WO2014104352A1 - リムルス試験に付されるアンチトロンビンiii用の前処理剤及び前処理方法 - Google Patents

リムルス試験に付されるアンチトロンビンiii用の前処理剤及び前処理方法 Download PDF

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WO2014104352A1
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pretreatment
test
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真紀 相沢
俊男 小田
純 明田川
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生化学工業株式会社
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    • G01N2333/8121—Serpins
    • G01N2333/8128—Antithrombin III

Definitions

  • the present invention relates to a pretreatment agent for antithrombin III subjected to a detection test for a target substance such as endotoxin using a limulus reagent, a limulus reagent kit including the treatment agent, and a pretreatment of antithrombin III using the same.
  • the present invention relates to a method and a method for measuring a target substance such as endotoxin using a Limulus reagent.
  • Endotoxin is a lipopolysaccharide present in the outer cell wall of Gram-negative bacteria and is known as a strong pyrogen. Endotoxins are known to cause various pathological conditions such as shock symptoms in addition to fever. Therefore, detection and quantification of endotoxins in pharmaceuticals such as injections, water, and medical instruments are important from the viewpoint of ensuring the safety of pharmaceuticals and the like.
  • endotoxin can be measured by using a horseshoe crab blood cell extract (shoe crab, amebocyte lysate; hereinafter also referred to as “LAL”).
  • LAL horseshoe crab blood cell extract
  • This is called the Limulus test and utilizes a cascade reaction of various proteins (all of which are serine proteases) present in LAL caused by endotoxin contacting LAL.
  • ATIII is an anticoagulant factor in blood and is used for the treatment of disseminated intravascular coagulation syndrome (DIC).
  • DIC disseminated intravascular coagulation syndrome
  • ATIII is a serine protease inhibitor, it inhibits the activity of proteins involved in cascade reactions existing in LAL (Non-patent Document 1).
  • an inhibitory action on the Limulus reagent may be exhibited.
  • Such an inhibitory action may be avoided by dilution of the test sample (Non-Patent Document 2).
  • ATIII has an extremely strong inhibitory effect on the Limulus reagent, and it was necessary to dilute the ATIII preparation (injection) by 64 times or more to be subjected to the Limulus test (Non-patent Document 2).
  • Non-patent Document 2 In view of the detection sensitivity of Limulus reagent (minimum endotoxin concentration in the calibration curve), it has been considered difficult to apply the Limulus test to ATIII preparations (Non-patent Document 2). In fact, for samples containing ATIII, endotoxin is still detected using a rabbit fever test (Non-patent Document 1).
  • Non-Patent Document 1 discloses that an ATIII preparation is diluted 100 times, pretreated by heating at 70 ° C. for 20 minutes, reacted with LAL, and measured by a light scattering method.
  • a method of measuring is disclosed. This method is technically characterized by adopting a light scattering method using a light scattering measurement device instead of a turbidimetric method using a spectrophotometer in order to increase the sensitivity of Et detection.
  • this method has at least the following problems in addition to the necessity of dilution at a high magnification as described above.
  • a spectrophotometer is widely used as a measuring device for the Limulus test, and a light scattering measuring device must be newly introduced and used in order to carry out the light scattering method.
  • (2) In the Japanese Pharmacopoeia only the turbidimetric method and the colorimetric method are prescribed as the optical quantification method of Et, and the light scattering method is not prescribed.
  • Patent Document 1 is characterized in that a biological sample is brought into contact with an alkaline earth metal sulfate or alkaline earth metal halide, heated and pretreated, and then subjected to measurement using a Limulus reagent. A method for measuring Et and BG of a biological sample is described.
  • Patent Document 2 discloses that a biological sample is mixed with a hexadimethrin compound, an alkali metal hydroxide, a nonionic surfactant and an alkaline earth metal halide, heated and pretreated, and then a Limulus reagent is added. A method for measuring Et and BG of a blood-derived sample, characterized by being subjected to the measurement used, is described.
  • Patent Document 3 is characterized in that a biological sample is brought into contact with a carrier on which a lipopolysaccharide and / or lipid A-binding peptide is immobilized, Et is adsorbed and recovered, and then subjected to measurement using a Limulus reagent or the like. A method for measuring Et of a sample possibly containing ATIII is described.
  • An object of the present invention is to provide a means for reducing the reaction interference when the ATIII is subjected to a limulus test, and thus performing the ATIII limulus test with high accuracy.
  • the “reaction interference action” here means any action caused by factors other than the measurement target substance (Et, BG, etc.) of the Limulus test and affecting the result of the Limulus test. Therefore, “reaction interference” includes, for example, ATIII itself, components such as additives or impurities coexisting with ATIII, components such as reagents other than pretreatment agents coexisting during pretreatment, and / or Limulus reagent.
  • the present inventors have made ATIII limulus by subjecting ATIII to coexistence with a divalent metal salt and subjecting it to a treatment for inactivating proteins such as heat treatment and acid treatment. It has been found that reaction interference during the test can be reduced, and therefore the ATIII limulus test can be carried out with high accuracy, and the present invention has been completed.
  • a pretreatment agent for antithrombin III subjected to the Limulus test Contains divalent metal salts
  • a pretreatment agent used for subjecting the antithrombin III to a treatment for inactivating a protein in a state in which the antithrombin III coexists with the pretreatment agent before being subjected to a Limulus test Contains divalent metal salts
  • a pretreatment agent used for subjecting the antithrombin III to a treatment for inactivating a protein in a state in which the antithrombin III coexists with the pretreatment agent before being subjected to a Limulus test a pretreatment agent, wherein the divalent metal salt is one or more metal salts selected from the group consisting of divalent metal chlorides, divalent metal acetates, and divalent metal sulfates.
  • the pretreatment agent wherein the divalent metal constituting the divalent metal salt is one or more metals selected from the group consisting of magnesium, calcium, manganese, and zinc.
  • the said pretreatment agent whose density
  • the pretreatment agent wherein the measurement target substance of the Limulus test is endotoxin.
  • a method for pretreating antithrombin III subjected to a Limulus test comprising subjecting the antithrombin III to a treatment for inactivating a protein in the state of coexisting with the pretreatment agent.
  • the pretreatment method wherein the treatment for inactivating the protein is heat treatment or acid treatment.
  • the pretreatment method wherein the heat treatment is performed at a temperature higher than 50 ° C.
  • the pretreatment method wherein the acid used in the acid treatment is hydrochloric acid.
  • a method for measuring a measurement target substance in an antithrombin III comprising pretreating antithrombin III by the pretreatment method and subjecting the pretreated antithrombin III to a limulus test.
  • a method for producing antithrombin III comprising measuring a substance to be measured in the limulus test in antithrombin III by the above method.
  • FIG. 1 is a diagram showing the results of a test using a parallel line quantitative method.
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of a test using the parallel line quantification method.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of a test using the parallel line quantification method.
  • the pretreatment agent of the present invention is a pretreatment agent for ATIII subjected to the Limulus test, containing a divalent metal salt.
  • the pretreatment agent of the present invention is used for subjecting ATIII to a treatment to inactivate proteins in the state of coexisting with the pretreatment agent of the present invention before subjecting ATIII to the Limulus test.
  • “Limulus test” herein refers to a test for detecting (measuring) a target substance using a Limulus reagent. This target substance is also referred to as a “substance to be measured in the Limulus test”.
  • the substance to be measured in the Limulus test is not particularly limited as long as it is a substance detectable by the Limulus test, but Et or BG is preferable, and Et is more preferable.
  • ATIII is not particularly limited as long as it is a sample containing ATIII, and may be composed of ATIII or may contain components other than ATIII.
  • the shape of ATIII is not particularly limited, and may be, for example, a liquid or a solid such as a lyophilized product, a powder, a granule, or a tablet.
  • ATIII examples include ATIII injection preparations.
  • injectable preparations include, for example, Neuart (registered trademark; manufactured by Benesis Co., Ltd.), Anthrombin (manufactured by Chemical and Serum Therapy Research Institute), Nonthrone (registered trademark; manufactured by Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.).
  • the undiluted solution may be used as a specimen
  • a concentrated solution may be used as a specimen
  • a solution diluted to an arbitrary magnification with an aqueous solvent such as a buffer solution may be used as the specimen.
  • the “stock solution” here means a solution containing ATIII at a concentration of 50 Units / mL, which is a concentration when ATIII is usually used as an injectable preparation.
  • the “stock solution” is obtained, for example, by dissolving ATIII in an aqueous solvent according to the method described in the package insert of each ATIII injectable preparation.
  • concentrated solution means a solution containing ATIII at a concentration of more than 50 Unit / mL. Examples of the “concentrated solution” include intermediate purified products obtained in the production process of each ATIII injection preparation.
  • the dilution factor in the case of diluting the stock solution with an aqueous solvent is not particularly limited as long as the measurement target substance of the Limulus test can be detected, but is preferably more than 1 time and less than 64 times, for example, more than 1 time and 16 More preferably, it is more than 1 time, more preferably more than 1 time and less than 10 times, still more preferably more than 1 time and less than 4 times, and particularly preferably more than 1 time and less than 2.5 times. 1.1 to 2.5 times is particularly preferable, and 1.2 to 2.5 times is particularly preferable.
  • the “dilution ratio” used herein means the dilution ratio of the reaction solution, which is subjected to the treatment of inactivating the protein in the presence of the pretreatment agent of the present invention, with respect to the “stock solution”. Therefore, the dilution factor “1” means that the ATIII concentration in the reaction solution in which the protein is deactivated in the presence of the pretreatment agent of the present invention is the same as the ATIII concentration in the “stock solution”. (It remains a stock solution. The stock solution is not diluted and ATIII is present at a concentration of 50 Unit / mL.).
  • ATIII may also be a recombinant protein.
  • Recombinant ATIII can be obtained by expressing it in a host cell. Expression by the host cell can be performed according to a conventional method. For example, it can be performed according to the method of Yamada et al. (International Publication No. 2005/035563).
  • the amino acid sequence of ATIII and the base sequence of the gene encoding it can be obtained from a known database.
  • An example of a known database is NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/).
  • the recombinant protein to be expressed may be a protein having the same amino acid sequence as natural ATIII.
  • the recombinant protein to be expressed may be a natural ATIII variant as long as it maintains the function as ATIII.
  • Variants also include known ATIII homologues and artificial variants.
  • the “divalent metal salt” is not particularly limited as long as it is a metal salt recognized as a divalent metal salt in the technical field to which the present invention belongs.
  • the divalent metal salt include divalent metal fluoride, divalent metal chloride, divalent metal bromide, divalent metal iodide, divalent metal hydroxide, divalent metal cyanide, divalent metal nitrate, Divalent metal nitrite, divalent metal hypochlorite, divalent metal chlorite, divalent metal chlorate, divalent metal perchlorate, divalent metal permanganate, divalent metal acetic acid Salt, divalent metal hydrogen carbonate, divalent metal dihydrogen phosphate, divalent metal hydrogen sulfate, divalent metal hydrogen sulfide, divalent metal thiocyanate, divalent metal oxide, divalent metal sulfide , Divalent metal peroxide, divalent metal sulfate, divalent metal sulfite, divalent metal thiosulfate, divalent
  • divalent metal salt only 1 type may be used and it may be used in combination of 2 or more type.
  • the divalent metal salt is preferably, for example, one or more metal salts selected from the group consisting of divalent metal chlorides, divalent metal acetates, and divalent metal sulfates.
  • the divalent metal salt may give a divalent metal ion when ATIII coexists with the pretreatment agent of the present invention. “When ATIII coexists with the pretreatment agent of the present invention” specifically refers to a time when a treatment for inactivating a protein described later is performed.
  • the divalent metal salt may be, for example, one that dissolves in an aqueous solvent to give a divalent metal ion. Examples of the aqueous solvent include water and a buffer solution.
  • the “divalent metal” here is not particularly limited as long as it is a metal recognized as a divalent metal in the technical field to which the present invention belongs.
  • “Divalent metal” may mean a metal that gives a divalent metal ion when ionized.
  • the divalent metal include beryllium, magnesium, calcium, strontium, barium, radium, cadmium, nickel, zinc, copper, mercury, iron, cobalt, tin, lead, and manganese.
