WO2015005345A1 - コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、その製造方法及び医用材料 - Google Patents

コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、その製造方法及び医用材料 Download PDF

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gel particles
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acid gel
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正道 橋本
葉玲 根本
貴文 原田
健治 藤井
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電気化学工業株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particle, a production method thereof, and a medical material.
  • Hyaluronic acid is a linear polymer polysaccharide in which ⁇ -DN-acetylglucosamine and ⁇ -D-glucuronic acid are alternately bound. Since hyaluronic acid exhibits excellent biocompatibility and viscoelasticity, it has been developed into the medical field. For example, various solution preparations are commercially available as viscosity replenishers for knee osteoarthritis.
  • Hyaluronic acid is widely distributed in vertebrate vitreous, joint fluid, skin, and the like, and is widely applied to pharmaceuticals such as subocular surgery adjuvants and joint injections, medical devices, cosmetics, and health foods.
  • Hyaluronic acid is inherently extremely safe because it is present in tissues and organs at high concentrations as an original biological component.
  • Cross-linked hyaluronic acid gel is also known as hyaluronic acid.
  • hyaluronic acid For example, a viscosity replenisher using self-crosslinked hyaluronic acid particles is disclosed in Patent Document 1, and it is said that the medicinal effect is enhanced by gelling hyaluronic acid at a high concentration.
  • Non-Patent Document 1 cross-linked hyaluronic acid gel is known to have a weak foreign body reaction as compared with a hyaluronic acid solution, while having a property of improving biological storage.
  • An object of the present invention is to provide cross-linked hyaluronic acid gel particles having a high biocompatibility and having a foreign body reaction reduced to the same extent as that of a hyaluronic acid solution.
  • Another object of the present invention is to provide a method for producing the gel particles and a medical material containing the gel particles.
  • the present invention is a core-shell type crosslinked hyaluronan gel particle having an equilibrium swelling ratio higher than that at the center and having an inflection point in the change curve of the equilibrium swelling ratio from the center toward the surface, from the surface to a depth of 800 nm.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles having a probe indentation force of 20 nN or less are provided.
  • the core-shell cross-linked hyaluronic acid gel particles of the present invention have a soft surface close to a hyaluronic acid solution, and can reduce foreign body reaction even though the molecular structure is hardly changed. Affinity is obtained.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles are preferably particles having an equilibrium swelling ratio of 40 or more from the inflection point to the surface. That is, the length from the center of gravity of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles to the surface direction was obtained by plotting the horizontal axis (X) and the equilibrium swelling ratio at a predetermined horizontal axis position on the vertical axis (Y). In the change curve of the equilibrium swelling ratio, the value (Y) of the equilibrium swelling ratio between the horizontal axis position (X c ) where the inflection point exists and the horizontal axis position (X s ) corresponding to the surface is 40 or more. It is preferable that
  • the surface of the particles can ensure a softness closer to that of the hyaluronic acid solution. Particles having a high biocompatibility with reduced foreign body reaction to the same extent as the acid solution.
  • the present invention also provides a core-shell type crosslinked hyaluronan gel particle having an equilibrium swelling ratio higher than that at the center and having an inflection point in a change curve of the equilibrium swelling ratio from the center toward the surface, Core-shell type hyaluronic acid gel particles having an equilibrium swelling ratio up to 65 or more are provided.
  • the above core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles have a soft surface close to a hyaluronic acid solution, and can reduce foreign body reaction even though the molecular structure hardly changes and have high biocompatibility. Is obtained.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles preferably have a distance from the inflection point to the surface of 5 ⁇ m or more. That is, the length from the horizontal axis position (X c ) to the horizontal axis position (X s ) is preferably 5 ⁇ m or more in the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles.
  • the distance from the inflection point to the surface is within the above range, it is possible to secure the thickness of the soft part of the surface of the particle. It is considered that a surface portion having a high equilibrium swelling ratio appears, and the foreign body reaction is reduced to the same extent as the hyaluronic acid solution in the long term, and high biocompatibility can be maintained.
  • the present invention is a production method for producing the above-described core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles, which comprises forming a core-shell structure on the gel particles by bringing the crosslinked hyaluronic acid gel particles into contact with a basic substance.
  • a manufacturing method is provided.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained by such a production method have a soft surface close to a hyaluronic acid solution and are not easily recognized as crosslinked hyaluronic acid gel particles in vivo, they are comparable to hyaluronic acid solutions.
  • the foreign body reaction is reduced to a high biocompatibility.
  • the present invention is also a production method for producing core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles, wherein a crosslinked hyaluronic acid gel having a lower crosslinking density of hyaluronic acid than the crosslinked hyaluronic acid gel particles is formed on the surface of the crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • a manufacturing method is provided that includes forming a shell.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained by such a production method also have the softness close to that of the hyaluronic acid solution and are difficult to recognize as crosslinked hyaluronic acid gel particles in vivo.
  • the foreign body reaction is reduced to the extent and the biocompatibility is high.
  • the present invention further provides a medical material containing the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles.
  • the medical material containing such core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles is not easily recognized as a foreign substance in the living body even when the medical material is administered into the living body. High biocompatibility can be ensured as in the case of medical materials containing.
  • the medical material can be applied as any one selected from a joint injection agent, a carrier of a pharmacologically active substance, a wound dressing agent, a tissue replacement type biological tissue repair agent, an antiadhesive agent, a hemostatic agent, an artificial extracellular matrix, and a dermal filler. is there.
  • Such a medical material is less likely to be recognized as a foreign substance in a living body and the like, so that an inflammatory action or the like hardly occurs, and high biocompatibility can be ensured similarly to a medical material containing a hyaluronic acid solution. From the viewpoint as described above, it is more preferable because a remarkable effect is exhibited particularly when used as a joint injection.
  • the present invention it is possible to provide cross-linked hyaluronic acid gel particles having a high biocompatibility with a foreign body reaction reduced to the same extent as that of a hyaluronic acid solution. Moreover, it becomes possible to provide the manufacturing method of the said gel particle, and the medical material containing the said gel particle.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particle according to the embodiment is a particle having an inflection point in a change curve of equilibrium swelling magnification from the center toward the surface.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles only have to have a particle shape in a gel state, and are not necessarily limited to spherical ones.
  • the center of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particle means the center of gravity of the particle, and the position can be specified by a microscope image or the like.
  • “There is an inflection point in the change curve of the equilibrium swelling ratio from the center to the surface” means that the vertical axis is the equilibrium swelling ratio and the horizontal axis is the linear distance from the center to the particle surface (the center is the horizontal axis). 0), it means that an inflection point exists in the change curve obtained by plotting the equilibrium swelling ratio. Plotting is preferably performed every 0.2 to 15 ⁇ m on the horizontal axis (preferably, every 0.5 to 5 ⁇ m on the horizontal axis), and a change curve is preferably obtained as an approximate curve of the plot.
  • the shape of the change curve is preferably a shape in which the line of the equilibrium swelling ratio rises sharply in a specific region on the horizontal axis (the equilibrium swelling ratio preferably shows a gentle change before and after the rise.
  • the rate of change of the slope of the change curve preferably changes from positive to negative), and there is an inflection point between this specific region.
  • the particle part inside the inflection point can be called “core”, and the particle part outside can be called “shell”.
  • the equilibrium swelling ratio of the crosslinked hyaluronic acid gel particles can be calculated by confocal microscopic laser Raman spectroscopy. Analyze the concentration of hyaluronic acid in a specific minute range within the gel particles by confocal microscopic laser Raman spectroscopy, and use the sample with a known equilibrium swelling ratio as an index to calculate the equilibrium swelling ratio in the specified minute range. can do. In addition, since it is possible to calculate the equilibrium swelling magnification in any specific minute range in the gel particles, by repeating the calculation of the equilibrium swelling magnification by confocal microscopic laser Raman spectroscopy and the movement of a certain minute range, It is also possible to observe the behavioral change of the equilibrium swelling magnification inside the gel particles.
  • the first step is the Raman intensity of the peak derived from water and the peak derived from hyaluronic acid obtained by analyzing a specific minute range inside the gel particles in an equilibrium swelling state in an aqueous solvent (in a buffer solution). This is a step of calculating a numerical value correlated with the hyaluronic acid concentration from the ratio of the Raman intensity.
  • the second step using a sample with a known equilibrium swelling ratio, create a calibration curve with a value that correlates with the equilibrium swelling ratio and the hyaluronic acid concentration, and the hyaluronic acid concentration in a specific minute range within the crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the equilibrium swelling ratio of the entire cross-linked hyaluronic acid gel particles is determined when the gel particles in an equilibrium swelling state in an aqueous solvent (in a buffer solution) are removed by filtration, and when the gel particles are further dried. It is represented by the volume magnification.
  • the equilibrium swelling ratio is obtained by using the ratio (Qw) and density of the wet weight of the crosslinked hyaluronic acid gel when the aqueous solvent (buffer) is removed by filtration and the weight of the crosslinked hyaluronic acid gel when further dried. And can be calculated by the following equation (2).
  • the method for removing the aqueous solvent (buffer solution) by filtration is not particularly limited, and for example, a centrifugal filtration method using a centrifugal filter unit, a vacuum filtration method using a membrane filter, or the like can be appropriately used.
  • the equilibrium swelling ratio at the inflection point is in the range of 20 to 80 (particularly in the range of 40 to 60, about 50).
  • the probe pushing force from the surface to a depth of 800 nm is 20 nN or less.
  • the depth direction is preferably a direction from the surface toward the center (center of gravity).
  • the probe pushing force is measured as elasticity measured using a scanning probe microscope. That is, cross-linked hyaluronic acid gel particles that are in an equilibrium swelling state in an aqueous solvent (in a buffer solution) are placed on a sample stage, and a colloidal probe with 10 ⁇ m diameter (spherical) glass particles attached to the tip from above is used as a cross-linked hyaluronic acid. It is measured as a force (probe pushing force) applied to the probe by pushing from the gel surface to a depth of 800 nm.
  • the pushing force is preferably 10 nN or less.
  • An indentation force of 20 nN or less means that the surface of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles has low elasticity, and even when administered in vivo, it is difficult to be recognized as a foreign substance in the body, thus suppressing the inflammatory action. As with the hyaluronic acid solution, high biocompatibility can be ensured.
  • the equilibrium swelling ratio of the shell is preferably 40 or more, more preferably 50 or more, and further preferably 65 or more. Since the equilibrium swelling ratio of the shell of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particle is in the above range, the surface of the particle can be ensured softness close to that of the hyaluronic acid solution. It is possible to obtain particles having a high biocompatibility, in which the foreign body reaction is reduced to the same extent as in the above. From the above viewpoint, the equilibrium swelling ratio is particularly preferably 75 or more. The equilibrium swelling ratio of the shell is higher than the equilibrium swelling ratio at the inflection point described above.
  • the distance in the thickness direction of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles from the inflection point to the point on the surface is preferably 5 ⁇ m or more.
  • the distance is from the inflection point to the point on the surface when the equilibrium swelling ratio in a specific minute range is sequentially measured from the center to the surface for at least one place in the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles. It is sufficient if the movement distance is.
  • the thickness of the shell is in the above range, the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles are hardly recognized as foreign substances in the living body, and high biocompatibility can be ensured similarly to the hyaluronic acid solution.
  • the thickness of the shell is more preferably 10 ⁇ m or more.
