WO2016097448A1 - Biohíbrido para su uso en la regeneración de tractos neurales - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a biohybrid for use in the regeneration of neural tracts, comprising a tubular hybrid scaffolding for use in the regeneration of said tracts, as well as to said tubular scaffolding.
- Parkinson's disease Various diseases that affect the central nervous system, such as Parkinson's disease, are currently treated with drugs that relieve symptoms and slow down degeneration. However, for many of them there is no treatment that constitutes a real and effective therapy.
- HA hyaluronic acid
- composition of the reagent used in the article is a modification of hyaluronic acid with cinnamic acid, and differs from that of the present invention, which is unmodified hyaluronic acid, which is subsequently crosslinked by reaction, for example, with divinyl sulfone to form a hilane.
- This difference in the composition affects the physicochemical behavior, the degradation rate and the biological response of the synthesized material, so that said conduit and that of the present invention are not comparable.
- Patent application WO2006077085 describes a biomaterial derived from self-cross-linked HA and neuronal stem cells for the regeneration of damage to the peripheral nervous system and spinal cord.
- the biomaterial may be in the form of tubes with porous walls.
- it is not, in the case of WO2006077085, a three-layer structure with different porosity in each of them.
- This biomaterial is obtained by a) treating the HA derivative with a coating solution, promoting the adhesion of neural stem cells, neurite growth and differentiation; b) contacting isolated neural stem cells with the HA derivative of the previous stage, and c) culturing and expanding adhered cells in the presence of selected neurotrophic growth factors among beta-FGF (basic fibroblast growth factor), CNTF (factor ciliary neurotrophic), BDNF (brain-derived neurotrophic factor) and GDNF (glial-derived neurotrophic factor) or mixtures thereof.
- beta-FGF basic fibroblast growth factor
- CNTF factor ciliary neurotrophic
- BDNF brain-derived neurotrophic factor
- GDNF glial-derived neurotrophic factor
- Patent application US2003060871 refers to a biostable and bioabsorbable tubular structure that can have up to three layers, one of them being expanded PTFE, but the other two being polylactic acid and HA. It is a stent for drug release. Different layers may have different pore diameters. It is not said that the HA is nevertheless crosslinked. Therefore it also has essential differences with the tubular scaffolding of the present invention.
- the strategy based on the conduit of the present invention overcomes the drawbacks of the state of the art, so that it will allow to repopulate the black substance with cells dopaminergic and protect and guide the axonal extension process until reconnection with the striatum is regenerating the nigrostriatal tract.
- the solution proposed by the present invention could also be used for nerve regeneration in the peripheral nervous system.
- hybrid tubular scaffolding tubular scaffolding
- tubular scaffolding tubular scaffolding
- tubular duct tubular duct
- the present invention relates to a tubular scaffolding or hyaluronic acid hybrid tubular conduit to which poly-L-lactic acid (PLLA) fibers are introduced into the lumen, and can be seeded with cells of interest, such as Schwann cells or glial cells in general and / or neurons or neural precursors in vitro, so that their performance can be evaluated.
- PLLA poly-L-lactic acid
- the tubular duct structure must be able to isolate and protect the cells sown in its lumen from the surrounding hostile external microenvironment, thanks to its microporous morphology, which allows the exchange of oxygen and nutrients and the elimination of waste products. Simultaneously with this exchange task, the microporous structure acts as a barrier for large molecules or cells.
- the present invention thus relates to a degradable and biocompatible implantable tubular scaffolding characterized in that it comprises three layers of different porosity: an inner layer a), an intermediate layer b) and an outer layer c), with continuity between them, and composed all three by the same porous hydrogel based on crosslinked hyaluronic acid.
- tubular scaffolding of the tubular scaffolding:
- the inner layer a has micropores less than about 1 ⁇ , preferably between approximately 0.1 and 0.4 ⁇ and more preferably approximately 0.2 ⁇ ,
- the intermediate layer b) has interconnected pores of larger size than those of the internal and external honeycomb layers, of size between approximately 10 and 70 ⁇ , preferably between approximately 20 and 50 ⁇ , and
- the outer layer, c) has pores smaller than about 12 ⁇ , preferably between approximately 1 and 12, more preferably between approximately 1 and 10 ⁇
- the hybrid conduit or hybrid tubular scaffolding of the invention can have a length of up to 5 cm, as required for the particular application.
- This conduit or hybrid tubular scaffolding has a centered internal channel, or lumen, with a diameter between 1 and 0.20 mm.
- the central channel must be wide enough in humid conditions to allow the insertion of PLLA fibers inside.
- the present invention also relates to a biohybrid, defined as an assembly comprising a tubular scaffolding as defined above, plus the product contained therein, which can be, for example, cells, can be a neurotrophin etc, or any combination .
- Said biohybrid can accommodate Schwann cells or olfactory glia inside or in general glial and neural cells.
- the biohybrid also comprises growth factors and / or drugs in its lumen.
- Growth factors are, for example, the neurotrophins NGF, BDNF or GDNF.
- the drugs are, for example, dopaminergic, such as L-dopa.
- growth factors and / or drugs are found in the lumen embedded in gels or my particles.
- the gels could be, for example, injectable and gellable peptides in situ or solutions of hydrogels such as fibrin, collagen or agarose.
- the micro particles may have a hydrophilic character such as gelatin or hydrophobic such as PLLA, or cross-linked gelatin, depending on the character of the molecule to be loaded into them, and variable sizes up to the order of tens of microns.
- the biohybrid comprises microfilaments of degradable synthetic polyesters (poly-L-lactic acid, polyglycolic acid (PGA), polycaprolactone or copolymers thereof, for example), of nylon or silk of up to tens of microns, arranged in parallel In the lumen, they serve as support for adhesion and guide to cell migration and axon extension.
