WO2014112145A1 - アルツハイマー病等を含む神経疾患の1,25d3-marrsが関与する治療薬及び治療法 - Google Patents

アルツハイマー病等を含む神経疾患の1,25d3-marrsが関与する治療薬及び治療法 Download PDF

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    • A23V2002/00—Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs

Definitions

  • the present invention relates to a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS, which is one of dihydroxyvitamin D3 (sometimes abbreviated herein as DHVD3) receptors. More specifically, the present invention relates to a therapeutic agent or a therapeutic method for a disease (for example, Alzheimer's disease, etc.) involving neuronal axon dysfunction using the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS. In the present specification, Alzheimer's disease may be abbreviated as AD.
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for the prevention and / or treatment of neurological diseases comprising a therapeutically effective amount of a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS, or a pharmaceutically acceptable salt thereof, Product and its manufacturing method. Furthermore, the present invention relates to a method for preventing or treating neurological diseases in mammals including humans using the compound or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • AD Alzheimer's disease
  • DSM-IV Diagnostic ⁇ and Statistical Manual of Mental Disorders published by the American Psychiatric Association , 4th edition (DSM-IV).
  • AD treatment is limited to symptomatic treatment with symptom ameliorating agents typified by acetylcholinesterase inhibitors, and no fundamental therapeutic agent has been developed to suppress or treat disease progression.
  • symptomatic treatment with symptom ameliorating agents typified by acetylcholinesterase inhibitors
  • no fundamental therapeutic agent has been developed to suppress or treat disease progression.
  • it is necessary to elucidate the pathogenesis of the pathological condition and develop a new method for controlling the pathogenesis.
  • a cholinergic hypothesis, an A ⁇ hypothesis, a tau hypothesis, and the like have been proposed, and a great number of studies have been conducted to identify the causal mechanism of AD.
  • Non-patent Document 1 acetylcholinesterase inhibitors that suppress the degradation of acetylcholine at brain synapses are commercially available as therapeutic agents for AD. Examples include acetylcholinesterase inhibitors such as donepezil, galantamine, rivastigmine and the like.
  • a ⁇ protein which is a metabolite of amyloid precursor protein (hereinafter referred to as APP), is considered to be greatly involved in the degeneration and loss of neurons and the development of cognitive impairment (Non-Patent Documents 2 and 3).
  • Beta secretase and gamma secretase are involved in the formation of A ⁇ protein.
  • a ⁇ (1-38) consisting of 38 amino acids, A ⁇ (1-40) with an increase of 2 amino acids at the C-terminus, and A ⁇ (1-42) etc. in which the C-terminal is increased by 4 amino acids are produced.
  • Non-patent Document 4 is the main constituents of senile plaques (Non-patent Documents 4, 5, 6, and 7). That is, these aggregates eventually change into insoluble deposits and high-density neurite plaque plaques that are pathological features of AD (Non-patent Document 8). Furthermore, it is known that mutations in the APP and presenilin genes found in familial AD increase these A ⁇ proteins (Non-Patent Documents 9, 10, and 11). Therefore, compounds that reduce the production of A ⁇ are expected as AD progression inhibitors or preventives. For this reason, for example, creation of drugs such as A ⁇ antibodies and secretase inhibitors has been attempted for the purpose of reducing A ⁇ production. Several AD therapeutic drug candidates based on this hypothesis are currently in clinical trials, and some effectiveness against AD patients has been reported (Non-patent Documents 12 and 13).
  • AD Alzheimer's disease
  • a symptom improving agent typified by an acetylcholinesterase inhibitor
  • no fundamental therapeutic agent for improving the disease itself has been developed.
  • Development of a method for controlling factors of neurological dysfunction is necessary for the creation of a radical therapeutic agent for AD.
  • an object of the present invention is to provide a completely new mechanism that leads to the fundamental treatment of AD, to provide a compound suitable for the mechanism based on the mechanism, and to provide a treatment method thereof.
  • the present invention is not limited to AD, and it is also an object to provide a compound that leads to a fundamental treatment of a neurological disease caused by a malfunction of a nerve axon, and to provide a treatment method thereof. To do.
  • the present inventors consider that memory ability will be restored if morphological and functional improvements can be given to nerve axons in the brain that are dysfunctional, and so For drug discovery. And, by investigating the mechanism of action of such drugs, we have conducted earnest research based on the idea that “molecules involved in treatment” that could not be predicted from the pathological analysis of AD can be found. .
  • the present inventors conducted further research and studies, and substances having a stimulating activity of 1,25D3-MARRS including diosgenin are not only used for AD but also for neurological diseases such as spinal cord injury, dementia, Parkinson's disease, and brain contusion. It was found that it was effective, and further investigations were made to complete the present invention.
  • the present invention relates to the following.
  • a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof for the prevention and / or treatment of neurological diseases (provided that the disease is Alzheimer's disease or spinal cord injury) Except where the compound is denosamine).
  • the compound according to [1] above and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof, wherein the compound having 1,25D 3 -MARRS stimulating activity is diosgenin and / or diosine.
  • [4] The compound according to any one of [1] to [3] above and / or pharmaceutically acceptable, wherein the neurological disease is Alzheimer's disease, dementia, Parkinson's disease, spinal cord injury or brain contusion. Its salt.
  • [5] Use of the compound according to any one of [1] to [3] above and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof in the manufacture of a medicament for preventing and / or treating a neurological disease.
  • [6] The use according to [5] above, wherein the neurological disease is Alzheimer's disease, dementia, Parkinson's disease, spinal cord injury or brain contusion.
  • a pharmaceutical composition for treating a neurological disease comprising a therapeutically effective amount of the compound according to any one of [1] to [3] and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • the pharmaceutical composition according to [9], wherein the neurological disease is Alzheimer's disease, dementia, Parkinson's disease, spinal cord injury, or brain contusion.
  • the above [9] or [10] further comprising a therapeutically effective amount of one or more compounds known to be useful for the treatment or prevention of diseases, or pharmaceutically acceptable salts thereof.
  • Pharmaceutical composition comprising a therapeutically effective amount of one or more compounds known to be useful for the treatment or prevention of diseases, or pharmaceutically acceptable salts thereof.
  • One or more compounds known to be useful for treating or preventing diseases, or pharmaceutically acceptable salts thereof, are known to be useful for treating or preventing neurological diseases.
  • [15] The compound according to any one of the above [1] to [3], or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and one or more known to be useful for treatment or prevention of neurological diseases
  • the neurological disease is Alzheimer's disease, dementia, Parkinson's disease, spinal cord injury or brain contusion.
  • a kit for use in the prevention and / or treatment of neurological diseases comprising the compound according to any one of [1] to [3] above, or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • kits according to claim 17, comprising the compound according to any one of [1] to [3], or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and a container.
  • Activating 1,25D 3 -MARRS characterized by administering one or more selected from the group consisting of diosgenin, diosgenin derivatives, denosomin, dihydroxyvitamin D3 and pharmaceutically acceptable salts thereof How to make.
  • a method for preventing or treating Alzheimer's disease comprising administering at least one selected from the group consisting of diosgenin, a diosgenin derivative, dihydroxyvitamin D3, and a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • Amyloid plaques, tau precipitates, tau precipitates, PHF-tau, or PIO-tau characterized by administering diosgenin, a derivative thereof, a pharmacologically acceptable salt or ester thereof to a mammal such as a human A method of reducing neurofibrillary tangles.
  • a ⁇ (1-42) -induced axon atrophy characterized by administering diosgenin, a derivative thereof, a pharmacologically acceptable salt or ester thereof to a mammal such as a human. How to suppress.
  • AD Alzheimer's disease
  • a compound and a pharmaceutical composition that lead to a fundamental treatment of a neurological disease caused by a malfunction of a nerve axon, and a method for treating the same. It can also be provided.
  • FIG. 1 shows the effect of diosgenin on object recognition memory impairment and AD pathology in 5XFAD mice (Alzheimer's disease model).
  • FIG. 2 shows the effect of diosgenin on axonal and presynaptic degeneration associated with amyloid plaques.
  • FIG. 3 shows 1,25D 3 -MARRS as a direct target protein of diosgenin.
  • FIG. 4 shows a docking simulation of diosgenin to 1,25D 3 -MARRS.
  • FIG. 5 shows the effect of 1,25D 3 -MARRS knockdown on diosgenin-induced axon outgrowth.
  • FIG. 6 shows the effect of protein kinase inhibitors on diosgenin-induced axon growth.
  • FIG. 1 shows the effect of diosgenin on object recognition memory impairment and AD pathology in 5XFAD mice (Alzheimer's disease model).
  • FIG. 2 shows the effect of diosgenin on axonal and pre
  • FIG. 7 shows the effect of 1,25D 3 -MARRS neutralizing antibody on diosgenin-induced axonal regeneration.
  • FIG. 8 shows the memory enhancement effect by diosgenin in normal mice.
  • FIG. 9 shows the result that the ability of object recognition memory in normal mice was improved by intraperitoneal administration of diosgenin.
  • FIG. 10 shows that in the test in which normal mouse 1,25D 3 -MARRS was inhibited by neutralizing antibody and diosgenin was administered, the improvement of object recognition memory ability by diosgenin administration was not observed. .
  • FIG. 11 shows that denosomin is also an exogenous stimulator of 1,25D 3 -MARRS.
  • FIG. 12 shows the effect of enhancing the object recognition memory ability by oral administration of diosine in normal mice.
  • FIG. 13 shows the effect of enhancing object recognition memory ability by oral administration of diosine in 5XFAD mice.
  • FIG. 14 shows the effect of enhancing hindlimb motor function of diosgenin in
  • One embodiment of the present invention relates to a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof for the prevention and / or treatment of neurological diseases.
  • the 1,25D 3 -MARRS (1,25D 3 - membrane-bound rapid response steroid binding protein, 1,25D 3 -membrane-associated, rapid response steroid-binding protein) is, Pdia3 (protein disulfide isomerase family A , member 3 ), ERp57 (endoplasmic reticulum stress protein 57), GRP58 (Glucose-regulated protein 58), etc., and is one of the receptors for dihydroxyvitamin D3.
  • dihydroxyvitamin D3 is also referred to as DHVD3.
  • the neurological disease is not particularly limited as long as dysfunction of nerve axon is involved, but preferably neurological disease in which 1,25D 3 -MARRS is involved in the treatment, more preferably 1
  • the neurological disease may be a traumatic neurological disease or a neurodegenerative disease, and is not particularly limited, and examples thereof include spinal cord injury, brain contusion, Alzheimer's disease, Parkinson's disease, dementia and the like.
  • the dementia does not include Alzheimer's disease, and preferably includes cerebrovascular dementia, Lewy body dementia, frontotemporal dementia, Pick's disease and the like.
  • the source of the technical idea of the present invention is that, by stimulating and activating 1,25D 3 -MARRS, nerve axons such as intracerebral nerve axons are elongated, and Alzheimer's disease and the like due to the elongation of nerve axons It is found that it is possible to prevent and / or treat other neurological diseases.
  • the compounds having stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS of the present application include pharmaceutically acceptable salts, optical isomers, mixtures of these isomers, solvates, crystal polymorphs and the like.
  • the compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS is not particularly limited, and examples thereof include diosgenin, diosine, DHVD3, and denosomin. Among these, diosgenin and / or diosine are particularly preferable from the viewpoint of availability.
  • the “pharmaceutically acceptable salt” is not particularly limited as long as it forms a pharmaceutically acceptable salt with a compound having 1,25D 3 -MARRS stimulating activity.
  • hydrohalide for example, hydrofluoride, hydrochloride, hydrobromide, hydroiodide, etc.
  • inorganic acid salt for example, sulfate, nitrate, perchlorate
  • organic carboxylates eg acetate, oxalate, maleate, tartrate, fumarate, citrate, etc.
  • organic sulfonates eg Methane sulfonate, trifluoromethane sulfonate, ethane sulfonate, benzene sulfonate, toluene sulfonate, camphor sulfonate, etc.
  • amino acid salts eg aspartate, glutamate, etc.
  • the compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS a commercially available compound may be used, or a compound produced according to a known method, a method known per se or a method analogous thereto may be used.
  • Compounds with 1,25D 3 -MARRS stimulating activity can be screened by detecting light emission and fluorescence when the compound is bound to 1,25D 3 -MARRS. Specifically, screening may be performed by the following method: (Light emission (luminescence) detection of 1,25D 3 -MARRS bond) Primary cultured cerebral cortical neurons (SD, E17) are seeded on a 96-well white plate at a density of 0.5 ⁇ 10 5 cells / well. Three days later, the cells are treated with DHVD3 alone (control) or in combination with the compound to be confirmed as DHVD3 (compound X) at 37 ° C. for 10 minutes.
  • DHVD3 alone
  • compound X compound X
  • Horseradish peroxidase-labeled goat anti-mouse IgG (1: 2000) is used as a secondary antibody, and chemiluminescence of the antigen-antibody complex is detected using a multiplate reader.
  • the value of compound X is subtracted from the value of the emission intensity of the control to obtain the emission intensity of the 1,25D 3 -MARRS bond of the confirmation compound.
  • the diosgenin is a steroid sapogenin, and some species such as Sanyak (Dioscorea rhizome) and herbal medicines such as Trigonella spp., Polygonatum spp., Smilax spp. It is a component of plants.
  • Diosgenin is anti-cancer (Yan, LL et al., Exp Oncol, 31, pp.27-32, 2009.), anti-food allergy (Huang, CH et al., Planta Med, 75, pp.1300-1305, 2009.) Inhibition of oxidative stress-induced memory impairment by galactose administration (Chiu, CS et al., Am J Chin Med, 39, pp.551-563, 2011.) and antidiabetic neuropathy (Kang, TH et al., Biol Pharm Bull, 34, pp.1493-1498, 2011.). Furthermore, skin whitening effect (Japanese Patent Publication No.
  • diosgenin a commercially available product can be used as described later, and an extract from a natural product may be used.
  • a diosgenin derivative refers to a compound that is an equivalent of diosgenin and exhibits a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS.
  • a commercially available product may be used, or a product produced according to a known method, a method known per se or a method analogous thereto, or an extract from a natural product may be used.
  • the diosgenin derivative may be an equivalent that can be achieved by chemical modification by introducing a substituent into diosgenin or converting the substituent, or may be a diosgenin glycoside extracted from a natural product.
  • the diosin is a saponin contained in yams and the like, and is a diosgenin glycoside. It can be suitably used as a diosgenin derivative compound showing the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS.
  • the denosamine has the following formula (I) And is reported to improve spinal cord injury (Teshigawara, K et al., Br J Pharmacol. 2013 Feb; 168 (4), pp. 903-919.). Matsuya, Y et al., Org Lett. 2009 Sep 3; 11 (17): pp.3970-3973 reports that denosomin is a new anti-Alzheimer's drug candidate. However, the signaling mechanism of denosomin was not known at all.
  • the DHVD3 is a vitamin D having a hormone activity, also called calcitriol, and has the following formula (II) It is represented by
  • the neurological disease is spinal cord injury or Alzheimer's disease and the compound having the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS is denosomin may be excluded.
  • Another embodiment of the present invention is a pharmaceutical composition for treating a neurological disease comprising a therapeutically effective amount of a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof. About.
  • the compound having neurological diseases and stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof may be the same as described above.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is not limited, but can be formulated by a commonly used method.
  • Preferred dosage forms of the pharmaceutical composition include, for example, tablets, powders, fine granules, granules, dry syrups, coated tablets, orally disintegrating tablets, chewable tablets, capsules, soft capsules, syrups, oral solutions, troches Preparations, jelly preparations, inhalants, suppositories, injections, ointments, eye drops, eye ointments, nasal drops, ear drops, poultices, lotions, liquids for external use, sprays, aerosols for external use, creams , Gels, tapes, buccal tablets, sublingual tablets, vaginal suppositories, vaginal tablets, rectal soft capsules and the like.
  • excipients for example, excipients, binders, disintegrating agents, coating agents, lubricants, coloring agents, flavoring agents, and if necessary, stabilizers, emulsifiers, absorption promoters, surfactants, pH adjusting agents, preservatives, antioxidants, and the like can be used, and it is possible to formulate by a conventional method by blending components generally used as raw materials for pharmaceutical preparations.
  • the present invention also includes a method for preparing a pharmaceutical composition characterized by mixing at least one carrier.
  • the component (carrier) used for the formulation is not particularly limited, but for example, animal and vegetable oils such as soybean oil, beef tallow and synthetic glycerides; hydrocarbons such as liquid paraffin, squalane and solid paraffin; for example, octyldodecyl myristate, myristin Ester oil such as isopropyl acid; higher alcohols such as cetostearyl alcohol and behenyl alcohol; silicone resin; silicone oil; polyoxyethylene fatty acid ester, sorbitan fatty acid ester, glycerin fatty acid ester, polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester, polyoxyethylene hydrogenated castor oil Surfactants such as polyoxyethylene polyoxypropylene block copolymers; eg hydroxyethyl cellulose, polyacrylic acid, carboxyvinyl polymer, poly Water-soluble polymers such as tylene glycol, polyvinyl pyrrolidone and methyl cellulose; lower alcohols such as ethanol and isoprop
  • excipients include lactose, corn starch, sucrose, glucose, mannitol, sorbitol, crystalline cellulose, silicon dioxide and the like
  • binders include polyvinyl alcohol, gelatin, methylcellulose, ethylcellulose, gum arabic, tragacanth, gelatin, shellac. , Hydroxypropylmethylcellulose, hydroxypropylcellulose, polyvinylpyrrolidone, polyvinylacetal diethylaminoacetate, corn starch and the like.
  • disintegrants examples include corn starch, low-substituted hydroxypropylcellulose, crospovidone, crystalline cellulose, precipitated calcium carbonate, croscarme Loose sodium, calcium citrate, dextrin, pectin, carboxymethylcellulose calcium, etc.
  • lubricant for example, magnesium stearate, talc, polyethylene glycol, light anhydrous silicic acid, sucrose fatty acid ester, etc., which are allowed to be added to pharmaceuticals as colorants, Cocoa powder, menthol, aroma powder, mint oil, dragon brain, cinnamon powder, etc. are used.
  • oral preparations include compounds that are active ingredients or salts or esters thereof, or hydrates and excipients thereof, and further, for example, binders, disintegrants, lubricants, coloring agents, flavoring agents, and the like.
  • binders for example, disintegrants, lubricants, coloring agents, flavoring agents, and the like.
  • powders, fine granules, granules, tablets, coated tablets, capsules and the like are prepared by conventional methods. In the case of tablets and granules, for example, sugar coating or other appropriate coating may be used if necessary.
  • a pH adjusting agent for example, a solubilizer, an isotonic agent and the like, and if necessary, a solubilizing agent, a stabilizer and the like are added to prepare a preparation by a conventional method.
  • a manufacturing method in particular is not limited, It can manufacture by a conventional method.
  • a base material to be used various raw materials usually used for pharmaceuticals, quasi drugs, cosmetics and the like can be used.
  • Antioxidants, chelating agents, antiseptic / antifungal agents, coloring agents, fragrances and the like can be added.
  • components having a differentiation-inducing action such as blood flow promoters, bactericides, anti-inflammatory agents, cell activators, vitamins, amino acids, humectants, keratolytic agents, and the like can be blended as necessary.
  • the administration form of the pharmaceutical composition of the present invention is not particularly limited, and may be oral administration or parenteral administration.
  • Parenteral administration includes, for example, rectal administration, nasal administration, pulmonary administration, injection administration (eg, intravenous administration, intrathecal administration, intraepidural administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, intraperitoneal administration)
  • Intraarterial administration eg, intravenous administration, intrathecal administration, intraepidural administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, intraperitoneal administration
  • the dosage form when the compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS is diosgenin, the dosage form is intrathecal or intravenous administration, and when it is diosine, the dosage form is oral administration. It is.
  • the content of the compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS or a pharmaceutically acceptable salt thereof contained in the pharmaceutical composition of the present invention is not particularly limited, but treats and improves symptoms associated with neurological diseases. Or a dose sufficient to recover.
  • the dosage of the pharmaceutical composition according to the present invention varies depending on, for example, the degree of symptoms, age, sex, body weight, dosage form, type of salt, specific type of disease, etc.
  • About 2 mg to about 10 g, preferably about 5 mg to about 5 g, more preferably about 10 mg to about 5 g of a compound having 1,25D 3 -MARRS stimulating activity or a pharmacologically acceptable salt thereof administered orally per day 1 g is administered by injection administration in an amount of about 2 mg to about 10 g, preferably about 5 mg to about 5 g, more preferably about 10 mg to about 1 g, each in one or several divided doses.
  • the pharmaceutical composition may be used in combination with one or more compounds known to be useful for the treatment or prevention of diseases, or pharmaceutically acceptable salts thereof.
  • the said disease is not specifically limited, Preferably it is a neurological disease, More preferably, it is AD.
  • a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS, or a pharmaceutically acceptable salt thereof is used for the treatment or prevention of AD and its symptoms. It may be used in combination with one or more compounds known to be useful.
  • a ⁇ amyloid beta
  • cholinesterase inhibitors for example, donepezil, superzine A, tacrine, rivastigmine, galantamine
  • AMPA receptor antagonists for example, 3- (2-cyanophenyl) -5- (2-pyridyl) -1-phenyl-1 1,2-dihydropyridine compounds such as 2,2-dihydropyridin-2-one
  • NMDA receptor antagonists eg, memantine
  • acetylcholine-releasing stubrants eg, priracetam; aniracetam
  • calcium channel agonists eg, nefiracetam
  • free radical ska Wenger eg EGb 761
  • platelet activating factor antagonist eg Gb 761
  • platelet aggregation antagonists eg EGb 761, triflusal
  • insulin sensitizers eg rosiglitazole
  • peroxisome proliferator-activated receptor agonists eg rosiglitazole
  • More specific compounds include, for example, donepezil, huperzine A, tacrine, rivastigmine, galantamine, paramiracetam, aniracetam, nefiracetam, EGb761, rosigtaineceleine, rasigtaine, rasigtaine, rasigtaine, rastiginee Pyridyl) -1-phenyl-1,2-dihydropyridin-2-one, tamampane, becampane, memantine, xaliproden, tarenflurbil, tramiprosate, leuplorelin-D, tartirelin, risperidone, cevimeline, odafinil, alosetron, aripiprazole, mifepristone, atorvastatin, propentofylline, choline alfoscerate, FPF 1070 (CAS No.
  • NCX 2216 ie, (E) -4- (nitrooxy) butyl 3- [4- [2- (2-fluorobiphenyl-4-yl) propaline Noyloxy] -3-methoxyphenyl] acrylate
  • NXD 3109 NXD 1191
  • ZSET 845 ie 3,3-diphenylimidazo [1,2-a] pyridine-2- (3H) -o
  • NT 13, RO 638695 ie, [1,6- (1,6-dioxohexyl)] dipyrrolidine- (2R) -carboxylic acid
  • bisnorcymserline BA 1016, XD 4241, EUK 207 ( That is, (SP-5-13)-(acetato- ⁇ O) [13,16,19,22-tetraoxa-3,6-diazatricyclo [21.3.18,12] octaco
  • NS 377 midiphenylline, propofolformophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophorphetophor
  • PV 113 ie 1,2,3,4-tetrahydropyrrole
  • a 98284 ie 2 (R)-(3-methylxazol-5-yl) quinuclidine
  • AP 5 CAS No. 136694-85-0
  • BD 1054 SDZ NDD 094 ( That is, bis- (2- (2-methylimidazol-1-yl) methyl) -pyridine-tris (hydrogen-fumarate), AZ 36041 (CAS No.
  • JWS USC 751X ie, 3-[[[2-[[(5-dimethylaminoethyl) -2-furanyl] methyl] thio] ethyl] amino] -4-nitropyridazine), GR 175737 (ie 3- (4-chlorobenzyl) -5- [2- (1H-imidazol-4-yl) ethyl] -1,2,4-oxadiazole), KS 505A (CAS No. 131774) 53-3), ZTTA 1 (ie, N-benzyloxycarbo) (Lu-thiopropyl-thiopropynal-dimethylacetal), AGN 190837 (CAS No.
  • TEI 3356 (ie (16S) -15-deoxy-16-hydroxy-16-methyl-9- (O) -methano-DELTA6 (9alpha) -prostaglandin I1), LY 392098 (ie Thiophene, 3- [(2-Methylethyl-2) sulfonylaminopropyl-2] phenyl-4-yl-), PG 1000, DM 232, NEPP 11 (ie, 12-iso-15-deoxy-18- (4-methyl) phenyl -13,14-dihydro-delta7-prostaglandin A1 methyl ester), VA 100 (ie (2,3-dihydro-2-[[(4-fluorobenzoyl) amino] ethyl] -1-methyl-5 -Phenyl-1H-1,4-benzodiazepine), VA 101 (ie (2 3-dihydro-2-[[[[(2-thienylcarbonyl) amino] ethyl]
  • sabelazole adafenoxate, CAS61e ebnee roe e. , Idazoxan, linopyridine, selfotel, suritozole, milameline, xanomelin e, TJ 960, fasoracetam, epastigmine, ensaculin, zanapezil, posatirelin, zacopride, RS 86 (CAS No. 3576-73-6), ORG 5667 (CAS No. 37552-33-3), RX 77368 (CAS No. 76820-40-1), BMS 181168 (CAS No. 123259-91-6), BY 1949 (CAS) No.
  • AWD 5239 (CAS No. 109002-93-9), YM 796 (171252-79-2), aloracetam, CI 933 (CAS No. 91829-95-7), ST 793 ( CAS No. 99306-37-3), cebaracetam, zifrosilone, talsaclidene, alphaline, JTP 2942 (148152-77-6), OPC 14117 (CAS No.
  • Z 321 (CAS No. 130849-58-0), miristeron, CHF 2060 (ie, N-heptylcarbamic acid 2,4a, 9-trimethyl-2,3,4,4a, 9,9a-hexahydro-1,2 -Oxazino [6,5-b] indol-6-yl ester-L-tartrate), gedocarnil, terbequinil, HOE 065 (CAS No.