  • As a divalent metal only 1 type may be used and it may be used in combination of 2 or more type.
  • the divalent metal is preferably, for example, one or more metals selected from the group consisting of magnesium, calcium, manganese, and zinc.
  • the divalent metal salt include, for example, magnesium sulfate (MgSO 4 ), for example, magnesium chloride (MgCl 2 ), magnesium acetate (Mg (CH 3 COO) 2 ), calcium chloride (CaCl 2 ), calcium acetate. (Ca (CH 3 COO) 2 ), manganese sulfate (MnSO 4 ), and zinc sulfate (ZnSO 4 ).
  • the pretreatment agent of the present invention may contain, for example, only magnesium sulfate (MgSO 4 ) as a divalent metal salt.
  • the pretreatment agent of the present invention may further contain one or more other divalent metal salts in addition to, for example, magnesium sulfate (MgSO 4 ).
  • the pretreatment agent of the present invention may further contain other components.
  • the “other components” are not particularly limited as long as they are pharmaceutically acceptable components for reagents and diagnostics, and for example, components used by mixing in reagents and diagnostic agents can be used.
  • the “other components” used herein include alkali metal chlorides, alkali metal acetates, alkali metal sulfates, surfactants, and various additives.
  • various additives include stabilizers, emulsifiers, osmotic pressure adjusters, buffers, isotonic agents, preservatives, pH adjusters, colorants, excipients, condensing agents, lubricants, disintegrating agents. However, it is not limited to these.
  • the dosage form of the pretreatment agent of the present invention is not particularly limited.
  • the pretreatment agent of the present invention may be provided, for example, as a liquid agent, or as a solid agent for dissolution at the time of use, such as a powder, granule, or tablet.
  • the pretreatment agent of the present invention may be provided as, for example, a microplate that holds the pretreatment agent of the present invention in a well. Such a microplate can be obtained, for example, by dispensing the pretreatment agent of the present invention prepared in a liquid state into a well and drying it.
  • the pretreatment agent of the present invention When the pretreatment agent of the present invention is provided as a liquid agent, the pretreatment agent of the present invention may be provided in a frozen state or a liquid state (melted state).
  • the divalent metal salt may exist in the form of a salt, may exist in an ionized state, or may exist as a mixture thereof. In any of these cases, it corresponds to “the pretreatment agent of the present invention contains a divalent metal salt”.
  • the pretreatment agent of the present invention can be produced by the same method as that usually used for producing reagents and diagnostic agents, except that a divalent metal salt is contained.
  • the concentration of the divalent metal salt in the pretreatment agent of the present invention is not particularly limited, and can be appropriately set according to various conditions such as the type of the divalent metal salt and the amount of the pretreatment agent of the present invention.
  • the concentration of the divalent metal salt in the pretreatment agent of the present invention is, for example, 0.001% by mass or more, 0.01% by mass or more, 0.1% by mass or more, 1% by mass or more, 5% by mass or more, 10% by mass. % Or more, 30 mass% or more, or 50 mass% or more.
  • the concentration of the divalent metal salt in the pretreatment agent of the present invention is, for example, 100% by mass or less, 50% by mass or less, 30% by mass or less, 10% by mass or less, 5% by mass or less, or 1% by mass or less. Good.
  • the amount of the pretreatment agent of the present invention is not particularly limited, and can be appropriately set according to various conditions such as the type and concentration of the divalent metal salt.
  • the pretreatment agent of the present invention is, for example, a concentration of divalent metal ions derived from a divalent metal salt when ATIII coexists with the pretreatment agent of the present invention (hereinafter referred to as “divalent metal ion concentration during treatment”). Can also be used so that the concentration range is as exemplified below.
  • concentration when ATIII coexists with the pretreatment agent of the present invention specifically refers to the concentration in a reaction system in which a treatment for deactivating protein described later is performed.
  • the concentration of the divalent metal ion during the treatment is not particularly limited as long as the effect of the pretreatment of the present invention can be obtained, but it is preferably, for example, 0.5 mM or more.
  • the concentration of the divalent metal ion during the treatment is, for example, preferably 0.5 mM to 100 mM, more preferably 0.5 mM to 50 mM, still more preferably 0.5 mM to 25 mM, and 5 mM to 25 mM. More preferably, it is more preferably 5 mM to 12.5 mM.
  • the “divalent metal ion concentration at the time of treatment” referred to here is a divalent metal salt derived from these divalent metal salts. It means the total concentration of valent metal ions.
  • Kit of the present invention is a Limulus reagent kit containing the pretreatment agent of the present invention as a constituent article.
  • the kit of the present invention may contain other components.
  • the “other constituent article” include, but are not limited to, a Limulus reagent, a substrate for detecting a Limulus reaction, a buffer solution, distilled water, a standard substance (Et, BG, etc.), and a microplate. Is not to be done.
  • the Limulus reagent used in the present invention is not particularly limited as long as it contains a protein involved in the cascade reaction corresponding to the measurement target substance of the Limulus test.
  • the Limulus reagent include horseshoe crab blood cell extract (LAL (lysate reagent)).
  • LAL can be obtained by a conventional method using horseshoe crab blood as a raw material. LAL may be used after appropriate fractionation and / or purification.
  • the horseshoe crab may be any kind of horseshoe crab.
  • Horseshoe crabs include the Japanese horseshoe crab Tachypleus tridentatus, the American horseshoe crab Limulus polyphemus, and the Southeast Asian horseshoe crabs, Carcinoscorpius rotundi cauda (Carundoscorpius) Tachypleus gigas).
  • the reconstituted Limulus reagent is not particularly limited as long as it is configured to include a protein involved in the cascade reaction corresponding to the measurement target substance of the Limulus test. Proteins involved in the cascade reaction are also collectively referred to as “factors”.
  • cascade reaction refers to a series of reactions that proceed due to the presence of a substance to be measured in the Limulus test. For example, if there is a substance that activates factor C such as Et, factor C is activated by the substance to become active factor C, and factor B is activated by active factor C to become active factor B.
  • the proclotting enzyme is activated by the active factor B, and a series of reactions to become a clotting enzyme proceeds. That is, when a substance that activates factor C such as Et is a substance to be measured, the reconstituted Limulus reagent can be used as factors constituting a cascade system, for example, factor C, factor B, and proclotting enzyme. Should be included.
  • a substance that activates factor G such as BG is present, factor G is activated by the substance to become active factor G, and proclotting enzyme is activated by active factor G and the clock is clotted. A series of reactions that become a tinging enzyme proceeds.
  • the reconstructed Limulus reagent may contain, for example, factor G and a proclotting enzyme as factors constituting the cascade system. That's fine.
  • the progress of the cascade reaction can be detected, for example, by detecting the presence of the clotting enzyme using a substrate for detection of the Limulus reaction described later.
  • the reconstructed Limulus reagent only needs to contain factors involved up to the intermediate stage. Specifically, for example, when a substance that activates factor C such as Et is a substance to be measured and a substrate for detection of a Limulus reaction that can detect the presence of activated factor C is used, the substance is reconstituted.
  • the Limulus reagent may contain factor C.
  • Each factor contained in the reconstituted Limulus reagent may be obtained naturally or may be a recombinant protein.
  • Natural factors can be obtained from the blood cell extract (LAL) of various horseshoe crabs. These factors can be used after being purified to a desired degree. Purification can be carried out, for example, by a known method (Nakamura T. et al., J Biochem. 1986 Mar; 99 (3): 847-57.).
  • Each factor can be obtained by expressing it in a host cell.
  • Expression by the host cell can be performed according to a conventional method. For example, it can be performed according to the method of Mizumura et al. (International Publication No. 2012/118226).
  • the amino acid sequence of each factor and the base sequence of the gene encoding it can be obtained from a known database.
  • An example of a known database is NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/).
  • Each expressed recombinant protein can be used after being purified to a desired degree as required.
  • Reconstructed Limulus reagent can be obtained by combining each factor as appropriate.
  • the factors contained in the reconstituted Limulus reagent may be all natural factors, all recombinant proteins, or any combination thereof.
  • the reconstructed Limulus reagent may be obtained by appropriately combining each factor with, for example, LAL itself or appropriately fractionated and / or purified LAL.
  • the detection substrate for the Limulus reaction refers to a substrate for detecting the progress of the cascade reaction.
  • Coagulogen is an example of the detection substrate.
  • Coagulogen is a detection substrate for the clotting enzyme that is the end product of the cascade reaction. When coagulogen and clotting enzyme come into contact, it coagulates as coagulin. The progress of the coagulation reaction can be measured by measuring the turbidity of the reaction solution or observing the formation of gel. Coagulogen can be recovered from horseshoe crab blood cell extract (LAL). In addition, the base sequence of the gene encoding coagulogen has been clarified (Miyata et al., Protein, Nucleic Acid, Ensemble, No. 29; P30-43; 1986), and coagulogen is produced by genetic engineering according to conventional methods. You can also
  • a synthetic substrate may be used as the detection substrate.
  • the synthetic substrate is not particularly limited as long as it has suitable properties for detecting the progress of the cascade reaction.
  • the property suitable for detecting the progress of the cascade reaction may be, for example, a property for detecting the presence of a clotting enzyme, or a property for detecting an intermediate stage of the cascade reaction. Also good.
  • Examples of the “property for detecting the presence of a clotting enzyme” include a property of developing a color by an enzymatic reaction of the clotting enzyme and a property of emitting fluorescence by an enzymatic reaction of the clotting enzyme.
  • Examples of the “property for detecting an intermediate stage of the cascade reaction” include a property of developing color by an enzyme reaction such as activated factor C and a property of emitting fluorescence by an enzyme reaction such as activated factor C.
  • Examples of the synthetic substrate include a substrate represented by the general formula XYZ (wherein X is a protecting group, Y is a peptide, and Z is a dye amide-bonded to Y).
  • the enzyme reaction of the clotting enzyme resulting from the cascade reaction causes Y
  • the amide bond between -Z is cleaved, and the dye Z is released to develop color or emit fluorescence.
  • the dye Z is released by the protein generated in the intermediate stage of the clotting enzyme or the cascade reaction, respectively. do it.
  • the protecting group X is not particularly limited, and a known protecting group for peptides can be suitably used.
  • the dye Z is not particularly limited, and may be, for example, a dye detected under visible light or a fluorescent dye.
  • examples of the dye Z include pNA (paranitroaniline), MCA (7-methoxycoumarin-4-acetic acid), DNP (2,4-dinitroaniline), and dansyl (dansyl) dye.
  • Peptide Y includes Leu-Gly-Arg (LGR), Ile-Glu-Gly-Arg (IEGR) (SEQ ID NO: 1), Val-Pro-Arg (VPR), Asp-Pro-Arg (DPR). .
  • any of these synthetic substrates may be used to detect the presence of a clotting enzyme, or may be used to detect an intermediate stage of a cascade reaction. Moreover, you may select and use these synthetic substrates suitably according to a detection target.
  • a substrate containing LGR as peptide Y can be preferably used for detection of a clotting enzyme, and a substrate containing VPR or DPR as peptide Y is preferably used for detection of activated factor C.
  • the liberated dye Z may be measured by a technique according to the properties of the dye.
  • LAL horseshoe crab blood cell extract
  • coagulogen originally contained in LAL can be used as a substrate for detection.
  • an appropriately selected detection substrate may be used in combination with LAL.
  • an appropriately selected detection substrate can be used in combination with the reconstructed Limulus reagent.
  • Each factor and detection substrate may be included in the kit of the present invention as a mixture, or may be separately included in the kit of the present invention separately or in any combination.
  • reaction interference when ATIII is subjected to the Limulus test can be reduced, and the ATIII Limulus test can be performed with high accuracy.
  • the pretreatment method of the present invention is an ATIII subjected to a Limulus test, which comprises subjecting ATIII to a treatment for inactivating a protein in the state of coexisting with the pretreatment agent of the present invention. This is a pre-processing method.
  • the “treatment for inactivating protein” may be any treatment that inactivates ATIII, and specifically, any treatment that inactivates ATIII to such an extent that the Limulus test is not inhibited.
