WO2015129577A1 - 細胞培養治具およびこの細胞培養治具を用いた細胞培養方法 - Google Patents

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WO2015129577A1
WO2015129577A1 PCT/JP2015/054787 JP2015054787W WO2015129577A1 WO 2015129577 A1 WO2015129577 A1 WO 2015129577A1 JP 2015054787 W JP2015054787 W JP 2015054787W WO 2015129577 A1 WO2015129577 A1 WO 2015129577A1
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WO
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cell culture
culture
jig
cells
cell
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PCT/JP2015/054787
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森本康一
加藤暢宏
國井沙織
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学校法人近畿大学
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34—Internal compartments or partitions
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/26—Constructional details, e.g. recesses, hinges flexible

Definitions

  • the present invention refers to treatment for culturing cells (for example, established cells, primary cells, adult stem cells, iPS cells, MUSE cells, ES cells, embryos such as in vitro fertilized embryos and somatic clone embryos, etc.). And a cell culture method using the cell culture jig.
  • cells for example, established cells, primary cells, adult stem cells, iPS cells, MUSE cells, ES cells, embryos such as in vitro fertilized embryos and somatic clone embryos, etc.
  • a cell culture treatment that is simple in structure but can be quickly replaced without losing cells accidentally when replacing the culture medium, which is indispensable for cell culture. And a cell culture method.
  • the present invention also relates to a cell culture jig and a cell culture method capable of smoothly performing a culture medium exchange operation without stimulating cells.
  • the present invention relates to a cell culture jig and a cell culture method that exhibit the technical effects described below.
  • the survival rate of the cells during culture can be improved.
  • the cells are seeded and cultured inside the cell culture jig placed on the culture dish, and the culture dish is filled with the culture solution without seeding the cells outside the cell culture jig. If the culture medium is extracted from the outside of the cell culture jig and a fresh culture liquid is supplied from the outside of the cell culture jig, the culture liquid is not excessively stimulated to the cells inside the cell culture jig. And the stimulation (stress) applied to the cells can be reduced even during long-term culture.
  • multi-layered (three-dimensional) cells Since it can be cultured for a long time, it is possible to obtain multi-layered (three-dimensional) cells. For example, cell differentiation induction can be promoted by forming an aggregate in which cells seeded at high density inside the cell culture jig are layered. 3) The cultured cells can be taken out as a cell mass (sheet form). 4) If a plurality of different types of cell masses are prepared and further layered, a cell mass (multilayered cell sheet) in which a plurality of types of cells are layered can also be produced.
  • Arbitrary cells (A cells) and other cells (B cells) are simultaneously placed inside the ring-shaped body or frame-shaped body of the cell culture jig according to the present invention and seeded, or the ring-shaped body or frame-shaped body Arbitrary cells (A cells) are seeded inside the body, and other cells (B cells) are seeded outside the ring or frame, so that the culture dish is filled with the culture medium.
  • a and B the influence of substances secreted from the cells can be evaluated.
  • the inside the ring or frame of the cell culture jig according to the present invention Can be seeded and cultured on the outside of the ring or frame, and these cells can be seeded and cultured in the same culture dish.
  • the contamination rate of feeder cells can be reduced. 7)
  • the migration ability of the remaining cells can be observed and examined.
  • the efficacy can be quantitatively evaluated by coexisting an anticancer agent or the like.
  • the inside of the ring-shaped body or the frame-shaped body has a sufficient size in terms of culturing the cells. Therefore, if a plurality of cell culture jigs according to the present invention are placed in a culture dish, cell functions after culturing different types of cells in the same culture dish at the same time or after removing the cell culture jig (cell (Exercise, morphological change, etc.) can be observed. Moreover, only the necessary cells can be easily recovered from the culture dish when necessary when necessary.
  • cells to be cultured for example, established cells, primary cells, adult stem cells, iPS cells, MUSE cells, ES cells, in vitro fertilized embryos, somatic cell clone embryos, etc.
  • a common method is to place embryos with the medium in a commercially available plastic culture dish and sow, culture, and proliferation, differentiation, growth, etc. Yes.
  • such a conventional method has a problem that cells are accidentally lost together with an old culture solution when an old culture solution is replaced with a fresh culture solution.
  • the cells when the old culture solution is discarded by using a pipette or the like, the cells may be sucked into the pipette together with the old culture solution, and proliferation and differentiation (differentiation) ), Cells that have grown, etc., may be discarded along with the old culture solution.
  • some cells are vulnerable to external stimuli (stress) such as primary cells.
  • stress stress
  • vibrations and fluid fluctuations that occur when old media are replaced May adversely affect cell proliferation, differentiation, growth, and the like. As a result, such stimulation may cause the cell population to be selected during the culture period.
  • an enzyme such as trypsin is generally used to collect cells adhered to sponges or hollow fibers.
  • the efficiency is increased. Since it is difficult to collect well, there is also a problem that it is difficult to recover a sufficient amount of cells. Furthermore, since it is impossible to observe the adhered cells with a microscope, the degree of cell differentiation cannot be evaluated, and the viability of cells in culture cannot be accurately calculated. . Therefore, in these techniques, the actual situation is that only the survival state of the cell can be estimated from the amount of the protein secreted by the cell.
  • a jig that can cultivate a large number of cells simply and efficiently for a long period of time is strongly desired as being useful in a wide range of fields from basic research to the development of therapeutic materials.
  • a jig that can directly observe and evaluate changes such as cell morphology with a microscope during the culture period is also strongly desired.
  • Corning Japan jig (Corning Flowell 2W Plate) has been developed as a culture dish for long-term culture.
  • the Sartorius jig 101 has an inverted conical shape in which an opening 102 is provided at the bottom as shown in FIG. Then, by adopting such a shape, when the jig 101 is placed on the culture dish 104, it is easy to insert and operate a manipulator or capillary for processing and processing cells while retaining the cells in the opening 102 at the bottom. It has become something that can be.
  • the Sartorius jig is not intended to facilitate the replacement of the culture medium in the first place, but is intended to facilitate the insertion and manipulation of manipulators and capillaries.
  • a certain height (specifically, the height of the jig as shown in FIG. 21 (b) is set so that the jig does not move when the manipulator or capillary is inserted and operated. (T ′) must be higher than the height of the culture dish).
  • the Sartorius jig since the Sartorius jig has a certain height, the culture solution must be used in excess of the required amount when it is used as the cell culture jig according to the present invention described later. However, there is a problem that the frequency of contamination increases when culturing for a long time.
  • the jig of Sartorius has a characteristic that the material easily gets wet with water, there is a problem that the protein in the culture solution is adsorbed to the jig and the efficiency of the culture is lowered.
  • tool shown in patent document 1 becomes a structure where the bottom face was adhere
  • the jig shown in Patent Document 1 has a small area of each of the four wells, it is unsuitable to collect many cells at once when collecting cells from each well.
  • the cultured cells are stained with a labeled antibody or the like, the jig shown in Patent Document 1 is difficult to work because each well is fixed to a cover glass, and is suitable for observation of detailed cell morphology and cell function. There is also a problem of disappearing.
  • Corning Japan's jig inoculates cells into the middle well of a 6-well plate and adds fresh culture medium to one side of the well. It is structured to flow into the well on the other side by gravity, while a fresh culture solution flows little by little into the cell-seeded well, enabling long-term culture for several days.
  • the Corning Japan jig can omit the replacement work of the culture solution, there is a problem that the structure is complicated and the cost is high.
  • the well diameter and the number of wells are also fixed, and there is a problem that they are not suitable for flexible experiments in cell culture.
  • the culture solution and the cell suspension must be placed in a predetermined well and allowed to stand in a CO 2 incubator, which is not suitable for observing cells taken out from the CO 2 incubator. is there.
  • the present invention has been made in view of the above-described conventional problems, and has a simple structure, but cells are mistakenly lost during replacement of a culture solution that is indispensable for cell culture. It is an object of the present invention to provide a cell culture jig and a cell culture method that can quickly perform a culture medium exchange operation.
  • the cell culture jig tool and cell culture method which express the technical effect described below.
  • the survival rate of the cells during culture can be improved, and high-density cell culture can be performed.
  • the cells are seeded and cultured inside the cell culture jig placed on the culture dish, and the culture dish is filled with the culture solution without seeding the cells outside the cell culture jig. Then, if the culture medium is extracted from the outside of the cell culture jig and a fresh culture solution is supplied from the outside of the cell culture jig, the inside and outside of the cell culture jig can be obtained without excessive stimulation.
  • the fresh components and waste products of the culture solution can be exchanged slowly, and the stimulation (stress) applied to the cells can be reduced even during long-term culture.
  • Multilayered (three-dimensional) cells can be obtained by long-term culture. For example, cell differentiation induction can be promoted by forming an aggregate in which cells seeded at high density inside the cell culture jig are layered. 3) The cultured cells can be taken out as a cell mass (sheet form). 4) If a plurality of different types of cell masses are prepared and further layered, a cell mass (multilayered cell sheet) in which a plurality of types of cells are layered can also be produced.
  • Arbitrary cells (A cells) and other cells (B cells) are simultaneously placed inside the ring-shaped body or frame-shaped body of the cell culture jig according to the present invention and seeded, or the ring-shaped body or frame-shaped body Arbitrary cells (A cells) are seeded inside the body, and other cells (B cells) are seeded outside the ring or frame, so that the culture dish is filled with the culture medium.
  • a and B the influence of substances secreted from the cells can be evaluated.
  • the inside the ring or frame of the cell culture jig according to the present invention Can be seeded and cultured on the outside of the ring or frame, and these cells can be seeded and cultured in the same culture dish.
  • the contamination rate of feeder cells can be reduced. 7)
  • the migration ability of the remaining cells can be observed and examined.
  • the efficacy can be quantitatively evaluated by coexisting an anticancer agent or the like.
  • the cell culture jig according to the present invention has a sufficient size from the viewpoint of culturing the cells inside the ring-shaped body or the frame-shaped body (the part where cells are seeded and cultured). . Therefore, if a plurality of cell culture jigs are placed in a culture dish, different types of cells can be cultured on the same culture dish at the same time, and the cell function (cell motility and Morphological change etc.) can be observed. Moreover, only the necessary cells can be easily recovered from the culture dish when necessary when necessary.
  • the cell culture jig according to the present invention is a jig for culturing cells, wherein the flexible material is a ring-shaped body or a frame-shaped body, and the bottom surface is smoothed. It is characterized by.
  • the cell culture jig according to the present invention is characterized in that at least one groove is provided on the upper surface of the ring-shaped body or the frame-shaped body.
  • the cell culture jig according to the present invention is characterized in that the inner wall of the ring-shaped body or frame-shaped body is inclined so as to gradually expand from the bottom surface to the top surface.
  • the cell culture jig according to the present invention is characterized in that at least one culture medium exchange part formed by recessing a part of the inner periphery toward the outer periphery is provided on the inner periphery of the ring-shaped body or the frame-shaped body.
  • the cell culture jig according to the present invention is characterized in that the height of the ring-shaped body or the frame-shaped body in the thickness direction is 0.5 to 4 mm.
  • the cell culture jig according to the present invention is characterized in that the surface roughness Ra of the bottom surface is 1 ⁇ m or less.
  • the flexible material is selected from silicone resin, thermosetting elastomer, cyclic olefin copolymer, thermoplastic elastomer, silicone rubber, fluororubber, natural rubber, and synthetic rubber. It is a seed or two or more kinds of materials.
  • the cell culture method according to the present invention is characterized by using the cell culture jig according to the present invention.
  • the method for using the cell culture jig according to the present invention uses two cell culture jigs and a culture solution permeable film, and the culture solution permeable film is arranged so as to close the opening on the upper surface side of one cell culture jig. After that, another cell culture jig is overlaid thereon.
  • the cells can be quickly replaced without accidentally losing cells at the time of exchanging the culture solution, which is indispensable for cell culture, while having a simple structure.
  • the culture medium can be exchanged.
  • the culture medium can be exchanged smoothly without giving unnecessary stimulation to the cells.
  • cells can be easily cultured for a long period of time, the survival rate of the cells during culture can be improved. For example, cells are seeded and cultured inside a cell culture jig placed on a culture dish, and cells are not seeded outside, and the culture dish is filled with a culture solution. Then, if the culture medium is extracted from the outside of the cell culture jig, and the fresh culture liquid is supplied from the outside of the cell culture jig, the culture medium can be replaced without excessively irritating the cells. Can also reduce the stress (stress) applied to the cells. 2) Multilayered (three-dimensional) cells can be obtained by long-term culture.
  • cell differentiation induction can be promoted by forming an aggregate in which cells seeded at high density inside the cell culture jig are layered. 3) The cultured cells can be taken out as a cell mass (sheet form). 4) If a plurality of different types of cell masses are prepared and further layered, a cell mass (multilayered cell sheet) in which a plurality of types of cells are layered can also be produced.
  • Arbitrary cells (A cells) and other cells (B cells) are simultaneously placed inside the ring-shaped body or frame-shaped body of the cell culture jig according to the present invention and seeded, or the ring-shaped body or frame-shaped body Arbitrary cells (A cells) are seeded inside the body, and other cells (B cells) are seeded outside the ring or frame, so that the culture dish is filled with the culture medium.
  • a and B the influence of substances secreted from the cells can be evaluated.
  • the inside the ring or frame of the cell culture jig according to the present invention Can be seeded and cultured on the outside of the ring or frame, and these cells can be seeded and cultured in the same culture dish.
  • the contamination rate of feeder cells can be reduced. 7)
  • the migration ability of the remaining cells can be observed and examined.
  • the efficacy can be quantitatively evaluated by coexisting an anticancer agent or the like.
  • the cell culture jig according to the present invention has a sufficient size from the viewpoint of culturing the cells inside the ring-shaped body or the frame-shaped body (the part where cells are seeded and cultured). . Therefore, if a plurality of cell culture jigs are placed in a culture dish, different types of cells can be cultured on the same culture dish at the same time, and the cell function (cell motility and Morphological change etc.) can be observed. Moreover, only the necessary cells can be easily recovered from the culture dish when necessary when necessary.
  • the culture medium inside the ring-shaped body or the frame-shaped body is raised by surface tension. Can be suppressed.
  • the culture medium on the outside and inside of the ring-shaped body or frame-shaped body can be smoothly moved without causing turbulent flow. It will be connected. Therefore, it is possible to prevent cells from flowing out from the inside of the ring-shaped body or the frame-shaped body due to turbulent flow when exchanging the culture solution.
  • the culture medium can be changed without giving unnecessary stress to the cells. Furthermore, by adopting such a shape, a water-repellent flexible material that has a large contact angle with water (the culture medium inside the ring-shaped body or frame-shaped body is likely to rise) is adopted. It will be easier.
  • the culture medium can be exchanged more effectively inside the ring-shaped body or frame-shaped body.
  • the position of the turbulent flow of the culture solution that occurs during the supply and withdrawal of the culture solution can be fixed, it is possible to replace the culture solution while minimizing the adverse effects of cell outflow and turbulence. It can be carried out.
  • the height in the thickness direction of the ring-shaped body or frame-shaped body is 0.5 to 4 mm, a small amount of culture can be performed without requiring a large amount of culture solution as in the conventional jig.
  • the above effect can be expressed by the liquid.
  • the bottom surface has a small surface roughness or is made of a flexible material, it is possible to place the cell culture jig without creating a gap between the inner bottom surface of the culture dish. It is possible to more effectively prevent cells and culture fluid from leaking through the gap between the cell culture jig and the inner bottom surface of the culture dish.
  • FIG. 7 is a cross-sectional view taken along the line BB ′ of FIG.
  • Example 2 is a photograph showing a cell mass after culturing human breast cancer epithelial cells (MCF7) using the cell culture jig of FIG. 2 is a photograph showing a cell mass after culturing mouse fibroblasts (NIH / 3T3) using the cell culture jig of FIG.
  • MCF7 breast cancer epithelial cells
  • NIH / 3T3 mouse fibroblasts
  • Example 5 it is a photograph which shows the state of the human bone marrow mesenchymal stem cell dye
  • Example 6 it is a photograph which shows the state of the human bone marrow mesenchymal stem cell dye
  • FIG. 6 is a photograph showing the state of human liver cancer cells (HepG2) stained with Giemsa after culturing human liver cancer cells (HepG2) using the cell culture jig of FIG.
  • FIG. 9 is a photograph showing the state of human lung cancer cells (A549) stained with Giemsa after culturing human lung cancer cells (A549) using the cell culture jig of FIG. 8.
  • it is a photograph which shows the state of the human bone marrow mesenchymal stem cell dye
  • It is a schematic diagram which shows the conventional cell culture method.
  • FIG. 1 is a schematic view showing a first embodiment of a cell culture jig according to the present invention
  • FIG. 2 is a schematic view showing a method for using the cell culture jig of FIG.
  • the cell culture jig 1 according to the present invention has a structure in which a flexible material is a ring-shaped body or a frame-shaped body.
  • the cell culture jig 1 according to the present invention has a basic structure in which an opening 2 is provided by being a ring-shaped body or a frame-shaped body.
  • 1st embodiment shown in FIG. 1 is a form which used the shape of the cell culture jig 1 (1a) as the annular body, it is not limited to this, Frame shape which employ
  • various embodiments as will be described later can be adopted within the scope of the basic structure.
  • the cultured cell mass can be converted into a ring-shaped (donut-shaped) cell mass (sheet) or frame. It can also be recovered as a cell mass (sheet).
  • the cell culture jig 1 needs to have a smooth bottom surface 3. Since the bottom surface is formed as a smooth surface, the cell culture jig 1 (1a) is placed in the culture dish 4 when the cell culture jig 1 (1a) is placed in the culture dish 4 as shown in FIG. It can be mounted without creating a gap with the inner bottom surface of the. As a result, it is possible to prevent cells and culture fluid from leaking through the gap between the cell culture jig 1 (1a) and the inner bottom surface of the culture dish 4.
  • the surface roughness Ra of the bottom surface is set to 1 ⁇ m or less by manufacturing or processing the bottom surface using a method described later, the cells and the culture solution are transferred between the cell culture jig 1 and the inner bottom surface of the culture dish 4. Since it can prevent more effectively that it leaks from a clearance gap, it is suitable. Further, the surface roughness Ra of the bottom surface is preferably 1 nm or less, preferably 1 nm or less, preferably 0.83 nm or less, more preferably 0.2 nm or less. It is preferable that it is 18 nm or less.
  • the specific height (T) of the cell culture jig in the thickness direction is not particularly limited, but if the height is too low, the inside of the cell culture jig may be changed when the culture solution is replaced. There is a possibility that the cells 5 existing in the cell flow out of the cell culture jig from the opening 2.
  • the height (T) in the thickness direction of the cell culture jig is preferably in the range of 0.5 to 4 mm, and more preferably in the range of 1 to 3 mm.
  • the size of the opening 2 of the cell culture jig 1 according to the present invention is not particularly limited and can be appropriately determined according to the culture dish to be used and the size of a desired cell mass. If 2 is too large, cells 5 are scattered in the opening 2, so that cell proliferation, differentiation, growth, and other efficiencies (particularly paracrine and autocrine are caused) There is a risk that the efficiency of proliferation, differentiation, growth, etc. in the cells will decrease. On the other hand, if the opening 2 is too small, it becomes difficult to handle. Therefore, the opening of the cell culture jig preferably has a diameter or a length of the longest side of 0.5 to 60 mm, and more preferably 1 to 8 mm.
  • the material for the cell culture jig 1 according to the present invention needs to be a flexible material. Since the jig is easily deformed, a gap is formed between the cell culture jig 1 and the inner bottom surface of the culture dish 4 when the cell culture jig 1 is placed in the culture dish 4. It is because it can be mounted without causing it. As a result, it is possible to prevent cells and culture fluid from leaking through the gap between the cell culture jig 1 and the inner bottom surface of the culture dish 4. In addition, due to the synergistic effect with the smoothness of the bottom surface described above, it is possible to prevent cells and culture fluid from leaking through the gap between the cell culture jig 1 and the inner bottom surface of the culture dish 4.
  • the flexible material examples include silicone resin, thermosetting elastomer, cyclic olefin copolymer, thermoplastic elastomer, cyclic olefin copolymer, silicone rubber, fluoro rubber, natural rubber, and synthetic rubber. Since the cell culture jig 1 can be closely attached to the inner bottom surface of the culture dish 4 without gaps, it is preferable to use a silicone resin or a cyclic olefin copolymer. Furthermore, among them, the fluorescent staining of the cells is not affected without emitting fluorescence, the protein in the culture solution is difficult to adsorb to the jig due to the hydrophobicity, and the culture dish 4 due to intermolecular force. It is preferable to use a silicone resin from the viewpoint that the adsorption effect can be expected. Moreover, various materials, such as a hardening