  • the thickness of the shell of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles can also be measured as the length in the thickness direction of the transparent portion of the outer shell by microscopic observation of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles dyed only the core. Specifically, an image of the dyed core-shell type crosslinked hyaluronan gel is taken with a digital microscope, and the distance from the gel particle surface to the boundary between the core and the shell is measured at one or more points per gel particle. This measurement is performed on 100 gel particles, and the thickness of the shell can be calculated from the average value.
  • the staining can be performed by any known method capable of staining hyaluronic acid, but staining with methylene blue or acridine orange is preferable. Furthermore, in order to easily determine the boundary between the transparent shell and the aqueous solvent, it is more preferable to negatively stain only the aqueous solvent with nigrosine or the like. Specifically, dyeing is performed by adding a methylene blue aqueous solution to the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles in an equilibrium swelling state in an aqueous solvent (in a buffer solution) and stirring sufficiently. Subsequently, negative staining can be performed by placing the sample on a sample stage and adding a nigrosine aqueous solution immediately before observation with a digital microscope.
  • hyaluronic acid can be used regardless of its origin, whether extracted from animal tissue or manufactured by fermentation.
  • the strain used in the fermentation method is a microorganism having the ability to produce hyaluronic acid such as Streptococcus genus isolated from the natural world, or Streptococcus equii FM-100 described in JP-A-63-123392. No. 9027) and Streptococcus equi FM-300 described in Japanese Patent Application Laid-Open No. Hei 2-23489 (Mikken Kenkyu No. 2319) are desirable.
  • Hyaluronic acid can also be used in the form of salts acceptable in the art, such as sodium, potassium, or lithium salts.
  • crosslinked hyaluronic acid gel particles self-crosslinked hyaluronic acid gel particles having an ester structure that is self-crosslinking of hyaluronic acid can be used.
  • Self-crosslinked hyaluronic acid gel particles coexist hyaluronic acid, water with a hyaluronic acid concentration of 5% by mass or more, and a carboxyl group of hyaluronic acid and an equimolar or more acid component, and maintain the coexistence state at a low temperature. Can be obtained.
  • the acid coexisting with hyaluronic acid is not particularly limited, and any known acid can be used, but it is preferably an acid stronger than hyaluronic acid, and more preferably an inorganic acid. More preferred is hydrochloric acid, nitric acid, or sulfuric acid, and nitric acid that is excellent in handling and the like is particularly preferred.
  • the amount of the coexisting acid is not particularly limited, but can be the amount of the acid component equimolar or more with the carboxyl group of hyaluronic acid.
  • the acid coexisting with hyaluronic acid is preferably maintained in such an amount that hyaluronic acid is contained in an amount of 15% by mass or more, preferably 20% by mass or more and 40% by mass or less.
  • This holding may be performed at a temperature of ⁇ 30 ° C. to 25 ° C. for any period of 1 hour to 20 days. Particularly preferred is a temperature of -25 ° C. or higher and ⁇ 5 ° C. or lower for 1 to 15 days.
  • Mixing of hyaluronic acid and acid coexisting with hyaluronic acid is performed by adding hyaluronic acid to the coexisting acid so that the total amount is 15% by mass or more, preferably 20% by mass or more. It is preferable to carry out.
  • the acid coexisting with hyaluronic acid can be impregnated so that the total amount is 15% by mass or more, preferably 20% by mass or more, and further, an acidic aqueous solution of hyaluronic acid adjusted at a low concentration is used. It can also concentrate so that it may become 15 mass% or more of the whole, Preferably it is 20 mass% or more.
  • the concentration of the obtained self-crosslinked hyaluronic acid gel particles in the suspension can be quantified as follows, for example. First, the self-crosslinked hyaluronic acid gel suspension is diluted with distilled water, an aqueous sodium hydroxide solution is added, and the mixture is allowed to stand at room temperature to hydrolyze and dissolve the ester bond of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles. Next, hydrochloric acid is added to the solution for neutralization, and then the glucuronic acid concentration is quantified by a carbazole sulfate method known to those skilled in the art. Using this glucuronic acid concentration and a known concentration of hyaluronic acid as a standard substance, the concentration of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles in the suspension can be calculated.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles can be produced by a surface treatment method in which the crosslinked structure of the surface portion of the crosslinked hyaluronic acid gel particles is partially decomposed to form a soft shell, or shell synthesis that forms a soft shell on the surface of the particle. Law.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained by such a production method are less likely to be recognized as a foreign substance in the living body, so that the inflammatory action can be suppressed, and high biocompatibility can be ensured similarly to the hyaluronic acid solution. .
  • the above surface treatment method is based on a chemical treatment capable of specifically decomposing the crosslinked structure of hyaluronic acid, partially cutting the surface portion of the crosslinked hyaluronic acid gel particles to reduce the crosslinking density of the hyaluronic acid, thereby reducing the equilibrium swelling ratio. Is increased, that is, the shell is softened. Thereby, a core-shell structure can be formed in the crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the combination of the crosslinked structure of hyaluronic acid and the chemical treatment that can be specifically decomposed is arbitrary, and examples thereof include a combination of an ester structure that is self-crosslinked of hyaluronic acid and a treatment with a basic substance.
  • the method for producing core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles by this combination is as follows.
  • Self-crosslinked hyaluronic acid gel particles are used as a raw material, swollen with an acidic solution, and then mixed with water and a water-soluble organic solvent.
  • This is a method of bringing the surface into contact with a basic substance.
  • the basic substance penetrates from the surface to the inside of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles, and at the same time, breaks the ester bond and increases the equilibrium swelling ratio of the penetrated portion.
  • the acidic solution for swelling the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles is not particularly limited, and any known acid can be used, but it is preferably a water-soluble acid, and more preferably a strong inorganic acid. .
  • the concentration of the acidic solution is not particularly limited, but is preferably a concentration of equimolar or more of the carboxyl groups of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the amount of the acidic solution is not particularly limited, however, for example, it is preferably 0.1 to 20 times mol, preferably 0.3 to 5 times mol with respect to the carboxyl group of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles. More preferably.
  • the water-soluble organic solvent in the mixed solution is not particularly limited, and any known water-soluble organic solvent can be used, but glycerin, dimethyl sulfoxide, ethanol, methanol, ethylene glycol, and polyethylene glycol are preferable, and glycerin is particularly preferable among them. .
  • the ratio of the water-soluble organic solvent in the mixed solution is not particularly limited, but is preferably 50% or more, more preferably 60 to 90%, and particularly preferably 70 to 80%.
  • the basic substance is not particularly limited, and any known basic substance can be used.
  • the basic substance is preferably a basic substance that dissolves in a mixed solution of water and a water-soluble organic solvent. More preferably.
  • hexadecyltrimethylammonium hydroxide, dimethyldistearylammonium hydroxide, and tetrabutylammonium hydroxide are more preferable, and among them, amphiphilic hexadecyltrimethylammonium hydroxide is preferable.
  • the amount of the basic substance is not particularly limited, but is preferably 1 to 30 times mol, more preferably 2 to 10 times mol of the acidic solution for swelling the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the shell synthesis method is a method of forming a crosslinked hyaluronic acid gel shell having a lower crosslinking density of hyaluronic acid than the crosslinked hyaluronic acid gel particles on the surface of the crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the method of synthesizing the formed shell is not particularly limited, and the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles can be produced by any known synthetic method of crosslinked hyaluronic acid gel.
  • a hyaluronic acid solution, a compound having a crosslinking group, and a crosslinking agent are mixed in the presence of crosslinked hyaluronic acid gel particles, or hyaluronic acid modified with a crosslinking group in the presence of crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • a shell of a crosslinked hyaluronic acid gel having a crosslinking density of hyaluronic acid lower than that of the crosslinked hyaluronic acid gel particles is formed on the surface of the gel particles.
  • a solution for dissolving hyaluronic acid or hyaluronic acid modified with a crosslinking group is not particularly limited, but a mixed solution of water and a water-soluble organic solvent is preferable.
  • the water-soluble organic solvent is particularly THF, dioxane, acetone. More preferably, ethanol is used.
  • Hyaluronic acid modified with a bridging group is a modified hyaluronic acid having a structure in which hyaluronic acid is bonded to one end of the hyaluronic acid having a structure capable of binding to hyaluronic acid at both ends. It is a modified hyaluronic acid that has the ability to gel by a crosslinking agent alone without adding a compound.
  • the compound having a crosslinking group is not particularly limited, and any compound having a known crosslinking group capable of crosslinking hyaluronic acid can be used, but the crosslinking reaction can proceed under mild neutral reaction conditions. Are preferred.
  • the crosslinking agent is not particularly limited, and any known crosslinking agent capable of crosslinking hyaluronic acid can be used, but a crosslinking agent capable of allowing the crosslinking reaction to proceed under mild neutral reaction conditions is preferable.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles can be used without particular limitation as long as it is a field where general medical materials and hyaluronic acid are used.
  • a carrier of a pharmacologically active substance for example, a joint injection, a carrier of a pharmacologically active substance, a wound Coating, tissue replacement type tissue repair agent, anti-adhesion agent, hemostatic agent, artificial extracellular matrix, dermal filler, other medical devices used for diagnosis or treatment, biomedical products such as medical devices, or pharmaceutical compositions Etc.
  • a remarkable effect is exhibited particularly when used as a joint injection.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles are less likely to be recognized as foreign substances in the living body, the inflammatory action can be suppressed, and high biocompatibility can be ensured similarly to the hyaluronic acid solution. More specifically, the high biocompatibility of the core-shell cross-linked hyaluronic acid gel particles according to the embodiment of the present invention was analyzed by using the leukocyte count increased by the local irritation of the gel particles in the rabbit knee joint as an index.
  • the white blood cell count does not exceed 100 ⁇ 10 4 cells / mL, and it is more preferable that the white blood cell count is 10 ⁇ 10 4 cells / mL or less. preferable.
  • the obtained mixture of hyaluronic acid and nitric acid was stored in a freezer set at ⁇ 20 ° C. for 10 days. Thereafter, this mixture was added to 1 L of pure water at 5 ° C., and the pure water was exchanged twice every hour. Then, add this mixture to 1 L of 50 mM phosphate buffer at 5 ° C., change the 50 mM phosphate buffer 5 times every hour, perform neutralization washing until nitric acid is completely removed, and self-crosslink A hyaluronic acid gel was obtained.
  • the self-crosslinked hyaluronic acid gel obtained above was neutralized and allowed to stand for 30 minutes, the supernatant was removed by decantation, and 9 times the weight of 50 mM phosphate buffer was added to the precipitated self-crosslinked hyaluronic acid gel. It was.
  • This self-crosslinked hyaluronic acid gel suspension was put into a high-speed rotating device and crushed to obtain a suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained above was allowed to stand for 30 minutes, and the supernatant was removed by decantation.
  • Nine times the weight of physiological saline was added to the remaining suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles, and the physiological saline was exchanged 10 times every 10 minutes.
  • 6 types of self with different particle sizes are classified by sieve (in order of larger openings) (for test: lead-free, diameter: 150 mm, depth: 60 mm, openings: 500 ⁇ m, 355 ⁇ m, 212 ⁇ m, 125 ⁇ m, 53 ⁇ m).
  • the suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained above was washed with distilled water and ethanol and dried under reduced pressure to obtain dried self-crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the equilibrium swelling ratio of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles was calculated as follows. Suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles 0.4 ml (solvent: 10 mM phosphate buffered saline (pH 6.0), sodium chloride concentration 0.9 wt%) was added to a centrifugal filter unit (0.45 micrometer pore size). The product was centrifuged at 5 ° C. and 2000 rpm for 30 minutes to remove the solvent, and the weight of the solvent-removed self-crosslinked hyaluronic acid gel particles was measured. Further, the particles were dried for 20 hours, and the weight of the dried self-crosslinked hyaluronic acid gel particles was measured. When the equilibrium swelling ratio was calculated from both measured values, the equilibrium swelling ratio of the obtained self-crosslinked hyaluronic acid gel particles was 5.9.
  • Example 1 The dried self-crosslinked hyaluronic acid gel particles (0.1 g, 500 to 355 ⁇ m) obtained in Comparative Example 1 were swollen with 0.5 M hydrochloric acid (0.7 mL) at room temperature (20 to 25 ° C.) for 3 minutes. . A mixed solution of 25% hexadecyltrimethylammonium hydroxide / methanol solution (1.65 mL) and 80% aqueous glycerin solution (45 mL) was added, and after stirring for 8 minutes, 6M hydrochloric acid (0.5 mL) was added for neutralization.