  • the treatment for inactivating the protein include, but are not limited to, heat treatment, acid treatment, and alkali treatment.
  • any one of the processes may be performed alone, or two or more processes may be combined.
  • the treatment for inactivating the protein can be performed in an aqueous solvent such as water or a buffer solution, for example. That is, the treatment for inactivating the protein can be performed, for example, in a state where ATIII and the pretreatment agent of the present invention coexist in an aqueous solvent.
  • heat treatment refers to a treatment for heating ATIII coexisting with the pretreatment agent of the present invention.
  • the heating method is not particularly limited, but a method using a device such as a heat block, a water bath, an air bath, or a microwave oven is preferable.
  • the temperature of the heat treatment is not particularly limited as long as the protein is deactivated.
  • the heat treatment temperature is, for example, preferably 55 ° C. to 100 ° C., more preferably 55 ° C. to 95 ° C., further preferably 60 ° C. to 90 ° C., and 65 ° C. to 85 ° C. Is more preferably 65 ° C. to 75 ° C.
  • the heat treatment time is not particularly limited as long as the protein is deactivated, but for example, it is preferably 1 minute or longer.
  • the heat treatment time is, for example, preferably 1 minute to 2 hours, more preferably 1 minute to 1 hour, further preferably 5 minutes to 30 minutes, and more preferably 5 minutes to 20 minutes. Is more preferable, and 5 to 15 minutes is particularly preferable.
  • the “acid treatment” referred to here is a treatment in which ATIII coexisting with the pretreatment agent of the present invention is brought into contact with an acid.
  • the acid used for the acid treatment include hydrochloric acid, sulfuric acid, and nitric acid, but are not limited thereto. Of these, hydrochloric acid is preferred.
  • the amount of acid added can be appropriately set according to various conditions such as the type of acid.
  • the amount of acid added is, for example, such that the acid concentration in the reaction system during the acid treatment is 0.001N to 1N, preferably 0.01N to 0.5N, more preferably 0.01N to 0.1N. It may be.
  • the time for the acid treatment is not particularly limited as long as the protein is deactivated. For example, it may be a time usually used for the acid treatment.
  • the acid treatment time may be, for example, 0.1 second to 2 hours.
  • the “alkali treatment” referred to here is a treatment in which ATIII coexisting with the pretreatment agent of the present invention is contacted with alkali.
  • the alkali used for the alkali treatment include, but are not limited to, sodium hydroxide and potassium hydroxide. Of these, sodium hydroxide is preferred.
  • the amount of alkali added can be appropriately set according to various conditions such as the type of alkali.
  • the amount of alkali added is, for example, such that the alkali concentration in the reaction system during the alkali treatment is 0.001N to 1N, preferably 0.01N to 0.5N, more preferably 0.01N to 0.1N. It may be.
  • the alkali treatment time is not particularly limited as long as the protein is deactivated.
  • the alkali treatment time may be a time usually used for alkali treatment.
  • the alkali treatment time may be, for example, 0.1 second to 2 hours.
  • the pretreatment method of the present invention may include steps other than the treatment for inactivating the protein.
  • ATIII may be appropriately treated before the treatment for inactivating the protein.
  • a process for processing ATIII such as pulverizing a dry powder of ATIII, can be performed.
  • ATIII may be diluted or concentrated. These treatments may be performed before coexisting with the pretreatment agent of the present invention, or may be performed after coexisting with the pretreatment agent of the present invention and before the treatment for deactivating protein.
  • post-treatment may be appropriately performed.
  • the post-treatment may be, for example, a treatment that prevents the Limulus test from being inhibited when the pretreated ATIII is subjected to the Limulus test.
  • heat treatment is performed as a treatment for deactivating protein
  • the temperature of the treated product can be lowered.
  • acid treatment is performed as a treatment for deactivating protein
  • the treated product can be neutralized with an alkali.
  • the treated product can be neutralized with an acid.
  • the processed product may be diluted or concentrated.
  • the measurement method of the present invention is a method for the limulus test in ATIII, comprising pretreating ATIII by the pretreatment method of the present invention and subjecting the pretreated ATIII to a limulus test. This is a method for measuring a substance to be measured.
  • the Limulus test can be performed, for example, by a known method.
  • known methods include colorimetric methods, turbidimetric methods, and gelation methods.
  • the Limulus test can be performed by bringing ATIII into contact with the Limulus reagent.
  • the cascade reaction proceeds. Therefore, by measuring the progress of the cascade reaction, it is possible to measure the substance to be measured in the Limulus test in ATIII.
  • each factor may be included in the reaction system from the beginning of the step of contacting ATIII with the Limulus reagent, or may be added to the sequential reaction system.
  • the progress of the cascade reaction can be measured using a detection substrate. That is, the progress of the cascade reaction can be measured by measuring the reaction (color development, coagulation, etc.) of the substrate according to the type of the substrate for detection.
  • the detection substrate may be added to the reaction system at an arbitrary timing. For example, the detection substrate may be included in the reaction system from the beginning of the step of contacting ATIII and the Limulus reagent, or may be added to the reaction system during or after the completion of the step. When a Limulus reagent that contains a detection substrate in advance is used, it is not necessary to add the detection substrate separately to the reaction system.
  • the measurement method of the present invention may include other optional steps as long as the cascade reaction proceeds when the measurement target substance of the Limulus test is present in ATIII.
  • the measurement method of the present invention may include a step of adding a detection substrate to the reaction system.
  • the measurement method of the present invention may include a step of converting data obtained by measurement into other data. Examples of the step of converting the data obtained by the measurement into other data include a step of calculating the amount of the measurement target substance of the limulus test in ATIII based on the data obtained by the measurement.
  • the reaction is preferably performed in an aqueous solvent such as water or a buffer solution.
  • reaction interference when ATIII is subjected to the Limulus test can be reduced, and therefore, the ATIII Limulus test can be performed with high accuracy.
  • this invention provides the method of manufacturing ATIII including measuring the measuring object substance of the limulus test in ATIII by the measuring method of this invention.
  • the ATIII thus produced can be provided in any form such as an injection.
  • the Et addition recovery rate was calculated according to the following procedure. That is, simultaneously with the limulus test of a subject in which a known amount of endotoxin was added to ATIII, a limulus test using an equal amount of water as a subject instead of ATIII was performed as a positive control. The value obtained by dividing the value of the absorbance change rate (mAbs / min) of the specimen containing ATIII by the value of the absorbance change rate of the positive control was converted into a percentage and used as the Et addition recovery rate.
  • the Et addition recovery rate may be calculated after subtracting the value corresponding to the contamination from the measured value. That is, the Et addition recovery rate can mean the ratio (%) of the Et amount actually detected in the specimen containing ATIII to the Et amount to be detected when there is no reaction interference effect by ATIII.
  • Et was able to be detected with high accuracy without performing dilution by 64 times or more as in the dilution heating method by heat treatment in the presence of ATIII and Et and magnesium sulfate or calcium chloride.
  • Et could be detected accurately when the magnesium sulfate concentration was 12.5 mM or more.
  • Example 2 Examination of types of divalent metal salt After adding 0.22 mL of 0.5 EU / mL Et standard solution to 0.2 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer Then, 1.8 mL of water was added, and the mixture was further stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer. Then, 0.1 mL was dispensed into another container, 1/10 amount (0.011 mL) of an aqueous solution of various divalent metal salts prepared to 50 mM or 5 mM was added, and the mixture was vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Each solution was heated at 70 ° C.
  • Et could be detected even when Mg (CH 3 COO) 2 , MgCl 2 , Ca (CH 3 COO) 2 , MnSO 4 , or ZnSO 4 was heat-treated in the presence of ATIII.
  • Example 3 Examination of heat treatment temperature and time To 0.9 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, 0.1 mL of 0.5 EU / mL Et standard solution was added, and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. 18 mL was dispensed into a separate container. Thereafter, 0.02 mL of 200 mM CaCl 2 aqueous solution was added and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Each solution was allowed to stand on ice or heat-treated at 37 ° C., 50 ° C., 60 ° C., 70 ° C., 80 ° C. or 90 ° C.
  • Et could be detected when the heat treatment temperature was 60 ° C. or higher. Further, Et could be detected when the heat treatment time was 5 minutes or longer. Moreover, from the result of heating for 10 minutes at each temperature (60 ° C., 70 ° C., 80 ° C., or 90 ° C.), it is considered that the heat treatment temperature is preferably 70 ° C., which has the highest Et addition recovery rate.
  • Example 4 Examination of acid treatment 0.22 mL of 0.5 EU / mL Et standard solution was added to 0.2 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Thereafter, 1.8 mL of water was added, and the mixture was further stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer. Then, 0.1 mL was dispensed into another container, 1/10 amount (0.011 mL) of an aqueous solution of various divalent metal salts prepared to 50 mM or 5 mM was added, and the mixture was vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer.
  • Et was detected by performing acid treatment in the presence of a divalent metal, as in the case of heat treatment.
  • Et could be detected efficiently when the hydrochloric acid concentration was 0.01N to 0.1N.
  • Example 5 Test using pyrochrome (Et measuring reagent for colorimetric method) 0.1 mL of 0.4 EU / mL Et standard solution was added to 0.1 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and a test tube mixer was used. Stir vigorously for 1 minute. Thereafter, 0.1 mL of water was added and stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer, then 0.1 mL of 25 mM CaCl 2 aqueous solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. The solution was dispensed as a 4-fold dilution of ATIII into a separate container.
  • pyrochrome Et measuring reagent for colorimetric method
  • 0.2 mL of water was added to the remaining 0.2 mL, and after vigorously stirring for 1 minute using a test tube mixer, 0.2 mL was dispensed into another container as an 8-fold dilution of ATIII. This operation was repeated to prepare a 16-fold dilution and a 32-fold dilution of ATIII, which were dispensed into separate containers. Each solution was heat-treated at 70 ° C. for 10 minutes using a heat block and immediately cooled on ice. After returning each solution to room temperature, 0.05 mL was dispensed into a microplate.
  • Example 6 Test using Pyrotel-T (Et measurement reagent for turbidimetric method) 0.1 mL of 0.4 EU / mL Et standard solution was added to 0.1 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and a test tube mixer And vigorously stirred for 1 minute. Thereafter, 0.1 mL of water was added and stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer, then 0.1 mL of 25 mM CaCl 2 aqueous solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. The solution was dispensed as a 4-fold dilution of ATIII into a separate container.
  • Et measurement reagent for turbidimetric method 0.1 mL of 0.4 EU / mL Et standard solution was added to 0.1 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and a test tube mixer And vigorously stirred for 1 minute. Thereafter, 0.1 mL of water was added and stirred vigorously for 1 minute using
  • 0.2 mL of water was added to the remaining 0.2 mL, and after vigorously stirring for 1 minute using a test tube mixer, 0.2 mL was dispensed into another container as an 8-fold dilution of ATIII. This operation was repeated to prepare a 16-fold dilution and a 32-fold dilution of ATIII, which were dispensed into separate containers. Each solution was heat-treated at 70 ° C. for 10 minutes using a heat block and immediately cooled on ice. After returning each solution to room temperature, 0.1 mL was dispensed into a microplate.
  • Example 7 Test using pyrotel multi-test (Et measurement reagent for gelation method) 0.1 mL of 0.24 EU / mL Et standard solution was added to 0.1 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and the test tube Stir vigorously for 1 minute using a mixer. Thereafter, 0.1 mL of water was added and stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer, then 0.1 mL of 25 mM CaCl 2 aqueous solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. The solution was dispensed as a 4-fold dilution of ATIII into a separate container.
  • 0.2 mL of water was added to the remaining 0.2 mL, and after vigorously stirring for 1 minute using a test tube mixer, 0.2 mL was dispensed into another container as an 8-fold dilution of ATIII. This operation was repeated to prepare a 16-fold dilution and a 32-fold dilution of ATIII, which were dispensed into separate containers. Each solution was heat-treated at 70 ° C. for 10 minutes using a heat block and immediately cooled on ice. After returning each solution to room temperature, 0.1 mL was dispensed into a round bottom test tube.
