WO2012095316A1 - Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung - Google Patents

Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung Download PDF

Info

Publication number
WO2012095316A1
WO2012095316A1 PCT/EP2012/000124 EP2012000124W WO2012095316A1 WO 2012095316 A1 WO2012095316 A1 WO 2012095316A1 EP 2012000124 W EP2012000124 W EP 2012000124W WO 2012095316 A1 WO2012095316 A1 WO 2012095316A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
dermis
aqueous
solution
treated
hydrogen peroxide
Prior art date
Application number
PCT/EP2012/000124
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Arnd Wilhelmi
Silke SCHREINER
Original Assignee
Tutogen Medical Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=45507687&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=WO2012095316(A1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority to SG2013061148A priority Critical patent/SG192729A1/en
Priority to KR1020137021535A priority patent/KR101894485B1/ko
Priority to AU2012206763A priority patent/AU2012206763B2/en
Priority to CN201280011815.9A priority patent/CN103415308B/zh
Priority to EP12700549.4A priority patent/EP2654815B1/de
Priority to BR112013018037A priority patent/BR112013018037A2/pt
Priority to NZ614239A priority patent/NZ614239B2/en
Application filed by Tutogen Medical Gmbh filed Critical Tutogen Medical Gmbh
Priority to CA2829019A priority patent/CA2829019A1/en
Priority to RU2013137859/15A priority patent/RU2575831C2/ru
Publication of WO2012095316A1 publication Critical patent/WO2012095316A1/de
Priority to US13/830,981 priority patent/US9814745B2/en
Priority to US13/839,440 priority patent/US10076543B2/en
Priority to US16/113,951 priority patent/US10765703B2/en
Priority to US17/013,159 priority patent/US11382933B2/en
Priority to US17/838,001 priority patent/US11883437B2/en
Priority to US18/391,502 priority patent/US20240115621A1/en

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/36—Skin; Hair; Nails; Sebaceous glands; Cerumen; Epidermis; Epithelial cells; Keratinocytes; Langerhans cells; Ectodermal cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/362—Skin, e.g. dermal papillae
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3683—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment
    • A61L27/3687—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment characterised by the use of chemical agents in the treatment, e.g. specific enzymes, detergents, capping agents, crosslinkers, anticalcification agents