  • the yield of the obtained core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles was as follows. The supernatant of the total suspension of the obtained core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles was removed, and the supernatant was diluted with distilled water. 1N sodium hydroxide (2 mL) was added and dissolved by stirring for 2 minutes, and neutralized by adding 1N hydrochloric acid (2 mL). The hyaluronic acid concentration of the obtained hyaluronic acid solution was calculated by the carbazole sulfate method, and the yield was calculated from the amount of the hyaluronic acid solution and the amount of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particle raw material.
  • Example 2 Core-shell crosslinked hyaluronic acid gel particles were obtained in the same manner as in Example 1 except that the 80% glycerin aqueous solution was changed to an 80% dimethyl sulfoxide aqueous solution and the stirring time was changed from 8 minutes to 3 minutes. The yield was 82%.
  • Example 3 Core-shell crosslinked hyaluronic acid gel particles were obtained in the same manner as in Example 1 except that the 80% glycerin aqueous solution was changed to a 70% ethanol aqueous solution and the stirring time was changed from 8 minutes to 3 minutes. The yield was 61%.
  • Example 4 Core-shell crosslinked hyaluronan gel particles were obtained in the same manner as in Example 3 except that 0.5M hydrochloric acid was changed to 0.5M acetic acid. The yield was 3%.
  • Example 5 Core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles were obtained in the same manner as in Example 1 except that the stirring time was changed from 8 minutes to 12 minutes. The yield was 89%.
  • Example 6 Core-shell crosslinked hyaluronan gel particles were obtained in the same manner as in Example 3 except that the 25% hexadecyltrimethylammonium hydroxide / methanol solution was changed to a 25% dimethyl distearyl ammonium hydroxide / methanol solution. The yield was 77%.
  • Test Example 1 The elasticity of the surface of the core-shell type crosslinked hyaluronan gel particles of Examples 1 to 6 and Comparative Examples 2 to 3 was analyzed from the surface probe indentation force by a scanning probe microscope.
  • the measurement conditions were as follows. Scanning probe microscope: SPM-9700 type (manufactured by Shimadzu Corporation, trade name) Probe: Colloidal probe (CP-CONT-BSG-B, manufactured by Toyo Technica Co., Ltd.) attached with (spherical) glassy particles with a diameter of 10 ⁇ m Indentation distance: 800nm Number of measurements: 3 times Measurement temperature: 23 ⁇ 2 ° C
  • the physiological saline suspension of each crosslinked hyaluronic acid gel particle was collected on a sample stage in the apparatus and placed on the stage of the apparatus. While observing the crosslinked hyaluronic acid gel particles with an optical microscope, the probe was set above the measurement position, and a force curve was obtained while moving the probe directly below about 3000 nm. From the force curve obtained by measurement, the magnitude of the force was calculated by multiplying the distance that the probe was deflected from the particle surface to the indentation distance of 800 nm by the spring constant of the probe.
  • Test Example 2 The equilibrium swelling ratio of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles of Examples 1 to 6 and Comparative Examples 2 to 3 was determined by using a confocal microscopic laser Raman spectroscopic apparatus with the hyaluronic acid concentration as an index. It was analyzed as a calculated value corresponding to the magnification.
  • a physiological saline suspension of each crosslinked hyaluronic acid gel particle was collected on a slide glass, and the surface of the suspension was covered with a cover glass to obtain a measurement sample.
  • the sample was placed on an XYZ triaxial automatic stage in a confocal microscopic laser Raman spectrometer, and an observation start point was set near the outside of the crosslinked hyaluronan gel particles using an optical microscope.
  • Raman spectra in a minute range of 0.5 to 5 ⁇ m were sequentially acquired.
  • the measurement conditions were as follows.
  • the equilibrium swelling ratio in the minute range of 0.5 to 5 ⁇ m was calculated using the following formula (3). Plotting the calculated values of the equilibrium swelling ratio sequentially, deriving an approximate curve by the sigmoid function, and from the position of the inflection point in the approximate curve, that is, the boundary between the core and shell, the surface (the equilibrium swelling ratio calculated by the Raman spectrum above) The average value until a large change (noise) started to appear and the moving average value of the equilibrium swelling ratio became constant) was calculated as the equilibrium swelling ratio of the shell.
  • the saline solution is removed from the sample, and instead a water-insoluble liquid having no peak in the wave number (3420 cm ⁇ 1 ) derived from the OH bond of water (for example, By suspending in a hydrocarbon compound such as paraffin, the calculated value of the equilibrium swelling ratio between the shell and the outside was greatly changed, and the equilibrium swelling ratio was calculated.
  • the thickness of one shell per particle was measured with the boundary between methylene blue staining and the boundary between the core and shell and the boundary between nigrosine staining and the boundary between the shell and physiological saline.
  • the average value of the shell thicknesses of a total of 100 gel particles was calculated, and this value was taken as the shell thickness.
  • the thickness of the shell was calculated in the same manner by changing the 1% aqueous solution of methylene blue to the 1% aqueous solution of acridine orange hydrochloride.
  • Test Example 4 For the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles of Examples 1 to 6 and Comparative Examples 2 to 3, and the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles of Comparative Example 1, the equilibrium swelling ratio was calculated in the same manner as in Test Example 2, and the core and shell The analytical movement distance from the boundary to the boundary between the shell surface and the outside physiological saline was calculated as the thickness of the shell.
  • Test Example 5 In order to evaluate the tissue affinity of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles of Examples 1 to 6 and Comparative Examples 2 to 3, the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles of Comparative Example 1, and the hyaluronic acid solution of Reference Example 1, Analysis was performed using the number of leukocytes increased by local irritation by each sample in the knee joint as an index.
  • the suspension of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained in Examples 1 to 6 and Comparative Examples 2 to 3 was adjusted so that the dry weight (concentration) of the crosslinked hyaluronic acid gel particles with respect to the total volume was 3 w / v%. The following adjustments were made.
  • the concentration of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles was determined by diluting 50 mg of sample with 1.55 ml of distilled water, adding 0.2 ml of 1N sodium hydroxide solution thereto, and allowing to stand at room temperature for 30 minutes.
  • the ester crosslinking of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles was hydrolyzed to dissolve the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the concentration of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles was calculated by a carbazole sulfate method using a known concentration of hyaluronic acid (viscosity average molecular weight 1.9 million) as a standard substance. . Based on this quantitative result, the concentration of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles was adjusted to 3 w / v% to obtain a composition for animal evaluation of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles.
  • the suspension of self-crosslinked hyaluronic acid gel particles obtained in Comparative Example 1 was put into 10 mM phosphate buffered saline at 5 ° C. and pH 7.0, and 10 mM phosphate buffered saline was replaced every other hour. Repeated twice. Quantification of the concentration of the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles described above so that the dry weight (concentration) of the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles is 3 w / v% with respect to the total volume of the crosslinked hyaluronic acid composition. The same method was used.
  • knee joint fluid sample 1 day after administration to collect knee joint fluid, the rabbit was sacrificed by exsanguination. Thereafter, physiological saline was injected into the knee joint cavity using a 1 mL syringe and an 18G needle. After the knee joint was moved well, the knee joint fluid was collected using a 1 mL syringe and an 18G needle. This operation was repeated 4 times to obtain about 2 mL of knee joint fluid sample.
  • the collected knee joint fluid sample is diluted 3 times with physiological saline, shaken well, and 100 ⁇ L is collected after suspension.
  • Stain solution Moto Chemical Co., Ltd .; Labstein, trade name 2 ⁇ L is added to stain leukocytes. did. 15 ⁇ L of the stained joint fluid was collected on a Neubayer hemocytometer, and the number of white blood cells in the 1 ⁇ 1 ⁇ 0.1 mm region was measured using a microscope. The average value of the four compartments was used as the white blood cell count of each knee joint, and the white blood cell count of each injection used as a biocompatibility index was determined as the average white blood cell count of 3 or more knee joints.
  • the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles of Examples 1 to 6 are more biocompatible than the self-crosslinked hyaluronic acid gel particles of Comparative Example 1 and the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles of Comparative Examples 2 to 3. It was found that the properties were improved, and it was found to be the same as the hyaluronic acid solution of Reference Example 1. Thereby, it was found that the presence or absence of the shell, the thickness and softness of the shell in the gel particles are important for biocompatibility.
  • Animals are individually housed in bracket-type metal wire mesh cages (350W ⁇ 500D ⁇ 350Hmm) mounted on a movable rack, temperature 25 ⁇ 3 ° C, humidity 50 ⁇ 20%, ventilation rate 12-18 times / hour, The animals were bred in an environment with an illumination time of 8:00 to 20:00 (12 hours light, 12 hours dark).
  • the sample is given a solid feed for laboratory animals RC4 (manufactured by Oriental Yeast Co., Ltd.) as a restricted feed of 150 g / day with a stainless steel feeder, and drinking water is freely supplied with tap water by a polypropylene water bottle (made of stainless steel pipe). Gave to.
  • Individual identification of animals is done by entering an individual identification number with magic on the auricle, and the cage is filled with a gender and individual identification number card before grouping. After grouping, the test number, administration group, sex, animal A card with the number, the date of surgery, the date of administration, the date of the examination, and the individual identification number was attached.
  • the grouping was performed on the day before the operation for partial meniscus resection. On the day of grouping, body weight and weight distribution of both hind legs were measured in all cases.
  • the left hind paw weight distribution ratio ((left load / bilateral total load) ⁇ 100 (%)) was calculated from the measured hind paw weight distribution. Based on the weight distribution ratio of the left hind paw, the individual values were selected in the order close to the average value.
  • the selected animals were assigned to each group using a stratified continuous randomization method with left hind limb weight distribution ratio. After confirming that the average value of the weight distribution ratio of the left hind paw shows the same value in each group and there is no difference between the groups, the average value of the weight resistance shows the same value in each group. Confirmed that there is no.
  • the partial meniscusectomy was performed on the day after the grouping date, and the day of partial meniscusectomy was defined as day 0.
  • a 14- to 15-week-old animal was used and a meniscus partially excised osteoarthritis model animal was prepared with reference to the methods described in References 1-3.
  • mice in group A were injected with a 1-0.01% HA solution with a molecular weight of 1.9 million, and 12 birds in group B with 1- It is described that a 0.01% HA solution is injected, physiological saline is injected into 12 birds of Group C, and after sacrifice, the knee joint is collected to evaluate the drug efficacy.
  • Reference 3 15 Japanese white rabbits (female, 2.5 kg) were anesthetized with pentobarbital sodium and the lateral collateral ligament and seed bone ligament of the left knee joint were cut.
  • Reference 1 Osteoarthritis and Cartilage, Vol. 15, no. 5, p. 543-549 (2007)
  • Reference 2 Osteoarthritis and Cartilage, Vol. 4, no. 2, p. 99-110 (1996)
  • Reference 3 Joint Surgery, Vol. 15, No. 3, p. 92-98 (1996)
  • Reference 4 Pharmacology and treatment, Vol. 23, p. 833-841 (1995)
  • Reference 5 Pharmacology and treatment, Vol. 33, p. 303-312 (2005)
  • Reference 6 Basic Orthopedic Science, Vol. 9, p. 77-79 (1982)
  • Reference 7 Basic Orthopedic Science, Vol. 11, p. 125-127 (1984)
  • Reference 8 Arthritis & Rheumatism, Vol. 48, no. 7, p. 1923-1929 (2003)
  • the external meniscus was exposed by excising the tendon at the starting part of the popliteal muscle, and the central part of the meniscus was excised over 3.0 to 4.0 mm. Thereafter, the subcutaneous muscle layer and the skin were each sutured, and about 0.2 mL of ampicillin (Meiji Seika Co., Ltd .; Vicillin sol-15%, product name) was injected into the thigh muscle.
  • ampicillin Meiji Seika Co., Ltd .; Vicillin sol-15%, product name
  • an analgesic evaluation device for small animals was used. This device accurately detects the weight distribution between the right and left legs of the animal placed in the main body container in grams using a dual-channel sensor pad installed on the bottom of the container. Averaged over the set time.
  • the main body container used was for rabbits.
  • the measurement setting time was 5 seconds when the animal was stationary.
  • the left rear foot weight distribution ratio was calculated from the left and right weights (loads) according to the following formula (4).
  • the average value of the left hind paw weight distribution ratio (%) calculated three times was defined as the left hind paw weight distribution ratio (%) per measurement.
  • the results are shown in FIGS.
  • the rabbit administered with the core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel of Examples 3 to 4 has a longer pain suppressing effect than the rabbit administered with the hyaluronic acid solution of Reference Example 1. I understood that.
  • the present invention it is possible to provide core-shell type crosslinked hyaluronic acid gel particles that have a foreign body reaction reduced to the same extent as that of a hyaluronic acid solution and have high biocompatibility. Moreover, the manufacturing method of the said gel particle and the medical material containing the said gel particle can also be provided.