- degradable synthetic polyesters poly-L-lactic acid, polyglycolic acid (PGA), polycaprolactone or copolymers thereof, for example
- the present invention also relates to a process for obtaining the defined tubular scaffolding characterized in that it comprises at least:
- the mold is made of hydrophobic polymeric material
- the fiber-shaped polymeric material is hydrophobic polymeric material
- the crosslinking agent is divinyl sulfone, glutaraldehyde or carbodiimide.
- the mold is made of polytetrafluoroethylene
- the polymeric material in the form of fiber is ⁇ - ⁇ -caprolactone
- the cross-linking agent is divinyl sulfone, glutaraldehyde or carbodiimide.
- the mold used has grooves that can be of different dimensions and shapes. For example, they can be grooves of square, circular, oval, irregular section, or any other polygonal shape.
- the slots can have a width of up to 3 mm.
- the fiber-shaped material, preferably ⁇ - ⁇ -caprolactone, used has an approximate diameter of between 200 and 2000 ⁇ ; preferably between 200 and 1000 ⁇ and a length greater than the tubular duct.
- DVS divinyl sulfone
- the solutions of HA can be solutions with different concentrations between 0.5% and 8% by weight always referred to weight of HA in 0.2 M sodium hydroxide.
- the solutions of HA have concentrations of between 1 and 5%. by weight of HA in 0.2 M sodium hydroxide.
- the HA solutions are stirred and frozen to -20 ° C for a minimum of 5 h. Freeze-drying of the mold-dissolution assembly, for 24 h, is carried out at a pressure below 600 Pa and an initial temperature of about -80 ° C.
- microporous matrices of HA are obtained due to water sublimation.
- the tubular scaffolding of the mold and the rings of the material that constitute the mold itself are removed, the fibers of the polymer are removed in the form of fibers, obtaining a conduit with a centered inner channel, and the conduits are hydrated of HA obtained.
- PLLA fibers can be inserted inside.
- the present invention also relates to a tubular scaffolding as defined to be obtained by the procedure described above.
- the present invention also relates to the use of defined tubular scaffolding or of the biohybrid comprising said scaffolding, to induce the regeneration of neural tracts and the reconnection of damaged or degenerated neuronal populations.
- the present invention also relates to the use of defined tubular scaffolding or of the biohybrid comprising said scaffolding for use in the regeneration of the nigrostriatal tract in diseases that affect the central nervous system, preferably Parkinson's disease and spinal cord injuries.
- Millimeter HA ducts have been developed with such a unique porosity of the wall, dependent on depth, which allows the diffusion of nutrients or molecular signals, while preventing cells from entering them.
- the different stages of the material manufacturing process provides them with dimensional and structural stability and significantly restricts their swelling in the physiological environment.
- Tubular ducts have a lumen in which cells of interest can be sown in a protected environment.
- a bundle of fibers can be previously included along the lumen, as described of synthetic polyesters, nylon or silk, for example PLLA, to facilitate cell migration or growth.
- SCs Schwann cells
- the specially designed three-dimensional hydrogel represents a favorable environment for cells in terms of viability, migration and distribution, since they proliferate in the same order as they do on other substrates more appropriate for cells, such as PLLA.
- SC cells can cover the lumen from one end to another, of several millimeter ducts, forming a continuous layer based on cell-cell junctions.
- glial cells cultured within the ducts produce significant amounts of structural myelin proteins over time, even in the absence of axons. For all these reasons, the new porous HA ducts are a promising strategy for the restoration of damaged neuronal tracts.
- the conduit that has been developed is a bridge of superior potential for the regeneration of nerve tracts for several reasons:
- a special characteristic of the duct is the triple layer porous wall, which results in a more controlled pore distribution than other comparable devices.
- the unique surfaces of the duct wall are able to prevent the migration of grafted cells out of the canal, forming a barrier for astrocytes, macrophages and other host cells to prevent them from physically interacting with the interior.
- the microporosity dimensions allow the flow of different molecules such as nutrients, waste products, diluted gases and cytokines and other molecular signals involved in cell communication and regulation.
- the wall compartments allow the exchange of nutrients and cellular debris and avoid contact between grafted cells and host cells.
- the wall substrate should mimic the surrounding tissue in terms of pore shape and size, similar to those of brain tissue.
- the duct substrate consists of hyaluronic acid chains, a component of the extracellular matrix, with a low immune response to the host, which should be ideal for grafting purposes, while being biodegradable and biocompatible.
- crosslinked hyaluronic acid is a highly hygroscopic gel
- the lyophilization process limits the dimensional variation due to swelling in aqueous solutions. This is a key factor that must be taken into account to consider its surgical implantation, since the nerves and soft tissues in the central nervous system - CNS - are very sensitive to compression and could otherwise change the regenerative response of the environment. surrounding environment.
- the diffusion coefficient was of the order of the small gas molecules diffusing through a solid membrane.
- Figure 1 shows the distribution of pore sizes ( ⁇ ) and porosity (fraction of the total volume that are pores,%) of the different layers of the tubular scaffolding.
- Figure 2 shows the diffusion of glucose through the hybrid duct (small molecule)
- Figure 3 shows the diffusion of bovine serum albumin (BSA, larger molecule) through the tubular duct.
- BSA bovine serum albumin
- Figure 4 shows by means of a confocal microscopy image, the results of diffusion through Schwann cells cultured 10 days inside the duct, whose cytoskeleton is marked by gray phalacidin The dashed line shows the limits of the channel: cells cannot pass through it.
- Figure 5 is a scanning electron microscopy image of the same Schwann cell culture as in Figure 4, showing the channel with the attached cells, and the structure of the longitudinal section of the tube. No cells are detected either outside or in the middle layer of the duct.
- PTFE polytetrafluoroethylene
- PCL polytetrafluoroethylene
- Divinyl sulfone was used as a crosslinking agent (DVS, Sigma-Aldrich) (by a Michael addition 1, 4) in a DVS: HA molar ratio of 9: 10 monomer units. After the addition, the solutions were stirred. for 10 more seconds and they were injected into the grooves of the mold. Once the solution gelled, the mold was placed in a Petri dish to avoid evaporation and cooled to -20 ° C. Then, the mold-dissolution assembly was lyophilized (Lyoquest-85, Telstar) for 24 h at 20 Pa and -80 ° C to generate HA microporous matrices due to water sublimation.