  • the method for producing the cell culture jig according to the present invention is not particularly limited.
  • the flexible material is poured into an arbitrary container such as a culture dish so as to have a desired thickness of the cell culture jig and cured.
  • a sheet material made of a flexible material is prepared by punching and then punched out from the sheet material using a ring-shaped body having a desired opening or a frame of a frame-shaped body.
  • the surface that becomes the free liquid surface when the flexible material is poured into an arbitrary container has extremely high smoothness (surface roughness Ra is nm level).
  • this surface is used as the bottom surface of the cell culture jig according to the present invention, a simple and highly accurate cell culture jig can be obtained. Moreover, it can also manufacture by forming the said flexible material in ring shape or frame shape so that it may become desired thickness and opening using the dispenser etc. on the bottom face of a culture dish. Further, a cell culture jig mold is produced, and the flexible material is produced by molding the flexible material by a known molding method such as injection molding, extrusion molding, compression molding, casting molding, vacuum molding or the like. It is also possible to adopt a method or a method in which a flexible material is previously formed into a cylindrical body having a desired opening size and then cut into a desired thickness. In addition, when manufacturing the cell culture jig based on this invention using a type
  • FIG. 2 is a schematic diagram showing a method for using the cell culture jig of FIG. 1
  • FIG. 3 is a schematic diagram showing a cell culture method using the cell culture jig of FIG.
  • the cell culture jig 1 (1 a) is placed in the culture dish 4. At this time, if necessary, the cell culture jig 1 (1a) may be pressed with tweezers or the like to be brought into close contact with the culture dish 4. After placing the cell culture jig 1 (1a) in the culture dish 4, the inner bottom and wall surface of the cell culture jig 1 (1a) are fixed with various extracellular matrices such as collagen and gelatin (before Processing).
  • the cell culture jig 1 (1a) of the present invention has a height in the thickness direction of 0.5 to 4 mm, which is lower than the conventional jig, the inside of the cell culture jig 1 (1a) is treated.
  • the air drying time after fixing can be performed in a short time.
  • the cell culture jig 1 (1a) in the culture dish 4 and fixing the inside of the cell culture jig 1 (1a) with collagen or gelatin, the cell culture jig 1 ( If cells to be cultured are seeded inside 1a), the culture efficiency can be improved. Further, even in long-term culture, the cell culture jig of the present invention exchanges the culture solution from the outside of the cell culture jig as will be described later, so that damage and peeling of the extracellular matrix can be prevented.
  • the cells 5 to be cultured are seeded inside the cell culture jig 1 (1a), the inside of the cell culture jig 1 (1a) is filled with the culture solution 6, and the incubator Hold for a certain time. Then, the cells 5 initially floating in the culture solution 6 gradually sink and adhere to the inner bottom portion and wall surface of the cell culture jig 1 (1a).
  • the culture solution 6 on the upper side inside the cell culture jig 1 (1a). Remove gently.
  • these cells are also used together with the culture solution 6 inside the cell culture jig 1 (1a). Pull out and discard.
  • the upper culture solution 6 inside the cell culture jig 1 (1a) is gently removed.
  • the culture medium 6 is gently supplied to the inside of the cell culture jig 1 (1a) to fill it, and then the upper culture medium 6 inside the cell culture jig 1 (1a) is gently removed. By doing so, only the cells 5 that are sufficiently adhered to the bottom or wall surface of the cell culture jig 1 (1a) can be left inside the cell culture jig 1 (1a).
  • cultivation is started by filling the culture dish 4 with the culture solution 6 so that the whole cell culture jig
  • the culture dish 4 may be filled with the culture medium 6 by supplying the culture medium 6 from the outside of the cell culture jig 1 (1a).
  • the culture medium 6 is gently supplied to the inside and the inside of the cell culture jig 1 (1a) is filled with the culture liquid 6, the culture liquid 6 is supplied from the outside of the cell culture jig 1 (1a).
  • Turbulence generated when the culture solution 6 existing outside the cell culture jig 1 (1a) and the culture solution 6 existing inside the cell culture jig 1 (1a) are connected can be suppressed, As a result, it is preferable because the culture dish 4 can be filled with the culture solution 6 without stimulating the cells 5.
  • the old culture solution is discarded by removing the culture solution 6 outside the cell culture jig 1 (1a) with a pipette (not shown). Then, as shown in FIG. 3 (d), the culture solution 6a inside the cell culture jig 1 (1a) containing the cells 5 is left as it is, and most of the old ones are not stimulated. The culture medium can be discarded.
  • the cell 5 is proliferated, differentiated, grown, etc. in the cell culture jig 1 (1a). become. Then, as shown in FIG. 3 (f), the cells 5 that have proliferated, differentiated, and grown will overlap in the cell culture jig 1 (1a). Then, after repeating such operations, the culture solution 6 and the cell culture jig 1 (1a) are removed as shown in FIGS. 3 (g) and 3 (h). It can be taken out as 7). Therefore, when the cell culture jig according to the present invention is used, it is possible to layer cells that have been proliferated, differentiated, grown, etc. very easily.
  • the layering of cells itself has been performed in the past, but in the past, a method of stacking cells by placing the cultured cells in a centrifuge tube and repeating the centrifugation is common.
  • a method of stacking cultured cells in a culture dish by controlling a plurality of pumps and valves.
  • any of these conventional stratification methods requires time-consuming processing and complicated control.
  • the cells on the outer periphery may be peeled off from the cell mass and separated and separated by the turbulent flow of the culture solution.
  • the cell culture method using the cell culture jig according to the present invention is used, cell stratification can be performed very easily without using such complicated equipment. Furthermore, the risk that the cells will come apart can be kept extremely low.
  • the layered cells are not a single cell obtained by a conventional culture method as shown in FIG. 20 but a three-dimensional cell tissue, the cells are actually present in the body. It is useful as an approximation. Specifically, it is known that cartilage progenitor cells, adipose progenitor cells, and the like become three-dimensionally layered cell aggregates, so that differentiation induction is promoted to become mature chondrocytes and adipocytes. If a layered cartilage progenitor cell, adipose progenitor cell, or the like is produced using the cell culture jig according to the present invention, a cell aggregate that has been differentiated and matured in a short time can be obtained more easily than before.
  • FIG. 4 is a schematic view showing another cell culture method using the cell culture jig of FIG.
  • FIG. 4 (a) an arbitrary cell 5a is seeded inside a cell culture jig 1 (1a) placed in a culture dish 4, and the cell culture jig 1 (1a ) Is seeded with another cell 5b different from any cell. Then, the culture dish 4 is filled with the culture solution 6 and the culture is started.
  • FIG. 5 is a schematic view showing a second embodiment and a method of using the cell culture jig according to the present invention.
  • the cell culture jig 1 (1b) according to the second embodiment has at least one groove on the upper surface of the cell culture jig 1 (1a) according to the first embodiment. 8 is provided.
  • the cell 5 to be cultured is transferred to the cell culture jig 1 (1b). ), And the cells 5 are adhered to the bottom or wall surface inside the cell culture jig 1 (1b).
  • the culture solution 6 existing inside 1 (1b) can be brought into smooth contact.
  • the turbulent flow generated when the culture solution 6 is connected can be suppressed, and the cells cultured inside the cell culture jig 1 (1b) are outside the cell culture jig 1 (1b). It is possible to prevent the situation that the leak occurs.
  • the form shown in FIG. 5 provides the groove part 8 in four places, the number of groove parts is not limited to this, It can determine suitably as needed.
  • the shape of the groove portion 8 is not particularly limited, and various shapes such as a U-shape, a V-shape, and a concave shape, and combinations of various shapes can be adopted.
  • FIG. 6 is a schematic view showing a third embodiment of the cell culture jig according to the present invention and a method for using the same.
  • FIG. 7 is a cross-sectional view taken along the line BB ′ of FIG. 6 (FIG. 7A). It is the figure compared with AA 'sectional drawing (FIG.7 (b)).
  • the cell culture jig 1 (1c) according to the third embodiment has the inner wall portion of the cell culture jig 1 (1a) according to the first embodiment from the bottom surface to the upper surface.
  • the inner wall 9 is inclined so as to gradually expand.
  • the cell culture jig 1 (1 c) is placed in the culture dish 4.
  • the bottom and wall surface inside the cell culture jig 1 (1c) are fixed with various extracellular matrices such as collagen and gelatin. (Pre-processing) is also possible.
  • the cell 5 to be cultured is transferred to the cell culture jig 1 (1c). ), And the cells 5 are adhered to the bottom or wall surface inside the cell culture jig 1 (1c).
  • the inside of the cell culture jig 1 (1c) is filled with the culture solution 6, and the cell culture jig according to the first embodiment.
  • the surface tension (contact angle ( ⁇ )) is the same as that of No. 1 (1a)
  • the inner wall 9 is inclined as shown in FIG. )
  • the rise of the liquid level of the culture solution 6 can be reduced.
  • the culture solution 6 existing outside the cell culture jig 1 (1c) and the cell culture jig 1 (1c) It is possible to prevent a phenomenon in which the culture solution 6 existing inside is connected at a stretch, and to suppress the generation of turbulent flow when the culture solution 6 is connected. As a result, it is possible to prevent a phenomenon in which cells cultured inside the cell culture jig 1 (1c) flow out to the outside of the cell culture jig 1 (1c) when supplying or replacing the culture solution. Can do it.
  • the liquid surface of the culture medium 6 inside the cell culture jig 1 (1a) has a contact angle. ( ⁇ ) will be a big excitement. If the culture medium 6 is supplied from the outside of the cell culture jig 1 (1a) in such a state, the culture liquid 6 and the cell culture jig 1 existing outside the cell culture jig 1 (1a). Since the culture solution 6 existing inside (1a) is connected at a stretch, turbulence is generated when the culture solution 6 is connected. As a result, such turbulent flow may cause the cells cultured inside the cell culture jig 1 (1a) to flow out of the cell culture jig 1 (1a).
  • the culture medium 6 shown in FIGS. 3 (d) and 3 (e) is replaced by the above-described method.
  • the cells cultured as shown in FIGS. 3 (g) and 3 (h) are converted into cell clusters (sheets). Will be collected as 7).
  • the inclination degree of the inner wall 9 and the shape of the inclined surface are not particularly limited and can be appropriately determined as necessary.
  • FIG. 8 is a schematic view showing a fourth embodiment and a method of using the cell culture jig according to the present invention.
  • the cell culture jig 1 (1d) according to the fourth embodiment is arranged on the inner periphery of the cell culture jig 1 (1a) according to the first embodiment.
  • the culture medium exchanging part 10 is formed with a part recessed toward the outer peripheral side.
  • the cell culture jig 1 (1 d) is placed in the culture dish 4.
  • the inner bottom and wall surface of the cell culture jig 1 (1d) are fixed with various extracellular matrices such as collagen and gelatin. (Pre-processing) is also possible.
  • the cells 5 to be cultured are seeded inside the cell culture jig 1 (1d), and further the cells 5 are placed inside the cell culture jig 1 (1d).
  • the culture solution 6 is supplied or exchanged by inserting the tip of the pipette into the culture solution exchange unit 10. Specifically, first, the tip of an empty pipette is inserted into the culture medium exchange unit 10, and the culture medium inside the cell culture jig 1 (1d) is gently aspirated, and then the tip of the pipette is gently replaced with the culture medium. The old culture solution inside the cell culture jig 1 (1d) is discarded by removing it from the part 10. Next, by inserting the tip of the pipette into the culture medium exchange unit 10, a new culture medium is slowly supplied inside the cell culture jig 1 (1d), taking care not to generate unnecessary turbulence. .
  • the replacement work of the culture solution 6 (FIG. 3 (c) to (3) in the case of using the cell culture jig according to the first embodiment)
  • the cells The culture solution is exchanged by supplying the culture solution 6 from the outside (1d) of the culture jig 1 and filling the culture dish 4 with the culture solution 6 so that the entire cell culture jig 1 (1d) is immersed.
  • the turbulent flow of the culture solution 6 that occurs during the supply or exchange of the culture solution 6 always occurs in a fixed place in the vicinity of the culture solution exchange unit 10, cell culture is performed. Many cells cultured inside the jig 1 (1d) and other than in the vicinity of the culture medium exchange section 10 are proliferated, differentiated, grown, etc. without being affected by the turbulent flow of the culture medium 6. Will be able to.
  • the supplied culture solution 6 diffuses inside the cell culture jig 1 (1d) after colliding with the inner wall of the culture solution exchange unit 10, that is, after the turbulence is reduced by the inner wall of the culture solution exchange unit 10.
  • the cell culture jig according to the fourth embodiment most of the old culture solution existing inside the cell culture fixture 1 (1d) is discarded when the culture solution is exchanged. Therefore, compared to the cell culture jigs (1a) to (1c) according to the first to third embodiments in which only the culture medium at the upper part inside the cell culture jig is discarded, a larger amount of fresh culture liquid is used.
  • the cells can be supplied to the cells, and the culture efficiency can be improved.
  • the cultured cells are collected as a cell mass (sheet-like) 7.
  • supply or exchange work of culture fluid 6 can be completed only inside cell culture jig 1 (1d).
  • the culture medium can be supplied or replaced without supplying the culture medium 6 from the outside of the cell culture jig 1 (1d), and the consumption of the culture medium can be reduced.
  • the culture medium exchange unit 10 is U-shaped, but the shape of the culture medium exchange unit is not limited to this, and various shapes such as a V-shape and a concave shape are available. Shapes and combinations of various shapes can be employed.
  • the culture medium permeable film 11 is used to place the culture medium permeable film 11 so as to close the opening on the upper surface side of one cell culture jig, and another cell culture jig is further stacked thereon. It is a thing.
  • the cell culture jig 1 (1e) shown in FIGS. 9 (a) to 9 (c) uses two cell culture jigs 1 (1a) according to the first embodiment and a culture solution permeable film 11.
  • the present embodiment is not limited to this, and two cell culture jigs 1 arbitrarily selected from cell culture jigs 1 (1a) to 1 (1d) as necessary. Can be used in combination.
  • FIG. 10 is a schematic view showing a cell culture method using the cell culture jig of FIG.
  • one cell culture jig 1 (1 a) serving as a lower cell culture jig is placed in the culture dish 4.
  • cells 5 floating cells in this embodiment
  • FIG. 10 (a) cells 5 (floating cells in this embodiment) to be cultured are seeded inside the cell culture jig 1 (1a).
  • the bottom and the wall surface inside the lower cell culture jig 1 (1a) are coated with various extracellular matrices such as collagen and gelatin. It is also possible to fix (pre-process).
  • the old culture solution is discarded by pulling out the culture solution 6 outside the cell culture jig 1 (1e) with a pipette (not shown). Then, as shown in FIG. 10 (d), the culture solution 6a inside the lower cell culture jig 1 (1a) containing the cells 5 is left as it is. Therefore, most of the old culture solution can be discarded without stimulating the cells 5 and preventing the floating cells from flowing out.
  • the culture jig 1 (1e) of the fifth embodiment is used, even if it is a floating cell or a cell having low adhesion to the bottom or wall surface of the cell culture jig, the culture is performed.
  • the culture medium can be exchanged quickly without losing cells by mistake.
  • the culture medium can be exchanged smoothly without stimulating the cells, and the survival rate of the cells in the culture can be improved.
  • the cells 5 are allowed to proliferate, differentiate, grow, etc. in the lower cell culture jig 1 (1a) as shown in FIG. 10F. Will do.
  • the culture medium 6 is cultured until the liquid level is lower than the lower cell culture jig 1 (1a). After removing from the outside of the jig 1 (1e), the upper cell culture jig 1 (1a) and the culture solution permeable film 11 are removed.
  • the cultured cells 5 are recovered by aspirating the culture solution 6 containing the cultured cells 5 present inside the lower cell culture jig 1 (1a) with a pipette.
  • the cell culture jig of the present embodiment when used, even if it is a floating cell, the cell can be cultured without accidentally losing the cell. Further, in the conventional culture of floating cells, the cells and the culture solution are centrifuged for exchanging the culture solution. However, when the cell culture jig of this embodiment is used, Thus, cells can be cultured easily without going through such a centrifugation step.
  • the culture solution 6 outside the cell culture jig 1 (1e) is recovered with a pipette (not shown). do it. Then, useful components such as antibodies in the culture solution can be efficiently obtained without going through the centrifugation of the hybridoma cells and the culture solution.
  • the cell culture jig of this embodiment when used, even if it is a floating cell, it can be easily cultured without losing the cell by mistake. Also useful components such as antibodies secreted by can be easily recovered.
  • FIG. 11 is a schematic view showing a sixth embodiment and a method of using the cell culture jig according to the present invention.
  • the cell culture jig 1 (1h) according to the sixth embodiment is fitted to each of the two cell culture jigs 1 (1a) to 1 (1d) as shown in FIGS. 11 (a) and 11 (b). Except that the member 11 is provided, the cell culture jig 1 (1e) according to the fifth embodiment has the same configuration.
  • a convex fitting member 11 is provided in the lower cell culture jig 1
  • a concave fitting member (not shown) is provided in the upper cell culture jig 1.
  • the present invention is not limited to this, and convex and concave fitting members can be provided on the reverse cell culture jig, and various fitting structures are available. Can be adopted.
  • the operation of the cell culture jig according to the sixth embodiment configured as described above is omitted because it is the same as that of the fifth embodiment. Since the two cell culture jigs are connected by a fitting structure, it is possible to prevent the upper cell culture jig from moving or shifting even when exchanging the culture solution. The replacement work can be performed more reliably.
  • FIG. 12 is a schematic view showing a seventh embodiment and a method of using the cell culture jig according to the present invention.
  • the cell culture jig 1 (1a) according to the seventh embodiment has the end portion of the cell culture jig 1 (1a) according to the first embodiment. After leaving a cut in a ring shape, the culture medium permeable film 11 is sandwiched between the cuts.
  • the cell culture jig 1 (1a) cut in a circular shape is placed in the culture dish 4.
  • the upper part of the cell culture jig 1 (1a) is turned over, and cells 5 (floating cells in the present embodiment) to be cultured are seeded inside the lower part of the cell culture jig 1 (1a).
  • transmission film 11 pretreated by fully immersing in order of the phosphate buffer solution (pH 7.4) containing methanol, ethanol, and physiological saline concentration was inserted in the notch
  • the upper part of the cell culture jig 1 (1a) is returned to its original position (by pressing the culture medium permeable film 11 with the upper part of the cell culture jig 1 (1a)), as shown in FIG.
  • the cell culture jig 1 (1i) is placed in the culture dish 4. Then, the culture medium is exchanged by performing the same operation as in the fifth embodiment.
  • the cell culture jig 1 (1i) is moved to a position where the level of the culture liquid 6 becomes lower than the height of the lower part of the cell culture jig 1 (1a). ) From outside.
  • the culture containing the cultured cells 5 existing inside the lower part of the cell culture jig 1 (1a) The cultured cells 5 are recovered by aspirating the liquid 6 with a pipette. Therefore, even when the cell culture jig of this embodiment is used, cells can be cultured easily without accidentally losing floating cells, and antibodies such as antibodies secreted by the cells can be used. Also useful components can be easily recovered.
  • Example 2 A cell culture jig of Example 2 (a cell culture jig corresponding to the first embodiment) was produced in the same manner as in Example 1 except that a vacuum atmosphere was used when the silicone resin was cured.
  • the surface roughness Ra of the bottom surface of the cell culture jig of Example 2 was 0.18 nm.
  • Example 3 Next, as shown in FIG. 2, the cell culture jig of Example 1 was pressed and adhered to the bottom surface of a culture dish having an inner diameter of 35 mm with tweezers. Next, human breast adenocarcinoma epithelial cells (MCF7) are suspended in a DMEM culture solution containing 10% fetal bovine serum as a culture solution, and the suspension is supplied to the inside of the cell culture jig. did. Next, this culture dish was allowed to stand in a CO 2 incubator for 60 minutes, and then the upper culture solution inside the cell culture jig was gently removed with a pipette and discarded.
  • MCF7 human breast adenocarcinoma epithelial cells
  • the cell culture jig was completely immersed in the culture dish with the culture medium, and it was confirmed that the inner side and the outer side of the cell culture jig were connected with the upper culture liquid.
  • the culture was started in a CO 2 incubator without replacing this state culture.
  • Example 5 Using the cell culture jig of Example 1, as shown in FIG. 2, the bottom of a culture dish having an inner diameter of 35 mm was pressed and brought into close contact with tweezers. Next, human bone marrow mesenchymal stem cells are suspended in a mesenchymal stem cell proliferation culture solution (manufactured by Lonza Japan Co., Ltd., MSCGM, BulletKit PT-3001), and the suspension is supplied to the inside of the cell culture jig. Sowing. Next, this culture dish was allowed to stand in a CO 2 incubator for 60 minutes, and then the upper culture solution inside the cell culture jig was gently removed with a pipette and discarded.
  • a mesenchymal stem cell proliferation culture solution manufactured by Lonza Japan Co., Ltd., MSCGM, BulletKit PT-3001
  • the culture solution-permeable film pretreated by sufficiently immersing methanol, ethanol, and a phosphate buffer solution (pH 7.4) containing a physiological saline concentration in the order described above is used as the above cell culture jig (lower cell culture jig).
  • a phosphate buffer solution pH 7.4 containing a physiological saline concentration in the order described above
  • FIGS. 10 (g) and 10 (h) Three days after the start of the culture, as shown in FIGS. 10 (g) and 10 (h), when HL-60 inside the cell culture jig after the culture was recovered with a pipette, the HL-60 cultured in the previous culture method was collected. HL-60 could be recovered at a high density several times higher. Moreover, the secretion from HL-60 could be recovered by recovering the culture solution outside the cell culture jig.
  • the culture medium can be exchanged quickly and smoothly, and the cells can be cultured for a long time without stimulating the cells. It was found that it can be produced.
  • the advantages of reducing unnecessary stimuli such as vibration, convection, temperature change, and culture pH change associated with culture medium exchange, and stable culture and observation without losing cells are the development of research in the field of regenerative medicine. It became clear that it would be indispensable to.
  • a cell mass having a certain area (a certain number of cells) is required for research and treatment of regenerative medicine, it was found that the cell culture jig according to the present invention is useful also in this respect. .