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Abstract

　本発明に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、中心より表面の平衡膨潤倍率が高く、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在するコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子であって、表面から深さ８００ｎｍまでのプローブ押込み力が２０ｎＮ以下である。

Description

コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、その製造方法及び医用材料
　本発明は、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、その製造方法及び医用材料に関する。
　ヒアルロン酸は、β－Ｄ－Ｎ－アセチルグルコサミンとβ－Ｄ－グルクロン酸が交互に結合した直鎖状の高分子多糖である。ヒアルロン酸は、優れた生体適合性及び粘弾性を示すことから、医用分野への展開が進んでいる。例えば、変形性膝関節症のための粘性補充剤として各種溶液製剤が市販されている。
　ヒアルロン酸は、脊椎動物の硝子体・関節液・皮膚などに広く分布しており、眼下手術補助剤・関節注入剤等の医薬品、医療機器、化粧品及び健康食品に広く応用されている。ヒアルロン酸は、本来の生体成分として組織や器官中に高濃度で存在していることから、本質的に安全性が極めて高い。
　ヒアルロン酸としては、架橋ヒアルロン酸ゲルも知られている。例えば、自己架橋したヒアルロン酸粒子を用いた粘性補充剤が特許文献１に開示されおり、ヒアルロン酸を高濃度にゲル化することにより薬効が高まるとされている。
　一方、生体貯留性が向上した各種架橋ヒアルロン酸ゲルも市販されている（例として、シンビスク（Ｓｙｎｖｉｓｃ）：登録商標、デュロレイン（Ｄｕｒｏｌａｎｅ）：登録商標、モノビスク（Ｍｏｎｏｖｉｓｃ）：登録商標、ゲル・ワン（Ｇｅｌ－Ｏｎｅ）：登録商標）。
　しかし、架橋ヒアルロン酸ゲルは、生体貯留性が向上するという特性を持つ一方で、ヒアルロン酸溶液と比較して、弱い異物反応があることも知られている（非特許文献１）。
国際公開第１２／０２６４６８号
Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｒｈｅｕｍａｔｏｌ．，Ｖｏｌ．２０，ｐ．４４５－４５４（２００２）
　本発明は、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、生体親和性の高い架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を提供することを目的とする。
　また、本発明は、当該ゲル粒子の製造方法及び当該ゲル粒子を含む医用材料を提供することも目的とする。
　本発明は、中心より表面の平衡膨潤倍率が高く、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在するコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子であって、表面から深さ８００ｎｍまでのプローブ押込み力が２０ｎＮ以下である、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を提供する。
　本発明のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、その表面がヒアルロン酸溶液に近い軟らかさを有しており、分子構造はほとんど変わらないにもかかわらず、異物反応を低減させることができ、高い生体親和性が得られる。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、変曲点から表面までの平衡膨潤倍率が４０以上の粒子であることが好ましい。すなわち、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の重心から表面方向への長さを横軸（Ｘ）に、所定の横軸位置での平衡膨潤倍率を縦軸（Ｙ）にプロットして得られた、平衡膨潤倍率の変化曲線において、変曲点が存在する横軸位置（Ｘｃ）から、表面に対応する横軸位置（Ｘｓ）までの間の、平衡膨潤倍率の値（Ｙ）が４０以上であることが好ましい。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における表面部分の平衡膨潤倍率が上記範囲であることにより、粒子の表面が、ヒアルロン酸溶液にさらに近い軟らかさを確保できるため、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減された、高い生体親和性を有する粒子となる。
　本発明はまた、中心より表面の平衡膨潤倍率が高く、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在するコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子であって、変曲点から表面までの平衡膨潤倍率が６５以上である、コアシェル型ヒアルロン酸ゲル粒子を提供する。
　上記コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、その表面がヒアルロン酸溶液に近い軟らかさを有しており、分子構造はほとんど変わらないにもかかわらず、異物反応を低減させることができ、高い生体親和性が得られる。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、変曲点から表面までの距離が５μｍ以上であることが好ましい。すなわち、横軸位置（Ｘｃ）から横軸位置（Ｘｓ）までの長さが、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子において、５μｍ以上であることが好ましい。
　変曲点から表面までの距離が上記範囲であることから、粒子の表面の軟らかい部分の厚みを確保することができ、粒子の投与後に関節内等において表面が分解しても、内部から新たに平衡膨潤倍率の高い表面部分が現れると考えられ、長期的にヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、高い生体親和性を保持することができる。
　本発明は、上述したコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造する製造方法であって、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子と塩基性物質とを接触させることにより、当該ゲル粒子にコアシェル構造を形成させることを含む、製造方法を提供する。
　このような製造方法で得られるコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、表面がヒアルロン酸溶液に近い軟らかさを有し、生体内で架橋ヒアルロン酸ゲル粒子と認識されにくいため、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、生体親和性が高い。
　本発明はまた、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造する製造方法であって、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面に、当該架橋ヒアルロン酸ゲル粒子よりもヒアルロン酸の架橋密度が低い架橋ヒアルロン酸ゲルのシェルを形成させることを含む、製造方法を提供する。
　このような製造方法で得られるコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子もまた、表面がヒアルロン酸溶液に近い軟らかさを有し、生体内で架橋ヒアルロン酸ゲル粒子と認識され難いため、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、生体親和性が高い。
　本発明はさらに、上記コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を含む医用材料を提供する。
　このようなコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を含む医用材料は、例えば当該医用材料を生体内に投与した場合でも、生体内で異物と認識され難くなることから炎症作用等が起こりにくく、ヒアルロン酸溶液を含む医用材料と同様に高い生体親和性を確保することができる。
　医用材料は、関節注入剤、薬理活性物質の担体、創傷被覆剤、組織置換型生体組織修復剤、癒着防止剤、止血剤、人工細胞外マトリクス、及びダーマルフィラーから選ばれるいずれかとして適用可能である。
　このような医用材料は、生体内等で異物として認識され難くなることから炎症作用等が起こりにくく、ヒアルロン酸溶液を含む医用材料と同様に高い生体親和性を確保することができる。以上のような観点から、特に関節注入剤として用いた場合に、顕著な効果が発揮されることからより好ましい。
　本発明によれば、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、生体親和性の高い架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を提供することが可能になる。
　また、当該ゲル粒子の製造方法及び当該ゲル粒子を含む医用材料を提供することも可能になる。
本発明の一実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のメチレンブルー染色後に、ニグロシン水溶液で陰性染色した時の顕微鏡写真である。 本発明の一実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子からなる関節注入剤と、ヒアルロン酸製剤との疼痛抑制効果を比較して示すグラフである。 本発明の一実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子からなる関節注入剤と、ヒアルロン酸製剤との疼痛抑制効果を比較して示すグラフである。 本発明の一実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の平衡膨潤倍率の変化曲線を示すグラフである。
　以下、本発明の好適な実施形態について説明するが、本発明は、これらの実施形態に何ら限定されるものではない。
　先ず、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子について説明する。実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在する粒子である。ここで、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、ゲルの状態で粒子形状を有していればよく、必ずしも球状のものに限られない。また、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の中心とは、当該粒子の重心をいい、その位置は顕微鏡イメージ等で特定可能である。「中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在する」とは、縦軸を平衡膨潤倍率とし、横軸を中心から粒子表面に向けた直線距離として（中心を横軸０とする）、平衡膨潤倍率をプロットして得られる変化曲線に変曲点が存在することを意味する。なお、プロットは横軸０．２～１５μｍごと（好ましくは、横軸０．５～５μｍごと）に行うことが好ましく、プロットの近似曲線として変化曲線を得ることが好ましい。
　変化曲線における変曲点は複数存在してもよいが、変曲点は１つ存在することが好ましい。変化曲線の形状としては、横軸の特定の領域において、平衡膨潤倍率の線が急峻に立ち上がった形状が好ましく（立ち上がりの前後は、平衡膨潤倍率はなだらかな変化を示すことが好ましい。すなわち、変曲点が１つ存在し、この変曲点の前後において、変化曲線の傾きの変化率が正から負に変化することが好ましい）、この特定領域の間に変曲点が存在する。そしてこの変曲点よりも内側の粒子部分を「コア」、外側の粒子部分を「シェル」と呼ぶことができる。なお、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の中心から表面までの直線は複数観念できるが、その直線の一つを選んでそれを横軸とし、平衡膨潤倍率が上述のとおり変化すればよい。
　架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の平衡膨潤倍率は、共焦点顕微レーザーラマン分光法により算出することができる。共焦点顕微レーザーラマン分光法により、ゲル粒子内の特定の微小範囲におけるヒアルロン酸濃度を分析し、平衡膨潤倍率が既知のサンプルを指標とすることで、当該特定の微小範囲における平衡膨潤倍率を算出することができる。また、ゲル粒子内の任意の特定の微小範囲における平衡膨潤倍率を算出することができることから、共焦点顕微レーザーラマン分光法による平衡膨潤倍率の算出、及び一定の微小範囲の移動を繰り返すことで、ゲル粒子内部における平衡膨潤倍率の挙動変化を観察することもできる。
　測定は二段階に分けられる。一段階目は、水系溶媒中（緩衝液中）で平衡膨潤状態にあるゲル粒子内部の特定の微小範囲を分析することで得られる水に由来するピークのラマン強度と、ヒアルロン酸に由来するピークのラマン強度の比率から、ヒアルロン酸濃度と相関のある数値を算出する段階である。二段階目は、平衡膨潤倍率が既知のサンプルを用いて、平衡膨潤倍率とヒアルロン酸濃度と相関のある数値の検量線を作成し、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子内の特定の微小範囲におけるヒアルロン酸濃度と相関のある数値を基に、平衡膨潤倍率を算出する段階である。より具体的には、光学顕微鏡像から架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における０．５～５μｍの範囲の測定部分を指定し、得られたスペクトル図より水のＯ－Ｈ結合に由来する波数（３４２０ｃｍ－１）に対するヒアルロン酸のＣ－Ｈ結合に由来する波数（２９４０ｃｍ－１）のラマン強度比を求め、下記式（１）により算出することができる。