- the fiber duct was carefully removed from the mold and the PTFE rings were removed.
- said fiber was stretched from its ends to reduce its diameter.
- the ducts were cut into 6 mm portions and stored at 4-8 ° C in sterile distilled water until use (up to 4 weeks).
- HA ducts were obtained after lyophilization of solutions of HA at 1, 3 and 5% by weight HA injected into the molds together with the crosslinking agent. The result was a soft, stable duct with dimensions of 5,384 ⁇ 0,246 mm of length and 1, 251 ⁇ 0.1 17 mm wide. This duct had a centered inner channel of 0.406 ⁇ 0.056 mm in diameter. The central channel was wide enough in humid conditions to allow the insertion of PLLA fibers inside.
- the central channel extends from one end of the scaffolding to the other.
- the soft fibers are arranged parallel to the surface of the canal to favor the extension of the cells on them.
- SCs Schwann rat cells
- Innoprot Primary cultures of Schwann rat cells (SCs, Innoprot) were used. SCs were grown in jars and grown to converge at 37 ° C, 5% CO2, in a complete medium containing essential and non-essential amino acids, vitamins, organic and inorganic compounds, hormones, growth factors, trace minerals and 10 % fetal bovine serum (P60123, Innoprot). All experiments were performed with cells in pass 4 to 6. 5% HA ducts were disinfected, with their lumen hollow or occupied by PLLA fibers, and their films were disinfected and pre-conditioned for cell culture experiments in an enclosure. laminar flow, by means of two successive rinses with 70 ° ethanol for 1 hour.
- the samples were rinsed with 50 ° and 30 ° ethanol for 10 minutes at a time, and then thoroughly rinsed with deionized water.
- the viability and proliferation of the SCs was evaluated by the MTS test (CelITiter 96 Aqueous One Solution, Promega). In HA ducts and HA ducts with PLLA fibers in their lumen there was a significant increase in absorbance with the cultivation time, with respect to the two-dimensional materials.
- the results obtained in both three-dimensional structures were of the same order for each culture and similar to those found for PLLA films on day number 10.
- Viable and dead cells were stained and photographed by fluorescence microscopy; the images after 5 and 10 days of culture show a considerable amount of live cells stained with calcein for the three structures: HA ducts, HA-PLLA ducts and PLLA bundles. Cellular mortality was higher on PLLA fibers than within the HA ducts, with or without such fibers. Quantitatively, flow cytometry analysis revealed a decrease in the percentage of dead cells within the ducts with culture time (LIVE / DEAD Cell Viability Assay, Life Technologies), while not produces this decrease in dead cells when the cells were grown with control (bottom of culture plate well).
- the SCs achieved a high degree of confluence after 10 days of culture and had cell processes, often branched. The cells spread and proliferated as a layer and migrated along the lumen. However, on the PLLA fibers, the SCs cells aligned with respect to the long axis of the fibers and showed a bipolar morphology, with a mainly spindle shape and established cell-cell contacts. In multiphoton images, it was observed without the need for any cut that the cells were accommodated by covering the lumen of the HA and HA-PLLA ducts.
- pO zero myelin protein
- Figures 2 and 3 show that both small molecules of physiological interest, such as glucose, and proteins (such as BSA), can diffuse easily through the tube walls.
- Figures 4 and 5 show the effectiveness of the confinement of the canal in cells that were seeded inside. This demonstrates, at the same time, that cells from outside cannot penetrate the canal. This property protects the cells inside the tube from possible environmental aggressions.
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Abstract
La presente invención describe un biohíbrido para su uso en la regeneración de tractos neurales, que comprende un andamiaje híbrido tubular implantable degradable y biocompatible caracterizado por que comprende tres capas de porosidad diferente: una capa interna a), una capa intermedia b) y una capa externa c), con continuidad entre ellas, y compuestas las tres por un mismo hidrogel poroso basado en ácido hialurónico reticulado, un biohíbrido que comprende el andamiaje tubular híbrido descrito que puede contener en el interior del mismo un material fibroso, preferentemente ácido poli-L- láctico, un procedimiento para obtener dicho andamiaje tubular híbrido y dicho biohíbrido, y el uso de ellos para regenerar tractos neurales en enfermedades que afectan al sistema nervioso central, preferentemente la enfermedad de Parkinson.
Description
Biohíbrido para su uso en la regeneración de tractos neurales
DESCRIPCIÓN
Campo de la Invención
La presente invención se refiere a un biohíbrido para su uso en la regeneración de tractos neurales, que comprende un andamiaje híbrido tubular para su uso en la regeneración de dichos tractos, así como a dicho andamiaje tubular.
Antecedentes de la Invención
Diversas enfermedades que afectan al sistema nervioso central, como la enfermedad de Parkinson, se tratan actualmente con fármacos que alivian la sintomatología y frenan la degeneración. Sin embargo, no existe para muchas de ellas un tratamiento que constituya una terapia real y efectiva.
Una solución, todavía en ensayo clínico, consiste en que las células son injertadas in situ; sin embargo, se produce una baja supervivencia y baja efectividad.
En el sistema nervioso periférico existen otras soluciones similares a las de un conducto para la regeneración nerviosa.
El uso de ácido hialurónico (HA) en la formación de tubos porosos que incorporan otros polímeros como ácido poli-L-láctico (PLLA) y donde se desarrollan células de Schwann y se incorporan diversos factores de crecimiento, factores neurotróficos, etc. es conocido en el estado de la técnica.