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Abstract

【課題】細胞培養の際に不可欠となる培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法が望まれていた。また、細胞に刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法が望まれていた。 【解決手段】本発明に係る細胞培養治具は、可撓性材料を輪状体または枠状体とし、かつ底面を平滑にしたことを特徴とする。

Description

細胞培養治具およびこの細胞培養治具を用いた細胞培養方法
　本発明は、細胞（例えば、樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、iＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚等のことを指す。）を培養するための治具およびこの細胞培養治具を用いた細胞培養方法に関するものである。
　詳しくは簡単な構造でありながら、細胞培養の際に不可欠となる培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法に関するものである。
　また、細胞に刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法に関するものである。
　さらに、以下に記載する技術的効果を発現する細胞培養治具および細胞培養方法に関するものである。
　１）細胞を簡便に長期培養できるので、培養の際における細胞の生存率を向上させることができる。例えば、培養皿に載置した細胞培養治具の内側で細胞を播種、培養し、細胞培養治具の外側には細胞を播種せず、培養皿内を培養液で満たす。そして、細胞培養治具の外側から培養液を抜き取って、新鮮な培養液を細胞培養治具の外側から供給すれば、細胞培養治具の内側にある細胞に過度な刺激を与えることなく培養液を交換でき、長期間の培養においても細胞にかかる刺激（ストレス）を軽減することができる。
　２）長期培養することができるため重層化（立体化）した細胞を得ることができる。例えば、細胞培養治具の内側に高密度に播種した細胞が重層化した凝集体を形成することで、細胞の分化誘導を促進することができる。
　３）培養した細胞を細胞塊（シート状）として取り出すことができる。
　４）異なる種類の細胞塊を複数作成し、さらにそれらを重層化すれば、複数種の細胞が層状となった細胞塊（多層化細胞シート）を作製することもできる。
　５）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に任意の細胞（Ａ細胞）と別の細胞（Ｂ細胞）を同時に入れて播種したり、或いは、輪状体または枠状体の内側には任意の細胞（Ａ細胞）を播種し、輪状体または枠状体の外側には別の細胞（Ｂ細胞）を播種して、培養皿内を培養液で満たすようにすれば、Ａ、Ｂの各細胞から分泌される物質がそれぞれの細胞に及ぼす影響を評価することができる。
　６）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを播種し、輪状体または枠状体の外側に共培養に用いるフィーダー細胞を播種すれば、同じ培養皿の中でこれらの細胞を播種、培養することができ、培養後の樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを回収する際にフィーダー細胞の混入率を少なくすることができる。
　７）一定期間細胞を培養した後に細胞培養治具を培養皿から取り除くことにより、残った細胞の移動能を観察して調べることができる。また、その際に抗がん剤などを共存させることでその薬効を定量的に評価することができる。
　８）本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の内側（細胞を播種して培養する部分）が細胞を培養する観点において十分な大きさを有するものとなっている。そこで、培養皿の中に本発明に係る細胞培養治具を複数載置すれば、異なる種類の細胞を同時に同じ培養皿で培養することや細胞培養治具を除いた後の細胞機能（細胞の運動能や形態変化など）の観察を行うことができる。しかも、必要な時に必要な細胞のみを必要な量だけ簡便に培養皿から回収することもできる。
　従来から細胞の培養方法としては、図２０に示すように、培養したい細胞（例えば、樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、iＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚）をそのまま培養液とともに市販のプラスチック製の培養皿などに入れて、播種、培養して増殖（proliferation）、分化（differentiation）、成長（growth）などをさせる方法が一般的な方法となっている。
　しかし、このような従前の方法では、古くなった培養液を新鮮な培養液に交換する際に、誤って細胞を古い培養液と共に喪失してしまうという問題があった。
　具体的には、例えばピペット等を用いて古い培養液を吸い込むことによって廃棄するような場合に、古い培養液とともに細胞もピペット等に吸い込んでしまうことがあり、折角増殖（proliferation）、分化（differentiation）、成長（growth）などが進んだ細胞を古い培養液とともに廃棄してしまうことがあるのである。
　また、細胞の中には初代細胞などの外部からの刺激（ストレス）に弱いものもあり、そのような細胞を含む集団については、古い培養液を交換する際に発生する振動や液の揺らぎなどが細胞の増殖（proliferation）、分化（differentiation）、成長（growth）などにとって悪影響を与えてしまうこともある。そしてその結果、そのような刺激によって培養期間中に細胞集団の選別が行われる恐れがあるのである。
　その他に、現在利用されている細胞の長期培養法として、ホローファイバー（ＵｎｉＦｌｕｘ ４００ /１２０ ＬＰＭ、ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社）やスポンジ（ＣＳＭ－２５、コラーゲンスポンジ マイティー、株式会社高研）などの細胞固定化担体を用いて細胞を接着固定化し、培養液を循環させる技術が知られている。
　しかし、これらの技術は煩雑でかつ高価な培養液循環装置が必要であったり、スポンジなどの内部に十分な細胞が入らないなどの課題がある。また、これらの技術は、雑菌、ウイルス、マイコプラズマなどの混入による培養液汚染の問題もあり、一旦培養液の汚染が発生すると培養液を全て破棄しなければならず、経済的な観点からも大きな問題を有している。
　また、これらの技術においてはスポンジやホローファイバーに接着した細胞を回収する際にトリプシンなどの酵素を用いるのが一般的な方法であるが、この方法では接着した細胞を担体から剥離した後、効率よく集めることが困難であるため、十分な量の細胞を回収するのは困難であるという問題もある。
　さらに、接着した細胞を顕微鏡などで観察することが不可能であることから、細胞分化の程度を評価することもできず、また培養中の細胞の生存率なども正確に計算できないという問題もある。従って、これらの技術においては、細胞が分泌するタンパク質の量などから、細胞の生存状況を推測することしかできないのが実情となっている。
　また、細胞の培養においては、細胞の分化、細胞間相互作用、免疫反応、炎症反応などを評価する目的、治療のための細胞シートを作製する目的、細胞が分泌する有用タンパク質の回収を行う目的などのために、細胞をｉｎ　ｖｉｔｒｏで長期培養することが行われている。そして、このような長期培養において細胞の機能変化を検証するには、特異な遺伝子の発現あるいはタンパク質の発現などを評価することが必要不可欠となり、係る評価の再現性と信頼性を担保するためには、ある程度の細胞数を分析することが必要不可欠となる。具体的には、１０４個～１０８個程度の細胞を培養することが望ましいことになる。
　しかし、多数の細胞を簡便に効率よく、長期間培養することができる治具は開発されておらず、また培養期間中に顕微鏡で直接に細胞形態などの変化を観察評価できる治具も開発されていない。さらに、細胞を高密度で培養することができる治具も開発されていない。
　従って、多数の細胞を簡便に効率よく、長期間培養することができる治具は基礎研究から治療用材料開発までの広い分野において有用であるとして強く切望されている。また、培養期間中に顕微鏡で直接に細胞形態などの変化を観察評価できる治具も強く切望されている。さらに、細胞を高密度で培養することができる治具も強く切望されている。
　ここで、細胞を培養する際に用いる治具の例としては図２１に示すザルトリウス社（ドイツ）の治具１０１や特許文献１に示す治具などが開発されている。
　また、長期培養用の培養皿として、コーニングジャパン社の治具（Ｃｏｒｎｉｎｇ　ＦｌｏＷｅｌｌ　２Ｗ　Ｐｌａｔｅ）も開発されている。
意匠登録第１３６５７７６号公報
　しかし、これら従前の治具はいずれも以下の通り、別の目的を達成するために開発されたものであることから、培養液の交換を円滑に行うことは極めて困難な構造となっている。
　まず、ザルトリウス社の治具１０１については、図２１（ａ）に示す通り、底部に開口１０２が設けられている逆円錐形状となっているものである。そして、係る形状とすることによって、治具１０１を培養皿１０４に載置した際、底部の開口１０２に細胞を留めつつ、細胞を加工、処理するためのマニピュレーターやキャピラリーを挿入、操作しやすくすることができるものとなっている。
　このように、ザルトリウス社の治具はそもそも培養液の交換を円滑に行うことを目的としたものではなく、マニピュレーターやキャピラリーを挿入、操作しやすくすることを目的とするものである。さらに、その効果を発現させるためにマニピュレーターやキャピラリーを挿入、操作する際に治具が動かないよう、ある程度の高さ（具体的には、図２１（ｂ）に示すように治具の高さ（Ｔ‘）が培養皿の高さよりも高くなっていること）を有していることが構成要件として必要となるものである。
　また、ザルトリウス社の治具はある程度の高さを有していることから、後記する、本発明に係る細胞培養治具のような使い方をしようとすると培養液を必要量以上に用いなければならず、長期間培養する場合にはコンタミネーションの頻度が増してしまうという問題がある。
　さらに、ザルトリウス社の治具は材質が水に濡れ易い特性を持つものであるため、培養液中のタンパク質などが治具に吸着してしまい、培養の効率が低下してしまうという問題もある。
　次に、特許文献１に示す治具については、ザルトリウス社の治具に比べて冶具の高さが培養皿の高さに比べて低くなってはいるものの、依然として相当な高さを有している構造となっている。
　従って、特許文献１に示す治具も、本発明に係る細胞培養治具のような使い方をしようとすると多量の培養液が必要となってしまうことから、ザルトリウス社の治具と同様の問題を有しているのである。
　また、特許文献１に示す治具は底面がカバーガラスに接着されている構造となっていることから、培養後の細胞を冶具の中から回収することが困難になってしまうという問題もある。具体的には、特許文献１に示す治具は４つの各ウエルの面積が小さいことから、それぞれのウエルから細胞を回収する際、多くの細胞を一度に集めることが不適となるのである。
　さらに、特許文献１に示す治具は培養した細胞を標識抗体などで染色する際、各ウエルがカバーガラスに固定されているので作業が困難となり、詳細な細胞形態や細胞機能の観察には適さなくなるという問題もある。
　次に、コーニングジャパン社の治具は、細胞を６ウエルプレートの真中のウエルに播種してその片側方に新鮮な培養液を加えると、ウエルの下の微小通路を通じて細胞播種した古い培養液が重力でもう片側方のウエルに流れ、その一方で新鮮な培養液が細胞播種したウエルに少しずつ流れ込む構造となっており、数日間の長期培養が可能となるものである。
　しかし、コーニングジャパン社の治具は、培養液の交換作業を省略することは可能であるが、構造が複雑であり高価格という問題がある。また、ウエル径とウエル数も固定されており、細胞培養の臨機応変な実験には到底向かないという問題がある。さらに、使用方法として培養液と細胞浮遊液などを決められたウエルに入れてＣＯ２インキュベーターに静置しなければならず、ＣＯ２インキュベーターから取り出しての細胞の観察には適していないという問題もある。
　本発明は、上記した従来の問題点に鑑みてなされたものであって、簡単な構造でありながら、細胞培養の際に不可欠となる培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法を提供することを目的とするものである。
　また、細胞に不必要な刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができる細胞培養治具および細胞培養方法を提供することを目的とするものである。
　さらに、以下に記載する技術的効果を発現する細胞培養治具および細胞培養方法を提供することを目的とするものである。
　１）細胞を簡便に長期培養できるので、培養の際における細胞の生存率を向上させることができ、また高密度な細胞培養を行うことができる。例えば、培養皿に載置した細胞培養治具の内側で細胞を播種、培養し、細胞培養治具の外側には細胞を播種せず、培養皿内を培養液で満たす。そして、細胞培養治具の外側から培養液を抜き取って、新鮮な培養液を細胞培養治具の外側から供給すれば、細胞培養治具の内側にある細胞に過度な刺激を与えることなく内外の培養液の新鮮な成分と老廃物をゆっくりと交換でき、長期間の培養においても細胞にかかる刺激（ストレス）を軽減することができる。
　２）長期培養することで重層化（立体化）した細胞を得ることができる。例えば、細胞培養治具の内側に高密度に播種した細胞が重層化した凝集体を形成することで、細胞の分化誘導を促進することができる。
　３）培養した細胞を細胞塊（シート状）として取り出すことができる。
　４）異なる種類の細胞塊を複数作成し、さらにそれらを重層化すれば、複数種の細胞が層状となった細胞塊（多層化細胞シート）を作製することもできる。
　５）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に任意の細胞（Ａ細胞）と別の細胞（Ｂ細胞）を同時に入れて播種したり、或いは、輪状体または枠状体の内側には任意の細胞（Ａ細胞）を播種し、輪状体または枠状体の外側には別の細胞（Ｂ細胞）を播種して、培養皿内を培養液で満たすようにすれば、Ａ、Ｂの各細胞から分泌される物質がそれぞれの細胞に及ぼす影響を評価することができる。
　６）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを播種し、輪状体または枠状体の外側に共培養に用いるフィーダー細胞を播種すれば、同じ培養皿の中でこれらの細胞を播種、培養することができ、培養後の樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを回収する際にフィーダー細胞の混入率を少なくすることができる。
　７）一定期間細胞を培養した後に細胞培養治具を培養皿から取り除くことにより、残った細胞の移動能を観察して調べることができる。また、その際に抗がん剤などを共存させることでその薬効を定量的に評価することができる。
　８）また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の内側（細胞を播種して培養する部分）が細胞を培養する観点において十分な大きさを有するものとなっている。従って、培養皿の中に複数の細胞培養治具を載置すれば、異なる種類の細胞を同時に同じ培養皿で培養することや細胞培養治具を除いた後の細胞機能（細胞の運動能や形態変化など）の観察を行うことができる。しかも、必要な時に必要な細胞のみを必要な量だけ簡便に培養皿から回収することもできる。
　上記目的を達成するために、本発明に係る細胞培養治具は、細胞を培養するための治具であって、可撓性材料を輪状体または枠状体とし、かつ底面を平滑にしたことを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の上面に、溝部を少なくとも１箇所設けたことを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の内壁を、底面から上面に向かって次第に拡がるように傾斜させたことを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の内周に、内周の一部を外周側に窪ませて形成した培養液交換部を少なくとも１箇所設けたことを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の厚み方向の高さが、０．５～４ｍｍであることを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、底面の表面粗さＲａが、１μｍ以下であることを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具は、可撓性材料が、シリコーン樹脂、熱硬化性エラストマー、環状オレフィンコポリマー、熱可塑性エラストマー、シリコーンゴム、フッ素ゴム、天然ゴム、合成ゴムから選択される１種または２種以上の材料であることを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養方法は、本発明に係る細胞培養治具を用いることを特徴とする。