　平衡膨潤倍率の計算値＝[（ＨＯ－Ｈ／ＨＣ－Ｈ）－検量線の切片]／検量線の傾き
・・・（１）
（ＨＯ－Ｈ：３４２０ｃｍ－１のラマン強度、ＨＣ－Ｈ：２９４０ｃｍ－１のラマン強度）
　架橋ヒアルロン酸ゲル粒子全体の平衡膨潤倍率は、水系溶媒中（緩衝液中）で平衡膨潤状態にあるゲル粒子を濾過によって取り出した際のゲル粒子の体積と、当該ゲル粒子をさらに乾燥させた際の体積の倍率により表される。
　上記平衡膨潤倍率は、濾過によって水系溶媒中（緩衝液）を除去した際の架橋ヒアルロン酸ゲルの湿潤重量と、さらに乾燥させた際の架橋ヒアルロン酸ゲルの重量の比（Ｑｗ）と密度を用いて、下記式（２）により算出することができる。
　平衡膨潤倍率＝１＋（ρ／ρ０）×（Ｑｗ－１）・・・（２）
（ρ：架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の密度、ρ０：水系溶媒（緩衝液）の密度）
　濾過によって水系溶媒（緩衝液）を除去する方法は特に限定されないが、例えば遠心式フィルタユニットを用いた遠心濾過法、メンブランフィルタを用いた減圧濾過法等を適宜用いることができる。
　平衡膨潤倍率は、溶媒の塩濃度やｐＨ、温度、膨潤時間等により影響を受けるため、１０ｍＭリン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ６．０）で、ＮａＣｌ濃度は０．９ｗｔ％のものを用い、５℃で１日間膨潤させ、平衡膨潤状態に到達した後に測定する。
　なお、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の組成及び平衡膨潤倍率の測定法によれば、変曲点における平衡膨潤倍率は、２０～８０の範囲（特には、４０～６０の範囲であり、５０程度）となり得る。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子においては、表面から深さ８００ｎｍまでのプローブ押込み力が２０ｎＮ以下である。ここで、深さ方向は、表面から中心（重心）に向けた方向とすることが好ましい。また、プローブ押込み力とは、走査型プローブ顕微鏡を用いて測定される弾性として測定される。すなわち、水系溶媒中（緩衝液中）で平衡膨潤状態にある架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を試料台におき、上方より、先端に１０μｍ径の（球形）ガラス粒子を取り付けたコロイダルプローブを、架橋ヒアルロン酸ゲル表面から深さ８００ｎｍまで押込んで、プローブにかかる力（プローブ押込み力）として測定される。
　押込み力は１０ｎＮ以下であることが好ましい。押込み力が２０ｎＮ以下ということは、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子表面の弾性が低いことを意味し、生体内に投与した場合でも、生体内で異物として認識されにくくなることから、炎症作用が抑制され、ヒアルロン酸溶液と同様に高い生体親和性を確保することができる。
　変曲点から表面における点まで、すなわちシェルの平衡膨潤倍率は４０以上であることが好ましく、５０以上であることがより好ましく、６５以上であることがさらに好ましい。コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のシェルの平衡膨潤倍率が上記範囲であることによって、当該粒子の表面がヒアルロン酸溶液に近い軟らかさを確保できるため、生体内で異物と認識され難く、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減された、高い生体親和性を有する粒子を得ることができる。以上のような観点からすれば、上記平衡膨潤倍率は、７５以上であることが特に好ましい。なお、シェルの平衡膨潤倍率は、上述した変曲点における平衡膨潤倍率よりも高い値を示す。
　変曲点から前記表面における点までの、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における厚み方向の距離が５μｍ以上であることが好ましい。当該距離は、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における少なくとも１か所以上について、中心から表面に向けて特定の微小範囲における平衡膨潤倍率を順次測定した場合の、前記変曲点から前記表面における点までの移動距離であればよい。シェルの厚みが上記範囲であることによって、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子が生体内で異物として認識されにくくなり、ヒアルロン酸溶液と同様に高い生体親和性を確保できる。また、当該ゲル粒子を投与した後に、関節内等で平衡膨潤倍率の高いシェル表面部分が分解しても、内部から新たに平衡膨潤倍率の高いシェル表面部分が生成するため、長期的にヒアルロン酸溶液と同様に高い生体親和性を維持することができる。以上のような観点からすれば、上記シェルの厚みは、１０μｍ以上であることがより好ましい。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のシェルの厚みは、コアのみを染色したコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の顕微鏡観察により、外殻の透明部分の厚み方向の長さとしても測定することができる。具体的には、染色されたコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲルの画像をデジタルマイクロスコープで撮影し、当該ゲル粒子表面からコアとシェルの境界までの距離を、ゲル粒子１個あたり１点以上測定する。この測定をゲル粒子１００個に対して行い、その平均値からシェルの厚みを算出することができる。
　染色は、ヒアルロン酸を染色できる公知のいずれの方法でも可能であるが、メチレンブルー又はアクリジンオレンジによる染色が好ましい。さらに、透明なシェルと水系溶媒の境界を判断しやすくするため、水系溶媒のみをニグロシン等で陰性染色することがより好ましい。具体的には、水系溶媒中（緩衝液中）で平衡膨潤状態にあるコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子に、メチレンブルー水溶液を添加し、十分撹拌することで染色を行う。続いて、サンプルを試料台に乗せ、デジタルマイクロスコープによる観察の直前に、ニグロシン水溶液を添加することで陰性染色を行うことができる。
　続いて、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造する方法について説明する。
　本発明の実施形態において、ヒアルロン酸は、動物組織から抽出したものでも、醗酵法で製造したものでも、その起源を問うことなく使用することができる。
　醗酵法で使用する菌株は、自然界から分離されるストレプトコッカス属等のヒアルロン酸生産能を有する微生物、又は特開昭６３－１２３３９２号公報に記載したストレプトコッカス・エクイＦＭ－１００（微工研菌寄第９０２７号）、特開平２－２３４６８９号公報に記載したストレプトコッカス・エクイＦＭ－３００（微工研菌寄第２３１９号）のような高収率で安定したヒアルロン酸を生産する変異株が望ましい。
　ヒアルロン酸は、例えばナトリウム、カリウム、又はリチウム塩のような、本技術分野において許容される塩の形態で使用することもできる。
　架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、ヒアルロン酸の自己架橋であるエステル構造を有する自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を使用することができる。
　自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、ヒアルロン酸と、ヒアルロン酸濃度を５質量％以上にする水、及びヒアルロン酸のカルボキシル基と等モル以上の酸成分とを共存させ、該共存状態を低温で保持することにより得られる。
　ヒアルロン酸に共存させる酸は特に限定されず、公知のいずれの酸も使用できるが、ヒアルロン酸よりも強い酸であることが好ましく、無機酸であることがより好ましい。さらに好ましくは、塩酸、硝酸、又は硫酸であり、その中でも、ハンドリング等に優れた硝酸が特に好ましい。共存させる酸の量は特に限定されないが、ヒアルロン酸のカルボキシル基と等モル以上の酸成分の量とすることができる。ヒアルロン酸に共存させる酸は、ヒアルロン酸が全体の１５質量％以上、好ましくは、２０質量％以上４０質量％以下で含まれるような量で保持することが好ましい。この保持は、－３０℃以上２５℃以下の温度で、１時間～２０日間のいずれの期間でもよい。特に好ましくは、－２５℃以上―５℃以下の温度で、１日～１５日間である。ヒアルロン酸と、ヒアルロン酸に共存させる酸との混合は、共存させる酸にヒアルロン酸を全体の１５質量％以上、好ましくは２０質量％以上となるように加え、共存させる酸を均一な状態にすることで行うことが好ましい。このほか、ヒアルロン酸に共存させる酸を全体の１５質量％以上、好ましくは２０質量％以上となるよう含浸させることもでき、さらに、低濃度で調整したヒアルロン酸の酸性水溶液を、ヒアルロン酸が、全体の１５質量％以上、好ましくは２０質量％以上となるように濃縮することもできる。
　得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液中での濃度は、例えば、以下のように定量することができる。まず、自己架橋ヒアルロン酸ゲル懸濁液を蒸留水で希釈し、水酸化ナトリウム水溶液を添加し、室温にて静置することで、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のエステル結合を加水分解し溶解する。次に、この溶液に塩酸を添加し中和した後、当業者に既知のカルバゾール硫酸法によりグルクロン酸濃度を定量する。このグルクロン酸濃度と、既知濃度のヒアルロン酸を標準物質として、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液中での濃度を算出することができる。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の製造方法としては、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における表面部分の架橋構造を一部分解して軟らかくシェル化する表面処理法、又は当該粒子の表面に軟らかいシェルを形成させるシェル合成法が挙げられる。このような製造方法によって得られるコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、生体内で異物として認識されにくくなることから炎症作用を抑制させることができ、ヒアルロン酸溶液と同様に高い生体親和性を確保できる。
　上記表面処理法は、ヒアルロン酸の架橋構造を特異的に分解できる化学処理によって架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面部分の架橋を一部切断し、ヒアルロン酸の架橋密度を低下させることで、平衡膨潤倍率を増加させる、すなわち軟らかくシェル化させる方法である。これにより、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子にコアシェル構造を形成させることができる。ヒアルロン酸の架橋構造と、特異的に分解できる化学処理との組合せは任意であるが、例えばヒアルロン酸の自己架橋であるエステル構造と塩基性物質による処理の組合せが挙げられる。この組合せによるコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の製造方法は、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を原料とし、酸性溶液で膨潤させた後、水と水溶性有機溶媒との混合液中で、該ゲル粒子の表面と塩基性物質とを接触させる方法である。塩基性物質は、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面から内部へ浸透すると同時に、エステル結合を分解し、浸透した部分の平衡膨潤倍率を増加させる。
　自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を膨潤させる酸性溶液は特に限定されず、公知のいずれの酸も使用することができるが、水溶性の酸であることが好ましく、無機酸の強酸であることがより好ましい。また、酸性溶液の濃度は特に限定されるものではないが、好ましくは自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のカルボキシル基の等モル以上の濃度である。酸性溶液の量も特に限定されるものではないが、例えば、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のカルボキシル基に対して、０．１～２０倍モルであることが好ましく、０．３～５倍モルであることがより好ましい。
　混合液における水溶性有機溶媒は、特に限定されず、公知のいずれの水溶性有機溶媒も使用できるが、グリセリン、ジメチルスルホキシド、エタノール、メタノール、エチレングリコール、ポリエチレングリコールが好ましく、その中でもグリセリンが特に好ましい。
　混合液における上記水溶性有機溶媒の比率は、特に限定されないが、５０％以上であることが好ましく、６０～９０％であることがより好ましく、７０～８０％であることが特に好ましい。
　塩基性物質は、特に限定されず、公知のいずれの塩基性物質も使用できるが、水と水溶性有機溶媒との混合液に溶解する塩基性物質であることが好ましく、４級アンモニウムヒドロキシドであることがより好ましい。このような塩基性物質としては、ヘキサデシルトリメチルアンモニウムヒドロキシド、ジメチルジステアリルアンモニウムヒドロキシド、テトラブチルアンモニウムヒドロキシドがさらに好ましく、その中でも、両親媒性であるヘキサデシルトリメチルアンモニウムヒドロキシドであることが特に好ましい。塩基性物質の量は特に限定されないが、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を膨潤させる酸性溶液の１～３０倍モルの量であることが好ましく、２～１０倍モルであることがより好ましい。