  • Example 8 Test using parallel line quantification method (1) 0.11 mL of 1 EU / mL Et standard solution was added to 0.475 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Then, 0.475 mL of water was added, and after vigorously stirring for 1 minute using a test tube mixer, 0.05 mL of 500 mM MgSO 4 aqueous solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. And then heat-treated at 70 ° C. for 10 minutes and immediately cooled on ice. After returning the solution to room temperature, 0.5 mL was dispensed as a 2-fold dilution of ATIII into a separate container.
  • the measured value for the dilution ratio of the sample containing ATIII and the measured value for the endotoxin concentration of the control sample were log-logged, respectively, and parallel lines Parallelism was tested by a quantitative method.
  • PL603 dedicated software for parallel line quantification
  • regression and parallelism were established for both, and they were suitable for the test.
  • the Et addition recovery rate calculated by dividing the Et concentration (0.275 EU / mL) calculated by the parallel line quantification method by the Et concentration of the control sample (0.232 EU / mL) was 118.5%.
  • Example 9 Test using parallel line quantification method (2) 0.1 mL of 1 EU / mL Et standard solution was added to 0.8 mL of 50 Unit / mL ATIII preparation, and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Then, 0.02 mL of water was added and stirred vigorously for 1 minute using a test tube mixer, then 0.08 mL of 500 mM MgSO 4 aqueous solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. And then heat-treated at 70 ° C. for 10 minutes and immediately cooled on ice. After returning the temperature of the solution to room temperature, 0.5 mL was dispensed as a 1.25-fold diluted solution of ATIII into another container.
  • 0.5 mL of 40 mM MgSO 4 aqueous solution was added to the remaining 0.5 mL, and after vigorously stirring for 1 minute using a test tube mixer, 0.5 mL was dispensed as a 2.5-fold dilution of ATIII into a separate container. This operation was repeated to prepare ATIII 5-fold diluted solution, 10-fold diluted solution, and 20-fold diluted solution, which were dispensed into separate containers.
  • the endotoxin test water was used instead of the ATIII preparation, and a similar dilution series prepared without carrying out the pretreatment method of the present invention was prepared as a control sample.
  • the measured value for the dilution ratio of the sample containing ATIII and the measured value for the endotoxin concentration of the control sample were log-logged, respectively, and parallel lines Parallelism was tested by a quantitative method.
  • PL603 dedicated software for parallel line quantification
  • regression and parallelism were established for both, and they were suitable for the test.
  • the Et addition recovery rate calculated by dividing the Et concentration (0.122 EU / mL) calculated by the parallel line quantification method by the Et concentration (0.125 EU / mL) of the control sample was 97.6%.
  • Example 10 Test using parallel line quantification method (3) To 472.5 ⁇ L of 50 Unit / mL ATIII preparation, 2.5 ⁇ L of 20 EU / mL Et standard solution was added and vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Next, 6.25 ⁇ L of water was added, and the mixture was vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Then, 18.75 ⁇ L of a 2M aqueous MgSO 4 solution was added, and further vigorously stirred for 1 minute using a test tube mixer. Thereafter, the solution was heat-treated at 70 ° C. for 20 minutes using a heat block and immediately cooled on ice.
  • 250 ⁇ L was dispensed as a 1.06-fold diluted solution of ATIII into another container.
  • 250 ⁇ L was dispensed as a 2.12-fold diluted solution of ATIII into another container. This operation was repeated to prepare ATIII 4.23-fold diluted solution, 8.47-fold diluted solution, and 16.93-fold diluted solution, which were dispensed into separate containers.
  • the endotoxin test water was used instead of the ATIII preparation, and a similar dilution series prepared without carrying out the pretreatment method of the present invention was prepared as a control sample.
  • Dispense 50 ⁇ L of each solution to a microplate add 50 ⁇ L of Endospecy ES-50M, vigorously stir for 1 minute using a well reader, and then absorb absorbance at a measurement wavelength of 405 nm and a control wavelength of 492 nm while warming at 37 ° C. for 30 minutes. Was measured over time.
  • the results are shown in Table 13 and FIG.
  • the measured value for the dilution ratio of the sample containing ATIII and the measured value for the endotoxin concentration of the control sample are log-logged, respectively.
  • Parallelism was tested by a quantitative method. As a result of statistical analysis using dedicated software for parallel line quantification (PL603; Seikagaku Corporation), regression and parallelism were established for both, and they were suitable for the test.
  • the Et addition recovery rate calculated by dividing the Et concentration (0.111 EU / mL) calculated by the parallel line quantification method by the Et concentration (0.106 EU / mL) of the control sample was 104.7%.
  • the reaction interference effect when the ATIII is subjected to the limulus test can be reduced, and therefore the ATIII limulus test can be performed with high accuracy. Further, according to the present invention, it is expected that the ATIII limulus test can be carried out simply, quickly and inexpensively.

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Abstract

アンチトロンビンIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減し、以て、アンチトロンビンIIIのリムルス試験を高精度に実施する手段を提供する。リムルス試験に付されるアンチトロンビンIIIを二価金属塩と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供することにより、アンチトロンビンIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減する。

Description

リムルス試験に付されるアンチトロンビンIII用の前処理剤及び前処理方法
　本発明は、リムルス試薬を用いたエンドトキシン等の標的物質の検出試験に付されるアンチトロンビンIII用の前処理剤及び該処理剤を含むリムルス試薬キット、並びにこれらを用いたアンチトロンビンIIIの前処理方法及びリムルス試薬を用いたエンドトキシン等の標的物質の測定方法に関する。
　本発明においては、以下の略号を使用する場合がある。
　　Ｅｔ：エンドトキシン
　　ＢＧ：（１→３）－β－Ｄ－グルカン
　　ＡＴIII：アンチトロンビンIII
　エンドトキシンは、グラム陰性細菌の細胞壁外膜に存在するリポ多糖であり、強い発熱性物質として知られている。また、エンドトキシンは、発熱以外にも、ショック症状等の様々な病態を引き起こすことが知られている。そのため、注射剤等の医薬品、水、医療器具等におけるエンドトキシンの検出や定量は、医薬品等の安全性確保の観点から重要である。
　カブトガニにグラム陰性細菌が感染すると、血液凝固を引き起こすことが知られており、この現象はエンドトキシンの検出に利用されてきた。すなわち、カブトガニ血球抽出液（カブトガニ・アメボサイト・ライセート；以下「ＬＡＬ」ともいう）を使用して、エンドトキシンを測定することができる。これは、リムルス試験と呼ばれ、エンドトキシンがＬＡＬに接触することによって起きるＬＡＬ中に存在する種々のタンパク質（いずれもセリンプロテアーゼ）のカスケード反応を利用するものである。
　ＡＴIIIは、血液中の抗凝固因子であり、播種性血管内凝固症候群（ＤＩＣ）等の治療に用いられる。ここで、ＡＴIIIはセリンプロテアーゼインヒビターであるため、ＬＡＬ中に存在するカスケード反応に関与するタンパク質の活性を阻害する（非特許文献１）。このように、被検試料によっては、リムルス試薬に対する阻害作用を示す場合がある。このような阻害作用は、被検試料の希釈により回避できる場合がある（非特許文献２）。しかし、ＡＴIIIはリムルス試薬に対する阻害作用が極めて強く、ＡＴIII製剤（注射剤）をリムルス試験に付すには６４倍以上に希釈する必要があった（非特許文献２）。よって、リムルス試薬の検出感度（検量線の最小エンドトキシン濃度）を考慮すると、ＡＴIII製剤にリムルス試験を適用することは困難であると考えられてきた（非特許文献２）。現に、ＡＴIIIを含む試料については、現在でもウサギ発熱試験を用いてエンドトキシンの検出が行われている（非特許文献１）。
