WO2019004758A2 - 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물 - Google Patents

피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물 Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a cosmetic composition for skin improvement comprising a fusion protein to which a skin permeation promoting peptide is bound, more specifically, to a skin permeation enhancing cosmetic composition comprising a fusion protein in which a physiologically active protein is bound to a peptide for skin permeation promotion, A functional cosmetic composition for improving skin, a cosmetic composition for improving hair loss, and a quasi-drug composition containing the fusion protein.
  • Drugs that pass through the skin are used in analgesic patches, smoking cessation patches, pregnancy regulators, and the like due to their ease of use and have the purpose of delivering them to the systemic circulation through the skin. At the same time, it may have the purpose of delivering it to the skin's own organs such as atopic treatments, whitening, and cosmetics for improving wrinkles. Despite the goal of having such convenience and functionality, it is difficult to deliver drugs due to the structure of the skin, which can be understood by looking at the structure of the skin.
  • the stratum corneum of the skin which is composed of about 10-15 layers of corneocytes, has a brick structure composed of keratin-rich keratinocytes, and a ceramide, a fatty acid, It has a mortar structure filled with lipids such as wax and has a thickness of about 10 to 45 um. This structure prevents internal moisture loss and prevents external intrusion. Thus, the material permeability is very low in accordance with its role. Only low-molecular-weight components below 500 Da are delivered into the skin by the diffusion method (Exp. Dermatol., 2000, 9, 165-9).
  • U.S. Patent No. 7,659,252 discloses skin permeable peptides that can be used to treat skin diseases and promote skin penetration of pharmaceutical active agents.
  • the peptide not only exhibits excellent skin permeability but also can be used as a carrier for transdermal delivery of other drugs.
  • the peptide is consumed through the circulatory system in the body after permeating through the skin, in the case of a drug targeting the skin It has a disadvantage that it can not exert any significant effect.
  • Korean Patent Registration No. 1054519 discloses a human growth hormone-derived peptide and a composition containing the human growth hormone-derived peptide, which are superior in stability and skin permeability to natural human growth hormone.
  • Korean Patent No. 1104223 10-derived peptides having the same functions as those of natural IL-10 and having excellent stability and skin permeability as compared with natural IL-10, and compositions comprising the same.
  • the inventors of the present invention have made extensive efforts to develop a novel substance that has both excellent skin permeability and excellent skin durability. As a result, they have found that they can be used as a carrier for transdermal delivery of drugs, The inventors of the present invention have developed a peptide for promoting skin permeation and confirmed that the fusion protein obtained by fusing a physiologically active protein to the skin permeation promoting peptide exhibits both skin permeability and skin retention properties. Respectively.
  • One object of the present invention is to provide a skin permeation promoting peptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a fusion protein comprising a physiologically active protein.
  • the fusion protein of the present invention binds a physiologically active protein to a skin permeation promoting peptide, thereby maintaining or improving the ability of the peptide to exhibit beneficial effects such as wrinkle improvement, and at the same time, significantly improving skin permeability and skin retention,
  • a functional cosmetic composition for skin improvement, a cosmetic composition for improving hair loss, a quasi drug composition for skin improvement, or a quasi drug composition for hair loss improvement is a functional cosmetic composition for skin improvement, a cosmetic composition for improving hair loss, a quasi drug composition for skin improvement, or a quasi drug composition for hair loss improvement.
  • FIG. 2 is a graph showing the results of confirming the wrinkle-reducing effect of Argireline TM (Acetyl-EEMQRR) and a cream containing a neurotransmitter release-controlling fusion peptide in a human body.
  • a skin permeation-promoting peptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is provided to a physiologically active protein.
  • amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 used in the present invention is abbreviated as follows according to the IUPAC-IUB nomenclature.
  • NGSLNTHLAPIL SEQ ID NO: 1
  • PDGFa endothelial cell growth factor
  • VEGF endothelial cell growth factor
  • IGF-1 insulin-like growth factor-1
  • KGF keratinocyte growth factor
  • T? 4 thymosin beta 4
  • peptides for promoting skin permeation means peptides capable of permeating through the skin regardless of the size or nature of the molecules, uniformly transmitting the same throughout the skin, and having excellent skin permeability and skin retention.
  • the skin permeability and skin retention of the physiologically active protein may be increased.
  • the term " skin permeability" means the ability or property of the peptide to permeate through the skin to penetrate into the skin, and the peptide for skin permeation promotion of the present invention shows remarkably superior skin permeability than other peptides .
  • skin persistence means the ability of the peptides that permeate through the skin to pass through the skin tissue and not to be transmitted to the circulatory system, but to bind to the tissues in the skin and remain in the skin.
  • a carrier having excellent properties to remain in the skin tissue so that the component bound to the peptide can act on the skin tissue or skin cells for a long time.
  • the skin penetration enhancing peptide of the present invention is remarkably excellent in skin permeability as well as skin retention, and thus can be used as a carrier for pharmaceutical preparations or cosmetics.
  • physiologically active protein in the present invention includes all proteins used for therapeutic effect.
  • the physiologically active protein in the present invention is collectively referred to as a protein that regulates the function (physiology) of a living body, and is also referred to as a physiologically active polypeptide.
  • the physiologically active protein of the present invention is not limited as long as it is a protein that can be processed into skin, and any derivative or derivative thereof may be used as long as it has substantially the same function, structure, activity or stability as the natural form of the physiologically active polypeptide Are included in the scope of the physiologically active protein of the present invention.
  • the physiologically active protein is selected from the group consisting of neurotransmitter release modulating peptide, platelet derived growth factor a subunit (PDGFa), endothelial cell growth factor (VEGF), insulin like growth factor-1 (IGF- Growth factor (KGF) or thymosin beta 4 (T? 4).
  • PDGFa platelet derived growth factor a subunit
  • VEGF endothelial cell growth factor
  • IGF- Growth factor KGF
  • T? 4 thymosin beta 4
  • neurotransmitter is a series of substances that release information from neurons in the brain, including neurons in the body, to neighboring neurons, from one neuron to another, It is an endogenous chemical that transmits a signal.
  • the neurotransmitters are packaged into synaptic vesicles clustered under the membrane of the axon end in the synaptic frontal part of the synapse and then released into the synapse gap and emanate across the synapse gap, Specific receptor.
  • the neurotransmitter of the present invention may include, but is not limited to, dopamine, serotonin, histamine, acetylcholine, adrenaline, noradrenaline, gammaaminobutyric acid (GABA), L-glutamic acid, glycine and the like.
  • GABA gammaaminobutyric acid
  • the " neurotransmitter release modulating peptide” means a peptide capable of inhibiting the muscle contraction effect by blocking the delivery of the neurotransmitter to the receptor of the neurotransmitter, and exhibiting a wrinkle- do. More specifically, in order to move the muscle, the neurotransmitter must be transferred from the neuron to the muscle cell through the synapse. In order to release the neurotransmitter acetylcholine, the SNARE complex is formed at the end of the neuron To the synapse. Botox, commonly known, breaks down the SNAP-forming component (SNAP-25), preventing acetylcholine from being released into the synapse. Botox-like peptides, on the other hand, have a structure similar to that of SNAP-25 (SNAP-25). SNAP-25 is involved in the formation of complexes and prevents the release of acetylcholine.
  • the gingival salmonid release-controlling peptide of the present invention can be used as is well known in the art, and is not particularly limited to the kind of the peptide. Natural peptides as well as chemically synthesized peptides may be included. In addition, peptide derivatives of peptides known to have wrinkle-reducing effects can be included in the scope of the present invention.
  • the neurotransmitter release modulating peptide is Argireline TM (Acetyl-Glu-Glu-Met-Gln-Arg-Arg (Acetyl-EEMQRR, SEQ ID No. 2), X50 Myocept TM from Infinitec, Palmitoyl-hexapeptide- [Pal] -Asp-Asp-Met-Gln-Arg-Arg ([Pal] DDMQRR SEQ ID No. 3), Palmitoyl-heptapeptide- Pal] YPWTQRF SEQ ID NO: 4), GABA (gamma-amino butyric acid), botulinum toxin, or a mixture thereof.
  • Argireline TM Acetyl-Glu-Glu-Met-Gln-Arg-Arg (Acetyl-EEMQRR, SEQ ID No. 2)
  • X50 Myocept TM from Infinitec Palmitoyl-hexapeptide- [Pal] -Asp
  • the neurotransmitter release modulating peptide of the present invention may include a peptide represented by the following formula (1), an isomer thereof, a racemic compound, a cosmetically or pharmaceutically acceptable salt thereof and the like.
  • AA may be an amino acid sequence containing 3-40 amino acids, and R 1 may be any one selected from H or C 3 to C 24 alkyl, aryl, or acyl group;
  • R 1 of the peptide of formula 1 may be an acyl group having 3 to 24 carbon atoms and the acyl group may be saturated or unsaturated and may be linear, branched or cyclic ).
  • R 1 is an acyl group of the formula CH 3 - (CH 2 ) m -CO-, and m is any one selected from 1 to 22. More specifically, R 1 is a polyethylene glycol having a molecular weight of 200 to 35,000 Da But is not limited thereto.
  • R 2 of the peptide of formula 1 may be substituted with any one or more selected from C 1 to C 24 aliphatic or cyclic groups, unsubstituted or selected from an amino group, a hydroxyl group or a thiol group .
  • R 1 and R 2 in Formula 1 may be those known in US 2010-0021510 A1, and the entire contents of US 2010-0021510 A1 are incorporated herein.
  • the compounds of the above formula (1) can be used in the examples disclosed in US 2010-0021510 A1.
  • SNARE when fused with the peptide for promoting skin permeation of SEQ ID NO: 1 as compared with the case of using neurotransmitter release modulating peptides Acetyl-EEMQRR, Palmitoyl-DDMQRR and Palmitoyl-YPWTQRF alone, SNARE And inhibit formation of SNARE indirectly by interrupting the inflow of Ca 2 + ions into the nerve cells.
  • the skin wrinkle reduction effect can be further improved when used together.
  • PDGF platelet-derived growth factor
  • &quot is a low molecular weight basic protein consisting of two peptide chains. It is a protein that inhibits proliferation of mesenchymal cells such as smooth muscle cells, fibroblasts, It means to promote.
  • Platinum-derived growth factor subunit a is one of the proteins belonging to the platelet-derived growth factor (PDGF) family, and is contained in platelets in blood and means a protein having a size of about 18 kDa.
  • the PDGF present in the platelets consists of a subunit b having a size of about 14 kDa and the subunit a forming PDGF-AA or PDGF-BB, which is homozygous through disulfide bonds, or PDGF-AB, a heterodimer, ≪ / RTI >
  • the amino acid sequence of PDGFa is not particularly limited as long as it exhibits an effect of promoting regeneration of damaged skin, regeneration of hair, and growth of hair through an effect of increasing collagen production or elastin production, etc.
  • An amino acid sequence may be used, a mutated amino acid sequence thereof may be used, or a fragment thereof may be used.
  • the specific amino acid sequence of PDGFa or the nucleotide sequence information of the gene encoding the PDGFa can be obtained from a known database such as NCBI's GenBank.
  • the PDGFa may specifically be a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 35, but is not limited thereto.
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • &quot is a kind of signal transduction protein and plays an important role in vasculogenesis and angiogenesis.
  • VEGF functions as part of a system to store and supply oxygen to tissues when blood circulation is inadequate.
  • the general function of VEGF is to inhibit the development of embryonic development, injury or post-exercise muscle, and the formation of blood vessels bypassing infarcted blood vessels To create new blood vessels.
  • increased amounts of VEGF may cause abnormal angiogenesis.
  • VEGF which plays an important role in angiogenesis, mainly affects cells constituting the vascular endothelium. According to in vitro results, VEGF stimulates vascular endothelial cell division and migration and enhances microvascular permeability. VEGF is classified into five types in mammals, VEGF-A, VEGFB, VEGF-C, VEGF-D, and PlGF (placenta growth factor). VEGFA promotes angiogenesis, migration of vascular endothelial cells, division, lumen formation, chemotaxis of macrophages and granulocytes, vasodilatation, and VEGF-B promotes angiogenesis of embryos, especially myocardial tissue formation . VEGF-C promotes lymphangiogenesis, and VEGF-D is necessary for the development of the lymphatic vessels surrounding the lungs. PlGF plays an important role in vasculogenesis, ischemia, inflammation, wound healing, and angiogenesis in cancer.
  • VEGF exhibits an effect of promoting regeneration of damaged skin, regeneration and growth of hair through induction of angiogenesis, epidermal cell proliferation, cell migration promotion, microvascular permeability increase and the like
  • its amino acid sequence is specifically limited
  • the entire amino acid sequence of the VEGF may be used, the mutated amino acid sequence thereof may be used, or a fragment thereof may be used.
  • the specific amino acid sequence of the VEGF or the nucleotide sequence information of the gene encoding the VEGF can be obtained from a known database such as NCBI's GenBank.
  • the VEGF may specifically be a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38, but is not limited thereto.
  • VEGF can be present in various forms (isoforms) such as VEGF-189, VEGF-165 and VEGF-121 due to splicing at various positions.
  • VEGF-165 About 19.2 kDa.
  • VEGF may exist as a homodimer through a disulfide bond or may exist as a heterodimer with another growth factor protein, PIGF.
  • Insulin-like growth factor (IGF) &quot is a signal transduction protein and refers to a growth factor consisting of a polypeptide having a molecular weight of 7,500 and a structure similar to that of insulin.
  • Insulin-like growth factor (IGF-1) and IGF-2 are known to act as insulin-like substances in serum but not inhibited by insulin antibodies. Both IGF-1 and IGF-2 are composed of four types of polypeptide chains, A to D, which mediate the action of growth hormone on chondrocyte proliferation and protein biosynthesis, as well as insulin-like physiology.
  • IGF-1 is approximately 7.6 kDa in size and can bind to an insulin-like growth factor receptor as a monomer to manipulate intracellular mechanisms.
  • the amino acid sequence of IGF-1 is not particularly limited as long as it exhibits an effect of promoting regeneration of damaged skin, regeneration of hair and growth of hair through promotion of keratinocyte growth.
  • the entire amino acid sequence of IGF-1 Or a mutated amino acid sequence thereof may be used, or a fragment thereof may be used.
  • the specific amino acid sequence of the IGF-1 or the nucleotide sequence information of the gene encoding the IGF-1 can be obtained from a known database such as NCBI's GenBank.
  • the IGF-1 may be a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 41, but is not limited thereto.
  • keratinocyte growth factor is a kind of signal transduction protein and appears in the epithelialization step of wound repair, which is a step in which keratinocytes cover the wound to form epithelium.
  • the KGF protein is encoded by the FGF7 gene, which belongs to the fibroblast growth factor (FGF) family.
  • FGF fibroblast growth factor
  • the FGF family has a wide range of mitotic or cell viability, which is associated with a variety of biological processes including embryonic development, cell growth, morphogenesis, tissue healing, cancer growth and infiltration.
  • KGF is a potent epithelial cell-specific growth factor, and this mitotic activity appears mainly in keratinocytes and not fibroblasts or endothelial cells.
  • KGF binds to fibroblast growth factor receptor 2b (FCFR2b) and signal transduction proceeds, and FGF10 is known as 'keratinocyte growth factor 2'.
  • FCFR2b fibroblast growth factor receptor 2b
  • the KGF is a growth factor essential for wound repair, and its amino acid sequence is particularly limited as long as it exhibits an effect of restoring skin by promoting skin cell growth or promoting proliferation of cells in a hair follicle thereby preventing hair loss.
  • the entire amino acid sequence of the KGF may be used, the mutated amino acid sequence thereof may be used, or a fragment thereof may be used.
  • the specific amino acid sequence of the KGF or the nucleotide sequence information of the gene encoding the same can be obtained from a known database such as NCBI's GenBank.
  • the KGF may specifically be a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 44, but is not limited thereto.
  • Thymosin beta 4 (T? 4) was first discovered as an extract of the thymus. It is composed of 43 amino acids and has a molecular weight of 5 KDa and is a relatively small protein and exists in almost all cells except red blood cells .
  • the T? 4 was originally known as a protein that regulates actin and binds to G-actin to inhibit synthesis of actin polymer and induce differentiation, migration and angiogenesis of endothelial cells. In recent years, It has been reported that it exerts excellent effects on regeneration.
  • T? 4 plays a role in coordinating the division, differentiation and migration of cells, and regulates the regeneration of damaged skin, regeneration and growth of hair through angiogenesis induction, epidermal cell proliferation, cell migration promotion, ,
  • the amino acid sequence thereof is not particularly limited.
  • the entire amino acid sequence of T? 4 may be used, the mutated amino acid sequence thereof may be used, or a fragment thereof may be used.
  • the specific amino acid sequence of T? 4 or the nucleotide sequence information of the gene encoding the T? 4 can be obtained from a known database such as NCBI's GenBank.
  • the T? 4 specifically may be a peptide represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47, but is not limited thereto.
  • T ⁇ 4 is located in the Y and X dielectrics q.21.3-q.22, and these two genes are homologous and very similar in sequence to three of the 44 amino acids.
  • a fusion protein was prepared based on the X genome sequence, but it is not necessarily limited to the T? 4 on the X chromosome.
  • the term "fusion protein” refers to a peptide artificially synthesized so that the skin permeation-promoting peptide binds to another protein or peptide.
  • the skin permeation-promoting peptide and the neurotransmitter release-controlling peptide Selected from the group consisting of growth factor a subunit (PDGFa), vascular endothelial growth factor (VEGF), insulin like growth factor-1 (IGF-1), keratinocyte growth factor (KGF) and thymosin beta 4 And may include any one of them.
  • PDGFa growth factor a subunit
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • IGF-1 insulin like growth factor-1
  • KGF keratinocyte growth factor
  • thymosin beta 4 may include any one of them.
  • the skin permeation promoting peptide may be a peptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, wherein the neurotransmitter release modulating peptide is selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 2 to 31 Any one or more of the peptides, specifically the peptides of SEQ ID NOS: 2, 3 and 4, or the peptides represented by the above-mentioned formula (1), isomers thereof, racemic compounds, their cosmetic or pharmacologically acceptable salts and the like . More specifically, the fusion peptide may comprise SEQ ID NOs: 32, 33, 34 and a fusion peptide of bovulinithoxin + SEQ ID NO: 1.
  • the platelet-derived growth factor a subunit may comprise the amino acid sequence of SEQ ID NO: 35
  • the endothelial growth factor may comprise the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38
  • (IGF-1) may comprise the amino acid sequence of SEQ ID NO: 41
  • the fusion protein may include a peptide having a sequence that differs from a wild-type amino acid sequence of each domain included therein by one or more amino acid residues.
  • Amino acid exchange in peptides that do not globally alter the activity of the molecule is known in the art. The most commonly occurring exchanges involve amino acid residues Ala / Ser, Val / Ile, Asp / Glu, Thr / Ser, Ala / Gly, Ala / Thr, Ser / Asn, Ala / Val, Ser / Gly, Thy / Pro, Lys / Arg, Asp / Asn, Leu / Ile, Leu / Val, Ala / Glu and Asp / Gly.
  • the protein may include a protein having increased structural stability or increased protein activity due to mutation or modification of the amino acid sequence, such as heat, pH and the like.
  • the fusion protein or the protein constituting the fusion protein may be prepared by a chemical protein synthesis method known in the art, or a gene encoding the fusion protein may be amplified by PCR (polymerase chain reaction) or synthesized by a known method Cloning into an expression vector and expressing it.
  • PCR polymerase chain reaction
  • the fusion protein of the present invention may include a linker peptide between the skin permeation promoting peptide and the physiologically active protein.
  • the fusion protein may be directly linked to the N-terminal of the physiologically active protein, or may be fusion-linked through a linker.
  • the linker may be specifically linked with amino acids such as glycine, alanine, leucine, isoleucine, proline, serine, threonine, asparagine, aspartic acid, cysteine, glutamine, glutamic acid, lysine and arginic acid, Amino acids such as valine, lysine, aspartic acid, glycine, alanine and proline can be used in combination, and more specifically, amino acids such as glycine, valine, leucine and aspartic acid One to five of them may be connected and used.
  • a fusion protein can be prepared by linking the C-terminal of the peptide for promoting skin permeation and the N-terminal of the physiologically active protein through a linker composed of two peptides (GG).
  • the fusion protein of the present invention may be a peptide consisting of any one amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 32 to 34, 36, 39, 42, 45 and 48, but is not limited thereto.
  • a polynucleotide encoding the fusion protein in another aspect of the present invention, there is provided a polynucleotide encoding the fusion protein.
  • polynucleotide has an activity similar to that of the fusion protein, or an amino acid sequence represented by any one of the sequences selected from the group consisting of 70% , More specifically at least 80%, more specifically at least 90%, even more specifically at least 95%, most particularly at least 99%, of a polynucleotide encoding a protein But is not limited to.
  • a protein consisting of any one of the amino acid sequences selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 32 to 34, 36, 39, 42, 45 and 48, or a protein having homology thereto, Lt; RTI ID 0.0 > polynucleotides < / RTI > 32 to 34, 36, 39, 42, 45 and 48, for example, by hybridizing under stringent conditions with a complementary sequence to all or part of the above base sequence, And a sequence encoding a protein having the activity of a protein consisting of the amino acid sequence of any one of the sequences selected from the group consisting of SEQ ID NOs.
  • polynucleotide of the present invention may include any one selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 37, 40, 43, 46 and 49, but is not limited thereto.
  • &quot stringent conditions " means conditions that allow specific hybridization between polynucleotides. These conditions are specifically described in the literature (e.g., J. Sambrook et al., Sangdong).
  • a gene having a homology of at least 80%, specifically at least 90%, more specifically at least 95%, more specifically at least 97%, particularly at least 99% 1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, specifically 60 ° C., 0.1 ⁇ SSC, 0.1 ° C., or 0.1 ⁇ SSC which is a condition for hybridization of genes having lower homology to each other or hybridization with normal hybridization, More specifically, two times to three times at a salt concentration and a temperature corresponding to 0.1% SDS, more specifically, 68 ⁇ ⁇ , 0.1 ⁇ SSC, and 0.1% SDS.