  • RO 249975 ie, [1S, 3S (2 ′S), 5R] -3- (1-benzyl-5-oxopyrrolidin-2-ylmethyl) -5- (1H-imidazol-5-ylmethyl) cyclohexane-1 -Acetamide
  • AF 185 ie, 8-methyl-3- (2-propynyl) -1,3,8-triazaspiro [4,5] decane-2,4-dione
  • MBF 379 ie, [3,3-bis (hydroxymethyl) -8-hydroxy- 3,4-dihydro-2H-1,4-benzoxazin-5-yl] [3 ′, 5 -Dihydroxy-4 '-(2-oxo-2-phenylethoxy) phenyl] methanone
  • NGD 187 CAS No. 163565-48-8
  • DUP 856 MR 3066
  • MF 8615 ie 5-amino-6) -Chloro-4-hydroxy-3,4-dihydro-1H-thiopyrano- [3,4-b] quinolinone
  • ABS 300 RJR 2403 (CAS No.
  • MF 268 (CAS No. 174721-00-7), RO 465934 (ie, N, N-dimethylcarbamic acid 3- (2-cyclohexyl) -2,3,3a, 4,5,9b-hexahydro-1H-benzo [e] indole- 6-yl ester), NS 393, RGH 2716 (CAS No. 134069-68-4),
  • WIN 678702 (12,12-bis (3-furyl) -6,11-dihydro-6,11-ethanobenzo [b] quinolizinium chloride), RS 66252 (ie 1-butyl-2-[(2'- (2H-tetrazol-5-yl) -biphenyl-4-yl) methyl] -1H-indole-3-carboxylic acid), AIT 034 (CAS No. 138117-48-3), NG 012 (CAS No. 131774) 53-3), PD 142012 (CAS No. 5778-84-7), GT 4054, GT 4077, GT 4035, P 26 (CAS No.
  • RGH 5279 ie (-)-( 13aR, 13bS) -13a-ethyl-2,3,5,6,13a, 13b- Oxahydro-1H-indolo [3,2,1-de] pyrido [3,2,1-ij] [1,5] naphthyridine-12-carboxylic acid 2-acetoxyethyl ester
  • WAY 132983 ((3R, 4R) -3- (3-hexasulfanylpyrazin-2-yloxy) -1-azabicyclo [2.
  • ABT 089 (CAS No. 161417-03-4), ABT 107, ABT 560, TC 5619, TAK 070, N-[(1S, 2R) -3- (3,5-difluorophenyl) -1-hydroxy-1 -[(5S, 6R) -5-methyl-6- (neopentyloxy) morpholin-3-yl] propan-2-yl] acetamide hydrochloride, 6-fluoro-5- (2-fluoro-5-methylphenyl) ) -3,4-dihydropyridine, 2-amino-6- [2- (3′-methoxybiphenyl-3-yl) ethyl] -3,6-dimethyl-5,6-hydroxypyrimidin-4 (3H) -one , AZD 1080, ARA 014418, XD 4241, Z 321 (CAS No.
  • composition of the present invention can be provided in the form of a kit with a container, such as a pack or dispenser device, which can optionally contain one or more unit dosage forms containing an active ingredient.
  • the present invention can also combine separate pharmaceutical compositions into a kit form.
  • the kit may contain two or more separate pharmaceutical compositions.
  • the compound of the present invention and one or more compounds known to be useful for the treatment or prevention of AD, and / or the compound of the present invention and a compound that shows a medicinal effect in treatment other than AD are included.
  • the kit typically includes containers for containing separate compositions, such as, for example, split bottles or split foil packets, but separate compositions can also be included in a single unsplit container.
  • Kit forms are those where separate components are preferably administered in different dosage forms (eg, oral and parenteral), when separate components are administered at different dosage intervals, or individual components combined by a prescribing physician Is particularly useful when it is necessary to titrate.
  • the pack can include, for example, a metal or plastic foil, such as a blister pack.
  • Blister packs are well known in the packaging industry and are widely used for packaging pharmaceutical unit dosage forms (tablets, capsules, etc.). Blister packs generally consist of a sheet of relatively hard material covered by a foil of transparent plastic material. During the packaging process, recesses are formed in the plastic foil. These indentations are tailored to the size and shape of the individual tablets or capsules to be packed. The tablet or capsule is then placed in the recess and the sheet of relatively hard material is sealed against the plastic foil at the foil surface opposite to the direction in which the recess was formed. As a result, the tablets or capsules are sealed in the recesses between the plastic foil and the sheet.
  • the strength of the sheet is preferably such that the tablet or capsule can be removed from the blister pack by manually applying pressure to the recess so that an opening is formed in the sheet at the location of the recess. Tablets or capsules can be removed through the opening.
  • Package or dispenser device can be accompanied by package inserts, product inserts, etc. for administration.
  • Containers such as packs or dispensers can be adapted to the notifications of government agencies and authorities that regulate the manufacture, use or sale of medicines.
  • One aspect of the present invention relates to a food and drink, a feed, a food additive, a feed additive, or the like containing a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof. .
  • the said food / beverage products of this invention are demonstrated.
  • the food and drink of the present invention are generally used as food additives such as sweeteners, coloring agents, preservatives, thickening stabilizers, antioxidants, coloring agents, bleaching agents, fungicides, and gum bases.
  • One or more of bitterings, enzymes, brighteners, acidulants, seasonings, emulsifiers, reinforcing agents, production agents, fragrances, spice extracts and the like may be added.
  • the foods and drinks of the present invention include health foods, functional foods, foods for specified health use, foods for infants, foods for infants, foods for pregnant women, foods for the elderly, and foods for the sick.
  • the form of the food or drink of the present invention is not particularly limited. Specific examples include tablets, granules, powders, and drinks as so-called dietary supplements (supplements). Other than this, for example, beverages such as tea beverages, soft drinks, carbonated beverages, nutritional beverages, fruit beverages, lactic acid beverages, noodles such as buckwheat, udon, Chinese noodles, instant noodles, strawberries, candy, gum, chocolate, snacks, Biscuits, jellies, jams, creams, baked confectionery, confectionery such as bread, bakery, fishery products such as kamaboko, ham, sausage, dairy products such as processed milk, fermented milk, salad oil, tempura oil, margarine, mayonnaise , Shortening, whipped cream, dressing and other fats and oils and processed foods, sauces, sauces and other seasonings, curry, stew, rice cakes, rice cakes, and other retort pouch foods, ice cream, sorbets, shaved ice and other frozen desserts Can be mentioned.
  • beverages such as tea beverages
  • the intake of the food / beverage product of the present invention is not particularly limited, and the form of the food / beverage product; the age, sex, state, etc. of the subject ingesting the food / beverage product; or the carrier or the carrier of the present invention mixed with the carrier You may set according to the kind of functional substance, and other conditions.
  • Another embodiment of the present invention relates to a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof in the manufacture of a medicament for preventing and / or treating a neurological disease.
  • the content of the compound and / or pharmaceutically acceptable salt thereof in the drug and the dose of the drug may be the same as described above.
  • Another aspect of the present invention is to provide a mammal with a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt or ester thereof, to a mammal, It relates to a method for reducing tau precipitation, tau precipitate, PHF-tau, or neurofibrillary tangles.
  • the compound having the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS is preferably one or more selected from the group consisting of diosgenin, diosine and denosamine.
  • the mammal to be administered is not particularly limited.
  • the dosage form of the drug, the dosage form, the content of the active ingredient 1,25D 3 -MARRS and / or the pharmaceutically acceptable salt thereof in the drug, the drug dose It may be the same.
  • Still another embodiment of the present invention provides a mammal with a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt or ester thereof.
  • the present invention relates to a method for suppressing atrophy of axons induced by amyloid ⁇ (A ⁇ ) (1-42).
  • the compound having the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS is preferably one or more selected from the group consisting of diosgenin, diosine and denosamine.
  • the mammal to be administered is not particularly limited.
  • the dosage form of the drug, the dosage form, the content of the active ingredient 1,25D 3 -MARRS and / or the pharmaceutically acceptable salt thereof in the drug, the drug dose It may be the same.
  • one aspect of the present invention is to provide a compound having 1,25D 3 -MARRS stimulating activity and / or a pharmaceutically acceptable salt or ester thereof to a mammal by administering 1,25D 3- relates to methods of stimulating MARRS and activating signaling pathways.
  • normal memory can be obtained by administering to a mammal a compound having a stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt or ester thereof. It relates to a method for enhancing and improving.
  • “Normal memory ability” means “axons having amyloid plaques, tau precipitation, tau deposits, PHF-tau, or neurofibrillary tangles, or induced by A ⁇ (1-42).
  • One other aspect of the present invention is characterized in that one or more selected from the group consisting of diosgenin, diosgenin derivatives, denosamine, dihydroxyvitamin D3 and pharmaceutically acceptable salts thereof are administered. , 25D 3 -MARRS activation method.
  • the administration form, dosage, administration subject, etc. may be the same as the administration of the compound having the stimulating activity of 1,25D 3 -MARRS and / or a pharmaceutically acceptable salt thereof.
  • the materials, reagents, and animals used in the present invention can be prepared using commercially available products or methods known in the art.
  • diosgenin commercially available products (for example, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd., manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd., or manufactured by Sigma Aldrich) can be used. It can also be isolated from natural products (eg, yam). Similarly, as the diosgenin derivative, an extract obtained from a commercial product or a natural product can be used. Moreover, it can manufacture by the chemical conversion of the saponin obtained from the natural product, or can manufacture it chemically by a well-known method.
  • Memantine hydrochloride (Tokyo Chemical Industry Co., Ltd., Tokyo, Japan) and 1 ⁇ , 25-dihydroxyvitamin D3 (DHVD3) (Cayman Chemicals, Ann Arbor, Michigan, USA) are dimethyl sulfoxide (DMSO) ).
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • a ⁇ (1-42) (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA) was dissolved in sterile distilled water and incubated at 37 ° C. for 4 days.
  • LY294002 (Cayman Chemicals), a phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) inhibitor, PD98059 (LC laboratories), a MEK1 inhibitor, and Goe6970 (LC laboratories (LC laboratories), a protein kinase C inhibitor) laboratories), Woburn, Massachusetts, USA) were dissolved in DMSO.
  • the protein kinase inhibitor PKI (14-22) amide (myristoylated) (Enzo, Farmingdale, NY, USA) was dissolved in distilled water.
  • Example 1 Comparative Examples 1 and 2 and Reference Example 1 >> The effect of diosgenin in Alzheimer's disease model mice was confirmed.
  • mice Test Animals Transgenic mice (5XFAD) are considered an animal model of AD and were obtained from the Jackson Laboratory (Bar Harbor, Maine, USA). 5XFAD mice are human APP695 cDNA with mutations in Sweden (K670N and M671L), Florida (I716V) and London (V717I) under the transcriptional control of neuron-specific mouse Thy-1 promoter, And human PS1 cDNA (M146L and L286V mutations) are overexpressed (Oakley, H. et al., J Neurosci, 26, 10129-10140, 2006.). They were maintained by crossing B6 / SJL F1 breeders with hemizygous transgenic mice.
  • mice In order to examine the effect of diosgenin by 5XFAD, hemi-5XFAD mice (female, 6 to 8 months old) and non-transgenic wild-type mice (female, 6 to 8 months old) were used in the present invention. These mice were obtained by crossing hemizygous 5XFAD mice with B6 / SJL F1 mice. All mice were housed in a controlled environment with a 12 hour light-dark cycle starting at 7 am, 22 ⁇ 2 ° C., 50 ⁇ 5% humidity, with free access to food and water.
  • Diosgenin was dissolved in dimethyl sulfoxide (DMSO) to a final concentration of 10 times to obtain a stock solution.
  • mice were individually placed in an open field box made of polyvinyl chloride (33 cm x 328 cm, height 26.5 cm) and acclimated for 10 minutes.
  • ⁇ Comparative Example 1> The same procedure as in Example 1 was repeated except that the diosgenin solution was 10% DMSO-containing physiological saline (solvent solution).
  • ⁇ Reference Example 1> The same procedure as in Example 1 was repeated except that the diosgenin solution was 10% DMSO-containing physiological saline (solvent solution), and the 5XFAD mice were non-transgenic wild-type mice.
  • Test Example 1 Novel object recognition test
  • Comparative Examples 1 and 2 and Reference Example 1 the movement path of the mouse when acclimated for 10 minutes in an open field box was tracked using a digital camera system. The distance traveled in 10 minutes was analyzed as mobile activity by EthoVision 3.0 (Noldus, Wageningen, The Netherlands).
  • EthoVision 3.0 Noldus, Wageningen, The Netherlands.
  • the inventors' literature Joyashiki, E. et al., Int J Neurosci, 121, pp. 181-190, 2011. and Tohda, C. et al., Int J Neurosci, 121, pp. 641-648, 2011.
  • the novel object recognition test was conducted according to the description of). The test was conducted in a well-lit room.
  • the appropriate time interval between the training phase and the test phase was determined in advance by testing with another group of mice and was 30 minutes.
  • the novel object recognition test is a test that uses the habits that animals are interested in new things. In the training stage, two identical objects are shown and memorized. One is to place another new object in the device, and use as an index an increase in time for searching for the new object with interest (that is, remembering the object previously shown). In the present invention, the ratio (%) of the search time for a new object with respect to the total search time is calculated as a search index (Preference index). In this index, the wild-type mouse (Reference Example 1) remembers the object once shown and is interested in the novel object, and thus shows a value exceeding 50%. However, the 5XFAD mouse that is a model animal of AD once I don't remember what I showed, so it stays at 50%. However, if the memory impairment of 5XFAD mice improves, it will be significantly greater than 50%.
  • Test Example 1 The result of Test Example 1 is shown in FIG. 1A.
  • solvent-administered wild-type mice Reference Example 1: Wild / Veh
  • solvent-administered 5XFAD mice Comparative Example 1: 5XFAD / Veh
  • diosgenin-administered 5XFAD mice Example 1: 5XFAD / Dios
  • memantine-administered 5XFAD mice Comparative Example 2: 5XFAD / Mema
  • diosgenin-administered 5XFAD mice (Example 1: 5XFAD / Dios) exhibited exploratory behavior significantly exceeding 50% against novel objects (FIG. 1A). That is, when diosgenin was administered to 5XFAD mice, which are AD model animals, the mice recovered interests comparable to wild-type mice for novel objects, and the search orientation index (%) was improved. In contrast, the solvent-directed 5XFAD mice (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh) did not significantly differ from the search orientation index for novel objects by 50%.
  • Secondary antibodies include Alexa Fluor 488-labeled goat anti-mouse IgG antibody (1: 300) and Alexa Fluor 568-labeled goat anti-rabbit antibody (1: 300) (Molecular Probes, Eugene, OR) , USA). Fluorescence images of axons, presynapses, PHF-tau and A ⁇ (1-40 / 42) can be obtained using a fluorescence microscope (AX-80) and for pNF-H synaptophysin and PHF-tau, 324 ⁇ m x 430 ⁇ m In the case of A ⁇ (1-40 / 42), images were taken at 1620 ⁇ m ⁇ 2150 ⁇ m.
  • Extracellular amyloid plaques were determined by size (width greater than 50 ⁇ m), and the area was measured using image analysis software ImageJ.
  • the area of pNF-H-positive abnormal spherical axons was measured using ImageJ with fluorescence images (324 ⁇ m ⁇ 430 ⁇ m) for all amyloid plaques.
  • the area of synaptophysin positive presynaptic buttons in all amyloid plaques was measured with ImageJ on a fluorescence image (324 ⁇ m ⁇ 430 ⁇ m).
  • the area of PHF-tau in all amyloid plaques and external amyloid plaques was measured using ImageJ on a fluorescence image (324 ⁇ m ⁇ 430 ⁇ m).
  • FIG. 1B The photograph in FIG. 1B is a representative image of A ⁇ (1-40 / 42) positive plaques and PHF-tau in the cerebral cortex. It is clear that the 5XFAD mice treated with diosgenin (Example 1: 5XFAD / Dios) have reduced amyloid plaques than the 5XFAD mice administered with solvent (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh).
  • FIG. 1C shows the result of quantifying the total area of amyloid plaques per 1 ⁇ m 2 in the cerebral cortex and hippocampus.
  • the area of the cerebral cortex and hippocampus was significantly reduced in the 5XFAD mice treated with diosgenin (Example 1: 5XFAD / Dios) compared to the 5XFAD mice administered with solvent (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh).
  • the memantine-administered 5XFAD mice (Comparative Example 2: 5XFAD / Mema) significantly decreased the area in the hippocampus, but did not significantly decrease the area in the cerebral cortex.
  • FIG. 1D shows the results of quantification of the total area of PHF-tau per 100 ⁇ m 2 in the cerebral cortex and hippocampus.
  • Diosgenin-administered 5XFAD mice (Example 1: 5XFAD / Dios) are solvent-administered 5XFAD mice (Comparative Example 1: Compared with 5XFAD / Veh), the area of cerebral cortex and hippocampus is significantly reduced.
  • Memantine-administered 5XFAD mice (Comparative Example 2: 5XFAD / Mema) are not significantly different from the solvent-administered 5XFAD mice (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh) in the cerebral cortex, but conversely significantly increase the area in the hippocampus It became.
  • the photograph in FIG. 2A is a double-labeled antibody against A ⁇ (1-40 / 42) and pNF-H or A ⁇ (1-40 / 42) and synaptophysin.
  • 1 Wild / Veh
  • solvent-administered 5XFAD mice Comparative Example 1: 5XFAD / Veh
  • diosgenin-administered 5XFAD mice Example 1: 5XFAD / Dios
  • memantine-administered 5XFAD Comparative Example 2: 5XFAD / Mema mice cerebrum It is a representative image of the cortex.
  • 5XFAD mice administered with diosgenin are more amyloid plaques than 5XFAD mice administered with solvent (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh) and 5XFAD mice treated with memantine (Comparative Example 2: 5XFAD / Mema). It can be seen that the value is reduced.
  • FIG. 2B shows the results of quantifying the area of degenerated axons per 100 ⁇ m 2 of amyloid plaques in the cerebral cortex and hippocampus.
  • the vertical axis represents enlarged axon area, the structure of abnormal axons such as spheres has been reported in AD patients with early to late stages (Dickson, TC et al., Neuroscience, 105, pp.99-107, 2001). .).
  • the area of the cerebral cortex and hippocampus was significantly reduced in the 5XFAD mice treated with diosgenin (Example 1: 5XFAD / Dios) compared to the 5XFAD mice administered with solvent (Comparative Example 1: 5XFAD / Veh).
  • siRNA transfection siRNA was introduced into rat cerebral cortical neurons (SD E18) according to the instructions of nucleofection (Lonza, Basel, Switzerland). That is, rat cerebral cortical neurons (5.25 ⁇ 10 6 cells) are either 400 nM siPdia3 (a mixture of 3 sequences of Pdia3 stealth siRNA, Invitrogen) or 400 nM control siRNA (Stealth RNAi negative control Low GC Duplex # 3, Invitrogen) and electroporated with Amaxa Nucleofector (Lonza).
  • Example 2 Untransfected cells (rat cerebral cortical neurons (SD E18)) were treated with diosgenin (1 ⁇ M) for 4 days.
  • Example 3> The same procedure as in Example 2 was repeated except that the diosgenin treatment was changed to DHVD3 (1 ⁇ M) treatment.
  • Example 2 was repeated except that the diosgenin treatment was changed to a solvent solution (0.1% DMSO) treatment.
  • ⁇ Comparative example 4> The cells were the same as Comparative Example 3 except that the cells were rat cerebral cortical neurons (SD E18) transfected with siRNA.
  • Example 5 The same procedure as in Example 2 was performed, except that the cells were rat cerebral cortical neurons (SD E18) transfected with siRNA.
  • Test Example 3 Measurement of axon density
  • the cells obtained in Examples 2 and 3 and Comparative Examples 3 to 6 were fixed with 4% paraformaldehyde, a monoclonal antibody against pNF-H (1: 500) was used as an axon marker, and MAP2 (as a neuron marker). 1: 500) was immunostained for 20 hours at 4 ° C. Alexa Fluor488-labeled goat anti-mouse IgG (1: 300) and Alexa Fluor568-labeled goat anti-rabbit IgG (1: 300) were used as secondary antibodies.
  • the fluorescence image was taken at 324 ⁇ mx430 ⁇ m using a fluorescence microscope system (BX61 / DP70, Olympus). 12 to 14 images were taken.
  • the length of pNF-H positive axons was measured using an image analysis Neuroocyte (Kurabo) that automatically traces and measures the neurite length without measuring the cell body. The total axon length was divided by the number of MAP2-positive nerves. The results are shown in FIG.
  • FIG. 5 shows the effect of 1,25D 3 -MARRS knockdown on diosgenin-induced axon outgrowth.
  • FIG. 5A shows the results of quantifying the expression levels of 1,25D 3 -MARRS and nVDR in neurons transfected with 1,25D 3 -MARRS siRNA (400 nM) or control siRNA (400 nM). It can be seen that when 1,25D 3 -MARRS is knocked down, the expression level of 1,25D 3 -MARRS is significantly reduced.
  • FIG. 5B shows the density of pNF-H positive axons per MAP2 positive neuron in terms of diosgenin (1 ⁇ M: Example 2 and Comparative Example 5), DHVD3 (1 ⁇ M: Example 3 and Comparative Example 6), or solvent solution (Veh , 0.1% DMSO: quantified results for each treatment group of Comparative Example 3 and Comparative Example 4).
  • the treatment with diosgenin (Example 2) and DHVD3 (Example 3) significantly increased the density of axons compared to the solvent solution treatment group (Comparative Example 3), but 1,25D 3 -MARRS In the knockdown group (Comparative Examples 4 to 6), there was no change from the solvent solution treatment group. Therefore, it can be seen that diosgenin is involved in the same receptor stimulation as DHVD3.
  • Example 4 Rat cerebral cortical neurons (SD E18) were cultured for 1 day and then treated with diosgenin (1 ⁇ M). At the same time, PI3K inhibitor LY294002 (10 ⁇ M), MEK1 inhibitor PD98059 (1 and 10 ⁇ M), protein kinase C The inhibitor Goe6970 (10 and 100 nM) or the protein kinase inhibitor PKI (14-22) amide (myristoylated) (0.1 and 1 ⁇ M) was added to the cells. ⁇ Example 5> The procedure was the same as Example 4 except that Diosgenin (1 ⁇ M) was changed to DHVD3 (1 ⁇ M).
  • Test Example 4 Measurement of the effect of a protein kinase inhibitor on the growth of diosgenin-induced axons
  • the cells were fixed, and double immunostaining was performed for pNF-H and MAP2.
  • the density of pNF-H positive axons per MAP2 positive neuron was quantified for each treatment.
  • the axon density was measured in the same manner as in Test Example 3 above. The results are shown in FIG.
  • FIG. 6A shows that all the protein kinase inhibitors used significantly inhibited the growth of diosgenin-induced axons. Moreover, it can be seen from FIG. 6B that all the protein kinase inhibitors used also significantly inhibited DHVD3-induced axonal growth. This fact supports that diosgenin is involved in the same receptor stimulation as DHVD3.
  • Example 6 A ⁇ (1-42) was pre-incubated at 37 ° C. for 4 days to aggregate. Thereafter, cells (rat cerebral cortical neurons (SD E18)) were treated with A ⁇ (1-42) for 3 days. After 3 days of treatment, a control antibody (normal rabbit IgG, 1: 5000) was added to the cells and incubated for 10 minutes, after which the cells were treated with diosgenin (0.1 ⁇ M) for 5 days.
  • Example 7> The same procedure as in Example 6 was performed except that the diosgenin treatment was treated with diosgenin (1 ⁇ M).
  • ⁇ Comparative Example 7> The same procedure as in Example 6 was performed except that the diosgenin treatment was treated with a solvent solution (0.1% DMSO).
  • Comparative Example 7 was the same as the control antibody except that polyclonal anti-rabbit 1,25D 3 -MARRS (Ab099 clone, 1: 500) was used.
  • ⁇ Comparative Example 9> The same procedure as in Example 6 was performed except that the control antibody was polyclonal anti-rabbit 1,25D 3 -MARRS (Ab099 clone, 1: 500).
  • Example 10 The same procedure as in Example 7 was performed except that the control antibody was polyclonal anti-rabbit 1,25D 3 -MARRS (Ab099 clone, 1: 500).
  • ⁇ Reference Example 2 Rat cerebral cortical neurons (SD E18) that were not subjected to antibody treatment or drug treatment were subjected to the test.
  • Test Example 5 Measurement of axon density
  • the cells obtained in Examples 6 and 7 and Comparative Examples 7 to 10 and the cells of Reference Example 2 were fixed with 4% paraformaldehyde, monoclonal antibodies against pNF-H (1: 500) as axon markers, and neurons Immunostaining was performed at 4 ° C. for 20 hours using a polyclonal antibody against MAP2 (1: 500) as a marker for.
  • Alexa Fluor488-labeled goat anti-mouse IgG (1: 300) and Alexa Fluor568-labeled goat anti-rabbit IgG (1: 300) were used as secondary antibodies.
  • the fluorescence image was taken at 324 ⁇ mx430 ⁇ m using a fluorescence microscope system (BX61 / DP70, Olympus). Seven to nine images were taken.
  • the length of pNF-H positive axons was measured using an image analysis Neuroocyte (Kurabo) that automatically traces and measures the neurite length without measuring the cell body.
  • the total axon length was divided by the number of MAP2-positive nerves. The results are shown in FIG.
  • the fetuses were removed from Sprague-Dawley rats (Japan SLC, Shizuoka Prefecture, Japan) on the 17th day of pregnancy.
  • the cerebral cortex was cut out and the dura mater was removed.
  • 12% B-27 supplement (8% chamber slide (Falcon, Franklin Lakes, NJ, USA) minced and coated with 5 mg / ml poly-D-lysine) Invitrogen), Neurobasal medium (Invitrogen, Grand Island, New York, USA) containing 0.6% D-glucose and 2 mM L-glutamine, 37 ° C. in a humidified incubator, Growth culture was performed under 10% CO 2 .