　非特許文献１には、ＡＴIII製剤を１００倍希釈し、７０℃で２０分間加熱して前処理した後、ＬＡＬと反応させて、光散乱法で測定することを特徴とする、ＡＴIII製剤のＥｔを測定する方法が開示されている。この方法は、Ｅｔの検出を高感度化するために、分光光度計を用いた比濁法に代わって光散乱測定装置を用いた光散乱法を採用したことが技術的特徴である。しかし、この方法は、前記と同様に高倍率の希釈が必要不可欠であることに加え、少なくとも以下の問題があった。
（１）リムルス試験の測定装置として広く普及しているのは分光光度計であり、光散乱法を実施するには光散乱測定装置を別途新たに導入し、使用する必要があること。
（２）日本薬局方では、Ｅｔの光学的定量法として比濁法および比色法のみが規定されており、光散乱法は規定されていないこと。
　また、特許文献１には、生体由来試料をアルカリ土類金属硫酸塩又はアルカリ土類金属ハロゲン化物と接触させ、加温して前処理した後、リムルス試薬を用いた測定に付すことを特徴とする、生体由来試料のＥｔ及びＢＧの測定方法が記載されている。
　また、特許文献２には、生体由来試料をヘキサジメトリン化合物、アルカリ金属水酸化物、非イオン性界面活性剤及びアルカリ土類金属ハロゲン化物と混合し、加温して前処理した後、リムルス試薬を用いた測定に付すことを特徴とする、血液由来試料のＥｔ及びＢＧの測定方法が記載されている。
　また、特許文献３には、生体由来試料をリポ多糖及び／又はリピッドＡ結合性ペプチドを固定化した担体と接触させてＥｔを吸着回収した後、リムルス試薬等を用いた測定に付すことを特徴とする、ＡＴIIIを含有する可能性のある試料のＥｔ測定方法が記載されている。
　しかし、いずれの文献にも、ＡＴIIIのリムルス試験を実施するために、ＡＴIIIを二価金属塩と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供して前処理することについては、記載も示唆もされていない。
国際公開２００６／０８０４４８号パンフレット 特開平６－７０７９６ 特開２０１０－２４３３４２
エンドトキシン・自然免疫研究１５―飛躍する自然免疫研究―、医学図書出版、ｐ．２７～３０、２０１２ エンドトキシン研究１２―自然免疫学の新たな展開―、医学図書出版、ｐ．９３～９７、２００９
　本発明は、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減し、以て、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施する手段を提供することを課題とする。ここにいう「反応干渉作用」とは、リムルス試験の測定対象物質（ＥｔやＢＧ等）以外の要因によって引き起こされ、かつ、リムルス試験の結果に影響を与えるあらゆる作用を意味する。したがって、「反応干渉作用」には、例えば、ＡＴIIIそのもの、ＡＴIIIと共存している添加物又は不純物等の成分、前処理時に共存させる前処理剤以外の試薬等の成分、および／またはリムルス試薬中の成分等に起因する、これらの成分自体が不溶化する作用、リムルス試薬の反応を促進又は阻害する作用、Ｅｔのミセル構造やＢＧの高次構造を変化させてそれらの活性（リムルス試薬中のＣ因子やＧ因子に対する反応性）を変化させる作用等、リムルス試験の結果に影響を与えるあらゆる作用が含まれる。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、ＡＴIIIを二価金属塩と共存させた状態で、熱処理や酸処理等のタンパク質を失活させる処理に供することにより、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減でき、よって、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下の態様を包含する。
[１]
　リムルス試験に付されるアンチトロンビンIII用の前処理剤であって、
　二価金属塩を含有し、
　アンチトロンビンIIIをリムルス試験に付す前に、該アンチトロンビンIIIを前記前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供するために用いられる、前処理剤。
[２]
　前記二価金属塩が、二価金属塩化物、二価金属酢酸塩、及び二価金属硫酸塩からなる群より選択される１又はそれ以上の金属塩である、前記前処理剤。
[３]
　前記二価金属塩を構成する二価金属が、マグネシウム、カルシウム、マンガン、及び亜鉛からなる群より選択される１又はそれ以上の金属である、前記前処理剤。
[４]
　アンチトロンビンIIIを前記前処理剤と共存させた時の、前記二価金属塩に由来する二価金属イオンの濃度が、０．５ｍＭ以上である、前記前処理剤。
[５]
　前記リムルス試験の測定対象物質が、エンドトキシンである、前記前処理剤。
[６]
　前記前処理剤を含む、アンチトロンビンIII用のリムルス試薬キット。
[７]
　アンチトロンビンIIIを前記前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供することを含む、リムルス試験に付されるアンチトロンビンIIIの前処理方法。
[８]
　前記タンパク質を失活させる処理が、熱処理または酸処理である、前記前処理方法。
[９]
　前記熱処理が、５０℃超の温度で行われる、前記前処理方法。
[１０]
　前記酸処理に用いられる酸が、塩酸である、前記前処理方法。
[１１]
　前記前処理方法によりアンチトロンビンIIIを前処理すること、および前処理されたアンチトロンビンIIIをリムルス試験に付すことを含む、アンチトロンビンIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定する方法。
[１２]
　前記方法によりアンチトロンビンIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定すること
を含む、アンチトロンビンIIIを製造する方法。
図１は、平行線定量法を用いた試験の結果を示す図である。 図２は、平行線定量法を用いた試験の結果を示す図である。 図３は、平行線定量法を用いた試験の結果を示す図である。
（１）本発明の前処理剤
　本発明の前処理剤は、二価金属塩を含有する、リムルス試験に付されるＡＴIII用の前処理剤である。本発明の前処理剤は、ＡＴIIIをリムルス試験に付す前に、該ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供するために用いられる。
　ここにいう「リムルス試験」とは、リムルス試薬を用いて標的物質を検出（測定）する試験をいう。同標的物質を、「リムルス試験の測定対象物質」ともいう。リムルス試験の測定対象物質は、リムルス試験により検出可能な物質であれば特に制限されないが、Ｅｔ又はＢＧであることが好ましく、Ｅｔであることがより好ましい。
　ここにいう「ＡＴIII」とは、ＡＴIIIを含有する試料であれば特に制限されず、ＡＴIIIからなるものであってもよく、ＡＴIII以外の成分を含むものであってもよい。ＡＴIIIの形状も特に制限されず、例えば、液状であってもよく、凍結乾燥物、粉末、顆粒、錠剤等の固形状であってもよい。
　ＡＴIIIとしては、例えば、ＡＴIIIの注射用製剤が挙げられる。このような注射用製剤として、具体的には、例えば、ノイアート（登録商標;株式会社ベネシス製）、アンスロンビン（財団法人　化学及血清療法研究所製）、ノンスロン（登録商標；日本製薬株式会社製）が挙げられる。このようなＡＴIIIの注射用製剤を本発明の前処理およびリムルス試験に付す際には、原液そのままを被検体として用いてもよいし、濃縮された溶液を被検体として用いてもよいし、水や緩衝液等の水性溶媒で任意の倍率に希釈した溶液を被検体として用いてもよい。ここにいう「原液」とは、ＡＴIIIを注射用製剤として通常用いる際の濃度である５０Ｕｎｉｔ／ｍＬの濃度で含む溶液を意味する。「原液」は、例えば、各ＡＴIIIの注射用製剤の添付文書に記載された方法に従ってＡＴIIIを水性溶媒に溶解することによって得られる。ここにいう「濃縮された溶液」とは、ＡＴIIIを５０Ｕｎｉｔ／ｍＬ超の濃度で含む溶液を意味する。「濃縮された溶液」としては、例えば、各ＡＴIIIの注射用製剤の製造工程において得られる中間精製物が挙げられる。
　また、原液を水性溶媒で希釈する場合の希釈倍率は、リムルス試験の測定対象物質を検出可能である限り特に制限されないが、例えば、１倍超６４倍未満であることが好ましく、１倍超１６倍以下であることがより好ましく、１倍超１０倍以下であることがさらに好ましく、１倍超４倍以下であることがよりさらに好ましく、１倍超２．５倍以下であることが特に好ましく、１．１倍以上２．５倍以下であることが極めて好ましく、１．２倍以上２．５倍以下であることが特に極めて好ましい。なお、ここにいう「希釈倍率」とは、本発明の前処理剤の共存下でタンパク質を失活させる処理を行っている反応液の、前記「原液」に対する希釈の倍率を意味する。よって、希釈倍率「１倍」とは、本発明の前処理剤の共存下でタンパク質を失活させる処理を行っている反応液におけるＡＴIII濃度が、前記「原液」のＡＴIII濃度と同じであること（原液のまま。原液が希釈されておらず、ＡＴIIIが５０Ｕｎｉｔ／ｍＬの濃度で存在していること。）を意味する。
　また、ＡＴIIIは、組換えタンパク質であってもよい。組換えＡＴIIIは、宿主細胞に発現させることで取得できる。宿主細胞による発現は常法に従って行うことができる。例えば、山田ら（国際公開第2005/035563号）の方法に従って行うことができる。ＡＴIIIのアミノ酸配列やそれをコードする遺伝子の塩基配列は、公知のデータベースから取得できる。公知のデータベースとしては、例えば、ＮＣＢＩ（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）が挙げられる。発現させる組換えタンパク質は、天然のＡＴIIIと同一のアミノ酸配列を有するタンパク質であってもよい。また、発現させる組換えタンパク質は、ＡＴIIIとしての機能を維持している限り、天然のＡＴIIIのバリアントであってもよい。バリアントには、公知のＡＴIIIのホモログや人為的改変体も含まれる。
　ここにいう「二価金属塩」は、本発明の属する技術分野において二価金属塩として認識される金属塩である限り特に制限されない。二価金属塩としては、例えば、二価金属フッ化物、二価金属塩化物、二価金属臭化物、二価金属ヨウ化物、二価金属水酸化物、二価金属シアン化物、二価金属硝酸塩、二価金属亜硝酸塩、二価金属次亜塩素酸塩、二価金属亜塩素酸塩、二価金属塩素酸塩、二価金属過塩素酸塩、二価金属過マンガン酸塩、二価金属酢酸塩、二価金属炭酸水素塩、二価金属リン酸二水素塩、二価金属硫酸水素塩、二価金属硫化水素塩、二価金属チオシアン酸塩、二価金属酸化物、二価金属硫化物、二価金属過酸化物、二価金属硫酸塩、二価金属亜硫酸塩、二価金属チオ硫酸塩、二価金属炭酸塩、二価金属クロム酸塩、二価金属二クロム酸塩、二価金属リン酸一水素塩、二価金属リン酸塩が挙げられる。二価金属塩としては、１種のみを用いてもよく、２種またはそれ以上を組み合わせて用いてもよい。二価金属塩は、例えば、二価金属塩化物、二価金属酢酸塩、及び二価金属硫酸塩からなる群より選択される１又はそれ以上の金属塩であることが好ましい。
　二価金属塩は、ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた時に、二価の金属イオンを与えるものであってよい。「ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた時」とは、具体的には、後述するタンパク質を失活させる処理が行われている時をいう。二価金属塩は、例えば、水性溶媒に溶解し二価の金属イオンを与えるものであってよい。水性溶媒としては、水や緩衝液が挙げられる。
　ここにいう「二価金属」は、本発明の属する技術分野において二価金属として認識される金属である限り特に制限されない。「二価金属」とは、イオン化した際に二価の金属イオンを与える金属を意味してよい。二価金属としては、例えば、ベリリウム、マグネシウム、カルシウム、ストロンチウム、バリウム、ラジウム、カドミウム、ニッケル、亜鉛、銅、水銀、鉄、コバルト、スズ、鉛、マンガンが挙げられる。二価金属としては、１種のみを用いてもよく、２種またはそれ以上を組み合わせて用いてもよい。二価金属は、例えば、マグネシウム、カルシウム、マンガン、及び亜鉛からなる群より選択される１又はそれ以上の金属であることが好ましい。
　二価金属塩として、具体的には、例えば、硫酸マグネシウム（ＭｇＳＯ4）、例えば、塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ2）、酢酸マグネシウム（Ｍｇ（ＣＨ3ＣＯＯ）2）、塩化カルシウム（ＣａＣｌ2）、酢酸カルシウム（Ｃａ（ＣＨ3ＣＯＯ）2）、硫酸マンガン（ＭｎＳＯ4）、硫酸亜鉛（ＺｎＳＯ4）が挙げられる。本発明の前処理剤は、例えば、二価金属塩として硫酸マグネシウム（ＭｇＳＯ4）のみを含有していてもよい。また、本発明の前処理剤は、例えば、硫酸マグネシウム（ＭｇＳＯ4）に加えて、さらに１又はそれ以上の他の二価金属塩を含有していてもよい。
　また、本発明の前処理剤は、さらに他の成分を含有していてもよい。「他の成分」は、試薬・診断薬学的に許容される成分であれば特に制限されず、例えば、試薬や診断薬に配合して用いられる成分を用いることができる。ここにいう「他の成分」としては、例えば、アルカリ金属塩化物、アルカリ金属酢酸塩、アルカリ金属硫酸塩、界面活性剤、及び各種添加剤が挙げられる。各種添加剤としては、例えば、安定化剤、乳化剤、浸透圧調整剤、緩衝剤、等張化剤、保存剤、ｐＨ調整剤、着色剤、賦形剤、縮合剤、滑沢剤、崩壊剤が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
　また、本発明の前処理剤の剤形は特に制限されない。本発明の前処理剤は、例えば、液剤として提供されてもよく、粉末剤、顆粒剤、又は錠剤等の用時溶解用の固形剤として提供されてもよい。また、本発明の前処理剤は、例えば、本発明の前処理剤をウェル内に保持するマイクロプレートとして提供されてもよい。そのようなマイクロプレートは、例えば、液状に調製した本発明の前処理剤をウェル内に分注し、乾燥させることにより得られる。また、本発明の前処理剤が液剤として提供される場合は、本発明の前処理剤は、凍結状態で提供されてもよいし、液体状態（融解状態）で提供されてもよい。
　本発明の前処理剤において、二価金属塩は、塩の状態で存在していてもよく、イオン化した状態で存在していてもよく、その混合物として存在していてもよい。これらいずれの場合も、「本発明の前処理剤が二価金属塩を含有する」ことに該当する。
　本発明の前処理剤は、二価金属塩を含有させること以外は、試薬や診断薬を製造するのに通常用いられるのと同様の手法によって製造することができる。
　本発明の前処理剤における二価金属塩の濃度は特に制限されず、二価金属塩の種類や本発明の前処理剤の使用量等の諸条件に応じて適宜設定することができる。本発明の前処理剤における二価金属塩の濃度は、例えば、０．００１質量％以上、０．０１質量％以上、０．１質量％以上、１質量％以上、５質量％以上、１０質量％以上、３０質量％以上、または５０質量％以上であってよい。本発明の前処理剤における二価金属塩の濃度は、例えば、１００質量％以下、５０質量％以下、３０質量％以下、１０質量％以下、５質量％以下、または１質量％以下であってよい。