  • Hybridization requires that two nucleic acids have a complementary sequence, although mismatches between bases are possible, depending on the severity of hybridization.
  • the term " complementary " is used to describe the relationship between nucleotide bases capable of hybridizing with each other.
  • adenosine is complementary to thymine and cytosine is complementary to guanine.
  • the present invention may also include substantially similar nucleic acid sequences as well as isolated nucleic acid fragments complementary to the entire sequence.
  • polynucleotides having homology can be detected using hybridization conditions including the hybridization step at a Tm value of 55 ° C and using the conditions described above.
  • the Tm value may be 60 ° C, 63 ° C, or 65 ° C, but is not limited thereto and may be suitably adjusted by those skilled in the art according to the purpose.
  • the appropriate stringency of hybridizing the polynucleotide depends on the length and complementarity of the polynucleotide, and the variables are well known in the art. (See Sambrook et al., Supra, 9.50-9.51, 11.7-11.8).
  • homology refers to the percentage of identity between two polynucleotide or polypeptide moieties. Means the degree of agreement with a given amino acid sequence or base sequence and can be expressed as a percentage. In the present specification, its homologous sequence having the same or similar activity as a given amino acid sequence or base sequence is referred to as "% homology ".
  • the homology between sequences from one moiety to another may be determined by known techniques. For example, standard software for calculating parameters such as score, identity and similarity, specifically BLAST 2.0, or by sequential hybridization experiments under defined stringent conditions, And the appropriate hybridization conditions to be defined are within the skill of the art and can be determined by methods well known to those skilled in the art (for example, J.
  • vector refers to a DNA construct containing a nucleotide sequence of a polynucleotide encoding the desired polypeptide operably linked to a suitable regulatory sequence so as to be capable of expressing the polypeptide of interest in the appropriate host .
  • the regulatory sequence may include a promoter capable of initiating transcription, any operator sequence for regulating such transcription, a sequence encoding a suitable mRNA ribosome binding site, and a sequence controlling the termination of transcription and translation.
  • the vector may be transcribed into an appropriate host cell and then cloned or functioned independently of the host genome and integrated into the genome itself.
  • the vector used in the present invention is not particularly limited as long as it is replicable in the host cell, and any vector known in the art can be used.
  • Examples of commonly used vectors include plasmids, cosmids, viruses and bacteriophages in their natural or recombinant state.
  • pWE15, M13, MBL3, MBL4, IXII, ASHII, APII, t10, t11, Charon4A and Charon21A can be used as the phage vector or cosmid vector
  • the vector usable in the present invention is not particularly limited, and known expression vectors can be used. Specifically, pDZ, pACYC177, pACYC184, pCL, pECCG117, pUC19, pBR322, pMW118, pCC1BAC, pPIC and pGAP vectors can be used and include vectors expressed in bacteria and yeast such as Escherichia coli, can do.
  • a polynucleotide encoding a desired polypeptide in a chromosome can be replaced with a mutated polynucleotide through a vector for intracellular chromosome insertion.
  • the insertion of the polynucleotide into the chromosome can be accomplished by any method known in the art, for example, homologous recombination, but is not limited thereto.
  • transformation in the present invention means introducing a vector comprising a polynucleotide encoding a target polypeptide into a host cell so that the polynucleotide encoded by the polynucleotide can be expressed in the host cell.
  • Transformed polynucleotides may include all of these, whether inserted into the chromosome of the host cell or located outside the chromosome, provided that the polynucleotide can be expressed in the host cell.
  • the polynucleotide also includes DNA and RNA encoding the target polypeptide.
  • the polynucleotide may be introduced in any form as far as it is capable of being introduced into a host cell and expressed.
  • the polynucleotide may be introduced into a host cell in the form of an expression cassette, which is a gene construct containing all the elements necessary for its expression.
  • the expression cassette can typically include a promoter operably linked to the polynucleotide, a transcription termination signal, a ribosome binding site, and a translation termination signal.
  • the expression cassette may be in the form of an expression vector capable of self-replication.
  • polynucleotide may be introduced into the host cell in its own form and operatively linked to the sequence necessary for expression in the host cell, but is not limited thereto.
  • operably linked means that the gene sequence is functionally linked to a promoter sequence that initiates and mediates the transcription of the polynucleotide encoding the polypeptide of the present invention.
  • a cosmetic composition for skin improvement comprising the fusion protein as an active ingredient.
  • the cosmetic composition for improving skin wrinkles or skin elasticity comprising the fusion protein of the present invention as an active ingredient can be provided.
  • " skin elasticity enhancement " or " skin wrinkle improvement " in the present invention means to alleviate the degree to which the skin is stuck or stretched, or to suppress or inhibit the generation of wrinkles on the skin, , An intercellular result of skin epidermis. It means that skin elasticity is maintained as the amount of collagen or hyaluronic acid distributed in the connective tissue of the dermis is increased, and thus wrinkle formation is alleviated.
  • collagen &quot means a protein having more than 1,000 amino acid molecules and having a high content of hydro-proline. Three collagen molecules are twisted into a triple helix, and the collagen fibers keep the skin firm and resilient. In addition, collagen is the main protein of all connective tissues such as skin, blood vessels, bones, teeth and muscles, and collagen is known to be involved in skin elasticity.
  • hyaluronic acid &quot is a type of glycosaminoglycans, and is a chain-like polymer polysaccharide substance in which glucuronic acid and N-acetylglucosamine residues are repeatedly connected. It has high viscosity and elasticity because it has a property of making gel by combining with a large amount of water.
  • hyaluronic acid is a major component of the extracellular matrix and is involved not only in the retention of moisture, maintaining intercellular space, the storage and spread of cell growth factors and nutrients, but also the division and differentiation and migration of cells have.
  • the effect of the fusion protein on the production of collagen and hyaluronic acid was confirmed in order to confirm the effects of the skin elasticity and skin wrinkle improvement of the present invention.
  • PDGFa and the fusion protein (T-PDGFa) were added to the human-derived dermal fibroblasts, and it was confirmed that T-PDGFa had a collagen and hyaluronic acid-producing effect equivalent to that of PDGFa as compared with the control group 5).
  • the effect of the fusion protein on hyaluronic acid production was confirmed in order to confirm the effect of the skin elasticity and skin wrinkle improvement of the present invention.
  • VEGF and fusion protein (T-VEGF) were added to human-derived dermal fibroblasts, and it was confirmed that T-VEGF had the same level of hyaluronic acid-producing effect as VEGF in comparison with the control group (Table 9).
  • the effect of the fusion protein on the umbilical vein endothelial cell proliferation was confirmed in order to confirm the effect of the skin elasticity and the skin wrinkle improvement of the present invention.
  • T-VEGF vascular endothelial growth factor
  • T-VEGF vascular endothelial growth factor
  • the effect of the fusion protein on the keratinocyte growth was confirmed in order to confirm the effect of the skin elasticity and the skin wrinkle improvement of the present invention.
  • IGF-1 and fusion protein T-IGF-1 were added to keratinocytes and cultured. As a result, it was confirmed that T-IGF-1 had a keratinocyte growth function equivalent to that of IGF-1 (Table 14).
  • the effect of the fusion protein on the keratinocyte growth was confirmed in order to confirm the effect of the skin elasticity and the skin wrinkle improvement of the present invention.
  • T-KGF KGF and fusion protein
  • the effect of the fusion protein on the umbilical vein endothelial cell proliferation was confirmed in order to confirm the effects of the skin elasticity and skin wrinkle improvement of the present invention.
  • T? 4 a fusion protein
  • T-T? 4 had cell proliferation efficiency equivalent to T? 4 as compared with the control group (Table 22).
  • a physiologically active protein such as a neurotransmitter release modulating peptide, PDGFa, VEGF, IGF-1, KGF or T? 4
  • a physiologically active protein such as a neurotransmitter release modulating peptide, PDGFa, VEGF, IGF-1, KGF or T? 4
  • the effect of improving the skin wrinkle and elasticity of the physiologically active protein is maintained Able to know.
  • the fusion protein provided by the present invention is a fusion protein which is bound to a physiologically active protein to promote skin permeation, and maintains the efficacy of the physiologically active protein itself, which increases regeneration of damaged skin and hair, It can be used effectively as an active ingredient of a cosmetic composition, a functional cosmetic composition and a quasi-drug composition.
  • the fusion protein of the present invention may be contained in an amount of 0.0001 to 50% by weight based on the weight of the whole cosmetic composition.
  • the content of the fusion protein is less than 0.0001% by weight of the total cosmetic composition, it is difficult to substantially improve the skin. If the content of the fusion protein is more than 50% by weight, the formulation may become unstable.
  • the cosmetic composition according to the present invention can be used as a cosmetic composition in the form of a solution, an ointment for external use, a cream, a foam, a nutritional lotion, a softening water, a pack, a soft water, an emulsion, a makeup base, But are not limited to, those selected from the group consisting of emulsions, pastes, gels, lotions, powders, soaps, surfactant-containing cleansing, oils, powder foundations, emulsion foundations, wax foundations, patches and sprays Do not.
  • the cosmetic composition of the present invention may further comprise at least one cosmetically acceptable carrier to be incorporated in a general skin cosmetic composition, and examples thereof include oil, water, a surfactant, a moisturizer, A thickener, a chelating agent, a coloring matter, an antiseptic, a flavoring, and the like may be appropriately compounded, but the present invention is not limited thereto.
  • the cosmetically acceptable carrier to be contained in the cosmetic composition of the present invention varies depending on the formulations.
  • the carrier component may be an animal oil, a vegetable oil, a wax, a paraffin, a starch, a tracer, a cellulose derivative, polyethylene glycol, silicone, bentonite, silica, talc, zinc oxide Mixtures of these may be used.
  • lactose When the formulation of the present invention is a powder or a spray, lactose, talc, silica, aluminum hydroxide, calcium silicate, polyamide powder or a mixture thereof may be used as the carrier component, Propellants such as fluorohydrocarbons, propane / butane or dimethyl ether.
  • a solvent, a dissolving agent or an emulsifying agent is used as a carrier component, and examples thereof include water, ethanol, isopropanol, ethyl carbonate, ethyl acetate, benzyl alcohol, benzyl benzoate, 1,3-butyl glycol oil may be used, in particular fatty acid esters of cottonseed oil, peanut oil, corn oil, olive oil, castor oil and sesame oil, glycerol aliphatic esters, polyethylene glycols or sorbitan may be used have.
  • the formulation of the present invention is a suspension
  • a carrier such as water, a liquid diluent such as ethanol or propylene glycol, a suspension such as ethoxylated isostearyl alcohol, polyoxyethylene sorbitol ester and polyoxyethylene sorbitan ester, Crystalline cellulose, aluminum metahydroxide, bentonite, agar or tracant, etc. may be used.
  • the formulation of the present invention is a soap, an alkali metal salt of a fatty acid, a fatty acid hemiester salt, a fatty acid protein hydrolizate, isethionate, a lanolin derivative, an aliphatic alcohol, a vegetable oil, a glycerol, have.
  • a cream is prepared by impregnating a fusion protein prepared by binding the physiologically active protein with a peptide for promoting skin permeation, and the skin is improved in skin.
  • Table 3 and Fig. 2 ≪ tb > < TABLE >
  • a functional cosmetic for improving skin comprising the cosmetic composition as an active ingredient.
  • a functional cosmetic for improving wrinkles containing the cosmetic composition of the present invention as an active ingredient can be provided.
  • the cosmetic composition, wrinkle improvement and elasticity enhancement are as described above.
  • cosmedical, cosmeceutical means a product having a professional function which is emphasized physiologically active effects and effects unlike general cosmetics, , Products that help to wrinkle the skin, cosmetics that are prescribed by the Ordinance of the Ministry of Health and Welfare that help protect the skin from burning skin or ultraviolet rays.
  • the functional cosmetic composition of the present invention can be prepared by adding an appropriate carrier to be used in the production of cosmetics for general skin to the cosmetic composition.
  • the carrier to be used is not particularly limited, but specific examples thereof include oil, water, a surfactant, a moisturizer, a lower alcohol, a thickener, a chelating agent, a pigment, a preservative and a flavoring.
  • the functional cosmetic composition of the present invention exhibits a skin wrinkle-improving effect or skin elasticity-enhancing effect, and its formulation is not particularly limited.
  • it may be a solution, an emulsion, a suspension, a paste, a cream, a lotion, a gel, a powder
  • It may be formulated into formulations such as surfactant-containing cleansing, oil, soap, liquid cleansing agent, bath agent, foundation, makeup base, essence, lotion, foam, pack, An external ointment, a softening agent, a nutritional lotion, a nutritional cream, a massage cream, an essence, a pack, an emulsion or an oil gel.
  • the carrier to be used may be selectively used according to the formulation of cosmetics.
  • a paste, a cream or a gel when an ointment, a paste, a cream or a gel is prepared, wax, paraffin, starch, tragacanth, cellulose derivative, polyethylene glycol, silicone, bentonite, silica, talc, Can be used alone or in combination;
  • the ointment for external use may be prepared to contain 50 to 97% by weight of petrolatum and 0.1 to 5% by weight of polyoxyethylene oleyl-ether phosphate in addition to the fusion protein of the present invention;
  • the softening longevity may be prepared to contain from 1 to 10% by weight of polyhydric alcohols such as propylene glycol or glycerin and from 0.05 to 2% by weight of a surfactant such as polyethylene oleyl ether or polyoxyethylene hardened castor oil ;
  • the nutritional lotion and nutritional cream may contain, in addition to the fusion protein of the present invention, 5 to 20% by weight of an oil such as squalane, vaseline or octyldodecanol and 3 to 15% by weight of a wax component such as cetanol, stearyl alcohol or beeswax ≪ / RTI >
  • the essence may be prepared to contain 5 to 30% by weight of polyhydric alcohol
  • a cosmetic composition for improving hair loss comprising the fusion protein as an active ingredient.
  • hair loss improvement &quot refers to a condition in which hair normally should be present due to various habits and environmental influences, such as genetic causes, hormone imbalance, mental stress of life, exposure to air pollution, To improve hairless state, to prevent hair loss from progressing, and to be hairy.
  • the dermal papilla cells treated with the fusion protein of the present invention were cultured, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo) , It was confirmed that the fusion protein in which the physiologically active protein and the skin permeation enhancing peptide are combined has a cell proliferation efficiency equivalent to that of the physiologically active protein (Tables 6, 11, 15, 19 and 23).
  • the bioactive protein has the effect of improving the hair loss.
  • the cosmetic composition may be at least one selected from the group consisting of hair tonic, hair conditioner, hair essence, hair lotion, hair nourishing lotion, hair shampoo, hair conditioner, hair treatment, hair cream, hair nourishing cream, hair moisturizing cream, Hair shampoo, hair shampoo, hair shampoo, hair shampoo, hair shampoo, hair soap, hair cleansing foam, hair oil, hair drying agent, hair preservative, hair dye, A hair mousse or a hair spray.
  • the composition of the present invention can be used by a method of directly applying or dispersing the hair or scalp.
  • the hair to which the composition of the present invention is applied includes hair follicles and hair follicles, hair and eyelashes and eyelashes, beard, armpits, pubic hair, hair follicles and hair follicles.
  • a quasi-drug composition for skin improvement comprising the fusion protein as an active ingredient.
  • a quasi-drug composition for improving skin wrinkles or skin elasticity comprising the fusion protein of the present invention as an active ingredient can be provided.
  • a quasi-drug composition for improving hair loss comprising the fusion protein as an active ingredient.
  • fusion protein skin wrinkle improvement, skin elasticity improvement and hair loss improvement are as described above.
  • the quasi-drug composition of the present invention may further contain a pharmaceutically acceptable carrier, excipient or diluent as necessary in addition to the above components.
  • a pharmaceutically acceptable carrier, excipient or diluent is not limited as long as the effect of the present invention is not impaired, and examples thereof include fillers, extenders, binders, wetting agents, disintegrants, surfactants, lubricants, sweeteners, .
  • Representative examples of the pharmaceutically acceptable carrier, excipient or diluent of the present invention include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, maltitol, starch, gelatin, glycerin, acacia rubber, alginate, calcium phosphate, calcium Methyl cellulose, polyvinyl pyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate, mineral oil, propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oils such as sodium carboxymethylcellulose, , Injectable ester, witepsol, macrogol, tween 61, cacao paper, and laurie paper.
  • composition containing the fusion protein of the present invention as an active ingredient may further contain one or more active ingredients exhibiting the same or similar functions.
  • active ingredients exhibiting the same or similar functions.
  • it may include skin barrier protection, elasticity enhancement, wrinkle enhancement, and moisturizing ingredients.
  • the quasi-drug composition is a whitening ingredient known in the art, and includes a substance inhibiting tyrosinase enzyme activity such as kojic acid, arbutin, hydroquinone, L-ascorbic acid; Retinoic acid, TGF, proteins from animal placenta, betulinic acid and chlorella extract, as skin elasticity, wrinkle or moisturizing ingredients known in the art; And derivatives thereof, and various plant extracts. ≪ Desc / Clms Page number 2 > The additional ingredient may be included in an amount of 0.0001% to 5% by weight based on the total weight of the composition, and the content range may be adjusted according to requirements such as skin safety, ease of use and the like.
  • a substance inhibiting tyrosinase enzyme activity such as kojic acid, arbutin, hydroquinone, L-ascorbic acid
  • Retinoic acid, TGF proteins from animal placenta, betulinic acid and chlorella extract,
  • the quasi-drug composition of the present invention can be exemplified by a disinfectant cleaner, a shower foam, a softener solution, a wet tissue, a coating agent, and the like.
  • a disinfectant cleaner a shower foam
  • a softener solution a wet tissue
  • a coating agent a coating agent
  • the quasi-drug composition comprising the fusion protein of the present invention as an active ingredient can be used for skin elasticity enhancement, skin wrinkle improvement, or hair loss improvement, including a step of applying to the skin of an individual.
  • the subject includes, without limitation, mammals including rats, livestock, humans, and the like.
  • a phage display method was performed in which a phage library and a dissolution test method of a transdermal preparation were combined.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the upper and lower ends of a Franz glass cell (standard diameter 9 mm, Receiver 5 mL, Permgear), and the phage solution was added to the upper end thereof. A phage permeating the pig skin and reaching the lower receiver was obtained and amplified.
  • the amplification was performed using E. coli ER2738 (New England Biolab) as a host cell. Specifically, 5 mL of the phage solution was added to E. coli ER2738 strain shake cultured in 25 mL of LB medium and cultured for 4 hours. Then, the culture was centrifuged at 8,000 G to obtain a supernatant containing the phage fraction. The supernatant was treated with 6 mL of sediment (20% PEG6000, 2.5M NaCl) and allowed to react to precipitate the phage. The reaction solution was centrifuged at 8,000 G to precipitate the phage. The precipitate was suspended in TBS solution To obtain an amplified phage solution.
  • E. coli ER2738 New England Biolab
  • the TBS solution containing the phage was added to E. coli strain ER2738 to suspend, TOP agar was added to the suspension, LB / X-gal / IPTG plate media. Then, the solidified medium was cultured for 16 hours, and a blue colony was selected. The strain derived from the selected colonies was cultured for 6 hours, DNA was obtained therefrom, and the base sequence derived from the phage was analyzed to obtain a skin permeation promoting peptide (SEQ ID NO: 1) exhibiting the property of penetrating pig skin Respectively.
  • SEQ ID NO: 1 skin permeation promoting peptide
  • Example 2 Promotes skin permeation to physiologically active protein The peptide Combined Preparation of fusion protein
  • Example 2-1 Neurotransmitter release regulation To peptides For promoting skin permeation Peptides end Combined Preparation of fusion protein
  • a neurotransmitter release modulating peptide having an amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a peptide for promoting skin permeation and a peptide for controlling neurotransmitter release of botulinum toxin are combined ≪
  • RTI ID 0.0 >
  • the neurotransmitter release-controlling fusion protein was synthesized by a solid phase peptide synthesis method using an automatic peptide synthesizer (Applied Biosystems Model 431A).
  • HMP parahydroxymethylphenyloxymethylpolystyrene
  • Peptide synthesis was performed according to the standard scale Fmoc coupling protocol developed by ABI, and the parameters were edited prior to administration and performed according to the automatic synthesis menu (see ABI User's Manual, Jan, 1992).
  • deprotection was carried out with 20% piperidine diluted with N-methylpyrrolidine (NMP) for 21 minutes, washed with NMP for 9 minutes and coupling was carried out for 71 minutes Lt; / RTI > A 1-hydroxy-benzotriazole (HOBT) was used for the coupling and a system for 7 minutes of washing with NMP was used.
  • NMP N-methylpyrrolidine
  • HOBT 1-hydroxy-benzotriazole
  • Example 2-1-2 Isolation and purification of fusion protein
  • the neurotransmitter release-controlling fusion protein synthesized in Example 2-1-1 was isolated and purified by the following procedure.
  • the fusion protein synthesized in Example 2-1-1 was separated from a solid support using trifluoroacetic acid (TFA), and purified using ABI's manual (Introduction to Cleavage Techniques, P6-19 (1990) ), The fusion peptide was isolated. Specifically, the resin having the fusion protein synthesized in Example 2-1-1 was placed in a round flask and cooled. Then, 0.75 g of crystalline phenol, 0.25 mL of 1,2-ethanedithiol (EDT), 0.5 mL of thioanisole , 0.5 mL of distilled water, and 10 mL of TFA were added, and the lid was closed, followed by reaction at room temperature for 1 to 2 hours.
  • TFA trifluoroacetic acid
  • the resin and the reaction solution were filtered under a low vacuum through a sintered glass funnel to separate the resin and the fusion protein solution.
  • a solution of the flask and glass funnel washed with 5-10 mL of dichloromethane (DCM) was mixed with the fusion protein solution, and 50 mL or more of cold diethyl ether was added to obtain a precipitate of the fusion protein.
  • the precipitate was filtered through a funnel in a low vacuum, and the precipitate collected on the funnel was dried and dissolved in 30% acetic acid and freeze-dried.
  • the fusion protein thus obtained was purified by HPLC (High Performance Liquid Chromatography).
