溶解させ、ＵＶ重合試験機にて２０分間ＵＶ照射し、表１に示す構成を備える合成樹脂Ｘ２を得た。
　＜合成樹脂Ｘ３＞
　ジメチルアミノアクリルアミドの添加量を２重量部から８重量部としたことを除いては、合成樹脂Ｘ２と同様にして、表１に示す構成を備えるポリビニルブチラール樹脂（合成樹脂Ｘ３）を得た。
　＜合成樹脂Ｘ４＞
　平均重合度２５０、鹸化度９９モル％のポリビニルアルコールを用いたこと、ジメチルアミノアクリルアミドに代えてジエチルアミノアクリルアミド１０重量部を用いたことを除いては、合成樹脂Ｘ２と同様にして、表１に示す構成を備えるポリビニルブチラール樹脂（合成樹脂Ｘ４）を得た。
　＜合成樹脂Ｘ５＞
　ジエチルアミノアクリルアミドに代えてビニルイミダゾール５重量部を用いたこと、その含有割合を１３モル％としたことを除いては、合成樹脂Ｘ４と同様にして、表１に示す構成を備えるポリビニルブチラール樹脂（合成樹脂Ｘ５）を得た。
　＜合成樹脂Ｘ６＞
　表１に示す構成を備えるポリビニルブチラール樹脂を用いた。
　＜合成樹脂Ｘ７＞
　アミン変性ポリビニルアルコールに代えて平均重合度２５０、鹸化度９８モル％のポリビニルアルコールを用いたこと以外は合成樹脂Ｘ１と同様にして、ポリビニルアセタール樹脂（ポリビニルブチラール樹脂）を得た。
　リンカーの導入：
　得られたポリビニルアセタール樹脂９０重量部と、アクリル酸（リンカー）１５重量部とをＴＨＦ３００重量部に溶解し、光ラジカル重合開始剤の存在下で、紫外線照射下で２０分間反応させ、ポリビニルアセタール樹脂とアクリル酸とをグラフト共重合させることにより、リンカーを導入した。
　ペプチド部の形成：
　ペプチドとしてＧｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒのアミノ酸配列を有する直鎖状のペプチド（アミノ酸残基数５個、表ではＧＲＧＤＳと記載）を用意した。このペプチド１０重量部と、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（縮合剤）１０重量部とを、カルシウム及びマグネシウムの双方を含まないメタノール８０重量部に添加し、ペプチド含有液を作製した。このペプチド含有液１００重量部と、リンカーを導入したポリビニルアセタール樹脂８０重量部とをメタノール３００重量部に添加し、反応させて、リンカー部のカルボキシル基と、ペプチドのアミノ基とを脱水縮合した。反応終了後、６０℃で真空乾燥を１時間行い、メタノールを揮発させた。このようにして、ポリビニルアセタール樹脂部と、リンカー部と、ペプチド部とを有するペプチド含有ポリビニルアセタール樹脂（合成樹脂Ｘ７）を作製した。
　＜合成樹脂Ｘ８＞
　合成樹脂Ｘ７と同様にして、リンカーが導入されたポリビニルブチラール樹脂を得た。この樹脂を用いて、以下のペプチド部の形成を行った。
　ペプチド部の形成：
　Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｐｈｅ－Ｌｙｓのアミノ酸配列を有する環状のペプチド（アミノ酸残基数５個、ＡｒｇとＬｙｓとが結合することにより環状骨格を形成、ＰｈｅはＤ体、表ではｃ－ＲＧＤｆＫと記載）を用意した。このペプチド１０重量部と、１－エチル－３－（３－ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（縮合剤）１０重量部とを、カルシウム及びマグネシウムの双方を含まないメタノール８０重量部に添加し、ペプチド含有液を作製した。このペプチド含有液１００重量部と、リンカーを導入したポリビニルアセタール樹脂８０重量部とをメタノール３００重量部に添加し、反応させて、リンカー部のカルボキシル基と、ペプチドのアミノ基とを脱水縮合した。反応終了後、６０℃で真空乾燥を１時間行い、メタノールを揮発させた。このようにして、ポリビニルアセタール樹脂部と、リンカー部と、環状のペプチド部とを有するペプチド含有ポリビニルアセタール樹脂（合成樹脂Ｘ８）を作製した。