　本発明の前処理剤の使用量は特に制限されず、二価金属塩の種類や濃度等の諸条件に応じて適宜設定することができる。本発明の前処理剤は、例えば、ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた時の二価金属塩に由来する二価金属イオンの濃度（以下、「処理時の二価金属イオン濃度」ともいう）が以下に例示するような濃度範囲となるように用いることができる。「ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた時の濃度」とは、具体的には、後述するタンパク質を失活させる処理が行われている反応系での濃度をいう。処理時の二価金属イオン濃度は、本発明の前処理の効果が得られる限り特に制限されないが、例えば、０．５ｍＭ以上であるのが好ましい。処理時の二価金属イオン濃度は、例えば、０．５ｍＭ～１００ｍＭであることが好ましく、０．５ｍＭ～５０ｍＭであることがより好ましく、０．５ｍＭ～２５ｍＭであることがさらに好ましく、５ｍＭ～２５ｍＭであることがよりさらに好ましく、５ｍＭ～１２．５ｍＭであることが特に好ましい。なお、本発明の前処理剤に２種類以上の二価金属塩が含有されている場合には、ここにいう「処理時の二価金属イオン濃度」は、それら二価金属塩に由来する二価金属イオンの濃度の総和を意味する。
　このような本発明の前処理剤を用いてＡＴIIIの前処理を行うことにより、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減することができ、よって、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できる。
（２）本発明のキット
　本発明のキットは、本発明の前処理剤を構成物品として含む、リムルス試薬キットである。本発明のキットは、他の構成物品を含んでいてもよい。ここにいう「他の構成物品」としては、例えば、リムルス試薬、リムルス反応の検出用基質、緩衝液、蒸留水、標準物質（ＥｔやＢＧ等）、及びマイクロプレートが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
　本発明において用いるリムルス試薬は、リムルス試験の測定対象物質に対応したカスケード反応に関与するタンパク質を含有している限り、特に限定されない。リムルス試薬としては、例えば、カブトガニ血球抽出液（ＬＡＬ（ライセート試薬））が挙げられる。ＬＡＬは、カブトガニの血液を原料として常法により取得することができる。ＬＡＬは、適宜分画および／または精製等してから利用してもよい。カブトガニは、いずれの種類のカブトガニであってもよい。カブトガニとしては、日本産カブトガニであるタキプレウス・トリデンタツス（Tachypleus tridentatus）、アメリカ産カブトガニであるリムルス・ポリフェムス（Limulus polyphemus）、ならびに東南アジア産カブトガニであるカルシノスコルピウス・ロツンディカウダ（Carcinoscorpius rotundicauda）およびタキプレウス・ギガス（Tachypleus gigas）が挙げられる。例えば、リムルス・ポリフェムス由来ライセートを用いたリムルス試薬としては、エンドスペシー（登録商標）ＥＳ－５０Ｍ（生化学工業株式会社）、パイロクロム（アソシエーツオブケープコッドインク）、パイロテル（登録商標）－Ｔ（アソシエーツオブケープコッドインク）、パイロテル（登録商標）マルチテスト（アソシエーツオブケープコッドインク）、カイネティック－ＱＣＬ（ロンザウォーカーズヴィルインク）、エンドクロム－Ｋ（チャールズリバーラボラトリーズインク）が挙げられる。
　また、リムルス試薬としては、人為的に再構成されたものも例示できる。再構成されたリムルス試薬は、リムルス試験の測定対象物質に対応したカスケード反応に関与するタンパク質を含むように構成されていれば特に制限されない。カスケード反応に関与するタンパク質を総称して「因子」ともいう。ここにいう「カスケード反応」とは、リムルス試験の測定対象物質の存在により進行する一連の反応のことをいう。例えば、Ｅｔ等のＣ因子を活性化する物質が存在する場合、同物質によりＣ因子が活性化されて活性型Ｃ因子となり、活性型Ｃ因子によりＢ因子が活性化されて活性型Ｂ因子となり、活性型Ｂ因子によりプロクロッティングエンザイムが活性化されてクロッティングエンザイムとなる一連の反応が進行する。すなわち、Ｅｔ等のＣ因子を活性化する物質が測定対象物質である場合は、再構成されたリムルス試薬は、カスケード系を構成する因子として、例えば、Ｃ因子、Ｂ因子、およびプロクロッティングエンザイムを含んでいればよい。また、例えば、ＢＧ等のＧ因子を活性化する物質が存在する場合、同物質によりＧ因子が活性化されて活性型Ｇ因子となり、活性型Ｇ因子によりプロクロッティングエンザイムが活性化されてクロッティングエンザイムとなる一連の反応が進行する。すなわち、ＢＧ等のＧ因子を活性化する物質が測定対象物質である場合は、再構成されたリムルス試薬は、カスケード系を構成する因子として、例えば、Ｇ因子およびプロクロッティングエンザイムを含んでいればよい。カスケード反応の進行は、例えば、後述するリムルス反応の検出用基質を用いてクロッティングエンザイムの存在を検出することにより検出できる。
　また、後述するリムルス反応の検出用基質として、カスケード反応の途中段階を検出できるものを利用する場合は、再構成されたリムルス試薬は、当該途中段階までに関与する因子を含んでいればよい。具体的には、例えば、Ｅｔ等のＣ因子を活性化する物質が測定対象物質であり、且つ、活性化Ｃ因子の存在を検出できるリムルス反応の検出用基質を利用する場合は、再構成されたリムルス試薬は、Ｃ因子を含んでいればよい。
　再構成されたリムルス試薬に含まれる各因子は、天然に得られるものであってもよく、組換えタンパク質であってもよい。
　天然の各因子は、上記各種カブトガニの血球抽出液（ＬＡＬ）から取得することができる。これらの因子は、所望の程度に精製して用いることができる。精製は、例えば、公知の手法（Nakamura T. et al., J Biochem. 1986 Mar; 99(3): 847-57.）により行うことができる。
　また、各因子は、宿主細胞に発現させることで取得できる。宿主細胞による発現は常法に従って行うことができる。例えば、水村ら（国際公開第2012/118226号）の方法に従って行うことができる。各因子のアミノ酸配列やそれをコードする遺伝子の塩基配列は、公知のデータベースから取得できる。公知のデータベースとしては、例えば、ＮＣＢＩ（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）が挙げられる。発現された各組換えタンパク質は、必要に応じ、所望の程度に精製して用いることができる。
　各因子を適宜組み合わせることで再構成されたリムルス試薬が得られる。例えば、再構成されたリムルス試薬に含まれる因子は、全て天然の因子であってもよく、全て組換えタンパク質であってもよく、それらの任意の組み合わせであってもよい。また、再構成されたリムルス試薬は、例えば、ＬＡＬ自体に、あるいはＬＡＬを適宜分画および／または精製等したものに、各因子を適宜組み合わせることで得られたものであってもよい。
　リムルス反応の検出用基質（以下、単に「検出用基質」ともいう）とは、カスケード反応の進行を検出するための基質をいう。
　検出用基質としては、コアギュローゲンが挙げられる。コアギュローゲンは、カスケード反応の最終産物であるクロッティングエンザイムの検出基質である。コアギュローゲンとクロッティングエンザイムが接触することで、コアギュリンとして凝固する。凝固反応の進行は、反応液の濁度を測定することやゲルの形成を観測することで測定することができる。コアギュローゲンはカブトガニ血球抽出液（ＬＡＬ）から回収することができる。また、コアギュローゲンをコードする遺伝子の塩基配列は明らかになっており（宮田ら、蛋白質　核酸　酵素　別冊　No.29; P30-43; 1986）、常法に従い遺伝子工学的にコアギュローゲンを生産することもできる。
　また、検出用基質としては、合成基質を用いてもよい。合成基質は、カスケード反応の進行を検出するのに好適な性質を有する限り特に制限されない。「カスケード反応の進行を検出するのに好適な性質」とは、例えば、クロッティングエンザイムの存在を検出するための性質であってもよく、カスケード反応の途中段階を検出するための性質であってもよい。「クロッティングエンザイムの存在を検出するための性質」としては、クロッティングエンザイムの酵素反応により発色する性質や、クロッティングエンザイムの酵素反応により蛍光を発する性質が挙げられる。「カスケード反応の途中段階を検出するための性質」としては、活性化Ｃ因子等の酵素反応により発色する性質や、活性化Ｃ因子等の酵素反応により蛍光を発する性質が挙げられる。合成基質としては、例えば、一般式Ｘ－Ｙ－Ｚ（式中、Ｘは保護基、Ｙはペプチド、ＺはＹとアミド結合した色素である）で表される基質が挙げられる。例えば、Ｃ因子、Ｂ因子、およびプロクロッティングエンザイムを含有する反応系にＥｔ等のＣ因子を活性化する物質が存在する場合には、カスケード反応の結果として生ずるクロッティングエンザイムの酵素反応によりＹ－Ｚ間のアミド結合が切断され、色素Ｚが遊離して発色する、あるいは蛍光を発する。Ｇ因子およびプロクロッティングエンザイムを含有する反応系を利用する場合や、カスケード反応の途中段階を検出する場合も、それぞれ、クロッティングエンザイムや、カスケード反応の途中段階で生ずるタンパク質により、色素Ｚが遊離すればよい。保護基Ｘとしては、特に制限されず、ペプチドの公知の保護基を好適に用いることができる。そのような保護基としては、ｔ－ブトキシカルボニル基、ベンゾイル基が挙げられる。色素Ｚは、特に制限されず、例えば、可視光下で検出される色素であってもよく、蛍光色素であってもよい。色素Ｚとしては、ｐＮＡ（パラニトロアニリン）、ＭＣＡ（７－メトキシクマリン－４－酢酸）、ＤＮＰ（２，４－ジニトロアニリン）、Ｄａｎｓｙｌ（ダンシル）系色素が挙げられる。ペプチドＹとしては、Ｌｅｕ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ（ＬＧＲ）、Ｉｌｅ－Ｇｌｕ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ（ＩＥＧＲ）（配列番号１）、Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ａｒｇ（ＶＰＲ）、Ａｓｐ－Ｐｒｏ－Ａｒｇ（ＤＰＲ）が挙げられる。これらの合成基質は、いずれも、クロッティングエンザイムの存在を検出するために用いてもよく、カスケード反応の途中段階を検出するために用いてもよい。また、これらの合成基質は、検出対象に応じて好適なものを選択して用いてもよい。例えば、基質特異性の点からは、ペプチドＹとしてＬＧＲを含む基質はクロッティングエンザイムの検出に好適に用いることができ、ペプチドＹとしてＶＰＲまたはＤＰＲを含む基質は活性化Ｃ因子の検出に好適に用いることができる。遊離した色素Ｚは、色素の性質に応じた手法により測定すればよい。
　なお、リムルス試薬としてカブトガニ血球抽出液（ＬＡＬ）を用いる場合、ＬＡＬにもともと含有されるコアギュローゲンを検出用基質として利用することができる。また、適宜選択した検出用基質をＬＡＬと組み合わせて用いてもよい。
　リムルス試薬として再構成されたリムルス試薬を用いる場合、適宜選択した検出用基質を再構成されたリムルス試薬と組み合わせて用いることができる。
　各因子や検出用基質は、混合物として本発明のキットに含まれていてもよく、それぞれ別個に、または、任意の組み合わせで別個に、本発明のキットに含まれていてもよい。
　このような本発明のキットを用いてＡＴIIIの前処理を行うことにより、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減することができ、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できる。
（３）本発明の前処理方法
　本発明の前処理方法は、ＡＴIIIを本発明の前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供することを含む、リムルス試験に付されるＡＴIIIの前処理方法である。
　ここにいう「タンパク質を失活させる処理」とは、ＡＴIIIを失活させる処理であればよく、具体的には、リムルス試験を阻害しない程度にＡＴIIIを失活させる処理であればよい。タンパク質を失活させる処理としては、例えば、熱処理、酸処理、アルカリ処理が挙げられるが、これらに限定されない。タンパク質を失活させる処理としては、いずれかの処理を単独で行ってもよく、２またはそれ以上の処理を組み合わせて行ってもよい。
　タンパク質を失活させる処理は、例えば、水や緩衝液等の水性溶媒中で行うことができる。すなわち、タンパク質を失活させる処理は、例えば、ＡＴIIIと本発明の前処理剤を水性溶媒中で共存させた状態で行うことができる。
　ここにいう「熱処理」とは、本発明の前処理剤と共存させたＡＴIIIを加熱する処理をいう。加熱の方法は特に限定されないが、ヒートブロック、ウォーターバス、エアーバス、マイクロウェーブオーブン等の機器を使用する方法が好ましい。また、熱処理の温度は、タンパク質が失活する限り特に制限されないが、例えば、通常５０℃超である。熱処理の温度は、例えば、５５℃～１００℃であることが好ましく、５５℃～９５℃であることがより好ましく、６０℃～９０℃であることがさらに好ましく、６５℃～８５℃であることがよりさらに好ましく、６５℃～７５℃であることが特に好ましい。また、熱処理の時間は、タンパク質が失活する限り特に制限されないが、例えば、１分間以上であるのが好ましい。熱処理の時間は、例えば、１分間～２時間であることが好ましく、１分間～１時間であることがより好ましく、５分間～３０分間であることがさらに好ましく、５分間～２０分間であることがよりさらに好ましく、５分間～１５分間であることが特に好ましい。
　また、ここにいう「酸処理」は、本発明の前処理剤と共存させたＡＴIIIと酸を接触させる処理をいう。酸処理に用いられる酸としては、例えば、塩酸、硫酸、硝酸が挙げられるが、これらに限定されない。これらの中では、塩酸が好ましい。酸の添加量は、酸の種類等の諸条件に応じて適宜設定することができる。酸の添加量は、例えば、酸処理時の反応系における酸濃度が０．００１Ｎ～１Ｎ、好ましくは０．０１Ｎ～０．５Ｎ、より好ましくは０．０１Ｎ～０．１Ｎとなるような量であってよい。酸処理の時間は、タンパク質が失活する限り特に制限されないが、例えば、酸処理に通常用いられる時間であってよい。酸処理の時間は、例えば、０．１秒～２時間であってもよい。
　また、ここにいう「アルカリ処理」は、本発明の前処理剤と共存させたＡＴIIIとアルカリを接触させる処理をいう。アルカリ処理に用いられるアルカリとしては、例えば、水酸化ナトリウムや水酸化カリウムが挙げられるが、これらに限定されない。これらの中では、水酸化ナトリウムが好ましい。アルカリの添加量は、アルカリの種類等の諸条件に応じて適宜設定することができる。アルカリの添加量は、例えば、アルカリ処理時の反応系におけるアルカリ濃度が０．００１Ｎ～１Ｎ、好ましくは０．０１Ｎ～０．５Ｎ、より好ましくは０．０１Ｎ～０．１Ｎとなるような量であってよい。アルカリ処理の時間は、タンパク質が失活する限り特に制限されないが、例えば、アルカリ処理に通常用いられる時間であってよい。アルカリ処理の時間は、例えば、０．１秒～２時間であってもよい。