  • the seeded cell density was 4.35 ⁇ 10 4 cells / cm 2 .
  • Luminescence detection of 1,25D 3 -MARRS binding Primary cultured cerebral cortical neurons (SD, E17) were collected on 96-well white plates at a density of 0.5 ⁇ 10 5 cells / well. Three days later, the cells were treated with DHVD3 alone or in combination with DHVD3 and diosgenin at 37 ° C. for 10 minutes. Monoclonal antibodies against DHVD3 (1: 2000, Acris) in Triton-X-Free PBS in order to detect only DHVD3 bound to the cell surface by fixing cells with 4% paraformaldehyde Antibody, Herford, Germany) was used for 20 hours incubation at 4 ° C.
  • Horseradish peroxidase-labeled goat anti-mouse IgG (1: 2000) was used as a secondary antibody. Chemiluminescence of the antigen-antibody complex was detected using a GENios multiplate reader (Tecan, Mannedorf, Zurich, Switzerland).
  • Mouse primary cerebral cortical neuron primary culture (ddY system, E14) was maintained for 24 hours without drug treatment.
  • Cells were lysed in M-PER (Thermo Scientific) supplemented with protease and phosphatase inhibitors. After centrifugation (20,000 xg) for 15 minutes, the protein concentration of the lysate (lysate) was determined using Quick Start (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA) Were determined.
  • Cell lysates (5.6 ⁇ g each) were added to 2 ⁇ L of 10 mM diosgenin solvent solution and incubated at 4 ° C. for 30 minutes.
  • reaction buffer [50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 50 mM NaCl, 10 mM calcium chloride] with 7.5 ⁇ g of thermolysin for 10 minutes at room temperature. Proteolysis was stopped by adding 0.5 M EDTA (pH 8.0) to each sample at a ratio of 1:10. The sample was then mixed well and placed on ice. Reaction samples were electrophoresed using 5-20% real gel plates (Biocraft, Tokyo, Japan). The separated protein was stained using a negative gel staining MS kit (Wako).
  • a band in the diosgenin-treated lysate that was darker than the band of the solvent-treated lysate was cut out to prepare a sample for mass spectrometry.
  • the supernatant was subjected to nano-LC / MS / MS analysis using Orbitrap LTQ XL (ThermoFisher).
  • the resulting MS / MS data was searched using Mascot (www.matrixscience.com).
  • FIG. 3 reveals that the direct target protein of diosgenin is 1,25D 3 -MARRS, as detailed below.
  • FIG. 3A shows a band of diosgenin-treated lysate (diosgenin lane) that was darker than the solvent-treated lysate (control lane) on a silver-stained SDS-PAGE gel, and was subjected to mass spectrometry.
  • LC / MS / MS analysis revealed that the band was protein disulfide isomerase A3 (Pdai3), ie 1,25D 3 -MARRS.
  • FIG. 3B shows double labeling with an antibody against 1,25D 3 -MARRS (Ab099 clone) and MAP2 in primary culture of rat cerebral cortical neurons.
  • FIG. 3C shows that DHVD3 cell surface binding in primary cultured cerebral cortical neurons was dose-dependent and chemiluminescence intensity increased.
  • FIG. 3D represents the replacement of DHVD3 with cell surface bound diosgenin. That is, when diosgenin 0.1 ⁇ M and 10 ⁇ M were added to DHVD3 (0.1 ⁇ M) and incubated for 10 minutes, the immunocytochemical luminescence intensity was significantly reduced. This implies a substitution of diosgenin for binding of DHVD3 to the cell surface.
  • FIG. 4 shows a docking simulation of diosgenin to 1,25D 3 -MARRS.
  • the site of the predicted binding complex of 1,25D 3 -MARRS and diosgenin is shown in FIG. 4A.
  • FIG. 4B it can be seen that the region of the groove between the ⁇ and ⁇ domains of 1,25D 3 -MARRS is in contact with diosgenin.
  • diosgenin As described above, when diosgenin was administered to 5XFAD mice, significant improvement in memory ability to recognize objects was observed. Diosgenin administration significantly reduced amyloid plaques and neurofibrillary tangles in cerebral cortex and hippocampus. Denatured axons and deformed presynaptic nerve endings, which were only observed in areas closely related to amyloid plaques, were markedly reduced by diosgenin administration.
  • 1,25D 3 -MARRS was identified as a target protein of diosgenin by the above test. Suppression (knockdown) of 1,25D 3 -MARRS gene expression completely inhibited diosgenin-induced axon outgrowth in neurons in the cerebral cortex.
  • Test animals ddY mice and C57BL / 6 mice were obtained from Japan SLC (Hamamatsu, Japan). All mice received food and water ad libitum and were kept in a controlled environment (22 ⁇ 2 ° C., 50 ⁇ 5% humidity, 12 hour light-dark cycle starting at 7 am).
  • Example 8 Diosgenin (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Osaka, Japan) was dissolved in ethanol to a concentration 10 times the final concentration, and the stock solution was diluted to a final concentration with 5% glucose aqueous solution.
  • the diosgenin solution was administered into the abdominal cavity of normal mice (ddY mice, male, 6 weeks old) once a day (10 ⁇ mol / kg / day) for 5 or 6 days. One hour after the last administration, the mice were individually acclimated for 10 minutes to an open field box made of polyvinyl chloride (33 cm ⁇ 28 cm, height 26.5 cm) and subjected to the test.
  • ⁇ Comparative Example 11> Example 8 was repeated except that the diosgenin solution was a 10% ethanol solution (solvent solution) containing 5% glucose.
  • Test Example 6 Novel object recognition test
  • the test was performed in a room with dim lighting (100 lux).
  • the test was conducted by the inventors (Joyashiki, E. et al., Int J Neurosci, 121, pp.181-190, 2011.) except that the time interval between the training phase and the test phase was 48 hours.
  • Tohda C. et al., Int J Neurosci, 121, pp. 641-648, 2011.
  • the path of the mouse was tracked using a digital camera system as an index of movement. The distance moved in 10 minutes was analyzed as locomotor activity using EthoVision 3.0 (Noldus, Wageningen, The Netherlands).
  • mice treated with diosgenin showed frequent exploratory behavior with respect to novel objects, whose behavioral index significantly exceeded the 50% value selected by chance.
  • the search behavior for the novel object in the control mouse was not different from 50%.
  • mice that received diosgenin were significantly more likely than accidentally selected behavior (50%). Exploratory behavior was frequently performed. However, the control mouse (Comparative Example 11) did not show any specific search behavior for the object moved to the new position.
  • Example 9 A normal mouse (C57BL / 6, male, 8 weeks old) was given a diosgenin solution by intraperitoneal administration (100 ⁇ mol / kg / day for 14 days). The day after the 14th administration, the test was conducted. ⁇ Comparative Example 12> Example 9 was repeated except that the diosgenin solution was a 10% ethanol solution (solvent solution) containing 5% glucose.
  • Diosin was orally administered to normal mice (ddY mice, male, 6 weeks old) at 30 ⁇ mol / kg / day for 4 days.
  • Diosin (Chromadex, Irvine, CA, USA) was dissolved in ethanol to a concentration 10 times the final concentration, and the stock solution was diluted to a final concentration with 5% glucose aqueous solution.
  • ⁇ Comparative Example 13> Example 10 was repeated except that diosine was not administered.
  • Test Example 10 Novel object recognition test
  • a novel object recognition test was performed on the mice of Example 10 and Comparative Example 13. The test was performed under the same conditions as in Test Example 6 above.
  • mice administered with diosine (30 ⁇ mol / kg / day) (Example 10)
  • they showed frequent exploratory behavior with respect to novel objects and the behavior index was the value of behavior selected by chance (50%).
  • the result was far superior (FIG. 12A).
  • the search behavior for the novel object of the control mouse (Comparative Example 13) was not different from the behavior selected by chance (50%).
  • the dilution ratio of Ab099 was determined by CSF volume and influx rate to reach a concentration that could act as a neutralizing antibody in cerebrospinal fluid (CSF).
  • CSF cerebrospinal fluid
  • a brain infusion cannula (brain infusion kit) was inserted into the right ventricle after anesthesia of the mouse (anterior / posterior: posterior to bregma -0.22 mm, center / side: +1.0 mm, back / abdomen) : Below the surface-2.5 mm).
  • Locite 454 Alzette
  • the pump was implanted subcutaneously on the back of the mouse. The incised skin was stitched together.
  • Intraventricular administration of Ab099 clone was intracerebroventricular administration of ACSF (artificial cerebrospinal fluid) and intraperitoneal administration of diosgenin was intraperitoneal administration of a solvent solution.
  • Comparative Example 14 was carried out except that the intracerebroventricular administration of Ab099 clone was changed to intracerebroventricular administration of ACSF (artificial cerebrospinal fluid).
  • mice of the group of Comparative Example 15 did not show increased object recognition memory at the test stage.
  • the search-directed index was significantly increased, indicating increased memory by diosgenin.
  • mice injected with 1,25D 3 -MARRS neutralizing antibody Comparative Example 14
  • the enhancement of memory by diosgenin was completely offset.
  • Denosomin also has axonal elongation activity like diosgenin. Therefore, it was investigated whether the effect of denosomin is also mediated by 1,25D 3 -MARRS.
  • 1,25D 3 -MARRS was knocked down using siRNA transfection. Two days after siRNA transfection of 1,25D 3 -MARRS (400 nM), 1,25D 3 -MARRS levels were significantly reduced in cortical neurons (FIG. 5A).
  • nVDR expression in cortical neurons was not altered by siRNA transfection of 1,23D 3 -MARRS (400 nM), suggesting that knockdown does not affect DHVD3 genomic transmission ( FIG. 5A). Therefore, two days after siRNA transfection, denosamine (1 ⁇ M) or solvent solution was administered to the cells. After an additional 4 days of incubation, cells were double immunostained for pNF-H and MAP2 to measure the length of axons per neuronal cell. In cortical neurons, after transfection of control siRNA, axon density was significantly increased by denosomin administration (FIG. 11).
  • Example 12 Comparative Example 16, Reference Example 3
  • diosin diosgenin glycoside
  • Example 12 Diocin (30 ⁇ mol / kg / day) was administered orally to 5XFAD mice (male, 20 weeks old) for 6 days. The training phase started 1 hour after the last dose.
  • Example 16 The same procedure as in Example 12 was conducted except that the administration of diosine was the administration of the solvent solution.
  • Comparative Example 16 was performed except that the 5XFAD mouse was a littermate wild-type mouse.
  • Test Example 12 Novel object recognition test
  • Test Example 12 Novel object recognition test
  • the test was conducted under the same conditions as in Test Example 6 except that the appropriate time interval between the training stage and the test stage was 1 hour. The results are shown in FIG.
  • Example 13 and Comparative Example 17 In order to confirm the effect of diosgenin on hindlimb function in spinal cord injury mice, a spinal cord injury model test was performed.
  • SCI Spinal Cord Injury
  • Mice Seven week old female ddY mice (SLC) were used for spinal cord injury model testing. Mice were maintained under constant environmental conditions (22 ⁇ 2 ° C., 50 ⁇ 5% humidity, and a 12 hour light-dark cycle starting at 7 am) with free access to food and water. The contusion was generated by dropping a weight of 3 cm to 3.0 g once onto the exposed first lumbar vertebra (L1) of the mouse using a stereotaxic apparatus (Narishige). One hour after the surgical treatment, the test mice were randomly divided into a solvent solution treatment group and a diosgenin treatment group, and drug administration was started.
  • Example 13 Diosgenin (10 ⁇ mol / kg) was intraperitoneally administered to SCI mice once a day for 7 days. ⁇ Comparative Example 17> Example 13 was repeated except that diosgenin was used as the solvent solution.
  • mice were individually moved to an open field (23.5 cm ⁇ 16.5 cm ⁇ 12.5 cm) for behavioral evaluation and observed for 5 minutes.
  • the Basso Mouse Scale (BMS) (FIG. 14A), which is commonly used as a standard for evaluating the motor function of the hind limbs in a spinal cord injury model test, and the present inventors, in order to increase the accuracy of the test, Using a modified 0-18 point Toyama Mouse Scale (TMS) (FIG. 14B), open field mobility was assessed.
  • BMS Basso Mouse Scale
  • TMS Toyama Mouse Scale
  • TMS Toyama Mouse Scale
  • Example 13 Comparative Example 17
  • the results are shown in FIG.
  • mice treated with diosgenin (Example 13, group represented by black circles in FIG. 14) were compared with the mice treated with the solvent solution of control (Comparative Example 17, group represented by white circles in FIG. 14). Improved functionality.
  • a compound and a pharmaceutical composition capable of fundamentally preventing and / or treating neurological diseases such as Alzheimer's disease, dementia, Parkinson's disease, spinal cord injury or brain contusion, and treatment thereof.
  • a method can be provided.

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Abstract

　神経軸索の機能不全が関与する疾患（例えば、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷、脳挫傷等）の、病態の発症原因メカニズムに基づく根本療法剤の提供、及び治療法の提供を主な課題とする。　1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物、又はその塩を提供する。さらに、その治療有効量を含む疾患の治療のための医薬組成物、製造法、疾患の予防又は治療方法、及びキットに関する技術思想を提供する。