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a transplant of animal dermis, in particular of porcine dermis, and to a graft obtainable therewith.
  • Tissue grafts are used in many applications, such as dental surgery for jaw bone or soft tissue regeneration, filling of bone defects in the case of a tumor, repair of tendons and ligaments, and correction of congenital defects. In addition, they can also be used for spinal surgery, revision of hip prostheses or treatment of abdominal wall defects.
  • tissue transplants Basically, three types of tissue transplants are distinguished, namely autogenous tissue grafts in which the donor and recipient are the same person, the graft usually being deployed at a site other than the donor site, allogeneic tissue grafts in which the donor and recipient are different individuals of a species, and xenogeneic tissue grafts in which the donor belongs to another species, such as pigs, than the recipient, for example human. Due to the limited availability of allogeneic and especially autogenous tissue grafts, xenogeneic tissue grafts are of particular interest.
  • tissue transplants from pigs for example from porcine dermis
  • porcine dermis tissue transplants from primates.
  • An essential aspect in the production of tissue transplants is that the native structure of the tissue in the finished graft is preferably retained so that it has at least largely the properties of the native tissue, for example, with regard to the inner surface, the handling and the elasticity.
  • tissue grafts are usually prepared by a process in which the tissue is first treated with 1 M sodium hydroxide solution to loosen the tissue structure, dissolve bristles from the dermis and depilate the dermis.
  • this treatment step severely damages the dermal collagen matrix, significantly affecting the native structure of the dermis.
  • the object of the present invention is therefore to provide a method for producing a transplant, with which a tissue transplant can be produced from animal dermis and in particular from porcine dermis in a simple, rapid and cost-effective manner, the morphology of which at least largely corresponds to the native structure of the dermis.
  • this object is achieved by a method for producing a transplant from animal dermis, in particular from porcine dermis, which comprises the following steps: Providing animal dermis,
  • a sterile and cell-free xenogeneic graft can be produced with the method according to the invention from an animal dermis in a simple, rapid and cost-effective manner, which at least largely corresponds to the native tissue structure in terms of its morphological structure.
  • chemical treatment of the tissue with chemical agents which cause cross-linking of proteins contained in the collagen with loss of the native tissue structure, such as formaldehyde, glutaraldehyde or the like, can be dispensed with.
  • Such cross-linking of proteins of the tissue is disadvantageous because such cross-linking adversely affects the ingrowth behavior of the graft in the recipient.
  • the alkaline sodium sulfide-containing solution used in this embodiment can have any desired pH greater than 7, with good results, in particular with corresponding solutions which have a pH of at least 10 and preferably of at least 12 ,
  • the present invention is not limited in the amount of sodium sulfide contained in the aqueous solution used in the step b).
  • the aqueous solution used in process step b) preferably contains from 0.01 to 10% by weight, particularly preferably from 0.1 to 5% by weight, particularly preferably from 0.5 to 3
  • % By weight, most preferably from 0.75 to 1.5% by weight and most preferably about 1% by weight of sodium sulfide.
  • Solution in addition to sodium sulfide 0.001 to 0.5 M sodium hydroxide, preferably 0.005 to 0.4 M sodium hydroxide, particularly preferably 0.01 to 0.3 M sodium hydroxide, particularly preferably 0.05 to 0.2 M sodium hydroxide, very particularly preferably 0.075 to 0.125 M Sodium hydroxide and most preferably about 0.1 M sodium hydroxide.
  • any base known to those skilled in the pH adjustment art may be used, such as any alkali metal hydroxide or alkaline earth metal hydroxide such as potassium hydroxide, lithium hydroxide, magnesium hydroxide, calcium hydroxide, ammonia, and the like.
  • the sodium sulfide solution should be used in step b) in a sufficiently high amount and for a sufficiently long time to effectively dermulate the dermis and to almost completely remove the bristles and hairs contained therein. Good results are achieved in this regard in particular if the dermis is treated with the aqueous sodium sulfide-containing solution for 1 to 48 hours, preferably for 5 to 36 hours, more preferably for 12 to 24 hours and most preferably for 14 to 20 hours.
  • the aqueous sodium sulfide-containing solution is preferably used in the 5- to 15-fold volume based on the volume of the dermis. More preferably, the aqueous sodium sulfide-containing solution is in the 6- to 14-fold volume, more preferably in the 7- to 13-fold volume, more preferably in the 8- to 12-fold volume, most preferably in the 9- to 1 1-fold volume and most preferably used in an approximately 10-fold volume based on the volume of the dermis.
  • the treatment with the sodium sulfide-containing solution in process step b) can be carried out one or more times in succession, wherein the dermis between the individual treatment steps with the solution containing sodium sulfide with water treated and / or rinsed.
  • the rotating drum can be stored horizontally and rotated about its axis.
  • connections are provided on the drum via which the process solutions can be fed into the drum and removed from the drum.
  • connections can also be provided on the drum in order to set an overpressure or underpressure in the drum as required.
  • the drum is designed double-walled, so that the interior of the drum can be tempered via connections provided in the cavity.
  • aqueous salt solution By treating the dermis with an aqueous salt solution in process step c), remaining intact cells are destroyed by osmotic stress after process step b).
  • All salts suitable for this purpose can be used, in particular alkali metal halides and alkaline earth metal halides.
  • the alkali metal chlorides and alkaline earth metal chlorides, in particular sodium chloride are suitable for this purpose.
  • Good results are obtained in this context in particular if the dermis in process step c) with an aqueous, 1 to 50 wt .-%, preferably 2 to 20 wt .-%, particularly preferably 5 to 15 wt .-% and very particularly preferably 10 wt .-% sodium chloride-containing solution is treated.
  • this salt bath / water replaceable bath treatment the transport of cellular constituents from the tissue structure is promoted by diffusion processes as a result of changing osmotic conditions in the tissue, thus improving the effect of the salt bath treatment.
  • step c) two to ten times, preferably three to five times and more preferably four times with an aqueous saline solution, wherein the dermis is treated between the treatment steps with saline solution each with water.
  • the duration of the individual treatment steps in the process step c) is preferably 1 to 48 hours, wherein at least one of these treatment steps preferably for 5 to 36 hours, more preferably for 12 to 24 hours and most preferably for 14 to 20 hours, for example 16 hours, is performed.
  • method step c) is also carried out in the rotating drum described above as being preferred for method step b).
  • the optional process step d it is proposed in a further development of the inventive concept to carry out the optional process step d), preferably using an aqueous solution which contains 1 to 10% by weight.
  • % Hydrogen peroxide preferably 2 to 5 wt .-% hydrogen peroxide and more preferably about 3 wt .-% hydrogen peroxide.
  • the dermis in process step d) is preferably treated several times with an aqueous hydrogen peroxide solution, preferably two to five times and more preferably three times, wherein the dermis is treated with water and / or rinsed with the hydrogen peroxide solution between the treatment steps.
  • the duration of the individual treatment steps in process step d) is preferably 5 to 60 hours, particularly preferably 10 to 36 hours and very particularly preferably 20 to 30 hours, for example 24 hours.
  • process step d) is also carried out in the rotating drum previously described as being preferred for process step b).
  • the dermis is dehydrated in process step e) by two to ten times, preferably four to eight times, and particularly preferably six times, treatment with an organic solvent.
  • the organic solvent is selected from the group consisting of acetone, methanol, ethanol and isopropyl alcohol.
  • acetone is used as the organic solvent because it not only dehydrates the dermis, but in particular also degreases it and inactivates any viruses present.
  • Good results with regard to the degree of dehydration are obtained in particular when the dermis in process step e) is treated several times with an organic solvent.
  • the dermis is treated two to ten times, more preferably four to eight times and most preferably six times with organic solvent.
  • a water-diluted organic solvent for example a 70% acetone solution
  • highly concentrated dilute organic solvents for example, in the second treatment step, a 90% acetone solution, followed by concentrated organic solvent such as undiluted acetone.
  • the duration of the individual treatment steps in the method step e) is preferably 1 to 48 hours, wherein at least one these treatment steps are preferably carried out for 5 to 48 hours, more preferably for 12 to 36 hours and most preferably for 20 to 30 hours, for example for 24 hours.
  • method step e) is also carried out in the rotating drum described above as being preferred for method step b).
  • residual organic solvent in the dermis is preferably removed by circulating air drying at 25 to 60 ° C., for example at 35 ° C.
  • the present method is particularly suitable for producing a porcine dermis graft.
  • this is also suitable for all other animal dermis, such as bovine dermis.
  • method step a) comprises the following steps, in particular in the case of porcine dermis:
  • Pig with possibly detergent-containing water, the water having a temperature between room temperature and a maximum of 40 ° C,
  • the type of preparation of the animal dermis also has an important influence on the quality of the graft obtained.
  • pig skin produced by a conventional method in a slaughterhouse results in transplants having comparatively poor properties. This is because in conventional slaughterhouse methods the pigs are brewed after slaughtering with about 65 ° C hot water to superficially cleanse and disinfect them before flaking the bristles. As a result of this thermal treatment, the collagen contained in the pigskin is irreversibly damaged or denatured.
  • the skin portion of the back part of the animal preferably pig
  • the portions of the abdominal side are removed from the entire skin and discarded, and only the skin of the back area with an area of approximately 800 ⁇ 1200 mm is used.
  • the bristles are removed from the skin mechanically, preferably with a blade, before the skin is cut into, for example, pieces about 400 ⁇ 600 mm in size.
  • the skin thickness at this stage is about 2.5 to 3 mm.
  • the skin provided in this way can be fed directly to process step a 4 ) or initially stored at a temperature of at most -20 ° C.
  • the subcutis and the epidermis are preferably removed from the dermis by means of a splitting machine.
  • the band knife machine preferably contains an endless knife, which is comparable to a band saw blade without teeth, and which is driven by two wheels and guided over additional rollers.
  • the knife is stored horizontally and is moved at a speed of several meters / second. With such a splitting machine, the gap thickness is infinitely adjustable.
  • the dermis is fed to the knife through two rollers and divided along the cross-sectional area into two pieces.
  • the machine is set to a gap of 2 mm.
  • the pre-cut pieces of skin are then introduced into the machine with the fat side up, whereby the fat and connective tissue portion, including the hair roots, which exceeds a thickness of 2 mm, is separated and then discarded.
  • the gap size can also be set to about 1.5 or about 1.0 mm.
  • the gap of the splitting machine is set to 0.5 mm, and the skin obtained in the previous step is again introduced into the splitting machine to split off and discard the epidermis.
  • the dermis prepared in this way can be fed directly to process step b) or initially stored at a temperature of at most -20 ° C. or alternatively at 4 ° C. in 25% sodium chloride solution.
  • the graft is eventually excised and / or punched out of the dermis dehydrated in step e) using a template if necessary.
  • the grafts can be cut into rectangular, round or oval shapes.
  • the grafts can also be punched with a hole pattern.
  • the transplants are preferably welded twice in Flachbeu- tel of laminated plastic film or composite film of plastic and aluminum foil.
  • the grafts are preferably dry packed. However, after a successful rehydration, the grafts can also be packed moist. For sterilization, the packaged grafts can finally with
  • Gamma radiation for example with gamma radiation with an absorbed dose of 17 to 22 kGy. While dry grafts are preferably irradiated at a temperature of 20 to 40 ° C, the irradiation of wet grafts is preferably carried out at a temperature of -20 to -80 ° C.
  • a further subject of the present invention is a graft obtainable by the method according to the invention.
  • the graft according to the invention can have a rectangular shape with a size of, for example, 50 ⁇ 100 mm to 350 ⁇ 350 mm, a round shape with a diameter between 30 and 100 mm or an oval shape with a size of, for example, 100 ⁇ 155 mm to 250 ⁇ 350 mm.
  • the present invention relates to the use of the previously described graft in hernia surgery, for example for the treatment of incisional hernias or for the treatment of bot- toms.
  • the graft according to the invention is sutured to the surrounding intact tissue and initially serves as a defect closure.
  • the graft serves as a guide for the patient's own cells, which colonize the collagen structure of the graft.
  • a freshly slaughtered pig was superficially treated with 40 ° C water containing 0.1 to 1% by weight sodium dodecyl sulfate (SDS). cleaned before it was skinned.
  • SDS sodium dodecyl sulfate
  • the parts of the abdominal side were removed from the entire skin and discarded, and only the skin of the back area with an area of about 800 ⁇ 1200 mm was processed further.
  • the bristles were mechanically removed from the pigskin with a blade before the skin was cut into pieces about 400 x 600 mm in size. Thereafter, the skin was introduced with the fat side up in a splitting machine set to a gap of 2 mm in order to separate the fat and binder components, including the hair roots, beyond a thickness of 2 mm.
  • the splitting machine contained a driven over two wheels and guided by additional rollers, horizontally mounted endless knives. Subsequently, the gap of the splitting machine was set to 0.5 mm and the skin was again passed through the splitting machine to split the epidermis. Thus, a dermis having a thickness of 1.5 mm was obtained. Thereafter, the dermis was treated in a rotating drum according to the following treatment scheme:
  • oval dermal transplants 160 ⁇ 250 mm in size were punched out of the dermis and then dry-sealed in pairs in a laminated plastic film and gamma-irradiated at 35 ° C.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Apparatus For Disinfection Or Sterilisation (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Treatment Of Sludge (AREA)

Abstract

Ein Verfahren zur Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis, insbesondere aus porciner Dermis, umfasst die nachfolgenden Schritte: a) Bereitstellen von tierischer Dermis, b) Behandeln der tierischen Dermis mit einer wässrigen, Natriumsulfid enthaltenden Lösung, c) ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässrigen Salzlösung, d) ggf. ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässrigen Wasserstoffperoxidlösung und e) Dehydratisieren der Dermis. Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein mit dem vorstehenden Verfahren erhältliches Transplantat.