　本発明の前処理方法は、タンパク質を失活させる処理以外の工程を含んでいてもよい。
　例えば、タンパク質を失活させる処理を行う前に、適宜、ＡＴIIIに処理を行ってもよい。例えば、ＡＴIIIの乾燥粉末を微粉化する等、ＡＴIIIを加工する処理を行うことができる。また、例えば、ＡＴIIIを希釈または濃縮等してもよい。これらの処理は、本発明の前処理剤と共存させる前に行ってもよく、本発明の前処理剤と共存させた後且つタンパク質を失活させる処理を行う前に行ってもよい。
　また、例えば、タンパク質を失活させる処理を行った後には、適宜、後処理を行ってもよい。後処理は、例えば、前処理されたＡＴIIIをリムルス試験に付す際に、リムルス試験が阻害されないようにする処理であってよい。例えば、タンパク質を失活させる処理として熱処理を行った場合は、処理物の温度を下げることができる。また、例えば、タンパク質を失活させる処理として酸処理を行った場合は、アルカリにより処理物を中和することができる。また、例えば、タンパク質を失活させる処理としてアルカリ処理を行った場合は、酸により処理物を中和することができる。また、例えば、処理物を希釈または濃縮等してもよい。
　このような本発明前処理方法を用いてＡＴIIIの前処理を行うことにより、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減することができ、よって、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できる。
（４）本発明の測定方法
　本発明の測定方法は、本発明の前処理方法によりＡＴIIIを前処理すること、および前処理されたＡＴIIIをリムルス試験に付すことを含む、ＡＴIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定する方法である。
　リムルス試験は、例えば、公知の手法により行うことができる。公知の手法としては、例えば、比色法、比濁法、ゲル化法が挙げられる。
　リムルス試験は、具体的には、ＡＴIIIとリムルス試薬を接触させることにより行うことができる。ＡＴIII中にリムルス試験の測定対象物質が存在する場合には、カスケード反応が進行する。よって、カスケード反応の進行を測定することにより、ＡＴIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定することができる。リムルス試験の際には、各因子は、ＡＴIIIとリムルス試薬を接触させる工程の当初から反応系に含まれていてもよく、逐次反応系に添加されてもよい。
　カスケード反応の進行は、検出用基質を用いて測定できる。すなわち、カスケード反応の進行は、検出用基質の種類に応じて、当該基質の反応（発色や凝固等）を測定することで測定できる。検出用基質は、任意のタイミングで反応系に添加してよい。例えば、検出用基質は、ＡＴIIIとリムルス試薬を接触させる工程の当初から反応系に含まれていてもよく、当該工程の進行中または完了後に反応系に添加されてもよい。また、検出用基質を予め含有しているリムルス試薬を用いる場合は、検出用基質を反応系に別途添加しなくてもよい。
　本発明の測定方法は、ＡＴIII中にリムルス試験の測定対象物質が存在する場合にカスケード反応が進行する限り、その他の任意の工程を含んでいてよい。例えば、本発明の測定方法は、上述の通り、反応系に検出用基質を添加する工程を含んでいてもよい。また、例えば、本発明の測定方法は、測定により得られたデータを他のデータに変換する工程を含んでいてもよい。測定により得られたデータを他のデータに変換する工程としては、例えば、測定により得られたデータに基づき、ＡＴIII中のリムルス試験の測定対象物質の量を算出する工程が挙げられる。
　本発明の測定方法において、反応は水あるいは緩衝液等の水性溶媒中で行われるのが好ましい。
　本発明の測定法によれば、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減することができ、よって、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できる。
　また、このようにして、リムルス試験の測定対象物質による汚染がないことが確認されたＡＴIIIが得られる。すなわち、本発明は、本発明の測定方法によりＡＴIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定することを含む、ＡＴIIIを製造する方法を提供する。このように製造されたＡＴIIIは、注射剤等の任意の形態で提供できる。
　以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の技術的範囲を何ら限定するものではない。なお、実施例に記載したすべての試験において、水、試薬、プラスチック製品、及びガラス製品等は、エンドトキシンが検出されないこと及びリムルス試薬の反応に対する反応干渉因子を含まないことが保証されたものを使用した。
＜Ｅｔ添加回収率の定義＞
　比色法または比濁法で実施した試験においては、以下の手順でＥｔ添加回収率を算出した。すなわち、ＡＴIIIに既知量のエンドトキシンを添加した被検体のリムルス試験と同時に、ＡＴIIIの代わりに等量の水を被検体としたリムルス試験を陽性対照として実施した。ＡＴIIIを含む被検体の吸光度変化率（ｍＡｂｓ／ｍｉｎ）の値を陽性対照の吸光度変化率の値で除した値を百分率換算し、Ｅｔ添加回収率とした。なお、ＡＴIIIまたは水にエンドトキシン汚染がある場合には、汚染に相当する値を測定値から差し引いた後にＥｔ添加回収率を算出すればよい。すなわち、Ｅｔ添加回収率とは、ＡＴIIIによる反応干渉作用がない場合に検出されるべきＥｔ量に対する、ＡＴIIIを含む被検体において実際に検出されたＥｔ量の比率（％）、を意味し得る。
＜参考例１＞希釈加熱法によるＡＴIIIのＥｔ添加回収試験
　原液、又は水で４倍、１６倍、６４倍、若しくは２５６倍に希釈した５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤（ノイアート（登録商標）；株式会社ベネシス；以下、同じ）０．４ｍＬに、０．５ＥＵ／ｍＬに調製したＥｔ（ＪＰＲＳＥ：日本薬局方エンドトキシン標準品；以下、同じ）の標準液０．０４ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．２ｍＬを別容器に分注し、ヒートブロックを用いて７０℃で１０分間加熱した。その後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注し、比色法用のＥｔ測定試薬（エンドスペシー（登録商標）ＥＳ－５０Ｍ；生化学工業株式会社；以下、同じ）０．０５ｍＬを加えた。次いで、恒温槽機能および撹拌機能を有するウェルリーダー（ウェルリーダーＭＰ－９６；生化学工業株式会社；以下、同じ）を用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１に示すように、希釈倍率が１６倍以下の場合には、Ｅｔ添加回収率が１０％未満となり、Ｅｔを精度よく検出することができなかった。一方、希釈倍率が６４倍以上の場合には、ほぼ１００％のＥｔ添加回収率が得られた。この結果は、希釈加熱法に関する公知の結果（非特許文献１）とも概ね一致するものであった。
＜実施例１＞硫酸マグネシウムまたは塩化カルシウムを共存させて熱処理した場合のＥｔ添加回収試験
　２５Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤（水で２倍に希釈したＡＴIII製剤）０．９ｍＬに０．５ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．１８ｍＬを別容器に分注し、１５．６ｍＭ、１２５ｍＭ、２５０ｍＭ、５００ｍＭ、若しくは１０００ｍＭのＭｇＳＯ4水溶液、又は、１５．６ｍＭ、５６ｍＭ、１２５ｍＭ、２５０ｍＭ、若しくは５００ｍＭのＣaＣｌ2水溶液を０．０２ｍＬ加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。各溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間加熱した後、ただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表２、３に示す。表中、「ＭｇＳＯ4濃度」および「ＣaＣｌ2濃度」は、熱処理時の反応液中での濃度を示す。また、本実施例におけるＡＴIII製剤の希釈倍率は、約２．５倍である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表２、３に示すように、ＡＴIIIおよびＥｔと硫酸マグネシウムまたは塩化カルシウムを共存させて熱処理することにより、希釈加熱法のように６４倍以上に希釈せずとも、精度よくＥｔを検出できた。特に、硫酸マグネシウムの濃度が１２．５ｍＭ以上の場合に、精度よくＥｔを検出できた。
＜実施例２＞二価金属塩の種類の検討
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．２ｍＬに０．５ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．２２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、水を１．８ｍＬ加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．１ｍＬを別容器に分注し、５０ｍＭまたは５ｍＭに調製した各種二価金属塩の水溶液を１／１０量（０．０１１ｍＬ）加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。各溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間加熱した後、ただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表４に示す。表中、二価金属塩濃度は、熱処理時の反応液中での濃度を示す。また、本実施例におけるＡＴIII製剤の希釈倍率は、約１２倍である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　表４に示すように、Ｍｇ（ＣＨ3ＣＯＯ）2、ＭｇＣｌ2、Ｃａ（ＣＨ3ＣＯＯ）2、ＭｎＳＯ4、又はＺｎＳＯ4をＡＴIIIと共存させて熱処理した場合にも、Ｅｔを検出できた。
＜実施例３＞熱処理の温度と時間の検討
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．９ｍＬに０．５ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、０．１８ｍＬを別容器に分注した。その後、２００ｍＭのＣａＣｌ2水溶液を０．０２ｍＬ加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。各溶液を、氷上に静置、又はヒートブロックを用いて３７℃、５０℃、６０℃、７０℃、８０℃若しくは９０℃で５分間、１０分間又は２０分間熱処理した後にただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表５に示す。熱処理時の反応液中でのＣａＣｌ2濃度は２０ｍＭである。また、本実施例におけるＡＴIII製剤の希釈倍率は、約１．２倍である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　表５に示すように、熱処理の温度が６０℃以上の場合に、Ｅｔの検出が可能であった。また、熱処理の時間が５分間以上の場合に、Ｅｔの検出が可能であった。また、各温度（６０℃、７０℃、８０℃、又は９０℃）で１０分間加熱した結果から、熱処理の温度はＥｔ添加回収率が最も高かった７０℃が好適であると考えられる。
＜参考例２＞熱処理後に二価金属塩を加える効果の検討
　水で４倍若しくは１６倍に希釈した５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤又は水０．９ｍＬに０．５ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．１８ｍＬを別容器に分注し、氷上に静置、又はヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、水、又は７ｍＭ、２８ｍＭ、若しくは１１２ｍＭのＣａＣｌ2水溶液を０．０２ｍＬ加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　表６に示すように、熱処理後に二価金属塩を加える方法ではＥｔ添加回収率が１０％未満となり、Ｅｔを精度よく検出することができなかった。よって、二価金属塩は熱処理の前にＡＴIIIおよびＥｔと共存させておく必要があることが明らかとなった。
＜実施例４＞酸処理の検討
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．２ｍＬに０．５ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．２２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水を１．８ｍＬ加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．１ｍＬを別容器に分注し、５０ｍＭもしくは５ｍＭに調製した各種二価金属塩の水溶液を１／１０量（０．０１１ｍＬ）加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、５Ｎ、２Ｎ、１Ｎ、０．５Ｎ、又は０．１Ｎの塩酸を０．０１１ｍＬ加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注し、エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表７に示す。表中、二価金属塩濃度および塩酸濃度は、酸処理時の反応液中での濃度（概算）を示す。また、本実施例におけるＡＴIII製剤の希釈倍率は、約１４倍である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　表７に示すように、二価金属を共存させた状態で酸処理することにより、熱処理した場合と同様に、Ｅｔを検出できた。特に、塩酸濃度が０．０１Ｎ～０．１Ｎの場合に、Ｅｔを効率的に検出できた。
＜実施例５＞パイロクロム（比色法用のＥｔ測定試薬）を用いた試験
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．１ｍＬに０．４ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、２５ｍＭのＣａＣｌ2水溶液０．１ｍＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、０．２ｍＬをＡＴIIIの４倍希釈液として別容器に分注した。残りの０．２ｍＬに水０．２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．２ｍＬをＡＴIIIの８倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの１６倍希釈液及び３２倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。各溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。比色法用のＥｔ測定試薬（パイロクロム；アソシエーツオブケープコッドインク）０．０５ｍＬを添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で６０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　表８に示すように、比色法用のＥｔ測定試薬としてエンドスペシーＥＳ－５０Ｍに代えてパイロクロムを用いた場合においても、ＡＴIII製剤の希釈倍率によらずＥｔ添加回収率はほぼ１００％であり、Ｅｔを精度よく検出できた。よって、本発明の前処理法を実施することにより、比色法用のＥｔ測定試薬としてパイロクロムを用いた場合においても、ＡＴIIIと共存するＥｔの高精度な測定が可能であることが明らかとなった。