Description

アルツハイマー病等を含む神経疾患の1,25D3-MARRSが関与する治療薬及び治療法
　本発明は、ジヒドロキシビタミンD3（本明細書中ではDHVD3と略すことがある）受容体の一つである1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物に関する。より具体的には、1,25D3-MARRSの刺激活性を利用した、神経軸索の機能不全が関与する疾患（例えば、アルツハイマー病等）の治療薬又は治療方法に関する。なお、本明細書中、アルツハイマー病をＡＤと省略することもある。
　また、本発明は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物、又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量を含む神経疾患の予防及び／又は治療のための医薬組成物、飲食品、及びその製造方法に関する。さらに、本発明は、当該化合物、又は薬学的に許容されるその塩を用いた、ヒトを含む哺乳動物における神経疾患の予防又は治療方法にも関する。
　アルツハイマー病（ＡＤ）は、進行性の認知機能低下及び通常の加齢とは一致しない機能障害の状態として定義され、その診断は、米国精神医学会が発表しているDiagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders,第４版（DSM-IV）に記載されている。
　現在、ＡＤの治療は、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤に代表される症状改善剤による対症療法に限られており、病気の進行を抑制、治療する根本療法剤は開発されていない。ＡＤの根本療法剤の創出には、病態の発症原因メカニズムの解明や発症原因を制御する新しい方法の開発が必要である。ＡＤの原因メカニズムとしては、コリン作動性仮説、Ａβ仮説、及びタウ仮説等が提唱されており、ＡＤの原因メカニズムを特定するために、膨大な数の研究がなされている。
　学習と記憶におけるアセチルコリンの役割が議論される中、大脳基底部におけるコリン作動性ニューロンの変性、ならびにそれに関連した大脳皮質及びその他の領域におけるコリン作動性神経伝達の欠損が、ＡＤ患者に見られる認知機能の低下に大きく寄与しているとする「アルツハイマー病のコリン仮説」が議論されてきた（非特許文献１）。この作用メカニズムに基づき、脳のシナプスにおけるアセチルコリンの分解を抑制するアセチルコリンエステラーゼ阻害剤がＡＤの治療薬として市販されている。例えばドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン等のアセチルコリンエステラーゼ阻害剤が例として挙げられる。
　また、アミロイド前駆体タンパク（以下、ＡＰＰという。）の代謝産物であるＡβタンパクは、神経細胞の変性及び脱落、さらには認知障害の発現に大きく関わると考えられている（非特許文献２、３）。Ａβタンパクの形成には、ベータセクレターゼ及びガンマセクレターゼが関与し、タンパク質分解の部位の違いにより、アミノ酸３８個からなるＡβ（１－３８）、Ｃ末が２アミノ酸増えたＡβ（１－４０）及びＣ末が４アミノ酸増えたＡβ（１－４２）等が生じる。これらのＡβは、凝集性が高く（非特許文献４）、老人斑の主要構成成分となっている（非特許文献４、５、６、７）。すなわち、これらの凝集体は最終的にはＡＤの病理学的特徴である不溶性の沈着物及び高濃度の神経突起斑プラークに変化する（非特許文献８）。さらに、家族性ＡＤで見られるＡＰＰ及びプレセニリン遺伝子の変異は、これらのＡβタンパクを増加させることが知られている（非特許文献９、１０、１１）。したがって、Ａβの産生を低下させる化合物は、ＡＤの進行抑制剤又は予防薬として期待されている。このことから、例えば、Ａβ産生低下を目的として、Ａβ抗体やセクレターゼ阻害剤等の薬物の創出が試みられている。この仮説に基づくＡＤ治療薬の候補品のいくつかは現在臨床試験中であり、ＡＤ患者に対するある程度の有効性が報告されている（非特許文献１２、非特許文献１３）。
　以上述べたように、現在、ＡＤ患者に臨床で使用されている薬剤では、ＡＤの発症もしくは進行を予防もしくは遅らすことはできても、認知機能の改善には至らない。すなわち、現在のＡＤの治療は、アセチルコリンエステラーゼ阻害剤に代表される症状改善剤による対症療法に限られており、病気自体を改善する根本療法剤は開発されていない。ＡＤの根本療法剤の創出には、神経機能不全の要因を制御する方法の開発が必要である。さらにはその新しいメカニズムに適合する化合物の提供が真に求められている。
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　そこで、本発明は、ＡＤの根本治療につながる全く新しいメカニズムを提供し、それに基づき、そのメカニズムに適合した化合物を提供すること、ならびにその治療方法を提供することを課題とする。
　さらに、本発明は、ＡＤに限らず、神経軸索が機能不全となっていることが要因である神経疾患の根本治療につながる化合物を提供すること、ならびにその治療方法を提供することも課題とする。
　上記の事情に鑑み、本発明者らは、機能不全になっている脳内の神経軸索に対して、形態的、機能的な改善を与えることができれば、記憶能力は回復すると考え、そのような活性を有する薬物の探索研究を行った。そして、そのような薬物の作用機序を探ることで、ＡＤの病態解析からでは予想できなかった「治療に関与する分子」を新たに見出すことができるという考えの下、鋭意研究を進めてきた。
　その結果、ハーブ等いくつかの種の植物に含有されるジオスゲニンという化合物が、ＡＤの治療に有用であるという驚くべき新知見を得て、さらに検討を進め、ＡＤ治療におけるジオスゲニンの効果は、ジヒドロキシビタミンD3の受容体の一つである1,25D3-MARRSを刺激して活性化することに起因しているという、有用かつ予想外の新知見を得た。
　本発明者らは、さらに試験研究を行い、ジオスゲニンを含む1,25D3-MARRSの刺激活性を有する物質が、ＡＤだけではなく、脊髄損傷、認知症、パーキンソン病、脳挫傷等の神経疾患にも有効であることを見出し、さらに検討を重ね、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は、以下に関する。
　[１]　神経疾患の予防及び／又は治療のための、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩（ただし、前記疾患がアルツハイマー病又は脊髄損傷であり、且つ前記化合物がデノソミンである場合を除く。）。
　[２]　前記1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物が、ジオスゲニン及び／又はジオスゲニン誘導体である、前記［１］に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
　[３]　1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物が、ジオスゲニン及び／又はジオシンである、前記［１］に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
　[４]　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、前記［１］～［３］のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
　[５]　神経疾患を予防及び／又は治療するための薬剤の製造における、前記［１］～［３］のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の使用。
　[６]　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、前記［５］に記載の使用。
　[７]　神経疾患の予防及び／又は治療における使用のための前記［１］～［３］のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
　[８]　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、前記［７］に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
　[９]　前記［１］～［３］のいずれかひとつに記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量を含む、神経疾患治療のための医薬組成物。
　[１０]　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、前記［９］に記載の医薬組成物。
　[１１]　疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量をさらに含む、前記［９］又は［１０］に記載の医薬組成物。
　[１２]　疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩が、神経疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩である、前記［１１］に記載の医薬組成物。
　[１３]　前記［９］～［１２］のいずれかひとつに記載の医薬組成物であって、少なくとも１つの担体を混合することを特徴とする、医薬組成物の調製方法。
　[１４]　前記［１］～［３］のいずれかひとつに記載の化合物、又は薬学的に許容されるその塩を、ヒトを含む動物に投与することを特徴とする、神経疾患の予防及び／又は治療方法。
　[１５]　前記［１］～［３］のいずれかひとつに記載の化合物、又は薬学的に許容されるその塩と、神経疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩とを併用することを特徴とする、前記［１４］に記載の方法。
　[１６]　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、前記［１４］又は［１５］に記載の方法。
　[１７]　前記［１］～［３］のいずれかひとつに記載の化合物、又はその薬学的に許容される塩を含む、神経疾患の予防及び／又は治療に使用されるキット。
　[１８]　前記［１］～［３］のいずれかひとつに記載の化合物、又はその薬学的に許容される塩、及び容器を含む、請求項１７に記載のキット。
　[１９]　ジオスゲニン、ジオスゲニン誘導体、デノソミン、ジヒドロキシビタミンＤ３及びこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される１種以上を投与することを特徴とする1,25D3-MARRSを活性化させる方法。
　[２０]　ジオスゲニン、ジオスゲニン誘導体、ジヒドロキシビタミンＤ３及びこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される１種以上を投与することを特徴とするアルツハイマー病を予防又は治療する方法。
　[２１]　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、アミロイド斑、タウ沈殿、タウ析出物、PHF-タウ、又は神経原線維変化を減少させる方法。
　[２２]　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、Ａβ（1-42）に誘導された軸索の委縮を抑える方法。
　[２３]　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、1,25D3-MARRSを刺激してシグナル伝達経路を活性化する方法。
　[２４]　前記［１］～［３］のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩を含有する健康食品、機能性食品、又は特定保健用食品。
　本発明によれば、ＡＤの根本治療につながる全く新しいメカニズムを提供し、それに基づき、そのメカニズムに適合した化合物及び医薬組成物を提供すること、ならびにその治療方法を提供することができる。
　さらに、本発明によれば、ＡＤに限らず、神経軸索が機能不全となっていることが要因である神経疾患の根本治療につながる化合物及び医薬組成物を提供すること、ならびにその治療方法を提供することもできる。
図１は、物体認識記憶障害と5XFADマウス（アルツハイマー病モデル）におけるＡＤの病態に対するジオスゲニンの効果を示す。 図２は、アミロイド斑に関連する軸索及びプレシナプスの変性に関するジオスゲニンの効果を示す。 図３は、ジオスゲニンの直接の標的タンパク質としての1,25D3-MARRSを示す。 図４は、1,25D3-MARRSへのジオスゲニンのドッキングシミュレーションを示す。 図５は、ジオスゲニン誘発性軸索伸長に及ぼす1,25D3-MARRSノックダウンの効果を示す。 図６は、ジオスゲニン誘発性軸索の成長に及ぼすプロテインキナーゼ阻害剤の効果を示す。 図７は、ジオスゲニン誘発性軸索再生に及ぼす1,25D3-MARRS中和抗体の効果を示す。 図８は、正常マウスにおける、ジオスゲニンによる記憶力亢進効果を示す。 図９は、正常マウスにおける物体認知記憶の能力が、ジオスゲニン腹腔内投与によって向上した結果を示す。 図１０は、正常マウスの1,25D3-MARRSを中和抗体により機能を阻害した状態にして、ジオスゲニンを投与した試験において、ジオスゲニン投与による物体認知記憶能力の向上が見られなくなったことを示す。 図１１は、デノソミンもまた、1,25D3-MARRSの外因性刺激物質であることを示す。 図１２は、正常マウスにおけるジオシンの経口投与による物体認知記憶能力の亢進効果を示す。 図１３は、5XFADマウスにおけるジオシンの経口投与による物体認知記憶能力の亢進効果を示す。 図１４は、脊髄損傷（ＳＣＩ）マウスにおける、ジオスゲニンの後肢運動機能の亢進効果を示す。
　以下、本発明について詳しく説明する。
　本発明のひとつの態様は、神経疾患の予防及び／又は治療のための1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩に関する。
　前記1,25D3-MARRS（1,25D3-膜結合型迅速応答ステロイド結合タンパク質、1,25D3-membrane-associated, rapid response steroid-binding protein）は、Pdia3（protein disulfide isomerase family A, member 3）、ERp57（endoplasmic reticulum stress protein 57）, GRP58（Glucose-regulated protein 58）等とも呼ばれ、ジヒドロキシビタミンD3の受容体の一つである。なお、ジヒドロキシビタミンD3を、以降、DHVD3ともいう。
　本発明において、前記神経疾患とは、神経軸索の機能不全が関与していれば特に限定されないが、好ましくは、その治療において1,25D3-MARRSが関与する神経疾患、より好ましくは、1,25D3-MARRSを刺激活性化させることにより何らかの有用な作用が観察され得る神経疾患を包含する。
　前記神経疾患は、外傷性神経疾患であっても、神経変性疾患であってもよく、特に限定されないが、例えば、脊髄損傷、脳挫傷、アルツハイマー病、パーキンソン病、認知症等が挙げられる。なお、本発明において、前記認知症は、アルツハイマー病を含まず、好ましくは、脳血管性型認知症、レビー小体型認知症、前頭側頭型認知症、ピック病等を包含する。
　本発明の技術思想の源は、1,25D3-MARRSを刺激し活性化させることで、脳内神経軸索等の神経軸索が伸長すること、そして、神経軸索の伸長によってアルツハイマー病等の神経疾患を予防及び／又は治療できることを見出した点にある。
　本願の1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、その薬学上許容される塩、光学異性体及びそれらの異性体の混合物、溶媒和物、結晶多型等を包含するものである。1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、特に限定されないが、例えば、ジオスゲニン、ジオシン、DHVD3、デノソミン等が挙げられる。これらの中でも、特にジオスゲニン及び／又はジオシンが、入手し易さ等の観点から好ましい。
　本発明において、「薬学的に許容される塩」とは、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物と薬学的に許容される塩を形成するものであれば特に限定されない。具体的には、例えばハロゲン化水素酸塩（例えばフッ化水素酸塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩等）、無機酸塩（例えば硫酸塩、硝酸塩、過塩素酸塩、リン酸塩、炭酸塩、重炭酸塩等）、有機カルボン酸塩（例えば酢酸塩、シュウ酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、フマル酸塩、クエン酸塩等）、有機スルホン酸塩（例えばメタンスルホン酸塩、トリフルオロメタンスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、トルエンスルホン酸塩、カンファースルホン酸塩等）、アミノ酸塩（例えばアスパラギン酸塩、グルタミン酸塩等）、四級アミン塩、アルカリ金属塩（例えばナトリウム塩、カリウム塩等）、アルカリ土類金属塩（例えばマグネシウム塩、カルシウム塩等）等が挙げられる。
　1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、市販されているものを用いてもよく、又は、公知方法、自体公知方法又はそれらに準ずる方法に従って製造したものを用いてもよい。
　1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、例えば、1,25D3-MARRSに化合物が結合したときの発光や蛍光を検出することでスクリーニングできる。具体的には、以下の方法によりスクリーニングを行ってよい：
（1,25D3-MARRS結合の発光（ルミネッセンス）検出）
　初代培養大脳皮質ニューロン（SD、E17）を0.5x105細胞/ウェルの密度で96ウェルのホワイトプレート上に播種する。３日後、細胞を、DHVD3単独（コントロール）で、又はDHVD3と確認したい化合物と組み合わせて（化合物Ｘ）、37℃で10分間処理する。細胞を4％パラホルムアルデヒドで固定し、DHVD3のうち細胞表面に結合したものだけを検出するため、トリトン-X-フリー(Triton-X-Free)PBS中、DHVD3に対するモノクローナル抗体（1:2000、Acris抗体、ヘルフォルト(Herford)、ドイツ）を用いて4℃で20時間インキュベートする。西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgG（1:2000）を二次抗体として使用し、抗原抗体複合体の化学発光を、マルチプレートリーダーを用いて検出する。コントロールの発光強度の値から、化合物Ｘの値を差し引き、確認化合物の1,25D3-MARRS結合の発光強度とする。
（1,25D3-MARRS結合の蛍光（フルオレセンス）検出）
　初代培養大脳皮質ニューロン（SD、E17）を0.5～0.8x105細胞/ウェルの密度で96ウェルのブラックプレート上に播種する。３日後、細胞を、ビオチン標識DHVD3単独（コントロール）で、又はビオチン標識DHVD3と確認したい化合物とを組み合わせて（化合物Ｘ）、37℃で10分間処理する。洗浄した細胞に、AlexaFluor488標識ストレプトアヴィジンを処置し１時間室温に置き、洗浄後、ビオチン‐ストレプトアヴィジン複合体の蛍光をマルチプレートリーダーで検出する。コントロールの蛍光強度の値から、化合物Ｘの値を差し引き、確認化合物の1,25D3-MARRS結合の蛍光強度とする。
　前記ジオスゲニンは、ステロイドサポゲニンであり、サンヤク（Dioscorea rhizome）、及びトリゴネラ属（Trigonella spp.）、アマドコロ属（Polygonatum spp.）、シオデ属（Smilax spp.）のようなハーブ薬等いくつかの種の植物の構成成分である。ジオスゲニンは、抗がん（Yan,L.Lら, Exp Oncol, 31, pp.27-32, 2009.）、抗食物アレルギー（Huang,C.H.ら, Planta Med, 75, pp.1300-1305, 2009.）、ガラクトース投与による酸化ストレス誘発性の記憶障害の抑制効果（Chiu,C.S.ら, Am J Chin Med, 39, pp.551-563, 2011.）及び抗糖尿病性神経障害（Kang,T.H.ら, Biol Pharm Bull, 34, pp.1493-1498, 2011.）等が報告されている。さらには、肌の美白効果（特表２０１０－５３５７５８号明細書）、シワとり等皮膚改善（特表２００９－５０１２０９号明細書、特開２００７－０１６０１３号明細書）、発毛効果（特開２００６－２７３７５４号明細書）等の効果が知られている。
　例えば、ジオスゲニンは、後述のように市販のものが利用でき、また天然物からの抽出物を用いてもよい。
　本明細書で、ジオスゲニン誘導体とは、ジオスゲニンの等価物であり、1,25D3-MARRSの刺激活性を示す化合物をいう。ジオスゲニン誘導体は、市販されているものを用いてもよく、又は、公知方法、自体公知方法又はそれらに準ずる方法に従って製造したものを用いてもよく、天然物からの抽出物を用いてもよい。例えば、ジオスゲニン誘導体は、ジオスゲニンに置換基を導入したり、置換基を変換したりする化学修飾によって達成できる等価物であってもよく、天然物から抽出したジオスゲニン配糖体であってもよい。
　前記ジオシンは、ヤムイモ等に含まれるサポニンであり、ジオスゲニン配糖体である。1,25D3-MARRSの刺激活性を示すジオスゲニン誘導体化合物として好適に用いることができる。
　前記デノソミンは、下記式（Ｉ）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
 で表される新規合成化合物であり、脊髄損傷を改善することが報告されている（Teshigawara,Kら, Br J Pharmacol. 2013 Feb;1 68(4), pp.903-919.）。また、Matsuya, Yら, Org Lett. 2009 Sep 3;11(17): pp.3970-3973には、デノソミンが新しい抗アルツハイマー病薬候補となることが報告されている。しかしながら、デノソミンのシグナリングメカニズムについては、一切、知られていなかった。
　前記DHVD3は、カルシトリオールとも呼ばれる、ホルモン活性を有する形のビタミンＤであり、下記式（ＩＩ）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 で表される。
　本発明の上記の態様において、前記神経疾患が脊髄損傷又はアルツハイマー病であり、且つ前記1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物がデノソミンである場合を除いてもよい。
　本発明の別のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量を含む、神経疾患を治療するための医薬組成物に関する。
　神経疾患、ならびに、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩は、上記と同様であってよい。
　本発明の医薬組成物は、限定されるものではないが、慣用される方法により製剤化することが可能である。
　前記医薬組成物の好ましい剤形としては、例えば錠剤、散剤、細粒剤、顆粒剤、ドライシロップ剤、被覆錠剤、口腔内崩壊錠、チュアブル錠、カプセル剤、ソフトカプセル剤、シロップ剤、経口液剤、トローチ剤、ゼリー剤、吸入剤、坐剤、注射剤、軟膏剤、点眼剤、眼軟膏剤、点鼻剤、点耳剤、パップ剤、ローション剤、外用液剤、スプレー剤、外用エアゾール剤、クリーム剤、ゲル剤、テープ剤、バッカル錠、舌下錠、膣坐剤、膣錠、直腸ソフトカプセル剤等が挙げられる。製剤化には、通常用いられる例えば賦形剤、結合剤、崩壊剤、コーティング剤、滑沢剤、着色剤、矯味矯臭剤や、必要により安定化剤、乳化剤、吸収促進剤、界面活性剤、ｐＨ調製剤、防腐剤、抗酸化剤等を使用することができ、一般に医薬品製剤の原料として用いられる成分を配合して常法により製剤化可能である。本発明は、少なくともひとつの担体を混合させることを特徴とする医薬組成物の調製法も含有する。
　製剤化に用いられる成分（担体）としては、特に限定されないが、例えば大豆油、牛脂、合成グリセライド等の動植物油；例えば流動パラフィン、スクワラン、固形パラフィン等の炭化水素；例えばミリスチン酸オクチルドデシル、ミリスチン酸イソプロピル等のエステル油；例えばセトステアリルアルコール、ベヘニルアルコール等の高級アルコール；シリコン樹脂；シリコーンオイル；ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレン硬化ひまし油、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックコポリマー等の界面活性剤；例えばヒドロキシエチルセルロース、ポリアクリル酸、カルボキシビニルポリマー、ポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、メチルセルロース等の水溶性高分子；例えばエタノール、イソプロパノール等の低級アルコール；例えばグリセリン、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、ソルビトール等の多価アルコール；グルコース、ショ糖等の糖；例えば無水ケイ酸、ケイ酸アルミニウムマグネシウム、ケイ酸アルミニウム等の無機粉体、精製水等が挙げられる。賦形剤としては、例えば乳糖、コーンスターチ、白糖、ブドウ糖、マンニトール、ソルビット、結晶セルロース、二酸化ケイ素等が、結合剤としては、例えばポリビニルアルコール、ゼラチン、メチルセルロース、エチルセルロース、アラビアゴム、トラガント、ゼラチン、シェラック、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアセタールジエチルアミノアセテート、トウモロコシデンプン等が、崩壊剤としては、例えばトウモロコシデンプン、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、クロスポビドン、結晶セルロース、沈降炭酸カルシウム、クロスカルメロースナトリウム、クエン酸カルシウム、デキストリン、ペクチン、カルボキシメチルセルロースカルシウム等が、滑沢剤としては、例えばステアリン酸マグネシウム、タルク、ポリエチレングリコール、軽質無水ケイ酸、ショ糖脂肪酸エステル等が、着色剤としては医薬品に添加することが許可されているものが、矯味矯臭剤としては、ココア末、メントール、芳香散、ハッカ油、竜脳、桂皮末等が用いられる。
　例えば経口製剤は、有効成分である化合物又はその塩もしくはエステルあるいはこれらの水和物と賦形剤、さらに必要に応じて例えば結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味矯臭剤等を加えた後、常法により例えば散剤、細粒剤、顆粒剤、錠剤、被覆錠剤、カプセル剤等とする。錠剤、顆粒剤の場合には、例えば糖衣、その他必要により適宜コーティングすることはもちろん差支えない。シロップ剤や注射用製剤等の場合は、例えばｐＨ調製剤、溶解剤、等張化剤等と、必要に応じて溶解補助剤、安定化剤等を加えて、常法により製剤化する。また、外用剤の場合は、特に製法が限定されず、常法により製造することができる。使用する基剤原料としては、医薬品、医薬部外品、化粧品等に通常使用される各種原料を用いることが可能で、例えば動植物油、鉱物油、エステル油、ワックス類、高級アルコール類、脂肪酸類、シリコン油、界面活性剤、リン脂質類、アルコール類、多価アルコール類、水溶性高分子類、アクリル系粘着剤粘土鉱物類、精製水等の原料が挙げられ、必要に応じ、ｐＨ調製剤、抗酸化剤、キレート剤、防腐防黴剤、着色料、香料等を添加することができる。さらに、必要に応じて分化誘導作用を有する成分、例えば血流促進剤、殺菌剤、消炎剤、細胞賦活剤、ビタミン類、アミノ酸、保湿剤、角質溶解剤等の成分を配合することもできる。
　本発明の前記医薬組成物の投与形態は、特に限定されず、経口投与であっても、非経口投与であってもよい。非経口投与としては、例えば、直腸投与、経鼻投与、経肺投与、注射投与（例えば、静脈内投与、脊椎腔内投与、硬膜外腔内投与、筋肉内投与、皮下投与、腹腔内投与、動脈内投与、関節内投与、心臓内投与、嚢内投与、皮内投与、病巣内投与、眼内投与、胸腔内投与、くも膜下投与、子宮内投与、脳室内投与）等が挙げられる。
　本発明の特に好ましいひとつの態様において、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物がジオスゲニンである場合の投与形態は脊椎腔内投与又は静脈内投与、ジオシンである場合の投与形態は経口投与である。
　本発明の前記医薬組成物に含まれる1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物、又は薬学的に許容されるその塩の含有量は特に限定されないが、神経疾患に伴う症状を治療、改善、又は回復させるのに十分な用量とすることが好ましい。
　本発明にかかる医薬組成物の投与量は、例えば症状の程度、年齢、性別、体重、投与形態、塩の種類、疾患の具体的な種類等に応じて異なるが、通常、成人の場合は１日あたり経口投与で、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物又はその薬理学的に許容される塩を約２ｍｇ～約１０ｇ、好ましくは約５ｍｇ～約５ｇ、さらに好ましくは約１０ｍｇ～約１ｇを、注射投与で約２ｍｇ～約１０ｇ、好ましくは約５ｍｇ～約５ｇ、さらに好ましくは約１０ｍｇ～約１ｇを、それぞれ１回又は数回に分けて投与する。
　本発明のひとつの態様において、前記医薬組成物は、疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又はその薬学的に許容されている塩を併用してよい。前記疾患は、特に限定されないが、好ましくは神経疾患であり、より好ましくはＡＤである。