　＜合成樹脂Ｘ９＞
　ブチルメタクリレート２３．４重量部及びメトキシメチルアクリレート７６．６重量部を混合し、（メタ）アクリルモノマー溶液を得た。次に、得られた（メタ）アクリルモノマー溶液にＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＢＡＳＦ社製）０．５重量部を溶解させ、ＰＥＴフィルム上に塗布した。塗布物を２５℃にてアイグラフィックス社製、ＵＶコンベア装置「ＥＣＳ３０１Ｇ１」を用い、３６５ｎｍの波長の光を積算光量２０００ｍＪ／ｃｍ２で照射することでポリ（メタ）アクリル酸エステル樹脂（合成樹脂Ｘ９）を得た。
　（実施例１～１３及び比較例１～２）
　実施例１，２，８～１０及び比較例２では合成樹脂Ｘ１を用いた。実施例３～７では合成樹脂Ｘ２～Ｘ６をそれぞれ用いた。実施例１１～１３では、合成樹脂Ｘ７～９をそれぞれ用いた。
　細胞培養用容器の作製；
　実施例１～７，１３では、ブタノールに対して各合成樹脂を５ｗｔ％の濃度で溶解させた。得られた溶液を、ディスペンサーを用いて直径３５ｍｍのポリスチレンディッシュにドット状またはライン状にパターニングした後、４５℃のオーブン内で６時間乾燥して、複数の凸部を有する細胞培養用足場材により底部が構成されている細胞培養用容器を作製した。なお、図４に示すように、実施例１で作製した細胞培養用足場材では、ドット状のパターンを作製した。実施例３～７においても同様にドット状のパターンを作製した。また、図５に示すように、実施例２で作製した細胞培養用足場材では、ライン状のパターンとして渦巻き状のパターンを作製した。
　実施例８～１２では、ブタノールに各合成樹脂を０．５ｗｔ％の濃度で溶解させた。得られた溶液を、ディスペンサーを用いて直径３５ｍｍのポリスチレンディッシュにドット状にパターニングした後、常温で３０分間静置し、４５℃のオーブン内で６時間乾燥して、複数の凸部を有する細胞培養用足場材により底部が構成されている細胞培養用容器を作製した。なお、実施例８～１２では、周縁部に壁部を有する凸部が得られた。
　比較例１では、ポリスチレンディッシュ自体を細胞培養用容器として用いた。
　比較例２では、ブタノールに合成樹脂Ｘ１を５ｗｔ％の濃度で溶解させた。得られた４０μＬをポリスチレンディッシュにキャスト後、４５℃のオーブン内で６時間乾燥して平面な膜を形成させた。
　（評価）
　（１）パターン形状；
　ハイブリッドレーザーマイクロスコープＯＰＴＥＬＩＣＳ　ＨＹＢＲＩＤ（レーザーテック社製、凸部の平均高さ測定時の対物レンズ：ＣＦＩ　Ｔ　Ｐｌａｎ　ＥＰＩ　ＳＬＷＤ　２０ｘ、測定モード：表面形状、分解能：０．４５μｍ）を用いた画像観察を行い、以下を測定した。
　ドット状である場合は凸部の平均底面積
　ライン状である場合は凸部の平均線幅
　平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さ
　壁部の平均高さ
　なお、凸部の平均底面積は、任意の１０個の凸部の底面積の平均値である。凸部の平均線幅は、互いに１０μｍ以上離れた任意の１０箇所の線幅の平均値である。平面視において凸部の中央に位置する部分の凸部の平均高さは、該凸部がドット状である場合に、平面視において任意の１０個の凸部の中央の位置での凸部の高さの平均値であり、該凸部がライン状である場合に、互いに１０μｍ以上離れた１０箇所の線幅の中央の位置での凸部の高さの平均値である。壁部の平均高さは、任意の１０個の凸部の壁部の高さの平均値である。
　（２）タンパク吸着量の比；