　また、本発明に係る細胞培養治具の使用方法は、細胞培養治具２つと培養液透過フィルムを用い、培養液透過フィルムを、一の細胞培養治具の上面側の開口を塞ぐように配置した後、さらにその上に他の細胞培養治具を重ね合わせることを特徴とする。
　本発明に係る細胞培養治具および細胞培養方法によれば、簡単な構造でありながら、細胞培養の際に不可欠となる培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができる。
　また、細胞に不必要な刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができる。
　さらに、以下に記載する技術的効果を得ることができる。
　１）細胞を簡便に長期培養できるので、培養の際における細胞の生存率を向上させることができる。例えば、培養皿に載置した細胞培養治具の内側で細胞を播種、培養し、外側には細胞を播種せず、培養皿内を培養液で満たす。そして、細胞培養治具の外側から培養液を抜き取って、新鮮な培養液を細胞培養治具の外側から供給すれば、細胞に過度な刺激を与えることなく培養液を交換でき、長期間の培養においても細胞にかかる刺激（ストレス）を軽減することができる。
　２）長期培養することで重層化（立体化）した細胞を得ることができる。例えば、細胞培養治具の内側に高密度に播種した細胞が重層化した凝集体を形成することで、細胞の分化誘導を促進することができる。
　３）培養した細胞を細胞塊（シート状）として取り出すことができる。
　４）異なる種類の細胞塊を複数作成し、さらにそれらを重層化すれば、複数種の細胞が層状となった細胞塊（多層化細胞シート）を作製することもできる。
　５）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に任意の細胞（Ａ細胞）と別の細胞（Ｂ細胞）を同時に入れて播種したり、或いは、輪状体または枠状体の内側には任意の細胞（Ａ細胞）を播種し、輪状体または枠状体の外側には別の細胞（Ｂ細胞）を播種して、培養皿内を培養液で満たすようにすれば、Ａ、Ｂの各細胞から分泌される物質がそれぞれの細胞に及ぼす影響を評価することができる。
　６）本発明に係る細胞培養治具の輪状体または枠状体の内側に樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを播種し、輪状体または枠状体の外側に共培養に用いるフィーダー細胞を播種すれば、同じ培養皿の中でこれらの細胞を播種、培養することができ、培養後の樹立細胞、初代細胞、成体幹細胞、ｉＰＳ細胞、ＭＵＳＥ細胞、ＥＳ細胞、体外受精胚や体細胞クローン胚などの胚などを回収する際にフィーダー細胞の混入率を少なくすることができる。
　７）一定期間細胞を培養した後に細胞培養治具を培養皿から取り除くことにより、残った細胞の移動能を観察して調べることができる。また、その際に抗がん剤などを共存させることでその薬効を定量的に評価することができる。
　８）また、本発明に係る細胞培養治具は、輪状体または枠状体の内側（細胞を播種して培養する部分）が細胞を培養する観点において十分な大きさを有するものとなっている。従って、培養皿の中に複数の細胞培養治具を載置すれば、異なる種類の細胞を同時に同じ培養皿で培養することや細胞培養治具を除いた後の細胞機能（細胞の運動能や形態変化など）の観察を行うことができる。しかも、必要な時に必要な細胞のみを必要な量だけ簡便に培養皿から回収することもできる。
　また、輪状体または枠状体の上面に溝部を設けたり、輪状体または枠状体の内壁に傾斜を設けたりすることによって、輪状体または枠状体の内側の培養液が表面張力によって盛り上がることを抑制することができる。その結果、培養液の交換時に輪状体または枠状体の外側から新鮮な培養液を供給する際に、輪状体または枠状体の外側と内側の培養液とが乱流を起こすことなくスムースに繋がることになる。従って、培養液の交換時に乱流によって輪状体または枠状体の内側から細胞が流出することを防止できる。また、細胞に余計なストレスを与えることなく培養液の交換時を行うことができる。
　さらに、このような形状とすることによって、水との接触角が大きくなってしまう（輪状体または枠状体の内側の培養液が盛り上がりやすくなってしまう）撥水性の可撓性材料が採用し易くなることになる。
　また、輪状体または枠状体の内周に培養液交換部を設けることによって、輪状体または枠状体の内側における培養液の交換をより効果的に行うことができる。また、培養液の供給および抜き取りの際に発生する培養液の乱流の位置を定位置にすることができるため、細胞の流出や乱流による弊害を最小限に留めつつ、培養液の交換を行うことができる。
　また、輪状体または枠状体の厚み方向の高さが０．５～４ｍｍとなるように構成されているので、従前の冶具のように多量の培養液を必要とすることなく、少量の培養液によって上記の効果を発現させることができる。
　また、底面の表面粗さが小さかったり、可撓性に富む材料によって構成されているので、細胞培養治具を培養皿の内底面との間に隙間をより生じさせることなく載置することができ、細胞や培養液が細胞培養治具と培養皿の内底面との隙間から漏れることをより効果的に防止することができる。
　また、一の細胞培養治具の開口を培養液透過フィルムで塞ぐようにして積層し、その上に他の細胞培養治具を重ね合わせることによって、免疫細胞やハイブリドーマ細胞などの浮遊性の細胞や細胞培養治具の底部や壁面への接着性が弱い細胞についても確実に培養（特に高密度で培養）を行うことができる。
本発明に係る細胞培養治具の第一の実施形態を示す模式図である。 図１の細胞培養治具の使用方法を示す模式図である。 図１の細胞培養治具を用いた細胞培養方法を示す模式図である。 図１の細胞培養治具を用いた別の細胞培養方法を示す模式図である。 本発明に係る細胞培養治具の第二の実施形態を示すおよび使用方法を示す模式図である。 本発明に係る細胞培養治具の第三の実施形態および使用方法を示す模式図である。 図６のＢ－Ｂ‘断面図を図１のＡ－Ａ‘断面図と比較した図である。 本発明に係る細胞培養治具の第四の実施形態および使用方法を示す模式図である。 本発明に係る細胞培養治具の第五の実施形態および使用方法を示す模式図である。 図９の細胞培養治具を用いた細胞培養方法を示す模式図である。 本発明に係る細胞培養治具の第六の実施形態および使用方法を示す模式図である。 本発明に係る細胞培養治具の第七の実施形態および使用方法を示す模式図である。 図１の細胞培養治具を用いてヒト乳腺癌上皮細胞（ＭＣＦ７）を培養した後の細胞塊を示す写真である。 図１の細胞培養治具を用いてマウス線維芽細胞（ＮＩＨ／３Ｔ３）を培養した後の細胞塊を示す写真である。 実施例５において、骨芽細胞分化培養液および細胞培養治具を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色したヒト骨髄間葉系幹細胞の状態を示す写真である。 実施例６において、骨芽細胞分化培養液および細胞培養治具を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色したヒト骨髄間葉系幹細胞の状態を示す写真である。 図５の細胞培養治具を用いてヒト肝癌細胞（ＨｅｐＧ２）を培養した後、ギムザ染色したヒト肝癌細胞（ＨｅｐＧ２）の状態を示す写真である。 図８の細胞培養治具を用いてヒト肺癌細胞（Ａ５４９）を培養した後、ギムザ染色したヒト肺癌細胞（Ａ５４９）の状態を示す写真である。 比較例において、骨芽細胞分化培養液を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色したヒト骨髄間葉系幹細胞の状態を示す写真である。 従来の細胞培養方法を示す模式図である。 ザルトリウス社（ドイツ）の治具を示す模式図である。
　本発明の実施形態を図面に基づいて説明する。なお、以下に述べる実施形態は本発明を具体化した一例に過ぎず、本発明の技術的範囲を限定するものでない。図１は本発明に係る細胞培養治具の第一の実施形態を示す模式図であり、図２は図１の細胞培養治具の使用方法を示す模式図である。
（第一の実施形態）
　まず、本発明に係る細胞培養治具１は、可撓性材料を輪状体または枠状体とした構造となっている。そして、本発明に係る細胞培養治具１は、輪状体または枠状体となっていることによって開口２が設けられていることが基本構造となっている。
　なお、図１に示す第一の実施形態は、細胞培養治具１（１ａ）の形状を輪状体とした形態であるがこれに限定されるものではなく、様々な多角枠を採用した枠状体としてもよく、またこのような輪状体や枠状体を複数結合させたものであってもよい。さらに、基本構造の範囲内であれば後記するような様々な実施形態を採用することもできる。
　また、輪状体や枠状体の内側にさらに円筒状体や角筒状体とした細胞培養治具を設けることによって、培養後の細胞塊を輪状（ドーナツ状）の細胞塊（シート）や枠状の細胞塊（シート）として回収することもできる。
　次に、本発明に係る細胞培養治具１は底面３が平滑となっている必要がある。底面が平滑面として形成されていることによって、図２に示すように細胞培養治具１（１ａ）を培養皿４の中に載置した際に細胞培養治具１（１ａ）を培養皿４の内底面との間に隙間を生じさせることなく載置することができる。そしてその結果、細胞や培養液が細胞培養治具１（１ａ）と培養皿４の内底面との隙間から漏れることを防止することができるのである。
　なお、底面を後記する方法などを用いて製造または加工することによって、底面の表面粗さＲａを１μｍ以下とすれば、細胞や培養液が細胞培養治具１と培養皿４の内底面との隙間から漏れることをより効果的に防止することができるので好適である。
　また、底面の表面粗さＲａは、１μｍ以下の中でも１ｎｍ以下であることが好ましく、１ｎｍ以下の中でも０．８３ｎｍ以下であることが好ましく、さらに０．２ｎｍ以下であることが好ましく、さらに０．１８ｎｍ以下であることが好ましい。
　本発明に係る細胞培養治具１の厚み方向の高さ（Ｔ）については、細胞を培養する際に一般的に用いられる培養皿４の高さよりも低くなっている必要がある。このように細胞培養治具１の全体が培養皿４内に収まることによって、後記するように、培養液の交換作業時において迅速、円滑に培養液の交換作業を行うことができるのである。
　なお、具体的な細胞培養治具の厚み方向の高さ（Ｔ）については特に限定されるものではないが、高さがあまりにも低いと培養液を交換する際に、細胞培養治具の内側に存在する細胞５が開口２から細胞培養治具の外側に流出してしまう恐れがある。一方、高さがあまりにも高いと培養液を交換する際に新鮮な培養液が多量に必要となってしまう。
　従って、細胞培養治具の厚み方向の高さ（Ｔ）は０．５～４ｍｍの範囲とすることが好ましく、その中でも１～３ｍｍの範囲とすることが好ましい。
　本発明に係る細胞培養治具１の開口２の大きさについては、特に限定されるものではなく、使用する培養皿や所望する細胞塊の大きさに合わせて適宜決定することができるが、開口２があまりにも大きいと開口２内に細胞５が点在する状態となることから細胞の増殖（proliferation）、分化（differentiation）、成長（growth）などの効率（特に、パラクラインやオートクラインを起こす細胞における増殖、分化、成長などの効率）が低下する恐れがある。一方、開口２があまりにも小さいと取扱いがし辛くなる。
　従って、細胞培養治具の開口は、直径または最長辺の長さを０．５～６０ｍｍの範囲とすることが好ましく、その中でも１～８ｍｍの範囲とすることが好ましい。
（可撓性材料）
　本発明に係る細胞培養治具１の材質としては可撓性材料である必要がある。治具が変形しやすい性質を有していることによって、細胞培養治具１を培養皿４の中に載置した際に細胞培養治具１を培養皿４の内底面との間に隙間を生じさせることなく載置することができるからである。そしてその結果、細胞や培養液が細胞培養治具１と培養皿４の内底面との隙間から漏れることを防止することができるのである。また、前記した底面の平滑性との相乗効果からも細胞や培養液が細胞培養治具１と培養皿４の内底面との隙間から漏れることを防止することができるのである。
　なお、可撓性材料としては、シリコーン樹脂、熱硬化性エラストマー、環状オレフィンコポリマー、熱可塑性エラストマー、環状オレフィンコポリマー、シリコーンゴム、フッ素ゴム、天然ゴム、合成ゴムなどを挙げることができるが、その中でも細胞培養治具１を培養皿４の内底面に隙間なく密着させることができることから、シリコーン樹脂、環状オレフィンコポリマーを用いることが好ましい。さらにその中でも蛍光を発することなく細胞の蛍光染色に影響を与えない点や、疎水性があることによって培養液中のタンパク質などが治具に吸着しにくい点や、分子間力による培養皿４への吸着効果が期待できる点などからシリコーン樹脂を用いることが好ましい。また、必要に応じて、硬化剤や添加剤などの各種の材料を混合することもできる。
（製造方法）
　本発明に係る細胞培養治具の製造方法としては特に限定されないが、例えば、所望する細胞培養治具の厚みとなるように、上記可撓性材料を培養皿などの任意の容器に流し込んで硬化させることによって可撓性材料のシート材を作製した後、係るシート材から所望する開口の輪状体または枠状体の型枠を用いて打ち抜くことによって作製する方法が挙げられる。なお、この製造方法では任意の容器に可撓性材料を流し込んだ際に自由液面となる面は平滑性が極めて高くなる（表面粗さＲａがｎｍレベル）。従って、この面を本発明に係る細胞培養治具の底面とすれば、簡便で精度の高い細胞培養治具を得ることができるので好適である。
　また、ディスペンサーなどを用いて、上記可撓性材料を培養皿の底面に、所望する厚みおよび開口となるように輪状または枠状に形成することによっても製造することができる。
　さらに、細胞培養治具の型を作製し、係る型を用いて可撓性材料を射出成形、押出成形、圧縮成形、注型成形、真空成形などの公知の成形方法によって成形することで製造する方法や予め可撓性材料を所望する開口の大きさを持つ筒状体に成形した後、係る筒状体を所望する厚みに切断することによって製造する方法などを採用することもできる。なお、型を用いて本発明に係る細胞培養治具を製造する場合には、底面の平滑性を実現するためにフォトリソグラフィによって作製したレジストパターンを型として用いることもできる。
　次に、上記のように構成された本発明に係る細胞培養治具の動作およびその作用を第一の実施形態の細胞培養治具を用いた場合を例にして説明する。図２は図１の細胞培養治具の使用方法を示す模式図であり、図３は図１の細胞培養治具を用いた細胞培養方法を示す模式図である。
　まず、図２に示すように、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ａ）を載置する。なおこの際、必要に応じて細胞培養治具１（１ａ）をピンセット等を用いて加圧して培養皿４に密着させてもよい。
　なお、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ａ）を載置した後、細胞培養治具１（１ａ）の内側の底部や壁面をコラーゲンやゼラチンなどの各種細胞外マトリックスで固定（前処理）することも可能である。ここで、本発明の細胞培養治具１（１ａ）は厚み方向の高さが０．５～４ｍｍと従前の冶具よりも低いことから、細胞培養治具１（１ａ）の内側を処理することが容易であり、固定後の風乾時間も短時間で行うことが可能である。
　そしてこのように、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ａ）を載置し、細胞培養治具１（１ａ）の内側をコラーゲンやゼラチンなどで固定した後、細胞培養治具１（１ａ）の内側に培養したい細胞を播種すれば、培養効率を向上させることができる。
　さらに長期培養においても、本発明の細胞培養治具は後記するように培養液の交換を細胞培養治具の外側から行うことから、細胞外マトリックスの損傷や剥離を防止することができる。
　次に、図３（ａ）に示すように、培養したい細胞５を細胞培養治具１（１ａ）の内側に播種し、細胞培養治具１（１ａ）の内側を培養液６で満たし、インキュベーター内で一定時間保持する。そうすると、最初は培養液６の中で浮遊していた細胞５が徐々に沈み、細胞培養治具１（１ａ）の内側の底部や壁面に接着することになる。
　次に、細胞５が細胞培養治具１（１ａ）の底部や壁面に接着した段階で、図３（ｂ）に示すように、細胞培養治具１（１ａ）の内側の上部の培養液６を静かに抜き取る。
　なおこの際、細胞培養治具１（１ａ）の内側の底部や壁面に接着しなかった細胞がある場合は、細胞培養治具１（１ａ）の内側の上部の培養液６とともにこれらの細胞も合わせて抜き取って廃棄する。