　本発明のひとつの態様において、前記神経疾患がＡＤである場合、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物、又は薬学的に許容されるその塩は、ＡＤやその症状の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物と併用してもよい。
　前記ＡＤやその症状の治療もしくは予防に有用であることが知られている化合物としては、アミロイドベータ（Ａβ）に起因する疾患、例えばＡＤ、老年性痴呆、ダウン症又はアミロイドーシス症等の治療のために、以下のメカニズムを有する化合物が挙げられる。
　具体的には例えば、コリンエステラーゼインヒビター（例えば、ｄｏｎｅｐｅｚｉｌ，ｈｕｐｅｒｚｉｎｅＡ，ｔａｃｒｉｎｅ，ｒｉｖａｓｔｉｇｍｉｎｅ，ｇａｌａｎｔａｍｉｎｅ）；ＡＭＰＡレセプターアンタゴニスト（例えば、３－（２－シアノフェニル）－５－（２－ピリジル）－１－フェニル－１，２－ジヒドロピリジン－２－オン等の１，２－ジヒドロピリジン化合物）；ＮＭＤＡレセプターアンタゴニスト（例えば、ｍｅｍａｎｔｉｎｅ）；アセチルコリン放出ステュムラント（例えば、ｐｒａｍｉｒａｃｅｔａｍ；ａｎｉｒａｃｅｔａｍ）；カルシウムチャンネルアゴニスト（例えば、ｎｅｆｉｒａｃｅｔａｍ）；フリーラジカルスカヴェンジャー（例えば、ＥＧｂ　７６１）；血小板活性因子アンタゴニスト（例えば、ＥＧｂ　７６１）；血小板凝集アンタゴニスト（例えば、ＥＧｂ　７６１，ｔｒｉｆｌｕｓａｌ）；インシュリンセンシタイザー（例えば、ｒｏｓｉｇｌｉｔａｚｏｎｅ）；パーオキシソーム増殖因子－活性化レセプターアゴニスト（例えば、ｒｏｓｉｇｌｉｔａｚｏｎｅ）；パーオキシソーム増殖因子－活性化レセプターガンマアゴニスト（例えば、ｒｏｓｉｇｌｉｔａｚｏｎｅ）；モノアミンオキシダーゼＢインヒビター（例えば、ｒａｓａｇｉｌｉｎｅ，ｓｅｌｅｇｉｌｉｎｅ，ｐｒｏｃａｉｎｅ）；カルニチンアセチルトランスフェラーゼステュムラント（例えば、ｌｅｖａｃｅｃａｒｎｉｎｅ）；ＮＳＡＩＤｓ（例えば、ｔｒｉｆｌｕｓａｌ，ｃｅｌｅｃｏｘｉｂ等のｃｙｃｌｏｏｘｙｇｅｎａｓｅ－２　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ）；神経成長因子アゴニスト（例えば、ｘａｌｉｐｒｏｄｅｎ，ＦＰＦ　１０７０）；ベータ－アミロイドインヒビター（例えば、ｔａｒｅｎｆｌｕｒｂｉｌ，ｔｒａｍｉｐｒｏｓａｔｅ，ｌｅｕｐｒｏｒｅｌｉｎ－Ｄ）；イムノモデレーター（例えば、ｔａｒｅｎｆｌｕｒｂｉｌ，ｉｍｍｕｎｅ　ｇｌｏｂｕｌｉｎ，ｉｃｏｓａｐｅｎｔｅｔｈｙｌ　ｅｓｔｅｒ）；ＮＦ－カッパＢインヒビター（例えば、ｔａｒｅｎｆｌｕｒｂｉｌ）；スロトロピン放出ホルモン（例えば、ｔａｌｔｉｒｅｌｉｎ）；ドーパミンＤ２レセプターアンタゴニスト（例えば、ｒｉｓｐｅｒｉｄｏｎｅ）；セロトニン２レセプターアンタゴニスト（例えば、ｒｉｓｐｅｒｉｄｏｎｅ）；ムスカリニックＭ１レセプターアゴニスト（例えば、ｃｅｖｉｍｅｌｉｎｅ）；アルファ１アドレノセプターアゴニスト（例えば、ｍｏｄａｆｉｎｉｌ）；セロトニン３レセプターアンタゴニスト（例えば、ａｌｏｓｅｔｒｏｎ）；ドーパミンＤ２レセプターアゴニスト（例えば、ａｒｉｐｉｐｒａｚｏｌｅ）；ドーパミンＤ２レセプターアンタゴニスト（例えば、ａｒｉｐｉｐｒａｚｏｌｅ）；セロトニン１Ａレセプターアゴニスト（例えば、ａｒｉｐｉｐｒａｚｏｌｅ）；セロトニン２Ａレセプターアンタゴニスト（例えば、ａｒｉｐｉｐｒａｚｏｌｅ）；グルコルチコイドアンタゴニスト（例えば、ｍｉｆｅｐｒｉｓｔｏｎｅ）；プロゲステロンアンタゴニスト（例えば、ｍｉｆｅｐｒｉｓｔｏｎｅ）；ＨＭＧ－ＣｏＡレダクターゼインヒビター（例えば、ａｔｏｒｖａｓｔａｔｉｎ，ｓｉｍｖａｓｔａｔｉｎ）；アデノシン取り込みインヒビター（例えば、ｐｒｏｐｅｎｔｏｆｙｌｌｉｎｅ）；ホスホジエステラーゼインヒビター（例えば、ｐｒｏｐｅｎｔｏｆｙｌｌｉｎｅ）；アセチルコリンレセプターアゴニスト（例えば、ｃｈｏｌｉｎｅ　ａｌｆｏｓｃｅｒａｔｅ）；膜透過エンハンサー（例えば、ｃｈｏｌｉｎｅ　ａｌｆｏｓｃｅｒａｔｅ）；カンナビノイド１レセプターアンタゴニスト（例えば、ｒｉｍｏｎａｂａｎｔ）；カンナビノイドレセプターアゴニスト（例えば、ｄｒｏｎａｂｉｎｏｌ）；血管形成インヒビター（例えば、ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）；免疫抑制剤（例えば、ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）；ツブリンアンタゴニスト（例えば、ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）；トロンボキサンＡシンターゼインヒビター（例えば、ｔｒｉｆｌｕｓａｌ）；アンチオキシダント（例えば、ｉｄｅｂｅｎｏｎｅ）；アルファアドレナレセプターアンタゴニスト（例えば、ｎｉｃｅｒｇｏｌｉｎｅ）；エストロゲンアンタゴニスト（例えば、ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ，ｔｒｉｌｏｓｔａｎｅ）；３－ベータハイドロキシステロイドデヒドロゲナーゼインヒビター（例えば、ｔｒｉｌｏｓｔａｎｅ）；シグナル伝達経路インヒビター（例えば、ｔｒｉｌｏｓｔａｎｅ）；メラトニンレセプターアゴニスト（例えば、ｒａｍｅｌｔｅｏｎ）；免疫ステュムラント（例えば、ｉｍｍｕｎｅ　ｇｌｏｂｕｌｉｎ，ｉｃｏｓａｐｅｎｔｅｔｈｙｌ　ｅｓｔｅｒ，ｐｒｏｃａｉｎｅ）；ＨＩＶエントリーインヒビター（例えば、ｐｒｏｃａｉｎｅ）；ナトリウムチャンネルアンタゴニスト（例えば、ｐｒｏｃａｉｎｅ）；微細管インヒビター（例えば、ＣＰＨ　８２）；グリシンＮＭＤＡアゴニスト（例えば、ｃｙｃｌｏｓｅｒｉｎｅ）；アデノシンＡ１レセプターアンタゴニスト（例えば、ＫＷ　３９０２）；ＡＴＰアーゼステュムラント（例えば、ｔｒｉａｃｅｔｙｌｕｒｉｄｉｎｅ）；ミトコドリア機能エンハンサー（例えば、ｔｒｉａｃｅｔｙｌｕｒｉｄｉｎｅ）；成長ホルモン放出因子アゴニスト（例えば、ｔｅｓａｍｏｒｅｌｉｎ）；ブチルコリンエスタラーゼインヒビター（例えば、ｂｉｓｎｏｒｃｙｍｓｅｒｉｎｅ）；アルファアドレナリン作動性レセプターアンタゴニスト（例えば、ｎｉｃｅｒｇｏｌｉｎｅ）；ＮＯシンターゼタイプＩＩインヒビター（例えば、ａｒｕｎｄｉｃ　ａｃｉｄ）；キレート化剤（例えば、ＰＢＴ　２）；アミロイド原線維生成インヒビター（例えば、ＴＴＰ４８８，ＰＦ　４４９４７００）；セレトニン４レセプターアゴニスト（例えば、ＰＲＸ　０３１４０）；セレトニン６レセプターアンタゴニスト（例えば、ＳＢ　７４２４５７）；ベンゾジアゼピンレセプターインバースアゴニスト（例えばｒａｄｅｑｕｉｎｉｌ）；Ｃａチャンネルアンタゴニスト（例えば、ｓａｆｉｎａｍｉｄｅ）；ニコチンレセプターアゴニスト（例えば、ｉｓｐｒｏｎｉｃｌｉｎｅ）；又はＢＡＣＥインヒビター（例えば、ＣＴＳ　２１１６６）等のメカニズムを有する化合物が挙げられる。
　さらに具体的化合物としては、例えば、ｄｏｎｅｐｅｚｉｌ，ｈｕｐｅｒｚｉｎｅ　Ａ，ｔａｃｒｉｎｅ，ｒｉｖａｓｔｉｇｍｉｎｅ，ｇａｌａｎｔａｍｉｎｅ，ｐｒａｍｉｒａｃｅｔａｍ，ａｎｉｒａｃｅｔａｍ，ｎｅｆｉｒａｃｅｔａｍ，ＥＧｂ７６１，ｒｏｓｉｇｌｉｔａｚｏｎｅ，ｒａｓａｇｉｌｉｎｅ，ｌｅｖａｃｅｃａｒｎｉｎｅ，ｃｅｌｅｃｏｘｉｂ，３－（２－シアノフェニル）－５－（２－ピリジル）－１－フェニル－１，２－ジヒドロピリジン－２－オン，ｔａｌａｍｐａｎｅｌ，ｂｅｃａｍｐａｎｅｌ，ｍｅｍａｎｔｉｎｅ，ｘａｌｉｐｒｏｄｅｎ，ｔａｒｅｎｆｌｕｒｂｉｌ，ｔｒａｍｉｐｒｏｓａｔｅ，ｌｅｕｐｒｏｒｅｌｉｎ－Ｄ，ｔａｌｔｉｒｅｌｉｎ，ｒｉｓｐｅｒｉｄｏｎｅ，ｃｅｖｉｍｅｌｉｎｅ，ｍｏｄａｆｉｎｉｌ，ａｌｏｓｅｔｒｏｎ，ａｒｉｐｉｐｒａｚｏｌｅ，ｍｉｆｅｐｒｉｓｔｏｎｅ，ａｔｏｒｖａｓｔａｔｉｎ，ｐｒｏｐｅｎｔｏｆｙｌｌｉｎｅ，ｃｈｏｌｉｎｅ　ａｌｆｏｓｃｅｒａｔｅ，ＦＰＦ　１０７０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４３６３７－０１－８），ｒｉｍｏｎａｂａｎｔ，ｄｒｏｎａｂｉｎｏｌ，ｄｏｃｏｓａｈｅｘａｅｎｏｉｃ　ａｃｉｄ，ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ，ｔｒｉｆｌｕｓａｌ，ｉｄｅｂｅｎｏｎｅ，ｎｉｃｅｒｇｏｌｉｎｅ，ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ｅｓｔｒｏｇｅｎｓ，ｔｒｉｌｏｓｔａｎｅ，ｓｉｍｖａｓｔａｔｉｎ，ｓｅｌｅｇｉｌｉｎｅ，ｒａｍｅｌｔｅｏｎ，ｉｍｍｕｎｅ　ｇｌｏｂｕｌｉｎ，ｉｃｏｓａｐｅｎｔｅｔｈｙｌ　ｅｓｔｅｒ，ｐｒｏｃａｉｎｅ，ＣＰＨ　８２，ｃｙｃｌｏｓｅｒｉｎｅ，ＫＷ　３９０２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３６１９９－０２－５），ｔｒｉａｃｅｔｙｌｕｒｉｄｉｎｅ，ｅｓｔｒｏｇｅｎ　ｄｅｍｅｎｔｉａ　ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ（ｅ．ｇ．，ＭＩＧＥＮＩＸ，Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，Ｃａｎａｄａ），ｔｅｓａｍｏｒｅｌｉｎ，ｂｉｓｎｏｒｃｙｍｓｅｒｉｎｅ，ｎｉｃｅｒｇｏｌｉｎｅ，ａｒｕｎｄｉｃ　ａｃｉｄ，ＰＢＴ　２，ＴＴＰ４８８，ＰＦ　４４９４７００，ＰＲＸ　０３１４０，ＳＢ　７４２４５７，ｒａｄｅｑｕｉｎｉｌ，ｓａｆｉｎａｍｉｄｅ，ｉｓｐｒｏｎｉｃｌｉｎｅ，ＣＴＳ　２１１６６，Ｂａｐｉｎｅｕｚｕｍａｂ，ＮＰ　０３１１１２，（２Ｓ，３ａＳ，７ａＳ）－１｛［（Ｒ，Ｒ）－２－フェニルシクロプロピル］カルボニル｝－２－［（チアゾリジン－３－イル）カルボニル］オクタヒドロ－１Ｈ－インドール，ｃｉｔａｌｏｐｒａｍ，ｖｅｎｌａｆａｘｉｎｅ，ｌｅｖｐｒｏｒｅｌｉｎ，ｐｒａｓｔｅｒｏｎｅ，ｐｅｐｔｉｄｅ　Ｔ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５３－４３－０），ｂｅｓｉｐｉｒｉｄｉｎｅ，ｌｅｘｉｐａｆａｎｔ，ｓｔａｃｏｆｙｌｌｉｎｅ，ＳＧＳ　７４２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３６９０－７８－８），Ｔ　５８８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４２９３５－０３－３），ｎｅｒｉｓｐｉｒｉｄｉｎｅ，ｄｅｘａｎａｂｉｎｏｌ，ｓａｂｃｏｍｅｌｉｎｅ，ＧＴＳ　２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５６２２３－０５－１），ＣＸ５１６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５４２３５－８３－３），ＡＢＴ　０８９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６１４１７－０３－４），ａｎａｐｓｏｓ，ｔｅｓｏｆｅｎｓｉｎｅ，ＳＩＢ　１５５３Ａ（すなわち、４－［［２－（１－メチル－イル－２－ピリロリジニル）エチル］チア］フェノール），ｌａｄｏｓｔｉｇｉｌ，ｒａｄｅｑｕｉｎｉｌ，ＧＰＩ　１４８５，ｉｓｐｒｏｎｉｃｌｉｎｅ，ａｒｕｎｄｉｃ　ａｃｉｄ，ＭＥＭ　１００３（すなわち、３－イソプロピル　５－（２－メトキシル）４－（２－クロロ－３－シアノフェニル）－２，６－ジメチルピリジン－３，５－ジカルボキシラーゼ），Ｖ　３３８１（すなわち、２－（２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－３－イルアミノ）アセトアミド塩酸塩），ｆａｒａｍｐａｔｏｒ，ｐａｌｉｒｏｄｅｎ，ｐｒａｓｔｅｒｏｎｅ－ｐａｌａｄｉｎ，ｕｒｏｃｏｒｔｉｎ，ＤＰ　ｂ９９（すなわち、２，２’－（エチレンジオキシ）ビス（２，１－フェニレン）ビス［Ｎ－［２－［２－（オクチルオキシ）エトキシ］－２－オキソエチル］イミノ］ビス（酢酸）），ｃａｐｓｅｒｏｄ，ＤＵ　１２５５３０，ｂａｐｉｎｅｕｚｕｍａｂ，ＡＬ　１０８（すなわち、Ｌ－Ａｓｐａｒａｇｉｎｙｌ－Ｌ－ａｌａｎｙｌ－Ｌ－ｐｒｏｌｙｌ－Ｌ－ｖａｌｙｌ－Ｌ－ｓｅｒｙｌ－Ｌ－ｉｓｏｌｅｕｃｙｌ－Ｌ－ｐｒｏｌｙｌ－Ｌ－ｇｌｕｔａｍｉｎｅ），ＤＡＳ　４３１，ＤＥＢＩＯ　９９０２，ＤＡＲ　１００，ｍｉｔｏｑｕｉｎｏｎｅ，ＩＰＬ　４５５９０３（すなわち、５（Ｓ）－［３－（シクロペンチルオキシ）－４－メトキシフェニル］－３（Ｓ）－（３－メチルベンジル）ピペリジン－２－オン），Ｅ２ＣＤＳ，ＰＹＭ　５００２８，ＰＢＴ　２，ｌｅｃｏｚｏｔａｎ，ＳＢ　７４２４５７，ＣＸ　７１７，ＡＶＥ　１６２５（すなわち、１－（ビス（４－クロロフェニル）メチル）－３－（（３，５－ジフルオロフェニル）（メチルスルフォニル）メチレン）アゼチジン），ＬＹ　４５０１３９（すなわち、Ｎ２－［２（ｓ）－ヒドロキシ－３－メチルブチリル］－Ｎ１－［３－メチル－２－オキソ－２，３，４，５－テトラヒドロ－１Ｈ－３－ベンズアゼピン－１（Ｓ）－イル］－Ｌ－アラニンアミド），ＥＭ　１４２１（すなわち、４，４’－［（２Ｒ，３Ｓ）－２，３－ジメチルブタン－１，４－ジイル］ビス（１，２－ジメトキシベンゼン），ＳＲＮ　００１，ＴＴＰ　４８８，ＰＲＸ　０３１４０，ｄｉｍｅｂｏｌｉｎ，ｇｌｙｃｉｎｅ－ｐｒｏｌｉｎｅ－ｇｌｕｔａｍａｔｅ，Ｃ１０５，ＡＬ　２０８，ＭＥＭ　３４５４，ＡＣ　１２０２，Ｌ　８３０９８２，ＬＹ　４５１３９５（すなわち、（Ｒ）－Ｎ－［２－［４’－（メチルスルホンアミドメチル）ビフェニル－４－イル］プロピル］プロパン－２－スルフォンアミド），ＭＫ　０２４９，ＬＹ　２０６２４３０，ｄｉｅｔｈｙｌｎｏｒｓｐｅｒｍｉｎｅ，ｎｅｂｏｇｌａｍｉｎｅ，Ｓ　１８９８６，ＳＡ　４５０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６５３７７－４４－６），ＧＲＩ　１，Ｓ　１７０９２（すなわち、（２Ｓ，３ａＳ，７ａＳ）－１｛［（Ｒ，Ｒ）－２－フェニルシクロプロピル］カルボニル｝－２－［（チアゾリジン－３－イル）カルボニル］オクタヒドロ－１Ｈ－インドール），ＳＬ　２５１１８８，ＥＵＫ　１８９，Ｒ　１４５０，６，６－ジメチル－３－（２－ヒドロキシエチル）チオ－１－（チアゾール－２－イル）－６，７－ジヒドロ－２－ベンゾチオフェン－４（５Ｈ）－オン，ＣＥＲＥ　１１０，ｄｅｘｅｆａｒｏｘａｎ，ＣＡＤ　１０６，ＨＦ　０２２０，ＨＦ　０４２０，ＥＨＴ　０２０２，ＶＰ　０２５，
ＭＥＭ　１４１４，ＢＧＣ　２０１２５９（すなわち、Ｎ，Ｎ－Ｄｉｍｅｔｈｙｌｃａｒｂａｍｉｃ　ａｃｉｄ，４－［１（Ｓ）－（メチルアミノ）－３－（４－ニトロフェノキシ）プロピル］フェニルエステル），ＥＮ　１００，ＡＢＴ　８３４，ＡＢＴ　２３９（すなわち、４－［２－［２－［（２Ｒ）－２－メチルピロリジニル］エチル］－ベンゾフラン－５－イル］ベンゾニトリル），ＳＧＳ　５１８，Ｒ　１５００，Ｃ　９１３８，ＳＳＲ　１８０７１１，ａｌｆａｔｒａｄｉｏｌ，Ｒ　１５７７，Ｔ　８１７ＭＡ（すなわち、１－［３－［２－（１－ベンゾチエン－５－イル）エトキシ］プロピル］アゼチジン－３－オールマレイン酸塩），ＣＮＰ　１０６１（すなわち、４－メチル－５－（２－ニトロオキシエチル）チアゾール），ＫＴＸ　０１０１（すなわち、ベータヒドロキシ酪酸ナトリウム），ＧＳＫ　１８９２５４（すなわち、６－［３－シクロブチル－２，３，４，５－テトラヒドロ－１Ｈ－ベンゾ［ｄ］アゼピン－７－イルオキシ］－Ｎ－メチルニコチンアミド），ＡＺＤ　１０８０，ＡＣＣ　００１，ＰＲＸ　０７０３４，ｍｉｄａｚｏｌａｍ，Ｒ－ｐｈｅｎｓｅｒｉｎｅ，ＡＺＤ　１０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　４８８－５９－５），ＳＮ　５２２，ＮＧＸ　２６７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５０３４３１－８１－０），Ｎ－ＰＥＰ－１２，ＲＮ　１２１９，ＦＧＬＬ，ＡＶＥ　８１１２，ＥＶＴ　１０１，ＮＰ　０３１１１２，ＭＫ　０７５２，ＭＫ　０９５２，ＬＸ　６１７１，ＰＡＺ　４１７，ＡＶ　９６５，ＰＦ　３０８４０１４，ＳＹＮ　１１４，ＧＳＩ　９５３，ＳＡＭ　３１５，ＳＡＭ　５３１，Ｄ－ｓｅｒｉｎｅ，ｌｅｔｅｐｒｉｎｉｍ　ｐｏｔａｓｓｉｕｍ，ＢＲ　１６Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４９１７５－７７－９），ＲＰＲ　１０７３９３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１９０８４１－５７－７），ＮＸＤ　２８５８，ＲＥＮ　１６５４，ＣＤＤ　０１０２，ＮＣ　１９００（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３２９２５－７４－７），ｃｉｃｌｏｓｐｏｒｉｎ，ＮＣＸ　２２１６（すなわち、（Ｅ）－４－（ニトロオキシ）ブチル３－［４－［２－（２－フルオロビフェニル－４－イル）プロパノイルオキシ］－３－メトキシフェニル］アクリレート），ＮＸＤ　３１０９，ＮＸＤ　１１９１，ＺＳＥＴ　８４５（すなわち、３，３－ジフェニルイミダゾ［１，２－ａ］ピリジン－２－（３Ｈ）－オン），ＥＴ　００２，ＮＴ　１３，ＲＯ　６３８６９５（すなわち、［１，６－（１，６－ジオキソヘキシル）］ジピロリジン－（２Ｒ）－カルボン酸），ｂｉｓｎｏｒｃｙｍｓｅｒｉｎｅ，ＢＡ　１０１６，ＸＤ　４２４１，ＥＵＫ　２０７（すなわち、（ＳＰ－５－１３）－（ａｃｅｔａｔｏ－κＯ）［１３，１６，１９，２２－テトラオキサ－３，６－ジアザトリシクロ［２１．３．１８，１２］オクタコサ－１（２７），２，６，８，１０，１２（２８），２３，２５－オクタエン－２７，２８－ジオラト（２－）－κＮ３，κＮ６，κＯ２７，κＯ２８］マグネシウム塩），ＬＧ　６１７　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ，ＺＳＥＴ　１４４６，ＰＡＮ　８１１，Ｆ　１４４１３（すなわち、２－［５－フルオロ－２（Ｓ）－メトキシ－２，３－ジヒドロ－１，４－ベンゾジオキシン－２－イル］－４，５－ジヒドロ－１Ｈ－イミダゾール），ＦＰ　７８３２（すなわち、Ｎ－［２－（５－メトキシ－１－ニトロソ－１Ｈ－インドール－３－イル）エチル］アセトアミド），ＡＲＡ　０１４４１８（すなわち、Ｎ－（４－メトキシベンジル）－Ｎ’－（５－ニトロ－１，３－チアゾール－２－イル）ウレア），ＡＺＤ　３１０２，ＫＰ　５４４（すなわち、２－アミノ－５－（４－クロロフェニルエチニル）－４－（４－トランス－ヒドロキシシクロヘキシルアミノ）ピリミジン），ＤＰ　１５５，５－クロロ－Ｎ－［３－［２－（ジメチルアミノ）エチル］－１Ｈ－インドール－５－イル］ナフタレン－２－スルフォンアミド，ＴＡＫ　０７０，
ｈｕｐｅｒｚｉｎｅ，Ｎ－［２－（３，５－ジメチルアダマント－１－イル）エチル］アセタミド塩酸塩，６－［４－［（ジメチルアミノ）メチル］－５－エチル－２－メトキシフェニル］ピリジン－２－アミン，４，６－ジフェニル－３－（４－（ピリミジン－２－イル）ピペラジン－１－イル）ピリダジン，Ｎ－［（１Ｓ，２Ｒ）－３－（３，５－ジフルオロフェニル）－１－ヒドロキシ－１－［（５Ｓ，６Ｒ）－５－メチル－６－（ネオペンチルオキシ）モルホォリン－３－イル］プロパン－２－イル］アセトアミド塩酸塩，Ｎ－［（１Ｒ，２Ｓ）－３－（３，５－ジフルオロフェニル）－１－ヒドロキシ－１－［（２Ｒ，４Ｒ）－４－フェノキシピロリジン－２－イル］プロパン－２－イル］－３－［（Ｒ）－２－（メトキシメチル）ピロリジン－１－カルボニル］－５－メチルベンズアミド，Ｒ　１５８９，ｍｉｄａｆｏｔｅｌ，ｐｈｅｎｓｅｒｉｎｅ，ｃｏｌｕｒａｃｅｔａｍ，ｐｈｙｓｏｓｔｉｇｍｉｎｅ，ｃｉｐｒａｌｉｓａｎｔ，ｎｉｔｒｏｆｌｕｒｂｉｐｒｏｆｅｎ，ＰＰＩ　１０１９（すなわち、（３α，５β，７α，１２α）－ｔｒｉｈｙｄｒｏｘｙｃｈｏｌａｎ－２４－ｏｙｌ－Ｌ－ｌｅｕｃｙｌ－Ｌ－ｖａｌｙｌ－Ｌ－ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｙｌ－Ｌ－ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｙｌ－Ｌ－ａｌａｎｉｎｅ），ｄａｐｓｏｎｅ，ＭＤＬ　１００４５３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２９９３８－３４－７），ＮＳ　３７７，ｍｉｄａｘｉｆｙｌｌｉｎｅ，ｐｒｏｐｏｆｏｌ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ，ｍｅｔｒｉｆｏｎａｔｅ，ｃｅｒｏｎａｐｒｉｌ，ｔｅｎｉｌｓｅｔａｍ，ｓｕｆｏｘａｚｉｎｅ，ｓｅｇｌｉｔｉｄｅ，ｅｂｉｒａｔｉｄｅ，ｎｅｂｒａｃｅｔａｍ，ｍｉｌａｃｅｍｉｄｅ，ｉｏｄｏｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ，ＳＭ　１０８８８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２９２９７－２１－８），Ｕ　８０８１６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３８５５４－１１－７），ＹＭ　９５４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３２０４１－８５－１），ＳＵＴ　８７０１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３５７７－７３－１），ａｐｏｖｉｎｃａｍｉｎｅ，ＦＲ　１２１１９６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３３９２０－６５－７），ＬＹ　２７４６１４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３６１０９－０４－１），ＣＬ　２７５８３８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１５９３１－６５－２），ｉｇｍｅｓｉｎｅ，Ｋ　７２５９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３３６６７－８８－６），ｖｉｎｃｏｎａｔｅ，ｉｔａｓｅｔｒｏｎ，ＣＬ　２８７６６３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２５１０９－９８－０），ＷＡＹ　１００２８９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３６０１３－６９－９），ＳＲ　４６５５９Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３７７３３－３３－６），ＧＹＫＩ　４６９０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４２９９９－５９－５），Ｌ　６７０５４８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２１５６４－８９－４），Ｙ　２９７９４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２９１８４－４８－１），ＡＦ　１２５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　７６３１－８６－９），ＫＦＭ　１９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３３０５８－７２－７），ＳＴ　７９６（すなわち、（Ｓ）－３－［３－（トリフルオロメチル）ベンゾイル）アミノ］ヘキサハイロドアゼピン－２－オン），ＲＵ　３３９６５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２２３２１－０５－５），ＳＤＺ　２１００８６（すなわち、（－）－１’，２（Ｓ）－ジメチルスピロ［１，３－ジオキサン－４，４’－ピペリジン］），Ｌ　６８９６６０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４４８６０－７９－７），Ｌ　６８９５６０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３９０５１－７８－８），ＳＴ　６１８（すなわち、１－（６，７－ジメトキシ－１，２，３，４－ｔｅテトラヒドロ－２－ナフチル）－４－ヒドロキシピロリジン－２－オン），Ｕ　７４５００Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１０１０１－６５－０），ＧＥＡ　８５７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２０４９３－４２－７），ＢＩＢＮ　９９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４５３０１－４８－０），ＤＸ　９３６６，ＯＮＯ　１６０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１４６６８－７６－７），ＭＤＬ　１０２２３４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３７７６６－８１－５），Ｐ　９９３９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５７９７１－３７－４），ＰＤ　１４０５３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５７９７１－３９－６），ａｚｅｔｉｒｅｌｉｎ，ＭＲ　１６７２８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４７６１４－２１－９），ｄａｂｅｌｏｔｉｎｅ，ＭＤＬ　１０２５０３（すなわち、８－［１（Ｒ）－メチル－２－フェニルエチル］－１，３－ジプロピル－７Ｈ－キサンチン），ＰＤ　１４１６０６（すなわち、（±）－（Ｚ）－３－（３－フェニル－２－プロピニルオキシイミノ）－１－アザビシクロ［２．２．１］ヘプタン），ＳＮＫ　８８２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５２２２１－１２－０），Ｌ　６９６９８６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４１５５３－４５－９），ｔａｚｏｍｅｌｉｎｅ，ＬＹ　２３５９５９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３７４３３－０６－８），２－（２－チオキソピロリジン－１－イル）アセトアミド，ＡＫ　３０　ＮＧＦ，ＡＢＴ　４１８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４７４０２－５３－７），ｉｔａｍｅｌｉｎｅ，ＨＵＰ　１３，ｓｉｂｏｐｉｒｄｉｎｅ，ＫＳＴ　５４５２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５７９９８－８８－４），ＴＪ　５４，Ｕ　９２７９８（すなわち、７－［４－［Ｂｉｓ（４－フルオロフェニル）メチル］パーヒドロ－１，４－ジアゼピン－１－イルメチル］－４－イソプロピル－２－メトキシ－２，４，６－シクロヘプタトリエン－１－オン），Ｕ　９２０３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４２２２３－９２－５），