　上記シェル合成法は、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面に、当該架橋ヒアルロン酸ゲル粒子よりもヒアルロン酸の架橋密度の低い架橋ヒアルロン酸ゲルのシェルを形成させる方法である。形成されるシェルの合成方法は、特に限定されず、公知のいずれの架橋ヒアルロン酸ゲルの合成法でもコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造することができる。
　具体的には、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の存在下で、ヒアルロン酸溶液、架橋基を有する化合物、及び架橋剤を混合する、又は架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の存在下で、架橋基で修飾されたヒアルロン酸溶液、及び架橋剤を混合することで、該ゲル粒子の表面に当該架橋ヒアルロン酸ゲル粒子よりもヒアルロン酸の架橋密度の低い架橋ヒアルロン酸ゲルのシェルを形成させる。
　ヒアルロン酸、又は架橋基で修飾されたヒアルロン酸を溶解する溶液は、特に限定されないが、水と水溶性有機溶媒との混合液が好ましく、この場合、特に水溶性有機溶媒がＴＨＦ、ジオキサン、アセトン、エタノール等であることがより好ましい。
　架橋基で修飾されたヒアルロン酸とは、両端にヒアルロン酸と結合する能力を有する構造を持つ架橋基の一方が、ヒアルロン酸と結合した構造を持つ修飾ヒアルロン酸のことで、さらに架橋基を有する化合物を追加しなくとも、単独で架橋剤によりゲル化する能力を有する修飾ヒアルロン酸のことである。
　架橋基を有する化合物は、特に限定されず、ヒアルロン酸を架橋することができる公知のいずれの架橋基を有する化合物でも使用できるが、穏やかな中性の反応条件で架橋反応を進行させることが可能な化合物が好ましい。
　架橋剤は、特に限定されず、ヒアルロン酸を架橋できる公知のいずれの架橋剤でも使用できるが、穏やかな中性の反応条件で架橋反応を進行させることが可能な架橋剤が好ましい。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、一般の医用材料及びヒアルロン酸が用いられる分野であれば特に制限なく用いることができるが、例示するとすれば、例えば、関節注入剤、薬理活性物質の担体、創傷被覆剤、組織置換型生体組織修復剤、癒着防止剤、止血剤、人工細胞外マトリクス、ダーマルフィラー、その他診断又は治療に用いる医療器具、医療用具等の生物医学的製品又は医薬組成物への使用等が挙げられる。その中でも特に、関節注入剤として使用した場合に、顕著な効果が発揮される。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、生体内で異物として認識されにくくなることから炎症作用を抑制することができ、ヒアルロン酸溶液と同様に高い生体親和性を確保できる。本発明の実施形態に係るコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の高い生体親和性とは、より具体的には、ウサギ膝関節内で当該ゲル粒子の局所刺激性により増加する白血球数を指標として分析した場合、回収した膝関節液サンプル希釈液６ｍＬにおいて、１００×１０４個／ｍＬを越さない程度の白血球数であることが好ましく、１０×１０４個／ｍＬ以下の白血球数であることがより好ましい。
　以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
（比較例１）
　２Ｎの硝酸７５ｇを自公転型混練り装置（プライミクス社製）に入れ、－１０℃に冷却し、シャーベット状の硝酸凍結物を得た。この硝酸凍結物に、粘度平均分子量２２０万のヒアルロン酸ナトリウム粉末２２．５ｇ（水分含量１０％）を投入し、－１０℃、１００ｒｐｍで均一なゴム状になるまで１時間練り混ぜた（ヒアルロン酸ナトリウム２０．８質量％）。得られたヒアルロン酸と硝酸の混合物を－２０℃に設定した冷凍庫に１０日間保存した。その後、５℃の純水１Ｌにこの混合物を投入し、１時間ごとに２回純水を交換した。その後さらに、５℃、５０ｍＭのリン酸緩衝液１Ｌにこの混合物を投入し、１時間ごとに５回５０ｍＭのリン酸緩衝液を交換し、硝酸が完全になくなるまで中和洗浄を行い、自己架橋ヒアルロン酸ゲルを得た。
　上記で得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲルを中和後３０分間静置し、上清をデカンテーションで除き、沈降した自己架橋ヒアルロン酸ゲルに対して、９倍重量の５０ｍＭリン酸緩衝液を加えた。この自己架橋ヒアルロン酸ゲル懸濁液を高速回転装置に投入し、破砕することで、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液を得た。
　上記で得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液を３０分間静置し、上清をデカンテーションで除いた。残った自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液に対して、９倍重量の生理食塩水を加え、１０分ごとに１０回生理食塩水を交換した。次に、目開きの大きい順にふるい（試験用：鉛フリー、直径：１５０ｍｍ、深さ：６０ｍｍ、目開き：５００μｍ、３５５μｍ、２１２μｍ、１２５μｍ、５３μｍ）で分級し、粒径の異なる６種類の自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液（＞５００μｍ、５００～３５５μｍ、３５５～２１２μｍ、２１２～１２５枚μｍ、１２５～５３μｍ、＜５３μｍ）を得た。
　上記で得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液を、蒸留水及びエタノールで洗浄し、減圧乾燥させることで乾燥した自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。
　また、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の平衡膨潤倍率は以下のように算出した。自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液０．４ｍｌ（溶媒：１０ｍＭリン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ６．０）、塩化ナトリウム濃度０．９ｗｔ％）を、遠心式フィルタユニット（０．４５マイクロメートル孔径、ミリポア社製）を用いて５℃、２０００ｒｐｍ、３０分間遠心分離して溶媒を除去し、溶媒除去した自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の重量を測定した。さらに当該粒子を２０時間乾燥させ、乾燥した自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の重量を測定した。両測定値から、平衡膨潤倍率を算出したところ、得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の平衡膨潤倍率は５．９であった。
（実施例１）
　比較例１で得られた乾燥した自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子（０．１ｇ、５００～３５５μｍ）を０．５Ｍ塩酸（０．７ｍＬ）で、室温（２０～２５℃）下、３分間膨潤させた。２５％ヘキサデシルトリメチルアンモニウムヒドロキシド／メタノール溶液（１．６５ｍＬ）と８０％グリセリン水溶液（４５ｍＬ）の混合液を添加し、８分間撹拌後、６Ｍ塩酸（０．５ｍＬ）を添加し中和した。
　７０％エタノール及び生理食塩水で各５回洗浄し、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を生理食塩水懸濁液の状態で得た。
　得られたコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の収率は以下の通り行った。得られたコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液全量の上清を除き、蒸留水で薄めた。１Ｎ水酸化ナトリウム（２ｍＬ）を加え、２分間撹拌をすることで溶解させ、１Ｎ塩酸（２ｍＬ）を加えて中和した。得られたヒアルロン酸溶液のヒアルロン酸濃度をカルバゾール硫酸法で算出し、ヒアルロン酸溶液量と自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子原料の量から収率を算出したところ、９２％であった。
（実施例２）
　８０％グリセリン水溶液を８０％ジメチルスルホキシド水溶液に変更し、撹拌時間を８分間から３分間に変更した以外は実施例１と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は８２％であった。
（実施例３）
　８０％グリセリン水溶液を７０％エタノール水溶液に変更し、撹拌時間を８分間から３分間に変更した以外は実施例１と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は６１％であった。
（実施例４）
　０．５Ｍ塩酸を０．５Ｍ酢酸に変更した以外は、実施例３と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は３％であった。
（実施例５）
　撹拌時間を８分間から１２分間に変更した以外は、実施例１と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は８９％であった。
（実施例６）
　２５％ヘキサデシルトリメチルアンモニウムヒドロキシド／メタノール溶液を２５％ジメチルジステアリルアンモニウムヒドロキシド／メタノール溶液に変更した以外は、実施例３と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は７７％であった。
（比較例２）
　７０％エタノール水溶液を１０％エタノール水溶液に変更した以外は、実施例３と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は５４％であった。
（比較例３）
　０．５Ｍ塩酸による膨潤を行わなかった以外は、実施例３と同様の方法でコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を得た。収率は７０％であった。
（参考例１）
　ヒアルロン酸関節製剤「スベニール」（中外製薬（株）製；粘度平均分子量２００万、ヒアルロン酸濃度１ｗ／ｖ％、商品名）を用いた。
（試験例１）
　実施例１～６並びに比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面の弾性は、走査型プローブ顕微鏡による表面のプローブ押込み力から分析した。なお、測定条件を以下のとおりとした。
走査型プローブ顕微鏡：ＳＰＭ－９７００型（島津製作所社製、商品名）
プローブ：１０μｍ径の（球形）ガラス質粒子を取り付けたコロイダル型プローブ（ＣＰ－ＣＯＮＴ－ＢＳＧ－Ｂ、東陽テクニカ社製）
押込み距離：８００ｎｍ
測定回数：３回
測定温度：２３±２℃
　各架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の生理食塩水懸濁液を装置内の試料台に採取し、装置のステージ上においた。光学顕微鏡で架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を観察しながら、プローブを測定位置の上方にセットし、真下へプローブを３０００ｎｍ程度移動させながら、フォースカーブを取得した。測定で得られたフォースカーブより、粒子表面から押込み距離８００ｎｍまでの間にプローブがたわんだ距離に、プローブのバネ定数を乗じて力の大きさを算出し、弾性とした。
（試験例２）
　実施例１～６並びに比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子における平衡膨潤倍率は、ヒアルロン酸濃度を指標とした共焦点顕微レーザーラマン分光装置を用いて架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の平衡膨潤倍率に相当する計算値として分析した。
　各架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の生理食塩水懸濁液をスライドガラス上に採取し、カバーガラスで懸濁液表面を覆い、測定用試料とした。試料を共焦点顕微レーザーラマン分光装置内のＸＹＺ３軸自動ステージ上に乗せ、光学顕微鏡を用いて架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の外部近傍に観測開始点をセットした。粒子の重心に向かって、水平方向又は垂直方向に直線的に移動と測定を繰り返す自動測定機能を用いて、０．５～５μｍの微小範囲におけるラマンスペクトルを順次取得した。なお、測定条件を以下のとおりとした。
共焦点顕微レーザーラマン分光装置：Ａｌｍｅｇａ－ＸＲ（サーモフィッシャーサイエンティフィック社製、商品名）
レーザ波長：５３２ｎｍ
露光時間：１．０秒
露光回数：８回
測定波数：４２３２～１１６ｃｍ－１
測定温度：２５±２℃
　ラマンスペクトルから以下に示す式（３）を用いて、０．５～５μｍの微小範囲の平衡膨潤倍率を算出した。平衡膨潤倍率の計算値を順次プロットし、シグモイド関数による近似曲線を導き出し、その近似曲線における変曲点の位置、すなわちコアとシェルの境界から、表面（上記ラマンスペクトルにより算出された平衡膨潤倍率に大きな変化（ノイズ）が出始め、平衡膨潤倍率の移動平均値が一定となった点としても判断できる。）までの平均値を、シェルの平衡膨潤倍率として算出した。
　平衡膨潤倍率の計算値＝[（ＨＯ－Ｈ／ＨＣ－Ｈ）－３．１５９８]／０．２９４７
・・・（３）
（ＨＯ－Ｈ：３４２０ｃｍ－１のラマン強度、ＨＣ－Ｈ：２９４０ｃｍ－１のラマン強度）
　なお、平衡膨潤倍率のプロットから、シグモイド関数による近似曲線を導き出し、それを平衡膨潤倍率の変化曲線とした。得られた変化曲線のグラフを図４に示す。この変化曲線において変曲点を求めた。また、表面の位置については、上述したとおりの手法により判断した。