Description

Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis mit
Natriumsulfidlösung
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis, insbesondere aus porciner Dermis, sowie ein damit erhältliches Transplantat.
Gewebetransplantate werden für viele Anwendungen eingesetzt, beispielsweise bei zahnärztlichen Operationen zum Aufbau des Kieferknochens oder zur Weichgeweberegeneration, zum Auffüllen von Knochendefekten im Falle eines Tumors, bei Eingriffen zur Wiederherstellung von Sehnen und Bändern sowie bei der Korrektur angeborener Defekte. Darüber hinaus können sie auch bei Operationen an der Wirbelsäule, bei der Revision von Hüftprothesen oder bei der Behandlung von Bauchwanddefekten ein- gesetzt werden.
Grundsätzlich werden drei Arten von Gewebetransplantaten unterschieden, nämlich autogene Gewebe transplantate, bei denen Spender und Empfänger dieselbe Person sind, wobei das Transplantat üblicherweise an einer anderen Stelle als der Entnahmestelle eingesetzt wird, allogene Gewebetransplantate, bei denen Spender und Empfänger verschiedene Individuen einer Spezies sind sowie xenogene Gewebetransplantate, bei denen der Spender einer anderen Art, beispielsweise Schwein, angehört als der Empfänger, beispielsweise Mensch. Aufgrund der begrenzten Verfügbar- keit allogener und insbesondere autogener Gewebetransplantate sind xenogene Gewebetransplantate von besonderem Interesse. Dabei sind insbesondere Gewebetransplantate aus Schweinen, beispielsweise aus porciner Dermis, begehrt, weil diese physiologisch besser den Anforderungen an den menschlichen Körper genügen als beispielsweise Gewebetransplantate aus Primaten. Hinzu kommt die nahezu unbegrenzte Verfügbarkeit von porciner Haut. Ein wesentlicher Aspekt bei der Herstellung von Gewebetransplantaten ist es, dass die native Struktur des Gewebes in dem fertigen Transplantat möglichst beibehalten wird, damit dieses beispielsweise im Hinblick auf die innere Oberfläche, die Handhabbarkeit und die Elastizität zumindest weitgehend die Eigenschaften des Nativgewebes aufweist. Allerdings ist es mit den bisher bekannten Verfahren nicht möglich, Transplantate aus tierischer Dermis und insbesondere aus porciner Dermis bzw. Schweine- dermis unter ausreichender Beibehaltung der nativen Gewebestruktur herzustellen. Üblicherweise werden solche Gewebetransplantate nämlich durch ein Verfahren hergestellt, bei dem das Gewebe zunächst mit 1 M Natronlauge behandelt wird, um die Gewebestruktur aufzulockern, Borsten aus der Dermis aufzulösen und die Dermis zu enthaaren. Durch diesen Behandlungsschritt wird jedoch die dermale Kollagenmatrix stark geschädigt, so dass die native Struktur der Dermis beträchtlich beeinträchtigt wird.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung ist es daher, ein Verfahren zur Herstellung eines Transplantats bereitzustellen, mit dem aus tierischer Dermis und insbesondere aus porciner Dermis einfach, schnell und kostengünstig ein Gewebetransplantat hergestellt werden kann, dessen Morpho- logie der nativen Struktur der Dermis zumindest weitgehend entspricht.
Erfindungsgemäß wird diese Aufgabe durch ein Verfahrens zur Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis, insbesondere aus porciner Dermis, gelöst, welches die nachfolgenden Schritte umfasst: Bereitstellen von tierischer Dermis,
Behandeln der tierischen Dermis mit einer wässrigen, Natriumsulfid enthaltenden Lösung,
ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässri gen Salzlösung,
ggf. ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässrigen Wasserstoffperoxidlösung und
Dehydratisieren der Dermis. Diese Lösung beruht auf der Erkenntnis, dass durch die Behandlung von tierischer Dermis mit einer Natriumsulfid enthaltenden Lösung, gleichermaßen wie durch die Behandlung mit einer vergleichsweise konzentrierten Natronlauge, eine Auflockerung der Gewebestruktur, eine Entfernung der Borsten aus der Dermismatrix und eine Enthaarung der Dermis erreicht werden kann, und zwar überraschenderweise so, dass im Unterschied zu der Behandlung mit einer vergleichsweise konzentrierten Natronlauge eine Schädigung der dermalen Kollagenmatrix der Dermis nahezu vollständig verhindert wird. Aus diesem Grund kann mit dem erfindungsgemäßen Verfahren aus einer tierischen Dermis einfach, schnell und kostengünstig ein steriles und zellfreies xenogenes Transplantat hergestellt werden, welches hinsichtlich seiner morphologischen Struktur zumindest weitgehend der nativen Gewebestruktur entspricht. Insbesondere kann bei dem erfindungsgemäßen Verfahren auf eine chemische Behandlung des Gewebes mit chemischen Agentien, welche eine Kreuzvernetzung von in dem Kol- lagen enthaltenen Proteinen unter Verlust der nativen Gewebestruktur verursachen, wie Formaldehyd, Glutaraldehyd oder dergleichen, verzichtet werden. Eine solche Kreuzvernetzung von Proteinen des Gewebes ist nachteilhaft, weil eine solche Kreuzvernetzung das Einwachsverhalten des Transplantats in dem Empfänger negativ beeinflusst. In manchen Fällen kann eine solche Proteinkreuzvernetzung sogar dazu führen, dass das Transplantat in dem Empfänger überhaupt nicht einwächst, sondern eingekapselt wird, ohne vorher die vorgesehene Funktion der Gewebestabilisierung auszuüben. Um bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens die Erzeugung von Schwefelwasserstoff zuverlässig zu verhindern, wird es in Weiterbildung des Erfindungsgedankens vorgeschlagen, in dem Verfahrensschritt b) eine wässrige alkalische, Natriumsulfid enthaltende Lösung einzusetzen. Grundsätzlich kann die bei dieser Ausführungsform einge- setzte alkalische, Natriumsulfid enthaltende Lösung jeden beliebigen pH- Wert von größer als 7 aufweisen, wobei insbesondere mit entsprechenden Lösungen, welche einen pH -Wert von wenigstens 10 und bevorzugt von wenigstens 12 aufweisen, gute Ergebnisse erhalten werden. Prinzipiell ist die vorliegende Erfindung bezüglich der Menge des in der in dem Verfahrensschritt b) eingesetzten wässrigen Lösung enthaltenen Natriumsulfids nicht beschränkt. Vorzugsweise enthält die in dem Verfahrensschritt b) eingesetzten wässrige Lösung 0,01 bis 10 Gew.-%, insbesondere bevorzugt 0, 1 bis 5 Gew.-%, besonders bevorzugt 0,5 bis 3
Gew.-%, ganz besonders bevorzugt 0,75 bis 1 ,5 Gew.-% und höchst bevorzugt etwa 1 Gew.-% Natriumsulfid.
Um den vorstehend genannten bevorzugten alkalischen pH-Wert einzustellen, ist es gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung vorgesehen, dass in dem Verfahrensschritt b) eine wässrige
Lösung eingesetzt wird, welche neben Natriumsulfid 0,001 bis 0,5 M Natriumhydroxid, bevorzugt 0,005 bis 0,4 M Natriumhydroxid, besonders bevorzugt 0,01 bis 0,3 M Natriumhydroxid, insbesondere bevorzugt 0,05 bis 0,2 M Natriumhydroxid, ganz besonders bevorzugt 0,075 bis 0, 125 M Natriumhydroxid und höchst bevorzugt etwa 0, 1 M Natriumhydroxid enthält.
Anstelle von Natriumhydroxid kann jede dem Fachmann zur Einstellung von pH-Werten bekannte Base eingesetzt werden, wie beispielsweise jedes Alkalimetallhydroxid oder Erdalkalimetallhydroxid, wie Kaliumhydroxid, Lithiumhydroxid, Magnesiumhydroxid, Calciumhydroxid, Ammoniak und dergleichen. Grundsätzlich sollte die Natriumsulfidlösung in dem Verfahrensschritt b) in einer ausreichend hohen Menge und für eine ausreichend lange Zeit eingesetzt werden, damit die Dermis wirksam aufgelockert wird und die darin enthaltenen Borsten und Haare nahezu vollständig entfernt werden. Gute Ergebnisse werden diesbezüglich insbesondere erreicht, wenn die Dermis für 1 bis 48 Stunden, bevorzugt für 5 bis 36 Stunden, besonders bevorzugt für 12 bis 24 Stunden und ganz besonders bevorzugt für 14 bis 20 Stunden mit der wässrigen Natriumsulfid enthaltenden Lösung behandelt wird. Dabei wird die wässrige Natriumsulfid enthaltende Lösung vorzugsweise in dem 5- bis 15-fachen Volumen bezogen auf das Volumen der Dermis eingesetzt. Besonders bevorzugt wird die wässrige Natriumsulfid enthaltende Lösung in dem 6- bis 14-fachen Volumen, insbesondere bevorzugt in dem 7- bis 13-fachen Volumen, weiter bevorzugt in dem 8- bis 12-fachen Volumen, ganz besonders bevorzugt in dem 9- bis 1 1 -fachen Volumen und höchst bevorzugt in einem etwa 10-fachen Volumen bezogen auf das Volumen der Dermis eingesetzt.
Prinzipiell kann die Behandlung mit der Natriumsulfid enthaltenden Lösung in dem Verfahrensschritt b) einmal oder mehrmals hintereinander durchgeführt werden, wobei die Dermis zwischen den einzelnen Behand- lungsschritten mit der Natriumsulfid enthaltenden Lösung mit Wasser behandelt und/ oder gespült wird. Allerdings hat es sich im Rahmen der vorliegenden Erfindung als bevorzugt herausgestellt, in dem Verfahrensschritt b) nur eine einmalige Behandlung der Dermis mit der Natriumsulfid enthaltenden Lösung vorzugsweise für die zuvor genannte Behand- lungsdauer durchzuführen.