３－（スルファモイルオキシ）エストラ－１，３，５（１０）－トリエン－１７－オン，Ｐ　１１０１２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６４７２３－３６－８），Ａ　８２６９５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４７３８８－８６－１），ＦＲ　７６６５９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１６９０４－２５－７），ａｐａｘｉｆｙｌｌｉｎｅ，ＣＸ　４１７，７　ＭＥＯＴＡ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５７７８－８０－３），ＢＵ　４５１４Ｎ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５１０１３－３９－７），ｐｒｅｇｎｅｎｏｌｏｎｅ，ｍｅｘｉｄｏｌ，ＳＴ　８５７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５４７５５－６３－２），ＲＵ　４９０４１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３８２８－８０－８），ＲＵ　３５９２９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１１７１１－４７－８），Ｐ　８７８１８４，Ｐ　１２８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５７７１６－５２－４），ｅｕｒｙｓｔａｔｉｎ　Ａ，ｅｕｒｙｓｔａｔｉｎ　Ｂ，ＬＫ　１２，ＮＢＩ　１０８，ＮＢＩ　１０７，ＮＢＩ　１１７，Ｌ　７０５１０６，ｂａｃｏｓｉｄｅ　Ａ　＋　Ｂ，ｃｌａｕｓｅｎａｍｉｄｅ，ＳＭ　２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５５１５６－２２－２），ａｌａｐｔｉｄｅ，ＲＳ　１７０１７（すなわち、１－（４－アミノ－５－クロロ－２－メトキシフェニル）－５－（１－ピペリジニル）－１－ペンタノン塩酸塩），ＡＦ　１５０（Ｓ）（すなわち、（Ｓ）－［１－メチル－ピペリジン－４－スピロ－（２’－メチルチアゾリン）］），ＲＯ　１５３５０５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　７８７７１－１３－８），ＰＶ　１１３（すなわち、１，２，３，４－テトラヒドロピロール－［１，２－ａ］－ピラジン），ａｒｉｓｕｇａｃｉｎ，Ａ　９８２８４（すなわち、２（Ｒ）－（３－メチルキサゾール－５－イル）キヌクリジン），ＡＰ　５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３６９４１－８５－０），ＢＤ　１０５４，ＳＤＺ　ＮＤＤ　０９４（すなわち、ビス－（２－（２－メチルイミダゾール－１－イル］メチル）－ピリジン－トリス（ハイドロゲン－フマレート），ＡＺ　３６０４１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１７３３２４－７６－０），ｑｕｉｌｏｓｔｉｇｍｉｎｅ，Ａ　８４５４３（すなわち、３－［１－メチルピロリジン－２－（Ｓ）－イルメトキシ］ピリジンフマレート），ＢＴＧ　４２４７（すなわち、（２－［２－クロロエトキシ［４－（ジメチルアミノ）フェニル］ホスホォリル］－アセトヒドラジン），ＣＧＰ　５００６８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５８６４７－４９－５），ｃｅｒｅｂｒｏｃｒａｓｔ，ｄｅｓｆｅｒｒｉ－ｎｏｒｄａｎｏｘａｍｉｎｅ，ｉｓｏｌｉｃｈｅｎａｎ，ＭＨＰ　１３３（すなわち、３－（Ｎ，Ｎ－ジメトキシカルバモイルオキシ）－１－メチル－２－（４－フェニル－セミカルバゾメチル）ピリジウムクロライド），ＦＲ　１５２５５８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５１０９８－０８－７），ＧＶＳ　１１１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５７１１５－８５－０），Ｐ　１１１４９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６４７２４－７９－２），ＰＤＣ　００８００４，ＫＳＴ　２８１８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５８６２３－２６－８），ＫＳＴ　５４１０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５８６２３－２７－９），ＲＵ　５２５８３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３８２９－３３－４），ＰＤ　１５１８３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４９９２９－３９－５），ＵＣＬ　１１９９（すなわち、４－［２－［（５－ニトロピリジン－２－イルスルファニル）エチル］－１Ｈ－イミダゾール），ｉｓｏｖａｎｉｈｕｐｅｒｚｉｎｅ　Ａ，ＳＩＢ　１７６５Ｆ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１７９１２０－５２－６），ＪＷＳ　ＵＳＣ　７５１Ｘ（すなわち、３－［［［２－［［（５－ジメチルアミノエチル）－２－フラニル］メチル］チオ］エチル］アミノ］－４－ニトロピリダジン），ＧＲ　１７５７３７（すなわち、３－（４－クロロベンジル）－５－［２－（１Ｈ－イミダゾール－４－イル）エチル］－１，２，４－オキサジアゾール），ＫＳ　５０５Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３１７７４－５３－３），ＺＴＴＡ　１（すなわち、Ｎ－ベンジルオキシカルボニル－チオプロピル－チオプロピナール－ジメチルアセタール），ＡＧＮ　１９０８３７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３６５２７－４０－７），Ｐ　１０３５８（１８８２４０－５９－７），ＷＡＹ　１３１２５６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１７４００１－７１－９），ＤＢＯ　８３（すなわち、３－（６－クロロピラジン－３－イル）－ジアザビシクロ［３．２．１］オクタン　二塩酸塩一水和物），ＦＵＢ　１８１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５２０２９－８０－６），ＲＪＲ　２５５７，ＷＳＵ　２０８８，ＬＶＶ－ｈａｅｍｏｒｐｈｉｎ－７，Ｍ　４０（すなわち、ｇａｌａｎｉｎ［１－１２］－Ｐｒｏ３－（Ａｌａ－Ｌｅｕ）２－Ａｌａ－ＮＨ２），ＳＩＢ　１７５７，ＳＫＦ　７４６５２（すなわち、［５－クロロ－２－（４－メトキシフェニル）－３－ベンゾフラニル］［４－［３－（ジメチルアミノ）－プロポキシ］フェニル］メタンノン），ＣＧＰ　７１９８２，ＳＣＨ　５７７９０（すなわち、４－シクロヘキシル－アルファ－［４－［［４－メトキシフェニル］スルフィニル］フェニル］－１－ピペラジンアセトニトリル），Ｐｕｔｒｅｓｃｉｎｅ－Ｄ－ＹｉＡｂｅｔａ１１，ＤＵ　１４（すなわち、ｐ－Ｏ－（スルファモイル）－Ｎ－テトラデカノイルチラミン），ＣＬＺ　４，ＳＬ　３４００２６，ＰＰＲＴ　４２４，ｃｉｐｒｏｘｉｆａｎ，ＵＲ　１８２７（すなわち、２－（１－ベンジルピペリジン－４－イル）－１－［４－（５－メチルピリミジン－４－イルアミノ）フェニル］－１－エタノン），ｃａｐｒｏｃｔａｍｉｎｅ，ＴＧＳ　２０（すなわち、Ｌ－ｐｙｒｏｇｌｕｔａｍｉｌ－Ｄ－ａｌａｎｉｎｅ　ａｍｉｄｅ），ＰＧ　９（すなわち、アルファ－トロパニル　２－［（４－ブロモ）フェニル］プロピオネート），
ＴＥＩ　３３５６（すなわち、（１６Ｓ）－１５－デオキシ－１６－ヒドロキシ－１６－メチル－９－（Ｏ）－メタノ－ＤＥＬＴＡ６（９アルファ）－プロスタグランジンＩ１），ＬＹ　３９２０９８（すなわち、Ｔｈｉｏｐｈｅｎｅ，３－［（２－メチルエチル－２）スルホニルアミノプロピル－２］フェニル－４－イル－），ＰＧ　１０００，ＤＭ　２３２，ＮＥＰＰ　１１（すなわち、１２－イソ－１５－デオキシ－１８－（４－メチル）フェニル－１３，１４－ジヒドロ－デルタ７－プロスタグランジンＡ１メチルエステル），ＶＡ　１００（すなわち、（２，３－ジヒドロ－２－［［（４－フルオロベンゾイル）アミノ］エチル］－１－メチル－５－フェニル－１Ｈ－１，４－ベンゾジアゼピン），ＶＡ　１０１（すなわち、（２，３－ジヒドロ－２－［［（２－チエニルカルボニル）アミノ］エチル］－１－メチル－５－フェニル－１Ｈ－１，４－ベンゾジアゼピン），ＮＣ　１１１５８５（すなわち、（３Ｓ）－１，３－Ｂｉｓ－［３－［（３－アザビシクロ［２．２．２］オクタニル）－１，２，５－チアジアゾール－４－イルオキシ］－１－プロピン－１－イル］ベンゼン，２Ｌ－（＋）－ｔａｒｔａｔｅ），ＩＮ　２０１，ｉｍｏｐｒｏｘｉｆａｎ，ｋａｎｏｋｏｄｉｏｌ，ｐｉｃｒｏｓｉｄｅ　Ｉ，ｐｉｃｒｏｓｉｄｅ　ＩＩ，ＤＭ　２３５（すなわち、１－（４－ベンゾイルピペラジン－１－イル）プロパン－１－オン），モノクローナル抗体　１０Ｄ５，ＪＬＫ２，ＪＬＫ　６，ＪＬＫ　７，ＤＡＰＴ（すなわち、Ｎ－［Ｎ－（３，５－ジフルオロフェンアセチル）－Ｌ－アラニル］－Ｓ－フェニルグリシン　ｔ－ブチルエステル），ｈｕｐｅｒｉｎｅ　Ｘ，ＳＧＳ　１１１（すなわち、（Ｓ）－エチル　２－［１－（２－フェニルアセチル）ピロリジン－２－カルボキサミド］アセテート），ＮＰ　７５５７，Ｃ　９１３６，Ｃ　７６１７，Ｒ　１４８５，ｒｏｆｅｃｏｘｉｂ，ｖｅｌｎａｃｒｉｎｅ，ｍｏｎｔｉｒｅｌｉｎ，ｌａｚａｂｅｍｉｄｅ，ＯＲＧ　２７６６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５０９１３－８２－１），ｓａｂｅｌｕｚｏｌｅ，ａｄａｆｅｎｏｘａｔｅ，ＣＡＳ　Ｎｏ．　９０６１－６１－４，ｉｐｉｄａｃｒｉｎｅ，ｂｅｍｅｓｅｔｒｏｎ，ｉｄａｚｏｘａｎ，ｌｉｎｏｐｉｒｄｉｎｅ，ｓｅｌｆｏｔｅｌ，ｓｕｒｉｔｏｚｏｌｅ，ｍｉｌａｍｅｌｉｎｅ，ｘａｎｏｍｅｌｉｎｅ，ＴＪ　９６０，ｆａｓｏｒａｃｅｔａｍ，ｅｐｔａｓｔｉｇｍｉｎｅ，ｅｎｓａｃｕｌｉｎ，ｚａｎａｐｅｚｉｌ，ｐｏｓａｔｉｒｅｌｉｎ，ｚａｃｏｐｒｉｄｅ，ＲＳ　８６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　３５７６－７３－６），ＯＲＧ　５６６７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　３７５５２－３３－３），ＲＸ　７７３６８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　７６８２０－４０－１），ＢＭＳ　１８１１６８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３２５９－９１－６），ＢＹ　１９４９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　９０１５８－５９－１），ＡＷＤ　５２３９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１０９００２－９３－９），ＹＭ　７９６（１７１２５２－７９－２），ａｌｏｒａｃｅｔａｍ，ＣＩ　９３３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　９１８２９－９５－７），ＳＴ　７９３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　９９３０６－３７－３），ｃｅｂａｒａｃｅｔａｍ，ｚｉｆｒｏｓｉｌｏｎｅ，ｔａｌｓａｃｌｉｄｉｎｅ，ａｌｖａｍｅｌｉｎｅ，ＪＴＰ　２９４２（１４８１５２－７７－６），ＯＰＣ　１４１１７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１０３２３３－６５－４），ｅｌｚｉｖｅｒｉｎｅ，ＡＰ　５２１（すなわち、Ｎ－（１，３－ベンゾジオキソール－５－イルメチル）－１，２，３，４－テトラヒドロ［１］ベンゾチエノ［２，３－ｃ］ピリジン－３（Ｒ）－カルボキサミド塩酸塩），Ｓ　８５１０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５１４６６－２３－８），ＪＴＰ　４８１９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６２２０３－６５－８），ｉｃｏｐｅｚｉｌ，ＳＣ　１１０，ＦＫ　９６０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３３９２０－７０－４），ＤＭＰ　５４３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６０５８８－４５－４），ｇａｎｓｔｉｇｍｉｎｅ，ＣＩ　１０１７（すなわち、（Ｒ）－（－）－（Ｚ）－１－アザビシクロ［２．２．１］ヘプタン－３－オン，Ｏ－（３－（３’－メトキシフェニル）－２－プロピオニル）－オキシムマレイン酸），Ｔ　８２（すなわち、２－［２－（１－ベンジルピペリジン－４－イル）エチル］－２，３－ジヒドロ－９－メトキシ－１Ｈ－ピロロ［３，４－ｂ］キノリン－１－オン　１／２フマル酸塩），ＮＧＤ　９７１，ｖａｃｃｉｎｅ　ｏｆ　Ａｓｐａｒｔｙｌ－ａｌａｎｙｌ－ｇｌｕｔａｍｙｌ－ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｙｌ－ａｒｇｉｎｙｌ－ｈｉｓｔｉｄｙｌ－ａｓｐａｒｔｙｌ－ｓｅｒｙｌ－ｇｌｙｃｙｌｔｙｒｏｓｙｌ－ｇｌｕｔａｍｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｈｉｓｔｉｄｙｌ－ｈｉｓｔｉｄｙｌ－ｇｌｕｔａｍｉｎｙｌ－ｌｙｓｙｌ－ｌｅｕｃｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｙｌ－ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｙｌ－ａｌａｎｙｌ－ｇｌｕｔａｍｙｌ－ａｓｐａｒｔｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｇｌｙｃｙｌ－ｓｅｒｙｌ－ａｓｐａｒａｇｉｎｙｌ－ｌｙｓｙｌ－ｇｌｙｃｙｌ－ａｌａｎｙｌ－ｉｓｏｌｅｕｃｙｌ－ｉｓｏｌｅｕｃｙｌ－ｇｌｙｃｙｌｌｅｕｃｙｌ－ｍｅｔｈｉｏｎｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｇｌｙｃｙｌ－ｇｌｙｃｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｖａｌｙｌ－ｉｓｏｌｅｕｃｙｌ－ａｌａｎｉｎｅ，ＰＢＴ　１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３０－２６－７），ＴＣＨ　３４６，ＦＫ　９６２（すなわち、Ｎ－（１－アセチルピペリジン－４－イル）－４－フルオロベンズアミド），ｖｏｘｅｒｇｏｌｉｄｅ，ＫＷ　６０５５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　６３２３３－４６－５），ｔｈｉｏｐｉｌｏｃａｒｐｉｎｅ，ＺＫ　９３４２６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　８９５９２－４５－０），ＳＤＺ　ＮＶＩ　０８５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１０４１９５－１７－７），ＣＩ　１００２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４９０２８－２８－４），
Ｚ　３２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３０８４９－５８－０），ｍｉｒｉｓｅｔｒｏｎ，ＣＨＦ　２０６０（すなわち、Ｎ－ヘプチルカルバミン酸　２，４ａ，９－トリメチル－２，３，４，４ａ，９，９ａ－ヘキサヒドロ－１，２－オキサジノ［６，５－ｂ］インドール－６－イル　エステル－Ｌ－酒石酸塩），ｇｅｄｏｃａｒｎｉｌ，ｔｅｒｂｅｑｕｉｎｉｌ，ＨＯＥ　０６５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３０６０－４４－６），ＳＬ　６５０１０２，ＧＲ　２５３０３５，ＡＬＥ　２６０１５，ＳＢ　２７１０４６（すなわち、５－クロロ－Ｎ－（４－メトキシ－３－ピペラジン－１－イル－フェニル）－３－メチル－２－ベンゾチオフェンスルホンアミド），ｉＡｂｅｔａ５，ＳＣＨ　２１１８０３（すなわち、３－クロロフェニル［４－［１－［１－（２－アミノ－３－メチルベンゾイル）－４－ピペリジニル］－４－ピペリジニルメチル］フェニル］スルホン），ＥＶＴ　３０１，ａｌｐｈａ－Ｌｉｎｏｌｅｎｉｃ　ａｃｉｄ／ｌｉｎｏｌｅｉｃ　ａｃｉｄ，Ｋａｍｉｋｉｈｉ－Ｔｏ，ｓｉａｇｏｓｉｄｅ，ＦＧ　７１４２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　７８５３８－７４－６），ＲＵ　４７０６７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１１７１１－９２－３），ＲＵ　３５９６３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３９８８６－０３－６），ＦＧ　７０８０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１００３３２－１８－１），Ｅ　２０３０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４２００７－７０－３），トランフフォーミング成長因子ベータ－１，Ａ　７２０５５（すなわち、２’，１－ジメチルスピロ［ピペリジン－４，５’－オキサゾリジン］－３’－カルボキシアルデヒド），ＮＳ　６２６，ｄｉｍｉｒａｃｅｔａｍ，ＧＴ　３００１，ＧＴ　２５０１，ＧＴ　２３４２，ＧＴ　２０１６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５２２４１－２４－２），ＯＲＧ　２００９１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４１５４５－５０－８），ＢＣＥ　００１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　９５６７８－８１－２），ＣＧＰ　３５３４８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３６９０－７９－９），ＷＡＹ　１００６３５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４６７１４－９７－８），Ｅ　４８０４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６２５５９－３４－４），ＬＩＧＡ　２０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２６５８６－８５－４），ＮＧ　１２１（すなわち、２－［４，８－ジメチル－３（Ｅ），７（Ｅ）－モノアジエニル］－３，５－ジヒドロキシ－２－メチル－３，４，７，９－テトラヒドロ－２Ｈ－フルオロ［３，４－ｈ］－１－ベンゾピラン－７－オン），ＭＦ　２４７（すなわち、Ｎ－［１０－（ジメチルミノ）デシル］カルバミン酸（３ａＳ，８ａＲ）－１，３ａ，８－トリメチル－１，２，３，３ａ，８，８ａ－ヘキサヒドロピロロ［２，３－ｂ］インドール－５－イル　エステル），ＪＴＰ　３３９９（すなわち、Ｎ－ベンジル－２（Ｓ）－［２（Ｓ）－（フェノキシアセチル）ピロリジン－１－イルカルボニル］ピロリジン－１－カルボキサミド），ＫＦ　１７３２９，ｔｈｉｏｐｅｒａｍｉｄｅ，Ｆ　３７９６（すなわち、１－［２－（１－ベンジルピペリジン－４－イル）エチル］－３－［３，４－（メチレン－ジオキシ）ベンゾイル］チオウレア），ＧＴ　４００１，ＧＴ　４００２，ＦＰＬ　１４９９５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２３３１９－０３－９），ＲＵ　３４３３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３７１５７－５８－５），ＳＲ　９６７７７Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１５７６７－９４－７），ＳＩＢ　Ｔ１９８０，ＮＳ　６４９（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４６８２８－０２－６），ＰＤ　１４２５０５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１４９９２９－０８－８），ＧＹＫＩ　５２４６６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１０２７７１－２６－６），ＲＯ　２４６１７３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５９７２３－５７－６），ＳＣＨ　５０９１１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６０４１５－０７－６），Ｚ　４１０５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１１９７３７－５２－９），ＲＳ　６７３３３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６８９８６－６０－５），ＮＳ　１５４６，ＺＭ　２４１３８５（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３９１８０－３０－６），ＲＯ　２４９９７５（すなわち、［１Ｓ，３Ｓ（２’Ｓ），５Ｒ］－３－（１－ベンジル－５－オキソピロリジン－２－イルメチル）－５－（１Ｈ－イミダゾール－５－イルメチル）シクロヘキサン－１－アセタミド），ＡＦ　１８５（すなわち、８－メチル－３－（２－プロピニル）－１，３，８－トリアザスピロ［４，５］デカン－２，４－ジオン），ＣＥＰ　４２７，ＣＸ　４２３，ＣＸ　４３８，ＣＸ　４８０，ＣＤＰ－ｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ，ＧＴ　４００３，ＧＴ　４０１１，ＧＴ　５０１１，ＭＳ　４３０（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２２１１３－４４－４），ＭＢＦ　３７９（すなわち、［３，３－ビス（ヒドロキシメチル）－８－ヒドロキシ－３，４－ジヒドロ－２Ｈ－１，４－ベンゾキサジン－５－イル］［３’，５’－ジヒドロキシ－４’－（２－イキソ－２－フェニルエトキシ）フェニル］メタノン），ＮＧＤ　１８７（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１６３５６５－４８－８），ＤＵＰ　８５６，ＭＲ　３０６６，ＭＦ　８６１５（すなわち、５－アミノ－６－クロロ－４－ヒドロキシ－３，４－ジヒドロ－１Ｈ－チオピラノ－［３，４－ｂ］キノリノン），ｈｉｍｂａｃｉｎｅ，ＡＢＳ　３００，ＲＪＲ　２４０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５３８－７９－４），ＭＦ　２６８（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１７４７２１－００－７），ＲＯ　４６５９３４（すなわち、Ｎ，Ｎ－ジメチルカルバミン酸　３－（２－シクロヘキシル）－２，３，３ａ，４，５，９ｂ－ヘキサヒドロ－１Ｈ－ベンゾ［ｅ］インドール－６－イル　エステル），ＮＳ　３９３，ＲＧＨ　２７１６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３４０６９－６８－４），
ＷＩＮ　６７８７０２（１２，１２－ビス（３－フリル）－６，１１－ジヒドロ－６，１１－エタノベンゾ［ｂ］キノリジニウムクロライド），ＲＳ　６６２５２（すなわち、１－ブチル－２－［（２’－（２Ｈ－テトラゾール－５－イル）－ビフェニル－４－イル）メチル］－１Ｈ－インドール－３－カルボン酸），ＡＩＴ　０３４（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３８１１７－４８－３），ＮＧ　０１２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１３１７７４－５３－３），ＰＤ　１４２０１２（ＣＡＳ　Ｎｏ．　５７７８－８４－７），ＧＴ　４０５４，ＧＴ　４０７７，ＧＴ　４０３５，Ｐ　２６（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５２１９１－７４－７），ＲＧＨ　５２７９（すなわち、（－）－（１３ａＲ，１３ｂＳ）－１３ａ－エチル－２，３，５，６，１３ａ，１３ｂ－ヘキサヒドロ－１Ｈ－インドロ［３，２，１－ｄｅ］ピリド［３，２，１－ｉｊ］［１，５］ナフチリジン－１２－カルボン酸　２－アセトキシエチル　エステル），ＡＩＴ　０８３，ＣｅＮｅＳ，エストラジオール（すなわち、１，３，５（１０）－エストラトリエン－３，１７ベータ－ジオール），ＷＡＹ　１３２９８３（（３Ｒ，４Ｒ）－３－（３－ヘキサスルファニルピラジン－２－イルオキシ）－１－アザビシクロ［２．２．１］ヘプタン　塩酸塩），ＡＢＳ　２０５，ＡＢＳ　４０１，ＳＸ　３５０７（すなわち、３－（３－プロピル－１，２，４－オキサジアゾール－５－イル）キノキサリン－２（１Ｈ）－オン），ＡＲＲ　１７７７９（すなわち、（－）－スピロ［１－アザビシクロ［２．２．２］オクタエン－３，５－オキサゾリジン］－２－オン），ＸＥ　９９１（すなわち、１０，１０－ビス（４－ピリジルメチル）アンスラセン－１０（９Ｈ）－オン），ｐｈｅｎｅｔｈｙｌｎｏｒｃｙｍｓｅｒｉｎｅ，ＲＯ　６５７１９９，ＲＪＲ　１７８１（すなわち、Ｒ（＋）－２－（３－ピリジル）－１－アザビシクロ［２．２．２．］オクタン），ＲＪＲ　１７８２（すなわち、Ｓ（－）－２－（３－ピリジル）－１－アザビシクロ［２．２．２．］オクタン），ｇｉｌａｔｉｄｅ，ｔｏｌｓｅｒｉｎｅ，ＴＣ　２５５９（すなわち、（Ｅ）－Ｎ－メチル－４－［３－（５－エトキシピリジン）イル］－３－ブテン－１－アミン），ＥＲ　１２７５２８（すなわち、１－（３－フルオロベンジル）－４－［（２－フロロ－５，６－ジメトキシ－１－インダノン－２－イル）メチル］ピペリジン　塩酸塩），ｔｈｉａｔｏｌｓｅｒｉｎｅ，ｔａｒｇａｃｅｐｔ，ａｘｏｎｙｘ，ｃｙｍｓｅｒｉｎｅ，ｔｈｉａｃｙｍｓｅｒｉｎｅ，ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　２６６，Ａｐａｎ－ＣＨ，ＤＰ　１０３，ＳＰＩ　３３９（すなわち、４－［３－（４－オキソ－４，５，６，７－テトラヒドロインドール－１－イル）プロピオニルアミノ］安息香酸　エチル　エステル），Ｓ　３７２４５（すなわち、４－（１，４－ベンゾジオキサン－５－イル）－１－［３（Ｓ）－ヒドロキシ－５－ニトロ－インダン－２－イル］－ピペラジン），ＬＬＧ　８８，ＡＺＤ　２８５８，ｔｒｏｍｅｔａｍｏｌ，ＡＮ　２４０，ＮＧ　００２（すなわち、５－ヒドロキシ－５－（２－ヒドロキシ－１－メチルエチル）－４－メトキシフラン－２（５Ｈ）－オン），ＵＣＢ　２９４２７（すなわち、２－シクロプロピル－４－（シクロプロピルアミノ）－６－（モルホリノ）－１，３，５－トリアジン），ＴＲＨ－ＳＲ，ＲＯ　４０１６４１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１２２１９９－０２－４），ＭＰＶ　１７４３ＡＩＩＩ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　１５０５８６－６４－４），ＩＤＲＡ　２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．　２２５０３－７２－６），ＣＥＰ　４３１，ＡＣＰＤ（ＣＡＳ　Ｎｏ．　６７６８４－６４－４），ＣＴ　３５７７（すなわち、３，７－ジメチル－１－［１１－（３，４，５－トリメトキシベンジルアミノ）－１１－オキソウンデシル］キサンチン），ＣＴ　２５８３，ＮＸＤ　９０６２，Ｄｅｓｆｅｒｒｉ－ｎｏｒｄａｎｏｘａｍｉｎｅ，ＤＰ　ｂ９９，ＰＢＴ　１，Ｔ　８１７ＭＡ，Ａｌｆａｔｒａｄｉｏｌ（ＣＡＳ　Ｎｏ．５７－９１－０），ＡＬ　１０８，ＳＬ　６５０１０２，ＲＳ　６７３３３（ＣＡＳ　Ｎｏ．１６８９８６－６０－５），ＲＳ　１７０１７，ＳＧＳ　５１８，ＳＹＮ　１１４，ＳＢ　２７１０４６，ＲＯ　６５７１９９，ＰＲＸ　０７０３４，Ｓｕｒｉｔｏｚｏｌｅ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１１０６２３－３３－１９），Ｔｅｒｂｅｑｕｉｎｉｌ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１１３０７９－８２－６），ＦＧ　７１４２（ＣＡＳ　Ｎｏ．７８５３８－７４－６）．ＲＵ　３４３３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３７１５７－５８－５），ＳＸ　３５０７，ＲＯ　１５３５０５（ＣＡＳ　Ｎｏ．７８７７１－１３－８），ＲＵ　３３９６５（ＣＡＳ　Ｎｏ．１２２３２１－０５－５），Ｓ　８５１０（ＣＡＳ　Ｎｏ．１５１４６６－２３－８），Ｓａｂｅｌｕｚｏｌｅ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１０４３８３－１７－７），Ｃｅｒｅｂｒｏｃｒａｓｔ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１１８７９０－７１－９），ＮＳ　６２６，ＮＳ　６４９（ＣＡＳ　Ｎｏ．１４６８２８－０２－６），Ｕ　９２０３２（ＣＡＳ　Ｎｏ．１４２２２３－９２－５），ＭＥＭ　１００３，Ｕ　９２７９８，ＲＧＨ　２７１６（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３４０６９－６８－４），Ｓａｆｉｎａｍｉｄｅ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３３８６５－８９－１），ＡＺＤ　０３２８，ＭＥＭ　６３９０８，ＡＢＴ　４１８（ＣＡＳ　Ｎｏ．１４７４０２－５３－７），ＡＲＲ　１７７７９，ＲＪＲ　２４０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．５３８－７９－４），ＴＣ　２５５９，Ａ　８２６９５（ＣＡＳ　Ｎｏ．１４７３８８－８６－１），Ａ　８４５４３，Ａ　９８２８４，ＤＢＯ　８３，ＲＪＲ　２５５７，ＳＩＢ　１７６５Ｆ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１７９１２０－５２－６），ＧＴＳ　２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．１５６２２３－０５－１），ＭＥＭ　３４５４，ＳＩＢ　１５５３Ａ，ＥＶＰ　６１２４，ＳＳＲ　１８０７１１，
ＡＢＴ　０８９（ＣＡＳ　Ｎｏ．１６１４１７－０３－４），ＡＢＴ　１０７，ＡＢＴ　５６０，ＴＣ　５６１９，ＴＡＫ　０７０，Ｎ－［（１Ｓ，２Ｒ）－３－（３，５－ジフルオロフェニル）－１－ヒドロキシ－１－［（５Ｓ，６Ｒ）－５－メチル－６－（ネオペンチルオキシ）モルホリン－３－イル］プロパン－２－イル］アセトアミド　塩酸塩，６－フルオロ－５－（２－フルオロ－５－メチルフェニル）－３，４－ジヒドロピリジン，２－アミノ－６－［２－（３’－メトキシビフェニル－３－イル）エチル］－３，６－ジメチル－５，６－ヒドロキシピリミジン－４（３Ｈ）－オン，ＡＺＤ　１０８０，ＡＲＡ　０１４４１８，ＸＤ　４２４１，Ｚ　３２１（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３０８４９－５８－０），ＯＮＯ　１６０３（ＣＡＳ　Ｎｏ．１１４６６８－７６－７），ＪＴＰ　３３９９，Ｅｕｒｙｓｔａｔｉｎ　Ａ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３７５６３－６３－４），Ｅｕｒｙｓｔａｔｉｎ　Ｂ（ＣＡＳ　Ｎｏ．１３７５６３－６４－５），Ｐ　１２８（ＣＡＳ　Ｎｏ．１５７７１６－５２－４），Ｙ　２９７９４（ＣＡＳ　Ｎｏ．１２９１８４－４８－１），ＺＴＴＡ　１，ＪＴＰ　４８１９（ＣＡＳ　Ｎｏ．１６２２０３－６５－８），Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　２６６，ｄｕｌｏｘｅｔｉｎｅ，ｅｓｃｉｔａｌｏｐｒａｍ　ｏｘａｌａｔｅ，ｆｌｕｏｘｅｔｉｎｅ，ｆｌｕｖｏｘａｍｉｎｅ　ｍａｌｅａｔｅ，ｐａｒｏｘｅｔｉｎｅ，ｓｅｒｔｒａｌｉｎｅ，ｄａｐｏｘｅｔｉｎｅ，ｄｅｓｖｅｎｌａｆａｘｉｎｅ，ｓｉｂｕｔｒａｍｉｎｅ，ｎｅｆａｚｏｄｏｎｅ，ｍｉｌｎａｃｉｐｒａｎ，ｄｅｓｉｐｒａｍｉｎｅ，ｄｕｌｏｘｅｔｉｎｅ，又はｂｉｃｉｆａｄｉｎｅ等が挙げられる。
　本発明の組成物は、所望により、有効成分を含有する１つ以上の単位剤形を含有することができるパック又はディスペンサー装置等の容器を備えたキットの形で提供されうる。