  • Buffer A was equilibrated with 10% acetonitrile + 0.05% TFA and buffer B was diluted with 80% acetonitrile + 0.05% TFA to obtain a fusion protein Lt; / RTI > As a result, a highly purified purified neurotransmitter release modulating fusion protein (SEQ ID NO: 32) was obtained and the synthesis yield was about 30 5%.
  • Example 2-2 Platelet origin Growth factor a subunit (PDGFa) For promoting skin permeation Peep Tide Combined Preparation of fusion protein
  • PDGFa platelet-derived growth factor a subunit
  • SEQ ID NO: 36 two PDGFa
  • GG linker composed of amino acid
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 35 were synthesized, respectively, and a nucleotide sequence encoding two amino acids (GG)
  • GG nucleotide sequence encoding two amino acids
  • the prepared expression vector was transformed into Pichia pastoris by introducing the obtained transformants, and the thus obtained culture a transformant, and then, the culture was filtered to recover the fusion protein consisting of a peptide for facilitating skin penetration -VEGF.
  • GPC column chromatography to finally produce T-PDGFa (SEQ ID NO: 36), which is a fusion protein composed of peptide-PDGFa for skin permeation promotion.
  • Example 2-3 Vascular Endothelial Growth Factor (VEGF ) For skin permeation promotion The peptide Preparation of conjugated fusion proteins
  • VEGF having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 and the C-terminus of the skin permeation enhancing peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 obtained in Example 1 was replaced with two amino acids ( GG) to produce T-VEGF (SEQ ID NO: 39), a fusion protein in the form of a linker.
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 38 are synthesized, and a nucleotide sequence encoding two amino acids (GG) is linked at the center
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 39 was prepared.
  • the obtained polynucleotide was introduced into a pPIC expression vector to prepare an expression vector.
  • the prepared expression vector was transformed into Pichia pastoris by introducing the obtained transformants, and the thus obtained culture a transformant, and then, the culture was filtered to recover the fusion protein consisting of a peptide for facilitating skin penetration -VEGF.
  • GPC column chromatography to finally produce T-VEGF (SEQ ID NO: 39), which is a fusion protein composed of peptide-VEGF for skin permeation promotion.
  • Example 2-4 Insulin-like Growth factor-1 ( IGF1 ) For skin permeation promotion The peptide Preparation of conjugated fusion proteins
  • IGF-1 insulin-like growth factor-1
  • SEQ ID NO: 41 The N-terminal of insulin-like growth factor-1 (IGF-1) having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 41 and the C-terminal of the skin permeation enhancing peptide having the amino acid sequence of SEQ ID NO: IGF-1 (SEQ ID NO: 42), which is a fusion protein in the form of a linker composed of amino acids (GG).
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 41 are synthesized, and a nucleotide sequence encoding two amino acids (GG) is linked at the center
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 42 was prepared.
  • the obtained polynucleotide was introduced into a pPIC expression vector to prepare an expression vector.
  • the prepared expression vector was transformed into Pichia pastoris by introducing the obtained transformants, and the thus obtained culture a transformant, and then, the culture was filtered to recover the fusion protein consisting of a peptide for facilitating skin penetration -VEGF.
  • GPC column chromatography to finally produce T-IGF-1 (SEQ ID NO: 42), which is a fusion protein composed of peptide-IGF-1 for skin permeation promotion.
  • Example 2-5 keratinocyte growth factor ( KGF ) For skin permeation promotion The peptide Combined Preparation of fusion protein
  • KGF keratinocyte growth factor
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 44 were synthesized, respectively, and a nucleotide sequence encoding two amino acids (GG)
  • GG nucleotide sequence encoding two amino acids
  • the prepared expression vector was transformed into Pichia pastoris by introducing the obtained transformants, and the thus obtained culture a transformant, and then, the culture was filtered to recover the fusion protein consisting of a peptide for facilitating skin penetration -VEGF.
  • GPC column chromatography to finally produce T-KGF (SEQ ID NO: 45), which is a fusion protein composed of peptide-KGF for skin permeation promotion.
  • Example 2-6 Thymosin Beta 4 ( T? 4 ) For skin permeation promotion The peptide Combined Preparation of fusion protein
  • T? 4 The N-terminal of thymosin beta 4 (T? 4) having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47 and the C-terminal of the peptide for skin permeation promotion having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 obtained in Example 1 was replaced with two amino acids T-T? 4 (SEQ ID NO: 48), which is a fusion protein in the form of a linker.
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47 are synthesized, and a nucleotide sequence encoding two amino acids (GG) is linked at the center
  • a polynucleotide encoding the amino acid sequence of SEQ ID NO: 48 was prepared.
  • the obtained polynucleotide was introduced into a pPIC expression vector to prepare an expression vector.
  • the prepared expression vector was transformed into Pichia pastoris by introducing the obtained transformants, and the thus obtained culture a transformant, and then, the culture was filtered to recover the fusion protein consisting of a peptide for facilitating skin penetration -VEGF.
  • GPC column chromatography to finally produce T-T? 4 (SEQ ID NO: 48), which is a fusion protein composed of peptide-T? 4 for skin permeation promotion.
  • Example 3-1 Verification of effect of neurotransmitter regulatory fusion protein
  • Example 2-1 In order to confirm the skin improvement application of the neurotransmitter release-controlling fusion peptide prepared in Example 2-1, an experiment for confirming the effect of suppressing muscle contraction, skin permeability, skin retention and wrinkle was performed as described below.
  • 3-1-1 Inhibitory effect of neurotransmitter regulatory fusion protein on muscle contraction
  • C2C12 cells were plated on a plate with 10% (v / v) fetal bovine serum and 1% (v / v) After incubation in DMEM media containing antibiotics, neuroblastoma was co-cultured further on the same plate. Then, the number of contractions of C2C12 cells was measured for 30 seconds at the start of cell shrinkage of C2C12 cells.
  • the cells were washed with PBS three times, and then the medium containing no calf serum and 50 ppm of the fusion peptide were added for 2 hours Lt; / RTI > Thereafter, the number of contractions of C2C12 cells was measured again for 30 seconds to confirm the degree of suppression of muscle contraction.
  • Argireline TM which is a control group with no skin permeation promoting peptide
  • neurotransmitter release-controlling fusion peptides also inhibited the release of neurotransmitter from neurons and decreased the number of contractions of C2C12 cells .
  • pig skin (0.7 mm in thickness, Medikinetics) was mounted between the upper and lower ends of the glass cell, and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) containing 1% BSA and 0.01% Tween 20 was prepared. Then, 500 ⁇ L of the TBS was added to the donor chamber of the glass cell, and 5 mL of the TBS was added to the receiver chamber of the glass cell.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • control peptide Agirelline TM , [Pal] DDMQRR, [Pal] YPWTQRF, Botulinum toxoid
  • concentration of the control peptide or neurotransmitter release-controlling fusion protein at the lower end was quantitatively analyzed, and the relative content of the amount of the neurotransmitter release-controlling fusion peptide to the control peptide content was calculated as the amount of permeation promotion, Table 1 shows the results.
  • the skin permeability of the neurotransmitter release modulating protein is remarkably increased.
  • pig skin (0.7 mm in thickness, Medikinetics) was placed between the upper and lower ends of the glass cell, and 1% BSA (Sigma) and 0.01% BSA were added to 500 ⁇ L and 5 mL of TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) % Tween 20 was dissolved. Then, 500 ⁇ L of the above TBS was added to the upper part of the glass cell, and 5 mL of the above TBS was added to the lower end of the glass cell.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • control peptide Agirelline TM , [Pal] DDMQRR, [Pal] YPWTQRF, Botulinum toxoid
  • neurotransmitter release modulating fusion protein prepared in Example 2 were treated in a donor chamber of Franz cell system using porcine skin
  • the pig skin tissue was disrupted and HPLC quantitation was used. The results are shown in Table 2 below.
  • Neurotransmitter release control Skin retention of fusion protein process Peptides Relative permeability ( % ) Argireline TM 100 ⁇ 14 Agirelline (TM) (Acetyl-EEMQRR) - permeable peptide 9800 ⁇ 1200 [Pal] DDMQRR-permeable peptide 7220 + - 422 [Pal] YPWTQRF-permeable peptide 6290 + - 1350 Botulinum toxoid-permeable peptide 8320 + - 242
  • the use of the neurotransmitter release modulating fusion protein of the present invention significantly increases the skin retention of the neurotransmitter release modulating protein.
  • the neurotransmitter release-controlling fusion protein cream showed an improvement of more than two-fold superior to that of Argireline TM cream.
  • the neurotransmitter release- The penetration into the skin was effectively performed, and it was found that the effect of improving wrinkles was excellent.
  • the neurotransmitter Since the neurotransmitter has a smaller molecular weight than the factor having a larger molecular weight as in the case of the conventional growth factors, the molecular weight of the fusion protein bound with the peptides for promoting permeation of skin becomes smaller, and the skin permeability and skin retention are increased. Suggesting that the effect of improving the wrinkles of the skin is increased.
  • Example 3-2 Platelet origin Growth factor a sub-unit The fusion protein (T- PDGFa )
  • T-PDGFa prepared in Example 2-2
  • an experiment for improving skin elasticity, improving wrinkles of skin, improving hair loss, skin permeability and skin persistence effect was performed as described below.
  • T-PDGFa synthesized in Example 2-2 The effect of T-PDGFa synthesized in Example 2-2 on collagen production was compared with that of PDGFa.
  • dermal fibroblast was inoculated into a 24-well plate and cultured for 24 hours to obtain a culture showing a degree of saturation of 70 to 80%.
  • the cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium containing 10 ng / ml of T-PDGFa or PDGFa for 2 days.
  • the supernatant of the culture was obtained and the content of collagen produced and secreted by the culture was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems) (Table 4).
  • T-PDGFa in which PDGFa was fused with a peptide for promoting skin permeation, had a collagen-producing effect equivalent to that of PDGFa.
  • PDGFa has the effect of improving the wrinkles and elasticity of skin of PDGFa even if the peptide for skin permeation promotion is fused to PDGFa.
  • Example 3-2-2 Test for producing hyaluronic acid (HA)
  • T-PDGFa synthesized in Example 2-2 The effect of T-PDGFa synthesized in Example 2-2 on hyaluronic acid (HA) production was compared with PDGFa.
  • dermal fibroblast was inoculated into a 24-well plate and cultured for 24 hours to obtain a culture showing a degree of saturation of 70 to 80%.
  • the cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium containing 10 ng / ml of T-PDGFa or PDGFa for 2 days.
  • the supernatant of the culture was obtained and the content of produced and secreted hyaluronic acid was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems) (Table 5).
  • T-PDGFa fusion protein on hyaluronic acid (HA) production Treated protein Generation level ( % ) Control group 100 ⁇ 4.9 PDGFa 897 ⁇ 30 T-PDGFa 920 ⁇ 29
  • T-PDGFa in which PDGFa is fused with a skin permeation enhancing peptide, has a hyaluronic acid-producing effect equivalent to that of PDGFa.
  • PDGFa has the effect of improving the wrinkles and elasticity of skin of PDGFa even if the peptide for skin permeation promotion is fused to PDGFa.
  • Example 3-2-3 Effect of proliferation of follicular stem cells
  • T-PDGFa synthesized in Example 2-2 The effect of T-PDGFa synthesized in Example 2-2 on PDGF proliferation was compared with PDGFa.
  • dermal papilla cells were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures representing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 1 ng / ml of T-PDGFa or PDGFa for 1 day. The culture was obtained, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo). Serum cultures in serum-free DMEM medium without T-PDGFa or PDGFa were used as controls (Table 6).
  • T-PDGFa Fusion Protein on Follicular Stem Cell Proliferation Treated protein Growth level ( % )
  • Control group 100 ⁇ 11 PDGFa 1030 ⁇ 19 T-PDGFa 1016 ⁇ 7
  • T-PDGFa in which PDGFa was fused with a peptide for promoting skin permeation, had cell proliferation efficiency equivalent to that of PDGFa.
  • PDGFa has the effect of improving hair loss.
  • Example 3-2-4 Verification of skin permeability
  • the skin permeability was verified by comparing the fusion protein T-PDGFa synthesized in Example 2-2 with PDGFa.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the top and bottom of a Franz glass cell (Standard diameter 9 mm, Receiver 5 ml, Permegear), and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) was prepared.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • To the top of the glass cell 500 ⁇ l of TBS was added to the donor chamber, and 5 ml of TBS was added to the bottom of the glass cell (receiver chamber). Then, 2 ⁇ g of PDGFa or T-PDGFa was added to the upper portion and reacted for 16 hours.
  • the concentration of PDGFa or T-PDGFa present at the lower end was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems)
  • the relative content of the amount of T-PDGFa to the content was calculated as the amount of permeation (Table 7).
  • T-PDGFa As shown in Table 7, it was confirmed that the skin permeability of T-PDGFa was about 3 times higher than that of PDGFa.
  • the skin persistence was verified by comparing the fusion protein T-PDGFa synthesized in Example 2-2 with PDGFa.
  • Example 8 the pig skin remaining after the experiment in Example 3-2-4 was recovered and then pulverized after liquid nitrogen freezing, and the content of PDGFa or T-PDGFa contained therein was quantified using an ELISA kit (R & D Systems) Respectively. In addition, the relative content of the amount of T-PDGFa to the content of PDGFa was calculated as the residual amount (Table 8).
  • Example 3-3 Vascular endothelial growth factor VEGF ) Verification of effect of fusion protein
  • T-VEGF prepared in Example 2-3
  • an experiment for improving skin elasticity, improving wrinkles of skin, improving hair loss, skin permeability and residual skin effect was conducted as described below.
  • Example 3-3-1 Effect of hyaluronic acid (HA) production
  • T-VEGF synthesized in Example 2-3 To examine the effect of T-VEGF synthesized in Example 2-3 on hyaluronic acid production in comparison with VEGF.
  • dermal fibroblast was inoculated into a 24-well plate
  • T-VEGF fusion protein on hyaluronic acid (HA) production Treated protein Generation level ( % ) Control group 100 ⁇ 4.9 VEGF 220 ⁇ 20 T-VEGF 230 ⁇ 18
  • T-VEGF in which VEGF was fused with a skin permeation enhancing peptide, also had a hyaluronic acid-producing effect equivalent to that of VEGF.
  • T-VEGF synthesized in Example 2-3 was verified by comparing with VEGF.
  • a human Umbilical Vein Endothelial Cell was inoculated into a 96-well plate and cultured for 24 hours to obtain a culture showing 5,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free M199 medium for 16 hours. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free M199 medium containing 100 ng / ml of T-VEGF or VEGF for 1 day. Cultures were obtained and quantified by Cell Counter Kit-8 (Dojindo). As a control, the resultant product was used in a serum-free M199 medium containing no T-VEGF or VEGF (Table 10).
  • T-VEGF fusion protein Effect of T-VEGF fusion protein on endothelial cell proliferation Treated protein Growth level ( % ) Control group 100 ⁇ 9.9 VEGF 170 ⁇ 10 T-VEGF 185 ⁇ 15
  • T-VEGF fused with VEGF to the skin permeation enhancing peptide also had cell proliferation efficiency equivalent to that of VEGF.
  • Example 3-3-3 Verification of proliferation effect of follicular stem cells
  • T-VEGF synthesized in Example 2-3 The effect of T-VEGF synthesized in Example 2-3 on VEGF and skin cell proliferation was verified.
  • dermal papilla cells were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures representing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 1 ng / ml of T-VEGF or VEGF for 1 day. The culture was obtained, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo). As a control, the resultant culture was used in a serum-free DMEM medium containing no T-VEGF or VEGF (Table 11).
  • T-VEGF Fusion Protein on Follicular Stem Cell Proliferation Treated protein Growth level ( % )
  • Control group 100 ⁇ 4.9 VEGF 340 ⁇ 50 T-VEGF 310 ⁇ 20
  • T-VEGF in which VEGF was fused with a peptide for promoting skin permeation, had cell proliferation efficiency equivalent to that of VEGF.
  • Example 3-3-4 Verification of skin permeability
  • the skin permeability was verified by comparing the fusion protein T-VEGF synthesized in Example 2-3 with VEGF.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the top and bottom of a Franz glass cell (Standard diameter 9 mm, Receiver 5 ml, Permegear), and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) was prepared.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • 500 ⁇ l of TBS was added to the donor chamber, and 5 ml of TBS was added to the bottom of the glass cell (receiver chamber).
  • 2 ⁇ g of VEGF or T-VEGF was added to the top and allowed to react for 16 hours.
  • the concentration of VEGF or T-VEGF present at the bottom was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems)
  • the relative content of the amount of T-VEGF to the content was calculated as the permeation amount (Table 12).
  • the skin permeability is remarkably increased when the T-VEGF fusion protein of the present invention is used.
  • Example 3-3-4 the pig skin remaining after the experiment in Example 3-3-4 was recovered, and then liquid nitrogen was frozen and pulverized.
  • the content of VEGF or T-VEGF contained therein was quantitatively determined using an ELISA kit (R & D Systems) Respectively.
  • the relative content of the amount of T-VEGF to the content of VEGF was calculated as the residual amount (Table 13).
  • the skin persistence is remarkably increased when the T-VEGF fusion protein of the present invention is used.
  • Example 3-4 Verification of effect of insulin-like growth factor-1 fusion protein (T-IGF-1)
  • T-IGF-1 prepared in Example 2-4
  • an experiment for improving skin elasticity, improving wrinkles of skin, improving hair loss, skin permeability and residual skin effect was conducted as described below.
  • Example 3-4-1 Test for skin barrier strengthening effect
  • T-IGF-1 synthesized in Example 2-4 The effect of T-IGF-1 synthesized in Example 2-4 on keratinocyte growth was compared with IGF-1.
  • keratinocytes were cultured in a 96-well plate for one day to obtain a culture showing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 100 ng / ml of T-IGF-1 or IGF-1 for 1 day.
  • T-IGF-1 fusion protein on keratinocyte growth Treated protein Generation level ( % )
  • Control group 100 ⁇ 12 IGF-1 250 ⁇ 20 T-IGF-1 235 ⁇ 15
  • T-IGF-1 in which IGF-1 was fused with a peptide for promoting skin permeation, also had the same level of improving skin wrinkle elasticity as IGF-1.
  • Example 3-4-2 Verification of proliferation effect of follicular stem cell
  • T-IGF-1 synthesized in Example 2-4 The effect of T-IGF-1 synthesized in Example 2-4 on skin cell proliferation was compared with IGF-1.
  • dermal papilla cells were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures representing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 1 ng / ml of T-IGF-1 or IGF-1 for 1 day. The culture was obtained, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo). Serum cultures were used as controls in serum-free DMEM medium without T-IGF-1 or IGF-1 (Table 15).
  • T-IGF-1 in which IGF-1 was fused with a skin permeation enhancing peptide, also had cell proliferation efficiency equivalent to that of IGF-1.
  • Example 3-4-3 Verification of skin permeability
  • the skin permeability was verified by comparing the fusion protein T-IGF-1 synthesized in Example 2-4 with IGF-1.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the top and bottom of a Franz glass cell (Standard diameter 9 mm, Receiver 5 ml, Permegear), and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) was prepared.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • the concentration of IGF-1 or T-IGF-1 present at the lower end was measured by ELISA kit (R & D Systems) , And the relative content of the amount of T-IGF-1 to the content of IGF-1 was calculated as the amount of permeation (Table 16).
  • T-IGF-1 increased the skin permeability about 3 times as compared with IGF-1.
  • the skin permeability is remarkably increased when the T-IGF-1 fusion protein of the present invention is used.
  • Example 3-4-4 the pig skin remaining after the experiment in Example 3-4-4 was recovered, and then liquid nitrogen was frozen and pulverized.
  • the content of IGF-1 or T-IGF-1 contained therein was measured by ELISA kit (R & D Systems) And analyzed by quantitative analysis.
  • the relative amount of the amount of T-IGF-1 to the content of IGF-1 was calculated as the residual amount (Table 17).
  • T-IGF-1 increased skin retention by about 100 times as compared with IGF-1.
  • Example 3-5 Effect of keratinocyte growth factor fusion protein (T-KGF)
  • Example 3-5-1 Test for skin barrier strengthening effect
  • T-KGF synthesized in Example 2-5 The effect of T-KGF synthesized in Example 2-5 on keratinocyte growth was verified by comparing with KGF.
  • keratinocytes were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures showing 6,000 cells per well.
  • the cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 100 ng / ml of T-KGF or KGF for 1 day. Cultures were obtained and quantitated by Cell Counter Kit-8 (Dojindo). As a control, the resultant product was used in a serum-free DMEM medium containing no T-KGF or KGF (Table 18).
  • T-KGF fusion protein on keratinocyte growth Treated protein Generation level ( % )
  • Control group 100 ⁇ 15 KGF 620 ⁇ 25 T-KGF 590 ⁇ 27
  • T-KGF in which KGF was fused with skin permeation enhancing peptide, also had cell growth efficiency equivalent to that of KGF.
  • T-KGF synthesized in Example 2-5 The effect of T-KGF synthesized in Example 2-5 on skin cell proliferation was verified by comparing with KGF.
  • dermal papilla cells were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures representing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 10 ng / ml of T-KGF or KGF for 1 day. The culture was obtained, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo). As a control, the resultant product was used in a serum-free DMEM medium containing no T-KGF or KGF (Table 19).
  • T-KGF in which KGF was fused with skin permeation enhancing peptide, also had cell proliferation efficiency equivalent to that of KGF.
  • KGF has the effect of improving hair loss.
  • Example 3-5-3 Verification of skin permeability
  • the skin permeability was verified by comparing the fusion protein T-KGF synthesized in Example 2-5 with KGF.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the top and bottom of a Franz glass cell (Standard diameter 9 mm, Receiver 5 ml, Permegear), and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) was prepared.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • To the top of the glass cell 500 ⁇ l of TBS was added to the donor chamber, and 5 ml of TBS was added to the bottom of the glass cell (receiver chamber). Then, 2 ⁇ g of KGF or T-KGF was added to the top and allowed to react for 16 hours. Then, the concentration of KGF or T-KGF present at the bottom was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems) The relative amount of the amount of T-KGF relative to the content was calculated as the amount of permeation (Table 20).