　各細胞培養用容器に対し、ＦＩＴＣ標識されたウシ血清アルブミン（コスモ・バイオ社製）０．１ｍｇ／ｍＬを４０μＬキャストし３７℃で１時間静置した後、ポリスチレンディッシュを純水で洗浄し、４５℃のオーブン内で１時間乾燥した。また、吸着タンパク量の検量用にポリスチレンディッシュにそれぞれ０．００５ｍｇ／ｍＬ、０．０２ｍｇ／ｍＬ、０．０５ｍｇ／ｍＬのＦＩＴＣ標識されたウシ血清アルブミンを１μＬディスペンスし、４５℃のオーブン内で１時間乾燥した。各細胞培養用容器を蛍光顕微鏡を用いて撮影し、上記凸部と凸部が設けられていない部分の蛍光強度を求めた。検量線用のポリスチレンディッシュを用いて得られた蛍光強度の直線近似値からタンパク吸着量に換算した。得られた凸部のタンパク吸着量と、凸部が設けられていない部分のタンパク吸着量とから、凸部のタンパク吸着量の、凸部が設けられていない部分のタンパク吸着量に対する比（凸部／凸部が設けられていない部分）を算出した。
　凸部の水膨潤率；
　各細胞培養用容器を２５℃の水に２４時間浸漬した。浸漬後の細胞培養用容器の開口部を下にして細胞培養用容器をキムタオル上に１０分間静置し、細胞培養用容器に付着している水を除去した。次に、浸漬前の細胞培養用容器の重さからポリスチレンディッシュの重さを差し引いて、浸漬前のサンプルの重量とした。浸漬後の細胞培養用容器の重さからポリスチレンディッシュの重さを差し引いて、浸漬後のサンプルの重量とした。浸漬前のサンプルの重量と浸漬後のサンプルの重量とから、水膨潤率＝（浸漬後のサンプル重量－浸漬前のサンプル重量）／（浸漬前のサンプル重量）×１００（％）を算出した。なお、ポリスチレンディッシュ自体は、浸漬前後で重量は変化しない。
　（３）平面視において凸部の中央の位置での凸部の弾性率；
　ナノインデンター（Ｈｙｓｉｔｒｏｎ，Ｔｒｉｂｏｉｎｄｅｎｔｅｒ、ブルカー社製）を用いて各細胞培養用足場材の凸部の上面の中央の位置での２５℃における表面弾性率を求めた。圧子は、先端径Ｒ数１００ｎｍのＢｅｒｋｏｖｉｃｈ（三角錐型）圧子を用い、大気下、２５℃にて単一押し込み測定をした。その押し込み深さは５０ｎｍとした。なお、比較例２については、平面な膜の表面弾性率を測定した。
　（４）細胞の播種及び培養；
　以下の液体培地及びＲＯＣＫ（Ｒｈｏ結合キナーゼ）特異的阻害剤を用意した。
　ＴｅＳＲ　Ｅ８培地（ＳＴＥＭ　ＣＥＬＬ社製）
　ＲＯＣＫ－Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（Ｙ２７６３２）
　得られた細胞培養用容器にリン酸緩衝生理食塩水１ｍＬを加えて３７℃のインキュベーター内で１時間静置後、細胞培養用容器からリン酸緩衝生理食塩水を除去した。
　φ３５ｍｍのディッシュにコンフルエント状態になったｈ－ｉＰＳ細胞２５３Ｇ１のコロニーを配置し、０．５ｍＭエチレンジアミン／リン酸緩衝溶液１ｍＬを加え、室温で２分静置した。エチレンジアミン／リン酸緩衝溶液を除去した後、ＴｅＳＲ　Ｅ８培地１ｍＬでピペッティングすることにより５０μｍ～２００μｍの大きさに砕かれた細胞塊を得た。得られた細胞塊（細胞数０．２×１０５ｃｅｌｌｓ）を上記の細胞培養用容器にクランプ播種した。
　播種時は１．５ｍＬの液体培地と、終濃度が１０μＭとなるようにＲＯＣＫ特異的阻害剤とを細胞培養用容器に添加した、３７℃及びＣＯ２濃度５％のインキュベーター内で培養を行った。その後、２４時間ごとに細胞培養用容器内の液体を新鮮な液体培地１．５ｍＬと交換する作業を繰り返し５日間培養を行った。その際、足場から遊離、浮遊している細胞はピペッティングにて回収、廃棄した。
　細胞培養後の細胞培養用容器をハイブリット顕微鏡を用いて観察し、足場材上に形成された細胞塊の均一性を評価した。また、細胞接着性は細胞塊の接着の有無を位相差顕微鏡にて観察評価した。
　図６は、実施例１で作製した細胞培養用容器に細胞を播種したときの顕微鏡写真を示す図である。また、図７は、実施例１で作製した細胞培養用容器で細胞を５日間培養した後の顕微鏡写真を示す図である。
　図７から明らかなように、実施例１では、足場のパターンに応じた細胞塊を容易にかつ効率よく形成できていることがわかる。同様にして、実施例２～１３についても観察を行い、足場のパターンに応じた細胞塊を容易にかつ効率よく形成できていることが確認できた。