El artículo "New artificial nerve conduits made with photocrosslinked hyaluronic acid for peripheral nerve regeneration" Sakai Y1 , Matsuyama Y, Takahashi K, Sato T, Hattori T, Nakashima S, Ishiguro N. Biomed Mater Eng. 2007; 17(3):191-7, describe estructuras porosas tubulares a base de HA fotorreticulado con diámetro de 1 ,2 mm y poros de 50 μηι sobre las que crecen células de Schwann. Sin embargo, la estructura tubular porosa descrita en este documento se diferencia de la presente invención en que no consta de tres capas. Además, la composición del reactivo utilizado en el artículo es una modificación de ácido hialurónico con ácido cinámico, y difiere de la de la presente invención, que es ácido hialurónico sin modificar, el cual posteriormente se entrecruza por reacción, por ejemplo, con divinil sulfona para formar un hilano. Esta diferencia en la composición afecta al comportamiento fisicoquímico, a la velocidad de degradación y a la respuesta biológica del material sintetizado, por lo que dicho conducto y el de la presente invención no son comparables.
Otro artículo titulado "Bectrospun adherent-antiadherent bilayered membranes based on cross-linked hyaluronic foradvanced tissue engineering applications"Ama\-Pastor M, Martínez Ramos C,
http://www.ncbi. nlm.nih.gov/pubmed?term=Mart%C3%ADnez%20Ramos%20C%5BAu thor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23910318, Pérez Garnés M, Monleón Pradas M, Vallés Lluch A.Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2013 Oct;33(7):4086-93, se refiere a una estructura bicapa en la que una de las capas es de HA y la otra es de ácido poliláctico. Sin embargo, no se trata de estructuras tubulares y no se hace mención a la porosidad de las mismas.
La solicitud de patente WO2006077085 describe un biomaterial derivado de HA auto- reticulado y células madre neuronales para la regeneración de daños en el sistema nervioso periférico y medula espinal. Según la reivindicación 5 de este documento, el biomaterial puede estar en forma de tubos con paredes porosas. Sin embargo, no se trata, en el caso de WO2006077085, de una estructura de tres capas con distinta porosidad en cada una de ellas. Este biomaterial se obtiene a) tratando el derivado de HA con una solución de recubrimiento, promoviendo la adhesión de células madre neurales, crecimiento de neuritas y diferenciación; b) poniendo en contacto células madre neurales aisladas con el derivado de HA de la etapa anterior, y c) cultivando y expandiendo las células adheridas en presencia de factores de crecimiento neurotróficos seleccionados entre beta-FGF (factor de crecimiento fibroblástico básico), CNTF (factor neurotrófico ciliar), BDNF (factor neurotrófico derivado del cerebro) y GDNF (factor neurotrófico derivado de glías) o mezclas de ellos.
La solicitud de patente US2003060871 se refiere a un estructura tubular bioestable y bioabsorbible que puede tener hasta tres capas, siendo siempre una de ellas PTFE expandido, pero pudiendo ser las otras dos ácido poliláctico y HA. Se trata de un stent para la liberación de fármacos. Las distintas capas pueden tener distintos diámetros de poro. No se dice que el HA esté sin embargo reticulado. Por lo tanto también tiene diferencias esenciales con el andamiaje tubular de la presente invención.
No existe en la actualidad un producto que permita trasplantar y conducir de manera protegida células neurales en el cerebro con el objetivo de regenerar el tracto nigroestriatal en enfermedades del sistema nervioso central y, especialmente, la enfermedad de Parkinson. Este problema se puede abordar con el andamiaje tubular biodegradable y biocompatible que proporciona la presente invención.
La estrategia basada en el conducto de la presente invención supera los inconvenientes del estado de la técnica, de modo que permitirá repoblar la sustancia negra con células
dopaminérgicas y proteger y guiar el proceso de extensión axonal hasta alcanzar la reconexión con el cuerpo estriado regenerando así el tracto nigroestriatal.
La solución que propone la presente invención podría usarse también para regeneración nerviosa en el sistema nervioso periférico.
La solución aportada por la presente invención presenta las siguientes propiedades ventajosas:
a) Las paredes del conducto admiten el flujo libre de moléculas necesarias para el desarrollo y la supervivencia de las células.
b) Protege las células transplantadas en el lugar que se pretende regenerar y evita que las células agresivas accedan a su interior.
c) Es biodegradable y desaparece por completo del organismo sin necesidad de realizar nuevas intervenciones quirúrgicas. La velocidad con la que desaparece es, además, ampliamente modulable con pequeñas variaciones en algunos parámetros durante la síntesis.
d) Limita o inhibe el efecto de la reacción a cuerpo extraño inherente al injerto de cualquier dispositivo en el organismo.
e) Puede servir de portador de fármacos para que estos se liberen gradualmente en la zona dañada.
Descripción de la invención
A lo largo de la presente memoria los términos que aparecen a continuación tienen el siguiente significado:
- "andamiaje tubular híbrido", "andamiaje tubular", "conducto tubular híbrido" y "conducto tubular" se usan indistintamente.
La presente invención se refiere a un andamiaje tubular o conducto tubular híbrido de ácido hialurónico al cual se le introducen fibras de ácido poli-L-láctico (PLLA) en el lumen, y se puede sembrar con células de interés, tales como células de Schwann o células gliales en general y/o neuronas o precursores neurales in vitro, de modo que se pueda evaluar el rendimiento del mismo.
La estructura tubular del conducto debe ser capaz de aislar y proteger las células sembradas en su lumen del microambiente circundante hostil externo, gracias a su morfología microporosa, la cual permite el intercambio de oxígeno y nutrientes y la eliminación de productos de desecho. Simultáneamente a esta tarea de intercambio, la estructura microporosa actúa como una barrera para moléculas grandes o células.
La presente invención se refiere por tanto a un andamiaje tubular implantable degradable y biocompatible caracterizado por que comprende tres capas de porosidad diferente: una capa interna a), una capa intermedia b) y una capa externa c), con continuidad entre ellas, y compuestas las tres por un mismo hidrogel poroso basado en ácido hialurónico reticulado.