  • the skin permeability is remarkably increased when the T-KGF fusion protein of the present invention is used.
  • Example 21 the pig skin remaining after the experiment in Example 3-5-3 was recovered and then pulverized after liquid nitrogen freezing.
  • the content of KGF or T-KGF contained therein was quantified using an ELISA kit (R & D Systems) Respectively.
  • the relative amount of the amount of T-KGF relative to the content of KGF was calculated as the residual amount (Table 21).
  • T-KGF showed about 100 times more skin retention than KGF.
  • Example 3-6 Thymosin Beta 4 fusion protein (T- T? 4 )
  • T-T? 4 synthesized in Example 2-6 was compared with T? 4 to verify the effect on endothelial cell proliferation.
  • a human Umbilical Vein Endothelial Cell was inoculated into a 96-well plate and cultured for 24 hours to obtain a culture showing 5,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free M199 medium for 16 hours. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free M199 medium containing 100 ng / ml of T-T? 4 or T? 4 for 1 day. Cultures were obtained and quantified by Cell Counter Kit-8 (Dojindo). Serum cultures in serum-free M199 medium without T-T? 4 or T? 4 were used as a control (Table 22).
  • T-T? 4 in which T? 4 was fused with a skin permeation enhancing peptide, also had cell proliferation efficiency equivalent to T? 4.
  • T-T? 4 synthesized in Example 2-6 was compared with T? 4 to verify the effect on skin cell proliferation.
  • dermal papilla cells were inoculated into 96-well plates and cultured for 24 hours to obtain cultures representing 6,000 cells per well. The cultures were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium for 1 day. After washing with PBS, the cells were cultured in serum-free DMEM medium containing 10 ng / ml of T-T? 4 or T? 4 for 1 day. The culture was obtained, and the difference in the amount of cell proliferation was quantitatively analyzed using Cell Counter Kit-8 (Dojindo). Serum cultures were used as controls in serum-free DMEM medium without T-T? 4 or T? 4 (Table 23).
  • T-T? 4 in which T? 4 was fused with a skin permeation enhancing peptide, also had cell proliferation efficiency equivalent to T? 4.
  • T? 4 has the effect of improving hair loss.
  • Example 3-6-3 Verification of skin permeability
  • the skin permeability was verified by comparing the fusion protein T-T? 4 synthesized in Example 2-6 with T? 4.
  • pig skin (0.7 mm thick, Medikinetics) was mounted between the top and bottom of a Franz glass cell (Standard diameter 9 mm, Receiver 5 ml, Permegear), and TBS (50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl) was prepared.
  • TBS 50 mM Tris pH 7.5, 150 mM NaCl
  • To the top of the glass cell 500 ⁇ l of TBS was added to the donor chamber, and 5 ml of TBS was added to the bottom of the glass cell (receiver chamber).
  • 2 ⁇ g of T ⁇ 4 or T-T ⁇ 4 was added to the top and allowed to react for 16 hours.
  • the concentration of T ⁇ 4 or T-T ⁇ 4 present at the bottom was quantitatively analyzed using an ELISA kit (R & D Systems)
  • the relative content of the amount of T-T? 4 to the content was calculated as the amount of permeation (Table 24).
  • the skin permeability is remarkably increased when the T-T? 4 fusion protein of the present invention is used.
  • Example 25 the pig skin remaining after the experiment in Example 3-6-3 was recovered, and then liquid nitrogen was frozen and then pulverized.
  • the relative content of the amount of T-T? 4 to the content of T? 4 was calculated as the residual amount (Table 25).

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Abstract

본 발명은 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물에 관한 것으로, 보다 구체적으로 본 발명은 피부투과 촉진용 펩타이드에 PDGFa가 결합된 융합 단백질, 상기 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물, 피부개선용 기능성 화장품, 탈모개선용 화장료 조성물 및 상기 융합 단백질을 포함하는 의약외품 조성물에 관한 것이다.

Description

피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물
본 발명은 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물에 관한 것으로, 보다 구체적으로 본 발명은 피부투과 촉진용 펩타이드에 생리활성 단백질이 결합된 융합 단백질, 상기 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물, 피부개선용 기능성 화장품, 탈모개선용 화장료 조성물 및 상기 융합 단백질을 포함하는 의약외품 조성물에 관한 것이다.
피부를 통과하는 약물은 사용의 편리성에 의해서 진통패치, 금연패치, 임신 조절제 등에서 사용되고 있고, 피부를 통하여 체순환계(systemic circulation)에 전달하려는 목적을 가진다. 이와 함께 아토피 치료제, 미백, 주름 개선용 화장품 등 피부자체의 기관에 전달하려는 목적을 가지는 경우도 있다. 이런 편리성과 기능성을 가지는 목표에도 불구하고 피부의 구조상 약물의 전달의 어려움을 가지는데, 이는 피부의 구조를 보면 이해할 수 있다. 약 10~15 층의 각질세포(corneocyte)로 이루어진 피부의 각질층은, 케라틴이 풍부한 각질세포로 이루어져 있는 브릭(brick) 구조와, 이러한 각질세포 사이를 세라마이드(ceramide), 지방산(fatty acid), 또는 왁스(wax) 등과 같은 지질이 채운 모르타르(mortar) 구조로 이루어져 있으며, 약 10~45um 정도의 두께를 이루고 있다. 이러한 구조는 내부의 수분의 손실을 막고 외부로부터의 침입을 막는 역할을 한다. 따라서, 그 역할에 충실하게 물질 투과성이 아주 낮은데, 500Da 이하의 저분자 구조 성분들만 확산 방식에 의해서 피부 내로 전달된다(Exp. Dermatol., 2000, 9, 165-9.). 이는 모르타르 구조의 세포 내 지질층이나, 지질층 사이의 수용성 구조를 통해서 이루어지고, 물질 투과성은 약물의 성질에 따라 크게 좌우된다(Current Drug Delivery, 2005, 2, 23-3). 또한 피부표면을 직접 통과하는 방식 이외에 피부의 땀샘, 모공, 피지선 등의 구조를 이용하여 전달되기도 한다.
이러한 이유로, 분자의 크기나 성질에 관계없이 피부를 투과할 수 있고, 피부의 전체에 고르게 전달할 수 있는 방법을 개발하려는 연구가 활발히 진행되었다.
예를 들어, 미국등록특허 제7,659,252호에는 피부질환의 치료 및 약학적 활성제제의 피부투과 촉진에 사용될 수 있는 피부투과성 펩타이드가 개시되어 있다.
상기 펩타이드는 우수한 피부 투과도를 나타낼 뿐만 아니라 다른 약물의 경피전달용 담체로서도 사용될 수 있다는 장점이 있으나, 피부를 투과한 다음에는 체내의 순환시스템을 통해 소모되기 때문에, 피부를 표적으로 하는 약물의 경우에는 별다른 효과를 발휘하지 못한다는 단점이 있었다.
이러한 단점은 콜라겐 합성, 내피세포 성장 또는 히알루론산 생성을 촉진하여 주름 개선 효과를 나타내는 다양한 유효성분이 정상적으로 피부를 통해 흡수되지 못하는 것이 주된 원인으로 알려져 있기 때문에, 상기 유효성분의 흡수를 촉진시키는 방법을 개발하려는 연구가 활발히 진행되었다. 예를 들어, 한국등록특허 제1054519호에는 천연 인간 성장호르몬들과 비교하여 안정성 및 피부 투과도가 우수한 인간 성장호르몬-유래 펩타이드 및 이를 포함하는 조성물이 개시되어 있고, 한국등록특허 제1104223호에는 인간 IL-10의 기능과 동일한 기능을 하며 천연 IL-10과 비교하여 안정성 및 피부투과도가 매우 우수한 IL-10-유래 펩타이드 및 이를 포함하는 조성물이 개시되어 있으나, 이들 펩타이드는 그 자체로 기능성을 나타낼 뿐, 다른 약물의 전달용 담체로서 사용할 수 없다는 단점이 있었다. 이러한 단점은 피부투과성이 우수하는 특성만으로는 약물의 전달에 사용할 수 없다는 것을 암시하는 것으로 분석되었으므로, 피부투과성이 우수할 뿐만 아니라 피부 잔류성을 향상시키는 두가지 특성을 포함하는 새로운 물질의 개발이 요구되었으나, 아직까지는 별다른 연구결과가 보고되지 않고 있는 실정이다.
이러한 배경하에서, 본 발명자들은 피부투과성이 우수할 뿐만 아니라 피부잔류성이 우수한 두 가지 특성을 포함하는 새로운 물질을 개발하고자 예의 연구노력한 결과, 약물의 경피전달용 담체로서 사용될 수 있으면서도 피부에 오래 잔류할 수 있는 피부투과 촉진용 펩타이드를 개발하였으며, 상기 피부투과 촉진용 펩타이드에 생리활성 단백질을 융합시킨 융합 단백질이 피부투과성이 우수할 뿐만 아니라 피부잔류성을 향상시키는 특성을 모두 나타냄을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 하나의 목적은 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피부투과 촉진용 펩타이드 및 생리활성 단백질을 포함하는 융합 단백질을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 하나의 목적은 상기 융합 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 를 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 화장료 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 화장료 조성물을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 기능성 화장품을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 화장료 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 의약외품 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 의약외품 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 융합 단백질은 생리활성 단백질에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합되어, 주름개선 등의 유용한 효과를 나타내는 펩타이드의 능력이 유지 또는 향상되면서도, 동시에 피부투과성과 피부 잔류성을 현저하게 향상시키므로, 피부개선용 화장료 조성물, 피부개선용 기능성 화장품, 탈모개선용 화장료 조성물, 피부개선용 의약외품 조성물 또는 탈모개선용 의약외품 조성물의 유효성분으로서 널리 활용될 수 있을 것이다.
본 명세서에 첨부되는 다음의 도면들은 본 발명의 바람직한 실시예를 예시하는 것이며, 전술한 발명의 내용과 함께 본 발명의 기술사상을 더욱 이해시키는 역할을 하는 것이므로, 본 발명은 그러한 도면에 기재된 사항에만 한정되어 해석되어서는 아니된다.
도 1은 Argireline™ (Acetyl-EEMQRR 서열번호 2) 및 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질(서열번호 32)의 근 수축 억제 효과를 확인한 결과를 나타낸다.
도 2는 인체를 대상으로 Argireline™ (Acetyl-EEMQRR) 및 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드 함유 크림의 주름개선 효과를 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
본 발명의 목적을 달성하기 위한 하나의 양태로서, 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피부투과 촉진용 펩타이드가 생리활성 단백질에 결합된 융합 단백질을 제공한다.
본 발명에서 사용된 상기 서열 번호 1의 아미노산 서열은 IUPAC-IUB 명명법에 따라 다음과 같이 약어로 기재하였다.
피부투과 촉진용 펩타이드: NGSLNTHLAPIL (서열번호 1)
구체적으로, Asparagine(아스파라긴) Asn N- Glycine(글리신) Gly GSerine(세린) Ser S- Leucine(류신) Leu L- Asparagine(아스파라긴) Asn NThreonine(트레오닌) Thr T- Histidine(히스티딘) His H- Leucine(류신) Leu LAlanine(알라닌) Ala A- Proline(프롤린) Pro P- Isoleucine(이소루신) Ile ILeucine(류신) Leu L으로 나타낼 수 있다.
상기 펩타이드와 결합된 신경전달물질 방출 조절 펩타이드, 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa), 내피세포 성장인자(VEGF), 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1), 각질세포 성장인자(KGF) 또는 티모신 베타 4(Tβ4)는 피부 투과성이며, 피부 잔류성을 가지는 것으로 사용될 수 있다.
본 발명에 있어서, "피부투과 촉진용 펩타이드"란, 분자의 크기나 성질에 관계없이 피부를 투과할 수 있고, 피부의 전체에 고르게 전달할 수 있으며, 피부 투과성 및 피부 잔류성이 우수한 펩타이드를 의미한다.
본 발명의 상기 융합 단백질에서 상기 생리활성 단백질의 피부 투과성 및 피부 잔류성이 증대된 것일 수 있다.
본 발명에 있어서, "피부 투과성"이란, 펩타이드가 피부를 투과하여 피부 내부로 침투할 수 있는 능력 또는 성질을 의미하며, 본 발명의 피부투과 촉진용 펩타이드는 다른 펩타이드에 비하여 현저히 우수한 피부투과성을 나타낸다.
본 발명에 있어서, "피부 잔류성"이란, 피부를 투과한 펩타이드가 피부조직을 통과하여 순환계로 전달되지 않고, 피부 내의 조직에 결합되어 피부 내에서 잔류하는 능력을 의미한다. 피부조직을 표적조직으로 하는 약학적 제제 또는 화장료의 경우에는, 상기 펩타이드와 결합된 성분이 피부조직 또는 피부세포에 장기간 작용할 수 있도록 피부조직에 잔류하는 특성이 우수한 담체를 사용함이 바람직하다.
본 발명의 피부투과 촉진용 펩타이드는 피부투과성뿐만 아니라 피부잔류성이 현저히 우수하므로, 약학적 제제 또는 화장료의 담체로서 사용될 수 있다.
본 발명의 피부투과 촉진용 펩타이드는 파지 라이브러리와 경피제제의 용출 험 방법을 조합한 파지 디스플레이 방법을 수행하여 발굴된, 피부 투과성과 피부잔류성이 우수한 펩타이드를 포함할 수 있고, 구체적으로는 서열번호 1의 아미노산 열을 포함하는 펩타이드를 포함할 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서는 파지 디스플레이 방법을 통해 피부투과 촉진용 펩타이드로 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 제조하였다(실시예 1).
본 발명에서 용어 "생리활성 단백질"은 치료학적 효과를 위해 사용되는 모든 단백질을 포함한다.
바람직하게, 본 발명에서 생리활성 단백질은, 생체의 기능(생리)을 조절하는 단백질을 총칭하며, 생리활성 폴리펩타이드라고도 한다. 본 발명의 생리활성 단백질은 피부에 처리할 수 있는 단백질이면 제한됨이 없고, 상기 생리활성 폴리펩타이드의 천연형과 실질적으로 동등하거나 증가된 기능, 구조, 활성 또는 안정성을 갖는 한, 임의의 유도체 또는 유도체도 본 발명의 생리활성 단백질의 범위에 포함된다.
보다 바람직하게는, 상기 생리활성 단백질은 신경전달물질 방출 조절 펩타이드, 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa), 내피세포 성장인자(VEGF), 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1), 각질세포 성장인자(KGF) 또는 티모신 베타 4(Tβ4)일 수 있다.
본 발명에 있어서, "신경전달물질"은 뇌를 비롯하여 체내의 신경 세포에서 방출되어 인접해 있는 신경 세포 등에 정보를 전달하는 일련의 물질로서, 하나의 뉴런에서 또 다른 '표적' 뉴런으로 시냅스를 가로질러 신호를 전달하는 내인성 화학물질이다. 신경전달물질은 시냅스의 시냅스 전 부분에서 축삭 말단의 막 아래에 군집화된 시냅스 소낭으로 패키징된 후, 시냅스 간극 내에 방출되어 시냅스 간극을 가로질러 발산되는데, 이때 신경전달물질은 시냅스의 시냅스 후 부분에서 막의 특이적 수용체에 결합된다. 본 발명의 신경전달물질은 도파민, 세로토닌, 히스타민, 아세틸콜린, 아드레날린, 노르아드레날린, 감마아미노뷰티릭산(GABA), L-글루탐산, 글라이신 등을 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, 본 발명에 있어서, "신경전달물질 방출 조절 펩타이드"는 신경전달물질이 신경전달물질의 수용체로 전달되는 것을 차단하여 근 수축 효과를 억제할 수 있으며, 주름 개선 효과를 나타낼 수 있는 펩타이드를 의미한다. 보다 구체적으로, 근육을 움직이기 위해서는 신경전달물질이 신경세포에서 근육세포로 시냅스를 통해 전달되어야 하는데, 시냅스에서 신경전달물질인 아세틸콜린이 분비되기 위해서는 신경세포 말단에서 스네어 복합체(SNARE Complex)가 형성되어 시냅스로 방출되는 과정이 필요하다. 일반적으로 알려진 보톡스는 스네어 복합체를 형성하는 성분(SNAP-25)을 파괴하여 아세틸콜린이 시냅스로 방출되지 못하게 한다. 반면, 보톡스 유사 펩타이드는 스네어 복합체의 구성 성분(SNAP-25) 일부와 유사한 구조를 갖고 있어, SNAP-25 대신 복합체의 구성 과정에 관여하여 아세틸콜린이 방출되는 과정을 막는 역할을 한다.
본 발명의 신경절달물질 방출조절 펩타이드는 업계에서 널리 알려진 것이 사용될 수 있으며, 펩타이드 종류에 특별히 제한되지 않는다. 천연 펩타이드 뿐만 아니라 화학적으로 합성된 펩타이드도 포함될 수 있다. 또한, 주름개선 효과를 갖는 것으로 알려진 펩타이드의 펩타이드 유도체도 본 발명의 범위에 포함될 수 있다.
구체적으로, 상기 신경전달물질 방출 조절 펩타이드는 Argireline™(Acetyl-Glu-Glu-Met-Gln-Arg-Arg (Acetyl-EEMQRR, 서열번호 2), Infinitec社의 X50 Myocept™, Palmitoyl-hexapeptide-52 ([Pal]-Asp-Asp-Met- Gln-Arg-Arg ([Pal]DDMQRR 서열번호 3), Palmitoyl-heptapeptide-18 ([Pal]-Tyr-Pro-Trp-The-Gln-Arg-Phe([Pal]YPWTQRF 서열번호 4)), GABA (γ-amino butyric acid), 보톡스 독신(botulinum toxin) 또는 이들의 혼합물 군으로부터 선택된 어느 하나 이상의 펩타이드일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, 본 발명의 신경전달물질 방출 조절 펩타이드는 하기 화학식 1로 표시되는 펩타이드, 이의 이성질체, 라세미 화합물, 이의 화장학적 또는 약학적으로 허용 가능한 염 등을 포함할 수 있다.
[화학식 1]
R1-AA-R2
상기 화학식 1에서 AA는 3-40의 아미노산을 포함하는 아미노산 서열일 수 있고, R1은 H 또는 C3 내지 C24 알킬, 아릴, 또는 아실 그룹 중에서 선택된 어느 하나일 수 있으며;
상기 화학식 1의 펩타이드의 R1은 탄소수 3 내지 24의 아실기일 수 있으며, 상기 아실기는 포화(saturated) 또는 불포화(unsaturated)일 수 있으며, 선형(linear), 가지형(branched) 또는 고리형(cyclic)일 수 있다.
구체적으로, 상기 R1은 화학식 CH3-(CH2)m-CO-의 아실기로, m은 1 내지 22에서 선택된 어느 하나일 수 있으며, 더 구체적으로 상기 R1은 분자량 200 내지 35,000 Da인 폴리에틸렌 글라이콜 폴리머일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
또한, 상기 AA는 MAEDADMRNELEEMQRRADQL (서열번호 5), ADESLESTRRMLQLVEESKDAGI (서열번호 6), ELEEMQRRADQLA (서열번호 7), ELEEMQRRADQL (서열번호 8), ELEEMQRRADQ (서열번호 9), ELEEMQRRAD (서열번호 10), ELEEMQRRA (서열번호 11), ELEEMQRR (서열번호 12), LEEMQRRADQL (서열번호 13), LEEMQRRADQ (서열번호 14), LEEMQRRAD (서열번호 15), LEEMQRRA (서열번호 16), LEEMQRR (서열번호 17), EEMQRRADQL (서열번호 18), EEMQRRADQ (서열번호 19), EEMQRRAD (서열번호 20), EEMQRRA (서열번호 21), EEMQRR (서열번호 22), LESTRRMLQLVEE (서열번호 23), NKDMKEAEKNLT (서열번호 24), KNLTDL (서열번호 25), IMEKADSNKTRIDEANQRATKMLGSG (서열번호 26), SNKTRIDEANQRATKMLGSG (서열번호 27), TRIDEANQRATKMLGSG (서열번호 28), DEANQRATKMLGSG (서열번호 29), NQRATKMLGSG (서열번호 30) 및 QRATKMLGSG (서열번호 31)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열을 포함할 수 있다. 또한 상기 AA는 SNAP-25 단백질의 아미노 및 카르복시기 도메인으로부터 유래된 아미노산 서열을 포함할 수 있다.
또한, 상기 화학식 1의 펩타이드의 R2는 C1 내지 C24 알리파틱(aliphatic) 또는 사이클릭(cyclic)기는 치환되지 않거나, 아미노기, 하이드록실기 또는 티올기 중에서 선택된 어느 하나 이상으로 치환될 수 있다.
구체적으로, 상기 화학식 1의 R1 및 R2의 치환기들은 US 2010-0021510 A1에 공지된 예들이 이용될 수 있으며, 상기 US 2010-0021510 A1의 전체 내용은 본 명세서에 포함된다. 상기 화학식 1의 화합물들은 US 2010-0021510 A1에 공지된 예들이 이용될 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서 신경전달물질 방출 조절 펩타이드인 Acetyl-EEMQRR, Palmitoyl-DDMQRR, 및 Palmitoyl-YPWTQRF을 단독으로 사용하는 경우보다 서열번호 1의 피부 투과 촉진용 펩타이드와 융합하여 사용할 경우, SNARE의 형성을 직접 억제하고 신경세포 내 Ca2 + 이온의 유입을 차단하여 간접적으로 SNARE의 형성을 억제할 수 있어, 함께 사용할 때 더욱 우수한 피부주름 감소 효과를 얻을 수 있음을 확인하였다.
본 발명에 있어서, “혈소판유래 성장인자 (Platelet-derived growth factor; PDGF)”란, 2개의 펩타이드사슬로 이루어지는 저분자량의 염기성 단백질로서, 평활근세포, 섬유아세포 및 혈관벽과 같은 간엽유래 세포의 증식을 촉진하는 것을 의미한다.