　さらに、シェルと外部の境界の判断が難しい場合、試料から生理食塩水を除き、代わりに水のＯ－Ｈ結合に由来する波数（３４２０ｃｍ－１）にピークを持たない非水溶性液体（例えば、パラフィン等の炭化水素化合物）で懸濁することで、シェルと外部との平衡膨潤倍率の計算値を大きく変化させ、平衡膨潤倍率を算出した。
（試験例３）
　実施例１～６並びに比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、及び比較例１の自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の生理食塩水懸濁液５００μＬに対して、メチレンブルー１％水溶液５μＬを添加した。室温にて１５分以上静置した後、スライドガラス上に７０μＬ採取し、さらにニグロシン１％水溶液１μＬを加え、デジタルマイクロスコープ（ＶＨＸ－５００Ｆ；キーエンス社製、商品名）を用いて架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の顕微鏡画像を撮影した。得られた画像を図１に示す。
　得られた顕微鏡画像から、メチレンブルーの染色可否境界をコアとシェルの境界、ニグロシンの染色可否境界をシェルと生理食塩水の境界として、１粒子につき一か所のシェルの厚みを測定した。計１００個のゲル粒子のシェルの厚みの平均値を算出し、この値をシェルの厚みとした。
　上記の方法において、メチレンブルー１％水溶液をアクリジンオレンジ塩酸塩１％水溶液に変更して同様の方法によってシェルの厚みを算出した。
（試験例４）
　実施例１～６並びに比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、及び比較例１の自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子について、試験例２と同様に平衡膨潤倍率を算出し、コアとシェルの境界から、シェル表面と外部である生理食塩水の境界までの分析移動距離を、シェルの厚みとして算出した。
（試験例５）
　実施例１～６並びに比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、比較例１の自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子、及び参考例１のヒアルロン酸溶液について、組織親和性を評価するため、ウサギ膝関節内で各試料による局所刺激性により増加する白血球数を指標として分析を行った。
　動物評価のための注射剤用コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を含む組成物の調整は以下のようにして行った。
　実施例１～６及び比較例２～３で得られたコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液を、全体積に対する架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の乾燥重量（濃度）が３ｗ／ｖ％になるように以下のように調整した。
　コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の濃度の定量は、サンプル５０ｍｇを蒸留水１．５５ｍｌで希釈し、そこに１Ｎ水酸化ナトリウム溶液を０．２ｍｌ添加し、室温にて３０分静置することで、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子のエステル架橋を加水分解し、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を溶解した。さらに、１Ｎ塩酸０．２ｍｌを添加し、中和した後、カルバゾール硫酸法により、既知濃度のヒアルロン酸（粘度平均分子量１９０万）を標準物質として、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の濃度を計算した。この定量結果をもとに、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の濃度が、３ｗ／ｖ％となるように調整し、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の動物評価用の組成物を得た。
　動物評価のための注射剤用自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を含む組成物の調整は以下のようにして行った。
　比較例１で得られた自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の懸濁液を、５℃、ｐＨ７．０の１０ｍＭリン酸緩衝生理食塩水に投入し、一時間おきに１０ｍＭリン酸緩衝生理食塩水を交換することを２回繰り返した。この架橋ヒアルロン酸組成物の全体積に対する、自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の乾燥重量（濃度）が３ｗ／ｖ％になるように以下のように、上述したコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の濃度の定量と同様の方法で行った。
　１日以上の馴化期間を置いた後、実施例１～６又は比較例２～３の注射剤０．１ｍＬ／ｋｇを片側の膝関節腔内に、比較例１又は参考例１の注射剤０．１ｍＬ／ｋｇを反対側の膝関節腔内に１ｍＬ注射筒（（株）テルモ製；テルモシリンジ１ｍＬツベルクリン用）及び２０又は２１Ｇ注射針（（株）テルモ製；テルモ注射針２０Ｇ又は２１Ｇ）を用いて投与した。投与液量は投与日に測定した体重に基づく液量換算により個別に算出した。
　膝関節液回収のため投与１日後に、ウサギを放血致死法により屠殺した。その後、生理食塩水を膝関節腔内に１ｍＬ注射筒及び１８Ｇ注射針を用いて注入した。膝関節をよく動かした後に、１ｍＬ注射筒及び１８Ｇ注射針を用いて膝関節液を回収した。この操作を４回繰り返し、約２ｍＬの膝関節液サンプルを得た。
　回収した膝関節液サンプルを生理食塩水で３倍に希釈し、よく振り均一に懸濁後１００μＬ採取し、染色液（（株）武藤化学；ラボステイン、商品名）２μＬを添加し白血球を染色した。染色した関節液１５μＬをノイバイエル血球計算盤に採取し、顕微鏡を用いて１×１×０．１ｍｍ領域内の白血球数を測定した。４区画の平均値を各膝関節の白血球数とし、生体親和性の指標となる各注射剤の白血球数は、上記膝関節数３以上の平均白血球数として求めた。
　表１に示すように、実施例１～６のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子は、比較例１の自己架橋ヒアルロン酸ゲル粒子及び比較例２～３のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子よりも生体親和性が向上しているのが分かり、参考例１のヒアルロン酸溶液と同様であることが分かった。これにより、ゲル粒子におけるシェルの有無、シェルの厚み及び軟らかさは、生体親和性に重要であることが分かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（試験例６）
　実施例３～４のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子及び参考例１のヒアルロン酸溶液の関節腔内注射が疼痛に及ぼす作用を、ウサギの膝関節半月板部分切除による実験的変形性関節症モデル動物を用いて確認した。
　動物としては、１３週齢のＫｂｌ：ＪＷ（ＳＰＦ）系ウサギ（雄）を準備し、評価装置に対する馴化として、小動物用鎮痛評価装置Ｉｎｃａｐａｃｉｔａｎｃｅ　Ｔｅｓｔｅｒ（Ｌｉｎｔｏｎ　Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ社製、商品名）の本体容器（ホルダー）に入れ、５秒間静止させる操作を行った。
　動物は、可動式ラックに装着したブラケット式金属製金網床ケージ（３５０Ｗ×５００Ｄ×３５０Ｈｍｍ）に個別に収容し、温度２５±３℃、湿度５０±２０％、換気回数１２～１８回／時間、照明時間８：００～２０：００（明１２時間、暗１２時間）の環境下で飼育した。試料は、ステンレス製給餌器により、実験動物用固形資料ＲＣ４（オリエンタル酵母工業社製）を１５０ｇ／日の制限給餌として与え、飲料水はポリプロピレン製給水瓶（先管ステンレス製）により水道水を自由に与えた。動物の個体識別は耳介にマジックで個体識別番号を記入して識別し、ケージには群分け前は性別及び個体識別番号を記入したカードを、群分け後は試験番号、投与群、性別、動物番号、手術日、投与日、部検日及び個体識別番号を記入したカードを付けた。
　半月板部分切除手術日の前日に、群分けを行った。群分け日に、全例の体重と両後足重量配分を測定した。測定した両後足重量配分より左後足重量配分比（（左荷重／両側合計荷重）×１００（％））を算出した。左後足重量配分比を基準とし、個体値が平均値に近い順に選択した。選択した動物は、左後ろ脚重量配分比による層別連続無作為化法を用いて各群に割り付けた。左後足重量配分比の平均値が各群で同様の値を示し、群間に差がないことを確認後、耐重についても平均値が各群で同様の値を示し、群間に差がないことを確認した。
　半月板部分切除手術は群分け日の翌日に行い、半月板部分切除手術日を術後０日と定義した。１４～１５週齢の動物を用い、参考文献１～３に記載の方法を参考にして、半月板部分切除変形性関節症モデル動物を作製した。
　例えば参考文献１にはＫＢＬ：ＪＷ家兎（１３週齢、雌）３２羽を用意し、ケタミン及びキシラジン麻酔下に、左側膝関節の外側側副靭帯及び種子骨靭帯を切離し、半月板を３．０～４．０ｍｍ部分切除し、２６Ｇの注射針を用いて、膝関節内に２週間に５回の割合で、Ａ及びＢ群の各８羽には高分子量ＨＡ溶液を注入し、対照のＣ群８羽には生理食塩水を注入し、Ｃ群及びＤ群にはロキソニンを毎日経口投与し、疼痛抑制効果および軟骨変性防止効果を評価することが記載されている。また、参考文献２には、ニュージーランド白色家兎（耐重２～３ｋｇ）７２羽を用意し、麻酔下に、左側膝関節の靭帯を切断し、半月板を３～４ｍｍ部分切除し、膝関節内に週２回の割合で期間２及び４週間で、Ａ群の４８羽には分子量１９０万の１～０．０１％ＨＡ溶液を注入し、Ｂ群の１２羽には分子量８０万の１～０．０１％ＨＡ溶液を注入し、Ｃ群の１２羽には生理食塩水を注入し、屠殺後、膝関節を採取し薬効を評価することが記載されている。また、参考文献３には、日本白色家兎（雌、２．５ｋｇ）１５羽をペントバルビタールナトリウム麻酔下に、左側膝関節の外側側副靭帯及び種子骨靭帯を切断し、半月板を３．０～４．０ｍｍ部分切除し、２５Ｇの注射針を用いて膝関節内に週２回の割合で注入し、対照として生理食塩水を同量注入し、屠殺後、膝関節を採取し薬効を評価することが記載されている。
　参考文献１：Ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ　ａｎｄ　Ｃａｒｔｉｌａｇｅ，Ｖｏｌ．１５，Ｎｏ．５，ｐ．５４３－５４９（２００７）
　参考文献２：Ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ　ａｎｄ　Ｃａｒｔｉｌａｇｅ，Ｖｏｌ．４，Ｎｏ．２，ｐ．９９－１１０（１９９６）
　参考文献３：関節外科、第１５巻、第３号、ｐ．９２－９８（１９９６）
　参考文献４：薬理と治療、第２３巻、ｐ．８３３－８４１（１９９５）
　参考文献５：薬理と治療、第３３巻、ｐ．３０３－３１２（２００５）
　参考文献６：整形外科基礎科学、第９巻、ｐ．７７－７９（１９８２）
　参考文献７：整形外科基礎科学、第１１巻、ｐ．１２５－１２７（１９８４）
　参考文献８：Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ　＆　Ｒｈｅｕｍａｔｉｓｍ，Ｖｏｌ．４８，Ｎｏ．７，ｐ．１９２３－１９２９（２００３）
　塩酸ケタミン（三共エール薬品社製；ケラタール筋注用５００ｍｇ、製品名）及びキシラジン（インターベット社製；スキルペ２％注射液、製品名）の大腿部筋肉内注射による併用麻酔下でウサギの左膝関節部を除毛し、北島式固定器（夏目製作所社製）に背位固定した。無菌的に膝蓋の外側直下皮膚に約２ｃｍの切開を加え、外側側副靭帯を露呈させた後、この靭帯を切除した。さらに、膝窩筋起始部の腱を切除することにより外側半月板を露呈させ、半月板のほぼ中央部を３．０－４．０ｍｍに渡り切除した。その後、皮下筋層と皮膚をそれぞれ結節縫合し、アンピシリン（明治製菓社製；ビクシリンゾル－１５％、製品名）約０．２ｍＬを大腿部筋肉内に注射した。
　術後４日（疼痛発症日）の両後足重量配分測定後に１回、実施例３～４及び参考例１の注射剤０．１ｍＬ／ｋｇを、手術側（左側）膝関節腔内に１ｍＬ注射筒及び２３Ｇ注射針を用いて投与した。投与液量は投与日に測定した体重に基づく液量換算により個別に算出した。
　両後足重量配分の測定には小動物用鎮痛評価装置Ｉｎｃａｐａｃｉｔａｎｃｅ　Ｔｅｓｔｅｒを用いた。本装置は、本体容器に入れた動物の左右の脚への重量配分を、容器底面に設置したデュアルチャンネルのセンサーパッドにより、左右それぞれの重量をグラム単位で正確に検出し、その値を試験者が設定した時間にて平均化した。本体容器はウサギ用のものを使用した。測定設定時間は動物の静止状態で５秒とした。
　動物をウサギ用本体容器（ホルダー）内に移動し、動物の静止状態で測定し（１度目）、次に動物をホルダーから出し、再度入れて静止状態で測定し（２度目）、この操作を再度繰り返した（３度目）。３度測定した両後足重量配分のそれぞれについて、左右重量（荷重）から左後足重量配分比（％）を下記式（４）により算出した。
　左後足重量配分比（％）＝｛左荷重（ｇ）／（右荷重（ｇ）＋左荷重（ｇ））×１００}・・・（４）
　３度算出した左後足重量配分比（％）の平均値を、測定１回当たりの左後足重量配分比（％）と定義した。この結果を図２及び図３に示す。
　図２及び図３に示すように、実施例３～４のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲルを投与したウサギは、参考例１のヒアルロン酸溶液を投与したウサギよりも疼痛抑制効果が長く保持されていることが分かった。
　本発明によれば、ヒアルロン酸溶液と同程度にまで異物反応が低減され、生体親和性の高いコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を提供することができる。また、当該ゲル粒子の製造方法及び当該ゲル粒子を含む医用材料を提供することもできる。