　また、細胞培養治具１（１ａ）の底部や壁面に接着していても接着が弱い細胞がある場合には、細胞培養治具１（１ａ）の内側の上部の培養液６を静かに抜き取った後に、再度、細胞培養治具１（１ａ）の内側に培養液６を静かに供給して満たし、その後細胞培養治具１（１ａ）の内側の上部の培養液６を静かに抜き取る作業を行うことで、細胞培養治具１（１ａ）の底部や壁面に十分に接着した細胞５のみを細胞培養治具１（１ａ）の内側に残すことができる。
　次に、図３（ｃ）に示すように、細胞培養治具１（１ａ）の全体が浸漬するように培養皿４の中を培養液６で満たし、インキュベーター内で保持することによって培養を開始する。
　なおこの際、細胞培養治具１（１ａ）の外側から培養液６を供給することで培養皿４の中を培養液６で満たしても良いが、最初に細胞培養治具１（１ａ）の内側に培養液６を静かに供給して細胞培養治具１（１ａ）の内側を培養液６で満たした後に細胞培養治具１（１ａ）の外側から培養液６を供給するようにすると、細胞培養治具１（１ａ）の外側に存在する培養液６と細胞培養治具１（１ａ）の内側に存在する培養液６とが繋がる際に発生する乱流を抑制することができ、その結果、細胞５に刺激を与えずに培養皿４の中を培養液６で満たすことができるので好適である。
　次に、培養液の交換時期が来た際には、細胞培養治具１（１ａ）の外側の培養液６をピペット（図示せず）等で抜き取ることによって古い培養液を廃棄する。そうすると図３（ｄ）に示すように、細胞５が入っている細胞培養治具１（１ａ）の内側の培養液６ａはそのままの状態となり、細胞５に刺激を与えることなく、大部分の古い培養液を廃棄することができる。
　次に、図３（ｅ）に示すように、細胞培養治具１（１ａ）の外側から新鮮な培養液６ｂを供給して培養皿４の中を培養液６で満たす。そうすると、細胞培養治具１（１ａ）の高さを越える量の培養液６が供給されることから、細胞培養治具１（１ａ）の内側と外側の培養液６が徐々に混じり合い、培養液が拡散することによって培養液６の交換がゆっくりと行われることになる。
　その結果、本発明に係る細胞培養治具１（１ａ）を用いた場合には、培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができるのである。
　また、細胞に刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができ、培養における細胞の生存率を向上させることもできるのである。
　次に、図３（ｄ）、（ｅ）の作業を繰り返すことによって、細胞５は細胞培養治具１（１ａ）内において増殖（proliferation）、分化（differentiation）、成長（growth）などをすることになる。そうすると図３（ｆ）に示すように、増殖、分化、成長などした細胞５は細胞培養治具１（１ａ）内において重なっていくことになる。そして、係る作業を繰り返した後、図３（ｇ）、（ｈ）に示すように培養液６および細胞培養治具１（１ａ）を除去すれば、重層化した状態の細胞を細胞塊（シート状）７として取り出すことができることになる。
　従って、本発明に係る細胞培養治具を用いた場合には、極めて簡単に増殖、分化、成長などした細胞の重層化を行うこともできるのである。
　ここで、細胞を重層化すること自体は従前においても行われているが、従前においては培養した細胞を遠心管に入れて遠心処理を繰り返すことによって細胞を重ねていく方法が一般的である。また、近年は複数のポンプやバルブを制御することによって培養した細胞を培養皿内に重ねていく方法も提案されている。
　しかし、これら従前の重層化方法はいずれも手間の係る処理や複雑な制御が必要となるものとなっている。また重層化した細胞を培養皿に設置するときに外周の細胞が細胞塊から剥がれて、培養液の乱流で離れてばらばらになることが起こりえる。
　一方、本発明に係る細胞培養治具を用いた培養方法であれば、このような複雑な設備を用いることなく極めて簡単に細胞の重層化を行うことができるのである。さらに細胞がばらばらに離れる危険性を極端に低く抑えることができる。
　また、このように重層化した細胞は、図２０に示すような従前の培養方法によって得られる単一の細胞ではなく立体的な細胞組織となっていることから、実際に体内に存在する状態に近似するものとして有用なものとなる。具体的には、軟骨前駆細胞や脂肪前駆細胞などは立体的な重層化した細胞凝集体となることにより、分化誘導が促進されて成熟した軟骨細胞や脂肪細胞になることが知られている。本発明に係る細胞培養治具を用いて重層化した軟骨前駆細胞や脂肪前駆細胞など作製すれば、従来以上に簡便に短期間に分化成熟した細胞凝集体を得ることができる。
　また、癌細胞を例に挙げると、創薬の分野において従前では研究開発中の医薬品（例えば抗癌剤）が一つ一つの癌細胞に対してどのような効果を示すかしか評価することしかできなかった。
　一方、本発明に係る細胞培養治具を用いて重層化した癌細胞を作製すれば、研究開発中の医薬品（例えば抗癌剤）が一つ一つの癌細胞に対してどのような効果を示すのかを評価できるだけでなく、癌細胞の内部にまで効果を示すか、すなわち体内においてどの程度の効果を示すかについてまで評価することができるようになるのである。
　次に、本発明に係る細胞培養治具の別の動作およびその作用を第一の実施形態の細胞培養治具を用いた場合を例にして説明する。図４は図１の細胞培養治具を用いた別の細胞培養方法を示す模式図である。
　係る細胞培養方法においては、図４（ａ）に示すように培養皿４内に載置した細胞培養治具１（１ａ）の内側に任意の細胞５ａを播種し、細胞培養治具１（１ａ）の外側には任意の細胞とは異なる別の細胞５ｂを播種する。そして、培養皿４内を培養液６で満たして培養を開始する。
　そうすると、それぞれの細胞から分泌される分泌物が培養液によって拡散することになり、細胞５ａからの分泌物が細胞５ｂにどのような影響を与えるか、あるいは細胞５ｂからの分泌物が細胞５ａにどのような影響を与えるかを評価することができるのである。特に、パラクラインやオートクラインなどを起こす細胞については、簡便にその影響を評価することができるので好適である。
　また、図４（ｂ）、（ｃ）に示すように、培養液６を少しずつ交換することによって、細胞からの分泌物が他の細胞にどのような影響を与えるかをより継続的に評価することができる。
（第二の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第二の実施形態を説明する。図５は本発明に係る細胞培養治具の第二の実施形態および使用方法を示す模式図である。
　第二の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｂ）は、図５（ａ）に示すように、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）の上面に少なくとも１箇所の溝部８を設けた構造としたものである。
　次に、上記のように構成された第二の実施形態に係る細胞培養治具の動作およびその作用を説明する。
　まず、図５（ｂ）に示すように、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ｂ）を載置する。なおこの際、第一の実施形態の細胞培養治具１（１ａ）における動作と同様に、細胞培養治具１（１ｂ）の内側の底部や壁面をコラーゲンやゼラチンなどの各種細胞外マトリックスで固定（前処理）することも可能である。
　次に、図３（ａ）、（ｂ）に示す、第一の実施形態に係る細胞培養治具を用いる場合と同様の作業を行うことによって、培養したい細胞５を細胞培養治具１（１ｂ）の内側に播種するとともに、細胞５を細胞培養治具１（１ｂ）内側の底部や壁面に接着させる。
　次に、図３（ｃ）に示すような培養皿４の中が培養液６で満たされる状態とすべく、細胞培養治具１（１ｂ）の外側から培養液６の供給を開始する。そうすると、細胞培養治具１（１ｂ）の外側において培養液６の液面が上昇していくことになる。そして、培養液６の液面が細胞培養治具１（１ｂ）の高さ（Ｔ）以上となった際には、細胞培養治具１（１ｂ）の外側の培養液６は、溝部８を通じて細胞培養治具１（１ｂ）の内側に少しずつ流れ込むことになる。そして、徐々に細胞培養治具１（１ｂ）の外側から流れ込む培養液６の量が多くなると、細胞培養治具１（１ｂ）の外側に存在する培養液６と細胞培養治具１（１ｂ）の内側に存在する培養液６とが繋がり、さらに細胞培養治具１（１ｂ）の外側に供給される培養液６の量が多くなると、図３（ｃ）に示すような培養皿４の中が培養液６で満たされる状態となる。
　従って、第二の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｂ）においては、培養液の供給や交換の際、細胞培養治具１（１ｂ）の外側に存在する培養液６と細胞培養治具１（１ｂ）の内側に存在する培養液６とをスムースに接触させることができる。そしてその結果、培養液６が繋がる際に発生する乱流を抑制することができ、さらに細胞培養治具１（１ｂ）の内側において培養している細胞が細胞培養治具１（１ｂ）の外側に流出してしまう事態を防止することができるのである。
　そしてその後、上記の手法によって図３（ｄ）、（ｅ）に示す培養液６の交換作業を行い、最後に図３（ｇ）、（ｈ）に示すようにして培養した細胞を細胞塊（シート状）７として回収することになる。
　なお、図５に示す形態は溝部８を４箇所設けたものであるが、溝部の数はこれに限定されるものではなく必要に応じて適宜決定することができる。また、溝部８の形状についても特に限定されるものではなく、断面がＵ字状、Ｖ字状、凹状など各種の形状や各種の形状の組合せを採用することができる。
（第三の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第三の実施形態を説明する。図６は本発明に係る細胞培養治具の第三の実施形態および使用方法を示す模式図であり、図７は図６のＢ－Ｂ‘断面図（図７（ａ））を図１のＡ－Ａ‘断面図（図７（ｂ））と比較した図である。
　第三の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｃ）は、図６（ａ）に示すように、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）の内壁部分を底面から上面に向かって次第に拡がるように傾斜させた内壁９としたものである。
　次に、上記のように構成された第三の実施形態に係る細胞培養治具の動作およびその作用を説明する。
　まず、図６（ｂ）に示すように、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ｃ）を載置する。なおこの際、第一の実施形態の細胞培養治具１（１ａ）における動作と同様に、細胞培養治具１（１ｃ）の内側の底部や壁面をコラーゲンやゼラチンなどの各種細胞外マトリックスで固定（前処理）することも可能である。
　次に、図３（ａ）、（ｂ）に示す、第一の実施形態に係る細胞培養治具を用いる場合と同様の作業を行うことによって、培養したい細胞５を細胞培養治具１（１ｃ）の内側に播種するとともに、細胞５を細胞培養治具１（１ｃ）内側の底部や壁面に接着させる。
　次に、図３（ｃ）に示すような培養皿４の中が培養液６で満たされる状態とすべく、細胞培養治具１（１ｃ）の外側から培養液６を供給する作業を行うことになる。
　ここで、第三の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｃ）においては、細胞培養治具１（１ｃ）の内側が培養液６で満たされて第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）と同じ表面張力（接触角（Θ））を受ける状態となった場合でも、図７（ａ）に示すように、内壁９の傾斜があることから、細胞培養治具１（１ｃ）の内側における培養液６の液面の盛り上がりを小さくすることができる。その結果、培養液６を細胞培養治具１（１ｃ）の外側から供給した場合でも、細胞培養治具１（１ｃ）の外側に存在する培養液６と、細胞培養治具１（１ｃ）の内側に存在する培養液６とが一気に繋がる現象を防止することができ、培養液６が繋がる際の乱流の発生を抑制することができることになる。そしてその結果、培養液の供給や交換の際に細胞培養治具１（１ｃ）の内側で培養している細胞が細胞培養治具１（１ｃ）の外側に流出してしまう現象を防止することができるのである。
　一方、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）においては、図７（ｂ）に示すように、細胞培養治具１（１ａ）の内側における培養液６の液面が接触角（Θ）によって大きく盛り上がることになってしまう。そして、このような状態で培養液６を細胞培養治具１（１ａ）の外側から供給してしまうと、細胞培養治具１（１ａ）の外側に存在する培養液６と細胞培養治具１（１ａ）の内側に存在する培養液６とが一気に繋がってしまうことから、培養液６が繋がる際に乱流が発生してしまうことになる。そしてその結果、係る乱流によって細胞培養治具１（１ａ）の内側で培養している細胞が細胞培養治具１（１ａ）の外側に流出してしまう恐れが生じることになるのである。
　その後、上記の手法によって図３（ｄ）、（ｅ）に示す培養液６の交換作業を行い、最後に図３（ｇ）、（ｈ）に示すようにして培養した細胞を細胞塊（シート状）７として回収することになる。
　なお、内壁９の傾斜度合や傾斜面の形状は特に限定されるものではなく必要に応じて適宜決定することができる。
（第四の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第四の実施形態を説明する。図８は本発明に係る細胞培養治具の第四の実施形態および使用方法を示す模式図である。
　第四の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｄ）は、図８（ａ）に示すように、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）の内周に、内周の一部を外周側に窪ませて形成した培養液交換部１０を１箇所設けた構造としたものである。
　次に、上記のように構成された第四の実施形態に係る細胞培養治具の動作およびその作用を説明する。
　まず、図８（ｂ）に示すように、培養皿４の中に細胞培養治具１（１ｄ）を載置する。なおこの際、第一の実施形態の細胞培養治具１（１ａ）における動作と同様に、細胞培養治具１（１ｄ）の内側の底部や壁面をコラーゲンやゼラチンなどの各種細胞外マトリックスで固定（前処理）することも可能である。
　次に、図３（ａ）、（ｂ）に示すように、培養したい細胞５を細胞培養治具１（１ｄ）の内側に播種し、さらに細胞５を細胞培養治具１（１ｄ）内側の底部や壁面に接着させる作業を行うことになるが、本実施形態においてはピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れることによって、培養液６の供給または交換作業を行うことになる。
　具体的にはまず、空のピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れて、細胞培養治具１（１ｄ）の内側の培養液を静かに吸引した後、静かにピペットの先端を培養液交換部１０から抜き取ることによって細胞培養治具１（１ｄ）の内側の古い培養液を廃棄する。
　次に、ピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れることによって、新しい培養液を細胞培養治具１（１ｄ）の内側に、無用な乱流が発生しないように注意しながらゆっくりと供給する。
　次に、第四の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｄ）においては、培養液６の交換作業（第一の実施形態に係る細胞培養治具を用いる場合における図３（ｃ）～（ｅ）に相当する作業）を行う際にも、ピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れることによって細胞培養治具１（１ｄ）の内側の培養液６の交換作業を行った後、細胞培養治具１の外側（１ｄ）から培養液６を供給して細胞培養治具１（１ｄ）の全体が浸漬するように培養皿４の中を培養液６で満たすことで培養液の交換作業を完了する。
　従って第四の実施形態においては、培養液６の供給や交換の際に発生する培養液６の乱流が常に培養液交換部１０の近傍という決まった場所において発生することになるため、細胞培養治具１（１ｄ）の内側で、かつ培養液交換部１０の近傍以外の部分に培養されている多くの細胞は培養液６の乱流による影響をほとんど受けずに増殖、分化、成長などをすることができることになる。また、供給された培養液６は、培養液交換部１０の内壁に衝突した後、すなわち培養液交換部１０の内壁によって乱流が軽減された後に細胞培養治具１（１ｄ）の内側に拡散していくことから、この点においても細胞培養治具１（１ｄ）の内側で、かつ培養液交換部１０の近傍以外の部分に培養されている多くの細胞は、培養液６の乱流による影響をほとんど受けずに増殖、分化、成長などをすることができることになる。