“혈소판유래 성장인자 서브유닛a(PDGFa)”은 혈소판유래 성장인자(PDGF) 계열에 속하는 단백질 중의 하나로서, 혈액 내 혈소판에 함유되어 있으며, 약 18kDa의 크기를 갖는 단백질을 의미한다. 혈소판에 존재하는 PDGF는 약 14kDa의 크기를 갖는 서브유닛b와 상기 서브유닛a로 구성되는데, 이들은 이황화결합을 통해 동형이합체인 PDGF-AA 또는 PDGF-BB를 형성하거나, 이형이합체인 PDGF-AB를 형성한다고 알려져 있다.
본 발명에 있어서, PDGFa는 콜라겐 생성 또는 엘라스틴 생성을 증대시키는 효과 등을 통해 손상된 피부의 재생, 모발의 재생 및 성장을 촉진하는 효과를 나타내는 한, 그의 아미노산 서열은 특별히 제한되지 않는데, 상기 PDGFa의 전체 아미노산 서열을 사용할 수도 있고, 이의 변이된 아미노산 서열을 사용할 수도 있으며, 이의 일부 단편을 사용할 수도 있다. 상기 PDGFa의 구체적인 아미노산 서열 또는 그를 코딩하는 유전자의 염기서열 정보는 NCBI의 GenBank 등 공지의 데이터베이스에서 얻을 수 있다. 상기 PDGFa는 구체적으로는 서열번호 35의 아미노산 서열로 표시되는 펩타이드가 될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 있어서, “혈관내피세포 성장인자(vascular endothelial growth factor; VEGF)”는 신호전달단백질의 일종으로, 순환계형성 (vasculogenesis) 및 혈관신생 (angiogenesis)에 중요한 역할을 하는 것을 의미한다. VEGF는 혈액순환이 부적절할 경우 조직에 산소를 저장 및 공급하는 시스템의 일부로서 기능하는데, VEGF의 일반적인 기능은 배아발달, 부상 또는 운동 후의 근육, 경색된 혈관을 우회하는 혈관의 형성 등의 과정에서 새로운 혈관을 생성하는 것이다. 그러나 증가된 양의 VEGF는 비정상적인 혈관신생을 야기할 수 있다.
혈관신생에서 중요한 역할을 하는 VEGF는 주로 혈관내피를 구성하는 세포에 영향을 미친다. 시험관 내 (in vitro) 결과에 따르면, VEGF는 혈관내피세포의 분열 및 유주를 자극하고 미세혈관 투과성을 높인다. VEGF는 포유류에서 VEGF-A, VEGFB, VEGF-C, VEGF-D, 및 PlGF (placenta growth factor)의 5종류로 분류된다. VEGFA는 혈관신생, 혈관내피세포의 유주, 분열, 혈관내강 형성, 대식세포 및 과립세포(granulocyte)의 주화성, 혈관확장 등을 촉진하고, VEGF-B는 배아의 혈관신생, 특히 심근조직의 형성을 촉진한다. VEGF-C는 림프관형성 (Lymphangiogenesis)을 촉진하며, VEGF-D는 폐 세기관지를 둘러싼 림프관의 발달에 필요하다. PlGF는 순환계형성 (Vasculogenesis), 허혈 (ischemia), 염증, 상처회복, 암에서의 혈관신생에 중요한 역할을 한다.
본 발명에 있어서, VEGF는 혈관 신생 유도, 표피 세포 증식, 세포 이동 촉진, 미세혈관 수용성 증가 등을 통해 손상된 피부의 재생, 모발의 재생 및 성장을 촉진하는 효과를 나타내는 한, 그의 아미노산 서열은 특별히 제한되지 않는데, 상기 VEGF의 전체 아미노산 서열을 사용할 수도 있고, 이의 변이된 아미노산 서열을 사용할 수도 있으며, 이의 일부 단편을 사용할 수도 있다. 상기 VEGF의 구체적인 아미노산 서열 또는 그를 코딩하는 유전자의 염기서열 정보는 NCBI의 GenBank 등 공지의 데이터베이스에서 얻을 수 있다. 상기 VEGF는 구체적으로는 서열번호 38의 아미노산 서열로 표시되는 펩타이드가 될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, VEGF는 여러 위치에서의 스플라이싱(splicing)으로 인해 VEGF-189, VEGF-165, VEGF-121 등 다양한 길이의 형태(isoform)로 존재할 수 있으며, 대표적인 형태인 VEGF-165의 경우 크기가 약 19.2kDa이다. VEGF는 이황화결합을 통해 동형이합체를 이루어 존재하거나 다른 성장인자 단백질인 PIGF와 이형이합체를 이루어 존재하기도 한다.
본 발명에 있어서, “인슐린유사 성장인자(Insulin-like growth factor; IGF)”는 신호전달단백질의 일종으로, 인슐린과 구조가 비슷한 분자량 7,500의 폴리펩타이드로 이루어진 성장인자를 의미한다. 인슐린유사 성장인자는 혈청 내에서 인슐린과 유사한 작용을 하지만, 인슐린 항체에 의해 억제되지 않는 물질로서, IGF-1, IGF-2구조가 알려져 있다. IGF-1과 IGF-2 모두 A~D 4종류의 폴리펩타이드사슬로 구성되어 있으며, 연골세포의 증식이나 단백질생합성에서 생장호르몬의 작용을 매개하는 것 외에 인슐린과 유사한 생리작용을 한다.
또한, IGF-1은 크기가 약 7.6kDa이며, 단량체로 인슐린유사성장인자수용체에 결합하여 세포내의 기작을 조작할 수 있다.
본 발명에 있어서, IGF-1는 각질세포 성장 촉진을 통해 손상된 피부의 재생, 모발의 재생 및 성장을 촉진하는 효과를 나타내는 한, 그의 아미노산 서열은 특별히 제한되지 않는데, 상기 IGF-1의 전체 아미노산 서열을 사용할 수도 있고, 이의 변이된 아미노산 서열을 사용할 수도 있으며, 이의 일부 단편을 사용할 수도 있다.
상기 IGF-1의 구체적인 아미노산 서열 또는 그를 코딩하는 유전자의 염기서열 정보는 NCBI의 GenBank 등 공지의 데이터베이스에서 얻을 수 있다. 상기 IGF-1는 구체적으로는 서열번호 41의 아미노산 서열로 표시되는 펩타이드가 될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 있어서, "각질세포 성장인자(keratinocyte growth factor; KGF)"는 신호전달단백질의 일종으로, 상피를 형성하기 위해 각질세포가 상처를 덮는 단계인 상처수복의 상피형성 단계에서 나타난다.
KGF 단백질은 FGF7 유전자에 의해 암호화 되는데, 이는 섬유아세포 성장인자(fibroblast growth factor; FGF) 패밀리에 속한다. FGF 패밀리는 광범위한 유사분열 또는 세포 생존 활성을 가지고 있고, 이는 배아 발달, 세포 성장, 형태형성, 조직 치유, 암 성장 및 침투를 포함하는 다양한 생물학적 과정에 연관되어 있다. KGF는 강력한 상피세포-특이적 성장 인자로서, 이러한 유사분열 활성은 각질세포에서 주로 나타나고, 섬유아세포나 내피세포에서는 나타나지 않는다. KGF는 섬유아세포 성장 인자 수용체 2b(FCFR2b)와 결합하여 신호전달이 진행되고, FGF10는 '각질세포 성장인자 2'로 알려져 있다.
본 발명에 있어서, KGF는 상처수복에 핵심적인 성장인자로 피부세포 성장을 촉진하여 피부를 회복시키거나, 모낭내 세포의 증식을 촉진하여 탈모를 예방하는 효능을 나타내는 한, 그의 아미노산 서열은 특별히 제한되지 않는데, 상기 KGF의 전체 아미노산 서열을 사용할 수도 있고, 이의 변이된 아미노산 서열을 사용할 수도 있으며, 이의 일부 단편을 사용할 수도 있다. 상기 KGF의 구체적인 아미노산 서열 또는 그를 코딩하는 유전자의 염기서열 정보는 NCBI의 GenBank 등 공지의 데이터베이스에서 얻을 수 있다. 상기 KGF는 구체적으로는 서열번호 44의 아미노산 서열로 표시되는 펩타이드가 될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 있어서, "티모신 베타 4(Thymosin beta 4; Tβ4)"는 흉선의 추출물로 처음 발견되었으며, 43개의 아미노산으로 구성되어 분자량이 5KDa으로 비교적 작은 단백질이며 적혈구를 제외한 거의 모든 세포에 존재한다. 상기 Tβ4는 본래 액틴을 조절하는 단백질로써 G-액틴에 결합하여 액틴의 중합체 합성을 억제하며 내피세포의 분화 및 이동, 신생 혈관 생성을 유도하는 것으로 알려져 있었으나 최근에는 상처치유에 효과적으로 작용하며 심근 세포의 재생에 탁월한 효과를 보이는 것으로 보고되고 있다.
본 발명에 있어서, Tβ4는 세포의 분열, 분화 및 이동기작을 조율하는 역할을 하며, 혈관 신생 유도, 표피 세포 증식, 세포 이동 촉진, 미세혈관 수용성 증가 등을 통해 손상된 피부의 재생, 모발의 재생 및 성장을 촉진하는 효능을 나타내는 한, 그의 아미노산 서열은 특별히 제한되지 않는데, 상기 Tβ4의 전체 아미노산 서열을 사용할 수도 있고, 이의 변이된 아미노산 서열을 사용할 수도 있으며, 이의 일부 단편을 사용할 수도 있다. 상기 Tβ4의 구체적인 아미노산 서열 또는 그를 코딩하는 유전자의 염기서열 정보는 NCBI의 GenBank 등 공지의 데이터베이스에서 얻을 수 있다. 상기 Tβ4는 구체적으로는 서열번호 47의 아미노산 서열로 표시되는 펩타이드가 될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, Tβ4는 Y유전체와 X 유전체 q.21.3-q.22에 유전자가 위치하고 있으며, 이 두 유전자는 상동유전자로서 44개 아미노산 중 3개만 다를 정도로 서열이 매우 유사하다. 본 발명의 실시예에는 X 유전체 서열을 바탕으로 융합단백질을 제작하였으나, 반드시 X 염색체상의 Tβ4에만 한정되지 않으며, Y 유전체 상의 Tβ4으로도 융합단백질 제작이 가능하다.
본 발명에 있어서, "융합 단백질" 이란 상기 피부투과 촉진용 펩타이드가 다른 단백질 또는 펩타이드에 결합되도록 인위적으로 합성된 펩타이드로서, 구체적으로 상기 피부투과 촉진용 펩타이드 및 상기 신경전달 물질 방출 조절 펩타이드, 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa), 혈관내피세포 성장인자(VEGF), 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1), 각질세포 성장인자(KGF) 및 티모신 베타 4(Tβ4)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나를 포함할 수 있다. 보다 구체적으로 상기 피부투과 촉진용 펩타이드는 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드일 수 있으며, 상기 신경전달물질 방출 조절 펩타이드는 상기 신경전달물질 방출 조절 펩타이드는 서열번호 2 내지 31로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나 이상의 펩타이드, 구체적으로는 서열번호 2, 3, 4의 펩타이드이거나, 상기 화학식 1로 표시되는 펩타이드, 이의 이성질체, 라세미 화합물, 이의 화장학적 또는 약학적으로 허용 가능한 염 등을 포함할 수 있다. 보다 더 구체적으로 상기 융합 펩타이드는 서열번호 32, 33, 34 및 보튤리늄톡신+서열번호 1의 융합 펩타이드를 포함할 수 있다. 또한, 상기 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa)은 서열번호 35의 아미노산 서열을 포함할 수 있고, 내피세포 성장인자(VEGF)는 서열번호 38의 아미노산 서열을 포함할 수 있고, 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1)는 서열번호 41의 아미노산 서열을 포함할 수 있고, 각질세포 성장인자(KGF)는 서열번호 44의 아미노산 서열을 포함할 수 있고, 상기 티모신 베타 4(Tβ4)는 서열번호 47의 아미노산 서열을 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 융합 단백질은 이에 포함되는 각 도메인의 야생형의 아미노산 서열과 하나 이상의 아미노산 잔기가 상이한 서열을 가지는 펩타이드를 포함할 수 있다. 분자의 활성을 전체적으로 변경시키지 않는 펩타이드에서의 아미노산 교환은 당해 분야에 공지되어 있다. 가장 통상적으로 일어나는 교환은 아미노산 잔기 Ala/Ser, Val/Ile, Asp/Glu, Thr/Ser, Ala/Gly, Ala/Thr, Ser/Asn, Ala/Val, Ser/Gly, Thy/Phe, Ala/Pro, Lys/Arg, Asp/Asn, Leu/Ile, Leu/Val, Ala/Glu, Asp/Gly 간의 교환이다. 또한, 아미노산 서열상의 변이 또는 수식에 의해서 단백질의 열, pH 등에 대한 구조적 안정성이 증가하거나 단백질 활성이 증가한 단백질을 포함할 수 있다.
상기 융합 단백질 또는 상기 융합 단백질을 구성하는 단백질은 당해 분야에 공지된 화학적 단백질 합성방법으로 제조하거나, 상기 융합 단백질을 코딩하는 유전자를 PCR(polymerase chain reaction) 에 의해 증폭하거나 공지된 방법으로 합성한 후 발현벡터에 클로닝(cloning)하여 발현시켜서 제조할 수 있다.
본 발명의 융합 단백질은 상기 피부투과 촉진용 펩타이드 및 상기 생리활성 단백질 사이에 링커 펩타이드를 포함할 수 있다. 구체적으로 상기 융합 단백질은 상기 피부투과 촉진용 펩타이드가 상기 생리활성 단백질의 N-말단에 직접적으로 연결될 수도 있고, 링커(Linker)를 통해 융합 연결될 수도 있다.
상기 링커는 구체적으로 글라이신, 알라닌, 루이신, 이소루이신, 프롤린, 세린, 트레오닌, 아스파라긴, 아스파르트산, 시스테인, 글루타민, 글루탐산, 리신, 아르기닌산 등의 아미노산을 사용하여 연결시킬 수 있고, 보다 구체적으로 발린, 루이신, 아스파르트산, 글라이신, 알라닌, 프롤린 등의 아미노산을 여러 개 사용하여 연결시킬 수 있으며, 보다 더 구체적으로 유전자 조작의 용이성을 고려하여 글라이신, 발린, 루이신, 아스파르트산 등의 아미노산을 1개 내지 5개씩 연결하여 사용할 수 있다. 예를 들어, 상기 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 생리활성 단백질의 N-말단을 2개의 펩타이드(GG)로 구성된 링커를 통해 연결시켜서 융합 단백질을 제조할 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 융합 단밸질은 서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열로 이루어진 펩타이드 일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 다른 하나의 양태로서, 상기 융합 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제공한다.
상기 폴리뉴클레오티드는 상기 융합단백질과 유사한 활성을 가지는 한, 서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 서열로 기재되는 아미노산 서열, 또는 상기 서열과 70 % 이상, 구체적으로는 80 % 이상, 더욱 구체적으로는 90 % 이상, 보다 더욱 구체적으로는 95 % 이상, 가장 구체적으로는 99 % 이상의 상동성을 나타내는 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 코돈 축퇴성 (codon degeneracy)에 의해 상기 서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열로 이루어진 단백질 또는 이와 상동성을 가지는 단백질로 번역될 수 있는 폴리뉴클레오티드 역시 포함될 수 있음은 자명하다. 또는 공지의 유전자 서열로부터 조제될 수 있는 프로브, 예를 들면, 상기 염기 서열의 전체 또는 일부에 대한 상보 서열과 엄격한 조건 하에 하이브리드화하여, 서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 서열의 아미노산 서열로 이루어진 단백질의 활성을 가지는 단백질을 암호화하는 서열이라면 제한없이 포함될 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 폴리뉴클레오티드는 서열번호 37, 40, 43, 46 및 49로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나의 염기서열을 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 “엄격한 조건”이란 폴리뉴클레오티드 간의 특이적 혼성화를 가능하게하는 조건을 의미한다. 이러한 조건은 문헌 (예컨대, J. Sambrook et al., 상동)에 구체적으로 기재되어 있다. 예를 들어, 상동성이 높은 유전자끼리, 80% 이상, 구체적으로는 90% 이상, 보다 구체적으로는 95% 이상, 더욱 구체적으로는 97% 이상, 특히 구체적으로는 99% 이상의 상동성을 갖는 유전자끼리 하이브리드화하고, 그보다 상동성이 낮은 유전자끼리 하이브리드화하지 않는 조건, 또는 통상의 써던 하이브리드화의 세척 조건인 60℃, 1×SSC, 0.1% SDS, 구체적으로는 60℃, 0.1×SSC, 0.1% SDS, 보다 구체적으로는 68℃, 0.1×SSC, 0.1% SDS에 상당하는 염 농도 및 온도에서, 1회, 구체적으로는 2회 내지 3회 세정하는 조건을 열거할 수 있다.
혼성화는 비록 혼성화의 엄격도에 따라 염기 간의 미스매치 (mismatch)가 가능할지라도, 두 개의 핵산이 상보적 서열을 가질 것을 요구한다. 용어, “상보적”은 서로 혼성화가 가능한 뉴클레오티드 염기 간의 관계를 기술하는데 사용된다. 예를 들면, DNA에 관하여, 아데노신은 티민에 상보적이며 시토신은 구아닌에 상보적이다. 따라서, 본 발명은 또한 실질적으로 유사한 핵산 서열뿐만 아니라 전체 서열에 상보적인 단리된 핵산 단편을 포함할 수 있다.
구체적으로, 상동성을 가지는 폴리뉴클레오티드는 55 ℃의 Tm 값에서 혼성화단계를 포함하는 혼성화 조건을 사용하고 상술한 조건을 사용하여 탐지할 수 있다.
또한, 상기 Tm 값은 60 ℃, 63 ℃ 또는 65 ℃일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니고 그 목적에 따라 당업자에 의해 적절히 조절될 수 있다.
폴리뉴클레오티드를 혼성화하는 적절한 엄격도는 폴리뉴클레오티드의 길이 및 상보성 정도에 의존하고 변수는 해당기술분야에 잘 알려져 있다. (Sambrook et al., supra, 9.50-9.51, 11.7-11.8 참조).
본 발명에서 용어, "상동성"은 두 개의 폴리뉴클레오티드 또는 폴리펩타이드 모이어티(moiety) 사이의 동일성의 퍼센트를 말한다. 주어진 아미노산 서열 또는 염기 서열과 일치하는 정도를 의미하며 백분율로 표시될 수 있다. 본 명세서에서, 주어진 아미노산 서열 또는 염기 서열과 동일하거나 유사한 활성을 가지는 그의 상동성 서열이 "% 상동성"으로 표시된다. 하나의 모이어티로부터 다른 하나의 모이어티까지의 서열 간 상동성은 알려진 당해 기술에 의해 결정될 수 있다. 예를 들면, 점수(score), 동일성(identity) 및 유사도(similarity) 등의 매개 변수(parameter)들을 계산하는 표준 소프트웨어, 구체적으로 BLAST 2.0을 이용하거나, 정의된 엄격한 조건하에서 써던 혼성화 실험에 의해 서열을 비교함으로써 확인할 수 있으며, 정의되는 적절한 혼성화 조건은 해당 기술 범위 내이고, 당업자에게 잘 알려진 방법(예컨대, J. Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory press, Cold Spring Harbor, New York, 1989; F.M. Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., New York)으로 결정될 수 있다.
본 발명에서 사용된 용어 "벡터"는 적합한 숙주 내에서 목적 폴리펩타이드를 발현시킬 수 있도록 적합한 조절 서열에 작동 가능하게 연결된 상기 목적 폴리펩타이드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드의 염기서열을 함유하는 DNA 제조물을 의미한다.
상기 조절 서열은 전사를 개시할 수 있는 프로모터, 그러한 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합부위를 코딩하는 서열, 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함할 수 있다. 벡터는 적당한 숙주세포 내로 형질전환된 후, 숙주 게놈과 무관하게 복제되거나 기능할 수 있으며, 게놈 그 자체에 통합될 수 있다.
본 발명에서 사용되는 벡터는 숙주세포 내에서 복제 가능한 것이면 특별히 한정되지 않으며, 당업계에 알려진 임의의 벡터를 이용할 수 있다. 통상 사용되는 벡터의 예로는 천연 상태이거나 재조합된 상태의 플라스미드, 코스미드, 바이러스 및 박테리오파지를 들 수 있다. 예를 들어, 파지 벡터 또는 코스미드 벡터로서 pWE15, M13, MBL3, MBL4, IXII, ASHII, APII, t10, t11, Charon4A, 및 Charon21A 등을 사용할 수 있으며, 플라스미드 벡터로서 pBR계, pUC계, pBluescriptII계, pGEM계, pTZ계, pCL계 및 pET계 등을 사용할 수 있다. 본 발명에서 사용 가능한 벡터는 특별히 제한되는 것이 아니며 공지된 발현 벡터를 사용할 수 있다. 구체적으로는 pDZ, pACYC177, pACYC184, pCL, pECCG117, pUC19, pBR322, pMW118, pCC1BAC, pPIC, pGAP 벡터 등을 사용할 수 있으며, 대장균, 유산균, 바실러스균 등의 박테리아 및 효모에서 발현되는 벡터 등을 모두 포함할 수 있다.