　本発明はまた、別々の薬剤組成物をキット形に組み合わせることもできる。このキットは２種類又はそれ以上の別々の薬剤組成物を含んでもよい。例えば、本発明の化合物とＡＤの治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、及び／又は本発明の化合物とＡＤ以外の治療において薬効を示す化合物を含む。このキットは、通常、例えば分割式ボトル又は分割式ホイルパケットのような、別々の組成物を含有するための容器を含むが、別々の組成物を単一の非分割式容器に含めることもできる。キット形は、別々の成分を異なる投与形（例えば、経口的と非経口的）で投与することが好ましい場合、別々の成分を異なる投与間隔で投与する場合、又は処方医師によって組み合わせた個々の成分を滴定する必要がある場合に、特に有用である。
　パックは、例えば、金属もしくはプラスチックフォイル、例えばブリスターパックを含むことができる。ブリスターパックはパッケージング業界において周知であり、製薬的単位投与形（錠剤、カプセル等）のパッケージングに広く用いられている。ブリスターパックは一般に、透明なプラスチック材料のホイルによって覆われた比較的硬質材料のシートから成るのが好ましい。パッケージング・プロセス中に、該プラスチックホイル中に凹みが形成される。これらの凹みは、パックされる個々の錠剤又はカプセルのサイズ及び形状に合わせてある。次に、錠剤又はカプセルを凹み中に入れて、凹みが形成された方向とは逆のホイル面において、比較的硬質材料のシートをプラスチックホイルに対してシールする。その結果、錠剤又はカプセルが該プラスチックホイルと該シートとの間の凹み中にシールされる。シートの強度は、凹みの場所においてシートに開口が形成されるように手で圧力を凹みに加えることによって、錠剤又はカプセルをブリスターパックから取り出すことができるような強度が好ましい。錠剤又はカプセルを前記開口によって取り出すことができる。
　パック又はディスペンサー装置には、投与のための添付文書、プロダクトインサート等を添付することができる。パック又はディスペンサー等の容器は、医薬の製造、使用又は販売を規制する政府機関、当局の通達に適応させることができる。
　本発明のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩を含有する、飲食品、飼料、食品添加剤、又は飼料添加剤等に関する。
　本発明の前記飲食品について説明する。
　本発明の前記飲食品は、一般的に飲食品に用いられる食品添加剤、例えば甘味料、着色料、保存料、増粘安定剤、酸化防止剤、発色料、漂白料、防かび剤、ガムベース、苦味料、酵素、光沢剤、酸味料、調味料、乳化剤、強化剤、製造用剤、香料、香辛料抽出物等の一種以上が添加されてもよい。なお、本発明の前記飲食品には、健康食品、機能性食品、特定保健用食品、乳児用食品、幼児用食品、妊産婦用食品、高齢者用食品、病者用食品が含まれる。
　本発明の前記飲食品の形態は、特に限定されない。具体的には、例えば、いわゆる栄養補助食品（サプリメント）としての錠剤、顆粒剤、散剤、ドリンク剤等を挙げることができる。これ以外には、例えば茶飲料、清涼飲料、炭酸飲料、栄養飲料、果実飲料、乳酸飲料等の飲料、そば、うどん、中華麺、即席麺等の麺類、飴、キャンディー、ガム、チョコレート、スナック菓子、ビスケット、ゼリー、ジャム、クリーム、焼き菓子、パン等の菓子およびパン類、かまぼこ、ハム、ソーセージ等の水産又は畜産加工食品、加工乳、発酵乳等の乳製品、サラダ油、てんぷら油、マーガリン、マヨネーズ、ショートニング、ホイップクリーム、ドレッシング等の油脂および油脂加工食品、ソース、たれ等の調味料、カレー、シチュー、丼、お粥、雑炊等のレトルトパウチ食品、アイスクリーム、シャーベット、かき氷等の冷菓などを挙げることができる。
　本発明の前記飲食品の摂取量は、特に限定されず、飲食品の形態；飲食品を摂取する対象の年齢、性別、状態等；あるいは本発明の前記担体に担持又は前記担体と混合させる前記機能性物質の種類、その他の条件に応じて設定してよい。
　本発明の別のひとつの態様は、神経疾患を予防及び／又は治療するための薬剤の製造における、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の使用に関する。前記神経疾患、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、薬剤の剤形、投与形態、有効成分である1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の薬剤中の含有量、薬剤の投与量は、上記と同様であってよい。
　本発明の別のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、もしくはそのエステル等を哺乳動物に投与することによって、アミロイド斑、タウ沈殿、タウ析出物、PHF-タウ、又は神経原線維変化を減少させる方法に関する。本態様において、前記1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、ジオスゲニン、ジオシン、及びデノソミンからなる群から選択される１種以上であることが好ましい。また、本態様において、投与対象となる哺乳動物は、特に限定されないが、例えば、ヒト、サル、マントヒヒ、チンパンジー、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ウシ等が挙げられる。薬剤の剤形、投与形態、有効成分である1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の薬剤中の含有量、薬剤の投与量は、上記と同様であってよい。
　また、本発明のさらに別のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、もしくはそのエステル等を哺乳動物に投与することによって、アミロイドβ（Ａβ）（1-42）に誘導された軸索の萎縮を抑える方法に関する。本態様において、前記1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物は、ジオスゲニン、ジオシン、及びデノソミンからなる群から選択される１種以上であることが好ましい。また、本態様において、投与対象となる哺乳動物は、特に限定されないが、例えば、ヒト、サル、マントヒヒ、チンパンジー、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ウシ等が挙げられる。薬剤の剤形、投与形態、有効成分である1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の薬剤中の含有量、薬剤の投与量は、上記と同様であってよい。
　さらに、本発明のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、もしくはそのエステル等を哺乳動物に投与することによって、1,25D3-MARRSを刺激し、シグナル伝達経路を活性化させる方法に関する。また、別のひとつの態様は、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、もしくはそのエステル等を哺乳動物に投与することによって、正常な記憶力を亢進、向上させる方法に関する。なお、「正常な記憶力」とは、「アミロイド斑、タウ沈殿、タウ析出物、PHF-タウ、又は神経原線維変化を有している、もしくは、Ａβ（1-42）に誘導された軸索の萎縮を有している等の疾患が、存在しない状態の対象における記憶力」を包含する。1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩、薬剤の剤形、投与形態、有効成分である1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の薬剤中の含有量、薬剤の投与量、投与対象等は、上記と同様であってよい。
　本発明のひとつの別の態様は、ジオスゲニン、ジオスゲニン誘導体、デノソミン、ジヒドロキシビタミンＤ３及びこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される１種以上を投与することを特徴とする、1,25D3-MARRSを活性化させる方法に関する。投与形態、投与量、投与対象等は、上記した1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の投与と同様であってよい。
　以下に、比較例、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明するが、これらは本発明を限定するものではない。当業者は、以下の参考例及び実施例のみならず本願明細書にかかる特許請求の範囲に様々な変更を加えて本発明を最大限に実施することができ、かかる変更は本願明細書にかかる特許請求の範囲に含まれるものである。また、本発明は、本発明者らによる論文Tohda,C.ら、Scientific Reports, 2, 535, 2012に掲載されたものを基にしており、当該論文の内容はすべて本発明に取り込まれる。
　本発明に使用する材料、試薬、動物は、市販品、又は本技術分野で公知の方法を用いて調製することができる。
　ジオスゲニンは、市販品（例えば、和光純薬株式会社製、東京化成株式会社製、又は、シグマアルドリッチ社製等）を利用できる。また天然物（例えば、ヤマノイモ属(yam)）から単離することができる。ジオスゲニン誘導体も同様に、市販品や天然物から得られる抽出物を用いることができる。また天然物から得られたサポニンの化学的変換によって製造することができるか、又は公知の方法で化学合成的に製造することができる。
統計
　一元配置分散分析(one-way ANOVA)、事後ダネット(Dunnett)検定、及び対応t－検定は、シグマスタット3.5 (SigmaStat 3.5)(シスタット(SYSTAT)社、シカゴ、イリノイ州、米国)及びグラフパッド５(Graphpad Prism 5) (グラフパッドソフトウエア(Graphpad Software)社, ラホヤ(La Jolla)、カリフォルニア州、米国)を用いて行った。* P＜0.05、** P＜0.001は統計学的に有意とし、平均値はSEとともに示す。なお、実際に面積を測定した数は、各カラム内に数値で示されている（図１Ｃ、図１Ｄ、図２Ｂ、図２Ｃ、及び図５Ａ等）。
試薬等の調製
　メマンチン塩酸塩（東京化成工業株式会社、東京、日本）及び1α,25-ジヒドロキシビタミンD3（DHVD3）、（ケイマンケミカルズ(Cayman Chemicals)、アナーバー、ミシガン州、米国）はジメチルスルホキシド（DMSO）に溶解した。Ａβ（1-42）（シグマ-アルドリッチ(Sigma-Aldrich)社、セントルイス、ミズーリ州、米国）は滅菌蒸留水に溶解し、37℃で4日間インキュベートした。ホスファチジルイノシトール3-キナーゼ（PI3K）阻害剤であるLY294002（ケイマンケミカルズ(Cayman Chemicals)）、MEK1阻害剤であるPD98059（LCラボラトリーズ(LC laboratories)）及びプロテインキナーゼC阻害剤であるGoe6970（LCラボラトリーズ(LC laboratories)、ウォバーン(Woburn)、マサチューセッツ州、米国）はDMSOに溶解した。プロテインキナーゼ阻害剤であるPKI（14-22）アミド（ミリストイル化）（エンツォ(Enzo)、ファーミングデール(Farmingdale)、ニューヨーク州、米国）は蒸留水に溶解した。
＜＜実施例１、比較例１、２及び参考例１＞＞
　アルツハイマー病モデルマウスにおけるジオスゲニンの効果を確認した。
供試動物
　トランスジェニックマウス（5XFAD）はＡＤの動物モデルと考えられており、ジャクソン研究所（バーハーバー(Bar Harbor)、メイン州、米国）から入手した。5XFADマウスは、ニューロン特異的マウスThy-1プロモータの転写制御下、スウェーデン(Swedish)（K670NとM671L）、フロリダ(Florida)（I716V）及びロンドン(London)（V717I）に変異を持つヒトAPP695 cDNA、及びヒト PS1 cDNA（M146LとL286Vの変異）を過剰発現している（Oakley,H.ら,J Neurosci,26,10129-10140,2006．）。それらはB6/SJL F1ブリーダーとヘミ接合トランスジェニックマウスを交配することによって維持された。
　5XFADでジオスゲニンの効果を調べるため、本発明では、ヘミ5XFADマウス（雌、6から8ヶ月齢）及び非トランスジェニック同腹の野生型マウス（雌、6から8ヶ月齢）を使用した。これらのマウスはヘミ接合5XFADマウスとB6/SJL F1マウスを交配することにより得られたものである。すべてのマウスは、餌と水を自由に摂取できる状態で、22±2℃、50±5％の湿度、午前7時から始まる12時間の明暗サイクルで制御された環境で飼育した。
＜実施例１＞
　ジオスゲニンを最終濃度の１０倍となるようにジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）に溶解し、ストック溶液とした。試験直前に最終濃度になるように生理食塩水で希釈し、このジオスゲニン溶液を、5XFADマウスに１日１回（１０μｍｏｌ／ｋｇ＝４．１４ｍｇ／ｋｇ）で２０日間腹腔内投与した。投与の最終日（２０日目）に、ポリ塩化ビニル（縦横３３ｃｍ×３２８ｃｍ、高さ２６．５ｃｍ）製のオープンフィールドボックスにマウスを個別に入れて１０分間馴化させた。
＜比較例１＞
　ジオスゲニン溶液を、１０％ＤＭＳＯ含有生理食塩水（溶媒溶液）とした以外は、実施例１と同様にした。
＜比較例２＞
　ジオスゲニン溶液を、メマンチン塩酸塩を最終濃度の１０倍となるようにＤＭＳＯに溶解しストック溶液とし試験直前に最終濃度となるように生理食塩水で希釈したメマンチン塩酸塩溶液（２００μｍｏｌ／ｋｇ／日＝４３．１５ｍｇ／ｋｇ／日）とした以外は、実施例１と同様にした。
＜参考例１＞
　ジオスゲニン溶液を１０％ＤＭＳＯ含有生理食塩水（溶媒溶液）とし、5XFADマウスを非トランスジェニック同腹の野生型マウスとした以外は、実施例１と同様にした。
（試験例１：新奇物体認識試験）
　実施例１、比較例１、２及び参考例１それぞれのマウスについて、オープンフィールドボックスで１０分間馴化させた時のマウスの移動経路をデジタルカメラシステムを用いて追跡した。10分間に動いた距離をEthoVision3.0（ノルダス(Noldus)社、ワゲニンゲン(Wageningen)、オランダ）で移動活動として分析した。翌日、発明者らの文献（Joyashiki,E.ら, Int J Neurosci, 121, pp.181-190, 2011.、及びTohda,C.ら, Int J Neurosci, 121, pp.641-648, 2011.）の記載にしたがって、新奇物体認識試験を行った。試験は照明をおとした部屋にて行った。トレーニング段階とテスト段階の間の適切な時間間隔は、別のマウスのグループで予めテストして決め、30分間とした。新奇物体認識試験とは、動物が新しいものに興味を示す習性を利用した試験で、トレーニング段階では２つの同じ物体を見せて覚えさせておき、テストの段階では、トレーニングで見せた物体ともう一つは別の新たな物体を２種類装置内に置き、新たな物体に興味を示して探索行動する（つまり予め見せた物体を覚えている）時間の増加を指標とするものである。本発明では、総探索時間に対する新たな物体への探索時間の割合（％）を探索指向指数（Preference index）として算出した。この指標では、野生型マウス（参考例１）では、一度見せた物体を覚えており、新奇物体に興味を示すので50％を超える数値を示すが、ＡＤのモデル動物である5XFADマウスは、一度見せた物体を覚えていないので50％の数字にとどまる。しかし、5XFADマウスの記憶障害が改善すれば、50％を有意に超える数値となる。
　試験例１の結果を図１Ａに示した。
　トレーニング段階におけるオープンフィールド移動試験では、溶媒投与野生型マウス（参考例１：Wild/Veh）、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)、ジオスゲニン投与5XFADマウス(実施例１：5XFAD/Dios)、及びメマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)の4つの群の移動速度と距離に有意差は検出されなかった。一方、テスト段階では、ジオスゲニン投与5XFADマウス(実施例１：5XFAD/Dios)は、新奇物体に対して、50％を有意に超える探索行動を示した（図１Ａ）。すなわち、ジオスゲニンをＡＤのモデル動物である5XFADマウスに投与すると、当該マウスは、新奇物体に対して野生型マウスに匹敵する程度の興味を回復し、探索指向指数（％）が改善していた。これとは対照的に、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)は、新奇物体に対する探索指向指数は50％と有意差がなかった。また、メマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)でも、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)と同様、探索指向指数は50％と有意差がなかった。このことから、ジオスゲニンを5XFADマウスに投与すると、当該マウスの物体に対する認識障害が改善することが分かる。
（試験例２：免疫組織化学）
　新奇物体認識試験の一日後、各マウスを麻酔し、冷却した生理食塩水で経心臓灌流した。脳を慎重に頭蓋骨から外し、直ちに10から30％スクロース-PBSに浸し、-80℃で保存した。脳をクライオスタット（CM3050S、ライカ(Leica)社、ハイデルベルク、ドイツ）を用いて頭頂領域（ブレグマ(bregma)1.4-2mm）のセクション内で100μm毎に、20 μmの連続した冠状切片に切り出した。スライスは4％パラホルムアルデヒドで固定し、Ａβ（1-40/42）（1:300）に対するポリクローナル抗体（ケミコン(Chemicon)、テメキュラ(Temecula)、カリフォルニア州、米国）、pNF-H（1:500）に対するモノクローナル抗体（コバンス(Covance)、エメリーヴィル(Emeryville)、カリフォルニア州、米国）、シナプトフィジン（1:500）に対するモノクローナル抗体（シグマ-アルドリッチ(Sigma-Aldrich)）、及びPHF-タウに対するモノクローナル抗体（サーモサイエンティフィック(Thermo Scientific)、ロックフォード(Rockford)、イリノイ州、米国）を用い、４℃で２０時間染色した。二次抗体として、Alexa Fluor 488標識ヤギ抗マウスIgG抗体（1:300）とAlexa Fluor 568標識ヤギ抗ウサギ抗体（1:300）（モレキュラープローブス(Molecular Probes)社、ユージーン(Eugene)、オレゴン州、米国）を用いた。軸索、プレシナプス、PHF-タウ及びＡβ（1-40/42）の蛍光画像は、蛍光顕微鏡（AX-80）を使用して、pNF-Hシナプトフィジン及びPHF-タウの場合は324μm × 430μm、またＡβ（1-40/42）の場合は1620μm × 2150μmで撮影した。前頭葉の3つの連続した脳切片と海馬の5つの連続した脳切片を定量のためマウスから切り出した。細胞外アミロイド斑は大きさ（50μmより大きい幅）で決定し、その面積は、画像解析ソフトウェアImageJを用いて測定した。pNF-H陽性の異常な球状軸索の面積は、すべてのアミロイド斑に対して、蛍光画像（324μm × 430μm）でImageJを用いて測定した。すべてのアミロイド斑におけるシナプトフィジン陽性プレシナプスボタンの面積は、蛍光画像（324μm × 430μm）でImageJを用いて測定した。すべてのアミロイド斑及び外部アミロイド斑におけるPHF-タウの面積は蛍光画像（324μm × 430μm）でImageJを用いて測定した。
　試験例２の結果のうち、大脳皮質と海馬における単位面積当たりのアミロイド斑及びPHF-タウの総面積を図１Ｂから図１Ｄに示した。
　図１Ｂの写真は、大脳皮質におけるＡβ（1-40/42）陽性斑、及びPHF-タウの代表画像である。ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）の方が溶媒投与5XFADマウス（比較例１：5XFAD/Veh）よりアミロイド斑を減少させていることは明白である。図１Ｃは、大脳皮質及び海馬において、１μm2当たりのアミロイド斑の総面積を定量した結果である。ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）は、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)に比べ、大脳皮質、海馬ともに有意にその面積を減少させていた。一方、メマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)は、海馬では有意にその面積を減少させたが、大脳皮質ではその面積を有意に減少させてはいなかった。図１Ｄは100μm2当たりのPHF-タウの総面積を大脳皮質及び海馬で定量した結果であるが、ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）は、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)に比べ、大脳皮質、海馬ともに有意にその面積を減少させている。メマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)は、大脳皮質では溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)と有意な差はなく、海馬では逆に有意にその面積を増加させる結果となった。
　試験例２の結果のうち、アミロイド斑に関連する軸索異常、及びプレシナプス異常について、図２Ａ～図２Ｃに示した。
　図２Ａの写真は、Ａβ（1-40/42）とpNF-H、又はＡβ（1-40/42）とシナプトフィジンに対する抗体で二重標識を行ったもので、溶媒投与野生型マウス(参考例１：Wild/Veh)、溶媒投与5XFADマウス（比較例１：5XFAD/Veh）、ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）及びメマンチン投与5XFAD（比較例２：5XFAD/Mema）マウスの大脳皮質の代表的な画像である。画像から、ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）の方が溶媒投与5XFADマウス（比較例１：5XFAD/Veh）、及びメマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)よりアミロイド斑を減少させていることがわかる。
　図２Ｂは、大脳皮質及び海馬において、アミロイド斑100μm2当たりの変性した軸索の面積を定量した結果である。縦軸は肥大した軸索面積を表すが、球状等異常な軸索の構造は、初期-末期のＡＤ患者で報告されている（Dickson,T.C.ら, Neuroscience, 105, pp.99-107, 2001.）。ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）は、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)に比べ、大脳皮質、海馬ともに有意にその面積を減少させていた。一方、メマンチン投与5XFADマウス(比較例２：5XFAD/Mema)は、大脳皮質では有意にその面積を減少させておらず、海馬では逆に有意にその面積を増加させる結果となった。
　図２Ｃは、大脳皮質及び海馬において、アミロイド斑100 μm2当たりの異常なプレシナプシスの面積（縦軸は腫脹したプレシナプシス面積を表す）を定量した結果であるが、ジオスゲニン投与5XFADマウス（実施例１：5XFAD/Dios）は、溶媒投与5XFADマウス(比較例１：5XFAD/Veh)に比べ、大脳皮質で有意にその面積を減少させていた。これらの結果は、ジオスゲニン投与が大脳皮質及び海馬において、異常な軸索の面積、プレシナプシスの面積を減少させる効果のあることを明確に示すものである。
＜＜実施例２～７、比較例３～１０＞＞
　ジオスゲニンによる神経軸索伸長の効果を確認した。
siRNAトランスフェクション
　siRNAは、nucleofection（ロンザ(Lonza)社、バーゼル、スイス）の使用説明書にしたがって、ラット大脳皮質ニューロン（SD E18）に導入した。すなわち、ラット大脳皮質ニューロン（5.25x106細胞）は、400 nMのsiPdia3（Pdia3のステルスsiRNAの3配列の混合物、インビトロジェン(Invitrogen)社）又は400 nMコントロールsiRNA（ステルス(Stealth)RNAiのネガティブコントロールLow GC Duplex＃3、インビトロジェン(Invitrogen)社）と混合し、Amaxa Nucleofector（ロンザ(Lonza)社）で電気穿孔した。トランスフェクションして２日間後、細胞を固定し、ニューロンマーカーとしてMAP2a・2bに対するモノクローナル抗体（1:500、ネオマーケット(NeoMarker)社、フリーモント(Fremont)、カリフォルニア州、米国）及び、Ab099クローン、すなわち1,25D3-MARRS（1:500、Nemere博士から提供）に対する特異的な抗体で二重免疫染色を行った。ラットポリクローナル抗nVDR抗体（1:200、ミリポア(Millipore)社、ビレリカ(Billerica)、マサチューセッツ州、米国）は、ビタミンD3（nVDR）の核内受容体の検出のために使用された。siRNAの適切な濃度及びノックダウンに適した期間（トランスフェクション後２日間）は、従来技術にしたがって決定した。
＜実施例２＞
　トランスフェクションを施していない細胞（ラット大脳皮質ニューロン（SD E18））をジオスゲニン（１μＭ）で４日間処理した。
＜実施例３＞
　ジオスゲニン処理をDHVD3（１μＭ）処理とする以外は、実施例２と同様にした。
＜比較例３＞
　ジオスゲニン処理を溶媒溶液（0.1% DMSO）処理とする以外は、実施例２と同様にした。
＜比較例４＞
　細胞を、siRNAトランスフェクションしたラット大脳皮質ニューロン（SD E18）とする以外は、比較例３と同様にした。
＜比較例５＞
　細胞を、siRNAトランスフェクションしたラット大脳皮質ニューロン（SD E18）とする以外は、実施例２と同様にした。
＜比較例６＞
　細胞を、siRNAトランスフェクションしたラット大脳皮質ニューロン（SD E18）とする以外は、実施例３と同様にした。
（試験例３：軸索密度の測定）
　実施例２、３、及び比較例３～６で得た細胞を4％パラホルムアルデヒドで固定し、軸索のマーカーとしてpNF-H（1:500）に対するモノクローナル抗体、及び神経細胞のマーカーとしてMAP2（1:500）に対するポリクローナル抗体を用いて4℃で20時間免疫染色した。Alexa Fluor488標識ヤギ抗マウスIgG（1:300）とAlexa Fluor568標識ヤギ抗ウサギIgG（1:300）は、二次抗体として使用した。蛍光画像は蛍光顕微鏡システム（BX61/DP70、オリンパス）を用いて324 μmx430 μmで撮影した。12から14枚の画像を撮影した。pNF-H陽性軸索の長さは、細胞体を測定することなく、自動的にトレースし、神経突起の長さを測定する画像解析Neurocyte（クラボウ(Kurabo)社）を用いて測定した。軸索の長さの合計は、MAP2陽性神経の数で割った。
　結果を図５に示した。
　図５は、ジオスゲニン誘発性軸索伸長に及ぼす1,25D3-MARRSノックダウンの効果を示す。図５Ａは、1,25D3-MARRSの siRNA（400 nＭ）、又はコントロールsiRNA（400 nＭ）をトランスフェクトした神経細胞における1,25D3-MARRSとnVDRの発現レベルを定量した結果である。1,25D3-MARRSをノックダウンすると1,25D3-MARRSの発現レベルは有意に低下していることがわかる。
　図５Ｂは、MAP2陽性ニューロンあたりのpNF-H陽性軸索の密度を、ジオスゲニン（1μＭ：実施例２及び比較例５）、DHVD3（1μＭ：実施例３及び比較例６）、又は溶媒溶液（Veh,0.1％DMSO：比較例３及び比較例４）の処理群ごとに定量した結果である。コントロール群では、ジオスゲニン（実施例２）及びDHVD3（実施例３）で処理すると、溶媒溶液処理群（比較例３）に比べ、軸索の密度が有意に増加したが、1,25D3-MARRSノックダウン群（比較例４～６）では、いずれも溶媒溶液処理群と変化がなかった。したがって、ジオスゲニンは、DHVD3と同じ受容体刺激に関与していることがわかる。
＜実施例４＞
　ラット大脳皮質ニューロン（SD E18）を１日培養した後、ジオスゲニン（１μＭ）で処理し、同時に、PI3K阻害剤であるLY294002（10μＭ）、MEK1阻害剤であるPD98059（1及び10μＭ）、プロテインキナーゼC阻害剤であるGoe6970（10及び100nＭ）又はプロテインキナーゼ阻害剤であるPKI（１４－２２）アミド（ミリストイル化）（0.1及び1μＭ）を細胞に加えた。
＜実施例５＞
　ジオスゲニン（１μＭ）をDHVD3（１μＭ）とする以外は、実施例４と同様にした。
（試験例４：ジオスゲニン誘発性軸索の成長に及ぼすプロテインキナーゼ阻害剤の効果の測定）
　実施例４及び５の処理４日後、細胞を固定し、pNF-H及びMAP2に対して二重免疫染色を行った。MAP2陽性ニューロンあたりのpNF-H陽性軸索の密度をそれぞれの処理ごとに定量した。軸索密度の測定は、上記試験例３と同様に行った。
　結果を図６に示した。
　図６Ａから、用いたプロテインキナーゼ阻害剤はすべて、ジオスゲニン誘発性軸索の成長を有意に阻害していることがわかる。また、図６Ｂから、用いたプロテインキナーゼ阻害剤はすべて、DHVD3誘発性軸索の成長をも有意に阻害していることがわかる。この事実は、ジオスゲニンがDHVD3と同じ受容体刺激に関与していることを支持するものである。
＜実施例６＞
　Ａβ（1-42）は、予め37℃で4日間インキュベートし凝集させた。その後、細胞（ラット大脳皮質ニューロン（SD E18））をＡβ（1-42）で３日間処理した。３日間の処理後、細胞にコントロール抗体（正常ウサギIgG、1:5000）を加え、１０分間インキュベーションした後、細胞をジオスゲニン（０．１μＭ）で５日間処理した。
＜実施例７＞
　ジオスゲニン処理を、ジオスゲニン（１μＭ）での処理とする以外は、実施例６と同様にした。
＜比較例７＞
　ジオスゲニン処理を、溶媒溶液（0.1% DMSO）での処理とする以外は、実施例６と同様にした。
＜比較例８＞
　コントロール抗体をポリクローナル抗ウサギ1,25D3-MARRS（Ab099クローン、1:500）とする以外は、比較例７と同様にした。