　また、培養液６の交換作業は細胞が細胞培養治具１（１ｄ）内側の底部や壁面に接着した状態で行うものであることから、仮に培養液６の乱流が発生した場合でも培養液交換部１０の近傍という決まった場所においてのみ細胞の剥離、流出が発生することになり、細胞の損失を最小限に止めることができるのである。
　なお、第四の実施形態に係る細胞培養治具においては、培養液の交換作業の際に、細胞培養治具１（１ｄ）の内側に存在する古くなった培養液の大部分を廃棄することができることから、細胞培養治具の内側上部の培養液のみを廃棄する第一～第三の実施形態に係る細胞培養治具（１ａ）～（１ｃ）に比べて、多くの新鮮な培養液を細胞に供給することができ、培養効率を向上させることができることになるのである。
　そして最後に、図３（ｇ）、（ｈ）に示すようにして、培養した細胞を細胞塊（シート状）７として回収することになる。
　また、第四の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｄ）においては、培養液６の供給または交換作業を行う際、細胞培養治具１（１ｄ）の内側のみで培養液６の供給または交換作業を完了することもできる。
　具体的には、空のピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れて静かにピペット内に細胞培養治具１（１ｄ）内側の培養液６を吸引した後、静かにピペットの先端を培養液交換部１０から抜き取ることによって培養液６の廃棄を行う作業と、ピペットの先端を培養液交換部１０に差し入れることによって新しい培養液を細胞培養治具１（１ｄ）の内側に供給する作業を繰り返せば、細胞培養治具１（１ｄ）の内側のみで培養液６の供給または交換作業を完了することができる。
　その結果、細胞培養治具１（１ｄ）の外側から培養液６を供給することなく培養液の供給や交換作業を行うことができ、培養液の消費量を削減することができる。
　なお、図８に示す形態は培養液交換部１０がＵ字状になっているものであるが、培養液交換部の形状はこれに限定されるものではなく、Ｖ字状、凹状など各種の形状や各種の形状の組合せを採用することができる。
（第五の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第五の実施形態を説明する。なお、本実施形態は免疫細胞やハイブリドーマ細胞などの浮遊性の細胞や細胞培養治具の底部や壁面への接着性が弱い細胞を培養する際に好適な実施形態である。図９は本発明に係る細胞培養治具の第五の実施形態および使用方法を示す模式図である。
　第五の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｅ）は、図９（ａ）～（ｃ）に示すように、本発明の細胞培養治具１（１ａ）～１（１ｄ）を２つと、培養液透過フィルム１１を用い、培養液透過フィルム１１を一の細胞培養治具の上面側の開口を塞ぐように配置した後、さらにその上に他の細胞培養治具を重ね合わせた構成としたものである。
　なお、図９（ａ）～（ｃ）に示した細胞培養治具１（１ｅ）は、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）を２つと、培養液透過フィルム１１を用いて構成したものであるが、本実施形態はこれに限定されるものではなく、必要に応じて細胞培養治具１（１ａ）～１（１ｄ）から任意に選択した２つの細胞培養治具１を組み合せて用いることができる。
　また、本実施形態において使用される培養液透過フィルム１１は多孔質性のフィルムであり、例えば、酢酸セルロースやＰＶＤＦ（ポリフッ化ビニリデン）などで作製されたメンブレンフィルターなどを用いることができる。なお、培養液透過フィルム１１の孔径は、培養液は通過するが培養対象とする細胞は通過しない範囲の中で適宜選択されることになる。
　次に、上記のように構成された第五の実施形態に係る細胞培養治具の動作およびその作用を説明する。図１０は図９の細胞培養治具を用いた細胞培養方法を示す模式図である。
　まず、下段の細胞培養治具となる、一の細胞培養治具１（１ａ）を培養皿４の中に載置する。
　次に、図１０（ａ）に示すように、培養したい細胞５（本実施形態においては浮遊性の細胞）を細胞培養治具１（１ａ）の内側に播種する。
　なおこの際、第一の実施形態の細胞培養治具１（１ａ）における動作と同様に、下段の細胞培養治具１（１ａ）の内側の底部や壁面をコラーゲンやゼラチンなどの各種細胞外マトリックスで固定（前処理）することも可能である。
　次に、メタノール、エタノール、生理食塩濃度を含むりん酸緩衝液（ｐＨ７.４）の順に十分に浸漬することによって前処理した培養液透過フィルム１１を用意し、図１０（ｂ）に示すように、係る培養液透過フィルム１１を下段の細胞培養治具１（１ａ）の上面側の開口を塞ぐように配置した後、その上に、上段の細胞培養治具となる、別の細胞培養治具１（１ａ）を重ね合わせて、細胞培養治具１（１ｅ）を形成する。
　次に、図１０（ｃ）に示すように、細胞培養治具１（１ｅ）の全体が浸漬するように培養皿４の中を培養液６で満たし、インキュベーター内で保持することによって培養を開始する。
　次に、培養液の交換時期が来た際には、細胞培養治具１（１ｅ）の外側の培養液６をピペット（図示せず）等で抜き取ることによって古い培養液を廃棄する。そうすると図１０（ｄ）に示すように、細胞５が入っている下段の細胞培養治具１（１ａ）の内側の培養液６ａはそのままの状態となる。従って、細胞５に刺激を与えることなく、また浮遊性の細胞の流出を防止しながら大部分の古い培養液のみを廃棄することができる。
　次に、細胞培養治具１（１ｅ）の外側から新鮮な培養液６ｂを供給して培養皿４の中を培養液６で満たす。そうすると、図１０（ｅ）に示すように、上段の細胞培養治具１（１ａ）の高さを越える量の培養液６ｂが供給されることから、細胞培養治具１（１ｅ）の高さを越えて上段の細胞培養治具１（１ａ）の内側に供給された培養液６ｂは、培養液透過フィルム１１を通過して、下段の細胞培養治具１（１ａ）の内側に供給されることになり、下段の細胞培養治具１（１ａ）の内側において培養液６が徐々に混じり合い、培養液６が拡散することによって培養液６の交換が行われることになる。
　その結果、第五の実施形態の細胞培養治具１（１ｅ）を用いた場合には、浮遊性の細胞や細胞培養治具の底部や壁面への接着性が弱い細胞であっても、培養液の交換作業時において、細胞を誤って喪失してしまうことなく迅速に培養液の交換作業を行うことができるのである。
　また、細胞に刺激を与えることなく円滑に培養液の交換作業を行うことができ、培養における細胞の生存率を向上させることもできるのである。
　次に、図１０（ｄ）、（ｅ）の作業を繰り返すことによって、細胞５は図１０（ｆ）に示すように下段の細胞培養治具１（１ａ）内において増殖、分化、成長などをすることになる。
　次に、係る作業を繰り返した後、図１０（ｇ）に示すように、培養液６を液面の高さが下段の細胞培養治具１（１ａ）の高さより低くなる位置まで、細胞培養治具１（１ｅ）の外側から抜き取った後、上段の細胞培養治具１（１ａ）と培養液透過フィルム１１を除去する。
　最後に、下段の細胞培養治具１（１ａ）の内側に存在する培養した細胞５を含む培養液６をピペットによって吸引することによって、培養した細胞５を回収する。
　従って、本実施形態の細胞培養治具を用いた場合には、浮遊性の細胞であっても細胞を誤って喪失してしまうことなく、細胞の培養を行うことができるのである。また、従前の浮遊性の細胞の培養においては培養液の交換のために細胞と培養液とを遠心分離することが行われているが、本実施形態の細胞培養治具を用いた場合には、このような遠心分離の工程を経ることなく簡単に細胞の培養を行うことができるのである。
　また、もう一つの利点として、ハイブリドーマ細胞などの細胞が分泌する抗体などの有用成分を回収するには、細胞培養治具１（１ｅ）の外側の培養液６をピペット（図示せず）で回収すればよい。そうすると、ハイブリドーマ細胞と培養液の遠心分離の作業を経ることなく効率よく培養液中の抗体などの有用成分を得ることができる。
　以上から、本実施形態の細胞培養治具を用いた場合には、浮遊性の細胞であっても細胞を誤って喪失してしまうことなく、簡単に細胞の培養を行うことができ、さらに細胞が分泌する抗体などの有用成分についても簡単に回収を行うことができるのである。
（第六の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第六の実施形態を説明する。図１１は本発明に係る細胞培養治具の第六の実施形態および使用方法を示す模式図である。
　第六の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｈ）は、図１１（ａ）、（ｂ）に示すように、２つの細胞培養治具１（１ａ）～１（１ｄ）にそれぞれ嵌合部材１１を設けた以外は、第五の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｅ）と同じ構成としたものである。
　なお、図１１（ａ）、（ｂ）においては、下段の細胞培養治具１に凸型の嵌合部材１１を設け、上段の細胞培養治具１には凹型の嵌合部材（図示せず）を設けた形態となっているが、これに限定されるものではなく、凸型と凹型の嵌合部材を逆の細胞培養治具に設けることもでき、また嵌合構造についても各種の構造のものを採用することができる。
　次に、上記のように構成された第六の実施形態に係る細胞培養治具の動作については、第五の実施形態と同様であることから省略するが、本実施形態の作用としては、２つの細胞培養治具が嵌合構造によって連結していることから、培養液の交換の際においても上方の細胞培養治具が動いたりずれたりすることを防止することができ、その結果培養液の交換作業をより確実に行うことができることになる。
（第七の実施形態）
　次に、本発明に係る細胞培養治具の第七の実施形態を説明する。図１２は本発明に係る細胞培養治具の第七の実施形態および使用方法を示す模式図である。
　第七の実施形態に係る細胞培養治具１（１ｉ）は、図１２（ａ）、（ｂ）に示すように、第一の実施形態に係る細胞培養治具１（１ａ）を端部を残して輪切り状に切り込みを入れた後、係る切れ込みに培養液透過フィルム１１を挟み込んだ構成としたものである。
　次に、上記のように構成された第七の実施形態に係る細胞培養治具の動作およびその作用を説明する。
　まず、培養皿４の中に輪切り状に切り込みを入れた細胞培養治具１（１ａ）を載置する。
　次に、細胞培養治具１（１ａ）の上方部分を捲って、培養したい細胞５（本実施形態においては浮遊性の細胞）を細胞培養治具１（１ａ）の下方部分の内側に播種する。そして、メタノール、エタノール、生理食塩濃度を含むりん酸緩衝液（ｐＨ７.４）の順に十分に浸漬することによって前処理した培養液透過フィルム１１を細胞培養治具１（１ａ）の切れ込みに挟み込んだ後、細胞培養治具１（１ａ）の上方部分を元に戻す（細胞培養治具１（１ａ）の上方部分で培養液透過フィルム１１を押える）ことによって、図１２（ｃ）に示すように細胞培養治具１（１ｉ）を培養皿４の中に載置する。そして、その後は第五の実施形態と同様の動作を行うことによって、培養液の交換を行う。
　次に、培養液６の交換作業を繰り返した後、培養液６を液面の高さが細胞培養治具１（１ａ）の下方部分の高さより低くなる位置まで、細胞培養治具１（１ｉ）の外側から抜き取る。
　最後に、細胞培養治具１（１ａ）の上方部分を捲って培養液透過フィルム１１を除去した後、細胞培養治具１（１ａ）の下方部分の内側に存在する培養した細胞５を含む培養液６をピペットによって吸引することによって、培養した細胞５を回収する。
　従って、本実施形態の細胞培養治具を用いた場合においても、浮遊性の細胞を誤って喪失してしまうことなく、簡単に細胞の培養を行うことができ、さらに細胞が分泌する抗体などの有用成分についても簡単に回収を行うことができることになる。
　次に、本発明に係る細胞培養治具および細胞培養方法を実施例および比較例に基づいて詳しく説明する。なお、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
（実施例１）
　まず、主剤と硬化触媒を重量比で１０：１となるように混合した東レダウコーニング社製のシリコーン樹脂（Ｓｙｌｇａｒｄ１８４）を脱気した。そして、このシリコーン樹脂を直径１５０ｍｍの培養皿に厚さが２ｍｍとなるように流し込み、６０℃で２時間放置して硬化させた。
　次に、硬化したシリコーン樹脂を外径８ｍｍ、内径４ｍｍの輪状体の型枠で打ち抜くことによって実施例１の細胞培養治具（第一の実施形態に相当する細胞培養治具）を作製した。なお、実施例１の細胞培養治具の底面（硬化時に自由液面となっていた面）の表面粗さＲａは０．８３ｎｍであった。
（実施例２）
　シリコーン樹脂を硬化させる際に真空雰囲気とした以外は実施例１と同様にして実施例２の細胞培養治具（第一の実施形態に相当する細胞培養治具）を作製した。なお、実施例２の細胞培養治具の底面（硬化時に自由液面となっていた面）の表面粗さＲａは０．１８ｎｍであった。
（実施例３）
　次に、実施例１の細胞培養治具を図２に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、ヒト乳腺癌上皮細胞（ＭＣＦ７）を、培養液である１０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培養液で懸濁させ、係る懸濁液を細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに６０分間静置した後、細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄した。
　次に、再度、細胞培養治具の内側に新しい培養液をピペットで０．３ｍｌ静かに供給し、その後細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄することで細胞培養治具１の内側の底部や壁面に十分に接着した細胞のみを残した。
　次に、細胞培養治具の内側に培養液をピペットで０．３ｍｌ静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで１．７ｍｌ静かに供給することによって細胞皿を培養液で満たした。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　次に、４日後に細胞培養治具の外側の培養液をピペットで静かに抜き取り、細胞培養治具の外側から新鮮な培養液をピペットで１．７ｍｌ静かに供給することで培養液の交換を行い、再度ＣＯ２インキュベーターにおいて３日間培養した。なおこの際も、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。
　培養の結果、培養開始７日後にＭＣＦ７は細胞培養治具の内側で増殖していることが確認された。また、細胞培養治具の内側の底部や壁面に接着（生存）できずに浮いてしまった細胞は認められなかった。さらに、培養液および細胞培養治具を除去した後のＭＣＦ７は、図１３に示すようにシート状の塊となっており、重層化していることが確認された。
　従って、本発明に係る細胞培養治具を用いれば、簡単な構造でありながら細胞培養の際に不可欠となる培養液の交換作業時において細胞を誤って喪失してしたり細胞に刺激を与えてしまったりすることなく、迅速、円滑に培養液の交換作業を行うことができることがわかった。
　また、細胞を死滅させることなく長期間培養でき、重層化した細胞を簡単に作製することができることがわかった。
　また、実施例１の細胞培養治具はシリコーン樹脂を用いていることから、培養液中のタンパク質などが治具に吸着しにくく、培養の効率が低下しないことがわかった。
　さらに、実施例１の細胞培養治具は無蛍光なので、細胞の蛍光染色に影響を与えないこともわかった。
（実施例４）
　実施例２の細胞培養治具を用い、細胞にマウス線維芽細胞（ＮＩＨ／３Ｔ３）を、培養液に１０％仔ウシ血清を含むＤＭＥＭ培養液を用いた以外は実施例３と同様の作業行った。
　その結果、ＮＩＨ／３Ｔ３についても細胞培養治具の内側で増殖していることが確認され、細胞培養治具の内側の底部や壁面に接着（生存）できずに浮いてしまった細胞は見られなかった。また、培養液および細胞培養治具を除去した後のＮＩＨ／３Ｔ３は、図１４に示すように重層化していることが確認された。
（実施例５）
　実施例１の細胞培養治具を用い、図２に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、ヒト骨髄間葉系幹細胞を間葉系幹細胞増殖培養液（ロンザジャパン株式会社製、ＭＳＣＧＭ、ＢｕｌｌｅｔＫｉｔ ＰＴ－３００１）で懸濁させ、係る懸濁液を細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに６０分間静置した後、細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄した。次に、再度、細胞培養治具の内側に新しい培養液をピペットで０．３ｍｌ静かに供給して、その後細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄することで細胞培養治具１の内側の底部や壁面に十分に接着した細胞のみを残した。