일례로 세포 내 염색체 삽입용 벡터를 통해 염색체 내에 목적 폴리펩타이드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 변이된 폴리뉴클레오티드로 교체시킬 수 있다. 상기 폴리뉴클레오티드의 염색체 내로의 삽입은 당업계에 알려진 임의의 방법, 예를 들면, 상동재조합에 의하여 이루어질 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
본 발명에서 용어 "형질전환"은 표적 폴리펩타이드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터를 숙주세포 내에 도입하여 숙주세포 내에서 상기 폴리뉴클레오티드가 코딩하는 폴리펩타이드가 발현할 수 있도록 하는 것을 의미한다. 형질전환된 폴리뉴클레오티드는 숙주세포 내에서 발현될 수 있기만 한다면, 숙주세포의 염색체 내에 삽입되어 위치하거나 염색체 외에 위치하거나 상관없이 이들 모두를 포함할 수 있다. 예를 들어, 전기천공법 (electroporation), 인산칼슘 (CaPO4) 침전, 염화칼슘 (CaCl2) 침전, 미세주입법 (microinjection), 폴리에틸렌 글리콜(PEG)법, DEAE-덱스트란법, 양이온 리포좀법, 및 초산 리튬-DMSO법 등이 있으나, 이에 제한되지 않는다. 또한, 상기 폴리뉴클레오티드는 표적 폴리펩타이드를 코딩하는 DNA 및 RNA를 포함한다. 상기 폴리뉴클레오티드는 숙주세포 내로 도입되어 발현될 수 있는 것이면, 어떠한 형태로 도입되는 것이든 상관없다. 예를 들면, 상기 폴리뉴클레오티드는 자체적으로 발현되는데 필요한 모든 요소를 포함하는 유전자 구조체인 발현 카세트 (expression cassette)의 형태로 숙주세포에 도입될 수 있다. 상기 발현 카세트는 통상 상기 폴리뉴클레오티드에 작동 가능하게 연결되어 있는 프로모터 (promoter), 전사 종결신호, 리보좀 결합부위 및 번역 종결신호를 포함할 수 있다. 상기 발현 카세트는 자체 복제가 가능한 발현 벡터 형태일 수 있다.
또한, 상기 폴리뉴클레오티드는 그 자체의 형태로 숙주세포에 도입되어 숙주세포에서 발현에 필요한 서열과 작동 가능하게 연결되어 있는 것일 수도 있으며, 이에 한정되지 않는다.
상기에서 용어 "작동 가능하게 연결"된 것이란 본 발명의 폴리펩타이드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드의 전사를 개시 및 매개하도록 하는 프로모터 서열과 상기 유전자 서열이 기능적으로 연결되어 있는 것을 의미한다.
본 발명의 다른 하나의 양태로서, 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 화장료 조성물을 제공한다.
구체적으로, 본 발명의 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부 주름 개선 또는 피부 탄력 증진용 화장료 조성물을 제공할 수 있다.
본 발명에서의 “피부 탄력 증진” 또는 “피부 주름 개선”이란 피부가 쳐지거나 늘어지는 정도를 완화시켜주는 것, 또는 피부에 주름이 생성되는 것을 억제 또는 저해하거나, 이미 생성된 주름을 완화시키는 것으로, 피부 표피의 세포 간 결과 진피의 결체 조직에 분포하는 콜라겐 또는 히알루론산의 양이 증가함에 따라 피부 탄력이 유지되고 그에 따라 주름 생성이 완화되는 것을 말한다.
상기 용어 콜라겐(collagen)”이란 천 개 이상의 아미노산 분자가 모인 것으로, 하이드로프롤린의 함량이 많은 단백질을 의미한다. 콜라겐분자 세개가 삼중 나선형으로 꼬인 콜라겐 섬유는 피부를 단단하고 탄력있게 유지시켜주는 역할을 한다. 또한, 콜라겐은 피부, 혈관, 뼈, 치아, 근육 등 모든 결합조직의 주된 단백질로서, 콜라겐은 피부 탄력에 관여하는 것으로 알려져 있다.
상기 용어 “히알루론산 (hyaluronic acid)”은 글리코사미노글리칸 (glycosaminoglycans)의 일종으로 글루쿠론산과 N-아세틸글루코사민 잔기가 반복적으로 연결되어 있는 사슬모양의 고분자 다당류 물질이다. 다량의 물과 결합하여 겔을 만드는 성질이 있어 높은 점성과 탄성을 가진다. 또한, 히알루론산은 세포외 기질의 주요 성분으로, 수분 보유, 세포 간 간격 유지, 세포성장인자 및 영양성분의 저장과 확산에 관여할 뿐만 아니라, 세포의 분열과 분화, 이동 등에도 관여하는 것으로 알려져 있다.
구체적인 일 실시예에 따르면, 상기 신경전달물질 방출 조절 펩타이드로서 Argireline™, (Acetyl-Glu-Glu-Met-Gln-Arg-Arg, Acetyl-EEMQRR) 서열번호 2), Palmitoyl-hexapeptide-52([Pal]-Asp-Asp-Met-Gln-Arg-Arg ([Pal]DDMQRR 서열번호 3), Palmitoyl-heptapeptide-18([Pal]-Tyr-Pro-Trp-The-Gln-Arg-Phe ([Pal]YPWTQRF 서열번호 4)), 보톡스 독신(botulinum toxin)에 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피부투과 촉진 펩타이드를 결합하여 융합 펩타이드를 제조(서열번호 32, 33, 34, 및 보튤리늄톡신+서열번호 1)하였으며, 상기 제조된 융합 단백질의 효과를 종래의 신경전달물질 방출 조절 펩타이드와 비교한 결과, 주름 개선 효과 또한 우수함을 확인하였다(도 1).
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 콜라겐 및 히알루론산 생성에 미치는 효과를 확인하였다. 인간 유래 진피 섬유아세포에 PDGFa 및 융합 단백질(T-PDGFa)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T-PDGFa도 PDGFa와 동등한 수준의 콜라겐 및 히알루론산 생성 효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 4 및 5).
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 히알루론산 생성에 미치는 효과를 확인하였다. 인간 유래 진피 섬유아세포에 VEGF 및 융합 단백질(T-VEGF)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T-VEGF도 VEGF와 동등한 수준의 히알루론산 생성 효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 9).
또한, 구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 제대정맥 내피세포 증식에 미치는 효과를 확인하였다. 제대정맥 내피세포에 VEGF 및 융합 단백질(T-VEGF)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T-VEGF도 VEGF와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 10).
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 각질 세포 성장에 미치는 효과를 확인하였다. 피부각질세포에 IGF-1 및 융합 단백질(T- IGF-1)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T- IGF-1도 IGF-1와 동등한 수준의 각질세포 성장 기능을 가지고 있음을 확인하였다(표 14).
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 각질세포 성장에 미치는 효과를 확인하였다. 피부 각질세포에 KGF 및 융합 단백질(T-KGF)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T-KGF도 KGF와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 18).
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 피부탄력 및 피부 주름 개선 등의 효과를 확인하기 위하여 융합 단백질이 제대정맥 내피세포 증식에 미치는 효과를 확인하였다. 제대정맥 내피세포에 Tβ4 및 융합 단백질(T-Tβ4)을 첨가하여 배양한 결과, 대조군에 비하여 T-Tβ4도 Tβ4와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 22).
이를 통해, 생리활성 단백질, 예컨대 신경전달 물질 방출 조절 펩타이드, PDGFa, VEGF, IGF-1, KGF 또는 Tβ4에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 생리활성 단백질의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
또한, 본 발명의 실시예에서는 상기 생리활성 단백질(신경전달 물질 방출 조절 펩타이드, PDGFa, VEGF, IGF-1, KGF 및 Tβ4)에 서열번호 2 내지 4, 35, 38, 41, 44 및 47 중 어느 하나의 아미노산 서열을 포함하는 피부투과 촉진용 펩타이드를 결합하여 융합 단백질을 제조(서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48)하였으며, 상기 제조된 융합 단백질의 효과를 종래의 생리활성 단백질과 비교한 결과, 피부투과도 및 피부잔류성이 현저히 향상되고 주름 개선 효과 또한 우수함을 확인하였다(표 1, 2, 7, 8, 12, 13, 16, 17, 20, 21, 24 및 25).
따라서, 본 발명에서 제공하는 융합 단백질은 생리활성 단백질에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합되어, 손상된 피부 및 모발의 재생을 증가시키는 생리활성 단백질 자체의 효능을 유지하면서도, 피부 투과성과 피부 잔류성을 현저하게 향상시킬 수 있으므로, 화장료 조성물, 기능성 화장품 및 의약외품 조성물의 유효성분으로서 유용하게 사용될 수 있음을 알 수 있다.
본 발명의 융합 단백질은 전체 화장료 조성물의 중량 대비 0.0001 내지 50중량%로 포함될 수 있다. 상기 융합 단백질의 함량이 전체 화장료 조성물의 중량 대비 0.0001 중량% 미만일 경우에는 실질적인 피부개선 효과를 기대하기 어렵고, 50 중량% 이상일 경우에는 제형이 불안정해지는 등의 문제가 발생할 수 있다.
본 발명에 따른 화장료 조성물은 용액, 외용연고, 크림, 폼, 영양화장수, 유연화장수, 팩, 유연수, 유액, 메이크업베이스, 에센스, 비누, 액체 세정료, 입욕제, 선 스크린크림, 선오일, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 로션, 파우더, 비누, 계면활성제-함유 클린싱, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션, 패치 및 스프레이로 구성된 군으로부터 선택되는 제형으로 제조할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
또한, 본 발명의 화장료 조성물은 일반 피부 화장료에 배합되는 화장품학적으로 허용 가능한 담체를 1종 이상 추가로 포함할 수 있으며, 통상의 성분으로 예를 들면 유분, 물, 계면활성제, 보습제, 저급 알콜, 증점제, 킬레이트제, 색소, 방부제, 향료 등을 적절히 배합할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 화장료 조성물에 포함되는 화장품학적으로 허용 가능한 담체는 제형에 따라 다양하다.
본 발명의 제형이 연고, 페이스트, 크림 또는 젤인 경우에는, 담체 성분으로서 동물성 유, 식물성 유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크, 산화아연 또는 이들의 혼합물이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는, 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록사이드, 칼슘 실케이트, 폴리아미드 파우더 또는 이들의 혼합물이 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로히드로카본, 프로판/부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진제를 포함할 수 있다.
본 발명의 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는, 담체 성분으로서 용매, 용해화제 또는 유탁화제가 이용되며, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알콜, 벤질 벤조에이트, 프로필렌글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일이 이용될 수 있으며, 특히, 목화씨 오일, 땅콩 오일, 옥수수 배종 오일, 올리브오일, 피마자 오일 및 참깨 오일, 글리세롤 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 현탁액인 경우에는, 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌 글리콜과 같은 액상의 희석제, 에톡실화 이소스테아릴 알콜, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 비누인 경우에는 담체 성분으로서 지방산의 알칼리 금속염, 지방산 헤미에스테르 염, 지방산 단백질 히드롤리제이트, 이세티오네이트, 라놀린 유도체, 지방족 알콜, 식물성 유, 글리세롤, 당 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 상기 생리활성 단백질에 피부투과 촉진용 펩타이드를 결합하여 제조된 융합 단백질을 함침하여 크림을 제조하고, 상기 크림의 피부개선 효과를 확인한 결과, 종래의 생리활성 단백질이 함침된 크림에 비해 주름 개선 효과가 2배 이상 우수함을 확인하였다(표 3 및 도 2).
본 발명의 또 다른 하나의 양태로서, 상기 화장료 조성물을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 기능성 화장품을 제공한다.
또한, 구체적으로, 본 발명의 상기 화장료 조성물을 유효성분으로 포함하는 주름 개선용 기능성 화장품을 제공할 수 있다. 상기 화장료 조성물, 주름 개선 및 탄력 증진은 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명에 있어서, "기능성 화장품(cosmedical, cosmeceutical)"이란 화장품에 의약품의 전문적인 치료기능이 도입되어, 일반 화장품과 달리 생리활성적인 효능, 효과가 강조된 전문적인 기능성을 갖는 제품으로서, 피부의 미백에 도움을 주는 제품, 피부 주름개선에 도움을 주는 제품, 피부를 곱게 태우거나 자외선으로부터 피부를 보호하는데 도움을 주는 제품 중에서 보건복지부령이 정하는 화장품을 의미한다.
본 발명의 기능성 화장품은 상기 화장료 조성물에 일반 피부용 화장품의 제조 시에 사용되는 적절한 담체를 가하여 제조할 수 있다. 이때, 사용되는 담체는 특별히 이에 제한되지 않으나, 구체적으로는 유분, 물, 계면 활성제, 보습제, 저급 알코올, 증점제, 킬레이트제, 색소, 방부제, 향료 등을 단독으로 또는 적절히 조합하여 사용할 수 있다.
본 발명의 기능성 화장품은 피부 주름 개선 효과 또는 피부 탄력 증진 효과를 나타내고, 그의 제형은 특별히 제한되는 것은 아니나, 예를 들면, 용액, 유탁액, 현탁액, 페이스트, 크림, 로션, 겔, 파우더, 스프레이, 계면활성제-함유 클린징, 오일, 비누, 액체 세정료, 입욕제, 파운데이션, 메이크업베이스, 에센스, 화장수, 폼, 팩, 유연수, 선 스크린 크림, 선오일 등의 제형으로 제조될 수 있고, 구체적으로는 피부외용연고, 유연화장수, 영양화장수, 영양크림, 마사지크림, 에센스, 팩, 에멀젼 또는 오일젤의 제형으로 제조될 수 있는데, 이때, 사용되는 담체는 화장품의 제형에 따라 선택적으로 사용될 수 있다.
예를 들어, 연고, 페이스트, 크림 또는 젤 형태의 화장품을 제조할 경우에는, 담체 성분으로서 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크, 산화 아연 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있고; 파우더 또는 스프레이 형태의 화장품을 제조할 경우에는, 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록사이드, 칼슘 실케이트, 폴리아미드 파우더, 클로로플루오로하드로카본, 프로판/부탄, 디메틸 에테르 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있으며; 용액 또는 유탁액 형태의 화장품을 제조할 경우에는, 담체 성분으로서 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알코올, 벤질 벤조에이트, 프로필렌 글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 목화씨 오일, 땅콩 오일, 옥수수 배종 오일, 올리브 오일, 피마자 오일, 참깨 오일, 글리세롤 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있고; 현탁액 형태의 화장품을 제조할 경우에는, 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌 글리콜, 에톡실화 이소스테아릴 알코올, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르, 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르, 미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타하이드록시드, 벤토나이트, 아가, 트라칸트 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있으며; 화장비누 형태의 화장품을 제조할 경우에는, 담체 성분으로서 지방산의 알칼리 금속 염, 지방산 헤미에스테르 염, 지방산 단백질 히드롤리제이트, 이세티오네이트, 라놀린 유도체, 지방족 알코올, 식물성 유, 글리세롤, 당 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있다.
구체적으로, 피부외용연고는 본 발명의 융합 단백질 이외에 바셀린 50 내지 97 중량% 및 폴리옥시에틸렌올레일-에테르 포스페이트 0.1 내지 5 중량%를 함유하도록 제조될 수 있고; 유연화장수는 본 발명의 융합 단백질 이외에 프로필렌글리콜 또는 글리세린과 같은 다가알콜류 1 내지 10 중량% 및 폴리에틸렌올레일에테르 또는 폴리옥시에틸렌 경화피마자유와 같은 계면활성제 0.05 내지 2 중량%를 함유하도록 제조될 수 있으며; 영양화장수 및 영양크림은 본 발명의 융합 단백질 이외에 스쿠알란, 바셀린 또는 옥틸도데칸올과 같은 오일류 5 내지 20 중량% 및 세탄올, 스테아릴알콜 또는 밀납과 같은 왁스성분 3 내지 15 중량%을 함유하도록 제조될 수 있고; 에센스는 본 발명의 융합 단백질 이외에 글리세린 또는 프로필렌글리콜과 같은 다가알콜류 5 내지 30 중량%를 함유하도록 제조될 수 있으며; 마사지크림은 본 발명의 융합 단백질 이외에 유동파라핀, 바셀린 또는 이소노닐이소노나노에이트와 같은 오일류를 30 내지 70 중량% 함유하도록 제조될 수 있고; 팩은 본 발명의 융합 단백질 이외에 폴리비닐알콜을 5 내지 20 중량% 함유하는 필오프(peel off) 팩으로 제조되거나 또는 일반유화형 화장료에 카올린, 탈크, 산화아연 또는 이산화티탄과 같은 안료가 5 내지 30 중량% 함유된 워시오프(wash off) 팩으로 제조될 수 있다.
본 발명의 또 다른 하나의 양태로서, 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 화장료 조성물을 제공한다.
본 발명에서 사용되는 용어 "탈모개선”은, 유전적인 원인, 호르몬 불균형, 회생활의 정신적 스트레스, 대기오염 노출, 가공 식품의 섭취 등의 다양한 습관과 환경적 영향으로 인하여 정상적으로 모발이 존재해야 할 부위에 모발이 없는 상태를 개선하고, 탈모가 진행되는 것을 방지하고 털이 나는 것을 의미한다.
구체적인 일 실시예에 따르면, 본 발명의 융합 단백질을 처리한 피부 모유두세포(dermal papilla cell)를 배양하여 Cell Counter Kit-8 (Dojindo社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석한 결과, 대조군에 비하여 생리활성 단백질과 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질도 생리활성 단백질와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다(표 6, 11, 15, 19 및 23).
이를 통해, 생리활성 단백질에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 생리활성 단백질의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
상기 화장료 조성물은 헤어토닉, 헤어컨디셔너, 헤어에센스, 헤어로션, 헤어영양로션, 헤어샴푸, 헤어린스, 헤어트리트먼트, 헤어크림, 헤어영양크림, 헤어모이스처크림, 헤어맛사지크림, 헤어왁스, 헤어 에어로졸, 헤어팩, 헤어영양팩, 헤어 비누, 헤어클렌징폼, 머릿기름, 모발건조제, 모발보존처리제, 모발염색제, 모발용 웨이브제, 모발탈색제, 헤어겔, 헤어글레이즈, 헤어드레싱어, 헤어래커, 헤어모이스처라이저, 헤어무스 또는 헤어스프레이의 제형으로 포함될 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
구체적으로, 본 발명의 조성물은 모발 또는 두피에 직접 도포 또는 산포하는 등의 방법에 의해 사용될 수 있다. 본 발명의 조성물이 적용되는 모발이란, 머리의 모근 및 모낭, 머리카락 및 속눈썹과 겉눈썹, 수염, 겨드랑이, 음모, 신체 전반에 모근 및 모낭이 있는 모든 부위를 포함한다.
본 발명의 또 다른 하나의 양태로서, 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 의약외품 조성물을 제공한다.
또한, 구체적으로, 본 발명의 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부 주름 개선 또는 피부 탄력 증진용 의약외품 조성물을 제공할 수 있다.
본 발명의 또 다른 하나의 양태로서, 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 의약외품 조성물을 제공한다.
상기 용어 융합 단백질, 피부 주름 개선, 피부 탄력 증진 및 탈모개선은 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명의 의약외품 조성물에는 상기 성분 외에 필요에 따라 약학적으로 허용 가능한 담체, 부형제 또는 희석제를 더욱 포함할 수 있다. 상기 약학적으로 허용 가능한 담체, 부형제 또는 희석제는 본 발명의 효과를 해하지 않는 한 제한되지 않으며, 예를 들어 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제, 윤활제, 감미제, 방향제, 보존제 등을 포함할 수 있다.
본 발명의 약학적으로 허용 가능한 담체, 부형제 또는 희석제의 대표적인 예로는, 락토즈, 덱스트로스, 슈크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 말티톨, 전분, 젤라틴, 글리세린, 아카시아 고무, 알지네이트, 칼슘포스페이트, 칼슘카보네이트, 칼슘실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로즈, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트, 광물유, 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌글리콜, 식물성 오일, 주사가능한 에스테르, 위텝솔, 마크로골, 트윈 61, 카카오지, 라우리지 등을 들 수 있다.
또한, 본 발명의 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 조성물을 의약외품으로 사용하는 경우, 추가로 동일 또는 유사한 기능을 나타내는 유효성분을 1종 이상 함유할 수 있다. 예컨대, 피부 손상 방어, 탄력 증진, 주름 개선 및 보습 성분을 포함할 수 있을 것이다. 상기 성분 추가 시에는 복합 사용에 따른 피부 안전성, 제형화의 용이성, 유효성분들의 안정성을 고려할 수 있다. 상기 의약외품 조성물은 당업계에 공지된 미백 성분으로서, 코직산(Kojic acid), 알부틴(Arbutin) 등과 같은 티로시나제 효소활성을 억제하는 물질, 하이드로퀴논(Hydroquinone), 비타민-C(L-Ascorbic acid); 당업계에 공지된 피부 탄력, 주름 개선 또는 보습 성분으로서, 레티노산, TGF, 동물 태반 유래의 단백질, 베툴린산 및 클로렐라 추출물; 및 이들의 유도체와 각종 식물 추출물로 구성되는 군으로부터 선택되는 1종 또는 2종 이상의 성분을 추가로 포함할 수 있다. 추가 성분은 전체 조성물 중량에 대하여 0.0001 중량% 내지 5 중량%로 포함될 수 있을 것이며, 상기 함량 범위는 피부 안전성, 용이성 등의 요건에 따라 조절될 수 있을 것이다.
본 발명의 의약외품 조성물은 소독 청결제, 샤워폼, 연고액, 물티슈, 코팅제 등을 예시할 수 있으나 이에 제한되는 것이 아니며, 의약외품의 제제화 방법, 용량, 이용방법, 구성성분 등은 기술분야에 공지된 통상의 기술로부터 적절히 선택될 수 있다.
또한, 본 발명의 상기 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 의약외품 조성물은 개체의 피부에 도포하는 단계를 포함하는, 피부 탄력 증진, 피부 주름 개선용, 또는 탈모개선에 사용될 수 있다. 상기 개체는 쥐, 가축, 인간 등을 포함하는 포유동물을 제한 없이 포함한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명의 구성 및 효과를 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐 본 발명의 범위가 실시예에 의해 제한되는 것은 아니다.
실시예 1: 피부투과 촉진 펩타이드의 선별
피부투과 촉진 펩타이드를 선별하기 위해서 파지 라이브러리와 경피제제의 용출 실험 방법을 조합한, 파지 디스플레이 방법을 수행하였다.
먼저, 1% BSA를 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl) 용액 500mL Ph.D-12 파지 라이브러리 키트 (New England Biolab)로부터 유래된 109개의 파지를 가하여 파지용액을 수득하였다.