In Weiterbildung des Erfindungsgedankens wird es vorgeschlagen, die Behandlung mit der Natriumsulfidlösung gemäß dem Verfahrensschritt b) in einer rotierenden Trommel durchzuführen. Dadurch wird eine gleich- mäßige und vollständige Inkubation der Dermis mit dem Natriumsulfid erreicht. Beispielsweise kann die rotierende Trommel horizontal gelagert und um ihre Achse rotiert werden. Zweckmäßigerweise sind an der Trommel Anschlüsse vorgesehen, über welche die Prozesslösungen in die Trommel zugeführt und aus der Trommel abgeführt werden können. Zu- dem können an der Trommel auch Anschlüsse vorgesehen sein, um in der Trommel je nach Bedarf einen Über- oder Unterdruck einzustellen. Zudem ist es bevorzugt, dass die Trommel doppelwandig ausgestaltet ist, damit der Innenraum der Trommel über in dem Hohlraum vorgesehene Anschlüsse temperiert werden kann. Schließlich ist es auch bevorzugt, die Trommel so auszugestalten, dass deren Drehgeschwindigkeit elektronisch regelbar ist.
Durch die Behandlung der Dermis mit einer wässrigen Salzlösung in dem Verfahrensschritt c) werden nach dem Verfahrensschritt b) noch vorhan- dene intakte Zellen durch osmotischen Stress zerstört. Dabei können alle zu diesem Zweck geeigneten Salze eingesetzt werden, wie insbesondere Alkalimetallhalogenide und Erdalkalimetallhalogenide. Aus Kostengründen sind für diesen Zweck insbesondere die Alkalimetallchloride und Erdalkalimetallchloride, wie insbesondere Natriumchlorid, geeignet. Gute Ergebnisse werden in diesem Zusammenhang insbesondere erhalten, wenn die Dermis in dem Verfahrensschritt c) mit einer wässrigen, 1 bis 50 Gew.-%, bevorzugt 2 bis 20 Gew.-%, besonders bevorzugt 5 bis 15 Gew.-% und ganz besonders bevorzugt 10 Gew.-% Natriumchlorid ent- haltenden Lösung behandelt wird. Diese Mengen sind auch bei der Verwendung anderer Alkalimetallhalogenide und Erdalkalimetallhalogenide, wie Kaliumchlorid, Lithiumchlorid, Magnesiumchlorid, Calciumchlorid und dergleichen, bevorzugt. Gemäß einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird die Dermis in dem Verfahrensschritt c), jeweils unterbrochen durch eine Behandlung und/ oder ein Spülen mit Wasser, mehrmals mit Salzlösung behandelt. Durch diese Wechselbadbehandlung Salzlösung/Wasser wird der Transport von zellulären Bestandteilen aus der Gewebe struktur durch Diffusionsvorgänge infolge wechselnder osmotischer Verhältnisse in dem Gewebe begünstigt und somit der Effekt der Salzbadbehandlung verbessert. Gute Ergebnisse werden dabei insbesondere erhalten, wenn die Dermis in dem Verfahrensschritt c) zwei- bis zehnmal, bevorzugt drei- bis fünfmal und besonders bevorzugt viermal mit einer wässrigen Salzlösung behandelt wird, wobei die Dermis zwischen den Behandlungsschritten mit Salzlösung jeweils mit Wasser behandelt wird.
Dabei beträgt die Dauer der einzelnen Behandlungsschritte in dem Ver- fahrensschritt c) vorzugsweise 1 bis 48 Stunden, wobei zumindest einer dieser Behandlungsschritte bevorzugt für 5 bis 36 Stunden, besonders bevorzugt für 12 bis 24 Stunden und höchst bevorzugt für 14 bis 20 Stunden, beispielsweise für 16 Stunden, durchgeführt wird. Vorzugsweise wird auch der Verfahrensschritt c) in der zuvor für den Verfahrensschritt b) als bevorzugt beschriebenen rotierenden Trommel durchgeführt. Um die in dem Gewebe vorhandenen Bakterien und Viren abzutöten, und, um das Gewebe zu bleichen, wird es in Weiterbildung des Erfindungsgedankens vorgeschlagen, den optionalen Verfahrensschritt d) durchzuführen, und zwar vorzugsweise unter Verwendung einer wässrigen Lösung, welche 1 bis 10 Gew.-% Wasserstoffperoxid, bevorzugt 2 bis 5 Gew.-% Wasserstoffperoxid und besonders bevorzugt etwa 3 Gew.-% Wasserstoffperoxid enthält.
Dabei wird die Dermis in dem Verfahrensschritt d) vorzugsweise mehrmals mit einer wässrigen Wasserstoffperoxidlösung behandelt, und zwar bevor- zugt zwei- bis fünfmal und besonders bevorzugt dreimal, wobei die Dermis zwischen den Behandlungsschritten mit der Wasserstoffperoxidlösung jeweils mit Wasser behandelt und/ oder gespült wird.
Gute Ergebnisse werden dabei insbesondere erhalten, wenn die Dauer der einzelnen Behandlungsschritte in dem Verfahrensschritt d) vorzugsweise 5 bis 60 Stunden, besonders bevorzugt 10 bis 36 Stunden und ganz besonders bevorzugt 20 bis 30 Stunden, beispielsweise 24 Stunden, beträgt.
Vorzugsweise wird auch der Verfahrensschritt d) in der zuvor für den Ver- fahrensschritt b) als bevorzugt beschriebenen rotierenden Trommel durchgeführt.
Um in dem Verfahrensschritt e) eine besonders effektive Dehydratisierung zu erreichen, welche eine anschließende Lagerung der Dermis im eingefro- renen Zustand ohne Veränderung ihrer Struktur ermöglicht, ist es gemäß einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung vorgesehen, die Dermis in dem Verfahrensschritt e) durch zwei- bis zehnmaliges, bevorzugt durch vier- bis achtmaliges und besonders bevorzugt durch sechsmaliges Behandeln mit einem organischen Lösungsmittel zu dehydratisieren. Dabei werden besonders gute Ergebnisse erhalten, wenn das organische Lösungsmittel aus der Gruppe ausgewählt wird, welche aus Aceton, Methanol, Ethanol und Isopro pylalkohol besteht.
Gemäß einer besonders bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung wird in dem Verfahrensschritt e) Aceton als organisches Lösungsmittel eingesetzt, weil dieses nicht nur die Dermis dehydratisiert, sondern diese insbesondere auch entfettet und etwaig vorhandene Viren inaktiviert. Gute Ergebnisse im Hinblick auf den Dehydratisierungsgrad werden dabei insbesondere erhalten, wenn die Dermis in dem Verfahrensschritt e) mehrmals mit einem organischen Lösungsmittel behandelt wird. Vorzugsweise wird die Dermis zwei- bis zehnmal, besonders bevorzugt vier- bis achtmal und ganz besonders bevorzugt sechsmal mit organischem Lö- sungsmittel behandelt. Um anfangs einen langsamen Wasserentzug bzw. eine schonende Dehydratisierung zu erreichen, ist es zudem bevorzugt, in dem ersten Schritt ein mit Wasser verdünntes organisches Lösungsmittel, beispielsweise eine 70 %-ige Acetonlösung, einzusetzen, bevor dann in den folgenden Behandlungsschritten höherkonzentrierte verdünnte organische Lösungsmittel, wie beispielsweise bei dem zweiten Behandlungsschritt eine 90 %-ige Acetonlösung, und danach konzentriertes organisches Lösungsmittel, wie unverdünntes Aceton, eingesetzt werden.
Dabei beträgt die Dauer der einzelnen Behandlungsschritte in dem Ver- fahrensschritt e) vorzugsweise 1 bis 48 Stunden, wobei zumindest einer dieser Behandlungsschritte bevorzugt für 5 bis 48 Stunden, besonders bevorzugt für 12 bis 36 Stunden und höchst bevorzugt für 20 bis 30 Stunden, beispielsweise für 24 Stunden, durchgeführt wird. Vorzugsweise wird auch der Verfahrensschritt e) in der zuvor für den Verfahrensschritt b) als bevorzugt beschriebenen rotierenden Trommel durchgeführt.
Nach Abschluss der Dehydratisierung wird restliches organisches Lö- sungsmittel in der Dermis vorzugsweise durch eine Umlufttrocknung bei 25 bis 60°C, beispielsweise bei 35°C, entfernt.
Wie dargelegt ist das vorliegende Verfahren insbesondere zur Herstellung eines Transplantats aus porciner Dermis geeignet. Allerdings eignet sich dieses auch für alle andere tierischen Dermis, wie beispielsweise Rinder- dermis.
Gemäß einer weiteren besonders bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung umfasst der Verfahrensschritt a) insbesondere in dem Fall porciner Dermis die nachfolgenden Schritte:
Reinigen der Haut von geschlachtetem Tier, insbesondere
Schwein, mit ggf. Detergens enthaltendem Wasser, wobei das Wasser eine Temperatur zwischen Raumtemperatur und maximal 40°C aufweist,
Ά2) Abziehen der Haut von der Rückenpartie des Schweins,
a3) Entfernen der Borsten von der in dem Schritt a2) bereitgestellten Haut und
a ) Entfernen der Subcutis und der Epidermis von der Dermis mittels einer Spaltmaschine. Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wurde herausgefunden, dass neben der Art der chemischen Behandlung auch die Art der Vorbereitung der tierischen Dermis einen wichtigen Einfluss auf die Qualität des erhal- tenen Transplantats ausübt. Insbesondere wurde im Rahmen der vorliegenden Erfindung festgestellt, dass durch ein herkömmliches Verfahren in einem Schlachthof hergestellte Schweinehaut zu Transplantaten mit vergleichsweise schlechten Eigenschaften führt. Dies liegt daran, dass bei den herkömmliches Schlachthofverfahren die Schweine nach der Schlach- tung mit etwa 65°C heißem Wasser gebrüht werden, um diese oberflächlich zu reinigen und zu desinfizieren, bevor anschließend die Borsten ab- geflammt werden. Durch diese thermische Behandlung wird das in der Schweinehaut enthaltene Kollagen irreversibel geschädigt bzw. denaturiert.