Según realizaciones particulares, del andamiaje tubular:
- la capa interna a) tiene microporos inferiores a aproximadamente 1 μηι, preferentemente de entre aproximadamente 0, 1 y 0,4 μηι y más preferentemente de aproximadamente 0,2 μηι,
- la capa intermedia b) tiene poros interconectados de mayor tamaño que los de las capas interna y externa, en forma de panal, de tamaño entre aproximadamente 10 y 70 μηι, preferentemente entre aproximadamente 20 y 50 μηι, y
- la capa externa, c) tiene poros de tamaño inferior a aproximadamente 12 μηι, preferentemente entre aproximadamente 1 y 12, más preferentemente entre aproximadamente 1 y 10 μηι
El conducto híbrido o andamiaje tubular híbrido de la invención puede tener una longitud de hasta 5 cm, según se requiera para la aplicación particular. Este conducto o andamiaje tubular híbrido presenta un canal interior centrado, o lumen, de diámetro entre 1 y 0,20 mm. El canal central debe ser suficientemente ancho en condiciones de humedad para permitir la inserción de fibras de PLLA en su interior.
La presente invención se refiere también a un biohíbrido, definido como un conjunto que comprende un andamiaje tubular como el anteriormente definido, más el producto que contenga en su interior, que pueden ser por ejemplo, células, puede ser una neurotrofina etc, o cualquier combinación. Dicho biohíbrido puede alojar células de Schwann o glía envolvente olfatoria en su interior o en general células gliales y neurales.
Según realizaciones particulares, el biohíbrido además comprende factores de crecimiento y/o fármacos en su lumen. Los factores de crecimiento son por ejemplo, las neurotrofinas NGF, BDNF o GDNF. Los fármacos son, por ejemplo, dopaminérgicos, como la L-dopa.
De manera preferida los factores de crecimiento y/o los fármacos se encuentran en el lumen embebidos en geles o mi ero partículas. Los geles podrían ser, por ejemplo, péptidos inyectables y gelificables in situ o disoluciones de hidrogeles como fibrina, colágeno o agarosa. Las mi ero partículas pueden tener carácter hidrófilo como la gelatina o hidrófobo como el PLLA, o gelatina entrecruzada, en función del carácter de la molécula a cargar en ellas, y tamaños variables hasta el orden de decenas de mieras.
Según realizaciones particulares, el biohíbrido comprende microfilamentos de poliésteres sintéticos degradables (ácido poli-L-láctico, ácido poliglicólico (PGA), policaprolactona o copolímeros de éstos, por ejemplo), de nylon o de seda de hasta decenas de mieras, dispuestos en paralelo en el lumen, que sirven de soporte para la adhesión y guía a la migración de células y la extensión de axones.
Además, la presente invención se refiere también a un procedimiento para obtener el andamiaje tubular definido caracterizado por que comprende al menos:
- disponer un molde para contener dicho andamiaje tubular,
- introducir en dicho molde un material polimérico en forma de fibra(s),
- preparar disoluciones de HA y agitarlas en presencia de un agente de entrecruzamiento,
- inyectar dichas disoluciones en las ranuras del molde, obteniendo un conjunto molde-soluciones que retícula in situ,
- congelar el conjunto obtenido molde-soluciones, y
- liofilizar el conjunto molde-soluciones obteniendo matrices microporosas de HA.
Según realizaciones particulares el molde es de material polimérico hidrófobo, el material polimérico en forma de fibras es material polimérico hidrófobo y el agente de entrecruzamiento es divinil sulfona, glutaraldehído o carbodiimida.
Según una realización adicional concreta del procedimiento el molde es de politetrafluoroetileno, el material polimérico en forma de fibra es de ροΝ-ε-caprolactona y el agente de entrecruzamiento es divinil sulfona, glutaraldehído o carbodiimida.
El molde utilizado tiene ranuras que pueden ser de dimensiones y formas diversas. Por ejemplo, pueden ser ranuras de sección cuadrada, circular, ovalada, irregular, o cualquier otra forma poligonal. Las ranuras pueden tener un ancho de hasta 3 mm. El material en forma de fibras, preferentemente ροΝ-ε-caprolactona, utilizado tiene un diámetro aproximado de entre 200 y 2000 μηι; preferentemente entre 200 y 1000 μηι y una longitud mayor que el conducto tubular.
Cuando se usa divinil sulfona (DVS) como agente de entrecruzamiento se puede utilizar una relación molar DVS:unidades monoméricas de HA de 0,5: 1 o mayor.
Las disoluciones de HA pueden ser disoluciones con distintas concentraciones entre el 0,5 % y 8 % en peso siempre referido a peso de HA en hidróxido sódico 0,2 M. De modo preferente las disoluciones de HA tienen concentraciones de entre 1 y 5% en peso de HA en hidróxido sódico 0,2 M.
Las disoluciones de HA se agitan y se congelan hasta -20°C durante un mínimo de 5 h. La liofilización del conjunto de molde-disolución, durante 24 h, se realiza a una presión inferior a 600 Pa y una temperatura inicial de unos -80°C. Como producto de la liofilización se obtienen matrices microporosas de HA debido a la sublimación de agua. Después de la etapa de liofilización, se retira el andamiaje tubular del molde y los anillos del material que constituyen el propio molde, se retiran las fibras del polímero en forma de fibras, obteniendo un conducto con un canal interior centrado, y se hidratan los conductos de HA obtenidos. Después de la etapa hidratación se pueden insertar fibras de PLLA en su interior.
La presente invención se refiere también a un andamiaje tubular tal como se ha definido que se obtiene mediante el procedimiento descrito anteriormente.
La presente invención se refiere también al uso del andamiaje tubular definido o del biohíbrido que comprende dicho andamiaje, para inducir la regeneración de tractos neurales y la reconexión de poblaciones neuronales dañadas o degeneradas.
La presente invención se refiere también al uso del andamiaje tubular definido o del biohíbrido que comprende dicho andamiaje para su uso en la regeneración del tracto nigroestriatal en enfermedades que afectan al sistema nervioso central, preferentemente la enfermedad de Parkinson y lesiones medulares.