다음으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5mL, Permgear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착한 뒤 상단에 상기 파지 용액을 가하고, 16시간 동안 반응시킨 다음, 상기 돼지 피부를 투과하여 하단의 수용부(Receiver)에 도달된 파지를 수득하고, 이를 증폭시켰다.
상기 증폭은 숙주세포로서 E.coli ER2738(New England Biolab)을 이용하여 수행되었다. 구체적으로, 25mL의 LB 배지에 진탕 배양된 대장균 ER2738 균주에 상기 파지용액 5mL를 가하고 4시간 동안 배양하였다. 이어, 상기 배양액을 8,000G로 원심 분리하여 파지분획이 포함된 상층액을 수득하였다. 상기 상층액에 6mL의 침전액(20% PEG6000, 2.5M NaCl)을 처리하여 반응시켜서 파지를 침전시키고, 상기 반응액을 8,000G로 원심 분리하여 파지를 침전시켰으며, 상기 침전물을 TBS 용액에 현탁시켜서 증폭된 파지용액을 수득하였다.
이처럼, 돼지 피부에 파지를 가하여 피부를 투과시킨 파지를 수득하고, 이를 증폭시키는 과정을 1회 진행하는 것을 1 Round라고 정의하였으며, 1 Round에서 증폭된 파지를 가지고 다시 2 Round를 진행하여 피부 투과력을 경쟁하는 방식으로 피부 투과력이 좋은 파지를 선별하였고, 총 3 Round를 수행하였다.
상기 3 Round 수행 결과 최종적으로 얻어진 파지에 포함된 펩타이드의 서열을 확인하기 위하여, 상기 파지를 포함하는 TBS 용액을 대장균 ER2738 균주에 가하여 현탁시키고, 상기 현탁액에 TOP agar를 가하여 혼합한 다음, 상기 혼합물을 LB/X-gal/IPTG 평판배지의 상단에 가하여 고형화시켰다. 그런 다음, 고형화된 배지를 16시간 동안 배양한 후, 청색의 콜로니(colony)를 선별하였다. 상기 선별된 콜로니로부터 유래된 균주를 6시간 동안 배양하고, 이로부터 DNA를 수득하여 파지로부터 유래된 염기서열을 분석함으로써, 돼지 피부를 투과하는 특성을 나타내는 피부투과 촉진용 펩타이드(서열번호 1)를 선별하였다.
실시예 2: 생리활성 단백질에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
실시예 2-1: 신경전달물질 방출 조절 펩타이드에 피부투과 촉진용 펩타이드 가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드와 서열번호 2의 아미노산 서열을 가지는 신경전달물질 방출 조절 펩타이드가 결합된 서열번호 32의 융합 단백질, 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드와 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 신경전달물질 방출 조절 펩타이드가 결합된 서열번호 33의 융합 단백질, 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드와 서열번호 4의 아미노산 서열을 가지는 신경전달물질 방출 조절 펩타이드가 결합된 서열번호 34의 융합 단백질 및 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드와 보톡스 톡신(botulinum toxin)의 신경전달물질 방출 조절 펩타이드가 결합된 보튤리늄톡신+서열번호 1의 융합 단백질의 아미노산 서열을 포함하는 펩타이드를 합성하고 분리 및 정제하여 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 제조하였다.
실시예 2-1-1: 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드의 합성
상기 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 펩타이드 자동합성기(Applied Biosystems Model 431A)를 이용하여 고체상(solid phase) 펩타이드 합성법으로 합성하였다.
구체적으로, 0.25mmol의 파라히드록시 메틸페닐옥시메칠 폴리스티렌(HMP) 레진을 표준 반응용기(38mL)에 넣고, 합성하려는 펩타이드의 카르복시 말단의 Fmoc-아미노산을 넣은 뒤 합성을 시작하였다. 1mmol의 Fmoc-아미노산이 들어있는 카트리지를 카르복실 말단 아미노산에서부터 아미노산 말단의 아미노산까지 배열순서대로 가이드웨이에 배열하였다. 이 때 카트리지의 금속 뚜껑을 제거하고 맨 처음과 맨끝에는 아미노산이 들어있지 않은 빈 카트리지를 놓았다.
펩타이드 합성은 ABI사에서 개발한 표준 스케일 Fmoc 커플링 프로토콜(protocol)에 따라 시행 전에 파라메타를 편집하였고 자동합성 메뉴에 따라 시행하였다(ABI User's Manual. Jan, 1992 참조). 표준 스케일 Fmoc을 사용할 때는 디프로텍션(deprotection)을 N-메틸피롤리딘(NMP)으로 희석한 20% 피페리딘을 사용하여 21분 동안 수행하였으며, NMP로 9분 동안 세척하고 커플링을 71분 동안 실시하였다. 커플링에는 1-히드록시-벤조트리아졸(HOBT)을 사용하였고 NMP로 7분간 세척하는 시스템을 이용하였다.
실시예 2-1-2: 융합 단백질의 분리 및 정제
상기 실시예 2-1-1에서 합성된 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 하기와 같은 과정을 통해 분리 및 정제하였다.
먼저, 실시예 2-1-1에서 합성된 융합 단백질을 트리플루오로아세트산(TFA)을 사용하여 고체 지지체(solid support)로부터 분리하고, ABI사의 매뉴얼(Introduction to Cleavage Techniques, P6-19(1990))을 참고로 하여 상기 융합 펩타이드를 분리하였다. 구체적으로, 실시예 2-1-1에서 합성된 융합 단백질이 붙은 레진을 둥근 플라스크에 넣고 냉각시킨 후, 결정 페놀 0.75g, 1,2-에탄디티올(EDT) 0.25mL, 티오아니솔 0.5mL, 증류수 0.5mL, 및 TFA 10mL를 넣고 뚜껑을 닫은 다음 실온에서 1∼2시간 동안 반응시켰다. 반응이 끝난 후, 레진과 반응액을 규화(sintered) 유리 깔대기를 통해 저진공으로 여과하여 레진과 융합 단백질 용액을 분리하였다. 플라스크와 유리 깔대기를 5∼10mL 디클로로메탄(DCM)으로 씻은 용액이 융합 단백질 용액과 섞이게 하였으며, 50mL 이상의 차가운 디에틸에티르를 첨가하여 융합 단백질의 침전물을 얻었다. 상기 침전물을 저진공으로 깔대기로 여과하여 깔대기 위에 모아진 침전물을 건조시킨 후, 30% 초산에 녹여 냉동 건조시켰다. 이렇게 하여 얻어진 융합 단백질을 HPLC(High Performance Liquid Chromatography)로 정제하였다. 이때 칼럼은 C18 analytical column(Pharmacia)을 사용하였으며, 완충용액 A는 10% 아세토니트닐 + 0.05% TFA를 사용하여 평형화시키고, 완충용액 B는 80% 아세토니트닐 + 0.05% TFA를 사용하여 융합 단백질을 용출하였다. 그 결과 고순도로 정제된 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질(서열번호 32)을 얻었으며 합성 수율은 30 ± 5 % 정도였다.
실시예 2-2: 혈소판유래 성장인자 a서브유닛(PDGFa)에 피부투과 촉진용 펩 타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 서열번호 35의 아미노산 서열을 가지는 혈소판유래 성장인자 a서브유닛(PDGFa)의 N-말단이 두 개의 아미노산(GG)으로 구성된 링커를 매개로 연결된 형태의 융합 단백질인 T-PDGFa(서열번호 36)를 생산하였다.
구체적으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드와 서열번호 35의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 합성하고, 두개의 아미노산(GG)을 코딩하는 뉴클레오티드 서열을 중심으로 연결시켜서, 상기 서열번호 36의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제작하였다. 상기 수득한 폴리뉴클레오티드를 pPIC 발현 벡터에 도입하여 발현벡터를 제작하였다.
상기 제작된 발현벡터를 Pichia pastoris에 도입하여 형질전환체를 수득하고, 상기 수득한 형질전환체를 배양한 다음, 배양액을 여과하여 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질을 회수하였다. GPC 컬럼 크로마토그래피에 적용함으로써, 최종적으로 피부투과 촉진용 펩타이드-PDGFa로 구성된 융합 단백질인 T-PDGFa(서열번호 36)를 생산하였다.
실시예 2-3: 혈관내피세포 성장인자( VEGF )에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 서열번호 38의 아미노산 서열을 가지는 혈관내피세포 성장인자(VEGF)의 N-말단이 두 개의 아미노산(GG)으로 구성된 링커를 매개로 연결된 형태의 융합 단백질인 T-VEGF(서열번호 39)를 생산하였다.
구체적으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드와 서열번호 38의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 합성하고, 두개의 아미노산(GG)을 코딩하는 뉴클레오티드 서열을 중심으로 연결시켜서, 상기 서열번호 39의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제작하였다. 상기 수득한 폴리뉴클레오티드를 pPIC 발현 벡터에 도입하여 발현벡터를 제작하였다.
상기 제작된 발현벡터를 Pichia pastoris에 도입하여 형질전환체를 수득하고, 상기 수득한 형질전환체를 배양한 다음, 배양액을 여과하여 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질을 회수하였다. GPC 컬럼 크로마토그래피에 적용함으로써, 최종적으로 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질인 T-VEGF(서열번호 39)를 생산하였다.
실시예 2-4: 인슐린유사 성장인자-1( IGF1 )에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 서열번호 41의 아미노산 서열을 가지는 인슐린유사 성장인자-1(IGF-1)의 N-말단이 두 개의 아미노산(GG)으로 구성된 링커를 매개로 연결된 형태의 융합 단백질인 T-IGF-1(서열번호 42)를 생산하였다.
구체적으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드와 서열번호 41의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 합성하고, 두 개의 아미노산(GG)을 코딩하는 뉴클레오티드 서열을 중심으로 연결시켜서, 상기 서열번호 42의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제작하였다. 상기 수득한 폴리뉴클레오티드를 pPIC 발현 벡터에 도입하여 발현벡터를 제작하였다.
상기 제작된 발현벡터를 Pichia pastoris에 도입하여 형질전환체를 수득하고, 상기 수득한 형질전환체를 배양한 다음, 배양액을 여과하여 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질을 회수하였다. GPC 컬럼 크로마토그래피에 적용함으로써, 최종적으로 피부투과 촉진용 펩타이드-IGF-1로 구성된 융합 단백질인 T-IGF-1(서열번호 42)를 생산하였다.
실시예 2-5: 각질세포 성장인자( KGF )에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 서열번호 44의 아미노산 서열을 가지는 각질세포 성장인자(KGF)의 N-말단이 두 개의 아미노산(GG)으로 구성된 링커를 매개로 연결된 형태의 융합 단백질인 T-KGF(서열번호 45)를 생산하였다.
구체적으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드와 서열번호 44의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 합성하고, 두개의 아미노산(GG)을 코딩하는 뉴클레오티드 서열을 중심으로 연결시켜서, 상기 서열번호 45의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제작하였다. 상기 수득한 폴리뉴클레오티드를 pPIC 발현 벡터에 도입하여 발현벡터를 제작하였다.
상기 제작된 발현벡터를 Pichia pastoris에 도입하여 형질전환체를 수득하고, 상기 수득한 형질전환체를 배양한 다음, 배양액을 여과하여 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질을 회수하였다. GPC 컬럼 크로마토그래피에 적용함으로써, 최종적으로 피부투과 촉진용 펩타이드-KGF로 구성된 융합 단백질인 T-KGF(서열번호 45)를 생산하였다.
실시예 2-6: 티모신 베타 4( Tβ4 )에 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질의 제조
상기 실시예 1에서 수득한 서열번호 1의 아미노산 서열을 가지는 피부투과 촉진용 펩타이드의 C-말단과 서열번호 47의 아미노산 서열을 가지는 티모신 베타 4(Tβ4)의 N-말단이 두 개의 아미노산(GG)으로 구성된 링커를 매개로 연결된 형태의 융합 단백질인 T-Tβ4(서열번호 48)를 생산하였다.
구체적으로, 상기 서열번호 1의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드와 서열번호 47의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 합성하고, 두 개의 아미노산(GG)을 코딩하는 뉴클레오티드 서열을 중심으로 연결시켜서, 상기 서열번호 48의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제작하였다. 상기 수득한 폴리뉴클레오티드를 pPIC 발현 벡터에 도입하여 발현벡터를 제작하였다.
상기 제작된 발현벡터를 Pichia pastoris에 도입하여 형질전환체를 수득하고, 상기 수득한 형질전환체를 배양한 다음, 배양액을 여과하여 피부투과 촉진용 펩타이드-VEGF로 구성된 융합 단백질을 회수 하였다. GPC 컬럼 크로마토그래피에 적용함으로써, 최종적으로 피부투과 촉진용 펩타이드-Tβ4로 구성된 융합 단백질인 T-Tβ4(서열번호 48)를 생산하였다.
실시예 3: 융합 단백질의 효과 검증
실시예 3-1: 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 효과검증
상기 실시예 2-1에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 근 수축 억제 효과, 피부 투과성, 피부 잔류성 및 주름 개선 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
3-1-1: 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 근 수축 억제 효과
상기 실시예 2-1에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 근 수축 억제 효과를 확인하기 위해, 먼저 C2C12 세포를 플레이트에 10% (v/v) 태아 송아지 혈청과 1% (v/v) 항생물질이 들어간 DMEM 배지에서 배양한 후, 신경아세포를 같은 플레이트에 추가적으로 공동 배양하였다. 그런 다음, C2C12 세포의 세포 수축이 시작할 때 30초간 C2C12 세포의 수축 횟수를 측정하고, 배지를 모두 제거한 후 PBS로 3회 세정한 후 송아지 혈청이 들어있지 않은 배지와 상기 융합 펩타이드 50ppm을 넣고 2시간 동안 반응시켰다. 이후 C2C12 세포의 수축횟수를 다시 30초간 측정하여 근 수축 억제 정도를 확인하였다.
그 결과 도 1에 나타난 바와 같이, 피부투과 촉진 펩타이드가 결합되지 않은 대조군인 ArgirelineTM 뿐만 아니라, 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드도 신경세포로부터 신경전달물질의 방출을 억제하여 C2C12 세포의 수축 횟수를 감소시키는 것을 알 수 있었다.
3-1-2: 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부 투과성 확인
상기 실시예 2-1에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부 투과성을 확인하기 위해, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)을 이용하였다.
구체적으로, 상기 Glass cell의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% Tween 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비하였다. 그런 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 상기 TBS를 500μL 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 상기 TBS를 5mL 가하였다. 이어서, 대조군 펩타이드(AgirellineTM, [Pal]DDMQRR, [Pal]YPWTQRF, Botulinum toxoid) 2μg과 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질 2μg 각각을 상기 Glass cell의 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시켰다. 이후 하단에 존재하는 대조군 펩타이드 또는 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 농도를 정량 분석하고, 대조군 펩타이드 함량에 대한 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드 양의 상대적인 함량을 투과 촉진량으로 산출하였으며, 그 결과는 하기 표 1에 나타내었다.
신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부투과성
처리 펩타이드 투과 촉진량( % )
Argireline™ 100±14
Agirelline™ (Acetyl-EEMQRR)- 투과 펩타이드 360±31
[Pal]DDMQRR- 투과 펩타이드 420±22
[Pal]YPWTQRF- 투과 펩타이드 280±15
Botulinum toxoid-투과 펩타이드 350±22
상기 표 1에 나타난 바와 같이, 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 처리할 경우 대조군 보다 피부 투과성이 약 2.8~4,2배 증가함을 확인하였다.
따라서, 본 발명의 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 사용하면, 신경전달물질 방출 조절 단백질의 피부 투과율이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
3-1-3: 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부 잔류성 확인
상기 실시예 2-1에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부 잔류성을 확인하기 위해, Franz glass cell (Standard 직경 9mm, Receiver 5mL, Permegear)을 이용하였다.
구체적으로, 상기 Glass cell의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 각각 500μL와 5mL의 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)용액에 1% BSA(Sigma), 0.01% Tween 20을 녹인 후, 상기 Glass cell의 상단에는 상기 TBS를 500μL 가하고, 상기 Glass cell의 하단에는 상기 TBS를 5mL 가하였다. 대조군인 대조군 펩타이드(AgirellineTM, [Pal]DDMQRR, [Pal]YPWTQRF, Botulinum toxoid)와 상기 실시예 2에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 돼지 피부를 이용한 Franz cell system의 Donor chamber에 처리하고 돼지피부 내에 존재하는 대조군 펩타이드와 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 양을 측정하기 위하여 돼지 피부 조직을 파쇄 후 HPLC 정량을 이용하였으며, 그 결과는 하기 표 2에 나타내었다.
신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 피부 잔류성
처리 펩타이드 상대 투과량( % )
Argireline™ 100±14
Agirelline™ (Acetyl-EEMQRR)- 투과 펩타이드 9800±1200
[Pal]DDMQRR- 투과 펩타이드 7220±422
[Pal]YPWTQRF- 투과 펩타이드 6290±1350
Botulinum toxoid-투과 펩타이드 8320±242
상기 표 2에 나타난 바와 같이, 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 처리할 경우 대조군 펩타이드 보다 피부 잔류량이 약 62~98배 증가함을 확인하였다.
따라서, 본 발명의 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 사용하면 신경 전달물질 방출 조절 단백질의 피부 잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
3-1-4: 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 주름 개선 효과 확인
상기 실시예 2-1에서 제조한 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질의 주름 개선 효과를 확인하기 위해, 일반적인 수중유형 유화제형 (oil in water emulsion)의 크림에 ArgirelineTM과 상기 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질을 각각 함침하여 주름 개선 효과를 비교하였으며, 각 함유 크림에 포함된 성분 및 함량은 하기 표 3과 같다.
성분 Argireline™ 함유 크림 신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드 함유 크림
C14-22알코올, C12-20알킬글루코사이드 (혼합물 C14-22 알코올 : C12-20 알킬글루코사이드 = 80 : 20 중량비) 1.5 1.5
글리세릴스테아레이트, 피이지-100스테아레이트 (혼합물 50:50 중량비) 1.2 1.2
글리세릴스테아레이트 0.9 0.9
세테아릴알코올 1.5 1.5
폴리글리세릴-3메칠글루코오스디스테아레이트 1.5 1.5
하이드로제네이티드폴리데센 4.5 4.5
사이클로헥사실록산 3.5 3.5
카보머 0.2 0.2
트로메타민 0.2 0.2
글리세린 3 3
DPG 5 5
1,2-헥산디올 2 2
Argireline™ 0.1
신경전달물질 방출 조절 융합 펩타이드 0.1
정제수 잔여량 (To 100) 잔여량 (To 100)
ArgirelineTM 함유 크림과 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질 함유 크림을 눈가 주름에 12주간 매일 처리하여, 주름 개선 정도를 실리콘 모사판(silicone replica) 및 주름 영상 분석 방법으로 통해 확인하였다(N=21).
그 결과, 도 2에 나타난 바와 같이, ArgirelineTM 크림에 비해 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질 크림이 2배 이상 우수한 개선효과를 보였으며, 이로서 신경전달물질 방출 조절 융합 단백질이 신경전달물질 방출 조절 단백질에 비해 피부 내로 효과적으로 침투하여, 주름 개선 효과가 우수함을 알 수 있었다.
이는 기존 성장인자와 같이 분자량이 큰 인자에 비하여 신경전달물질은 분자량이 작기 때문에 피부투과 촉진용 펩타이드를 결합시킨 융합단백질의 경우에도 분자량이 더 작아져, 피부 투과성 및 피부 잔류성이 증가하고, 이를 통해 피부 주름 개선효과가 증가됨을 시사하는 것이다.
실시예 3-2: 혈소판유래 성장인자 a서브유닛의 융합 단백질(T- PDGFa )의 효과검증
상기 실시예 2-2에서 제조한 T-PDGFa의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 피부 탄력 개선, 피부 주름 개선, 탈모 개선, 피부 투과성 및 피부 잔류성 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
실시예 3-2-1: 콜라겐 생성 효능 검정
상기 실시예 2-2에서 합성된 T-PDGFa를 PDGFa와 비교하여 콜라겐 생성에 미치는 효과를 검증하고자 하였다.
구체적으로, 진피 섬유아세포 (dermal fibroblast)를 24웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 70 내지 80%의 포화도를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척후에 10ng/ml의 T-PDGFa 또는 PDGFa가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 2일간 배양하였다. 배양물의 상등액을 수득하고 ELISA kit (R&D Systems社)를 이용하여 배양액으로 생산 및 분비된 콜라겐의 함량을 정량 분석하였다(표 4).
콜라겐 생성에 미치는 T-PDGFa 융합 단백질의 효과
처리 단백질 생성 수준 ( % )
대조군 100 ± 3.7
PDGFa 264 ± 17
T-PDGFa 255 ± 15
상기 표 4에서 나타난 바와 같이, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-PDGFa도 PDGFa와 동등한 수준의 콜라겐 생성 효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 PDGFa의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-2-2: 히알루론산(HA) 생성 효능 검정
상기 실시예 2-2에서 합성된 T-PDGFa를 PDGFa와 비교하여 히알루론산(HA) 생성에 미치는 효과를 검증하고자 하였다.
구체적으로, 진피 섬유아세포 (dermal fibroblast)를 24웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 70 내지 80%의 포화도를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척후에 10ng/ml의 T-PDGFa 또는 PDGFa가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 2일간 배양하였다. 배양물의 상등액을 수득하고 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 배양액으로 생산 및 분비된 히알루론산의 함량을 정량 분석하였다(표 5).
히알루론산(HA) 생성에 미치는 T-PDGFa 융합 단백질의 효과
처리 단백질 생성 수준 ( % )
대조군 100 ± 4.9
PDGFa 897 ± 30
T-PDGFa 920 ± 29
상기 표 5에서 나타난 바와 같이, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-PDGFa도 PDGFa와 동등한 수준의 히알루론산 생성 효능을 가지고 있음을 확인 하였다.
이를 통해, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 PDGFa의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-2-3: 모낭줄기세포증식 효능 검증
상기 실시예 2-2에서 합성된 T-PDGFa를 PDGFa와 비교하여 피부세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 모유두 세포 (dermal papilla cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 1ng/ml의 T-PDGFa 또는 PDGFa가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8(Dojindo社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-PDGFa 또는 PDGFa가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다 (표 6).