　次に、細胞培養治具の内側に培養液をピペットで０．３ｍｌ静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで１．７ｍｌ静かに供給した。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　翌日、細胞培養治具の外側の培養液をピペットで静かに抜き取り、細胞培養治具の外側から骨芽細胞分化培養液（ロンザジャパン株式会社製、ＢｕｌｌｅｔＫｉｔ ＰＴ－３００２）をピペットで１．７ｍｌ静かに供給することで培養液の交換を行い、再度ＣＯ２インキュベーターにおいて分化誘導培養した。なおこの際も、細胞培養治具は骨芽細胞分化培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある骨芽細胞分化培養液でつながっていることを確認した。
　以降、６日に１回の間隔で骨芽細胞分化培養液を交換しながらＣＯ２インキュベーターにおいて１５日間培養した。
　培養後、ヒト骨髄間葉系幹細胞の分化状態（石灰化）を確認するために、骨芽細胞分化培養液および細胞培養治具を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色を行った。染色後のヒト骨髄間葉系幹細胞の写真を図１５に示す。
　その結果、図１５に示すとおり、細胞培養治具の内側であった部分が染色（石灰化）されたことから、培養したヒト骨髄間葉系幹細胞が骨芽細胞へ分化誘導されていることが確認できた。
（実施例６）
　実施例１の細胞培養治具を用い、図２に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた後、細胞培養治具の内側をコラーゲンで処理（コラーゲンを固定）した以外は、実施例５と同様にしてヒト骨髄間葉系幹細胞の培養を行った。
　培養後、ヒト骨髄間葉系幹細胞の分化状態（石灰化）を確認するために、骨芽細胞分化培養液および細胞培養治具を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色を行った。染色後のヒト骨髄間葉系幹細胞の写真を図１６に示す。
　その結果、図１６に示すとおり、図１５に比べて著しい染色（石灰化）が認められた。従って、細胞培養治具の内側をコラーゲン（各種細胞外マトリックス）で固定（前処理）した場合には、コラーゲンが剥離することなく細胞の分化誘導が行われ、その結果、分化誘導をより促進することが可能であることが確認できた。
（実施例７）
　まず、実施例１の細胞培養治具を作製し、係る細胞培養治具の上面に断面視Ｕ字状の溝部を４箇所、切削加工することによって、図５（ａ）に示す、実施例７に使用する細胞培養治具（第二の実施形態に相当する細胞培養治具）を作製した。
　次に、作製した細胞培養治具を図５（ｂ）に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、ヒト肝癌細胞（ＨｅｐＧ２）を、培養液である１０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培養液で懸濁させ、係る懸濁液を細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに２４０分間静置した後、細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄した。
　次に、再度、細胞培養治具の内側に新しい培養液をピペットで０．２ｍｌ静かに供給し、その後細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄することで細胞培養治具１の内側の底部や壁面に接着した細胞のみを残した。
　次に、細胞培養治具の内側に培養液をピペットで０．２ｍｌ静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給することによって細胞皿を培養液で満たした。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　そして培養開始４日後、ギムザ染色を行うことによってＨｅｐ　Ｇ２の生存、増殖状態の評価を行った。ギムザ染色を行い、細胞培養治具を除去した状態の写真を図１７に示す。なお、細胞培養治具の内側の底部や壁面に接着（生存）できずに浮いてしまった細胞は見られなかった。
　その結果、図１７に示すとおり、細胞培養治具の内側であった部分が染色されたことからＨｅｐ　Ｇ２が生存、増殖していることが確認できた。
　従って、第二の実施形態に係る細胞培養治具を用いれば、溝部を通じて培養液の供給や交換を行うことができ、細胞に刺激を与えてしまったりすることなく、迅速、円滑に培養液の交換作業を行うことができることが確認できた。またその結果、細胞培養治具の内側において培養している細胞を培養液の供給や交換の際に喪失してしまう事態を防止できることが確認できた。
　さらに、ギムザ染色を行う際においても、固定液、染色液、洗浄液などを細胞培養治具の上面に設けた溝部を通じて供給、吸引することができるため、細胞（標本）の損傷を最小限に抑えることができることも確認することができた。
（実施例８）
　まず、実施例１の細胞培養治具を作製し、係る細胞培養治具の内周に、内周の一部をＵ字状に外周側に窪ませて形成した培養液交換部を１箇所設けることによって、図８（ａ）に示す、実施例８に使用する細胞培養治具（第四の実施形態に相当する細胞培養治具）を作製した。
　次に、作製した細胞培養治具を図８（ｂ）に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、ヒト肺癌細胞（Ａ５４９）を、培養液である１０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培養液で懸濁させ、係る懸濁液を細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに６０分間静置した後、ピペットの先端を培養液交換部の液面に差し入れて静かに吸引することによって、細胞培養治具の内側の上部の培養液を抜き取って廃棄した。
　次に、ピペットの先端を培養液交換部に差し入れて、再度細胞培養治具の内側に新しい培養液を０．２ｍｌ静かに供給し、その後細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄することで細胞培養治具１の内側の底部や壁面に接着した細胞のみを残した。
　次に、ピペットの先端を培養液交換部に差し入れて細胞培養治具の内側に培養液を０．２ｍｌを静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給することによって細胞皿を培養液で満たした。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　培養開始２日後、ギムザ染色を行うことによってＡ５４９の生存、増殖状態の評価を行った。ギムザ染色を行い、細胞培養治具を除去した状態の写真を図１８に示す。なお、細胞培養治具の内側の底部や壁面に接着（生存）できずに浮いてしまった細胞は認められなかった。
　その結果、図１８に示すとおり、細胞培養治具の内側であった部分が染色されたことからＡ５４９が生存、増殖していることが確認できた。なお、図１８の写真においては、培養液交換部の染色度合１３が薄くなっていることから、係る部分においては培養液の交換作業の際に乱流が発生し、細胞の喪失が起こっているがその他の部分においては良好な培養が行われていることが確認できた。
　従って、第四の実施形態に係る細胞培養治具を用いれば、培養液交換部を通じて培養液の供給や交換を行うことができ、多くの細胞に刺激を与えてしまったりすることなく、迅速、円滑に培養液の交換作業を行うことができることが確認できた。またその結果、細胞培養治具の内側において培養している細胞を培養液の供給や交換の際に喪失してしまう事態を防止できることが確認できた。
　さらに、ギムザ染色を行う際においても、固定液、染色液、洗浄液などを培養液交換部を通じて供給、吸引することができるため、細胞（標本）の損傷を最小限に抑えることも確認することができた。
（実施例９）
　実施例１の細胞培養治具を用い、図２に示すように内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、ＳＶ４０ ｌａｒｇｅ Ｔ　ａｎｔｉｇｅｎを発現しているヒト胎児腎細胞（２９３Ｔ）を、培養液である１０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培養液で懸濁させ、係る懸濁液を細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに１２０分間静置した後、細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄した。次に、再度、細胞培養治具の内側に新しい培養液をピペットで０．２ｍｌ静かに供給して、その後細胞培養治具の内側の上部の培養液をピペットで静かに抜き取って廃棄することで細胞培養治具１の内側の底部や壁面に十分に接着した細胞のみを残した。
　次に、細胞培養治具の内側に培養液をピペットで０．２ｍｌ静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給した。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　翌日、細胞培養治具の外側の培養液をピペットで静かに抜き取り、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給することで培養液の交換を行い、再度ＣＯ２インキュベーターにおいて分化誘導培養した。なおこの際も、細胞培養治具は骨芽細胞分化培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある骨芽細胞分化培養液でつながっていることを確認した。
　以降、３日に１回の間隔で培養液を交換しながらＣＯ２インキュベーターにおいて５日間培養した。
　培養の結果、２９３Ｔは細胞培養治具の内側で増殖していることが確認された。また、細胞培養治具の内側の底部や壁面に接着（生存）できずに浮いてしまった細胞は認められなかった。
　従って、本発明に係る細胞培養治具を用いれば、２９３Ｔのような接着性の弱い細胞（従前の方法では培養液の交換の際に簡単に剥離してしまうような細胞）であっても、培養液の交換作業時において細胞を誤って喪失してしたり細胞に刺激を与えてしまったりすることなく、迅速、円滑に培養液の交換作業を行うことができることが確認できた。
（実施例１０）
　実施例１０においては、実施例１の細胞培養治具を２個と培養液透過フィルム（セルロース混合エステルタイプ メンブレンフィルター：Ａ５００Ａ（ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製）を直径１０ｍｍのサイズに切り出したもの）を用いることによって、図９（ａ）、（ｂ）に示す、本実施例に使用する細胞培養治具（第五の実施形態に相当する細胞培養治具）を形成した。
　まず、実施例１の細胞培養治具（下段の細胞培養治具）を１個、内径３５ｍｍの培養皿の底面にピンセットで加圧して密着させた。
　次に、図１０（ａ）に示すように、ヒト骨髄性白血病細胞（ＨＬ-６０）を、培養液である１０％のウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培養液で懸濁させ、係る懸濁液を下段の細胞培養治具の内側に供給することで播種した。
　次に、この培養皿をＣＯ２インキュベーターに１２０分間静置した。
　次に、メタノール、エタノール、生理食塩濃度を含むりん酸緩衝液（ｐＨ７.４）の順に十分に浸漬することによって前処理した培養液透過フィルムを上記の細胞培養治具（下段の細胞培養治具）の上面側の開口を塞ぐように配置した後、その上に別の細胞培養治具（上段の細胞培養治具）を重ね合わせることによって、本実施例の細胞培養治具を形成した。
　次に、上段の細胞培養治具の内側に培養液をピペットで０．２ｍｌ静かに供給してから、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給することによって細胞皿を培養液で満たした。なおこの際、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。そして、このまま培養液を交換せずにＣＯ２インキュベーターにおいて培養を開始した。
　培養開始１日後に、細胞培養治具の外側の培養液をピペットで静かに抜き取り、細胞培養治具の外側から培養液をピペットで４ｍｌ静かに供給することで培養液の交換を行い、再度ＣＯ２インキュベーターにおいて培養した。なおこの際も、細胞培養治具は培養液によって培養皿内で完全に浸漬した状態となっており、細胞培養治具の内側と外側とは上方にある培養液でつながっていることを確認した。
　培養開始３日後、図１０（ｇ）、（ｈ）に示すように培養後の細胞培養治具の内側のＨＬ-６０をピペットで回収したところ、従前の培養方法において培養したＨＬ-６０よりも数倍以上の高密度でＨＬ-６０を回収することができた。
　また、細胞培養治具の外側の培養液を回収することによって、ＨＬ-６０からの分泌物を回収することができた。
　従って、第五の実施形態に係る細胞培養治具を用いれば、浮遊性の細胞や細胞培養治具の底部や壁面への接着性が弱い細胞であっても、培養液の交換作業時における細胞の喪失を防止しつつ、細胞を培養することが可能であることが確認できた。
　また、従前のような培養液の交換のための遠心分離の工程を経ることなく、細胞を培養することが可能であることが確認できた。
　さらに、細胞が分泌する抗体などの有用成分についても簡単に回収することが可能であることが確認できた。
（比較例）
　細胞培養治具を用いずに培養皿のみを用い、培養皿の底部をコラーゲンで処理（コラーゲンを固定）し、３日に１回の間隔で骨芽細胞分化培養液を交換した以外は、実施例５と同様にしてヒト骨髄間葉系幹細胞の培養を行った。
　培養後、ヒト骨髄間葉系幹細胞の分化状態（石灰化）を確認するために、骨芽細胞分化培養液および細胞培養治具を除去した後、アリザリンレッドＳを用いて染色を行った。染色後のヒト骨髄間葉系幹細胞の写真を図１９に示す。
　その結果、図１９に示すように、細胞培養治具を用いずに培養皿のみを用いた場合には、コラーゲンで固定（前処理）した状態であっても染色（石灰化）の度合が弱くなり、分化誘導の程度が低いものとなった。また、培養皿の底部全体にヒト骨髄間葉系幹細胞が広がってしまい、細胞塊として回収することができなかった。
　以上、一連の実施例による評価を通じて、本発明に係る細胞培養治具を用いれば培養液の交換頻度を大幅に削減することができ、細胞の喪失を効果的に防止できることがわかった。なお、培養液の交換頻度を大幅に削減できることは、培養皿をインキュベーターから外に出して作業する回数、運搬による振動や対流が加わる回数、培養液の温度が保温温度（例えば３７℃）から室温に変化する回数、ＣＯ２濃度が変化する回数、培養液のｐＨが変化する回数などを削減することにも繋がる。
　従って、本発明に係る細胞培養治具を用いることによって、細胞にとって生存条件が変化すること（外部からの刺激）を防止することができ、細胞を長期間にわたって安定に培養することができることもわかった。
　一方、比較例のような従前の培養治具や培養方法（図２０を参照）では、２～３日に１回の頻度で培養液を交換しなければならないことから、培養中の細胞が分化しても、培養液の交換の際に係る細胞を喪失してしまう可能性が高く、培養効率が向上しないことが確認できた。
　以上の結果から、本発明に係る細胞培養治具を用いれば迅速かつ円滑に培養液の交換作業を行うことができ、細胞に刺激を与えることなく長期間培養でき、重層化した細胞を簡単に作製することができることがわかった。
　また、培養液の交換に伴う振動や対流、温度変化、培養液のｐＨ変化などの不用な刺激を軽減し、細胞を喪失することなく安定に培養、観察できる利点は再生医療分野の研究の発展に欠かせないものとなることがわかった。
　さらに、再生医療の研究や治療においてはある程度の面積（ある程度の細胞数）を持つ細胞塊が要求されることから、この点からも本発明に係る細胞培養治具は有用であることがわかった。
　さらに本発明に係る細胞培養治具の内側と外側、高さのサイズは、培養する細胞の特性と研究目的に合わせて簡単に変えられるので、様々な分化細胞の培養に用いることができることがわかった。
　本発明の細胞培養治具は、各種細胞の培養に用いることができる。
１　　細胞培養治具
１ａ　細胞培養治具
１ｂ　細胞培養治具
１ｃ　細胞培養治具
１ｄ　細胞培養治具
１ｅ　細胞培養治具
１ｆ　細胞培養治具
１ｇ　細胞培養治具
１ｈ　細胞培養治具
１ｉ　細胞培養治具
２　　開口
３　　底面
４　　培養皿
５　　細胞
５ａ　任意の細胞
５ｂ　別の細胞
６　　培養液
６ａ　培養液
６ｂ　新鮮な培養液
７　　細胞塊（シート状）
８　　溝部
９　　内壁
１０　培養液交換部
１１　培養液透過フィルム
１２　嵌合部材
１３　培養液交換部の染色度合
 