Um dies zu vermeiden, ist es gemäß der vorstehenden, besonders bevorzugten Ausführungsform der vorliegenden Erfindung vorgesehen, die Haut von geschlachtetem Schwein schonend zu reinigen, nämlich mit maximal 40°C warmen Wasser, welches ggf. mildes Detergens enthält. Mit anderen Worten wird bei dem erfindungsgemäßen Verfahren keine thermische Behandlung der Haut mit mehr als 40°C heißem Medium durchgeführt.
Vorzugsweise wird in dem erfindungsgemäßen Verfahren nur der Hautabschnitt von der Rückenpartie des Tieres, vorzugsweise Schweins, verwen- det, weil sich diese im Vergleich zu der Haut der Bauchseite durch eine straffere Hautstruktur und eine größere Dicke auszeichnet. Mithin werden in dem Verfahrensschritt a2) von der kompletten Haut die Anteile der Bauchseite entfernt und verworfen und nur die Haut der Rückenpartie mit einer Fläche von etwa 800 x 1200 mm verwendet. Anschließend werden in dem Verfahrensschritt a3) vorzugsweise die Borsten von der Haut mechanisch, und zwar bevorzugt mit einer Klinge, entfernt, bevor die Haut in beispielsweise etwa 400 x 600 mm große Stücke geschnitten wird. Die Hautdicke beträgt in diesem Stadium etwa 2,5 bis 3 mm. Die so bereitgestellte Haut kann direkt dem Verfahrensschritt a4) zugeführt werden oder zunächst bei einer Temperatur von maximal -20°C gelagert werden.
Danach werden in dem Verfahrensschritt a4) von der Dermis die Subcutis und die Epidermis vorzugsweise mittels einer Spaltmaschine entfernt. Zu diesem Zweck enthält die Bandmessermaschine vorzugsweise ein Endlosmesser, welches mit einem Bandsägeblatt ohne Zähne vergleichbar ist, und welches über zwei Räder angetrieben und über zusätzliche Rollen geführt wird. Vorzugsweise ist das Messer horizontal gelagert und wird mit einer Geschwindigkeit von mehreren Metern/ Sekunde bewegt. Mit einer solchen Spaltmaschine ist die Spaltdicke stufenlos einstellbar. Dabei wird die Dermis dem Messer durch zwei Walzen zugeführt und entlang der Querschnittsfläche in zwei Stücke geteilt. In Weiterbildung des Erfindungsgedankens wird es vorgeschlagen, in dem Verfahrensschritt a4) zunächst die Subcutis von der Dermis zu entfernen, bevor anschließend die Epidermis von der Dermis entfernt wird. Für den ersten Teilschritt der Entfernung der Subcutis von der Dermis wird die Maschine beispielsweise auf ein Spaltmaß von 2 mm eingestellt. Die vor- geschnittenen Hautstücke werden dann mit der Fettseite nach oben in die Maschine eingeführt, wobei der über eine Dicke von 2 mm hinausgehende Fett- und Bindegewebeanteil inklusive der Haarwurzeln abgetrennt und dann verworfen wird. Alternativ dazu kann das Spaltmaß auch auf etwa 1,5 oder etwa 1 ,0 mm eingestellt werden. In dem nächsten Teilschritt der Entfernung der Epidermis von der Dermis wird das Spaltmaß der Spaltmaschine auf 0,5 mm eingestellt und die in dem vorherigen Teilschritt erhaltene Haut wird erneut in die Spaltmaschine eingeführt, um die Epidermis abzuspalten und zu verwerfen.
Die so bereitgestellte Dermis kann direkt dem Verfahrensschritt b) zugeführt werden oder zunächst bei einer Temperatur von maximal -20°C oder alternativ dazu bei 4°C in 25 %-iger Natriumchloridlösung gelagert werden.
Nach der Durchführung der Vorbehandlung und der chemischen Behandlung der Dermis gemäß den Verfahrensschritten a) bis d) wird schließlich aus der in dem Schritt e) dehydratisierten Dermis das Transplantat ggf. unter Verwendung einer Schablone ausgeschnitten und/oder ausgestanzt. Dabei können die Transplantate zu rechteckigem, rundem oder ovalem Formen geschnitten werden. Optional dazu können die Transplantate auch mit einem Lochmuster gestanzt werden.
Anschließend werden die Transplantate vorzugsweise doppelt in Flachbeu- tel aus laminierter Kunststofffolie bzw. Verbundfolie aus Kunststoff und Aluminiumfolie eingeschweißt. Dabei werden die Transplantate vorzugweise trocken verpackt. Allerdings können die Transplantate nach einer erfolgten Rehydratisierung auch feucht verpackt werden. Zur Sterilisation können die verpackten Transplantate schließlich mit
Gammastrahlung behandelt werden, beispielsweise mit Gammastrahlung mit einer Energiedosis von 17 bis 22 kGy. Während trockene Transplantate vorzugsweise bei einer Temperatur von 20 bis 40°C bestrahlt werden, wird die Bestrahlung von feuchten Transplantaten bevorzugt bei einer Temperatur von -20 bis -80°C durchgeführt. Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein mit dem erfindungsgemäßen Verfahren erhältliches Transplantat. Beispielsweise kann das erfindungsgemäße Transplantat eine rechteckige Form mit einer Größe von beispielsweise 50 x 100 mm bis 350 x 350 mm, eine runde Form mit einem Durchmesser zwischen 30 und 100 mm oder eine ovale Form mit einer Größe von beispielsweise 100 x 155 mm bis 250 x 350 mm aufweisen.
Ferner betrifft die vorliegende Erfindung die Verwendung des zuvor beschriebenen Transplantats in der Hernienchirurgie, beispielsweise zur Behandlung von Narbenhernien oder zur Behandlung von Platzbauch. Bei der Behandlung von Hernien wird das erfindungsgemäße Transplantat mit dem umliegenden intakten Gewebe vernäht und dient zunächst als Defektverschluss. Im Rahmen des sich anschließenden Gewebemodellings dient das Transplantat als Leitschiene für patienteneigene Zellen, welche die Kollagenstruktur des Transplantats besiedeln. Durch den Umbau des Transplantats, d.h. den Abbau des Transplantatkollagens und den parallelen Aufbau von patienteneigenem Gewebe, wird der Defekt durch neu gebildetes Bindegewebe geschlossen.
Nachfolgend wird die vorliegende Erfindung anhand eines diese nicht be- schränkenden Ausführungsbeispiels näher erläutert.
Beispiel
Ein frisch geschlachtetes Schwein wurde oberflächlich mit 40°C warmen Wasser, welches 0, 1 bis 1 Gew.-% Natriumdodecylsulfat (SDS) enthielt, gereinigt, bevor dieses gehäutet wurde. Von der kompletten Haut wurden die Anteile der Bauchseite entfernt und verworfen und es wurde nur die Haut der Rückenpartie mit einer Fläche von etwa 800 x 1200 mm weiterverarbeitet.
Anschließend wurden von der Schweinehaut die Borsten mit einer Klinge mechanisch entfernt, bevor die Haut in etwa 400 x 600 mm große Stücke geschnitten wurde. Danach wurde die Haut mit der Fettseite nach oben in eine auf ein Spaltmaß von 2 mm eingestellte Spaltmaschine eingeführt, um den über eine Dicke von 2 mm hinausgehende Fett- und Bindemittelanteile inklusive der Haarwurzeln abzutrennen. Dabei enthielt die Spaltmaschine ein über zwei Räder angetriebenes und über zusätzliche Rollen geführtes, horizontal gelagertes Endlosmesser. Im Anschluss daran wurde das Spaltmaß der Spaltmaschine auf 0,5 mm eingestellt und die Haut wurde erneut durch die Spaltmaschine geführt, um die Epidermis abzuspalten. So wurde eine Dermis mit einer Dicke von 1,5 mm erhalten. Danach wurde die Dermis gemäß dem nachfolgenden Behandlungssche- ma in einer rotierenden Trommel behandelt:
Schritt Aktion Zeit Zweck
(h)
1 Spülen mit Wasser (3x)
2 Lagern in Wasser 0,5
3 Lagern in Wasser 0,5
4 Behandeln mit wässriger 1% 16 Haarentfernung
Natriumsulfid, 0, 1 M NaOH- Lösung
5 Spülen mit Wasser (3x) Diffusion, Osmose
6 Lagern in Wasser 1
7 Lagern in 10% NaCl 3
8 Lagern in Wasser 1
9 Lagern in 10% NaCl 16
10 Spülen mit Wasser (3x) Diffusion, Osmose
1 1 Lagern in Wasser 1
12 Lagern in 10% NaCl 3
13 Lagern in Wasser 1
14 Lagern in 10% NaCl 16
15 Spülen mit Wasser (3x)
16 Lagern in 3% Wasserstoffperoxid 24 Inaktivierung von
17 Lagern in 3% Wasserstoffperoxid 24 Bakterien und Viren,
18 Lagern in 3% Wasserstoffperoxid 24 Bleichen von Pigmenten
19 Spülen mit Wasser (3x) Auswaschen H2O2
20 Lagern in 70 % Aceton 2
21 Lagern in 90 % Aceton 2 langsamer Wasserentzug
22 Lagern in 100 % Aceton 2 Wasserentzug/ Entfettung
23 Lagern in 100 % Aceton 16 Wasserentzug/ Entfettung
24 Lagern in 100 % Aceton 24 Wasserentzug/ Entfettung
25 Lagern in 100 % Aceton 24 Vireninaktivierung
26 Trocknung bei 35°C 24 Acetonentzug
Nach der chemischen Behandlung wurden schließlich aus der Dermis ovale Transplantate mit einer Größe von jeweils 160 x 250 mm ausgestanzt und diese wurden paarweise in einer laminierten Kunststofffolie trocken eingeschweißt sowie bei 35°C mit Gammastrahlung mit einer
Energiedosis von 20 kGy bestrahlt. Die so hergestellten Transplantate wiesen eine der nativen Struktur nahezu identische Morphologie auf.