모낭줄기세포증식에 미치는 T-PDGFa 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 11
PDGFa 1030 ± 19
T-PDGFa 1016 ± 7
상기 표 6에 나타난 바와 같이, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-PDGFa도 PDGFa와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, PDGFa에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 PDGFa의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-2-4: 피부투과성 검증
상기 실시예 2-2에서 합성된 융합 단백질 T-PDGFa를 PDGFa와 비교하여 피부투과성을 검증하였다.
구체적으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% 트윈 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비한 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 TBS를 500㎕ 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 TBS를 5㎖ 가하였다. 이어, 2㎍의 PDGFa 또는 T-PDGFa를 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시킨 후, 하단에 존재하는 PDGFa 또는 T-PDGFa의 농도를 ELISA kit (R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하고, PDGFa의 함량에 대한 T-PDGFa의 양의 상대적인 함량을 투과량으로 산출하였다 (표 7).
T-PDGFa 융합 단백질의 피부투과성
처리 단백질 투과량 ( % )
PDGFa 100 ± 29
T-PDGFa 360 ± 45
상기 표 7에 나타나 바와 같이, T-PDGFa의 경우 PDGFa보다 피부투과성이 약 3배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-PDGFa 융합 단백질을 사용하면 피부투과성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-2-5: 피부잔류성 검증
상기 실시예 2-2에서 합성된 융합 단백질 T-PDGFa를 PDGFa와 비교하여 피부잔류성을 검증하였다.
구체적으로, 실시예 3-2-4에서 실험 후 남은 돼지피부를 회수한 다음, 액체질소 냉동 후 분쇄하였으며, 이에 포함된 PDGFa 또는 T-PDGFa의 함량을 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하였다. 또한, PDGFa의 함량에 대한 T-PDGFa의 양의 상대적인 함량을 잔류량으로 산출하였다 (표 8).
T-PDGFa 융합 단백질의 피부잔류성
처리 단백질 잔류량 ( % )
PDGFa 100 ± 20
T-PDGFa 9,500 ± 630
상기 표 8에 나타나 바와 같이, T-PDGFa의 경우 PDGFa보다 피부잔류성이 약100배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-PDGFa 융합 단백질을 사용하면 피부잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-3: 혈관내피세포 성장인자( VEGF ) 융합 단백질의 효과검증
상기 실시예 2-3에서 제조한 T-VEGF의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 피부 탄력 개선, 피부 주름 개선, 탈모 개선, 피부 투과성 및 피부 잔류성 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
실시예 3-3-1: 히알루론산(HA) 생성 효능
상기 실시예 2-3에서 합성된 T-VEGF를 VEGF와 비교하여 히알루론산 생성에 미치는 효과를 검증하고자 하였다.
구체적으로, 진피 섬유아세포 (dermal fibroblast)를 24웰 플레이트에 접종
하고 24시간 동안 배양하여 70 내지 80%의 포화도를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 10ng/ml의 T-VEGF 또는 VEGF가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 2일간 배양하였다. 배양물의 상등액을 수득하고 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 배양액으로 생산 및 분비된 히알루론산(HA)의 함량을 정량 분석하였다(표 9).
히알루론산(HA) 생성에 미치는 T-VEGF 융합 단백질의 효과
처리 단백질 생성 수준 ( % )
대조군 100 ± 4.9
VEGF 220 ± 20
T-VEGF 230 ± 18
상기 표 9에서 나타난 바와 같이, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-VEGF도 VEGF와 동등한 수준의 히알루론산 생성 효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 VEGF의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-3-2: 내피세포 증식 효능 검정
상기 실시예 2-3에서 합성된 T-VEGF를 VEGF와 비교하여 내피세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 제대정맥 내피세포(Human Umbilical Vein Endothelial Cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 5,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 M199 배지에서 16시간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 100 ng/ml의 T-VEGF 또는 VEGF가 포함되어 있는 무혈청 M199 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8 (Dojindo社)를 이용하여 세포증식 량의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-VEGF 또는 VEGF가 포함되지 않은 무혈청 M199 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 10).
내피세포증식에 미치는 T-VEGF 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 9.9
VEGF 170 ± 10
T-VEGF 185 ± 15
상기 표 10에 나타난 바와 같이, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-VEGF도 VEGF와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 VEGF의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-3-3: 모낭줄기세포증식 효능 검증
상기 실시예 2-3에서 합성된 T-VEGF를 VEGF와 비교하여 피부세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 모유두 세포 (dermal papilla cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 1ng/ml의 T-VEGF 또는 VEGF가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8 (Dojindo 社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-VEGF 또는 VEGF가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 11).
모낭줄기세포증식에 미치는 T-VEGF 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 4.9
VEGF 340 ± 50
T-VEGF 310 ± 20
상기 표 11에 나타난 바와 같이, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-VEGF도 VEGF와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, VEGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 VEGF의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-3-4: 피부투과성 검증
상기 실시예 2-3에서 합성된 융합 단백질 T-VEGF를 VEGF와 비교하여 피부투과성을 검증하였다.
구체적으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% 트윈 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비한 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 TBS를 500㎕ 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 TBS를 5㎖ 가하였다. 이어, 2㎍의 VEGF 또는 T-VEGF를 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시킨 후, 하단에 존재하는 VEGF 또는 T-VEGF의 농도를 ELISA kit (R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하고, VEGF의 함량에 대한 T-VEGF의 양의 상대적인 함량을 투과량으로 산출하였다(표 12).
T-VEGF 융합 단백질의 피부투과성
처리 단백질 투과량 ( % )
VEGF 100 ± 16
T-VEGF 295 ± 21
상기 표 12에 나타나 바와 같이, T-VEGF의 경우 VEGF보다 피부투과성이 약 3배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-VEGF 융합 단백질을 사용하면 피부투과성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-3-5: 피부잔류성 검증
상기 실시예 2-3에서 합성된 융합 단백질 T-VEGF를 VEGF와 비교하여 피부잔류성을 검증하였다.
구체적으로, 실시예 3-3-4에서 실험 후 남은 돼지피부를 회수한 다음, 액체질소 냉동 후 분쇄하였으며, 이에 포함된 VEGF 또는 T-VEGF의 함량을 ELISA kit (R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하였다. 또한, VEGF의 함량에 대한 T-VEGF의 양의 상대적인 함량을 잔류량으로 산출하였다(표 13).
T-VEGF 융합 단백질의 피부잔류성
처리 단백질 잔류량 ( % )
VEGF 100 ± 24
T-VEGF 9,800 ± 790
상기 표 13에 나타나 바와 같이, T-VEGF의 경우 VEGF보다 피부잔류성이 약 100배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-VEGF 융합 단백질을 사용하면 피부잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-4: 인슐린유사 성장인자-1 융합 단백질(T-IGF-1)의 효과검증
상기 실시예 2-4에서 제조한 T-IGF-1의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 피부 탄력 개선, 피부 주름 개선, 탈모 개선, 피부 투과성 및 피부 잔류성 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
실시예 3-4-1: 피부장벽 강화 효능 검정
상기 실시예 2-4에서 합성된 T-IGF-1를 IGF-1와 비교하여 각질세포(Keratinocyte) 성장에 미치는 효과를 검증하고자 하였다.
구체적으로 피부 각질세포를 96웰 플레이트에서 하루 동안 배양하여 웰(well) 당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 100ng/ml의 T-IGF-1 또는 IGF-1가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다.
배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8 (Dojindo社)를 이용하여 세포증식량의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-IGF-1 또는 IGF-1가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 14).
각질 세포 성장에 미치는 T-IGF-1 융합 단백질의 효과
처리 단백질 생성 수준 ( % )
대조군 100 ± 12
IGF-1 250 ± 20
T-IGF-1 235 ± 15
상기 표 14에서 나타난 바와 같이, IGF-1에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-IGF-1도 IGF-1와 동등한 수준의 피부주름 탄력 개선 효능을 가지고 있음을 확인하였다.
실시예 3-4-2: 모낭줄기세포증식 효능 검증
상기 실시예 2-4에서 합성된 T-IGF-1를 IGF-1와 비교하여 피부세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 모유두 세포 (dermal papilla cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 1ng/ml의 T-IGF-1 또는 IGF-1가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8 (Dojindo社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-IGF-1 또는 IGF-1가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 15).
모낭줄기세포증식에 미치는 T-IGF-1 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 15
IGF-1 440 ± 45
T-IGF-1 320 ± 40
상기 표 15에 나타난 바와 같이, IGF-1에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-IGF-1도 IGF-1와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, IGF-1에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 IGF-1의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-4-3: 피부투과성 검증
상기 실시예 2-4에서 합성된 융합 단백질 T-IGF-1를 IGF-1와 비교하여 피부투과성을 검증하였다.
구체적으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% 트윈 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비한 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 TBS를 500㎕ 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 TBS를 5㎖ 가하였다. 이어, 2㎍의 IGF-1 또는 T-IGF-1를 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시킨 후, 하단에 존재하는 IGF-1 또는 T-IGF-1의 농도를 ELISA kit (R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하고, IGF-1의 함량에 대한 T-IGF-1의 양의 상대적인 함량을 투과량으로 산출하였다(표 16).
T-IGF-1 융합 단백질의 피부투과성
처리 단백질 투과량 ( % )
IGF-1 100 ± 14
T-IGF-1 280 ± 18
상기 표 16에 나타나 바와 같이, T-IGF-1의 경우 IGF-1보다 피부투과성이 약 3배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-IGF-1 융합 단백질을 사용하면 피부투과성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-4-4: 피부잔류성 검증
상기 실시예 2-4에서 합성된 융합 단백질 T-IGF-1를 IGF-1와 비교하여 피부잔류성을 검증하였다.
구체적으로, 실시예 3-4-4에서 실험 후 남은 돼지피부를 회수한 다음, 액체질소 냉동 후 분쇄하였으며, 이에 포함된 IGF-1 또는 T-IGF-1의 함량을 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하였다. 또한, IGF-1의 함량에 대한 T-IGF-1의 양의 상대적인 함량을 잔류량으로 산출하였다(표 17).
T-IGF-1 융합 단백질의 피부잔류성
처리 단백질 잔류량 ( % )
IGF-1 100 ± 28
T-IGF-1 9,100 ± 650
상기 표 17에 나타나 바와 같이, T-IGF-1의 경우 IGF-1보다 피부잔류성이 약 100배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 융합 단백질을 사용하면 피부잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-5: 각질세포 성장인자 융합 단백질(T-KGF)의 효과검증
상기 실시예 2-5에서 제조한 T-KGF의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 피부 탄력 개선, 피부 주름 개선, 탈모 개선, 피부 투과성 및 피부 잔류성 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
실시예 3-5-1: 피부장벽강화 효능 검정
상기 실시예 2-5에서 합성된 T-KGF를 KGF와 비교하여 각질세포 성장에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 각질세포(Keratinocyte)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다.
상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 100ng/ml의 T-KGF 또는 KGF가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8(Dojindo社)를 이용하여 세포증식량의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-KGF 또는 KGF가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 18).
각질세포 성장에 미치는 T-KGF 융합 단백질의 효과
처리 단백질 생성 수준 ( % )
대조군 100 ± 15
KGF 620 ± 25
T-KGF 590 ± 27
상기 표 18에 나타난 바와 같이, KGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-KGF도 KGF와 동등한 수준의 세포 성장효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, KGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 KGF의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-5-2: 모낭줄기세포증식 효능 검증
상기 실시예 2-5에서 합성된 T-KGF를 KGF와 비교하여 피부세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 모유두 세포(dermal papilla cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 10ng/ml의 T-KGF 또는 KGF가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8(Dojindo 社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-KGF 또는 KGF가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 19).
모낭줄기세포증식에 미치는 T-KGF 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 18
KGF 360 ± 35
T-KGF 270 ± 15
상기 표 19에 나타난 바와 같이, KGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-KGF도 KGF와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, KGF에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 KGF의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-5-3: 피부투과성 검증
상기 실시예 2-5에서 합성된 융합 단백질 T-KGF를 KGF와 비교하여 피부투과성을 검증하였다.
구체적으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% 트윈 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비한 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 TBS를 500㎕ 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 TBS를 5㎖ 가하였다. 이어, 2㎍의 KGF 또는 T-KGF를 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시킨 후, 하단에 존재하는 KGF 또는 T-KGF의 농도를 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하고, KGF의 함량에 대한 T-KGF의 양의 상대적인 함량을 투과량으로 산출하였다(표 20).
T-KGF 융합 단백질의 피부투과성
처리 단백질 투과량 ( % )
KGF 100 ± 18
T-KGF 310 ± 12
상기 표 20에 나타나 바와 같이, T-KGF의 경우 KGF보다 피부투과성이 약 3배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-KGF 융합 단백질을 사용하면 피부투과성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-5-4: 피부잔류성 검증
상기 실시예 2-5에서 합성된 융합 단백질 T-KGF를 KGF와 비교하여 피부잔류성을 검증하였다.
구체적으로, 실시예 3-5-3에서 실험 후 남은 돼지피부를 회수한 다음, 액체질소 냉동 후 분쇄하였으며, 이에 포함된 KGF 또는 T-KGF의 함량을 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하였다. 또한, KGF의 함량에 대한 T-KGF의 양의 상대적인 함량을 잔류량으로 산출하였다(표 21).
T-KGF 융합 단백질의 피부잔류성
처리 단백질 잔류량 ( % )
KGF 100 ± 17
T-KGF 9,700 ± 850
상기 표 21에 나타나 바와 같이, T-KGF의 경우 KGF보다 피부잔류성이 약 100배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 융합 단백질을 사용하면 피부잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-6: 티모신 베타 4 융합 단백질(T- Tβ4 )의 효과검증
상기 실시예 2-6에서 제조한 T-Tβ4의 피부 개선 용도를 확인하기 위하여 하기와 같이 피부 탄력 개선, 피부 주름 개선, 탈모 개선, 피부 투과성 및 피부 잔류성 효과를 확인하는 실험을 수행하였다.
실시예 3-6-1: 내피세포 증식 효능 검정
상기 실시예 2-6에서 합성된 T-Tβ4를 Tβ4와 비교하여 내피세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 제대정맥 내피세포(Human Umbilical Vein Endothelial Cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 5,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 M199 배지에서 16시간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 100ng/ml의 T-Tβ4 또는 Tβ4가 포함되어 있는 무혈청 M199 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8(Dojindo社)를 이용하여 세포증식 량의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-Tβ4 또는 Tβ4가 포함되지 않은 무혈청 M199 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 22).
내피세포증식에 미치는 T-Tβ4 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 11
Tβ4 180 ± 8
T-Tβ4 165 ± 17
상기 표 22에 나타난 바와 같이, Tβ4에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-Tβ4도 Tβ4와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, Tβ4에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 Tβ4의 피부주름 및 탄력 개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-6-2: 모낭줄기세포증식 효능 검증
상기 실시예 2-6에서 합성된 T-Tβ4를 Tβ4와 비교하여 피부세포 증식에 미치는 효과를 검증하였다.
구체적으로, 피부 모유두 세포(dermal papilla cell)를 96웰 플레이트에 접종하고 24시간 동안 배양하여 웰(well)당 6,000개의 세포수를 나타내는 배양물을 수득하였다. 상기 배양물을 PBS로 세척 후에 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 다시 PBS로 세척을 한 후, 10ng/ml의 T-Tβ4 또는 Tβ4가 포함되어 있는 무혈청 DMEM 배지에서 1일간 배양하였다. 배양물을 수득하고 Cell Counter Kit-8(Dojindo社)를 이용하여 세포증식 양의 차이를 정량 분석하였다. 이때 대조군으로는 T-Tβ4 또는 Tβ4가 포함되지 않은 무혈청 DMEM 배지에서 배양한 결과물을 사용하였다(표 23).
모낭줄기세포증식에 미치는 T-Tβ4 융합 단백질의 효과
처리 단백질 증식 수준 ( % )
대조군 100 ± 23
Tβ4 260 ± 20
T-Tβ4 220 ± 16
상기 표 23에 나타난 바와 같이, Tβ4에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합된 T-Tβ4도 Tβ4와 동등한 수준의 세포증식효능을 가지고 있음을 확인하였다.
이를 통해, Tβ4에 피부투과 촉진용 펩타이드가 융합되어도 Tβ4의 탈모개선 효능을 그대로 가지고 있음을 알 수 있다.
실시예 3-6-3: 피부투과성 검증
상기 실시예 2-6에서 합성된 융합 단백질 T-Tβ4를 Tβ4와 비교하여 피부투과성을 검증하였다.
구체적으로, Franz glass cell(Standard 직경 9mm, Receiver 5ml, Permegear)의 상단과 하단 사이에 돼지 피부(0.7mm 두께, Medikinetics)를 장착하고, 1% BSA와 0.01% 트윈 20을 포함하는 TBS(50mM Tris pH 7.5, 150mM NaCl)를 준비한 다음, 상기 Glass cell의 상단(Donor chamber)에는 TBS를 500㎕ 가하고, 상기 Glass cell의 하단(Receiver chamber)에는 TBS를 5㎖ 가하였다. 이어, 2㎍의 Tβ4 또는 T-Tβ4를 상단에 가하고, 16시간 동안 반응시킨 후, 하단에 존재하는 Tβ4 또는 T-Tβ4의 농도를 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하고, Tβ4의 함량에 대한 T-Tβ4의 양의 상대적인 함량을 투과량으로 산출하였다(표 24).
T-Tβ4 융합 단백질의 피부투과성
처리 단백질 투과량 ( % )
Tβ4 100 ± 21
T-Tβ4 310 ± 28
상기 표 24에 나타나 바와 같이, T-Tβ4의 경우 Tβ4보다 피부투과성이 약 3배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-Tβ4 융합 단백질을 사용하면 피부투과성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
실시예 3-6-4: 피부잔류성 검증
상기 실시예 2-6에서 합성된 융합 단백질 T-Tβ4를 Tβ4와 비교하여 피부잔류성을 검증하였다.
구체적으로, 실시예 3-6-3에서 실험 후 남은 돼지피부를 회수한 다음, 액체질소 냉동 후 분쇄하였으며, 이에 포함된 Tβ4 또는 T-Tβ4의 함량을 ELISA kit(R&D Systems社)를 이용하여 정량분석하였다. 또한, Tβ4의 함량에 대한 T-Tβ4의 양의 상대적인 함량을 잔류량으로 산출하였다(표 25).
T-Tβ4 융합 단백질의 피부잔류성
처리 단백질 잔류량 ( % )
Tβ4 100 ± 17
T-Tβ4 9,600 ± 450
상기 표 25에 나타나 바와 같이, T-Tβ4의 경우 Tβ4보다 피부잔류성이 약 100배 증가함을 확인하였다.
이를 통해, 본 발명의 T-Tβ4 융합 단백질을 사용하면 피부잔류성이 현저하게 증가함을 알 수 있다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (16)

  1. 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피부투과 촉진용 펩타이드 및 생리활성 단백질을 포함하는 융합 단백질.
  2. 제1항에 있어서, 상기 피부투과 촉진용 펩타이드는 생리활성 단백질의 N-말단에 결합된 것인, 융합 단백질.
  3. 제1항에 있어서, 상기 생리활성 단백질은 신경전달 물질 방출 조절 펩타이드, 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa), 혈관내피세포 성장인자(VEGF), 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1), 각질세포 성장인자(KGF) 및 티모신 베타 4(Tβ4)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것인, 융합 단백질.
  4. 제2항에 있어서, 상기 신경전달물질 방출 조절 펩타이드는 서열번호 2 내지 4로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열을 포함하고, 상기 혈소판 유래 성장인자a 서브유닛(PDGFa)은 서열번호 35의 아미노산 서열을 포함하고, 내피세포 성장인자(VEGF)는 서열번호 38의 아미노산 서열을 포함하고, 인슐린 유사 성장인자-1(IGF-1)는 서열번호 41의 아미노산 서열을 포함하고, 각질세포 성장인자(KGF)는 서열번호 44의 아미노산 서열을 포함하며, 상기 티모신 베타 4(Tβ4)는 서열번호 47의 아미노산 서열을 포함하는 것인, 융합 단백질.
  5. 제4항에 있어서, 상기 신경전달물질은 도파민, 세로토닌, 히스타민, 아세틸콜린, 아드레날린, 노르아드레날린, 감마아미노뷰티릭산, L-글루탐산, 및 글라이신으로 이루어진 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것인, 융합 단백질.
  6. 제1항에 있어서, 상기 융합 단백질은 서열번호 32 내지 34, 36, 39, 42, 45 및 48로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 아미노산 서열을 포함하는 것인, 융합 단백질.
  7. 제1항에 있어서, 상기 융합 단백질은 상기 생리활성 단백질의 피부 투과성 및 피부 잔류성이 증대된 것인, 융합 단백질.
  8. 제1항에 있어서, 상기 융합 단백질은 상기 피부투과 촉진용 펩타이드 및 생리활성 단백질 사이에 링커를 포함하는 것인, 융합 단백질.
  9. 제1항에 내지 제8항 중 어느 한 항의 융합 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드.
  10. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 화장료 조성물.
  11. 제10항에 있어서, 상기 피부개선은 피부 주름 개선 또는 피부 탄력 증진인 것인, 피부개선용 화장료 조성물.
  12. 제10항의 화장료 조성물을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 기능성 화장품.
  13. 제12항에 있어서, 상기 피부개선은 피부 주름 개선 또는 피부 탄력 증진인 것인, 피부개선용 기능성 화장품.
  14. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 화장료 조성물.
  15. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 피부개선용 의약외품 조성물.
  16. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 융합 단백질을 유효성분으로 포함하는 탈모개선용 의약외품 조성물.
PCT/KR2018/007370 2017-06-28 2018-06-28 피부투과 촉진용 펩타이드가 결합된 융합 단백질을 포함하는 피부개선용 화장료 조성물 Ceased WO2019004758A2 (ko)

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US16/627,116 US20200165312A1 (en) 2017-06-28 2018-06-28 Cosmetic composition for improving skin conditions comprising fusion protein including skin penetration enhancing peptide
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