Se han desarrollado conductos HA milimétricos con una porosidad tan singular de la pared, dependiente de la profundidad, que permite la difusión de nutrientes o señales moleculares, a la vez que impide que las células penetren en ellos. Las diferentes etapas del procedimiento de fabricación de los materiales les proporciona una estabilidad dimensional y estructural y restringe sensiblemente su hinchamiento en el medio fisiológico. Los conductos tubulares tienen un lumen en el que las células de interés pueden ser sembradas en un ambiente protegido. Se puede incluir previamente un haz de fibras a lo largo del lumen, como se ha descrito de poliésteres sintéticos, nylon o seda, por ejemplo de PLLA, para facilitar la migración o crecimiento celular. Estos conductos han demostrado ser compatibles con células de Schwann (SCs), como se ha demostrado en cultivos in vitro. El hidrogel tridimensional especialmente diseñado a medida representa un ambiente favorable para las células en cuanto a su viabilidad, migración y distribución, puesto que ellas proliferan en el mismo orden en el que lo hacen sobre otros sustratos más apropiados para las células, como el PLLA. A pesar de la característica típica de baja adherencia del HA que habitualmente impide una buena proliferación celular, las células SCs pueden cubrir el lumen de un extremo a otro, de conductos de varios milímetros, formando una capa continua basada en uniones célula- célula. Además las células gliales cultivadas dentro de los conductos producen
cantidades importantes de proteínas de mielina estructural a lo largo del tiempo, incluso en ausencia de axones. Por todas estas razones, los nuevos conductos de HA porosos son una estrategia prometedora para el restablecimiento de los tractos neuronales dañados.
El conducto que se ha desarrollado es un puente de potencial superior para la regeneración de tractos nerviosos por varias razones:
En primer lugar, una característica especial del conducto es la pared porosa de triple capa, que da como resultado una distribución de poro más controlada que otros dispositivos comparables.
Las superficies singulares de la pared del conducto son capaces de evitar la migración de células injertadas fuera del canal, formando una barrera para los astrocitos, macrófagos y otras células huésped para evitar que interactúen físicamente con el interior.
A pesar de ello, las dimensiones de microporosidad permiten el flujo de diferentes moléculas como nutrientes, productos de desecho, gases diluidos y citoquinas y otras señales moleculares implicadas en la comunicación celular y la regulación. Así, los compartimentos de la pared permiten el intercambio de nutrientes y residuos celulares y evitan el contacto entre las células injertadas y las células huésped. Según se produce la degradación y la estructura porosa interna de poros de gran tamaño es expuesta, el sustrato de la pared conviene que mimetice el tejido circundante en cuanto a la forma de los poros y el tamaño, similar a los del tejido cerebral.
En segundo lugar, el sustrato del conducto está constituido por cadenas de ácido hialurónico, un componente de la matriz extracelular, con una respuesta inmune baja al huésped, que debería ser ideal para fines de injertos, a la vez que es biodegradable y biocompatible. Además, aunque el ácido hialurónico entrecruzado es un gel altamente higroscópico, el proceso de liofilización limita la variación dimensional debida al hinchamiento en soluciones acuosas. Este es un factor clave que hay que tener en cuenta para considerar su implantación quirúrgica, puesto que los nervios y los tejidos blandos en el sistema nervioso central - SNC - son muy sensibles a la compresión y podrían de otro modo cambiar la respuesta regeneradora del medio ambiente circundante. El coeficiente de difusión, sin embargo, fue del orden del de las pequeñas moléculas de gas difundiendo a través de una membrana sólida.
Breve descripción de las figuras
La Figura 1 muestra la distribución de tamaños de poro (μηι) y porosidad (fracción del volumen total que son poros, %) de las diferentes capas del andamiaje tubular.
La Figura 2 muestra la difusión de glucosa a través del conducto híbrido (molécula pequeña)
La Figura 3 muestra la difusión de albúmina de suero bovino (BSA, molécula más grande) a través del conducto tubular.
La Figura 4 muestra mediante una imagen de microscopía confocal, los resultados de difusión a través de células de Schwann cultivadas 10 días en el interior del conducto, cuyo citoesqueleto aparece marcado por falacidina en color gris La línea de trazos muestra los límites del canal: las células no pueden traspasar éste.
La Figura 5 es una imagen de microscopía electrónica de barrido del mismo cultivo de células de Schwann que en la Figura 4, mostrando el canal con las células adheridas, y la estructura de la sección longitudinal del tubo. No se detectan células ni en el exterior ni en la capa intermedia del conducto.
Ejemplos
1. Preparación de materiales
Se utilizó como molde para los conductos un bloque delgado de politetrafluoroetileno (PTFE) con ranuras perforadas de 1 ,5 mm de ancho. En cada ranura se dispuso una fibra de ροΝ-ε-caprolactona (PCL, PolySciences) de 400-450 μηι de diámetro usando arandelas de PTFE con diámetro externo de 1 ,5 mm cada 3 cm de fibra para mantenerla centrada. Estas fibras actuaron como un negativo para el lumen de los conductos. Se prepararon soluciones de HA (Sigma-Aldrich) al 1 , 3 y 5% en peso de HA en una disolución de hidróxido sódico (NaOH, Scharlab) y se agitaron suavemente. Se usó divinil sulfona como agente de entrecruzamiento (DVS, Sigma-Aldrich) (mediante una adición 1 ,4 de Michael) en una relación molar DVS:HA de unidades de monómero de 9: 10. Después de la adición, las soluciones se agitaron durante 10 segundos más y se inyectaron en las ranuras del molde. Una vez gelificada la solución, el molde se colocó en una placa Petri para evitar evaporación y se enfrió hasta -20°C. Después, el conjunto de molde-disolución fue liofilizado (Lyoquest-85, Telstar) durante 24 h a 20 Pa y -80°C para generar matrices microporosas HA debido a la sublimación de agua. A continuación el conducto de fibras fue retirado cuidadosamente del molde y los anillos de PTFE fueron eliminados. Para extraer la fibra de PCL de cada uno de los conductos de HA, dicha fibra fue estirada desde sus extremos para reducir su diámetro. Finalmente los conductos fueron cortados en porciones de 6 mm y almacenados a 4-8 °C en agua destilada estéril hasta su uso (hasta 4 semanas).