Claims

Patentansprüche:
1. Verfahren zur Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis, insbesondere aus porciner Dermis, umfassend die nachfolgenden Schritte: a) Bereitstellen von tierischer Dermis,
b) Behandeln der tierischen Dermis mit einer wässrigen, Natriumsulfid enthaltenden Lösung,
c) ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässrigen Salzlösung,
d) ggf. ein- oder mehrmaliges Behandeln der Dermis mit einer wässrigen Wasserstoffperoxidlösung und
e) Dehydratisieren der Dermis.
2. Verfahren nach Anspruch 1 ,
dadurch gekennzeichnet, dass
in dem Schritt b) eine wässrige alkalische, Natriumsulfid enthaltende Lösung eingesetzt wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet, dass
in dem Schritt b) eine wässrige Lösung eingesetzt wird, welche 0,01 bis 10 Gew.-%, bevorzugt 0,1 bis 5 Gew.-%, besonders bevorzugt 0,5 bis 3 Gew.-%, ganz besonders bevorzugt 0,75 bis 1,5 Gew.-% und höchst bevorzugt 1 Gew.-% Natriumsulfid enthält.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
in dem Schritt b) eine wässrige Lösung eingesetzt wird, welche neben Natriumsulfid 0,001 bis 0,5 M Natriumhydroxid, bevorzugt 0,005 bis 0,4 M Natriumhydroxid, besonders bevorzugt 0,01 bis 0,3 M Natriumhydroxid, insbesondere bevorzugt 0,05 bis 0,2 M Natriumhydroxid, ganz besonders bevorzugt 0,075 bis 0,125 M Natriumhydroxid und höchst bevorzugt 1 M Natriumhydroxid enthält.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt b) für 1 bis 48 Stunden, bevorzugt für 5 bis 36 Stunden, besonders bevorzugt für 12 bis 24 Stunden und ganz besonders bevorzugt für 14 bis 20 Stunden mit einem, bezogen auf das der Dermis, 5- bis 15-fachen Volumen, bevorzugt 6- bis 14- fachen Volumen, insbesondere bevorzugt 7- bis 13-fachen Volumen, weiter bevorzugt 8- bis 12-fachen Volumen und ganz besonders bevorzugt 9- bis 11 -fachen Volumen einer wässrigen Natriumsulfid enthaltenden Lösung behandelt wird.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt c) mit einer wässrigen, 1 bis 50 Gew.-%, bevorzugt 2 bis 20 Gew.-%, besonders bevorzugt 5 bis 15 Gew.-% und ganz besonders bevorzugt 10 Gew.-% Salz enthaltenden Lösung behandelt wird, wobei das Salz bevorzugt ein Alkalimetallhalogenid oder Erdalkalimetallhalogenid, besonders bevorzugt ein Alkalimetallchlorid oder Erdalkalimetallchlorid, wie Kaliumchlorid, Lithiumchlorid, Magnesiumchlorid oder Calciumchlorid, ist.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt c) zwei- bis zehnmal, bevorzugt drei- bis fünfmal und besonders bevorzugt viermal mit einer wässrigen Salzlösung behandelt wird, wobei die Dermis zwischen den Behandlungsschritten mit Salzlösung jeweils mit Wasser behandelt und /oder gespült wird.
8. Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt d) mit einer wässrigen Lösung behandelt wird, welche 1 bis 10 Gew.-% Wasserstoffperoxid, bevorzugt 2 bis 5 Gew.-% Wasserstoffperoxid und besonders bevorzugt 3 Gew.-% Wasserstoffperoxid enthält.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt d) zwei- bis fünfmal und bevorzugt dreimal mit einer wässrigen Wasserstoffperoxidlösung behandelt wird, wobei die Dermis zwischen den Behandlungsschritten mit der Wasserstoffperoxidlösung jeweils mit Wasser behandelt und/ oder gespült wird.
Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass
die Dermis in dem Schritt e) durch zwei- bis zehnmaliges, bevorzugt durch vier- bis achtmaliges und besonders bevorzugt durch sechsmaliges Behandeln mit einem organischen Lösungsmittel ausgewählt aus der Gruppe bestehen aus Aceton, Methanol, Ethanol und Isopropylalkohol dehydratisiert wird.
11. Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche, dadurch ge ke nn ze ich ne t, dass
in dem Schritt a) porcine Dermis bereitgestellt wird.
12. Verfahren nach Anspruch 11 ,
dadurch ge ke n n ze i c h n e t, dass
das Bereitstellen der Dermis in dem Schritt a) die folgenden Schritte umfasst: a ) Reinigen der Haut von geschlachtetem Schwein mit ggf. De- tergens enthaltendem Wasser, wobei das Wasser eine Temperatur zwischen Raumtemperatur und maximal 40°C aufweist, a2) Abziehen der Haut von der Rückenpartie des Schweins, ae) Entfernen der Borsten von der in dem Schritt a ) bereitgestellten Haut und
a ) Entfernen der Subcutis und der Epidermis von der Dermis mittels einer Spaltmaschine.
13. Transplantat erhältlich nach einem Verfahren nach zumindest einem der vorstehenden Ansprüche.
14. Verwendung eines Transplantats nach Anspruch 13 in der Hernien- chirurgie, zur Behandlung von Narbenhernien oder zur Behandlung von Platzbauch.
PCT/EP2012/000124 2011-01-14 2012-01-12 Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung WO2012095316A1 (de)