＜実施例６＞パイロテル－Ｔ（比濁法用のＥｔ測定試薬）を用いた試験
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．１ｍＬに０．４ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、２５ｍＭのＣａＣｌ2水溶液０．１ｍＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、０．２ｍＬをＡＴIIIの４倍希釈液として別容器に分注した。残りの０．２ｍＬに水０．２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．２ｍＬをＡＴIIIの８倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの１６倍希釈液及び３２倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。各溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．１ｍＬをマイクロプレートに分注した。比濁法用のＥｔ測定試薬（パイロテル（登録商標）－Ｔ；アソシエーツオブケープコッドインク)０．１ｍＬを添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で６０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長６６０ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定し、Ｅｔ添加回収率を算出した。結果を表９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　表９に示すように、Ｅｔ測定試薬としてエンドスペシーＥＳ－５０Ｍに代えてパイロテル－Ｔを用いた場合においても、ＡＴIII製剤の希釈倍率によらずＥｔ添加回収率がほぼ１００％であり、Ｅｔを精度よく検出できた。よって、本発明の前処理法を実施することにより、リムルス試薬として比濁法用のＥｔ測定試薬を用いた場合においても、ＡＴIIIと共存するＥｔの高精度な測定が可能であることが明らかとなった。
＜実施例７＞パイロテルマルチテスト（ゲル化法用のＥｔ測定試薬）を用いた試験
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．１ｍＬに０．２４ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、２５ｍＭのＣａＣｌ2水溶液０．１ｍＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、０．２ｍＬをＡＴIIIの４倍希釈液として別容器に分注した。残りの０．２ｍＬに水０．２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．２ｍＬをＡＴIIIの８倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの１６倍希釈液及び３２倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。各溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。各溶液を室温まで戻した後、０．１ｍＬを丸底試験管に分注した。ゲル化法用のＥｔ測定試薬(パイロテル（登録商標）マルチテスト；アソシエーツオブケープコッドインク)０．１ｍＬを添加し、試験管ミキサーを用いて１分激しく撹拌した後、ヒートブロックを用いて３７℃で１時間加温した。その後、試験管をゆっくり転倒させ、内容物が流出しない堅固なゲルを形成しているか確認した。結果を表１０に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　表１０に示すように、パイロテルマルチテストの検出限界である０．０３ＥＵ／ｍＬ以上のＥｔを含むＡＴIII溶液で内容物のゲル化が確認された。よって、本発明の前処理法を実施することにより、リムルス試薬としてゲル化法用のＥｔ測定試薬を用いた場合においても、ＡＴIIIと共存するＥｔの高精度な検出が可能であることが明らかとなった。
＜実施例８＞平行線定量法を用いた試験（１）
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．４７５ｍＬに１ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水０．４７５ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、５００ｍＭのＭｇＳＯ4水溶液０．０５ｍＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。溶液を室温まで戻した後、０．５ｍＬをＡＴIIIの２倍希釈液として別容器に分注した。残りの０．５ｍＬに水０．５ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．５ｍＬをＡＴIIIの４倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの８倍希釈液、１６倍希釈液及び３２倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。また、ＡＴIII製剤の代わりにエンドトキシン試験用水を用い、本発明の前処理法を実施せずに調製した同様の希釈系列を対照試料として用意した。各溶液０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注した。エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定した。結果を表１１および図１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　図１に示すように、ＡＴIIIを含む試料の希釈倍率に対する測定値および対照試料（エンドトキシン標準液のエンドトキシン試験用水による２倍希釈系列液）のエンドトキシン濃度に対する測定値をそれぞれ両対数プロットし、平行線定量法により平行性検定を行った。平行線定量法の専用ソフトウエア（ＰＬ６０３；生化学工業株式会社）により統計学的に分析した結果、両者は回帰および平行性が成立し、試験に適合した。平行線定量法により算出されたＥｔ濃度（０．２７５ＥＵ／ｍＬ）を対照試料のＥｔ濃度（０．２３２ＥＵ／ｍＬ）で除して算出したＥｔ添加回収率は１１８．５％となった。
＜実施例９＞平行線定量法を用いた試験（２）
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤０．８ｍＬに１ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液０．１ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、水０．０２ｍＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、５００ｍＭのＭｇＳＯ4水溶液０．０８ｍＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌し、溶液をヒートブロックを用いて７０℃で１０分間熱処理した後にただちに氷冷した。溶液の温度を室温に戻した後、０．５ｍＬをＡＴIIIの１．２５倍希釈液として別容器に分注した。残りの０．５ｍＬに４０ｍＭのＭｇＳＯ4水溶液を０．５ｍＬ加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、０．５ｍＬをＡＴIIIの２．５倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの５倍希釈液、１０倍希釈液、２０倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。また、ＡＴIII製剤の代わりにエンドトキシン試験用水を用い、本発明の前処理法を実施せずに調製した同様の希釈系列を対照試料として用意した。各溶液０．０５ｍＬをマイクロプレートに分注し、エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを０．０５ｍＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定した。結果を表１２および図２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　図２に示すように、ＡＴIIIを含む試料の希釈倍率に対する測定値および対照試料（エンドトキシン標準液のエンドトキシン試験用水による２倍希釈系列液）のエンドトキシン濃度に対する測定値をそれぞれ両対数プロットし、平行線定量法により平行性検定を行った。平行線定量法の専用ソフトウェア（ＰＬ６０３；生化学工業株式会社）により統計学的に分析した結果、両者には回帰および平行性が成立し、試験に適合した。平行線定量法により算出されたＥｔ濃度（０．１２２ＥＵ／ｍＬ）を対照試料のＥｔ濃度（０．１２５ＥＵ／ｍＬ）で除して算出したＥｔ添加回収率は９７．６％となった。
＜実施例１０＞平行線定量法を用いた試験（３）
　５０Ｕｎｉｔ／ｍＬのＡＴIII製剤４７２．５μＬに２０ＥＵ／ｍＬのＥｔ標準液２．５μＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。次に、水６．２５μＬを加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、２ＭのＭｇＳＯ4水溶液１８．７５μＬを加え、さらに試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した。その後、ヒートブロックを用いて溶液を７０℃で２０分間熱処理した後にただちに氷冷した。溶液の温度を室温に戻した後、２５０μＬをＡＴIIIの１．０６倍希釈液として別容器に分注した。残りの２５０μＬに水を２５０μＬ加え、試験管ミキサーを用いて１分間激しく撹拌した後、２５０μＬをＡＴIIIの２．１２倍希釈液として別容器に分注した。この操作を繰り返し、ＡＴIIIの４．２３倍希釈液、８．４７倍希釈液、１６．９３倍希釈液も調製し、それぞれを別容器に分注した。また、ＡＴIII製剤の代わりにエンドトキシン試験用水を用い、本発明の前処理法を実施せずに調製した同様の希釈系列を対照試料として用意した。各溶液５０μＬをマイクロプレートに分注し、エンドスペシーＥＳ－５０Ｍを５０μＬ添加し、ウェルリーダーを用いて１分間激しく撹拌した後、３７℃で３０分間加温しながら測定波長４０５ｎｍ及び対照波長４９２ｎｍにおける吸光度の経時変化を測定した。結果を表１３および図３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　図３に示すように、ＡＴIIIを含む試料の希釈倍率に対する測定値および対照試料（エンドトキシン標準液のエンドトキシン試験用水による２倍希釈系列液）のエンドトキシン濃度に対する測定値をそれぞれ両対数プロットし、平行線定量法により平行性検定を行った。平行線定量法の専用ソフトウェア（ＰＬ６０３；生化学工業株式会社）により統計学的に分析した結果、両者には回帰および平行性が成立し、試験に適合した。平行線定量法により算出されたＥｔ濃度（０．１１１ＥＵ／ｍＬ）を対照試料のＥｔ濃度（０．１０６ＥＵ／ｍＬ）で除して算出したＥｔ添加回収率は１０４．７％となった。
　よって、＜実施例８＞～＜実施例１０＞に示したとおり、本発明の前処理法を実施することにより、生物学的製剤基準に記載されている平行線定量法に従って試験した場合においても、ＡＴIIIと共存するＥｔの高精度な測定が可能であることが明らかとなった。
　本発明によれば、リムルス試験に付されるＡＴIIIの前処理を行うことにより、ＡＴIIIをリムルス試験に付す際の反応干渉作用を低減でき、よって、ＡＴIIIのリムルス試験を高精度に実施できる。また、本発明によれば、ＡＴIIIのリムルス試験を簡便、迅速、かつ安価に実施できると期待される。

Claims (12)

  1. 　リムルス試験に付されるアンチトロンビンIII用の前処理剤であって、
    　二価金属塩を含有し、
    　アンチトロンビンIIIをリムルス試験に付す前に、該アンチトロンビンIIIを前記前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供するために用いられる、前処理剤。
  2. 　前記二価金属塩が、二価金属塩化物、二価金属酢酸塩、及び二価金属硫酸塩からなる群より選択される１又はそれ以上の金属塩である、請求項１に記載の前処理剤。
  3. 　前記二価金属塩を構成する二価金属が、マグネシウム、カルシウム、マンガン、及び亜鉛からなる群より選択される１又はそれ以上の金属である、請求項１または２に記載の前処理剤。
  4. 　アンチトロンビンIIIを前記前処理剤と共存させた時の、前記二価金属塩に由来する二価金属イオンの濃度が、０．５ｍＭ以上である、請求項１～３のいずれか１項に記載の前処理剤。
  5. 　前記リムルス試験の測定対象物質が、エンドトキシンである、請求項１～４のいずれか１項に記載の前処理剤。
  6. 　請求項１～５のいずれか１項に記載の前処理剤を含む、アンチトロンビンIII用のリムルス試薬キット。
  7. 　アンチトロンビンIIIを請求項１～５のいずれか１項に記載の前処理剤と共存させた状態でタンパク質を失活させる処理に供することを含む、リムルス試験に付されるアンチトロンビンIIIの前処理方法。
  8. 　前記タンパク質を失活させる処理が、熱処理または酸処理である、請求項７に記載の前処理方法。
  9. 　前記熱処理が、５０℃超の温度で行われる、請求項８に記載の前処理方法。
  10. 　前記酸処理に用いられる酸が、塩酸である、請求項８に記載の前処理方法。
  11. 　請求項７～１０のいずれか１項に記載の前処理方法によりアンチトロンビンIIIを前処理すること、および前処理されたアンチトロンビンIIIをリムルス試験に付すことを含む、アンチトロンビンIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定する方法。
  12. 　請求項１１に記載の方法によりアンチトロンビンIII中のリムルス試験の測定対象物質を測定することを含む、アンチトロンビンIIIを製造する方法。
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