Se obtuvieron conductos de HA después de la liofilización de disoluciones de HA al 1 , 3 y 5% en peso de HA inyectadas en los moldes junto con el agente de entrecruzamiento. El resultado fue un conducto blando, estable, con dimensiones de 5,384 ± 0,246 mm de
longitud y 1 ,251 ± 0,1 17 mm de ancho. Este conducto presentaba un canal interior centrado de 0,406 ± 0,056 mm de diámetro. El canal central fue suficientemente ancho en condiciones de humedad para permitir la inserción de fibras de PLLA en su interior.
El canal central se extiende desde un extremo a otro del andamiaje. En el caso de HA- PLLA las fibras blandas se disponen paralelas a la superficie del canal para favorecer la extensión de las células sobre ellas.
Un estudio estructural mediante imágenes de microscopía electrónica de barrido (SEM) de la porosidad en diferentes zonas de la pared de los conductos de HA al 5 % en peso, reveló un sustrato permeable singular, en el cual se observaron tres topologías de poro. La superficie del canal presentó una capa continua y homogénea con microporos; la estructura interna mostró poros más grandes interconectados de tipo nido de abeja y la superficie externa fue áspera con una distribución de cavidades al azar.
2. Células y conducto híbrido
Se usaron cultivos primarios de células de ratas Schwann (SCs, Innoprot). Se cultivaron SCs en frascos y se crecieron para confluir a 37°C, 5% CO2, en un medio completo que contenía amino ácidos esenciales y no esenciales, vitaminas, compuestos orgánicos e inorgánicos, hormonas, factores de crecimiento, trazas de minerales y 10% de suero fetal bovino (P60123, Innoprot). Todos los experimentos se realizaron con células en pase 4 a 6. Se desinfectaron conductos de HA al 5%, con su lumen hueco u ocupado por fibras de PLLA, y sus películas fueron desinfectadas y pre-acondicionadas para experimentos de cultivos celulares en un recinto de flujo laminar, mediante dos aclarados sucesivos con etanol de 70° durante 1 hora. Se aclararon las muestras con etanol de 50° y 30° durante 10 minutos cada vez, y a continuación se aclararon rigurosamente con agua desionizada. Se evaluó la viabilidad y proliferación de las SCs mediante el ensayo MTS (CelITiter 96 Aqueous One Solution, Promega). En conductos de HA y conductos de HA con fibras de PLLA en su lumen se produjo un aumento significativo de la absorbancia con el tiempo de cultivo, con respecto a los materiales bidimensionales. Los resultados obtenidos en ambas estructuras tridimensionales fueron del mismo orden para cada cultivo y similares a aquéllos encontrados para las películas de PLLA en el día número 10. Células viables y muertas fueron teñidas y fotografiadas por microscopía de fluorescencia; las imágenes después de 5 y 10 días de cultivo muestran una cantidad considerable de células vivas teñidas con calceína para las tres estructuras: conductos de HA, conductos de HA-PLLA y haces de PLLA. La mortalidad celular fue mayor sobre fibras de PLLA que dentro de los conductos de HA, con o sin tales fibras. Cuantitativamente, el análisis de citometría de flujo reveló una disminución en el porcentaje de células muertas dentro de los conductos con el tiempo de cultivo (LIVE/DEAD Cell Viability Assay, Life Technologies), mientras que no se
produce esta disminución de células muertas cuando las células se cultivaron con el control (fondo de pocilio de placa de cultivo). El estudio de la distribución celular dentro de los conductos, mediante inmunohistoquímica y procesado de imágenes reveló una población de células uniforme después de 10 días de cultivo a lo largo de un extremo a otro del lumen, independientemente de que estuviese rellenado o no con fibras. En aquellos conductos que contienen fibras de PLLA, las células parecían estar mejor distribuidas a lo largo de la sección del lumen, mientras que las células se mostraban más bien enrolladas como una hoja en el lumen vacío; este hecho se refleja como la desviación de la intensidad media a lo largo de los conductos, la cual es mayor en el primer caso. Por último, la identidad de las células se confirmó como SCa mediante tinción de anticuerpos anti-GFAP, anti-p75 y anti-S100 y su morfología fue revelada por falacidina en conductos con o sin fibras. En conductos de HA las SCs consiguieron un alto grado de confluencia después de 10 días de cultivo y tenían procesos celulares, con frecuencia ramificados. Las células se extendieron y proliferaron como una capa y migraron a lo largo del lumen. Sin embargo sobre las fibras de PLLA las células SCs se alinearon respecto al eje largo de las fibras y mostraron una morfología bipolar, con una forma principalmente de husillo y establecieron contactos célula-célula. En imágenes multifotón se pudo observar sin necesidad de ningún corte que las células se acomodaron recubriendo el lumen de los conductos de HA y HA-PLLA. Resultados similares se pudieron confirmar por imágenes de microscopía electrónica de barrido (sean electrón microscopy - SEM), en las que los detalles permiten valorar el grado distinto de adhesión de las células dependiendo del sustrato: las células mostraron una conformación redonda formando agregados y estableciendo adhesiones localizadas sobre la superficie del lumen de HA, pero elongadas y completamente adheridas sobre las fibras revelando un contacto íntimo células-PLLA. La expresión de la glicoproteína mielina (pO) después de 10 días de cultivo aumentó en comparación con 1 día en conductos de HA y HA-PLLA. La expresión de la proteína mielina cero (pO), que codifica la principal proteína mielina (constituyendo más del 50% de la proteína total en células Schwann maduras) y que interviene en la adhesión de membranas en envolturas espirales de vainas de mielina, en procesos de compactación, de manera interesante aumentó en un ambiente 3D sin adición de ninguna señal axonal. Esta expresión pO es apenas detectable después de 1 día, pero su presencia es masiva en los conductos después de 10 días, tanto con fibras como sin fibras.