Priority Applications (15)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP12700549.4A EP2654815B1 (de) 2011-01-14 2012-01-12 Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung
RU2013137859/15A RU2575831C2 (ru) 2011-01-14 2012-01-12 Получение трансплантата из дермы животного с применением раствора сульфида натрия
CA2829019A CA2829019A1 (en) 2011-01-14 2012-01-12 Producing a transplant from animal dermis using sodium sulfide solution
CN201280011815.9A CN103415308B (zh) 2011-01-14 2012-01-12 使用硫化钠溶液由动物真皮制造移植物
KR1020137021535A KR101894485B1 (ko) 2011-01-14 2012-01-12 황화나트륨 용액을 이용한 동물 진피로부터의 이식물 제조
BR112013018037A BR112013018037A2 (pt) 2011-01-14 2012-01-12 método para a produção de enxerto na derme de um animal, em particular derme porcina, enxerto e uso do enxerto
NZ614239A NZ614239B2 (en) 2011-01-14 2012-01-12 Producing a transplant from animal dermis using sodium sulfide solution
SG2013061148A SG192729A1 (en) 2011-01-14 2012-01-12 Producing a transplant from animal dermis using sodium sulfide solution
AU2012206763A AU2012206763B2 (en) 2011-01-14 2012-01-12 Producing a transplant from animal dermis using sodium sulfide solution
US13/830,981 US9814745B2 (en) 2011-01-14 2013-03-14 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US13/839,440 US10076543B2 (en) 2011-01-14 2013-03-15 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US16/113,951 US10765703B2 (en) 2011-01-14 2018-08-27 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US17/013,159 US11382933B2 (en) 2011-01-14 2020-09-04 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US17/838,001 US11883437B2 (en) 2011-01-14 2022-06-10 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US18/391,502 US20240115621A1 (en) 2011-01-14 2023-12-20 Xenograft soft tissue implants and methods of making

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE102011008604A DE102011008604A1 (de) 2011-01-14 2011-01-14 Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis mit Natriumsulfidlösung
DE102011008604.8 2011-01-14

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US13/830,981 Continuation-In-Part US9814745B2 (en) 2011-01-14 2013-03-14 Xenograft soft tissue implants and methods of making
US13/839,440 Continuation-In-Part US10076543B2 (en) 2011-01-14 2013-03-15 Xenograft soft tissue implants and methods of making

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2012095316A1 true WO2012095316A1 (de) 2012-07-19

Family

ID=45507687

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/EP2012/000124 WO2012095316A1 (de) 2011-01-14 2012-01-12 Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung

Country Status (11)

Country Link
US (6) US9814745B2 (de)
EP (1) EP2654815B1 (de)
KR (1) KR101894485B1 (de)
CN (1) CN103415308B (de)
AU (1) AU2012206763B2 (de)
BR (1) BR112013018037A2 (de)
CA (1) CA2829019A1 (de)
DE (1) DE102011008604A1 (de)
PE (1) PE20140489A1 (de)
SG (1) SG192729A1 (de)
WO (1) WO2012095316A1 (de)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015128097A1 (de) * 2014-02-26 2015-09-03 Tutogen Medical Gmbh Verfahren zur konservierung von tierischem und insbesondere porcinem knorpelgewebe
EP2968646A4 (de) * 2013-03-13 2016-10-26 Allosource Faszienfaserzusammensetzungen und verfahren zu deren verwendung und herstellung
US9814745B2 (en) 2011-01-14 2017-11-14 Tutogen Medical Gmbh Xenograft soft tissue implants and methods of making
US10772986B2 (en) 2017-01-26 2020-09-15 Allosource Fascia fibrous compositions and methods for their use and manufacture

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140286911A1 (en) 2013-03-15 2014-09-25 Allosource Cell repopulated collagen matrix for soft tissue repair and regeneration
US9162011B2 (en) 2011-12-19 2015-10-20 Allosource Flowable matrix compositions and methods
US9532866B2 (en) * 2012-03-15 2017-01-03 L&C Bio Co., Ltd. Acellular dermal graft
WO2015138832A1 (en) 2014-03-13 2015-09-17 The General Hospital Corporation Devices and methods to improve and assess viability of human livers
CN104860853B (zh) * 2015-05-20 2017-03-29 河南师范大学 一种对甲砜基苯丝氨酸乙酯的制备方法
AU2016344019B2 (en) 2015-10-30 2021-07-15 New York Society For The Relief Of The Ruptured And Crippled, Maintaining The Hospital For Special Surgery Suture sleeve patch and methods of delivery within an existing arthroscopic workflow
US10702260B2 (en) 2016-02-01 2020-07-07 Medos International Sàrl Soft tissue fixation repair methods using tissue augmentation scaffolds
US11484401B2 (en) 2016-02-01 2022-11-01 Medos International Sarl Tissue augmentation scaffolds for use in soft tissue fixation repair
FR3052669B1 (fr) * 2016-06-17 2018-06-15 Meccellis Biotech Prothese biologique destinee au traitement des hernies parastomales
CN111511415B (zh) 2017-12-14 2021-04-20 盖斯特里希医药公司 干式植入物组合物和可注射的水性植入物制剂
EP3920695A4 (de) * 2019-02-05 2023-04-05 The General Hospital Corporation Konservierung vaskularisierter zusammengesetzter allotransplantate
ES2939083T3 (es) 2019-06-14 2023-04-18 Geistlich Pharma Ag Formulación acuosa de implante inyectable que contiene ácido ascórbico
WO2022014769A1 (ko) * 2020-07-13 2022-01-20 주식회사 엘앤씨바이오 수화형태 무세포화 피부대체재 및 그 제조방법
KR20230015191A (ko) * 2021-07-22 2023-01-31 한스바이오메드 주식회사 무세포 진피층 이식재의 두께를 증가시키는 방법
CN115006592B (zh) * 2022-06-15 2024-01-30 上海交通大学医学院附属第九人民医院 一种脱细胞真皮复合材料、制备方法及用途

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10196234B4 (de) * 2000-05-26 2008-04-30 Engelhard Lyon S.A. Verfahren zur Herstellung eines Verbundprodukts aus Kollagen für die Gewebebildung und seine Verwendung