Claims (9)

  1. 細胞を培養するための治具であって、
    可撓性材料を輪状体または枠状体とし、かつ底面を平滑にしたことを特徴とする細胞培養治具。
     
  2. 前記輪状体または前記枠状体の上面に、
    溝部を少なくとも１箇所設けたことを特徴とする請求項１に記載の細胞培養治具。
     
  3. 前記輪状体または前記枠状体の内壁を、
    前記底面から上面に向かって次第に拡がるように傾斜させたことを特徴とする請求項１または請求項２に記載の細胞培養治具。
     
  4. 前記輪状体または前記枠状体の内周に、
    前記内周の一部を外周側に窪ませて形成した培養液交換部を少なくとも１箇所設けたことを特徴とする請求項１から請求項３のいずれか一項に記載の細胞培養治具。
     
  5. 前記輪状体または枠状体の厚み方向の高さが、
    ０．５～４ｍｍであることを特徴とする請求項１から請求項４のいずれか一項に記載の細胞培養治具。
     
  6. 前記底面の表面粗さＲａが、
    １μｍ以下であることを特徴とする請求項１から請求項５のいずれか一項に記載の細胞培養治具。
     
  7. 前記可撓性材料が、
    シリコーン樹脂、熱硬化性エラストマー、環状オレフィンコポリマー、熱可塑性エラストマー、シリコーンゴム、フッ素ゴム、天然ゴム、合成ゴムから選択される１種または２種以上の材料であることを特徴とする請求項１から請求項６のいずれか一項に記載の細胞培養治具。
     
  8. 請求項１から請求項７のいずれか一項に記載の細胞培養治具を用いることを特徴とする細胞培養方法。
     
  9. 前記細胞培養治具２つと培養液透過フィルムを用い、
    前記培養液透過フィルムを、一の細胞培養治具の上面側の開口を塞ぐように配置した後、
    さらにその上に他の細胞培養治具を重ね合わせることを特徴とする請求項１から請求項７のいずれか一項に記載の細胞培養治具の使用方法。
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