＜比較例９＞
　コントロール抗体をポリクローナル抗ウサギ1,25D3-MARRS（Ab099クローン、1:500）とする以外は、実施例６と同様にした。
＜比較例１０＞
　コントロール抗体をポリクローナル抗ウサギ1,25D3-MARRS（Ab099クローン、1:500）とする以外は、実施例７と同様にした。
＜参考例２＞
　抗体処理及び薬物処理のいずれも施していないラット大脳皮質ニューロン（SD E18）を試験に供した。
（試験例５：軸索密度の測定）
　実施例６、７、比較例７～１０で得た細胞及び参考例２の細胞を4％パラホルムアルデヒドで固定し、軸索のマーカーとしてpNF-H（1:500）に対するモノクローナル抗体、及び神経細胞のマーカーとしてMAP2（1:500）に対するポリクローナル抗体を用いて4℃で20時間免疫染色した。Alexa Fluor488標識ヤギ抗マウスIgG（1:300）とAlexa Fluor568標識ヤギ抗ウサギIgG（1:300）は、二次抗体として使用した。蛍光画像は蛍光顕微鏡システム（BX61/DP70、オリンパス）を用いて324 μmx430 μmで撮影した。７から９枚の画像を撮影した。pNF-H陽性軸索の長さは、細胞体を測定することなく、自動的にトレースし、神経突起の長さを測定する画像解析Neurocyte（クラボウ(Kurabo)社）を用いて測定した。軸索の長さの合計は、MAP2陽性神経の数で割った。
　結果を図７に示した。
　図７Ａ及びＢから、中和抗体により1,25D3-MARRSの機能を阻害した細胞では、ジオスゲニン誘発性軸索の成長が有意に抑制されていることが分かる。このことから、ジオスゲニン誘発性軸索の成長には、1,25D3-MARRSが関与していることが分かる。
（参考試験１：ジオスゲニンの標的タンパク質の同定）
初代培養
　胎児は、妊娠17日目のSprague-Dawleyラット（日本SLC、静岡県、日本）から摘出した。大脳皮質を切り取り、硬膜を除去した。組織を刻み、5 mg / mlのポリ-D-リジンでコーティングした８穴のチャンバースライド（ファルコン(Falcon)社、フランクリンレイクス(Franklin Lakes)、ニュージャージー州、米国）上、12％B-27サプリメント（インビトロジェン(Invitrogen)社）、0.6％D-グルコース、及び2mM L-グルタミンを含んだNeurobasal培地（インビトロジェン(Invitrogen)社、グランドアイランド(Grand Island)、ニューヨーク、米国）を用い、加湿インキュベーターで37℃、10％CO2下で増殖培養した。播種細胞密度は4.35x104 cells/cm2だった。
1,25D3-MARRS結合の発光（ルミネッセンス）検出
　初代培養大脳皮質ニューロン（SD、E17）は0.5x105細胞/ウェルの密度で96ウェルのホワイトプレート上に採取した。３日後、細胞を、DHVD3単独で、又はDHVD3とジオスゲニンとを組み合わせて、37℃で10分間処理した。細胞を4％パラホルムアルデヒドで固定し、DHVD3のうち細胞表面に結合したものだけを検出するため、トリトン-X-フリー(Triton-X-Free)PBS中、DHVD3に対するモノクローナル抗体（1:2000、Acris抗体、ヘルフォルト(Herford)、ドイツ）を用いて4℃で20時間インキュベートした。西洋ワサビペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスIgG（1:2000）を二次抗体として使用した。抗原抗体複合体の化学発光は、GENiosマルチプレートリーダー（テカン(Tecan)社、メネドルフ(Mannedorf)、チューリッヒ、スイス）を用いて検出した。
　マウス大脳皮質ニューロン初代培養（ddY系、E14）は、薬物処理することなく24時間保持した。細胞は、プロテアーゼ及びホスファターゼ阻害剤を加えたM-PER（サーモサイエンティフィック(Thermo Scientific)社）に溶解した。15分間遠心分離（20,000×g）後、ライセート（溶解物、lysate）のタンパク質濃度はQuick Start（バイオ-ラドラボラトリーズ(Bio-Rad Laboratories)社、ヘラクレス(Hercules)、カリフォルニア州、米国）を用いて決定した。細胞ライセート（各5.6 μg）を10ｍＭのジオスゲニン溶媒溶液2μＬに添加し、4℃で30分間インキュベートした。混合物を反応緩衝液[50ｍＭトリス・塩酸（pH8.0）、50ｍＭのNaCl、10ｍＭの塩化カルシウム]中、10分間、室温で、7.5μgのテルモリジンを用いタンパク分解した。0.5ＭのEDTA（pH8.0）を各試料に1：10の比で添加しタンパク分解を停止した。次いで、サンプルをよく混合し、氷上に置いた。反応サンプルは、5から20％リアルゲルプレート(real gel plate)（バイオクラフト(Bio Craft)社、東京、日本）を用いて電気泳動した。分離されたタンパクは、ネガティブゲル染色MSキット（和光(Wako)社）を用いて染色した。溶媒処理ライセートのバンドより濃かったジオスゲニン処理ライセート中のバンドを切り出し、質量分析用の試料を調製した。ヨードアセタミドによるアルキル化及びトリプシンによるゲル内消化の後、上清をOrbitrap LTQ XL （サーモフィシャー(ThermoFisher)社）を用い、ナノ-LC/MS/MS分析した。得られたMS/MSデータはマスコット(Mascot)（www.matrixscience.com）を使用して検索した。
　図３は、以下に詳述するように、ジオスゲニンの直接の標的タンパク質が、1,25D3-MARRSであることを明らかにしたものである。図３Ａは、銀染色SDS-PAGEゲル上で、溶媒処理ライセート（コントロールレーン）より濃いジオスゲニン処理ライセート（ジオスゲニンレーン）のバンドを切り出し、質量分析に供した。LC/MS/MS分析で、当該バンドは、タンパク質ジスルフィドイソメラーゼA3(Pdai3)、すなわち、1,25D3-MARRSであることが明らかとなった。図３Ｂは、ラット大脳皮質ニューロンの初代培養において1,25D3-MARRS（Ab099クローン）とMAP2に対する抗体で二重標識を行ったものである。図３Ｃは、初代培養大脳皮質ニューロンにおけるDHVD3の細胞表面結合は用量依存性を示し、化学発光強度が増加した。図３Ｄは、DHVD3の細胞表面結合のジオスゲニンとの置換を表す。すなわち、DHVD3（0.1 μＭ）に対してジオスゲニン0.1μＭ及び10 μＭを細胞に添加し、10分間インキュベートしたところ、免疫細胞化学的発光強度は著しく減少した。これは、DHVD3の細胞表面への結合に対するジオスゲニンとの置換を意味している。
（参考試験２：ドッキングシミュレーション）
　タンパク質-リガンド複合体の立体構造を予測するためにAutodock4.0（AutoDock4及びAutoDockTools4、モレキュラーグラフィクスラボラトリー(Molecular Graphics Laboratory)社、スクリプス研究所分子生物学科(Department of Molecular Biology The Scripps Research Institute)）を使用した。リガンド構造（ジオスゲニン及びDHVD3）の構築、及び、2Dと3D 配座の最小化には、MOPAC2009を使用した。ドッキングの研究では、タンパク質の結晶構造（PDB ID：RLARではNP_036630.1、ヒトARではNP_001619.1）は、タンパク質配列のアラインメントから決定した[ブルックヘブンタンパク質構造データバンク(Brookhaven Protein Data Bank)（PDB ID：1,25D3-MARRSに対しては3f8u chain A; nVDRに対しては1ie9 chain A）]。予測されるタンパク質リガンド複合体は、リガンド受容体複合体の結合自由エネルギーを評価する経験的なスコアリング機能にしたがって最適化し、ランク付けした。
　図４は、1,25D3-MARRSへのジオスゲニンのドッキングシミュレーションを示す。1,25D3-MARRSとジオスゲニンの予測結合複合体の部位を図４Ａに示す。図４Ｂで、1,25D3-MARRSのαドメイン及びβドメインの間の溝の領域がジオスゲニンに接触していることがわかる。
　表１に示すように、ジオスゲニン及びDHVD3の1,25D3-MARRSに対するドッキングスコアは、それぞれ-8.4及び-7.9であり、nVDRに対するジオスゲニンとDHVD3のドッキングスコアは、それぞれ-8.2と-12.6であった。これらの結果は、1,25D3-MARRSに対するジオスゲニンの結合能は、わずかにDHVD3の結合能よりも高く、また、nVDRに対するDHVD3の結合能は、ジオスゲニンの結合能よりもはるかに高いことを示している。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　以上、5XFADマウスにジオスゲニンを投与すると、物体を認識する記憶能力の顕著な改善が観察された。ジオスゲニン投与は大脳皮質と海馬のアミロイド斑及び神経原線維変化を顕著に減少させた。アミロイド斑と密接に関連した領域だけに観察されていた変性した軸索、変形したプレシナプス神経終末は、ジオスゲニン投与によって顕著に減少した。また、上記試験により、1,25D3-MARRSをジオスゲニンの標的タンパク質として同定した。1,25D3-MARRSの遺伝子発現を抑制（ノックダウン）すると、大脳皮質の神経細胞でジオスゲニンに誘導される軸索伸長が完全に阻害された。1,25D3-MARRSに対する中和抗体による処理は、Ａβ（1-42）に誘導された軸索の萎縮を抑えて軸索を再生させるジオスゲニンの効果を減少させた。これは、ジオスゲニンが1,25D3-MARRSを刺激してシグナル伝達経路を活性化することを初めて実証したものである。ここではジオスゲニンを実施例に挙げたが、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物（DHVD3、デノソミン）も同様にＡＤに対して有効である。したがって、この新しいメカニズム、経路は抗ＡＤ療法につながる全く新しい技術思想を提供するものである。しかも、ジオスゲニン等の上記した化合物が1,25D3-MARRSの刺激活性を有し、アルツハイマー病に優れた予防治療効果を有することを初めて生物試験によって実証したものである。
＜＜実施例８～１２、比較例１１～１５＞＞
　正常マウスにおけるジオスゲニンの記憶力亢進効果を確認した。
供試動物
　ｄｄＹマウス及びＣ５７ＢＬ／６マウスを、日本ＳＬＣ（浜松、日本）から得た。全てのマウスは、餌と水を自由に摂取させ、（２２±２℃、５０±５％の湿度、午前７時から始まる１２時間の明暗サイクルで）制御された環境で飼育した。
＜実施例８＞
　ジオスゲニン（和光純薬工業製、大阪、日本）を最終濃度の１０倍濃度となるようにエタノールに溶解し、ストック溶液を５％グルコース水溶液で最終濃度まで希釈した。ジオスゲニン溶液を、１日１回（１０μｍｏｌ／ｋｇ／日）で５又は６日間、正常マウス（ｄｄＹマウス、雄、６週齢）の腹腔内に投与した。最後の投与から１時間後、マウスを個別に、ポリ塩化ビニル（３３ｃｍ×２８ｃｍ、高さ２６．５ｃｍ）製のオープンフィールドボックスに１０分間馴化させ、試験に供した。
＜比較例１１＞
　ジオスゲニン溶液を５％グルコース含有１０％エタノール溶液（溶媒溶液）とした以外は、実施例８と同様にした。
（試験例６：新奇物体認識試験）
　実施例８及び比較例１１のマウスに対して、物体認知記憶力を評価するために、新奇物体認識試験を実施した。試験は、薄暗い照明（１００ｌｕｘ）の部屋で行った。なお、試験は、トレーニング段階とテスト段階の間の時間間隔を４８時間とした以外は、発明者らの文献（Joyashiki,E.ら, Int J Neurosci, 121, pp.181-190, 2011.、及びTohda,C.ら, Int J Neurosci, 121, pp.641-648, 2011.）の記載にしたがって実施した。なお、移動の指標としてデジタルカメラシステムを用いてマウスの経路を追跡した。１０分間に動いた距離を、ＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ３．０（ノルダス（Ｎｏｌｄｕｓ）社、ワゲニンゲン（Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ）、オランダ）を用いて移動活動活性として分析した。
　結果を図８Ａに示した。
　ジオスゲニン投与マウス（実施例８）は新奇物体に対して頻繁な探索行動を示し、その行動指数は偶然に選択される値５０％を有意に超えた。コントロールのマウス（比較例１１）における新奇物体に対する探索行動は、５０％と差がなかった。
（試験例７：位置認識試験）
　7日間の腹腔内投与を行い最終投与の1時間後、実施例２及び比較例３のマウスに対して、空間記憶力を評価するために、位置認識試験を実施した。試験は、薄暗い照明（１００ｌｕｘ）の部屋で行った。なお、試験は、トレーニング段階とテスト段階の間の時間間隔を４８時間とした以外は、発明者らの文献（Tohda,C.ら, Br J Pharmacol. 157, pp.1427-1440, 2009.）の記載にしたがって実施した。なお、移動の指標としてデジタルカメラシステムを用いてマウスの経路を追跡した。１０分間に動いた距離を、ＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎ３．０（ノルダス（Ｎｏｌｄｕｓ）社、ワゲニンゲン（Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ）、オランダ）を用いて移動活動活性として分析した。
　結果を図８Ｂに示した。
　トレーニング段階において慣れさせておいた物体を、テスト段階で新しい位置に移動させたとき、ジオスゲニンを投与されたマウス（実施例８）は、偶然に選択される行動（５０％）と比較して有意に高い頻度で探索行動を行った。しかしながら、コントロールのマウス（比較例１１）では、新しい位置に移動させた物体に対して特異な探索行動を示さなかった。
（試験例８：自発運動量の測定）
　自発運動量は、オープンフィールドで１０分間の間に移動した距離によって評価した。
　結果を図８Ｃに示した。実施例８及び比較例１１の間に有意差は観察されなかった。この結果は、ジオスゲニンの投与による副作用的な兆候がないことを示す。
＜実施例９＞
　正常マウス（Ｃ５７ＢＬ／６、雄、８週齢）に、腹腔内投与によりジオスゲニン溶液を投与した（１００μｍｏｌ／ｋｇ／日で１４日間）。１４回目の投与の翌日に、試験に供した。
＜比較例１２＞
　ジオスゲニン溶液を５％グルコース含有１０％エタノール溶液（溶媒溶液）とした以外は、実施例９と同様にした。
（試験例９：新奇物体認識試験）
　実施例９及び比較例１２のマウスに対して、新奇物体認識試験を実施した。試験は、上記と同様の条件で実施した。
　結果を図９に示した。ジオスゲニンの投与により、物体認知記憶力が有意に向上した。
＜実施例１０＞
　正常マウス（ｄｄＹマウス、雄、６週齢）に、３０μｍｏｌ／ｋｇ／日で４日間、ジオシンを経口投与した。ジオシン（クロマデックス、Irvine, CA, USA）を最終濃度の１０倍濃度となるようにエタノールに溶解し、ストック溶液を５％グルコース水溶液で最終濃度まで希釈した。最後の投与から１時間後、試験に供した。
＜比較例１３＞
　ジオシンを投与しない以外は、実施例１０と同様にした。
（試験例１０：新奇物体認識試験）
　実施例１０及び比較例１３のマウスに対して、新奇物体認識試験を実施した。試験は、上記試験例６と同じ条件で実施した。
　結果を図１２Ａに示した。ジオシン（３０μｍｏｌ／ｋｇ／ｄａｙ）を投与されたマウス（実施例１０）では、新奇物体に対して頻繁な探索行動を示し、その行動指数は、偶然に選択される行動の値（５０％）を優位に超える結果であった（図１２Ａ）。コントロールマウス（比較例１３）の新奇物体に対する探索行動は、偶然に選択される行動（５０％）と差異がなかった。
　投与群間で、体重の推移は有意差がなかった（図１２Ｂ）。
（試験例１１：１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳ中和抗体の持続的投与）
＜比較例１４＞
　正常マウス（ｄｄＹマウス、雄、６週齢）の１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳ機能を中和するため、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳに特異的なポリクローナル抗体、すなわちＡｂ０９９クローンを脳室内投与により連続的に、正常マウスに投与した。ＡＣＳＦ（人工脳脊髄液）によって希釈したＡｂ０９９を、マイクロ浸透圧ポンプ（１００７Ｄモデル、アルゼット（Ａｌｚｅｔ）社、Ｃｕｐｅｒｔｉｎｏ（クパチーノ）、ＣＡ（カリフォルニア）、アメリカ）及びｂｒａｉｎ ｉｎｆｕｓｉｏｎ ｋｉｔ ３（アルゼット社）に充填した。Ａｂ０９９の希釈比率は、脳脊髄液（ＣＳＦ）中で中和抗体として作用できる濃度に達するように、ＣＳＦ体積と流入速度によって決定した。定位固定装置を使用して、マウス麻酔後に脳内注入用カニューラ（ｂｒａｉｎ ｉｎｆｕｓｉｏｎ ｋｉｔ）を右心室に挿入（前方／後方：ブレグマから後方―０．２２ｍｍ、中央／側面：＋１．０ｍｍ、背部／腹部：表面より下―２．５ｍｍ）した。Ｌｏｃｔｉｔｅ ４５４（アルゼット社）を使用して全カニューラ挿入部位を覆った。ポンプは、マウスの背中の皮下に埋め込んだ。切開した皮膚は縫い合わせた。
　抗体の持続的投与開始後、ジオスゲニンの腹腔内投与を開始した。5日間のジオスゲニン投与後、物体認知記憶力のトレーニング段階を開始した。翌日、ジオスゲニンの最後の投与を行った。テスト段階は、トレーニング段階開始から４８時間後に行った。
＜比較例１５＞
　Ａｂ０９９クローンの脳室内投与をＡＣＳＦ（人工脳脊髄液）の脳室内投与とし、ジオスゲニンの腹腔内投与を溶媒溶液の腹腔内投与とする以外は、比較例１４と同様にした。
＜実施例１１＞
　Ａｂ０９９クローンの脳室内投与をＡＣＳＦ（人工脳脊髄液）の脳室内投与とする以外は、比較例１４と同様にした。
　結果を図１０に示した。
　比較例１５のグループのマウスは、テスト段階では物体認知記憶力の亢進を示さなかった。対照的に、ＡＣＳＦ及びジオスゲニンを投与されたマウス（実施例１１）では、探索指向指数が有意に増加し、ジオスゲニンによる記憶力の亢進を示した。１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳ中和抗体を注入したマウス（比較例１４）では、ジオスゲニンによる記憶力の亢進は完全に相殺された。これらのデータは、ジオスゲニンが１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳを活性化させることにより、正常な記憶力を亢進させることを示している。
（参考試験例３：デノソミンも、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳの外因性刺激物質であることの確認）
　デノソミンもまた、ジオスゲニンのような軸索伸長活性を有する。そのため、デノソミンの効果もまた、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳによって仲介されるかどうかを調査した。１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳを、ｓｉＲＮＡトランスフェクションを用いてノックダウンした。１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳ（４００ｎＭ）のｓｉＲＮＡトランスフェクションから２日後、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳレベルは皮質ニューロンにおいて顕著に低下した（図５Ａ）。一方、皮質ニューロンにおけるｎＶＤＲの発現は、１，２３Ｄ３－ＭＡＲＲＳ（４００ｎＭ）のｓｉＲＮＡトランスフェクションによって変化しなかった、これはノックダウンがＤＨＶＤ３のゲノム伝達に影響を与えないことを示唆している（図５Ａ）。従って、ｓｉＲＮＡトランスフェクションから２日後、デノソミン（１μＭ）又は溶媒溶液を細胞へ投与した。さらに４日間のインキュベーションの後、神経細胞あたりの軸索の長さを測定するために、ｐＮＦ－Ｈ及びＭＡＰ２に対して細胞を二重免疫染色した。皮質ニューロンにおいて、コントロールｓｉＲＮＡのトランスフェクションの後、軸索密度はデノソミン投与によって有意に増加した（図１１）。しかしながら、デノソミン誘発性軸索伸長は、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳ ｓｉＲＮＡトランスフェクション後の神経細胞においてほぼ完全に阻害された（図１１）。このデータは、１，２５Ｄ３－ＭＡＲＲＳがデノソミン誘発性軸索伸長に不可欠であることを示している。
＜＜実施例１２、比較例１６、参考例３＞＞
　アルツハイマー病モデル（5XFADマウス）における、物体認知記憶力亢進に寄与するジオシン（ジオスゲニン配糖体）の効果を確認した。
＜実施例１２＞
　ジオシン（３０μmol／ｋｇ／日）を、5XFADマウス（雄、２０週齢）に経口投与によって６日間投与した。最後の投与から１時間後、トレーニング段階を開始した。
＜比較例１６＞
　ジオシンの投与を溶媒溶液の投与とする以外は、実施例１２と同様にした。
＜参考例３＞
　5XFADマウスを同腹の野生型マウスとする以外は、比較例１６と同様にした。
（試験例１２：新奇物体認識試験）
　実施例１２及び比較例１６のマウスに対して、物体認知記憶力を評価するために、新奇物体認識試験を実施した。トレーニング段階とテスト段階の間の適正な時間間隔を１時間とする以外は、上記試験例６と同じ条件で試験を実施した。
　結果を図１３に示した。
　新奇物体認識試験において、溶媒溶液処理された野生型マウス（参考例３）、及びジオシン処理（３０μmol／ｋｇ／日）された5XFADマウス（実施例１２）は、頻繁に新奇物体を探索し、その行動指数は、偶然に選択される行動の値（５０％）よりも顕著に高い値を示した（図１３Ａ）。溶媒溶液処理された5XFADマウス（比較例１６）における新奇物体探索行動は、偶然に選択される行動（５０％）と差異がなかった。
　体重はいずれのグループも顕著な変化は無かった（図１３Ｂ）。
＜＜実施例１３及び比較例１７＞＞
　ジオスゲニンの、脊髄損傷マウスにおける後肢機能へ及ぼす影響について確認するため、脊髄損傷モデル試験を実施した。
脊髄損傷（ＳＣＩ）マウス
　７週齢の雌のddYマウス（ＳＬＣ）を脊髄損傷モデル試験に用いた。マウスは、餌と水を自由に摂取できる状態で、一定の環境条件（２２±２℃、５０±５％湿度、および午前７時から開始される１２時間の明暗サイクル）下で維持した。挫傷は、マウスの露出させた第一腰椎（Ｌ１）へ、定位固定装置（ナリシゲ社製）を用いて高さ３ｃｍから３．０ｇの重りを一度落下させることにより、発生させた。外科的処置の１時間後、供試マウスを無作為に、溶媒溶液処理グループとジオスゲニン処理グループとに分け、薬物の投与を開始した。
＜実施例１３＞
　ジオスゲニン（１０μmol／ｋｇ）を、一日に一度の頻度で７日間、ＳＣＩマウスに腹腔内投与した。
＜比較例１７＞
　ジオスゲニンを溶媒溶液とする以外は、実施例１３と同様にした。
（試験例１３：ＴＭＳによる後肢運動機能の評価）
　実施例１３及び比較例１７の最後の投与から１時間後、行動評価のため、マウスを個別にオープンフィールド（２３．５ｃｍ×１６．５ｃｍ×１２．５ｃｍ）に移動させ、５分間観察した。脊髄損傷のモデル試験における後肢の運動機能を評価する基準として一般的に用いられるバッソマウススケール（Basso Mouse Scale、ＢＭＳ）（図１４Ａ）と、試験の精度を高めるために本発明者らがＢＭＳに改変を加えた０－１８ポイントのトヤママウススケール（0?18-point Toyama Mouse Scale、ＴＭＳ）（図１４Ｂ）を用いて、オープンフィールドにおける移動行動を評価した。
　新しいスコアであるトヤママウススケール（ＴＭＳ）は、試験の精度を向上させるために、本発明者らがＢＭＳスコアに改変を加えたスコアであり、このＴＭＳをＳＣＩマウスにおける後肢機能の評価に用いた。ＴＭＳ表を表２に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 表中、括弧内の数字が点数であり、項目毎に点数を判定し、加算して評価する。
　実施例１３及び比較例１７はいずれも、供試マウスの個体数は３であり、後肢は計６本（ｎ＝６）で評価を行った。結果を図１４に示した。
　ジオスゲニン処理したマウス（実施例１３、図１４の黒丸で表された群）は、コントロールの溶媒溶液処理したマウス（比較例１７、図１４の白丸で表された群）と比較して、後肢運動機能が向上した。
　本発明によれば、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷等の神経疾患を根本的に予防及び／又は治療することができる化合物及び医薬組成物を提供すること、ならびにその治療方法を提供することができる。

Claims (24)

  1. 　神経疾患の予防及び／又は治療のための、1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩（ただし、前記疾患がアルツハイマー病又は脊髄損傷であり、且つ前記化合物がデノソミンである場合を除く。）。
  2. 　前記1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物が、ジオスゲニン及び／又はジオスゲニン誘導体である、請求項１に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
  3. 　1,25D3-MARRSの刺激活性を有する化合物が、ジオスゲニン及び／又はジオシンである、請求項１に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
  4. 　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、請求項１～３のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
  5. 　神経疾患を予防及び／又は治療するための薬剤の製造における、請求項１～３のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の使用。
  6. 　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、請求項５に記載の使用。
  7. 　神経疾患の予防及び／又は治療における使用のための請求項１～３のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
  8. 　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、請求項７に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩。
  9. 　請求項１～請求項３のいずれかひとつに記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量を含む、神経疾患治療のための医薬組成物。
  10. 　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、請求項９に記載の医薬組成物。
  11. 　疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩の治療有効量をさらに含む、請求項９又は１０に記載の医薬組成物。
  12. 　疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩が、神経疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩である、請求項１１に記載の医薬組成物。
  13. 　請求項９～請求項１２のいずれかひとつに記載の医薬組成物であって、少なくとも１つの担体を混合することを特徴とする、医薬組成物の調製方法。
  14. 　請求項１～請求項３のいずれかひとつに記載の化合物、又は薬学的に許容されるその塩を、ヒトを含む動物に投与することを特徴とする、神経疾患の予防及び／又は治療方法。
  15. 　請求項１～請求項３のいずれかひとつに記載の化合物、又は薬学的に許容されるその塩と、神経疾患の治療もしくは予防に有用であることが知られているひとつ以上の化合物、又は薬学的に許容されるその塩とを併用することを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
  16. 　前記神経疾患が、アルツハイマー病、認知症、パーキンソン病、脊髄損傷又は脳挫傷である、請求項１４又は１５に記載の方法。
  17. 　請求項１～請求項３のいずれかひとつに記載の化合物、又はその薬学的に許容される塩を含む、神経疾患の予防及び／又は治療に使用されるキット。
  18. 　請求項１～請求項３のいずれかひとつに記載の化合物、又はその薬学的に許容される塩、及び容器を含む、請求項１７に記載のキット。
  19. 　ジオスゲニン、ジオスゲニン誘導体、デノソミン、ジヒドロキシビタミンＤ３及びこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される１種以上を投与することを特徴とする1,25D3-MARRSを活性化させる方法。
  20. 　ジオスゲニン、ジオスゲニン誘導体、ジヒドロキシビタミンＤ３及びこれらの薬学的に許容される塩からなる群から選択される１種以上を投与することを特徴とするアルツハイマー病を予防又は治療する方法。
  21. 　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、アミロイド斑、タウ沈殿、タウ析出物、PHF-タウ、又は神経原線維変化を減少させる方法。
  22. 　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、Ａβ（1-42）に誘導された軸索の委縮を抑える方法。
  23. 　ジオスゲニン、その誘導体、その薬理学的に許容される塩、又はエステルを人などの哺乳動物に投与することを特徴とする、1,25D3-MARRSを刺激してシグナル伝達経路を活性化する方法。
  24. 　請求項１～３のいずれか１項に記載の化合物及び／又は薬学的に許容されるその塩を含有するサプリメント、健康食品、機能性食品、又は特定保健用食品。
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