Las Figuras 2 y 3 muestran que tanto moléculas pequeñas de interés fisiológico, como la glucosa, como proteínas (como BSA), pueden difundir con facilidad a través de las paredes del tubo. En las Figuras 4 y 5 se muestra la efectividad del confinamiento del canal en células que fueron sembradas en su interior. Ello demuestra, al mismo tiempo,
que células del exterior no pueden penetrar en el canal. Esta propiedad protege a las células situadas en el interior del tubo de posibles agresiones del entorno.
Como prueba de que la membrana tricapa no supone un obstáculo al paso de nutrientes y moléculas bioactivas, pero impide la migración de las células del interior hacia afuera, o la penetración desde fuera, se presentan también resultados de difusión a través del conducto de cultivos de células de Schwann, Figuras 4 y 5.
Claims
1. Un andamiaje tubular implantable degradable y biocompatible caracterizado por que comprende tres capas de porosidad diferente: una capa interna a), una capa intermedia b) y una capa externa c), con continuidad entre ellas, y compuestas las tres por un mismo hidrogel poroso basado en ácido hialurónico reticulado.
2. Andamiaje tubular según la reivindicación 1 , caracterizado por que las capas de hidrogel poroso presentan una porosidad:
- la capa interna a) tiene microporos de inferiores a 1 μηι ;
- la capa intermedia b) tiene poros interconectados de mayor tamaño que los de las capas interna y externa, en forma de panal, de tamaño entre 10 y 70 μηι y
- la capa externa c) tiene poros de tamaño inferior a 12 μηι.
3. Un andamiaje tubular según cualquiera de las reivindicaciones anteriores caracterizado por que tiene un diámetro interno con unas dimensiones de alrededor de 400 μηι y una longitud de hasta 50 mm.
4. Biohíbrido caracterizado por que comprende un andamiaje tubular definido en una cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
5. Biohíbrido según la reivindicación 4, caracterizado por que comprende células de Schwann o glía envolvente olfatoria en su interior.
6. Biohíbrido según una de las reivindicaciones 4 o 5, caracterizado por que además comprende factores de crecimiento y/o fármacos en su lumen.
7. Biohíbrido según la reivindicación 6, caracterizado por que los factores de crecimiento están seleccionados entre neurotrofinas NGF, BDNF o GDNF.
8. Biohíbrido según una la reivindicación 6, caracterizado por que los fármacos son dopaminérgicos.
9. Biohíbrido según la reivindicación 6, caracterizado por que los factores de crecimiento y/o los fármacos se encuentran en el lumen embebidos en geles o mi ero partículas.
10. Biohíbrido según la reivindicación 9, caracterizado por que los geles son péptidos inyectables y gelificables in situ o disoluciones de hidrogeles, preferentemente fibrina, colágeno o agarosa.
11. Biohíbrido según la reivindicación 9, caracterizado por que las micropartículas tienen carácter hidrófilo.
12. Biohíbrido según la reivindicación 9, caracterizado por que las micropartículas tienen carácter hidrófobo.
13. Biohíbrido según la reivindicación 9, caracterizado por que las micropartículas son de PLLA o de gelatina entrecruzada.
14. Biohíbrido según una de las reivindicaciones 4 a 13, caracterizado por que comprende microf i lamentos de poliésteres sintéticos degradables de nylon o de seda de diámetros desde mieras a decenas de mieras, dispuestos en paralelo en el lumen, que sirven de soporte para la adhesión y guía a la migración de células y la extensión de axones.
15. Procedimiento para obtener el andamiaje tubular definido en una de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por que comprende:
- disponer un molde con ranuras para contener dicho andamiaje tubular,
- introducir en dicho molde un material polimérico en forma de fibra(s),
- preparar disoluciones de HA y agitarlas en presencia de un agente de entrecruzamiento,
- inyectar dichas disoluciones en las ranuras del molde, obteniendo un conjunto molde-soluciones que retícula in situ,
- congelar el conjunto obtenido molde-soluciones, y
- liofilizar el conjunto molde-soluciones obteniendo matrices microporosas de HA.
16. Procedimiento según la reivindicación 15, caracterizado por que:
- el molde es de material polimérico hidrófobo
- el material polimérico en forma de fibras es de material polimérico hidrófobo
- el agente de entrecruzamiento es divinil sulfona, glutaraldehído o carbodiimida.
17. Procedimiento según la reivindicación 15, caracterizado por que:
- el molde es de politetrafluoroetileno
- el material polimérico en forma de fibras es de ροΝ-ε-caprolactona
- el agente de entrecruzamiento es divinil sulfona, glutaraldehído o carbodiimida.
18. Procedimiento según una de las reivindicaciones 15 a 17, caracterizado por que comprende después de la etapa de liofilización:
- retirar el andamiaje tubular del molde y los anillos de material que constituye el propio molde
- retirar la fibra de material polimérico, obteniendo un conducto con un canal interior centrado, e
- hidratar los conductos de HA.
19. Procedimiento según una de las reivindicaciones 15 a 18, caracterizado por que comprende después de la etapa hidratación, la inserción de fibras de PLLA en su interior.
20. Un andamiaje tubular definido en una de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por que se obtiene mediante un procedimiento como el definido en una de las reivindicaciones 15 a 19.
21. Un andamiaje tubular definido en una de las reivindicaciones 1 a 3 o un biohíbrido definido en una de las reivindicaciones 4 a 14, para su uso en la inducción de la regeneración de tractos neurales y la reconexión de poblaciones neuronales dañadas o degeneradas.
22. Un andamiaje tubular definido en una de las reivindicaciones 1 a 3 o un biohíbrido definido en una de las reivindicaciones 4 a 14 para su uso en la regeneración de tractos en enfermedades que afectan al sistema nervioso central, preferentemente, la enfermedad de Parkinson y lesiones medulares.
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