Family Cites Families (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3254938A (en) 1962-08-29 1966-06-07 Rodriguez Pedro Villa Leather tanning
US4801299A (en) 1983-06-10 1989-01-31 University Patents, Inc. Body implants of extracellular matrix and means and methods of making and using such implants
GB8413319D0 (en) 1984-05-24 1984-06-27 Oliver Roy Frederick Biological material
US4752347A (en) 1986-10-03 1988-06-21 Rada David C Apparatus for preparing tissue sections
DE3835237C1 (de) 1988-10-15 1989-12-28 B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen, De
US8067149B2 (en) 1990-09-12 2011-11-29 Lifecell Corporation Acellular dermal matrix and method of use thereof for grafting
US5507810A (en) 1991-10-07 1996-04-16 Osteotech, Inc. Processing of fibrous connective tissue
CN1044199C (zh) * 1992-10-23 1999-07-21 丛培华 一种生物敷料的生产方法
DE19645107C2 (de) 1996-11-01 1999-06-24 Leica Ag Mikrotom mit einem oszillierenden Messer
US5993844A (en) 1997-05-08 1999-11-30 Organogenesis, Inc. Chemical treatment, without detergents or enzymes, of tissue to form an acellular, collagenous matrix
KR100272757B1 (ko) * 1997-12-31 2000-11-15 서경배 기니픽피부디스크제조방법및이를이용한항균력측정방법
AU743667B2 (en) * 1998-02-23 2002-01-31 Swift Beef Company Method and system for dehairing animals
US6630001B2 (en) * 1998-06-24 2003-10-07 International Heart Institute Of Montana Foundation Compliant dehyrated tissue for implantation and process of making the same
US6267786B1 (en) 1999-02-11 2001-07-31 Crosscart, Inc. Proteoglycan-reduced soft tissue xenografts
DE19940426A1 (de) * 1999-08-26 2001-03-01 Tutogen Medical Gmbh Verfahren zum Dehydratisieren von biologischen Geweben zur Herstellung von Transplantat-Konserven
US6696074B2 (en) 2000-12-04 2004-02-24 Tei Biosciences, Inc. Processing fetal or neo-natal tissue to produce a scaffold for tissue engineering
US6933103B1 (en) * 2001-03-21 2005-08-23 Brennen Medical, Inc. Biocompatible tissue for therapeutic use and method of making same
DE10152152B4 (de) 2001-10-25 2004-02-26 Carl Zeiss Meditec Ag Schneidvorrichtung
DE10217779A1 (de) 2002-04-18 2003-11-13 Co Don Ag Konservierte Gewebematrix eines Hohlorganes, insbesondere eines Blutgefäßes, Verfahren zur Herstellung und Verwendung dieser
US6908591B2 (en) 2002-07-18 2005-06-21 Clearant, Inc. Methods for sterilizing biological materials by irradiation over a temperature gradient
EP2031968B1 (de) 2006-04-21 2017-11-22 Wake Forest University Health Sciences Strukturell modifizierte azelluläre gewebe-engineering-gerüste und herstellungsverfahren
DK3473260T3 (da) 2007-07-10 2020-12-21 Lifecell Corp Acellulære vævsmatrixs-sammensætninger til vævsreparation
CZ301086B6 (cs) 2007-10-17 2009-11-04 Bio-Skin, A. S. Sterilní autologní, allogenní nebo xenogenní implantát a zpusob jeho výroby
DE102008022319A1 (de) 2008-04-30 2009-11-05 Aesculap Ag Implantat, insbesondere zur Wiederherstellung und/oder Regenerierung von menschlichem und/oder tierischem Gewebe
EP2280658A1 (de) 2008-05-21 2011-02-09 Tutogen Medical GmbH Verfahren und vorrichtung zum herstellen von dermis
DE102011008604A1 (de) 2011-01-14 2012-07-19 Tutogen Medical Gmbh Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis mit Natriumsulfidlösung

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10196234B4 (de) * 2000-05-26 2008-04-30 Engelhard Lyon S.A. Verfahren zur Herstellung eines Verbundprodukts aus Kollagen für die Gewebebildung und seine Verwendung

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
I. PRASERTSUNG ET AL.: "Development of acellular dermis from porcine skin using periodic pressurized technique", JOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIAL RESEARCH PART B: APPLIED BIOMATERIALS, vol. 85, no. 1, 12 September 2007 (2007-09-12), pages 210 - 219, XP002670156 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9814745B2 (en) 2011-01-14 2017-11-14 Tutogen Medical Gmbh Xenograft soft tissue implants and methods of making
US10076543B2 (en) 2011-01-14 2018-09-18 Tutogen Medical Gmbh Xenograft soft tissue implants and methods of making
US10765703B2 (en) 2011-01-14 2020-09-08 Tutogen Medical Gmbh Xenograft soft tissue implants and methods of making
EP2968646A4 (de) * 2013-03-13 2016-10-26 Allosource Faszienfaserzusammensetzungen und verfahren zu deren verwendung und herstellung
WO2015128097A1 (de) * 2014-02-26 2015-09-03 Tutogen Medical Gmbh Verfahren zur konservierung von tierischem und insbesondere porcinem knorpelgewebe
US10772986B2 (en) 2017-01-26 2020-09-15 Allosource Fascia fibrous compositions and methods for their use and manufacture

Also Published As

Publication number Publication date
US20130209572A1 (en) 2013-08-15
NZ614239A (en) 2015-03-27
KR20140032993A (ko) 2014-03-17
US11883437B2 (en) 2024-01-30
US20190111087A1 (en) 2019-04-18
RU2013137859A (ru) 2015-02-20
CA2829019A1 (en) 2012-07-19
AU2012206763A1 (en) 2013-08-29
US11382933B2 (en) 2022-07-12
KR101894485B1 (ko) 2018-09-03
CN103415308B (zh) 2015-09-23
EP2654815B1 (de) 2015-03-11
SG192729A1 (en) 2013-09-30
US20130302436A1 (en) 2013-11-14
US20200397829A1 (en) 2020-12-24
US20240115621A1 (en) 2024-04-11
DE102011008604A1 (de) 2012-07-19
CN103415308A (zh) 2013-11-27
US10765703B2 (en) 2020-09-08
US10076543B2 (en) 2018-09-18
PE20140489A1 (es) 2014-05-15
US20220296651A1 (en) 2022-09-22
EP2654815A1 (de) 2013-10-30
BR112013018037A2 (pt) 2019-09-24
US9814745B2 (en) 2017-11-14
AU2012206763B2 (en) 2015-10-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2654815B1 (de) Herstellung eines transplantats aus tierischer dermis mit natriumsulfidlösung
EP0052288B1 (de) Kollagenpräparate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung in der Human- und Veterinärmedizin
DE69827402T2 (de) Chemische reinigung von biologischem material
DE60009339T2 (de) Zusammensetzung zur gewebsregeneration
DE3617898A1 (de) Flexible prothesen mit vorgegebener gestalt und verfahren zu ihrer herstellung
EP1206180B1 (de) Verfahren zum dehydratisieren von biologischen geweben zur herstellung von transplantat-konserven
DE19929802A1 (de) Collagenprodukt, Verfahren zu seiner Herstellung und es enthaltendes kosmetisches oder pharmazeutisches Produkt
CN102580153A (zh) 一种制备脱细胞真皮基质医用组织补片的方法
CH694640A5 (de) Verfahren zur Herstellung einer Kollagenmembran aus Schweinehaut.
EP0438499B1 (de) Verfahren zur herstellung von rinder-pericard-materialien und ihre verwendung
DE2854490C2 (de) Knochenersatzmaterial mit verbesserter biologischer Stabilität auf Basis von Kollagen
CN106474547B (zh) 一种适合细胞生长的生物支架材料及其制备方法
RU2189257C1 (ru) Биоматериал аллоплант для регенеративной хирургии
DE602004007890T2 (de) Schweinekollagenfilm
EP1124593B1 (de) Verfahren zur präparation von knochenmaterial
DE1916667A1 (de) Verfahren und Mittel zum Konservieren von Tier- oder Pflanzenpraeparaten und nach diesem Verfahren hergestellte Praeparate
EP1791422B1 (de) Sterilisationsverfahren zur herstellung von implantierbarem oder transplantierbarem biologischem material
EP3110246B1 (de) Verfahren zur konservierung von porcinem knorpelgewebe
RU2575831C2 (ru) Получение трансплантата из дермы животного с применением раствора сульфида натрия
DE2546935B2 (de) Verfahren zur Herstellung von eßbaren Kollagen-Wursthüllen
NZ614239B2 (en) Producing a transplant from animal dermis using sodium sulfide solution
CN106693079B (zh) 引导组织再生膜及其制备方法
CN114146224A (zh) 一种脱细胞真皮基质微粒的制备方法
TWI232112B (en) Process of preparing porcine dressing
DE1180889B (de) Verfahren zum Praeparieren von zur Transplan-tation bestimmten tierischen Knochen, Knor-peln, Sehnen oder Muskelhaeuten

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 12700549

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 001559-2013

Country of ref document: PE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2012700549

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2013137859

Country of ref document: RU

Kind code of ref document: A

Ref document number: 20137021535

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2012206763

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20120112

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2829019

Country of ref document: CA

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01A

Ref document number: 112013018037

Country of ref document: BR

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 112013018037

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20130715