　また、実施例１～１３及び比較例１～２について観察を行い、以下の評価基準により評価した。
　［評価基準］
　（細胞塊の均一性）
　５日間培養後に位相差顕微鏡を用いてウェル内の細胞を観察し、任意の細胞塊１０個を選択した。顕微鏡で平面視したときの細胞塊の面積（平面積）を算出し、細胞塊の平面積の分散度を下記式（Ａ）により算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
　Ｄ：細胞塊の平面積の分散度
　ｎ：データの個数
　Ｘｉ：細胞塊の平面積
　Ｘ：細胞塊の平面積の平均値
　［細胞塊の均一性の判定基準］
　Ａ…分散度が０．００１未満
　Ｂ…分散度が０．００１以上、０．００２未満
　Ｃ…分散度が０．００２以上、０．００３未満
　Ｄ…分散度が０．００３以上
　（細胞塊の接着性）
　５日間培養後に位相差顕微鏡を用いてウェル内の細胞塊を観察し、以下の基準で形成された細胞塊の接着性を評価した。
　［細胞塊の接着性の判定基準］
　Ａ…全ての細胞塊が接着している
　Ｂ…一部の細胞塊が剥離している
　Ｃ…全ての細胞塊が剥離している
　結果を下記の表１，２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　１…細胞培養用足場材
　２，２Ａ…基材
　３，３Ａ…凸部
　４…凸部が設けられていない部分
　１１…細胞培養用容器
　１２…容器本体
　１２ａ…表面
　３１Ａ…壁部
　Ｈａ…平面視において凸部の中央の位置での凸部の高さ
　Ｈｂ…壁部の高さ
　Ｔｂ…壁部の厚み

Claims (9)

  1. 　基材と、
    　前記基材上にドット状又はライン状にパターニングされることにより構成された凸部とを備え、
    　前記凸部は、合成樹脂を含み、
    　前記合成樹脂は、少なくともポリビニルアルコール誘導体又はポリ（メタ）アクリル樹脂を含み、
    　前記凸部は、細胞接着性を有し、
    　前記凸部は、平面視において前記凸部の中央に位置する部分の平均高さが１０ｎｍ以上、１０μｍ以下である、細胞培養用足場材。
  2. 　前記凸部の前記凸部が設けられていない部分に対するタンパク吸着量の比（凸部／凸部が設けられていない部分）が、２以上である、請求項１に記載の細胞培養用足場材。
  3. 　前記凸部は、前記基材上にドット状にパターニングされることにより構成されており、
    　前記凸部は、平均底面積が０．００５ｍｍ２以上、５ｍｍ２以下である、請求項１又は２に記載の細胞培養用足場材。
  4. 　前記凸部は、周縁部に壁部を有する、請求項１～３のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材。
  5. 　ナノインデンテーション法により測定した、平面視において前記凸部の中央の位置での前記凸部の２５℃における弾性率が１ＧＰａ以上である、請求項１～４のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材。
  6. 　前記合成樹脂は、構成単位中にブレンステッド塩基性基を０．２モル％以上、２０モル％以下で含む、請求項１～５のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材。
  7. 　前記凸部の水膨潤率が５０％以下である、請求項１～６のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材。
  8. 　前記凸部は、表面にペプチド部を有する、請求項１～７のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材。
  9. 　細胞の培養領域の少なくとも一部に請求項１～８のいずれか１項に記載の細胞培養用足場材を備える、細胞培養用容器。
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