Claims (9)

  1. 　中心より表面の平衡膨潤倍率が高く、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在するコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子であって、
    　表面から深さ８００ｎｍまでのプローブ押込み力が２０ｎＮ以下である、コアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子。
  2. 　前記変曲点から前記表面までの平衡膨潤倍率が４０以上である、請求項１に記載のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子。
  3. 　中心より表面の平衡膨潤倍率が高く、中心から表面に向けた平衡膨潤倍率の変化曲線に変曲点が存在するコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子であって、
    　変曲点から表面までの平衡膨潤倍率が６５以上である、コアシェル型ヒアルロン酸ゲル粒子。
  4. 　前記変曲点から前記表面までの距離が５μｍ以上である、請求項１～３のいずれか一項に記載のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子。
  5. 　請求項１～４のいずれか一項に記載のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造する製造方法であって、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子と塩基性物質とを接触させることにより、当該ゲル粒子にコアシェル構造を形成させることを含む、製造方法。
  6. 　請求項１～５のいずれか一項に記載のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を製造する製造方法であって、架橋ヒアルロン酸ゲル粒子の表面に、当該架橋ヒアルロン酸ゲル粒子よりもヒアルロン酸の架橋密度の低い架橋ヒアルロン酸ゲルのシェルを形成させることを含む、製造方法。
  7. 　請求項１～４のいずれか一項に記載のコアシェル型架橋ヒアルロン酸ゲル粒子を含む医用材料。
  8. 　関節注入剤、薬理活性物質の担体、創傷被覆剤、組織置換型生体組織修復剤、癒着防止剤、止血剤、人工細胞外マトリクス及びダーマルフィラーから選ばれるいずれかである、請求項７に記載の医用材料。
  9. 　関節注入剤である、請求項７又は８に記載の医用材料。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016181137A1 (en) * 2015-05-11 2016-11-17 Haemostatix Limited Haemostatic compositions

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20180121493A (ko) 2015-12-29 2018-11-07 갈데르마 소시에떼아노님 바이오폴리머의 탈아세틸화 방법
EP3252081A1 (en) * 2016-05-31 2017-12-06 Galderma S.A. Hydrolysis of ester bonds in amide crosslinked glycosaminoglycans
PT3623390T (pt) 2016-05-31 2023-10-27 Galderma Sa Reticulador de hidrato de carbono
GB201616838D0 (en) * 2016-10-04 2016-11-16 Nat Univ Ireland Hyaluronan compositions, and uses thereof in treatment of interstitial cystitis
CN107325306B (zh) * 2017-06-13 2019-10-25 爱美客技术发展股份有限公司 壳聚糖或其衍生物多重交联凝胶和制备方法
KR102369261B1 (ko) * 2017-11-29 2022-03-03 주식회사 파마리서치 이중 가교를 통한 코어-쉘 구조의 히알루론산 겔 및 이의 제조방법
KR102336680B1 (ko) * 2017-11-29 2021-12-08 주식회사 파마리서치 자극의 강도에 따라 변화하는 물성을 가지는 코어-쉘 구조의 히알루론산 겔 및 이의 제조방법
WO2019121688A1 (en) 2017-12-22 2019-06-27 Nestlé Skin Health Sa Injectable gel product
CR20200419A (es) * 2018-02-18 2020-10-23 G & G Biotechnology Ltd Implantes con adhesión mejorada a la cubierta
CN109224127B (zh) * 2018-12-04 2021-02-02 上海其胜生物制剂有限公司 一种天然组成的壳-核结构的自组装胶原刺激微球及其制备方法
EP4069753A1 (en) 2019-12-02 2022-10-12 Galderma Holding SA High molecular weight esthetic compositions
US20230172968A1 (en) * 2020-04-17 2023-06-08 Prohibix Llc Controlled release hyaluronic acid compositions

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63123392A (ja) 1986-11-14 1988-05-27 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒアルロン酸の製造方法
JPH02234689A (ja) 1989-03-09 1990-09-17 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒアルロン酸の製造方法
JP2004181121A (ja) * 2002-12-06 2004-07-02 Denki Kagaku Kogyo Kk 軟骨組織再生用注入剤組成物
WO2012026468A1 (ja) 2010-08-23 2012-03-01 電気化学工業株式会社 架橋ヒアルロン酸組成物及び自己架橋ヒアルロン酸粒子

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5885609A (en) * 1997-05-23 1999-03-23 Northeastern University Biocompatible articles and method for making same
US20060188966A1 (en) 1998-04-02 2006-08-24 Deangelis Paul L Natural, chimeric and hybrid glycosaminoglycan polymers and methods of making and using same
CN1157191C (zh) * 1998-11-10 2004-07-14 电气化学工业株式会社 透明质酸凝胶、其制造方法及含透明质酸凝胶的医用材料
GB9902412D0 (en) * 1999-02-03 1999-03-24 Fermentech Med Ltd Process
US20080193536A1 (en) 2006-08-14 2008-08-14 Alireza Khademhosseini Cell-Laden Hydrogels
KR101460815B1 (ko) * 2006-12-06 2014-11-12 세이가가쿠 고교 가부시키가이샤 관절염 질환 치료의 지속성 효과를 갖는 제약 제제
JP2010528039A (ja) * 2007-05-23 2010-08-19 アラーガン、インコーポレイテッド 被覆されたヒアルロン酸粒子
FR2918377B1 (fr) * 2007-07-05 2010-10-08 Estelle Piron Gel co-reticule de polysaccharides
US8450475B2 (en) * 2008-08-04 2013-05-28 Allergan, Inc. Hyaluronic acid-based gels including lidocaine
IT1395392B1 (it) * 2009-08-27 2012-09-14 Fidia Farmaceutici Geli viscoelastici come nuovi filler
JP2012041512A (ja) * 2010-08-23 2012-03-01 Denki Kagaku Kogyo Kk 架橋ヒアルロン酸含有組成物およびその製造方法
US9340831B2 (en) 2011-09-30 2016-05-17 Rutgers, The State of New Jersey Gel-tethered molecular beacons

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63123392A (ja) 1986-11-14 1988-05-27 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒアルロン酸の製造方法
JPH02234689A (ja) 1989-03-09 1990-09-17 Denki Kagaku Kogyo Kk ヒアルロン酸の製造方法
JP2004181121A (ja) * 2002-12-06 2004-07-02 Denki Kagaku Kogyo Kk 軟骨組織再生用注入剤組成物
WO2012026468A1 (ja) 2010-08-23 2012-03-01 電気化学工業株式会社 架橋ヒアルロン酸組成物及び自己架橋ヒアルロン酸粒子

Non-Patent Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ARTHRITIS & RHEUMATISM, vol. 48, no. 7, 2003, pages 1923 - 1929
CLIN. EXP. RHEUMATOL., vol. 20, 2002, pages 445 - 454
KANSETSU GEKA, vol. 15, no. 3, 1996, pages 92 - 98
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, vol. 15, no. 5, 2007, pages 543 - 549
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, vol. 4, no. 2, 1996, pages 99 - 110
See also references of EP3020733A4 *
SEIKEIGEKA KISO KAGAKU, vol. 9, 1982, pages 77 - 79
SEIKEIGEKAKISO KAGAKU, vol. 11, 1984, pages 125 - 127
YAKURI TO CHIRYO, vol. 23, 1995, pages 833 - 841
YAKURI TO CHIRYO, vol. 33, 2005, pages 303 - 312

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016181137A1 (en) * 2015-05-11 2016-11-17 Haemostatix Limited Haemostatic compositions
US11246958B2 (en) 2015-05-11 2022-02-15 Haemostatix Limited Haemostatic compositions

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